Oleh Ni Luh Meri Handayani Ni Luh Putu Anggreni Ni Made Indah Suwandewi I Gede Astina
Resume Mikrin Kel.5 Ni
description
Transcript of Resume Mikrin Kel.5 Ni
RESUME
“Biotechnological Production of Vitamins”
Oleh :
Ahmad Faizin H 0910005
Eky Budi Wardani H 0910030
Ikfini Ma’anillah H 0910037
M. Fatchurrohman H 0910042
Ratri Rosdiana Putri H 0910060
Rulliana Purbasari H 0910065
PROGRAM STUDI ILMU DAN TEKNOLOGI PANGAN
FAKULTAS PERTANIAN
UNIVERSITAS SEBELAS MARET
2013
Vitamin didefinisikan sebagai mikronutrien penting yang dibutuhkan
dalam jumlah sedikit dimana tidak bisa disintesis oleh mamalia, juga penting
untuk metabolisme semua organisme hidup dan dihasilkan lewat mikroorganisme
atau tumbuhan. Sebagian besar vitamin sekarang diproduksi secara industri
sementara sebagian yang lain diproduksi lewat salah satu diantara sintesis kimia
atau proses ekstraksi. Proses ini memerlukan energi intensif, dan juga merugikan
dari pembuangan limbah yang mahal. Selanjutnya, proses ini menumbuhkan
kesadaran konsumen berkenaan dengan keamanan bahan tambahan makanan. Ini
menjadi rujukan untuk meningkatkan ketertarikan di dalam subtitusi proses ini
dengan proses bioteknologi.
A. Vitamin Larut Lemak
1. Vitamin E (α-tocopherol)
Vitamin E terdiri atas kelompok komponen lemak larut, termasuk
diantaranya α-tocopherol yang paling berlimpah dan mempunyai aktivitas
antioksidan tertinggi. Beberapa sumber alternatif produksi tokoferol :
beberapa strain mikro alga air tawar Euglena gracilis Z dan mikro alga laut
Dunaliella tertiolecta yang menghasilkan alpha tokoferol dengan konsentrasi
lebih tinggi. Studi optimasi produksi alpha tokoferol pada E. gracilis Z
dengan modifikasi kondisi kultur, kultur 2 tahap, dan menyeleksi subtrat
yang paling efektif bukan hanya untuk pertumbuhan organisme tetapi juga
terhadap produksi alpha tokoferol. Pengaturan kondisi tumbuh dari
organisme juga mempengaruhi produksi alpha tokoferol.Produksi vitamin c
dan E dalam jumlah besar secara simultan ditunjukkan oleh E. gracilis Z.
Carballo-cardenas mempelajari produksi tokoferol lewat Dunaliella
tertiolecta dan Tetraselmis suecica untuk membuktikan pengaruh
pencahayaan.
2. Menaquinone (vitamin K2)
Ada 2 bentuk alami vitamin K, vitamin K1 dan K2. Vitamin K1
(phylloquinone) diproduksi oleh tumbuhan. Vitamin K2 (menaquinone/MK)
secara umum disintesis oleh bakteri. Beberapa peneliti telah melakukan
studi intensif tetanng mekanisme pembentukan menaquinone pada Bacillus
subtilis. Pada fermentasi kedelai Bacillus subtilis memproduksi
menaquinone, komponen yang banyak yaitu MK-7 dan yang sedikit yaitu
MK-6.
B. Vitamin Larut Air
1. Riboflavin atau vitamin B2
a. Fermentasi menggunakan Ashbya gossypii
Hasil riboflavin lebih dari 15 g L / kultur pada fermentasi Ashbya
gossypii dengan media nutrisi yang mengandung molase. Produksi
riboflavin oleh Ashbya gossypii di media mengandung whey dengan
suplemen yang berbeda seperti kulit, glisin + pepton, sukrosa, glisin,
ekstrak ragi, pepton, dan minyak kedelai adalah 389,5, 120, 87,5, 78,3,
68,4, 23,2, dan 17,5 mg / L. limbah bumi yang mengandung minyak
sawit 40% digunakan untuk produksi riboflavin oleh Ashbya gossypii,
konsentrasi riboflavin mencapai 2,1 g / L dalam 10 hari. Konsentrasi ini
hampir 1,5 kali lebih tinggi dibandingkan kultur pada kelapa sawit murni.
Produksi Riboflavin dalam Ashbya gossypii ditingkatkan menjadi 1,6 kali
setelah 4 hari (2,5 g / L) dengan penambahan mineral 1% ke media
minyak kedelai.
b. Fermentasi menggunakan Bacillus subtilis.
Biosintesis riboflavin dalam Bacillus subtilis menggunakan genetika
klasik dan teknologi r-DNA. Kloning dan DNA nukleotida menunjukkan
bahwa enzim yang dibutuhkan untuk biosintesis riboflavin dikodekan
oleh gen sebagai operon 4,3 kb tunggal. B. subtilis penghasil riboflavin
mengandung beberapa salinan dari biosintesis subtilis dimodifikasi B.
riboflavin operon (rib operon)yang terintegrasi pada dua lokasi yang
berbeda di kromosom B. subtilis. Baru-baru ini, Nippon Roche, Jepang,
telah langkah produksi fermentasi tunggal riboflavin menggunakan
Bacillus subtilis galur rekombinan, yang efektif menghasilkan riboflavin
langsung dari glukosa dalam operasi fed-batch. Dalam rangka
mempertahankan stabilitas operasional dan biaya operasi rendah maka
perlu adanya kontrol dari budidaya fed-batch.
c. Fermentasi menggunakan Corynebacterium ammoniagenes
Strain untuk produksi riboflavin melalui rekayasa metabolik
menggunakan teknik DNA rekombinan dalam Corynebacterium
ammoniagenes. Fragmen DNA yang memiliki aktivitas promotor dalam
C. ammoniagenes diisolasi. Ketika fragmen DNA (P54-6) menunjukkan
aktivitas promotor terkuat dalam medium akhir biosintesis gen riboflavin,
akumulasi riboflavin diangkat 3 kali lipat. Aktivitas GTP cyclohydrolase
II enzim pertama dalam biosintesis riboflavin diangkat 2,4 kali lipat
sedangkan yang dari riboflavin synthase enzim terakhir dalam biosintesis
diangkat 44,1 kali lipat. Aktivitas GTP cyclohydrolase II berkorelasi
dengan produktivitas riboflavin. Riboflavin diproduksi pada level 15,3 g
L / setelah 72 jam dalam wadah fermentasi tanpa penghambatan produk
akhir.
d. Fermentasi menggunakan Lactococcus lactis
Mengembangkan galur Lactococcus lactis menggunakan mutagenesis
langsung dan rekayasa metabolisme untuk kelebihan simultan dari kedua
folat dan riboflavin. Lactococcus lactis MG 1363 terdapat analog
riboflavin roseoflavin. The roseoflavin strain (Lactococcus lactis CB010)
menunjukkan deregulasi biosintesis riboflavin sehingga memproduksi
riboflavinyang tidak dapat dikonsumsi. Lactococcus lactis CB010
kemudian ditransformasi dengan pNZ7010 mengekspresikan gen Folke
untuk protein bifunctional 2-amino-4-hydroxy- 6-hidroksimetil
dihydropteridine pyrophosphokinase dan GTP cyclohydrolase I. Hal ini
mengakibatkan lebih dari 10 kali lipat peningkatan tingkat folat
ekstraseluler, dan lebih dari 2 kali lipat peningkatan tingkat folat total.
Metode lain untuk produksi riboflavin didasarkan pada produksi
mikroba D-ribosa, yang berfungsi sebagai bahan awal untuk sintesis kimia
lebih lanjut dari riboflavin. Proses konversi kimia memerlukan beberapa
langkah, dan memakan waktu mengakibatkan biaya tinggi dibandingkan
dengan produksi langsung dengan fermentasi.
2. Vitamin B12
Sebagian besar langkah – langkah biosintesis vitamin
B12 telah dikarakteristikkan pada Pseudomonas
denitrificans, Salmonella typhimurium dan
Propionibacterium freudenreichii. Dua perbedaan biosintetik
jalur untuk vitamin B12 ada di alam:
1. Aerobic, atau jalur yang bergantung pada keberadaan
oksigen ditemukan pada organisme seperti Pseudomonas
denitrificans
2. Anaerobic, jalur yang tidak bergantung dengan
keberadaan oksigen telah diteliti pada organisme P.
shermanii, Salmonella typhimurium dan Bacillus
megaterium.
a.Produksi vitamin B12 dengan fermentasi
Propionibacterium Sp
Propionibacterium shermanii dan Propionibacterium
freudenreichii adalah yang paling umum digunakan.
Bioproses produksi vitamin B12 menggunakan strain
Propionibacterium terbagi menjadi 2 tahapan. Tahap
pertama dilakukan fermentasi selama 3 hari, bakteri-
bakteri tumbuh secara anaerob untuk memproduksi
precursor vitamin B12 yaitu cobamida. Selanjutnya sangat
penting untuk menetralisir akumulasi asam propionate
selama fermentasi berlangsung hal ini untuk menjaga
kultur yang dihasilkan mempunyai pH = 7. Volume asam
propionate berjumlah 10% dari volume fermentasi. Untuk
optimasi nilai pH, suhu dan aerasi, pembentukan kondisi
tersebut untuk produksi asam propionate dan vitamin B12
berbeda. Sementara itu, produksi asam propionate yang
optimal yaitu pada kondisi anaerobik dengan pH 6.5 dan
suhu 37 º C, produksi vitamin B12 yang optimal
membutuhkan suhu 40 ºC dan kondisi aerobic (0.5 vvm
aerasi pada 100 rpm) dengan pH 6.5.
Beberapa penelitian dilakukan untuk mendapatkan
produksi vitamin B12 secara optimum antara lain:
1. Marwaha dkk telah mempelajari peranan asam amino
betain dan kolin pada produksi vitamin B12 dengan 3
strain Propionibacterium yaitu viz. P. shermanii 566, P.
shermanii dan Propionibacterium arl AKU 1251. Sebelas
asam amino yang diujikan, asam L- glutamat
meningkatkan baik pertumbuhan dan susunan produk
menjadi maksimum pada 3 semua strain tersebut.
2. Marwaha dan Sethi menggunakan limbah susu untuk
produksi vitamin B12. Propionibacterium shermanii 566
mensintesis 5.76 mg vitamin B12 per liter whey
kandungan 4 % laktosa ditambah (NH4)2HPO4 dengan
syarat pada saat fermentasi pada suhu 30º C dengan
kondisi anaerobic selama 84 jam separu pertama
kemudian diikuti dengan kondisi aerobik selama 84 jam
separu kedua pada proses fermentasi.
3. Yongsmith and Chutima mempelajari produksi vitamin
B12 dengan mengimobilisasi pada gel kalsium alginat.
Keseluruhan sel Propionibacterium sp. strain arl AKU
1251 masih hidup ketkia diimobilisasi dalam gel alginat.
Hasil maksimum mencapai sekitar 20 mg/ L medium.
Produksi vitamin B12 dan pertumbuhan pada sel-sel
yang diimobilisasi dapat meningkat oleh inkubasi yang di
dalam sel-selnya terdapat sebuah medium terdiri atas
konsentrasi tinggi sumber karbon dan nitrogen.
Kehadiran precursor vitamin B12, yaitu cobaltous
sulphate dan 5,6-dimethyl benzimidazole, bersamaan
dengan surfaktan Tween 80, pada konsentrasi optimum
secara signifikan meningkatkan produksi vitamin B12,
hasil maksimum mencapai sekitar 20 mg/L medium.
Masalah-masalah terkait dengan produksi vitamin
B12
Masalah utama dalam produksi vitamin B12 dengan
menggunakan Propionibacterium adalah terhambatnya
pertumbuhan selama terjadi akumulasi metabolit inhibitor
seperti asam propionat dan asam asetat. Ken-ichiro dkk
meneliti melalui berbagai pendeketan yaitu dengan
mengontrol konsentrasi asam propionate serendah
mungkin dengan cara antara lain:
a) Kultivasi periodik Propionibacterium dimana konsentrasi
Oksigen terlarut (DO) sebagai solusi perubahan antara 0-
1 ppm
b) Sistem daur ulang sel menggunakan serat berongga
modul
c) Pencampuran kultur menggunakan Propionibacterium
dan Ralstonia eutropha dimana mikroorganisme yang
terakhir berasimilasi asam propionat dihasilkan oleh
mikroba pendahulu
Telah ditemukan bahwa produksi vitamin B12 paling
tinggi menggunakan sistem daur ulang sel , ketika
dievaluasi berdasarkan jumlah vitamin B12 yang dihasilkan
per unit volum medium yang digunakan, sistem
penggabungan kultur memberikan nilai yang paling tinggi
b. Produksi vitamin B12 dengan fermentasi
Pseudomonas dinitrificans
Pseudomonas dinitrificans tumbuh paralel cobalamin sintesis
dalam kondisi aerobik, jika culture secara langsung dilengkapi dengan 5,6-
DBIM dan garam kobalt. Mempertahankan DO rendah memiliki efek yang
menguntungkan. Beberapa vitamin B12 derivatif dapat diproduksi baik
oleh fermentasi langsung atau dengan konversi kimia cyanocobalamin.
Culture ini diaerasi selama proses fermentasi seluruh sekitar 2-3 hari pada
suhu 30 ° C dan pH nilai-nilai yang dipertahankan pada 6-7.
Methanogen juga dapat digunakan untuk produksi vitamin B12
(54,55). Vitamin B12 produksi oleh methanogen mungkin telah mengikuti
keunggulan dibandingkan konvensional B12 produsen vitamin:
• konsentrasi vitamin B12 dalam kaldu adalah sepuluh kali lebih besar
daripada menggunakan asam propionat memanfaatkan mikroba;
• produk utama, metana, tidak menghambat pertumbuhan methanogen dan
dapat memberikan kepadatan sel sistem culture tinggi;
• metanol, asam asetat dan CO2 digunakan sebagai substrat yang murah,
relatif stabil dan terbarukan.
Namun, butuh waktu yang lama untuk substrat karena methanogen tumbuh
lebih lambat dari mikroba aerobik, dan ini membuat fasilitas fermentasi yang
lebih besar.
4. Asam askorbat
Saat ini sebagian besar diproduksi secara komersial L-asam askorbat
disintesis melalui proses Reichstein menggunakan D-glukosa sebagai bahan
awal. Inovasi baru dalam proses fermentasi dan kemajuan teknologi DNA
rekombinan biokimia dan memperluas pilihan yang tersedia untuk
eksploitasi bioteknologi di L-askorbat produksi asam.
a. Proses fermentasi bakteri
1. Jalur sorbitol
Sorbitol diubah dengan fermentasi menjadi 2-KLG melalui
peantara L-sorbosone. Transformasi dilakukan oleh beberapa strain
genera Pseudomonas dan Acetobacter, yang mengkatalisasi oksidasi
dari L-sorbose (dan atau D-sobitol) untuk 2-KLG melalui serangkaian
dehidrogenase membran terikat, mengarah ke pembentukan L-
sorbosone. Oksidasi terakhir untuk 2-KLG dikatalisis oleh salah satu
membran terikat atau dehydrogenasi sorbosone cytosolic, tergantung
pada ketegangan. Sugisawa et al. (69) isolasi kultur G. Oxidan yang
dihasilkan sampai 60 g/L dari 2-KLG dari L-sorbose atau D-sorbitol,
dengan konversi 60 %.
Saito et al. (70) diisolasi Glucanobacter oxydans G624, yang
dapat mengkonversi D-sorbitol untuk L-sorbose hampir kuantitatif
melalui dehidrogenase membran-terikat sorbitol, tetapi tidak mampu
mensintesis 2-KLG. Membran-terikat sorbose dehidrogenase dan
dehidrogenase sitosol sorbosone diklon dari Glucanobacter oxydans
T-100, strain yang dapat menghasilkan 2-KLG, dan dinyatakan dalam
Glucanobacter oxydans G624. Setelah optimalisasi sistem ekspresi,
mutagenesis kimia untuk memblokir lebih lanjut 2-KLG metabolisme
menghasilkan Glucanobacter oxydans strain yang disediakan lebih
dari 85% dari hasil 2-KLG.
2. Jalur Asam 2-Ketod-Glukonat.
Dalam jalur ini, D-glukosa diubah menjadi 2-KLG melalui
Asam D-glukonat, asam 2-ketoD-glukonat dan Asam 2,5-diketo-D-
glukonat (2,5-DKG). Sampai sekarang tidak ada bakteri strain
secara efisien mengatalisasi konversi lengkap D-glc untuk 2-KLG
telah diisolasikan. Hal ini dilakukan dalam tiga langkah utama,
setiap langkah dilakukan dengan menggunakan mikroorganisme
berbeda (3):
(i) transformasi Asam D-glukosa menjadi 2-ketoD-glukonat :
transformasi glukosa menjadi Asam 2-ketoD-glukonat dilakukan
oleh Acetobacter melanogenus (71) dan Pseudomonas
albosesamae (72). Beberapa Acetobacter strain juga mensintesis
asam 2-ketoD-glukonat;
(ii) Asam oksidasi 2-ketoD-glukonat : oksidasi ini dilakukan oleh
Bakteri hoshigaki dan Bakteri gluconimani dengan 2,5-DKG
sebagai produk. Selain itu, Acetomonas albosesamae langsung
dapat mengubah D-glukosa 2,5-DKG;
(iii) asam oksidasi 2,5-DKG:. Sonoyama et al (73) telah
menggambarkan proses untuk konversi 2,5-DKG menjadi 2-KLG.
Strain tersebut adalah dari genera Brevibacterium dan
Pseudomonas, dan hasil maksimum diperoleh dari
Brevibacterium ketosoreductum.
Dalam proses konvensional (bioconversion), 2-KLG diubah
menjadi asam L- askorbat kimia melalui dua rute :
Yang pertama libatkan beberapa tahapan termasuk:
• esterifikasi turunan 2-KLG bawah kondisi asam kuat untuk
menghasilkan metil 2-ketoL-gulonate (MeKLG);
• reaksi MeKLG dengan basa untuk menghasilkan logam garam
askorbat;
• perlakuan garam logam askorbat dengan rasa asam yang untuk
mendapatkan asam askorbat.
Rute kedua adalah metode satu-langkah yang terdiri dari asam-katalis
siklisasi KLG.
b. Ragi berbasis proses fermentasi untuk produksi asam askorbat
Banyak bukti menunjukkan bahwa biosintesis asam L-ascorbic dari
substrat ini dalam ragi terjadi melalui activitas enzim dari jalur asam D-
erythroascorbic (82). Selain itu, ekspresi D-arabinono-1 ,4-lactone
oxiDase dari Saccharomyces cerevisiae di Escherichia coli dapat
memproduksi dgn kelebihan asam D-erythroascorbic dan asam L-
askorbat bila diaktifkan dengan D-arabinono-1 ,4-lakton dan D-ga
lactono-1 ,4-lakton, berturut-turut (83).
Saccharomyces cerevisiae dan Zygosaccharomyces bailii
mengumpulkan asam L- askorbat intrasel saat inkubasi dengan L-
galaktosa. Ekspresi dari dehidrogenase D-arabinosa dan oxidase D-
arabinono-1 ,4-lactone pada Saccharomyces cerevisiae meningkatkan
kemampuan ini secara signifikan. Kenyataanya , strain rekombinan
bahkan memperoleh kemampuan untuk mengumpulkan Asam L-askorbat
dalam media kultur. Bahkan lebih baik kembali Hasil pengujian dapat
diperoleh dengan overekspresi tanaman enzyme L-galaktosa
dehidrogenase dari Arabidopsis thaliana (84).
c. Produksi asam L- askorbat menggunakan ganggang
Skatrud dan Huss (85) menjelaskan metode untuk efisieni produksi
asam L- askorbat dalam ganggang. Metode melibatkan awal
pertumbuhan Chlorella pyrenoidosa ATCC 53170 dalam fermentor
dengan sumber karbon yang cukup untuk sel untuk tumbuh kepadatan
menengah. Di tahap habis, sumber karbon tambahan ditambahkan
berurutan atau terus menerus untuk mempertahankan konsentrasi sumber
karbon di bawah tingkat yang ditentukan sampai penambahan dihentikan.
Hal ini mengakibatkan produksi 1,45 g / L asam L- askorbat. Euglena
gracilis Z. adalah salah satu beberapa mikroorganisme yang sekaligus
menghasilkan antioksidan vitamin seperti b-karoten (71 mg / L), vita min
C (86,5 mg / L) dan vitamin E (30.1 mg / L) (1).
4. Biotin
Jalur biosintesis biotin dalam strain bakteri yang berbeda seperti
Escherichia coli (86), sphaericus Bacillus (87), Bacillus subtilis (88) dan
Sphingomonas sp. (89) telah dilaporkan. Hanya langkah terakhir, konversi
dethiobiotin (DTB) ke biotin, belum diselesaikan secara enzimatik,
meskipun sphaericus Bacillus dapat mengkonversi dethiobiotin menjadi (+)-
biotin. Sebuah kontribusi besar terhadap pemahaman jalur metabolisme
untuk sintesis biotin dari pimelyl-CoA awalnya dijelaskan untuk E. coli.
Jalur biotin melewati tiga intermediet, 7-keto-8-aminopelargonic acid
(KAPA), 7,8-diaminopelargonic acid (dapa) dan DTB. Ini intermediet
secara individual atau kolektif disebut sebagai vitamers atau vitamers total.
Kesimpulan
Proses mikroba atau mikroalga untuk produksi vitamin memiliki banyak
keuntungan dibandingkan dengan proses sintesis kimia (jika sama sekali
ada). Produk dari proses kimia sering campuran rasemat, sedangkan
fermentasi atau biokonversi reaksi menghasilkan senyawa enansiomer yang
diinginkan. Selain itu, kemajuan teknologi biokimia dan DNA bersama-
sama dengan revolusi genomik telah memperluas pilihan yang tersedia
untuk eksploitasi bioteknologi dalam produksi vitamin. Selain itu, proses
bioteknologi dan produk umumnya memiliki dampak lingkungan positif dan
daya tarik positif kepada orang-orang.