PANDUAN PRAKTIKUM DASAR ILMU DAN TEKNOLOGI BENIH … · Embrio adalah struktur yang terbentuk dari...

Panduan Praktikum Dasar Ilmu dan Teknologi Benih Semester ganjil 2019/2020

PANDUAN PRAKTIKUM DASAR ILMU DAN TEKNOLOGI BENIH

(AGH 250)

DEPARTEMEN AGRONOMI DAN HORTIKULTURA FAKULTAS PERTANIAN

INSTITUT PERTANIAN BOGOR 2019


PERCOBAAN I

STRUKTUR BENIH

Pendahuluan

Latar Belakang :

Benih terdiri atas tiga komponen, yaitu kulit benih, embrio dan cadangan makanan.

Kulit benih,yang merupakan lapisan terluar benih, dapat terdiri atas testa atau testa dan

lapisan lain. Testa adalah lapisan yang berasal dari integumen, misalnya pada benih

kedelai, kacang tanah dll.Pada kariopsis (misalnya padi dan jagung) testa bersatu dengan

perikarp.Kulit benih sangat bervariasi dalam warna, tekstur serta ada atau tidaknya struktur

tambahan seperti sayap, karunkula dll.

Embrio adalah struktur yang terbentuk dari fertilisasi (bersatunya antara sel telur

dan sperma).Struktur utama embrio (poros embrio) terdiri atas radikula (bakal akar),

plumula (bakal daun) dan hipokotil (bakal batang).Pada benih dikotil, umumnya embrio

mempunyai kotiledon.

Cadangan makanan dalam benih sangat penting untuk proses perkecambahan. Pada

monokotil (misalnya familia Gramineae)cadangan makanan dalam benih berupa

endosperma yang terbentuk dari bersatunya sperma dan inti polar, disebut sebagai benih

endospermik.Pada benih demikian endosperma merupakan bagian terbesar dari struktur

benih.Pada dikotil (misalnya familia Leguminosae dan Cucurbitaceae)umumnya benih

tidak mengandung endosperma (benih non-endospermik), dan cadangan makanan untuk

perkecambahannyaadalah kotiledon, yang merupakan bagian dari embrio, dan kotiledon

merupakan bagian terbesar dari struktur benih.Akan tetapi ada juga dikotil yang

mempunyai endosperma (misalnya familia Euphorbiaceae).Pada benih demikian

endosperma yang merupakan bagian terbesar struktur benih berfungsi sebagai cadangan

makanan untuk perkecambahan, bukan kotiledon yang merupakan jaringan tipis.

Tujuan :

Praktikum ini bertujuan untuk mempelajari variasi struktur benih tanaman beberapa

familia.


Bahan dan Metode :

Benih dari beberapa familia tanaman: Gramineae (jagung, padi), Leguminosae (kacang

tanah, kedele, kacang merah, lamtoro), Solanaceae (tomat, cabe, terong), Eophorbiacea

(jarak kepyar, jarak pagar, karet) dan lainnya yang tersedia.

1. Benih yang kering dilembabkan dahulu selama 24 jam supaya lunak,

mempermudah diiris atau dikupas

2. Iris benih dengan arah vertikal sehingga seluruh bagian internal dapat diamati

3. Amati warna, tekstur kulit benih serta adanya struktur tambahan

4. Gambar benih utuk dan struktur internalnya, beri keterangan masing masing

bagian benih


PERCOBAAN II

Penetapan Kadar Air Benih

Pendahuluan

Latar Belakang

Kadar air benih merupakan salah satu faktor penting yang harus diperhatikan pada

kegiatan pemanenan, pengolahan, penyimpanan dan pemasaran benih. Kadar air benih

sangat menentukan ketepatan saat panen, tingkat kerusakan mekanis saat pengolahan,

kemampuan benih mempertahankan viabilitasnya selama penyimpanan sehingga

pengukuran kadar air benih harus dilakukan dalam pengujian mutu benih (termasuk uji

rutin).

Ada dua metode pengukuran kadar air yang dapat dilakukan, yaitu metode langsung

dan metode tak langsung. Pada metode langsung kadar air benih dihitung secara langsung

dari berkurangnya berat benih akibat hilangnya air dari dalam benih. Sedangkan secara

tidak langsung kadar air dapat diukur tanpa mengeluarkan air dalam benih, tetapi dengan

memanfaatkan hambatan listrik dalam benih yang kemudiaan dikorelasikan dengan kadar

air.

Tujuan

Percobaan ini bertujuan untuk mengetahui perbedaan kadar air benih menggunakan

metoda langsung dengan oven suhu tinggi (1300C).

Bahan dan Metode

Bahan dan Alat

Bahan yang diperlukan adalah dua lot benih padi. Alat yang digunakan adalah oven,

timbangan, cawan porselen, grinder dan desikator

A. Metode langsung

Cara oven suhu tinggi :

1. Ambil benih padi untuk masing-masing lot 5 g, kemudian dihancurkan dengan

menggunakan grinder selama 1 menit .

2. Timbang cawan dan tutup (M1), kemudian masukkan benih yang sudah

dihancurkan ke dalam cawan dan timbang kembali (M2).

3. Masukan cawan tersebut kedalam oven 130-1350C, waktu sesuai komoditas dengan

kondisi cawan terbuka.

4. Setelah satu jam tutup dan cawan kemudian dikeluarkan dari oven, kemudian

dimasukkan kedalam desikator selama 30 menit hingga dingin.

5. Timbang benih, cawan dan tutup yang telah di oven tadi (M3).

http://lcms.ipb.ac.id/lcms/courses/836/oven.html

http://lcms.ipb.ac.id/lcms/courses/836/cawan.html

http://lcms.ipb.ac.id/lcms/courses/836/grinder.html

http://lcms.ipb.ac.id/lcms/courses/836/desikator.html

http://lcms.ipb.ac.id/lcms/courses/836/kadarair.html


6. Hitunglah kadar air benih dengan menggunakan rumus sebagai berikut :

(M2 – M3)

KA= -------------- X 100%

(M2-M1)

Keterangan :

KA = Kadar air benih

M1 = Berat cawan + tutup kosong

M2 = Berat cawan + tutup + benih sebelum dipanaskan

M3 = Berat cawan + tutup + benih setelah dipanaskan

7. Penetapan kadar air benih kedelai dilakukan dengan metode yang sama dengan

padi.

8. Lakukan pengukuran kadar air benih masing-masing perlakuan sebanyak 3

ulangan.


PERCOBAAN III

Efisiensi Alat Pembersih dan Pemilah Benih

Pendahuluan

Latar Belakang

Pembersihan benih sangat penting karena benih yang kotor tidak baik bila disimpan

lama, secara tidak langsung akan mempengaruhi viabilitas benih karena tersumbatnya

ruang antara benih yang akan menimbulkan panas dan kelembaban tinggi sehingga menjadi

tempat bersarangnya cendawan maupun hama.

Proses pembersihan benih bertujuan untuk menghilangkan kotoran-kotoran fisik

maupun biji-bijian lain yang mencampuri suatu kelompok benih. Kotoran fisik antara lain

yaitu pecahan-pecahan biji, benih-benih yang berukuran kurang sempurna (keriput,

inferior, membatu akibat kurang masak atau terserang penyakit), pecahan-pecahan batu

maupun ranting-ranting yang terbawa pada waktu proses pemanenan.

Dalam proses pembersihan dapat terjadi kerusakan fisik atau kurang sempurna

proses pembersihannya sehingga diperoleh hasil yang tidak bersih 100%. Prinsip kerja dari

alat pembersih ini adalah, memisahkan benih berdasarkan perbedaan ukuran/bentuk dan

berat benih .

Tujuan

Percobaan ini bertujuan untuk mempelajari efisiensi alat pembersih benih model clipper.

Bahan dan Metode

Benih yang di gunakan sebanyak tiga macam yang berbeda untuk masing-masing

ditimbang 100 g.campur dengan kotoran fisik yang berupa daun kering sebanyak 10 g,

biji lain sebanyak 20 g dan kotoran batu kerikil sebanyak 20 g aduk menggunakan alat

pengaduk IPB 72-3 benih di bersihkan dengan alat clipper.

Pisahkan dengan alat tersebut sehingga kembali menjadi komponen masing-masing

seperti sebelum di campur dan gambar alat tersebut secara skematis.

Laporan Percobaan

Clipper ; pintu pemisah komponen ada…………………..buah.

Masing-masing untuk memisahkan sebagai berikut =

Pintu 1 =

Pintu 2 =

Pintu 3 =

Pintu 4 =

Pintu 5 =


Pintu 6 =

Terdapat 3 set campuran benih yang masing-masing terdiri dari

Set 1 = a)….…;b)…….;c)……..;d)…………

Set 2 = a)….…;b)…….;c)……..;d)…………

Set 3 = a)….…;b)…….;c)……..;d)…………

Dengan screen ukuran……(atas) dan ukuran…….(bawah) maka =

Set no. 1 akan mampu dipisahkan di masing-masing pintu berikut =

Pintu 1 = benih a)…….%;b)……..%;c)……...%;d)………..%

Pintu 2 = benih a)…….%;b)……..%;c)……...%;d)………..%

Pintu 3 = benih a)…….%;b)……..%;c)……...%;d)………..%

Pintu 4 = benih a)…….%;b)……..%;c)……...%;d)………..%

Pintu 5 = benih a)…….%;b)……..%;c)……...%;d)………..%

Pintu 6 = benih a)…….%;b)……..%;c)……...%;d)………..%

Kotoran fisik jatuh masing-masing =

Daun kering di pintu…….,……..,……,……

Batu kerikil di pintu……..,………,…….,……

Dengan screen ukuran…….(atas) dan ukuran…….(bawah) maka =


Pintu 1 = benih a)…….%;b)……..%;c)……...%;d)………..%

Pintu 2 = benih a)…….%;b)……..%;c)……...%;d)………..%

Pintu 3 = benih a)…….%;b)……..%;c)……...%;d)………..%

Pintu 4 = benih a)…….%;b)……..%;c)……...%;d)………..%

Pintu 5 = benih a)…….%;b)……..%;c)……...%;d)………..%

Pintu 6 = benih a)…….%;b)……..%;c)……...%;d)………..%




Dengan screen ukuran…….(atas) dan ukuran…….(bawah) maka =


Pintu 1 = benih a)…….%;b)……..%;c)……...%;d)………..%

Pintu 2 = benih a)…….%;b)……..%;c)……...%;d)………..%

Pintu 3 = benih a)…….%;b)……..%;c)……...%;d)………..%

Pintu 4 = benih a)…….%;b)……..%;c)……...%;d)………..%

Pintu 5 = benih a)…….%;b)……..%;c)……...%;d)………..%

Pintu 6 = benih a)…….%;b)……..%;c)……...%;d)………..%




Catatan.: Laporan dibuat oleh masing-masing mahasiswa


PERCOBAAN IV

Pengaruh Bentuk Benih terhadap Efisiensi Pemilahan

dengan Spiral Separator

Pendahuluan

Latar Belakang

Pemilahan benih dilakukan untuk mendapatkan mutu fisik benih yang seragam

bentuk maupun ukurannya. Proses pembersihan dan pemilahan dapat dilakukan sekaligus

dengan mesin tertentu. Namun beberapa mesin hanya dapat digunakan untuk pemilahan

saja.

Spiral separator merupakan alat pemilah benih yang prinsip kerjanya berdasarkan

kemampuan menggelinding benih pada alat tersebut. Perbedaan bentuk benih akan

mempengaruhi kecepatan menggelinding, sehingga benih-benih tersebut dapat dipilah.

Tujuan

Praktikum ini bertujuan untuk mempelajari pengaruh bentuk benih terhadap

efisiensi pemilahan

Bahan dan Metode

Buat campuran benih dengan komposisi sbb:

1. 300 g kedelai dan 10 g jagung

2. 300 g kedelai dan 10 g kacang hijau

Buat campuran dengan komposisi tersebut untuk tiga ulangan.Selanjutnya masukkan

campuran benih tersebut ke dalam alat spiral separator. Amati efisiensi pemilahan dan

berikan pembahasannya.

Tabel 1. Hasil Pengamatan

Campuran benih ulangan Benih yang tidak terpisah Efisiensi pemilahan

Kedelai +

jagung

Rata-rata

1

2

3

Kedelai +

kc.hijau

Rata-rata

1

2

3



PERCOBAAN V

Uji Kemurnian Benih Padi

Pendahuluan

Latar belakang

Kemurnian benih merupakan mutu genetik yang merupakan tolok ukur pengujian

rutin untuk pengisian label sertifikasi benih. Tingkat kemurnian benih sangat menentukan

keseragaman pertumbuhan tanaman di lapang dan kualitas produk pertanian yang

dihasilkan.

Benih murni adalah benih murni yang sesuai dengan pernyataan pengirim atau secara

dominan ditemukan dalam contoh benih termasuk semua benih varietas tanaman dan

kultivar dari spesies tersebut, seperti:

1. Benih utuh, benih muda, benih berukuran kecil, benih mengkerut, dan benih sedikit

rusak.

2. Benih terserang penyakit atau benih yang mulai berkecambah, tetapi benih tersebut

masih bisa dikenali sebagai benih yang dimaksud. Jika sudah berubah dalam bentuk

terlihat sebagai cendawan sclerotia, smut balls atau nematoda galls maka termasuk

sebagai kotoran benih.

3. Pecahan benih dengan ukuran lebih besar dari setengah ukuran benih aslinya.

Untuk caryopsis (Poaceae/Graminae: jagung, padi): bagian dari caryopsis yang berukuran

lebih besar dari setengah ukuran aslinya. Untuk Fabaceae (Leguminosae) yang terkelupas

seluruh benihnya termasuk kriteria kotoran benih. Pada Leguminosae jika kotiledon

terpisah termasuk kotoran benih.

Benih tanaman lain (other seeds)

Benih tanaman lain adalah unit benih tanaman spesies lain yang terbawa selain benih

murni. Penentuan benih tanaman lain sebagai kotoran benih sama seperti penentuan benih

murni.


Kotoran benih (inert matter)

Kotoran benih meliputi benih dan semua bahan-bahan lain dan struktur yang bukan bagian

dari benih, seperti tersebut di bawah ini:

a. Benih dan bagian benih:

Untuk Fabaceae (Leguminosae) dengan kulit benih yang sudah terkelupas semua

(tanpa kulit benih) atau kotiledon terpisah.

Bagian dari unit benih yang pecah atau rusak dan berukuran kurang dari setengah

ukuran aslinya.

Benih rusak tanpa lembaga/kotiledon (rusak berat).

Gabah hampa.

Sekam, cangkang benih, kulit benih dan lain-lain.

b. Bahan-bahan lain dan struktur yang bukan merupakan bagian dari benih seperti

tanah, pasir, batu, batang jerami, daun, tangkai bunga, galls, sklerotia, smut balls, lemma,

palea dan fungi.

Tujuan

Praktikum ini bertujuan untuk menentukan persentase komposisi (berdasarkan berat)

contoh yang diuji dan mengidentifikasi berbagai spesies benih dan kotoran benih dalam

contoh benih.

Bahan dan Metode

Analisis kemurnian dilakukan pada contoh kerja yang diambil dari contoh kirim.

Pengambilan contoh kerja untuk analisis kemurnian dilakukan dengan cara pengurangan

contoh kirim dengan menggunakan alat pembagi mekanik atau cara paruhan. Pengambilan

contoh kerja untuk padi sebagai berikut.


700 g Contoh kerja analisis kemurnian benih padi: a + b + d = 71,2 g

350 g 350 g

175 g 175 g

87,5 g 87,5 g

(a) 43.8 g 43,8 g

(b) 21,9 g 21,9 g

(c) 10,9 g 10,9 g

(d) 5,5 g 5,5 g

Lakukan analisis kemurnian dengan memisahkan contoh kerja dalam komponen

benih murni, benih tanaman lain dan kotoran benih dengan cara sebagai berikut:

a. Contoh kerja ditebarkan di meja kerja

b. Setiap benih diidentifikasi satu per satu secara visual berdasarkan penampakan

morfologi (bentuk, ukuran, warna, kilap, tekstur luar).

c. Semua benih tanaman lain dan kotoran benih dipisahkan dari benih murni.

Setiap komponen ditimbang dalam satuan gram dengan tingkat ketelitian sama

dengan contoh kerja.

Perhitungan dan Penulisan Hasil

1. Berat ketiga komponen (benih murni, benih tanaman lain dan kotoran benih)

dijumlahkan dan kemudian dibandingkan dengan berat contoh kerja awal. Jika

terdapat kehilangan berat >5% berat awal contoh kerja, maka harus dilakukan

analisis ulang.

2. Masing-masing komponen dihitung persentasenya dalam satu desimal.

3. Persentase ketiga komponen dijumlah, dengan total harus 100,0%. Jika jumlah

persentase tidak 100,0% (99,9% atau 100,1%) maka dilakukan penambahan atau


pengurangan 0,1% pada persentase tertinggi (biasanya pada fraksi benih murni).

Apabila lebih dari 0,1% maka perlu dilakukan pemeriksaan terhadap kesalahan.

4. Rumus perhitungan persentase:

BM

BM = ---------------------- x 100% BM: benih murni

(BM + BTL + KB)

BTL

BTL = ---------------------- x 100% BTL: benih tanaman lain

(BM + BTL + KB)

KB

KB = ---------------------- x 100% KB: kotoran benih

(BM + BTL + KB)

Faktor kehilangan yang diperbolehkan maksimal 5%, dihitung dengan rumus:

CK – (BM + BTL + KB)

------------------------------ x 100% ≤ 5% CK: contoh kerja

CK

Semua penimbangan dinyatakan dalam satuan gram.

5. Penulisan/ pelaporan hasil

Hasil analisis kemurnian ditulis dalam persentase dengan satu desimal. Jumlah

persentase berat dari semua komponen harus 100,0%. Nama ilmiah benih murni dan

benih tanaman lain serta macam kotoran benih harus dilaporkan.



PERCOBAAN VI

Teknik Pematahan Dormansi Benih

Pendahuluan

Latar Belakang

Dormasi benih merupakan suatu kondisi dimana benih tidak berkecambah

walaupun ditanam dalam kondisi yang optimum.Salah satu keuntungan sifat dormansi

pada benih yaitu untuk melestarikan spesies tersebut. Namun dormansi dapat menjadi

masalah karena saat konsumen benih akan menanam benih yang masih dorman tidak

tumbuh dengan seragam, selain itu juga mengacaukan interpretasi dalam pengujian benih.

Beberapa jenis benih tidak dapat berkecambah karena adanya hambatan dari kulit

benih yang impermeabel terhadap air dan gas, kulit benih yang tebal dan keras. Sebagian

jenis benih yang lain tidak mampu berkecambah ketika baru dipanen dan baru dapat

berkecambah setelah melampaui periode penyimpanan kering. Kasus tersebut disebut

after-fipening.

Beberapa metode pematahan dormansi telah dikembangkan berdasarkan kasus

penyebab dormansi benihnya, karena metode yang efektif untuk suatu kasus belum tentu

efektif untuk kasus dormansi lainnya.

Tujuan

Praktikum ini bertujuan untuk mempelajari teknik pematahan dormansi yang tepat pada

kasus dormansi fisiologi (salah satunya after-ripening) dan dormansi fisik.

Bahan dan Metode

Bahan dan Alat

Bahan yang diperlukan adalah benih padi yang baru dipanen, benih saga pohon, 0.2 %

KNO3, air panas (mendidih), aquades, kertas merang, plastik, label dan pasir.

Alat yang digunakan adalah glassjar, box perkecambahan benih serta alat pengecambah

benih tipe IPB 73-2A/B dan Scarifier.

Metode Percobaan dilakukan secara terpisah untuk benih padi dan benih saga pohon.

Teknik pematahan dormansi benih padi yaitu : kontrol (P0); perendaman KNO3 0.2 %

selama 24 jam (P1); perendaman dengan air selama 24 jam (P2). Untuk benih sengon :

kontrol (P0); perendaman KNO3 0.2 % selama 24 jam (P1) dan Skarifikasi fisik (P2).

http://lcms.ipb.ac.id/lcms/courses/836/alat.html

http://lcms.ipb.ac.id/lcms/courses/836/alat.html

http://lcms.ipb.ac.id/lcms/courses/836/scarifier.html


1. Teknik pematahan dormansi benih padi

Masing-masing 4x100 butir benih dimasukkan ke dalam glassjar yang berisi larutan

0.2 % KNO3 dan aquades, biarkan selama 24 jam.

Tiriskan dan tanam pada substrat kertas merang, demikian juga untuk perlakuan

kontrol (tanpa perlakuan).

Amati daya berkecambahnya

2. Teknik pematahan dormansi benih sengon. Lakukan seperti pada benih padi, kecuali

untuk perlakuan P2 yaitu diskarifikasi menggunakan scarifier.

Tabel 2. Pengamatan daya berkecambah benih saga

Ulangan Perlakuan

Kontrol Skarifikasi KNO3 0.2 %

1

2

3

4

Tabel 3. Pengamatan potensi tumbuh maksimum benih saga

Ulangan Perlakuan

Kontrol Skarifikasi KNO3 0.2 %

1

2

3

4


Tabel 4. Pengamatan persentase kecambah normal benih padi

Periode

simpan

(minggu)

Ulangan Perlakuan

Kontrol KNO3 Air

0 1

2

3

1 1

2

3

2 1

2

3

3 1

2

3

4 1

2

3

5 1

2

3

6 1

2

3

7 1

2

3

8 1

2

3

9 1

2

3

10 1

2

3

Catatan : Laporan praktikum lengkap (Pendahuluan, Bahan dan Metoda secara rinci,

Hasil pembahasan dan kesimpulan) oleh setiap grup.

Catatan : Laporan praktikum lengkap disusun oleh setiap grup.Laporan meliputi

Pendahuluan, Bahan dan Metoda secara rinci, Hasil pembahasan dan kesimpulan


PERCOBAAN VII

Pengujian Daya Berkecambah Benih

Pendahuluan

Latar Belakang

Viabilitas benih dapat diketahui dengan melakukan pengujian benih.Berbagai macam

metode pengujian benih dibuat untuk mendeteksi parameter viabilitas benih.Pengujian

daya berkecambah benih digunakan untuk mendeteksi parameter viabilitas potensial

benih.Daya berkecambah atau daya tumbuh benih adalah tolok ukur bagi kemampuan

benih untuk tumbuh normal dan berproduksi normal pada kondisi lingkungan yang

optimum.

Sesuai dengan tujuan pengujian yaitu untuk mendeteksi viabilitas benih dalam kondisi

optimum, kondisi pengujian daya berkecambah benih dibuat serba optimum dan standar.

Media untuk menumbuhkan benih digunakan : kertas merang dan pasir, kertas saring atau

kertas koran bila benih dikecambahkan dalam alat pengecambah benih. Media pasir, serbuk

gergaji atau arang sekam digunakan bila benih ditumbuhkan diruang persemaian (lath

house). Ukuran media kertas atau boks plastik yang digunakan harus standar untuk

menanam sejumlah benih tertentu , pelembaban media harus optimum karena media terlalu

kering atau terlalu basah akan menyebabkan kondisi menjadi tidak optimum.

Metode penanaman benih dalam uji daya berkecambah yang menggunakan media kertas:

benih ditanam diatas media kertas (UDK), diantara media kertas (UAK), diantara media

kertas kemudian digulung (UKD) , bila dilapisi plastik dibagian luarnya adalah UKDdp.

Ciri lain dan khas dari pengujian daya berkecambah benih adalah pengamatan terhadap

benih yang tumbuh normal dilakukan dua kali. Pengamatan pertama biasa disebut hitungan

pertama, dilakukan pada hari ketiga setelah tanam untuk benih jagung, kedelai; kacang

tanah; benih padi pada hari kelima dan untuk benih cabe, tomat dan terong pada 7 hari

setelah benih ditanam.Pengamatan pertama ditujukan untuk optimalisasi media, benih

yang telah tumbuh menjadi kecambah normal dihitung, dicatat jumlahnya, setelah itu

dikeluarkan dari media.Benih yang busuk, bercendawan juga disingkirkan.Bila media

kering ditambah kelembabannya.Benih yang belum berkecambah atau kecambah belum

tumbuh normal dibiarkan dalam media tanam hingga akhir pengujian.

Pengamatan kedua atau hitungan kedua semua kecambah normal, kecambah abnormal,

benih mati dan benih segar tidak tumbuh diamati. Penentuan daya berkecambah benih

adalah jumlah kecambah normal hitungan satu dan dua dibagi jumlah benih yang diuji

dikali 100%.


Kriteria kecambah normal yang digunakan bagi bermacam jenis tanaman juga harus

standar. Untuk tanaman dikotil bagian kecambah yang harus diperhatikan ialah : perakaran

yang terdiri akar primer dan sekunder, hipokotil yaitu calon batang yang terletak di bawah

kotiledon, kedua kotiledon, epikotil dan plumula. Untuk kecambah monokotil bagian yang

diperhatikan : akar seminal primer dan sekunder, mesokotil, koleoptil, dan plumula.

Tujuan

Setelah mengikuti praktikum Pengujian Daya Berkecambah Benih mahasiswa dapat

melakukan beberapa metode uji daya berkecambah benih serta dapat mendeteksi viabilitas

potensial suatu lot benih dengan tolok ukur daya berkecambah benih

Bahan dan Metode

Bahan dan Alat

Benih yang digunakan : jagung, caisin, bawang, Cabe, kangkung dan timun

Media yang digunakan : kertas merang segi empat panjang berukuran 20X30 cm, kertas

merang bentuk bulat diameter 10 cm, media pasir

Alat yang digunakan : alat pengecambah benih tipe : IPB 72-1; IPB 73-2A/B, IPB 73-2A.

Alat pengepres kertas merang IPB 75-1.

Metode Pengujian daya berkecambah benih dengan metode UDK (Uji Diatas Kertas)

Cawan petri diameter 10 cm dilapisi tiga lembar media kertas merang bentuk bulat

Diatas kertas merang ditetesi air hingga merata. Cawan dimiringkan sehingga air yang

berlebih terkumpul di bagian bawah. Air berlebih dibuang.

Benih yang ditanam dengan metode UDK ialah benih yang berukuran kecil : caisin,

bawang, cabe.

Jumlah benih yang ditanam satu cawan petri 25 butir.

Cawan petri ditutup, diletakkan dalam alat pengecambah benih tipe IPB 73-2A.

Setelah benih mulai berkecambah, tutup cawan dibuka.

Pengamatan terhadap jumlah kecambah nornal dilakukan pada :

Pengujian daya berkecambah benih dengan metode UKDdp (Uji Kertas Digulung dalam

Plastik) :

Kertas merang segi empat panjang berukuran 20X30 cm direndan dalam air.

Setelah lembab diangkat dan diriskan airnya menggunakan alat pengepres kertas

merang IPB 75-1

Benih ditanam diatas 3 media kertas merang yang dibawahnya dilapisi plastik,

untuk media ukuran 20X30 ditanam 25 butir benih ukuran sedang-besar (jagung,

timun dan kangkung). Setelah benih ditanam, ditutup dengan 3 lembar media

lembab, kemudian digulung.

http://lcms.ipb.ac.id/lcms/courses/836/ipb1.html





Gulungan kertas merang diletakan dalam alat pengecambah benih tipe IPB 72-1.

Pengamatan dilakukan pada hari ke 3 dan ke 5 setelah tanam

Pengujian UKDdp untuk padi digunakan media kertas merang ukuran 20X30 cm

dilipat jadi dua sejajar panjangnya. Diatas media ditanam 25 butir benih padi, media

setengahnya ditutupkan, kemudian media digulung. Alat pengecambah benih yang

digunakan Tipe IPB 73-2A/B.

Tabel 5. Pengamatan Daya Berkecambah Benih

Komoditi Ulangan ∑ Kecambah

Normal

∑ Kecambah

Abnormal

∑ Benih

Mati

% Daya

Berkecambah

Timun 1

2

3

Jagung 1

2

3

Kangkung 1

2

3

Caisin 1

2

3

Bawang 1

2

3

Cabe 1

2

3


PERCOBAAN VIII

Uji Vigor Benih dengan NaCl

Pendahuluan

Latar Belakang

Vigor benih adalah kemampuan tumbuh benih menjadi tanaman berproduksi normal dalam

kondisi subobtimum. Beberapa kondisi suboptimum di lapang misalnya ; kondisi

kekeringan, tanah salin, tanah asam, tanah berpenyakit, dsb. Benih yang mampu mengatasi

kondisi tersebut termasuk lot benih bervigor tinggi.

Pengujian ketahanan benih terhadap kekeringan dapat dilakukan secara simulasi di

Laboratorium menggunakan larutan NaCl. Pada konsentrasi tinggi larutan ini tidak hanya

memberikan cekaman akibat tekanan osmotiknya sehingga benih mengalami hambatan

dalam proses imbibisi, tetapi juga memberikan cekaman terhadap kondisi salin. Pada

kondisi tersebut hanya benih vigor yang mampu tumbuh dengan baik.

Tujuan

Praktikum ini bertujuan untuk mempelajari uji vigor kekuatan tumbuh benih terhadap

kekeringan (VKTkekeringan).

Bahan dan Metode

Bahan dan Alat

Bahan yang diperlukan adalah dua lot benih kedelai yang berbeda vigornya, kertas merang,

plastik, label, larutan NaCl 1% dan aquades.

Alat yang dibutuhkan adalah alat pengecambah benih IPB 72-1, gelas ukur, beaker glass,

pengaduk gelas, timbangan serta alat penunjang yang lain.

Metode

Prosedur pelaksanaan

1. Tanam masing-masing lot benih kedelai sebanyak 50 butir pada substrat kertas

merang yang sudah dilembabkan dengan larutan NaCl 1%. Untuk kontrol substrat

perkecambahan dilembabkan dengan aquades. Lakukan sebanyak 4 ulangan untuk

masing-masing perlakuan pada kedua lot benih.

2. Simpan pada alat pengecambah benih IPB 72-1.

3. Pengamatan dilakukan pada hari ke-5 setelah tanam terhadap kecambah normal,

abnormal dan mati (isikan pada Tabel ). Bandingkan bagaimana pertumbuhan

kecambah pada kedua substrat (kontrol dan perlakuan NaCl) pada kedua lot benih.

4. Bahas dan buat kesimpulannya.

http://lcms.ipb.ac.id/lcms/courses/836/vigor.html


Tabel 6. Hasil pengamatan uji vigor dengan media yang dilembabkan larutan NaCl

Lot Perlakuan Ulangan Kecambah

Normal

Kecambah

abnormal

mati

Tinggi Kontrol 1

2

3

4

Rata-rata

NaCl 1

2

3

4

Rata-rata

Rendah Kontrol 1

2

3

4

Rata-rata

NaCl 1

2

3

4

Rata-rata

Catatan.: Laporan oleh masing-masing mahasiswa


PERCOBAAN IX

Uji Cepat Viabilitas Benih dengan Tetrazolium

Pendahuluan

Latar Belakang

Uji tetrazolium juga disebut uji biokhemis benih atau uji cepat viabilitas. Disebut uji

biokhemis karena uji tetrazolium mendeteksi adanya proses biokimia yang berlangsung di

dalam sel-sel benih khususnya sel-sel embrio. Disebut uji cepat viabilitas karena indiksi

yang diperoleh dari pengujian tetrazolium bukan berupa perwujudan kecambah, melainkan

pola-pola pewarnaan pada embrio, sehingga waktu yang diperlukan untuk pengujian

tetrazolium tidak sepanjang waktu yang diperlukan untuk pengujian yang indikasinya

berupa kecambah.

Pengujian tetrazolium menggunakan senyawa indikator 2.3.5 Trifenil tetrazolium klorida

yang larut dalam air untuk mengindikasi adanya sel-sel yang hidup. Bila indikator

diimbibisi oleh benih kedalam sel-sel benih yang hidup dengan bantuan enzim

dehidrogenase akan terjadi proses reduksi sehingga terbentuk endapan formazan yang

berwarna merah. Pada sel-sel yang mati tidak terjadi reduksi, sehingga warnanya

tetap.Adanya pola-pola warna merah pada bagian-bagian penting pada embrio benih

mengindikasikan benih mampu menumbuhkan embrio menjadi kecambah yang normal.

Kegunaan uji tetrazolium cukup banyak : untuk mengetahui viabilitas benih yang segera

akan ditanam, untuk mengetahui viabilitas benih dorman, untuk mengetahui hidup atau

matinya benih segar tidak tumbuh dalam pengujian daya berkecambah benih. Uji

tetrazolium sebagai uji vigor bila dilakukan, dengan cara membuat penilaian benih lebih

dapat dikembangkan ketat untuk katagori benih vigor diantar benih viabel.

Faktor-faktor yang perlu diperhatikan dalam uji tetrazolium ialah : penyiapan benih yang

akan diuji dengan menghitung jumlahnya, pelembaban benih untuk aktivasi enzim dan

pelunakan jeringan benih, pembukaan jaringan benih untuk pewarnaan ( penusukan,

pemotongan, pengupasan testa, pengeluaran embrio), penyiapan larutan tetrazolium, suhu

dan lama perendaman, penilaian benih viabel dan benih non viabel.

Bahan dan Metode

1. Benih jagung masing-masing 50 butir dilembabkan selama 1 malam.

2. Belah bagian embrio untuk mempercepat masuknya larutan tetrazolium ke dalam

benih. Rendam benih tersebut dengan larutan Tetrazolium secukupnya sampai

benih terendam seluruhnya. Untuk mempercepat proses pewarnaan bisa dipakai

suhu 400C selama 1 jam

3. Evaluasi/Pengamatan

Setelah proses pewarnaan biji harus segera diamati :


Tuang larutan tetrazolium dengan menggunakan saringan teh, cuci benih

dengan air mengalir sampai bersih (bebas dari larutan tetrazolium).

Rendam dalam air bersih.

Amati benih satu per satu dengan kaca pembesar, klasifikasikan sesuai dengan

gambar 1 – 10. Gambar dan hitung persentase benih viabel.

Apabila perlu gunakan mikroskop stereo

Gambar 1. Pola pewarnaan Tetrazolium untuk benih /biji jagung yang hidup dan

yang mati

Kriteria dalam interpretasi hasil uji tetrazolium pada biji jagung.Bagian gambar yang

berwarna hitam menunjukkan adanya pewarnaan merah dari jaringan yang hidup; bagian

yang berwarna putih adalah bagian yang tidak berwarna yang berarti jaringannya mati.

No.1 Biji dapat tumbuh (Germinable)

Seluruh embrio berwarna merah cemerlang

No.2-4 Biji dapat tumbuh (Germinable)

Bagian ujung dari skutelum tidak berwarna

No.5-6 Biji dapat tumbuh (Germinable)

Bagian ujung dari skutelum tidak berwarna;dan bagian yang tidak kritis dari radikula

(calon akar) juga tidak berwarna

No.7-8 Biji tidak dapat tumbuh (Non-Germinable)

Bagian di mana tempat akar seminal berasal (pada struktur biji) tidak ada pewarnaan


No.9 Biji tidak dapat tumbuh (Non-Germinable)

Plumula tidak terjadi pewarnaan (kadar jaringannya mati)


Bagian tengah dari skutelum dan bagian dari tempat pertumbuhan akar seminal tidak

berwarna


Plumula dan radikula tidak berwarna


Bagian bawah skutelum dan radikula sampai ke bagian tempat tumbuh akar seminal tidak

berwarna


Skutelum seluruhnya tidak berwarna


Skutelum dan radikula tidak berwarna


Pewarnaan embrio merah muda yang sangat redup


Seluruh embrio tidak berwarna

Gambar 2. Benih/biji dan struktur bibit jagung

Keterangan:

A. Penampang luar kariopsis


a. Pericap

b. Embrio

c. Endosperm

B. Penampang membujur dari luar

a. Skutelum

b. Koleoptil

c. Plumula

C. Bibit

a. Akar seminal

b. Radikula

c. Koleoriza

Hasil Pengamatan Uji Cepat Viabilitas Benih dengan Tetrazolium

Tabel 7. Hasil pengamatan uji tetrazolium dan Uji Daya Berkecambah

Jumlah

benih

Ulangan Lot Viable

(%)

Komentar

5 1 TZ

DB

5 2 TZ

DB

5 3 TZ

DB

5 4 TZ

DB

Rata-rata


PERCOBAAN X

Pengaruh Kondisi Simpan terhadap Daya Simpan Benih

Pendahuluan

Latar belakang

Penyimpanan benih merupakan suatu upaya untuk mempertahankan viabilitas

benih sampai benih saat ditanam tetap tinggi. Beberapa faktor yang berpengaruh terhadap

daya simpan benih adalah faktor internal dan faktor eksternal (lingkungan simpan).

Faktor internal mencakupsifat-sifat benih secara genetik, faktor kondisi benih

meliputi kadar air dan vigor awal, kebersihan, tingkat kerusakan mekanis. Faktor

lingkungan meliputi faktor biotik dan abiotik. Faktor abiotik mencakup RH, suhu dan gas.

Pada praktikum ini akan dipelajari pengaruh kondisi ruang simpan terhadap daya

simpan benih kedelai dan padi . Kondisi ruang simpan yang digunakan adalah kondisi

kamar dan AC.

Tujuan

Praktikum ini bertujuan untuk mempelajari pengaruh kondisi simpan AC dan

kamar terhadap viabilitas benih kedelai dan padi

Bahan dan Metode

1. Siapkan kedelai dan padi dalam kemasan plastic berlubang-lubang , setiap kantong

berisi 50 g benih kemudian simpan pada kondisi kamar dan AC.

2. Setiap minggu dilakukan pengujian daya berkecambah benih dan kadar air benih

3. Amati bagaimana daya berkecambah benih dan kadar air benih sampai akhir periode

penyimpanan. Berikan kesimpulan pengaruh kondisi ruang simpan terhadap daya

simpan benih.


Tabel 8.Pengamatan kadar air (KA) dan daya berkecambah benih (DB)

Periode

simpan

(minggu)

Ulangan Perlakuan

AC Kamar

KA DB KA DB

0 1

2

3

1 1

2

3

2 1

2

3

3 1

2

3

4 1

2

3

5 1

2

3

6 1

2

3

7 1

2

3

8 1

2

3

9 1

2

3

10 1

2

3

Catatan : Laporan praktikum disusun secara lengkap (Pendahuluan, bahan dan metoda

secara rinci, hasil pembahasan dan kesimpulan). Laporan dibuat oleh setiap grup.


TATA TERTIB PRAKTIKUM

1. Mahasiswa hadir tepat waktu di lokasi praktikum sesuai dengan jadwal yang telah

ditentukan. Keterlambatan 15 menit tidak diijinkan mengikuti praktikum.

2. Menggunakan jas lab pada saat praktikum

3 Mahasiswa dapat mengikuti praktikum susulan atas ijin coordinator praktikum,

membawa surat pengantar praktikum susulan tersebut ke pembimbing praktikum

pada hari yang telah ditentukan

4 Membersihkan tempat kerja, dan mengembalikan peralatan yang digunakan

kepada pembimbing setelah praktikum selesai. Kerusakan alat yang disebabkan

oleh kecerobohan praktikan, maka praktikan harus mengganti alat tersebut

5 Mengumpulkan tugas terstruktur dan laporan tepat waktu sesuai dengan waktu

yang telah ditentukan

6 Mengikuti praktikum dengan disiplin dan tertib

PANDUAN PRAKTIKUM DASAR ILMU DAN TEKNOLOGI BENIH … · Embrio adalah struktur yang terbentuk dari...

Documents

Transcript of PANDUAN PRAKTIKUM DASAR ILMU DAN TEKNOLOGI BENIH … · Embrio adalah struktur yang terbentuk dari...