1

BAB I

PRAKTIKUM 1

PRAKTIKUM TEKNIK KIMIA DASAR : PENGGUNAAN PIPET, TIMBANGAN DAN

PEMBUATAN LARUTAN

TUJUAN

1. Mahasiswa mampu menggunakan berbagai macam pipet dengan benar.

2. Mahasiswa mampu melarutkan zat padat secara baik dan benar.

3. Mahasiswa dapat mengetahui cara menimbang zat padat dan pasta.

DASAR TEORI

Neraca elektrik maupun analog secara umum adalah sebagai alat pengukur massa.

Kegunaan neraca ini tergantung dari skala dari neraca tersebut, misal neraca elektrik yang ada di

pasar dengan yang di laboratorium tentu sensitivitas dan skala neracanya jauh berbeda dalam

segi akurasi yang dihasilkan. Semakin sedikit massa yang ditimbang maka diperlukan neraca

yang mempunyai akurasi yang lebih teliti.

Menimbang zat pada praktikum biokimia diperlukan tempat penimbangan yang dapat

digunakan seperti gelas kimia, kaca arloji dan kertas timbang. Penimbangan tidak bisa dilakukan

secara langsung namun harus menggunakan gelas kimia, kaca arloji dan kertas timbang sebagai

alas penimbangan agar tidak mengotori timbangan.

Menimbang zat dengan penimbangan selisih dilakukan jika zat yang ditimbang

dikhawatirkan akan menempel pada tempat menimbang dan sulit untuk dibilas. Pada

penimbangan selisih akan diperoleh massa zat yang masuk ke dalam tempat yang diinginkan

bukan pada tempat menimbang.

Pipet merupakan alat yang digunakan untuk mengambil cairan dengan volume tertentu

yang diinginkan ke dalam tempat lain. Pipet terdiri dari berbagai macam jenis, yakni pipet

volume, pipet tetes, pipet ukur dan pipet otomatik. Setiap pipet memiliki akurasi dan ukuran

yang berbeda-beda. Pipet yang memiliki akurasi yang tinggi adalah pipet otomatik, namun harga

untuk pipet ini cukup mahal. Pipet otomatik dapat mengambil cairan dari ukuran volume 0,1 μl

sampai 5000 μl.

2

Pipet yang relative murah yakni pipet volume dan pipet ukur. Kedua pipet ini memiliki

akurasi yang berbeda. Pipet volume lebih memiliki akurasi yang lebih teliti dibandingkan pipet

ukur. Pipet volume memiliki ukuran berbeda-beda untuk setiap pipet yakni dari 0,5 ml, 1 ml, 2

ml, 3ml dan 5ml. Pipet volume bersifat tunggal, sehingga satu pipet tidak bisa digunakan dalam

volume berbeda. Pipet ukur memiliki skala ukuran sampai 50 ml sehingga memungkinkan

pengguna mengambil cairan dengan volume berbeda dengan satu pipet saja.

BAHAN DAN ALAT

Bahan : Larutan aquades, padatan garam murni

Alat : Labu ukur, corong kaca , pipet tetes, batang pengadu, kertas saring, sendok, botol

timbang, timbangan digital

PROSEDUR

1. Menggunakan berbagai macam pipet

Pipet yyang digunakan dalam praktikum terdiri dari tiga jenis pipet, yakni pipet ukur,

pipet volume dan pipet otomatik. Penggunaan pipet volume dan pipet ukur dibantu pipet

filler/bulb dengan kode A, S, dan E yang tertera pada bagian pippet filler/bulb. Cara

menggunakan pipet volume dan pipet ukur adalah sebagai berikut :

a. Memasang pippet filler/bulb pada ujung bagian atas pipet.

b. Menekan bagian bertuliskan huruf A pada pippet filler/bulb sekaligus untuk

mengempiskan pippet filler/bulb.

c. Memasukkan pipet volume atau pipet ukur ke dalam cairan yang akan dihisap/ diambil,

lalu tekan bagian bertuliskan huruf S pada pippet filler/bulb, cairan akan terhisap masuk

ke dalam pipet volume atau pipet ukur.

d. Cairan dapat dikeluarkan dengan menekan bagian bertuliskan E pada pipet filler/bulb.

Pipet Otomatik : Pipet otomatik yang digunakan dalam praktikum, yaitu pipet otomatik

dengan volume 500 μl – 5000 μl. Penggunaannya lebih mudah dibandingkan dengan pipet-pipet

yang lainnya karena volume cairan yang dihisap dapat diatur secara otomatis dan hasilnya lebih

akurat. Cara menggunakan pipet volume adalah sebagai berikut :

3

a. Pasang tip yang sesuai ukuran pada bagian ujung pipet.

b. Tekan tombol pipet bagian atas kemudian masukkan ujung tip ke dalam cairan.

c. Lepaskan tombol secara berlahan sehingga cairan masuk ke dalam tip.

d. Masukkan ujung tip ke labu ukur kemudian tekan tombol pipet sampai batas pertama,

kemudian tekan sekali lagi sampai tombol menyentuh batas terakhir.

2. Menimbang padatan garam murni

a. Neraca dipastikan datar dan dipastikan dalam keadaan 0,0000 gr.

b. Menimbang botol timbang dan menutup kaca neraca.

c. Mencatat berat kosong botol timbang ketika skala menunjukkan stabil.

d. Membuka tutup neraca dan menambahkan padatan garam murni secara berkelanjutan

menggunakan sendok atau spatula.

e. Menutup botol timbang dan neraca.

f. Mencatat berat setelah skala menunjukkan stabil.

g. Menghitung massa bahan dengan menghitung berat botol berisi bahan dikurangi berat

botol timbang kosong.

3. Melarutkan padatan garam murni

a. Menyiapkan alat dan dilakukan pembilasan menggunakan aquades sebanyak dua kali.

b. Memasang corong pada labu ukur dan menyelipkan kertas saring yang sudah dilipat pada

bagian batang corong.

c. Menuangkan aquades ke dalam botol timbang dan menggerus menggunakan batang

pengaduk pada bagian yang tidak pipih sampai padatan garam murni benar-benar larut.

d. Memindahkan larutan dari botol timbang ke labu ukur dengan bantuan batang pengaduk.

e. Menambahkan pelarut sampai dibawah tanda tera

f. Mengeringkan bagian di atas tanda tera dengan menggunakan kertas saring

g. Menambahkan pelarut perlahan-lahan sampai tanda tera dengan bantuan pipet tetes.

h. Menutup labu ukur dan membolak-balikkannya sehingga larutan menjadi homogen.

4

Laporan Praktikum

5

BAB II

KARBOHIDRAT

TUJUAN :

1. Mengetahui kandungan karbohidrat sederhana dalam bahan

2. Mengetahui kandungan karbohidrat kompleks dalam bahan

DASAR TEORI

Karbohidrat merupakan senyawa karbon paling melimpah di alam, terutama sebagai

penyusun utama tanaman. Karbohidrat juga disebut sebagai polisakarida atau sakarida. Senyawa

karbohidrat merupakan senyawa polihidroksi aldehida atau polihidroksi keton yang mengandung

unsur karbon (C), hidrogen (H), dan oksigen (O), dengan rumus empiris total (CH2O)n.

Karbohidrat paling sederhana memiliki molekul C6H12O6.

Karbohidrat diklasifikasikan berdasarkan polimer penyusunnya. Berdasarkan monomer

penyusun karbohidrat, karbohidrat dapat dikelompokkan menjadi monosakarida, oligosakarida,

dan polisakarida. Karbohidrat yang berupa pati dapat mengalami reaksi hidrolisis menjadi

amilosa dan amilopektin.

6

PRAKTIKUM 2

UJI MOLISCH

TUJUAN : membuktikan adanya karbohidrat secara kualitatif

PRINSIP: karbohidrat akan terhidrolisis oleh asam organik pekat menjadi monosakarida.

Dehidrasi jenis pentosa oleh asam sulfat pekat menjadi furfural dan golongan heksosa

menghasilkan hidroksi-metilfurfural. Pereaksi Molisch yang terdiri atas alfa-naptol dalam

alkohol akan bereaksi dengan furfural membentuk senyawa kompleks berwarna ungu (Yazid dan

Lisanti,2006).

Sumber: http://monruw.wordpress.com

BAHAN DAN ALAT

Bahan : Daging ikan, udang, tempura, darah, glukosa, pereaksi Molisch, H2SO4 pekat

Alat :Tabung reaksi, Pipet tetes, Akuadest, Spuit, dan jarum

PROSEDUR

1. Bahan yang berupa padatan dihancurkan dan dilarutkan dalam akuades, berikutnya disebut

larutan uji

7

2. Masukkan 15 tetes larutan uji ke dalam tabung reaksi

3. Tambahkan 3 tetes pereaksi Molisch. Campurkan dengan baik

4. Miringkan tabung reaksi, lalu alirkan dengan hati-hati 1 ml H2SO4 pekat melalui dinding

tabung agar kedua larutan tidak bercampur. Dua larutan terbagi menjadi dua fraksi

5. Reaksi positif ditandai dengan terbentuknya cincin berwarna ungu pada batas antara kedua

lapisan

HASIL PERCOBAAN

NO ZAT UJI HASIL UJI MOLISCH KARBOHIDRAT (+/-)

1 Daging ikan

2 Udang

3 Tempura

4 Darah ikan

5 Glukosa

8

Laporan Praktikum

9

PRAKTIKUM 3

UJI IODIUM

TUJUAN : Membuktikan adanya polisakarida (amilum, glikogen, dan dekstrin) pada suatu

bahan

PRINSIP: Polisakarida dengan penambahan iodium akan membentuk kompleks adsopsi

berwarna yang spesifik. Amilum atau pati dengan iodium menghasilkan warna biru, dekstrin

menghasilkan warna merah anggur, sedangkan glikogen dan sebagian pati yang terhidrolisis

bereaksi dengan iodium membentuk warna cokelat. Tujuan:

BAHAN DAN ALAT:

Bahan : Daging ikan, udang, tempura, darah, pati masing-masing dibuat larutan dalam

akuadest, Larutan iodium

Alat :Tabung reaksi, Pipet tetes

PROSEDUR

1. Masukkan 3 tetes larutan uji ke dalam tabung reaksi

2. Tambahkan 2 tetes larutan iodium

3. Amati warna spesifik yang terbentuk

HASIL PERCOBAAN

NO ZAT UJI HASIL UJI

MOLISCH

KARBOHIDRAT

(+/-)

1 Daging ikan

2 Udang

3 Tempura

4 Darah ikan

5 Pati

10

Laporan Praktikum

11

BAB III

PROTEIN

Dasar Teori

Protein merupakan penyusun utama sel hidup, baik mikrobia, tumbuhan,maupun hewan.

Protein memiliki peranan penting. Peran utama protein ialah sebagai zat pembangun atau

pembentuk struktur sel dan sebagai pengatur, semisal hormon, antibodi, dan enzim. Enzim

merupakan biokatalisator reaksi dalam tubuh. Protein dalam tubuh manusia didapatkan dari

bahan makanan baik yang berasal dari hewan maupun tanaman.

Secara kimiawi, protein merupakan senyawa polimer yang tersusun atas satuan asam-

asam amino sebagai monomer-nya. Asam-asam amino yang terikat satu dengan yang alin dengan

ikatan peptida, yaitu antara gugus karboksil (-COOH) suatu asam amino dengan gugus amino (-

NH2) asam amino lain dan melepaskan satu molekul air.

Protein diklasifikasikan berdasarkan bentuknya menjadi dua yaitu protein globuler dan

protein fiber. Protein globuler berbentuk bulat atau elips, larut dalam air, asam, basa atau etanol.

Contohnya adalah albumin, globulin, protamin, enzim dan antibodi. Protein fiber berbentuk serat

atau serabut dengan rantai polipeptida memanjang pada satu sumbu. Hampir semua protein fiber

memiliki peranan struktural atau pelindung. Protein fiber tidak larut air, asam, basa, maupun

etanol. Contoh protein fiber ialah keratin rambut, kolagen, dan fibroin pada sutera.

Beberapa protein mudah larut dalam air, tetapi ada pula yang sulit larut. Namun semua

protein tidak larut dalam pelarut organik seperti eter, kloroform, atau benzena. Pada umumnya

protein sensitif terhadap pengaruh fisik dan kimia, sehingga mudah mengalami perubahan

bentuk. Perubahan atau modifikasi pada struktur molekul protein disebut dengan denaturasi. Hal

yang dapat menyebabkan denaturasi protein adalah panas, pH , tekanan, aliran listrik, dan adanya

bahan kimia seperti urea, alkohol, atau sabun. Proses denaturasi kadang berlangsung secara

reversibel namun ada pula yang irreversibel, tergantung penyebabnya. Denaturasi menyebabkan

penurunan fungsi biologisnya.

12

PRAKTIKUM 4

UJI KELARUTAN PROTEIN

TUJUAN: Mengetahui daya kelarutan protein terhadap pelarut tertentu

Prinsip: Protein bersifat amfoter, yaitu dapat bereaksi dengan larutan asam maupun basa. Daya

larut protein bebeda di dalam air, asam, dan basa. Sebagian ada yang mudah larut dan ada yang

sukar larut. Namun semua protein tidak larut dalam pelarut lemak seperti jenis eter atau

kloroform. Apabila protein dipanaskan atau ditambah etanol absolut, maka protein akan

menggumpal (terkoagulasi). Hal ini disebabkan etanol menarik mantel air yang melingkupi

molekul-molekul protein.

BAHAN DAN ALAT

Bahan: Putih telur, kasein, akuades, larutan HCl 10%, larutan NaOH 40%, alkohol 96%,

kloroform

Alat :tabung reaksi, pipet ukur

PROSEDUR

1. Sediakan 5 tabung reaksi, masing-masing isilah dengan: akuades, HCL 10%, NaOH 10%,

alkohol 96%, dan kloroform sebanyak 1 ml

2. Tambahkan 2 mL putih telur pada tiap tabung

3. Kocoklah dengan kuat, kemudian amati sifat kelarutannya

4. Ulangi percobaan tersebut menggunakan kasein

HASIL PERCOBAAN

13

BAHAN Tabung 1 Tabung 2 Tabung 3 Tabung 4 Tabung 5

Putih telur 2 ml 2 ml 2 ml 2 ml 2 ml

Akuades 1 ml - - - -

HCl 10% - 1 ml - - -

NaOH 40% - - 1 ml - -

Alkohol 96% - - - 1 ml -

Kloroform - - - - 1 ml

Kocok dengan kuat

Hasil:

Larut/Tidak

BAHAN Tabung 1 Tabung 2 Tabung 3 Tabung 4 Tabung 5

Kasein 2 ml 2 ml 2 ml 2 ml 2 ml

Akuades 1 ml - - - -

HCl 10% - 1 ml - - -

NaOH 40% - - 1 ml - -

Alkohol 96% - - - 1 ml -

Kloroform - - - - 1 ml

Kocok dengan kuat

14

Hasil:

Larut/Tidak

15

Laporan Praktikum

16

PRAKTIKUM 5

ISOLASI KASEIN DARI SUSU

TUJUAN : Mengisolasi kasein dari susu dengan cara pengendapan dengan asam

PRINSIP :Susu merupakan bahan pangan yang memiliki komponen spesifik seperti lemak susu,

kasein (protein susu, dan laktosa (karbohidrat susu).Seperti halnya asam amino, protein susu

(kasein) juga bersifat amfoter. Protein dalam susu mencapai 3,25%. Struktur primer terdiri dari

rantai polipeptida dari asam-asam amino yang disatukan ikatan-ikatan peptida (peptida linkages).

Protein juga memiliki pH isoelektrik tertentu. pH isoelektrik merupakan suati nilai pH dimana

jumlah muatan listrik positif sama dengan muatan negatifnya. Pada pH tersebut, protein tidak

bermuatan positif maupun negatif, sehingga dapat membentuk agregat (gumpalan-gumpalan

yang keruh) dan mengendap, karena sebagian protein menunjukkan kelarutan yang minimal pada

pH isolektriknya. Sifat inilah yang akan digunakan untuk memisahkan atau mengisolasi kasein

dari susu.

Protein susu memiliki protein-protein spesifik. Salah satunya adalah kasein. Kasein

merupakan komponen terbesar dalam susu dan sisanya berupa whey protein. kadar kasein pada

protein susu mencapai 80%. Kasein terdiri atas beberapa fraksi seperti alpha-casein, beta casein,

dan kappa-casein. Kasein merupakan salah satu komponen organik yang melimpah dalam susu

bersama dengan lemak dan laktosa. Kasein merupakan protein konjugasi antara protein dengan

fosfat membentuk fosfoprotein. Kasein berupa serbuk amorf warna putih.

Dalam kaseintidak hanya terdiri dari zat-zat organik, melainkan mengandung juga zat

anorganil seperti kalsium, fosfor, dan magnesium. Dalam keadaan murni, kasein berwarna putih

seperti salju, tidak berbau, dan tidak mempunyai rasa yang khas. Kasein murni tidak larut dalam

air dingin dan garam netral. Kasein terdispersi dalam air panas, basa, dan garam basa seperti

natrium asetat, dan natrium oksalat.

Kasein dapat diendapkan oleh asam, enzim rennet, dan alkohol. Selain penambahan

asam, pengendapan kasein susu juga dilakukan dengan penambahan renin, yaitu suatu enzim

proteolitik yang diperoleh dari induk sapi betina. oleh karena itu, susu dapat dikoagulasikan

(digumpalkan) oleh asam yang terbentuk di dalam susu sebagai aktivitas dari mikroba.

17

Kasein digunakan untuk sumber protein dalam tubuh. Sebagai suplai asam-asam amino

essential.Secara komersial digunakan untuk bahan perekat, pelindung lapisan kertas, dan plastik

kasein. selain itu pencernaan kasein di dalam tubuh sangat lambat, sehingga dapat mencegah

penyusutan otot lebih baik daripada whey protein.

BAHAN DAN ALAT

Bahan : Susu bubuk, Aquades, 1ml Asam asetat glacial, 75 ml Etanol 95%

Alat : Termometer (1 buah), Kaca arloji (1 buah), Penjepit kayu (1 buah), Neraca analitik (1

buah), Pipet tetes (3 buah), Rak tabung (1 buah), Kertas saring (1 buah), Erlenmeyer (2

buah), Pengaduk (1 buah), Corong kaca (1 buah), Gelas beker (1 buah), Gelas ukur (1

buah), Tabung reaksi (5 buah)

PROSEDUR :

1. Siapkan satu sendok susu bubuk lalu di timbang (A), larutkan dalam 100 ml akuades

2. Seratus mililiter (100 ml) dihangatkan di atas pemanas spriritus hingga suhunya,

mencapai 40oC.

3. Tambahkan 100 mL buffer asetat 0,2M pH=4-5 agar larutan tersebut bersifat asam dan

mencapai pH isoelektriknya.

4. Ditambahkan tetes demi tetes HCl 0,2M agar campuran tersebut benar-benar mencapai

pH isoelektriknya yang ditandai sampai terbentuknya kekeruhan/endapan/gumpalan

berwarna putih (pH sekitar 4,5).

5. Dinginkan dalam penangas pada suhu kamar selama 5 menit dan didekantasi untuk

mendapatkan kasein.

6. Kasein yang diperoleh diberi sedikit air agar mengencerkan sisa-sisa asam yang ada dan

didekantasi kembali.

7. Kasein dilarutkan dalam etanol (perbandingan air:etanol=1:1) agar terbebas dari pengotor

yang tidak larut dalam air.

8. Timbang hasil kasein yang diekstrak dari susu bubuk (B)

9. Hitung persentasi kasein dalam bahan:

Kandungan Kasein =

B

X 100%

A

18

Laporan Praktikum

19

BAB III

LEMAK/ LIPIDA

DASAR TEORI

Lipida adalah kelompok senyawa organik yang terdapat pada jasad hidup dan berperan

dalam menyusun struktur dan fungsi suatu sel. Senyawa lipida tidak memiliki rumus empiris

tertentu atau struktur yang serupa tetapi terdiri atas beberapa golongan. Bebeda dengan

karbohidrat dan protein, lipi mempunyai sifat tidak larut air, tetapi larut dalam pelarut organik

nonpolar seperti eter, kloroform, aseton, dan benzena.

Lipida merupakan komponen membran sel termasuk didalamnya fosfolipid, glikolipid,

dan kolesterol. Lemak dan minyak merupakan contoh dari lipid, yaitu sebagai komponen

makanan. Lemak secara kimiawi adalah trigliserida yang merupakan ester dari gliserol dan asam

lemak rantai panjang.

Lipida diklasifikasikan menjadi tiga golongan besar, yaitu lipida sederhana, lipida

kompleks, dan derivat lipid. Contoh lipida sederhana adalah lemak, minyak dan lilin. Lipida

gabungan/kompleks mempunyai gugus lain selain alkohol dan asam lemak, semisal fosfolipid

dan glikolipid. Derivat lipid merupakan turunan dari lipida, sebagai contohnya adalah hormon,

vitamin larut lemak, dan sterol.

Asam lemak dapat terbentuk dari senyawa-senyawa yang mengandung karbon seperti

asam asetat, asetaldehid, dan etanol yang merupakan hasil respirasi tanaman. Asam lemak dalam

tanaman disintesis dalam keadaan anaerob dengan bantuan bakteri. Asam lemak dibagi menjadi

dua, yaitu asam lemak jenuh dan asam lemak tidak jenuh. Asam lemak jenuh tidak memiliki

ikatan rangkat, sebagai contoh adalah lemak hewan, sedangkan asam lemak tidak jenuh memiliki

ikatan rangkap satu atau lebih. Contoh asam lemak tak jenuh adalah minyak kelapa. Lemak

memiliki sifat dapat mengalami ketengikan, dapat berbentuk padat atau cair, dapat teroksidasi

menjadi peroksida dan hidroperoksida.

20

PRAKTIKUM 6

UJI KELARUTAN LIPID

TUJUAN: Mengetahui kelarutan lipid pada pelarut

PRINSIP: Pada umumnya, lemak dan minyak tidak larut dalam air, tetapi sedikit larut dalam

alcohol dan larut sempurna dalam pelarut organic seperti eter, kloroform, aseton, benzene, atau

pelarut non polar lainnya.

Minyak dalam air akan membentuk emulsi yang stabil karena bila dibiarkan , maka kedua cairan

akan memisah menjadi dua lapisan. Sebaliknya minyak dalam soda (Na2CO3) akan membentuk

emulsi yang stabil karena asam lemak yang bebas dalam larutan lemak bereaksi dengan soda

membentuk sabun. Sabun mempunyai daya aktifpermukaan, sehingga tetes-tetes minyak menjadi

tersebar seluruhnya

BAHAN DAN ALAT

Bahan : Minyak Kelapa, Alkohol 96%, Kloroform, Eter, Air Suling( Akuades), Larutan

Na2CO3 0,5 %

Alat :Tabung Reaksi, Penjepit Tabung, Pipet Ukur, Pipet Tetes

PROSEDUR KERJA

1. Siapkan 5 tabung reaksi yang bersih dan Kering. Berturut turut iilah dengan air

suling, Alkohol 96%, eter, Kloroform, dan Larutan Na2CO3 0,5% sebanyak 1 ml

2. Tambahkan pada setiap tabung 2 tetes minyak kelapa

3. Kocoklah sampai homogeny, lalu biarkan beberapa saaat

4. Amati sifat kelarutannya

21

HASIL PERCOBAAN

Bahan Tabung

1 2 3 4 5

Akuades 1ml

Alkohol 96% 1ml

eter 1 ml

Kloroform 1 ml

Na2CO3 0,5% 1 ml

Minyak Kelapa 2 tetes 2 tetes 2 tetes 2 tetes 2 tetes

Kocok Tabung sampai Homogen, biarkan beberapa saat

Hasil:

NB : Untuk hasil diberi keterangan Larut/Tidak larut/ terbentuk emulsi

22

Laporan Praktikum

23

PRAKTIKUM 7

REAKSI SAPONIFIKASI LIPID

TUJUAN: mengetahui proses saponifikasi lipid menjadi gliserol dan sabun

PRINSIP: Reaksi antara alkohol dan asam karboksilat disebut ester.Lemak dan minyak nabati

merupakan dua tipe ester.Lemak merupakan campuran ester yang dibuat dari alkohol dan asam

karboksilat, seperti asam stearat, asam oleat, dan asam palmitat.Minyak, seperti minyak zaitun

mengandung ester dari gliserol asam oleat.Lemak padat mengandung ester gliserol dan asam

stearat atau asam palmitat.

Sabun adalah surfaktan yang digunakan dengan air untuk mencuci dan

membersihkan.Sabun biasanya berbentuk padatan tercetak yang disebut batang karena sejarah

dan bentuk umumnya.Penggunaan sabun cair juga telah telah meluas, terutama pada sarana-

sarana publik.Jika diterapkan pada suatu permukaan, air bersabun secara efektif mengikat

partikel dalam suspensi mudah dibawa oleh air bersih. Di negara berkembang, deterjen sintetik

telah menggantikan sabun sebagai alat bantu mencuci.

Banyak sabun merupakan campuran garam natrium atau kalium dari asam lemak yang

dapat diturunkan dari minyak atau lemak dengan direaksikan dengan alkali (seperti natrium atau

kalium hidroksida) pada suhu 80–100 °C melalui suatu proses yang dikenal dengan saponifikasi.

Lemak akan terhidrolisis oleh basa, menghasilkan gliserol dan sabun mentah. Secara tradisional,

alkali yang digunakan adalah kalium yang dihasilkan dari pembakaran tumbuhan, atau dari arang

kayu.Sabun dapat dibuat pula dari minyak tumbuhan, seperti minyak

zaitun.(id.wikipedia.org/sabun). Saponifikasi (saponification) adalah reaksi yang terjadi ketika

minyak / lemak dicampur dengan larutan alkali. Ada dua produk yang dihasilkan dalam proses

ini, yaitu Sabun dan Gliserin.

BAHAN DAN ALAT :

Bahan : Minyak goreng, lemak ikan patin, lemak sapi, NaCl 15%, NaOH

Alat :Gelas beaker, Termometer, Magnetic stirrer, Spatula, Cetakan

24

PROSEDUR

1. Ukur NaOH dengan lemak atau minyak sesuai dengan tabel hasil percobaan

2. Panaskan minyak sebanyak 100 mL di atas stirrer sampai mencapai suhu 60oC

3. Tambahkan perlahan 10 ml NaCl ke dalam minyak sambil dilakukan pengadukan

4. Tambahkan 30 ml larutan NaOH ke dalam minyak dan terus dilakukan pengadukan

selama kurang lebih 20-30 menit

5. Turunkan dari stirrer dan amati perubahan yang terjadi. Hasil reaksi saponifikasi adalah

gelembung-gelembung sabun yang berada di permukaan larutan minyak dan NaOH

6. Diamkan selama satu malam untuk mengetahui hasil saponifikasi berupa sabun cair,

lembek atau keras.

HASIL PERCOBAAN

Bahan Minyak/lemak NaOH Hasil saponifikasi

Minyak goreng 100 ml 30 ml

Lemak ikan patin 100 ml 30 ml

Lemak sapi 100 ml 30 ml

25

Laporan Praktikum

26

BAB V

PRAKTIKUM 8

BIODIESEL

PRINSIP: Produksi biodiesel menjadi salah satu wacana menarik untuk dieksplorasi lebih lanjut.

Potensi sumber daya manusia dan sumber daya alam Indonesia cukup besar untuk

mengembangkan teknologi biodiesel tersebut. Bahan dasar pembuatan biodiesel adalah minyak

nabati, baik berasal dari jagung, kacang tanah, jarak, kelapa sawit, maupun bunga matahari. Pada

perkembangannya, bahan dasar biodiesel juga dapat diolah dari bahan minyak tak murni, atau

biasa disebut dengan minyak jelantah. Tahapan pengolahan minyak jelantah menjadi biodiesel

terdiri atas pre processing, titrasi, dan produksi biodiesel.

Pre Processing

Bahan : Minyak jelantah, air

Alat : saringan, wadah untuk memasak, kompor

PROSEDUR

1. Minyak jelantah disaring kemudian diendapkan

2. Kotoran yang terendap dipisahkan dari minyak

3. Minyak dicampur dengan air dengan rasio 1:1

4. Campuran dipanaskan hingga air tersisa separuhnya

5. Campuran dibiarkan mengendap, minyak yang didapatkan dipisahkan

Titrasi

Bahan : Minyak bekas, air, NaOH, Isoprophyl Alcohol (IPA)

Alat : saringan, gelas ukur 15 ml, cawan kaca, spatula kaca

PROSEDUR

1. Larutkan 1 g katalis NaOH dalam 1 liter air

2. Larutkan 1 ml minyak ke dalam 10 ml IPA, kemudian aduk rata sampai keduanya larut

27

3. Larutan basa (NaOH +air) dimasukkan sedikit demi sedikit kedalam larutan minyak

sambil diukur pH hingga mencapai pH 8-9 (free fatty acid telah dinetralisir)

Jumlah ml larutan basa tersebut menyatakan jumlah NaOH yang harus ditambahkan untuk

bereaksi dengan metanol, misal basa yang ditambahkan 2,5 ml maka jumlah basa yang

seharusnya ditambah adalah 3,5 gram +2,5 gram = 6 g NaOH. Angka 3,5 adalah nilai standar

untuk base oil minyak baru bervolume 1 liter.

Produksi Biodiesel

Bahan : Minyak jelantah, NaOH, methil alkohol (methanol-MeOH; CH3OH atau CH4OH)

Alat : pH meter, termometer, blender, timbangan, gelas ukur 15 ml, pengaduk, wadah plastik

1,5 liter 4 buah, kompor, corong, larutan cuka, sarung tangan (glove), kaca pelindung (google)

PROSEDUR TAHAP I

1. Mixing pertama : proses pencampuran methil alkohol dengan NaOH. Hasil campuran

tersebut disebut methoksida

2. Heating: proses pemanasan base oil hingga 50-55 C (15-20 menit) dengan kompor

3. Mixing kedua: mereaksikan ¾ metoksida dengan menuangkan dalam minyak yang telah

dipanaskan hingga 50 C. kemudian dilanjutkan dengan proses blender 30-50 menit

dengan kecepatan rendah

4. Tuangkan hasil pencampuran ke dalam wadah plastik dan endapkan selama 12-24 jam

hingga mendapat biodiesel yang terpisah dengan gliserin yang mengendap di wadah.

5. Pisahkan antara biodiesel dengan gliserin

PROSEDUR TAHAP II

1. Heating : proses pemanasan kembali biodiesel hasil pembuatan tahap I hingga mencapai

suhu 50-55 C

2. Mixing : mereaksikan ¾ metoksida dengan menuangkan dalam minyak yang telah

dipanaskan hingga 50 C. kemudian dilanjutkan dengan proses blender 30-50 menit

dengan kecepatan rendah

28

3. Pengendapan dan pemisahan : tuangkan hasil pencampuran tersebut ke dalam wadah

plastik dan endapkan selama 12-24 jam sehingga terpisah biodiesel dengan gliserin yang

mengendap di dasar wadah

4. Pencucian : melalui teknik stirring, mencampur biodiesel dengan air dan diaduk dengan

mixer atau manual, yaitu

i) Mencampur biodiesel dengan air (sedikit mengandung asam cuka 25%, ½ cc

dicampur 1,5 liter air)

ii) Mengaduk sampai rata dengan mixer hingga ada perubahan warna menjadi kuning

tua/muda

iii) Endapkan selama 30-60 menit sehingga biodiesel berasa di lapisan atas dan larutan

air berada di lapisan bawah

iv) Pisahkan biodiesel dengan air ke dalam wadah lain sebagai hasil pencucian tahap

pertama

v) Ulangi tahap i-iv untuk pencucian kedua dan ketiga

5. Dehidrasi : penghilangan kadar air dalam biodisel setelah dilakukan proses pencucian

dengan cara memasak biodisel sehingga iar akap menguap karena proses pemanasan.

Catatan:

B100 100% biodiesel

B50 50% biodiesel dan 50% solar

B30 30% biodiesel dan 70% solar

B20 20% biodiesel dan 80% solar

B10 10% biodiesel dan 90% solar

B5 5% biodiesel dan 95% solar

BX = biodiesel/solar

Tugas

Laksanakan percobaan produksi biodiesel Tahap I dan II.

29

Laporan Praktikum

30

BAB VI

PRAKTIKUM 9

ZAT WARNA FOTOSINTETIK

PRINSIP : Kolom Winogradsky adalah suatu kultur pengkayaan yang cocok untuk

mendapatkan berbagai bakteri fotosintetik anaerob dan aerob. Kolom Winogradsky disiapkan

dengan menggunakan alat sederhana, yaitu tabung gelas atau gelas ukur. Teknik pengkayaan ini

pertama kali dikembangkan tahun 1988 oleh Sergei Winogradsky, ahli mikrobiologi Rusia.

Bakteri fototropik hijau dan biru, penghasil sulfat, dan bakteri anaerob lain dapat diisolasi

melalui kultivasi terlebih dahulu dalam Kolom Winogradsky.

Disamping kultur pengkayaan, kolom ini juga merupakan miniatur ekosistem anaerobik,

dan sumber isolat berbagai jenis bakteri yang terlibat dalam siklus nutrien. Kolom Winogradsky

digunakan untuk seleksi mikroorganisme tertentu serta mempelajari proses degradasi suatu

senyawa dan menyeleksi mikroorganisme yang mampu mendegradasinya.

BAHAN DAN ALAT

Bahan : Kuning telur, Potongan kertas koran, metanol, etanol, aseton, CaCO3, CaSO4,

Kloroform, Heksan, Eter

Alat : gelas ukur 1 liter, aluminium foil, gelas beaker, gelas ukur 10 ml

PROSEDUR

1. 0.25 g CaCO3, 5 gram CaSO4, 2,5 gram potongan kertas koran, 100 gram lumpur serta 1

butir kuning telur dicampur merata

2. Campuran dimasukkan ke dalam gelas ukur 1 liter hingga ketingian dua sampai tiga inci

dari dasar tabung. Usahakan menata lapisan agar udara tidak terjebak di dalam gelas ukur

3. Tuangkan air laut, air danau atau air kolam ke atas campuran perlahan-lahan hingga

mencapai 3 cm dari permukaan gelas ukur

4. Gelas ukur ditutup dengan aluminium foil kemudian diletakkan pada ruang yang terkena

cahaya matahari

31

5. Perubahan yang terjadi diamati setiap minggu, meliputi perubahan warna pada

permukaan air atau lumpur, dan diamati pula pembentukan selubung warna pada

permukaan air atau lumpur dan diisolasi mikrobia penghasil zat warna tersebut. Mikrobia

yang didapatkan diwarnai dengan pengecatan gram.

6. Prosedur pengecatan Gram

a. Buat preparat mikrobia pada objek gelas, keringkan, kemudian rekatkan (fiksasi)

3x di atas api Bunsen.

b. Tuangi dengan larutan karbol-gentian-violet (sesudah sediaan dingin), biarkan

selama 5 menit.

c. Zat warna dibuang dan bubuhi dengan larutan mordant (lugol), diamkan selama

kira-kira 1-3 menit.

d. Lugol dibuang dan preparat dicelupkan ke dalam alkohol 96%, sampai warna

gentian violet lepas (sampai gentian violet tidak ada luntur lagi).

e. Cuci dengan air kran sampai bersih, kemudian bubuhi dengan cat-penutup

(counter stain) larutan water-fuchsin, biarkan kira-kira 1-2 menit.

f. Cuci dengan air kran, keringkan dalam temperatur kamar, lihat dengan mikroskop

memakai lensa rendam minyak. Gram positif = ungu. Gram negatif = merah.

HASIL PENGAMATAN

No Kelompok Warna Air Warna Hasil

Pengecatan Gram

Bakteri Gram

(Positif/Negatif)

32

Laporan Praktikum