Makalah Endoparasit dan Ektoparasit

Koksidiosis pada Ayam

Oleh :

Ghina Indriani, SKH B94144117

Widyatmoko Ade Purbo, SKH B94144146

Pembimbing

Prof. Drh. Fadjar Satrija, M.Sc, Ph.D

Dr. Drh. Susi Soviana, MSi

PROGRAM PENDIDIKAN PROFESI DOKTER HEWAN

FAKULTAS KEDOKTERAN HEWAN

INSTITUT PERTANIAN BOGOR

2015

PENDAHULUAN

Latar Belakang

Usaha peternakan unggas di Indonesia mengalami perkembangan yang

sangat pesat dalam beberapa dekade terakhir ini akibat meningkatnya kebutuhan

protein hewani dari ayam yaitu telur dan daging. Berbagai usaha dilakukan oleh

para peternak ayam, baik peternakan ayam broiler maupun ayam lokal guna

meningkatkan kualitas dan kuantitas hasil produksi ternaknya. Usaha-usaha yang

dilakukan oleh para peternak secara umum meliputi beberapa aspek, antara lain:

pemilihan bibit dengan kualitas genetika yang baik, meningkatkan manajemen

pemeliharaan, serta pengendalian penyakit yang dapat menurunkan hasil produksi.

Salah satu penyakit ayam yang sering terjadi dan banyak menimbulkan kerugian

bagi peternak adalah koksidiosis.

Sebelum koksidiosis terjadi di peternakan, usaha terbaik adalah dengan

mencegah timbulnya penyakit tersebut dengan menerapkan manajemen

pemeliharaan yang ketat. Seperti misalnya melakukan sanitasi yang baik terhadap

kandang dan lingkungannya, maupun dengan obat tertentu yang dicampurkan

dalam makanan yang lazim disebut koksidiostat, namun berdasarkan temuan di

lapang, usaha tersebut seringkali menemui kegagalan. Apabila tanda-tanda

penyakit koksidiosis telah timbul, maka tidak ada obat yang akan

menyembuhkannya, obat-obat yang ada adalah untuk pencegahan dan harus

diberikan segera apabila diperkirakan akan terjadi infeksi yang meluas.

Patogenitas koksidiosis dapat terjadi karena beberapa faktor, antara lain jumlah

ookista yang termakan oleh ayam, jenis strain koksidia yang menginfeksi, umur

ayam dan status nutrisi dalam inang (Kennedy 2001). Faktor lain yang

berpengaruh terhadap patogenesitas koksidiosis adalah stress lingkungan dan

kesalahan manajemen pemeliharaan seperti kepadatan kandang ayam yang

berlebihan, sistem pemberian pakan yang tidak higienis, sistem sirkulasi udara

dan sanitasi yang buruk (Uko et al. 2004).

Koksidiosis adalah penyakit parasit yang disebabkan oleh protozoa genus

Eimeria. Eimeria tenella merupakan spesies yang paling sering dan paling

patogen dalam menginfeksi ayam. Predileksi Eimeria tenella terdapat dalam

sekum, menyebabkan diare berdarah dan sering menimbulkan kematian pada

unggas muda. Koksidiosis menimbulkan kerugian besar dalam industri peternakan

ayam di seluruh dunia, karena penyakit ini memiliki mortality rate yang sangat

tinggi dan dapat menyebabkan penurunan produksi akibat terhambatnya

pertumbuhan serta penurunan efisiensi pakan. Faktor lain yang dapat

menimbulkan kerugian bagi peternak yaitu tingginya biaya pengobatan dan upah

tenaga kerja (William 1999).

Tujuan

Makalah ini dibuat dengan tujuan untuk memberikan informasi tambahan

tentang kejadian koksidiosis pada ayam berdasarkan temuan di lapang serta cara

penanggulangannya.

TINJAUAN PUSTAKA

Koksidiosis merupakan penyakit yang disebabkan oleh protozoa Eimeria

sp. yang menyerang saluran pencernaan terutama epitel usus (Salfina et al. 1996).

Penyakit ini dapat menimbulkan kerugian ekonomi yang tidak sedikit. Kerugian

yang ditimbulkan meliputi kematian, morbiditas yang cukup tinggi, masa bertelur

yang terlambat dan produksi menurun, pertumbuhan yang terhambat, dan biaya

pengobatan yang tinggi. Penyakit ini dapat menyerang semua kelompok umur

pada berbagai peternakan ayam. Terdapat sembilan spesies Eimeria yang

ditemukan pada ayam, yaitu: Eimeria tenella, E. necatrix, E. maxima, E. brunetti,

E. acervulina, Emitis, E. mivati, E. praecox, dan E. hagani. Adapun spesies yang

merupakan parasit paling patogen pada unggas yaitu E. tenella dan E. necatrix

(Tampubolon 2004). Berikut klasifikasi dari Eimeria sp:

Filum : Apicomplexa

Kelas : Coccidia

Ordo : Eucoccidiorida

Subordo : Eimeriorina

Famili : Eimeriidae

Genus : Eimeria

Species : Eimeria sp.

Eimeria memiliki siklus hidup yang kompleks dan menciri, yang

berlangsung sekitar 7 hari, meliputi beberapa stadium aseksual dan seksual.

Eimeria memiliki satu generasi ookista, 2-4 stadium aseksual (skisogoni atau

merogoni), dan satu stadium seksual (sporogoni). Ookista harus bersporulasi

untuk menjadi infektif. Waktu yang dibutuhkan untuk bersporulasi bervariasi

antara 12-30 jam pada suhu kamar. Sporulasi ookista yang optimal berlangsung

pada suhu 25-30C dengan kelembaban dan kadar oksigen yang tinggi. Satu

ookista yang telah bersporulasi dapat menghasilkan 100000 anak ookista. Proses

sporulasi untuk menghasilkan stadium infektif dalam waktu 48 jam. Ookista yang

infektif mengandung 4 sporokista, yang selanjutnya mengandung 2 sporozoit. Jika

ookista diingesti, maka dinding ookista akan digerus di dalam ventrikulus dan

sporozoit akan dibebaskan dari sporokista. Kemudian sporozoit akan memasuki

sel epitel di daerah mukosa usus dan memulai siklus sel yang berlanjut menjadi

proses reproduksi (Tabbu 2002).

Pada fase seksual, sejumlah mikrogamet yang motil akan mencari dan

bersatu dengan makrogamet. Zigot yang dihasilkan akan menjadi dewasa untuk

menjadi ookista yang akan dibebaskan dari mukosa usus dan bercampur dengan

feses. Ookista biasanya bersifat resisten terhadap kondisi lingkungan dan berbagai

desinfektan, meskipun kemampuan bertahan bervariasi menurut keadaan. Ookista

dapat bertahan dalam tanah selama berminggu-minggu, tetapi ketahanan ookista

dalam litter hanya beberapa hari karena pengaruh amoniak, bakteri, dan jamur.

Ookista akan mati pada suhu 55C atau pada keadaan beku. Protozoa ini juga

dapat mati pada temperatur 37C selama 2-3 hari. kejadian koksidiosis ini

biasanya lebih rendah pada cuaca panas dan kering dibandingkan pada cuaca

dingin dan lembab (Tabbu 2002). Skematis siklus hidup Eimeria sp. ditampilkan

pada gambar 1.

Gambar 1 Siklus Hidup Eimeria sp.

Eimeria sp. tidak menular secara langsung dari ayam ke ayam. Penularan

alami koksidiosis hanya terjadi dengan cara menelan ookista yang telah

bersporulasi. Walaupun tidak terdapat hospes intermediete alami untuk Eimeria

sp., ookista dapat disebarkan secara mekanik oleh berbagai jenis hewan,

serangga, peralatan tercemar, burung liar, dan debu. Selain itu, sejenis kumbang

yang hidup di dalam litter juga merupakan carrier mekanik dari ookista.

Ayam dari segala umur dan ras peka terhadap infeksi, namun kekebalan

dapat terbentuk secara cepat, sehingga infeksi selanjutnya dapat dibatasi. Biasanya

penyakit ini ditemukan pada ayam umur 3-6 minggu dan jarang ditemukan pada

umur

MATERI DAN METODE

Materi

Jenis hewan yang digunakan sebagai sampel adalah ayam broiler. Ayam

tersebut merupakan salah satu ayam broiler yang dipelihara di Unit Pengelolahan

Labolatorium (UPHL) IPB. Sample yang diamati untuk identifikasi endoparasit

adalah sample feses. Selain itu juga dilakukan koleksi spesimen ektoparasit baik

yang terdapat pada ayam maupun yang ada disekitar kandang. Spesimen yang

dikoleksi dari ayam yaitu kutu di permukaan kulit ayam. Sedangkan sampel

tungau diperoleh dari cabutan bulu.

Metode

Endoparasit

Koleksi Sampel Feses

Sampel yang dikoleksi berupa feses ayam dari Unit Pengelolahan

Labolatorium (UPHL) IPB. Sampel yang diambil merupakan sampel yang segar

atau paling lambat 1-3 jam setelah defekasi. Sampel tersebut kemudian diperiksa

melalui pemeriksaan feses secara kualitatif dan kuantitatif. Pemeriksaan kualitatif

dilakukan dengan metode natif dan pengapungan (floating) sederhana serta

kuantitatif yaitu McMaster untuk memberikan perkiraan jumlah telur.

Metode Pemeriksaan Sampel Feses

a. Metode Natif Feses diambil dengan menggunakan tusuk gigi diletakkan di atas gelas objek

dan ditambahkan dengan aquadest, lalu dihomogenkan. Gelas objek ditutup

menggunakan gelas penutup dan diamati di bawah mikroskop dengan pembesaran

10x untuk melihat kemungkinan adanya telur cacing dan ookista.

b. Metode Pengapungan (floating) Feses ditimbang sebanyak 2 gram kemudian dimasukan ke dalam mortar lalu

digerus. Tambahkan sebanyak 58 mL larutan pengapung dan aduk hingga

homogen. Campuran disaring menggunakan saringan teh dan dipindahkan ke

dalam gelas dan dilakukan penyaringan berulang sebanyak 4-5 kali dengan cara

memindahkan larutan yang berada dalam gelas 1 ke gelas lain. Setelah dilakukan

penyaringan kemudian campuran dipindahkan ke dalam tabung reaksi hingga

cembung dan biarkan beberapa saat hingga telur cestoda maupun nematoda

terangkat. Bagian atas tabung kemudian di tutup dengan gelas penutup lalu

diletakan pada gelas objek. Amati di bawah mikroskop dengan perbesaran 10x

untuk melihat kemungkinan adanya telur cacing cestoda dan nematoda serta

adanya ookista.

c. Metode McMaster Metode ini merupakan metode lanjutan dari uji pengapungan. Feses

ditimbang sebanyak 2 gram kemudian dimasukan ke dalam mortar lalu digerus.

Tambahkan sebanyak 58 mL larutan pengapung dan aduk hingga homogen.

Campuran disaring menggunakan saringan teh dan dipindahkan ke dalam gelas

dan dilakukan penyaringan berulang sebanyak 4-5 kali dengan cara memindahkan

larutan yang berada dalam gelas 1 ke gelas lain. Setelah itu cairan dimasukan

dalam kedua kamar hitung McMaster, kemudian diamati di bawah mikroskopis

dengan perbesaran 10x. Hasil telur yang didapat dalam kamar hitung McMaster

kemudian dihitung dengan menggunakan rumus OGT.

Cara perhitungan telur pada kamar hitung McMaster :

Ektoparasit Sekitar Kandang

Pembuatan Koleksi Spesimen

Pengoleksian insekta dilakukan dengan menggunakan sweeping net, killing

jar, dan juga secara manual. Koleksi lalat dapat dilakukan dengan menggunakan

sweeping net dan killing jar. Lokasi pengambilan sampel dilakukan di Unit

Pengelolahan Labolatorium (UPHL) IPB.

Pembuatan Preparat Kering

Spesimen insekta yang sudah dimatikan, kemudian dilakukan pinning

menggunakan jarum halus. Ketinggian pinning diatur dengan menggunkan

pinning block. Insekta yang berukuran kecil ditempelkan pada kertas kecil (stiker)

yang telah diolesi oleh kutek sebelumnya kemudian kertas dilakukan pinning,

insekta yang telah di pinning kemudian dimasukkan ke dalam inkubator selama

24 jam pada suhu 50 oC. Setelah semua siap kemudian dilakukan identifikasi

preparat.

Ektoparasit Pada Ayam

Pengamatan kutu dan tungau dilakukan secara makroskopis dan

mikroskopis. Pengamatan ini dilakukan untuk mengetahui morfologi kutu dan

tungau yang diperoleh sehingga dapat diidentifikasi. Sebelum dilakukan

pengamatan terlebih dahulu dilakukan koleksi spesimen. Spesimen kutu diambil

dengan menggunakan pinset sedangkan spesimen tungau diperoleh melalui

pencabutan bulu ayam yang selanjutnya direndam dalam larutan ethanol. Kutu

dan tungau yang telah diperoleh dimasukkan kedalam botol spesimen yang telah

diisi dengan ethanol. Alat dan bahan yang digunakan selanjutnya untuk

pemprosesan spesimen agar dapat diidentifikasi antara lain object glass, cover

glass, mikroskop, mikropskop stereo, gelas piala, cawan petri, alkohol 70%, 80%,

90%, dan alkohol absolut, xylol,minyak cengkeh, canada balsem, pipet tetes, ose,

dan pinset.

Pengamatan Makroskopis

Secara umum spesimen kutu dan tungau hasil koleksi dari ayam tidak dapat

diamati secara makroskopis dikarenakan ukurannya yang kecil sehingga

menyulitkan proses identifikasi.

Pengamatan Mikroskopis

Sebelum dilakukan pengamatan terlebih dulu dilakukan pembuatan preparat

slide. Hasil koleksi direndam dalam larutan KOH 10% dimasukan ke dalam dua

cawan petri besar secukupnya. Kemudian dipisahkan antara spesimen kutu dan

tungau dari kotoran dan dimasukan ke dalam cawan petri yang lebih kecil dan

diberi label sesuai dengan jenis spesimennya. Kutu dan tungau yang telah

dipisahkan selanjutnya direndam dalam larutan nesbit untuk membersihkan isi

perut dan spesimen menjadi tipis. Setelah spesimen kutu dan tungau menjadi tipis,

beberapa tetes Hoyer diletakkan di object glass lalu ditambahkan beberapa

sepesimen kutu dan tungau yang diletakkan pada object glass yang berbeda

tergantung dari jenis spesimennya. Selanjutnya posisi kutu dan tungau diatur

sehingga semua bagian tubuhnya dapat diamati. Proses pengaturan posisi kutu dan

tungau dilakukan di bawah mikroskop stereo dengan bantuan ose. Cover glass

diletakkan diatas object glass sehingga menutupi spesimen. Spesimen kutu dan

tungau yang telah berbentuk preparat dimasukkan ke dalam inkubator dengan

suhu 50C selama 2-3 hari agar preparat kering sempurna. Setelah itu preparat

diamati di bawah mikroskop dengan perbesaran 410.

HASIL PEMERIKSAAN

Status Hewan

Signalement

Nama : Ike

Jenis hewan : Ayam

Jenis kelamin : Jantan

Umur : 1.5 bulan

Ras : Broiler

Warna : Putih

Berikut gambar penampakan ayam yang digunakan sebagai sampel (Gambar 2).

Gambar 2. Ayam broiler sampel

Anamnese

Kondisi ayam lemah dengan bulu yang kusut, penurunan napsu makan,

pertumbuhan badan lambat dan feses berwarna hijau gelap (Gambar 3).

Gambar 3. Feses ayam berwarna hijau gelap

Identifikasi Sampel Feses

Hasil pemeriksaan mikroskopis Uji yang

Dilakukan

Hasil

Identifikasi

10x

Pengapungan

Ookista

Eimeria sp.

10x

Mc Master

Ookista

Eimeria sp.

Jumlah

ookista

250 600

Identifikasi Spesimen Kutu dan Tungau

Hasil pemeriksaan mikroskopis Uji yang

Dilakukan

Hasil

Identifikasi

4x

Mikroskopis

Menopon

gallinae

Hasil pemeriksaan mikroskopis Uji yang

Dilakukan

Hasil

Identifikasi

4x

Mikroskopis

Megninia sp.

Identifikasi Spesimen Lalat

Hasil pemeriksaan makroskopis Uji yang

Dilakukan

Hasil

Identifikasi

Makroskopis

Musca

domestica

Makroskopis

Chrysomia sp.

PEMBAHASAN

Ayam-ayam yang dipelihara di Unit Pengelolahan Labolatorium (UPHL)

IPB dikandangkan dalam kandang besi dengan ukuran 50x50cm (Gambar 4).

Dalam satu kandang terdapat dua ekor. Berdasarkan temuan dilapang diperoleh

hasil bahwa kondisi kandang kurang terawat kebersihannya dengan feses ayam

yang dibiarkan menumpuk dilantai. Menumpuknya feses menarik lalat untuk

bertelur. Jenis lalat hasil koleksi dapat didentifikasi merupakan Musca domestica

dan Chrysomia sp. Musca domestica mengalami metamorfosis sempurna, diawali

dengan tahap telur, larva, pupa dan dewasa. Untuk bertelur, lalat memilih tempat

tempat yang lembab dan banyak mengandung zat organik seperti sampah dan

bahan busuk lainnya (Kadarsan et al. 1983). Telur menetas kurang dari 24 jam

setelah diletakkan, tergantung pada keadaan cuaca. Pada suhu 15-20 oC, periode

menetas telur berkisar 24 jam. Sedangkan pada suhu 25-35 oC hanya 8-12 jam.

Dalam waktu sekitar 10-20 jam telur menetas menjadi larva (Kadarsan et al.

1983). Dalam perkembangan larva terdapat 3 bentuk instar. Instar I dan II

lamanya 24 jam. Instar ketiga lamanya 3 hari atau lebih.

Ayam dalam kandang tersebut memiliki pertumbuhan yang lambat dan

kondisi bulu yang kusam.

Gambar 4. Kondisi kandang ayam di Unit Pengelolahan Labolatorium (UPHL)

IPB

Ayam yang diambil sampel fesesnya memiliki gejala klinis berupa tubuh

yang kecil akibat pertumbuhan yang lambat, bulu kusut, dan terjadi penurunan

nafsu makan. Pada hasil pemeriksaan natif, sampel feses ayam tidak menunjukkan

adanya ookista Eimeria sp. Tidak adanya ookista pada pemeriksaan natif tidak

menunjukkan bahwa sampel feses bebas dari ookista, maka diperlukan metode

lain agar mendapatkan hasil yang lebih akurat. Hal ini dibuktikan oleh hasil

pemeriksaan metode pengapungan sederhana dan metode McMaster ditemukan

ookista dari Eimeria sp. Metode McMaster ini merupakan metode kuantitatif,

sehingga dapat diketahui jumlah ookista yang terdapat pada setiap gram feses

dengan perhitungan menggunakan rumus. Jumlah ookista yang didapatkan adalah

sebanyak 250 600 per gram tinja. Angka ini digunakan untuk menentukan derajat

infeksi dari protozoa tersebut. Jumlah ookista dalam feses di atas 100 000 dapat

menimbulkan tampaknya gejala klinis hingga kematian. Perbedaan derajat infeksi

ini dapat disebabkan oleh umur hewan dan status kekebalan tubuh hewan (Tabbu

2002). Penularan koksidiosis ini dapat disebabkan oleh alat kandang, pakan,

tempat minum yang terinfeksi ookista, dan dipindahkan melalui vektor mekanik

seperti lalat, serangga, dan kumbang. Dalam dunia kesehatan masyarakat peran

Musca domestica menjadi penting karena dapat menjadi vektor mekanik berbagai

penyakit yang diakibatkan oleh berbagai macam organisme patogen seperti virus,

bakteri, protozoa dan cacing. Lalat ini juga dapat bertindak sebagai inang antara

beberapa cacing parasit. Adanya pulvili, labela dan sejumlah bulubulu halus

pada bagian tubuh memungkinkan lalat rumah berperan sebagai penyebar

penyakit. Hal ini ditunjang oleh perilaku lalat rumah yang suka berpindahpindah

antara makanan dan feses untuk makan dan bertelur (Levine 1990).

Selain temuan tersebut, hasil koleksi spesimen ektoparasit juga diperoleh

adanya kutu Menopon gallinae dan tungau Megninia sp. Menopon gallinae sering

juga disebut sebagai kutu penggigit. Kutu ini memakan bulu dan serpihan kulit.

Pada ayam kutu ini banyak ditemukan pada bagian dada, paha dan sayap

(Kadarsan et al. 1983). Tungau Megninia sp. merupakan tungau yang hidup pada

bulu atau pangkal bulu. Tungau ini jarang ditemukan pada peternakan modern,

karena siklus hidup tungau dapat diputus dengan memisahkan unit penetasan dari

unit produksi. Ayam yang terinfeksi oleh tungau ini dapat mengalami penurunan

produksi dan menimbulkan lesi pada kulit (Tabbu 2002). Adanya infestasi parasit

tersebut dapat memperburuk kondisi ayam yang terinfeksi Eimeria sp. Infestasi

kutu dan tungau menimbulkan kegatalan pada ayam, sehingga ayam merasa tidak

nyaman. Kondisi tersebut mengakibatkan penurunan napsu makan dan stress

sehingga ayam mengalami imunosupresi. Ayam yang mengalami imunosupresi

akan lebih mudah terinfeksi ookista Eimeria sp.

Penanggulangan koksidiosis pada ayam dapat dilakukan dengan sanitasi

yang baik, menjaga litter dengan optimal, penggunaan koksidiostat dalam pakan.

Kontak dengan Eimeria sp. dapat ditekan jika litter tetap kering dan diaduk

karena tidak mendukung proses sporulasi. Ayam yang terinfeksi koksidiosis

dipisahkan dari kandang dan ayam sehat diberi koksidiostat. Pengobatan dapat

dilakukan segera setelah diagnosa koksidiosis diketahui. Pengobatan dapat dengan

penggunaan sulfonamid. Sulfonamid ini memiliki kekuatan koksidiostat yang

lebih baik daripada efek koksidiosidal (Tampubolon 2004).

KESIMPULAN

Kejadian koksidiosis erat hubungannya dengan penanggulangan sejak dini

untuk mencegah terjadinya kerugian bagi peternak. Penanggulangan yang dapat

dilakukan antara lain menjaga kebersihan kandang dan lingkungan sekitar

kandang serta menjaga kondisi litter agar tetap kering untuk mencegah terjadinya

sporulasi. Kondisi kandang serta lingkungan sekitar kandang yang terjaga

kebersihannya dapat menekan infestasi lalat sebagai vektor mekanik, sehingga

penyebaran infeksi Eimeria sp. dapat dicegah.

DAFTAR PUSTAKA

Kadarsan SA, Purwaningsih E, Munaf HB, Budiarti I, Hartini S. 1983. Binatang

Parasit. Bogor (ID) : Lembaga Biologi Nasional LIPI.

Kennedy, J. M. 2001. Coccidiosis in Chickens. College of Veterinary Medicine.

University of Missouri.

Levine ND. 1990. Parasitologi Veteriner. Wardiarto GA editor. Yogyakarta

(ID): Gajah Mada University Pr.

Safina A, Hamdan, Siswansyah DD. 1996. Studi patogenitas Eimeria tenella

pada ayam buras di Kalimantan Selatan. JITV Vol 2 No.4

Tabbu CR. 2002. Penyakit Ayam dan Penanggulangannya Volume 2. Yogyakarta

(ID): Kaninus

Tampubolon MP. 2004. Protozoologi. Bogor (ID): Pusat Studi Ilmu Hayati IPB

Uko, M. U., I. C. Okoli and E. B. Etuk. 2004. Prevalence and Management Issue

Associated with Poultry Coccidiosis in Abak Agricultural Zone of Akwa

Ibom State, Nigeria. Department of Animal Science and Technology,

Federal University of Technology Owerri Nigeria.

Williams, R. B. 1999. A compartmentalised model for the stimation of the cost of

c cc w c c p c . I . J. P . 29:

12091229.