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Vulnerabilidad Genética de la
Transexualidad. Análisis de una población
española
Autora: Joselyn Francis Cortés Cortés
Tesis doctoral UDC / 2019
Directores: Eduardo J. Pásaro Méndez y Rosa Mª Fernández García
Tutora: Rosa Mª Fernández García
Departamento de Psicología. Área Psicobiología
Programa de doctorado Interuniversitario en Desarrollo Psicológico,
Aprendizaje y Salud
3
Los directores de la Tesis Doctoral titulada Vulnerabilidad Genética de la
Transexualidad. Análisis de una población española realizada por la Licenciada en
Psicopedagogía Joselyn Francis Cortés Cortés, acreditan que cumple los requisitos para
optar al grado de Doctor por la Universidad de A Coruña.
Dr. Eduardo J. Pásaro Méndez
Catedrático de Universidad
Departamento de Psicología. UDC
Dra. Rosa Mª Fernández García
Profesora Titular de Universidad
Departamento de Psicología. UDC
A Coruña, 23 de julio de 2019
5
El presente trabajo de investigación se desarrolló en el laboratorio de Psicobiología del
departamento de Psicología, en la Facultad de Ciencias de la Educación de la UDC. La
investigación fue financiada a través de las siguientes ayudas:
Beca Predoctoral de Formación de Profesorado Universitario (FPU 15/02558) del
Ministerio de Educación, Cultura y Deporte.
Proyecto PSI2014-58004-P: “Las redes cerebrales en personas transexuales: un estudio de
neuroimagen funcional, metabólico y genético sobre la etiología de la transexualidad y la
identidad de género”. Entidad financiadora: MINECO
Proyecto ED431B2016/01: “Ayuda para la consolidación y estructuración de unidades de
investigación competitivas del sistema gallego de I+D+I” Entidad financiadora: Xunta de
Galicia.
Durante el desarrollo de la Tesis Doctoral se realizaron dos estancias de investigación:
- Estancia breve financiada por el Ministerio de Educación, Cultura y Deporte
(EST16/00554) y que se incluye como programa formativo de la beca FPU. La
estancia se realizó en el Centro de Estudios Avanzados de la Universidad de Playa
Ancha (Viña del Mar, Chile) en el Laboratorio de Comportamiento Animal y Humano
(LABCAH).
- Traslado temporal financiado por el organismo privado “Banco Santander”, con
motivo de la promoción de la investigación en países Iberoamericanos. La estancia se
realizó en el Centro Interdisciplinario de Neurociencias de Valparaíso (Chile) en el
Laboratorio de Neurogenética (CINV).
7
Los resultados de esta investigación fueron publicados como artículos científicos:
- Fernández, R., Guillamon, A., Cortés-Cortés, J., Gómez-Gil, E., Jácome, A., Esteva
de Antonio, I., Almaraz, M., Mora, M., Aranda, G. & Pásaro, E. (2018). Molecular
basis of Gender Dysphoria: androgen and estrogen receptor interaction.
Psychoneuroendocrinology, 98: 161-167. doi:10.1016/j.psyneuen.2018.07.032.
- Fernández, R., Guillamon, A., Gómez-Gil, E., Esteva de Antonio, I., Almaraz, MC.,
Cortés-Cortés, J., Lamas, B., Lema, E. & Pásaro, E. (2018). Analyses of karyotype
by G-banding and high-resolution microarrays in a gender dysphoria population.
Genes & Genomics, 40(5): 465-473. doi: 10.1007/s13258-017-0646-0.
- Cortés-Cortés, J., Fernández, R., Teijeiro, N., Gómez-Gil, E., Esteva de Antonio, I.,
Almaraz, MC., Guillamon, A. & Pásaro, E. (2017). Genotypes and haplotypes of the
estrogen receptor α gene (ESR1) are associated with Female-to-Male Gender
Dysphoria. The Journal of Sexual Medicine, 14(3): 464-472. doi:
10.1016/j.jsxm.2016.12.234.
- Fernández, R., Cortés-Cortés, J., Gómez-Gil, E., Esteva de Antonio, I., Almaraz,
M.C., Guillamon, A. & Pásaro, E. (2016). The CYP17-MspA1 rs743572
polymorphism is not associated with Gender Dysphoria. Genes & Genomics, 38(12):
1145-1150. doi: 10.1007/s13258-016-0456-9.
Y como comunicaciones en congresos:
- Fernández, R., Delgado, E., Ramírez, K., Cortés-Cortés, J., Gómez-Gil, E., Esteva de
Antonio, I., Almaraz, MC., Guillamon, A. & Pásaro, E. Estrogen receptor alpha gene
(ESR1) promoter region analysis in a population with Gender Gysphoria. 3th
International Congress of Psychobiology. Granada, 29-31 mayo, 2019.
- Cortés-Cortés, J. Genetic Vulnerability to Gender Dysphoria. Genetic analysis of a
Spanish population. Jornada Formativa en Psicobiología (Sociedad Española de
Psicobiología). Madrid, 5 octubre, 2018.
8
- Fernández, R., Guillamon, A., Cortés-Cortés, J., Gómez-Gil, E., Esteva de Antonio,
I., Almaraz, MC., Mora, M., Aranda, G. & Pásaro, E. Molecular basis of Gender
Dysphoria: androgen and estrogen receptor interactions. 2018 IASR (International
Academy of Sex Research) Conference. Madrid, 17-20 julio, 2018.
- Diez-Juan, A., Ramírez, K., Cortés-Cortés, J., Fernández, R., Guillamon, A., Gómez-
Gil, E., Mora, M., Aranda, G. & Pásaro, E. Methylation analysis of the estrogen
receptor alpha (ESR1) promoter region in a population with Gender Dysphoria
undergoing hormone replacement. 2018 IASR (International Academy of Sex
Research) Conference. Madrid, 17-20 julio, 2018.
- Herrero-Prieto, M., Delgado, E., Cortés-Cortés, J., Fernández, R., Guillamon, A.,
Gómez-Gil, E., Mora, M., Aranda, G. & Pásaro, E. Analysis of the rs9478245
polymorphism in a population with Gender Dysphoria. 2018 IASR (International
Academy of Sex Research) Conference. Madrid, 17-20 julio, 2018.
- Fernández, R., Diez-Juan, A., Ramírez, K., Cortés-Cortés, J., Gómez-Gil, E., Mora,
M., Aranda, G., Guillamon, A. & Pásaro, E. El tratamiento hormonal cruzado
modifica el grado de metilación de la región promotora del gen ESR1 en la población
con Disforia de Género. I Foro clínico de identidad de género y últimos avances en
cirugía Trans. Valencia, 14-15 junio, 2018.
- Fernández, R., Guillamon, A., Gómez-Gil, E., Cortés-Cortés, J., Lamas, B., Lema,
E., Esteva de Antonio, I., Almaraz, MC. & Pásaro, E. Genetic vulnerability in
Gender Dysphoria: the role of androgen and the estrogen receptors. 2nd International
Congress of Psychobiology. Ávila, 19-21 julio, 2017.
- Cortés-Cortés, J., Fernández, R., Guillamon, A., Gómez-Gil, E., Lamas, B., Lema,
E., Esteva de Antonio, I., Almaraz, MC. & Pásaro, E. Descriptive and Molecular
analysis of a Gender Dysphoric population. 2nd International Congress of
Psychobiology. Ávila, 19-21 julio, 2017.
- Fernández, R., Cortés-Cortés, J., Gómez-Gil, E., Esteva de Antonio, I., Almaraz,
MC., Guillamon, A. & Pásaro E. Estrogen receptor α gene involvement in Gender
9
Dysphoria. 5th Annual Scientific Conference of the European Association of
Psychosomatic Medicine (EAPM). Barcelona, 28 junio-01 Julio, 2017.
- Cortés-Cortés, J., Teijeiro-Martínez, N., Fernández, R., Gómez-Gil, E., Esteva de
Antonio, I., Almaraz, MC., Guillamon, A. & Pásaro, E. Análisis genético de los
receptores de estrógenos alfa y beta en una población con disforia de género. 58
Congreso de la SEEN. Málaga, 19-21 octubre, 2016.
- Fernández, R., Cortés-Cortés, J., Rumbo, T., Esteva de Antonio, I., Gómez-Gil, E.,
Lema, E., Haro-Mora, JJ., Almaraz, MC., Roda, E., Guillamon, A. & Pásaro, E.
Genetic vulnerability of transsexualism. 1st International Congress of
Psychobiology. Oviedo, 15-17 julio, 2015.
- Fernández, R., Cortés-Cortés, J., Esteva de Antonio, I., Gómez-Gil, E., Mallo, M.,
Solé, F., Lema, E., Almaraz, MC., Roda, E., Haro-Mora, JJ., Guillamon, A. &
Pásaro, E. A cytogenetic and molecular study of transsexualism. The 20th
International Chromosome Conference. Kent, 01-05 septiembre, 2014.
11
Dedicatoria
A mis padres, por su amor incondicional,
A mi hijo y mi marido por su apoyo y comprensión
A mis hermanos por sostenerme siempre
A la familia que ha recorrido este camino…
13
Agradecimientos
Desde que comencé este camino hasta el día de hoy, hubo muchas personas que me
acompañaron durante todo el recorrido; cada una de ellas ha sido fundamental para
culminar con éxito este maravilloso proyecto. Me gustaría expresar mi más sincero
agradecimiento:
A la doctora Rosa Fernández por enseñarme con paciencia durante todo el recorrido. Por
guiar mi camino de la investigación desde el esfuerzo y la constancia.
Al doctor Eduardo Pásaro por enseñarme que, aunque el camino es difícil, uno nunca debe
rendirse.
A ellos les agradezco que me dieran las herramientas necesarias para iniciarme en el
mundo de la investigación, además de su tiempo, paciencia y dedicación.
Al doctor Antonio Guillamon del departamento de Psicobiología de la Universidad
Nacional de Educación a Distancia (UNED), por su valiosa colaboración en la discusión de
los datos.
A la doctora Esther Gómez-Gil de la Unidad de Identidad de Género del Hospital Clínic de
Barcelona, por su inestimable cooperación en la investigación mediante el diagnóstico y
suministro de la muestra a lo largo de toda la investigación, así como su contribución en la
discusión de los resultados y la elaboración de los artículos.
A los doctores Isabel Esteva de Antonio, Mari Cruz Almaraz y Juan Jesús Haro, de la
Unidad de Transexualidad e Identidad de Género del Hospital Carlos Haya de Málaga, por
su generosidad y ayuda plasmada en la muestra facilitada.
Al doctor José Antonio Muñoz y a todo su equipo, del Laboratorio de Comportamiento
Animal y Humano (LABCAH) del Centro de Estudios Avanzados de la Universidad de
Playa Ancha, por su paciencia, generosidad y dedicación durante mi estancia en su
laboratorio. Ellos me entregaron nuevas herramientas que me abrieron otros caminos en la
investigación.
14
Al doctor Pablo Moya Vera y a todo su equipo, del Laboratorio de Neurogenética (CINV)
del Centro Interdisciplinario de Neurociencias de Valparaíso, por su paciencia, generosidad
y dedicación durante mi estancia en su laboratorio. Ellos me entregaron conocimientos y
estrategias necesarias para la investigación, despertando en mí nuevas inquietudes
profesionales.
A mi marido, hijo y familia, por su comprensión, amor y apoyo. Han sido un pilar
fundamental durante estos años de lucha y dedicación
A Jorge García por devolverme la esperanza y la confianza en mí misma. Por enseñarme a
vencer los obstáculos y por entregarme las herramientas para seguir el camino… gracias
por no rendirte.
A Pedro Silva, por su tiempo, dedicación y por acompañarme en este recorrido.
A Arantxa Vega, gracias por tantos años de amistad, comprensión y apoyo.
A Leticia y su familia, por su amistad, cariño y comprensión.
A todos esos docentes que han pasado por mi vida académica y profesional. Por haberme
entregado mucho más que conocimientos…, por todas esas palabras de aliento y cariño que
he recibido desde que comencé mi Tesis.
Al Banco Santander, por haberme otorgado los recursos necesarios para mi formación
investigadora en el extranjero. Gracias por confiar en nuestro proyecto y por invertir en la
ciencia y apostar por el desarrollo en la investigación.
Al Ministerio de Educación Cultura y Deporte, por haberme dado los recursos y
herramientas necesarios para llevar a cabo mi proyecto de investigación. Gracias a la
formación docente e investigadora y las ayudas de movilidad, hoy puedo presentar mi
Tesis Doctoral.
ÍNDICE
15
RESUMO ................................................................................................................. 17
RESUMEN ............................................................................................................... 18
ABSTRACT ............................................................................................................. 19
RESUMEN (Adicional) ........................................................................................... 20
1. INTRODUCCIÓN ................................................................................................ 25
1.1. Concepto de Disforia de Género ......................................................................... 27
1.2. Etiología .............................................................................................................. 28
1.3. Antecedentes ....................................................................................................... 28
1.4. Clasificación diagnóstica ..................................................................................... 30
1.5. Inicio de la Disforia de Género ........................................................................... 33
1.6. Orientación sexual en la población con Disforia de Género ............................... 34
1.7. Estudio sociodemográfico de la Disforia de Género ........................................... 36
1.8. Estimación de la prevalencia, incidencia y razón de sexos de la Disforia de
Género ................................................................................................................. 39
1.9. Diferenciación sexual del cerebro ....................................................................... 42
1.9.1. Dimorfismo sexual .................................................................................. 42
1.9.2. Determinación y diferenciación sexual ................................................... 42
1.9.3. Masculinización, feminización y desfeminización .................................. 45
1.9.4. Hormonas sexuales y desarrollo del cerebro humano ............................ 47
1.10. Estudio de la Disforia de Género y morfometría cerebral ................................ 49
1.10.1. Las hormonas y el fenotipo cerebral en la Disforia de Género ............ 54
1.11. Vulnerabilidad genética de la transexualidad ................................................... 57
1.11.1. Variantes genéticas: Polimorfismos ..................................................... 61
1.11.2. El gen del receptor de estrógenos ......................................................... 63
1.11.3. El gen del receptor de andrógenos ....................................................... 68
1.11.4. El gen CYP19A1 .................................................................................... 72
1.11.5. El gen CYP17A1 .................................................................................... 73
2. OBJETIVOS ........................................................................................................ 79
PRIMER ESTUDIO ................................................................................................... 81
Objetivos específicos ......................................................................................... 81
SEGUNDO ESTUDIO ............................................................................................... 81
Joselyn Francis Cortés Cortés
16
Objetivos específicos: ....................................................................................... 81
TERCER ESTUDIO .................................................................................................. 82
Objetivos específicos: ....................................................................................... 82
CUARTO ESTUDIO .................................................................................................. 82
Objetivos específicos: ....................................................................................... 82
3. MATERIAL Y MÉTODOS .................................................................................... 83
3.1. Sujetos ................................................................................................................. 85
3.2. Extracción de sangre periférica ........................................................................... 86
3.3. Análisis citogenético y molecular del cariotipo .................................................. 86
3.4. Estudio de polimorfismos ................................................................................... 89
3.5. Tratamiento estadístico de los resultados ............................................................ 91
4. RESULTADOS .................................................................................................... 93
4.1. PRIMER ESTUDIO ............................................................................................ 95
4.2. SEGUNDO ESTUDIO ..................................................................................... 105
4.3. TERCER ESTUDIO ......................................................................................... 113
4.4. CUARTO ESTUDIO ........................................................................................ 123
5. DISCUSIÓN ....................................................................................................... 131
5.1. Análisis citogenético y molecular del cariotipo en una población con Disforia
de Género .......................................................................................................... 133
5.2. Estudio del polimorfismo CYP17-rs743572 en una población con Disforia de
Género ............................................................................................................... 141
5.3 . Estudio molecular del gen ESR1 en una población con Disforia de Género .. 146
5.4 . Estudio de interacción de los genes ESR1, ESR2, AR y CYP19A1 en la
Disforia de Género ............................................................................................ 152
6. CONCLUSIONES .............................................................................................. 159
7. BIBLIOGRAFÍA ................................................................................................. 163
RESUMO
17
RESUMO
A transexualidade caracterízase por unha marcada incongruencia entre o xénero e o sexo
biolóxico. Os transexuais buscan a transición home-muller (MtF) ou muller-home (FtM).
A revisión da literatura mostra que a concordancia é maior nos xemelgos monocigóticos
que nos dicigóticos, o que suxire a contribución xenética.
Obxectivos: A primeira parte da investigación consistiu na análise citoxenética e molecular
do cariotipo dunha poboación transexual. Posteriormente realizouse a análise molecular de
sete polimorfismos xenéticos, catro polimorfismos de repetición: ERα-rs3138774, ERβ-
rs113770630, AR-rs193922933 e CYP19-rs60271534, e tres polimorfismos de única base
(SNPs): ERα-rs2234693, ERα-rs9340799 y CYP17-rs743572, nunha poboación de 974
transexuais e 1.327 controis. O diagnóstico e selección da mostra realizouse nas Unidades
de Identidade de Xénero dos Hospitais Clínic (Barcelona) e Carlos Haya (Málaga).
Material e Métodos: A análise do cariotipo realizouse ca técnica de bandas G, e co
microarray Affymetrix CytoScan™ high-density. O estudo dos polimorfismos consistiu na
amplificación das rexións polimórficas e o posterior establecemento dos xenotipos
mediante electroforeses capilar (3130 XL Genetic Analyzer) para os polimorfismos de
repetición, ou mediante dixestión encimática no caso dos polimorfismos dunha soa base. A
análise das frecuencias realizouse aplicando o test de Mann-Whitney ou o test de chi-
cuadrado co software SPSS® 23.0. A análise das interaccións realizouse mediante
regresión loxística binaria co software SNPStats. Os falsos positivos foron controlados ca
corrección de Bonferroni.
Resultados: Os receptores de estróxenos alfa e beta están implicados na base xenética da
transexualidade. A poboación FtM mostrou un maior número de repeticións CA no
polimorfismo ERβ-rs113770630 que a poboación control. E as frecuencias alélicas e
xenotípicas do polimorfismo ERα-rs9340799 (xenotipo A/A) foron tamén significativas en
FtM. Atopáronse combinacións alélicas significativas para ERα-rs9340799, ERβ-
rs113770630 e AR-rs193922933 na poboación MtF.
Conclusión: O receptor de estróxenos alfa e beta xoga un papel clave na diferenciación
sexual do cerebro na nosa especie.
Joselyn Francis Cortés Cortés
18
RESUMEN
La transexualidad se caracteriza por una marcada incongruencia entre género y sexo
biológico. La población transexual busca la transición “hombre-mujer” (MtF) o “mujer-
hombre” (FtM). La literatura muestra una mayor concordancia entre gemelos
monocigóticos que dicigóticos, lo que sugiere la contribución genética.
Objetivos: Esta investigación consistió en el análisis citogenético y molecular del cariotipo
de una población transexual. Posteriormente se realizó el análisis molecular de siete
polimorfismos genéticos, cuatro de repetición: ERα-rs3138774, ERβ-rs113770630, AR-
rs193922933 y CYP19-rs60271534, y tres polimorfismos de única base (SNPs): ERα-
rs2234693, ERα-rs9340799 y CYP17-rs743572, en una población de 974 transexuales y
1.327 controles. El diagnóstico y selección de la muestra se realizó en las Unidades de
Identidad de Género de los Hospitales Clínic (Barcelona) y Carlos Haya (Málaga).
Material y Métodos: El análisis del cariotipo se realizó mediante bandas G y el microarray
Affymetrix CytoScan™ high-density. El estudio de los polimorfismos consistió en la
amplificación de las regiones polimórficas y posterior establecimiento de los genotipos
mediante electroforesis capilar (3130 XL Genetic Analyzer), o mediante digestión
enzimática en el caso de los polimorfismos de única base. El análisis de las frecuencias se
realizó con los tests Mann-Whitney o Chi-cuadrado y el software SPSS® 23.0. El análisis
de interacción se realizó mediante regresión logística binaria con el software SNPStats.
Los falsos positivos se excluyeron con la corrección de Bonferroni.
Resultados: Los receptores de estrógenos alfa y beta están implicados en la base genética
de la transexualidad. La población FtM mostró mayor número de repeticiones CA (ERβ-
rs113770630) que la población control. Las frecuencias alélicas y genotípicas del ERα-
rs9340799 (genotipo A/A) fueron también significativas en la población FtM. Se
encontraron combinaciones alélicas significativas entre ERα-rs9340799, ERβ-rs113770630
y AR-rs193922933 en la población MtF.
Conclusión: Los receptores de estrógenos alfa y beta juegan un papel clave en la
diferenciación sexual del cerebro en nuestra especie.
ABSTRACT
19
ABSTRACT
Transsexualism is characterized by a marked incongruence between one’s experienced
gender and biological sex. Transsexuals are individuals who seek, or have undergone, a
social transition from male-to-female (MtF) or female-to-male (FtM). A review of the
literature has shown that concordance is higher in monozygotic than in dizygotic twins,
suggesting a genetic contribution to transsexualism.
Aim: The first part of the research focused on the cytogenetic and molecular analysis of the
karyotype in a transsexual population. The second part of the research focused on the
molecular analysis of four short tandem repeat polymorphisms (STRs): ERα-rs3138774,
ERβ-rs113770630, AR-rs193922933 and CYP19-rs60271534, and three single nucleotide
polymorphisms (SNPs): ERα-rs2234693, ERα-rs9340799 and CYP17-rs743572, in a
population of 974 transsexuals and 1327 controls recruited by the Gender Units from the
Clínic Hospital (Barcelona) and Carlos Haya Hospital (Málaga).
Material and Methods: The karyotype was analyzed using G-banding and a high-density
array (Affymetrix CytoScan™). Enzymatic digestion was used for one base
polymorphisms (SNPs), and capillary electrophoresis (3130 XL Genetic Analyzer) for
repeat polymorphisms. The frequency analyses were performed using Mann-Whitney or
Chi-square tests and the software SPSS® 23.0. In addition, a backward stepwise cross-
interaction analysis was performed by the software SNPStats. False positives were
controlled with the Bonferroni correction.
Results: We found an association of the estrogen receptors alpha and beta with
transsexualism. With respect to ERβ-rs113770630, FtMs showed a higher number of CA
repeats than the control population, associated to a strong susceptibility to transsexualism.
We also found an over transmission of the allele A and genotype A/A for ERα-rs9340799
polymorphism in the FtM population. We found that specific allele combinations of ERα-
rs9340799, ERβ-rs113770630 and AR-rs193922933 are involved in the MtF population.
Conclusion: Our data show that estrogen receptor alpha and beta, play a key role in human
brain differentiation
Joselyn Francis Cortés Cortés
20
RESUMEN (Adicional)
La Transexualidad (ICD-10), el desorden de la Identidad de Género (DSM-IV-TR), la
Disforia de Género (DSM-5) o la Incongruencia de Género (ICD-11), se caracterizan por
una marcada incongruencia entre la experiencia del género sentido y el sexo biológico. Los
transexuales son individuos que experimentan, o han llevado a cabo, la transición de
hombre a mujer (MtF) o de mujer a hombre (FtM), a través del tratamiento hormonal
cruzado y la cirugía genital. Su origen es multifactorial, estando implicados factores del
desarrollo neurológico, genéticos y epigenéticos, entre otros.
La presente investigación fue dividida en dos ejes centrales, la primera parte se centró en
el análisis citogenético del cariotipo en un grupo de 444 individuos transexuales MtF y 273
FtM. Además, el estudio molecular del cariotipo de 23 individuos (18 MtFs y 5 FtMs) fue
analizado mediante el microarray de alta densidad Affymetrix CytoScan™ high-density.
La segunda parte de la investigación se centró en el estudio de asociación de siete
polimorfismos genéticos, cuatro polimorfismos de repetición o STRs: ERα-rs3138774,
ERβ-rs113770630, AR-rs193922933 y CYP19-rs60271534, y tres polimorfismos de único
nucleótido o SNPs: ERα-rs2234693, ERα-rs9340799 y CYP17-rs743572, en una población
de 974 transexuales y 1.327 controles. Se analizó la implicación de dichos polimorfismos
en la base genética de la transexualidad, así como la interacción entre ellos. El análisis de
las frecuencias alélicas y genotípicas, el equilibrio Hardy-Weinberg, el desequilibrio de
ligamiento y el análisis de las interacciones cruzadas entre los polimorfismos, se realizó
con el software libre SNPStats (https://www.snpstats.net/start.htm), considerando un valor
significativo de p≤0,05. Dado que estos polimorfismos son independientes, se aplicó la
corrección de Bonferroni para comparaciones múltiples, corrigiendo el nivel de
significación en función del número de test realizados.
Resultados: Nuestros datos mostraron que no existe un cariotipo específico de la
transexualidad, aunque el porcentaje de alteraciones cromosómicas fue más elevado en esta
población (2,65%) que en la población general (0,53%; p<0,0001). El síndrome de
Klinefelter fue más frecuente en el grupo MtF (1,13%; p<0,0001) que en la población
general, mientras que el síndrome de Turner no estuvo presente en la población transexual
ABREVIATURAS
21
analizada (p<0,61). El estudio molecular del cariotipo mediante microarray reveló una
microduplicación de 572 Kb en la posición 17q21.31 que incluía el gen KANSL1 (MIM
612,452) en siete de los veintitrés individuos analizados. La microduplicación del gen
KANSL1 se asocia a un fenotipo muy variable, pero con problemas conductuales y pobre
interacción social como características comunes a todos ellos. Los individuos analizados
que mostraron una microduplicación 17q21.31 presentaban un fenotipo sin las evidencias
clínicas anteriormente citadas.
Respecto al estudio de asociación, el polimorfismo CYP17-rs743572 no mostró diferencias
estadísticamente significativas. Las frecuencias alélicas y genotípicas no difirieron
significativamente entre el grupo FtM y el grupo control femenino (χ2=0,631; p=0,43 y
χ2=2,767; p=0,25 respectivamente), ni entre el grupo MtF y el grupo control masculino
(χ2=0,105; p=0,74 y χ2=0,789; p=0,67 respectivamente).
El estudio del gen del receptor de estrógenos alfa (ESR1) se realizó mediante el análisis de
tres polimorfismos: ERα-rs3138774, ERα-rs2234693 y ERα-rs9340799, situados en la
región promotora del gen o en sus proximidades. El polimorfismo ERα-rs9340799 mostró
diferencias estadísticamente significativas en el grupo FtM respecto al grupo control de
mujeres, para las frecuencias alélicas y genotípicas (p=0,021 y p=0,020 respectivamente).
En concreto, detectamos una sobrerrepresentación del alelo A y del genotipo A/A en la
población FtM. En la población genéticamente femenina (FtM vs grupo control femenino),
el genotipo A/G fue asociado a un bajo riesgo de disforia (OR=0,34; 95% CI=0,16–0,74;
p=0,011), mientras que en la población genéticamente masculina, era el genotipo A/A el
que estaba asociado a un bajo riesgo de disforia (OR=0,39; 95% CI=0,17–0,89; p=0,008).
El hecho de que el genotipo A/G aparezca más frecuentemente ligado al grupo control
femenino que a la población FtM sugiere que el genotipo heterocigoto podría favorecer el
proceso de feminización cerebral, mientras que el genotipo A/A, más frecuente en la
población FtM que en la población control femenina, y menos frecuente en la población
MtF que en la población control masculina, parece indicar que este genotipo (A/A) podría
favorecer el proceso de masculinización cerebral.
En el cuarto trabajo se analizaron las posibles interacciones alélicas entre los
polimorfismos ERα-rs9340799, ERβ-rs113770630, AR-rs193922933 y CYP19-
Joselyn Francis Cortés Cortés
22
rs60271534, encontrando combinaciones alélicas implicadas en la base genética de la
Disforia de Género en la población MtF. Nuestros datos parecen indicar que el desarrollo
del género en humanos requiere de la implicación de los receptores de andrógenos y de
estrógenos (alfa y beta). Encontramos que existe una interacción inversa entre el ERβ y el
AR en la población MtF, de tal forma que si uno de los alelos es largo, el otro es corto, y
viceversa. Así mismo, ERβ y ERα están también implicados en la base genética de la
Disforia de Género en la población FtM, pero de forma independiente, no existiendo
interacción estadísticamente significativa entre ellos.
Conclusión: Nuestros datos indican que no existe un cariotipo específico para la DG,
aunque el porcentaje de alteraciones cromosómicas fue más elevado en esta población que
en la población general. Nuestros datos apoyan la implicación del receptor de estrógenos
(alfa y beta) en la base genética de la transexualidad en la población FtM (ERβ-
rs113770630 y ERα-rs9340799). Mientras que en la población MtF se encontraron
combinaciones alélicas específicas de los polimorfismos ERα-rs9340799, ERβ-
rs113770630 y AR-rs193922933 estadísticamente significativas frente a la población
general. Nuestros datos indican que los receptores de estrógenos alfa y beta, juegan un
papel clave en la diferenciación sexual del cerebro en humanos.
LISTA DE FIGURAS
23
Lista de Figuras
Figura 1. Diferenciación sexual en humanos. ........................................................................ 44
Figura 2. Modelo de organización/activación de los procesos de diferenciación sexual. ..... 46
Figura 3. Clasificación de los SNPs de acuerdo a su localización en el cromosoma. ........... 62
Figura 4. Esquema del gen ESR1 y su proteína. .................................................................... 64
Figura 5. Esquema del gen ESR2 y su proteína. .................................................................... 66
Figura 6. Esquema del gen AR y su proteína. ........................................................................ 69
Figura 7. Esquema del gen CYP19A1 y su proteína. ............................................................. 72
Figura 8. Esquema del gen CYP17A1 y su proteína. ............................................................. 74
Figura 9. Protocolo del microarray de alta densidad CytoScan™ HD diseñado por la casa
comercial Applied Biosystems™. .......................................................................................... 88
Figura 10. Representación de los niveles de expresión del gen KANSL1. ........................... 138
Figura 11. Representación de los niveles de expresión diferencial del gen KANSL1 en
hombres y mujeres, en tejido cerebral. ................................................................................. 139
Figura 12. Representación de las frecuencias alélicas del alelo A2 del polimorfismo CYP17-
rs743572 en una población austríaca (Bentz et al., 2008) y española (Fernández et al., 2016)
con Disforia de Género y sus grupos control. ...................................................................... 143
Figura 13. Esquema de selección de trabajos utilizado en la revisión bibliográfica del gen
CYP17A1. ............................................................................................................................. 145
Figura 14. Representación de los niveles de expresión de los genes ESR1 y ESR2, en tejido
cerebral en humanos. ............................................................................................................ 147
Figura 15. Modelo hipotético de la Disforia de Género. ..................................................... 155
Figura 16. Representación de los niveles de expresión de los genes AR, ESR1 y ESR2, en
tejido cerebral en humanos. .................................................................................................. 156
Joselyn Francis Cortés Cortés
24
Lista de Tablas
Tabla 1. Comparación de las dos últimas versiones del DSM para la Disforia de Género ... 31
Tabla 2. Comparación de las dos últimas versiones del ICD para la Disforia de Género. .... 33
Tabla 3. Prevalencia y razón de sexos de la Disforia de Género en diferentes países. ......... 41
Tabla 4. Condiciones de las reacciones de amplificación por PCR que se emplearon en los
estudios moleculares. ............................................................................................................. 90
INTRODUCCIÓN
27
1.1. Concepto de Disforia de Género
“La identidad de género es el sentimiento o convicción profunda e inherente que tiene una
persona de ser hombre, mujer, o de un género alternativo (pangénero, bigénero, agénero,
género fluido, tercer género, no conformes con las categorías de género binario hombre-
mujer, u otros nuevos términos que cambian rápidamente)” (Gómez-Gil, 2019). La
identidad de género, al contrario que el sexo biológico, no tiene una naturaleza dicotómica
(hombre o mujer) sino que es un continuum (Polderman, Kreukels, Irwig, Beach, Chan,
Derks, Esteva, Ehrenfeld, Heijer, Posthuma, Tishelman, Davis, & International Gender
Diversity Genomics Consortium, 2018).
Para entender el concepto de disforia de género tenemos que partir de que la identidad de
género en la mayoría de los individuos está en concordancia con su aspecto físico, con su
anatomía y biología. Pero existen individuos cuya identidad de género no corresponde con
sus características sexuales primarias o secundarias. Estas personas pueden ser englobadas
bajo el término de “minorías de género” (Gómez-Gil, 2019). En este grupo se puede incluir
a las personas cuya identidad y expresión de género difiere de las normas tradicionales,
sociales y culturales, y a las personas que se definen como “transgénero”.
El adjetivo Transgénero describe a un amplio espectro de individuos cuya identidad de
género difiere del sexo que les fue asignado en el nacimiento. En contraposición, el
término cisgénero hace referencia a las personas cuya identidad de género sí que
corresponde con el sexo asignado en el nacimiento.
Entre las personas transgénero, el grado de discordancia puede ser muy diverso en
intensidad, duración, o grado de repercusión emocional (Gómez-Gil, 2019). Cuando el
grado de discordancia es leve, el malestar puede ser leve o estar ausente, y no precisar
atención clínica. Pero cuando el grado de discordancia es mayor, puede provocar un
malestar significativo. A este malestar que aparece cuando los deseos de tratamiento
hormonal o reasignación no son posibles, se denomina disforia de género.
Joselyn Francis Cortés Cortés
28
1.2. Etiología
La etiología de la disforia de género es desconocida. Una de las hipótesis actuales más
respaldada por los últimos hallazgos científicos es que la disforia de género se origina por
una discordancia entre la diferenciación sexual del cerebro y la del resto de estructuras
anatómicas, que tiene lugar durante el desarrollo fetal y los primeros años de vida (Gómez-
Gil, 2019; Guillamon, Junqué, Gómez-Gil, 2016). Para entender esta hipótesis es
importante distinguir entre los conceptos de “sexo” y “género”. Aunque coloquialmente la
palabra “sexo” suele hacer referencia a las características anatómicas, el concepto es
mucho más amplio. El sexo de un individuo está definido por diversos parámetros:
cromosómico o genético, gonadal o de genitales internos, hormonal, de genitales externos,
fenotípico, psicológico (identidad de género), de asignación en el nacimiento y de
educación o crianza (Gómez-Gil, 2019). Habitualmente, en una misma persona, todos estos
parámetros coinciden en un mismo sentido, masculino o femenino. Cuando en un
individuo se produce una discordancia entre ellos, pueden darse casos definidos como
intersexos (discordancia entre los cuatro primeros parámetros), y de manera similar, casos
de disforia de género (cuando la discordancia se produce entre el sexo psicológico (género
o identidad de género) y el resto de los parámetros que determinan el sexo (Gómez-Gil,
2019; Gómez-Gil & Esteva de Antonio, 2006).
1.3.Antecedentes
El Transexualismo (World Health Organization, 1993), Disforia de género en adultos
(American Psychiatric Association, 2013) o Incongruencia de género (Drescher, Cohen-
Kettenis, & Winter, 2012; World Health Organization, 2018), son diferentes términos que
definen “una forma extrema de malestar con el sexo genético”. Uno de los primeros en
definir el “Transexualismo” fue el endocrinólogo alemán, Harry Benjamín en 1954, quien
puntualizaba que los “transexuales” son aquellas personas que sienten que pertenecen al
otro sexo y que además, quieren ser, y funcionar, como miembros del sexo opuesto. Para
ellos sus órganos sexuales (primarios y secundarios) deben ser cambiados por el cirujano
(Benjamin, 1967). Esta fuerte necesidad de querer cambiar de sexo a través de la cirugía,
es lo que consideró Stoller un criterio diferenciador indispensable (Stoller, 1968).
INTRODUCCIÓN
29
Con los años, tanto el término como los criterios diagnósticos han ido cambiando conforme
ha avanzado la sociedad y los hallazgos científicos. Sin embargo socialmente no existe una
distinción clara y extendida sobre los términos “género” y “sexo”. Esto puede deberse a las
diferentes visiones epistemológicas del tema desde los diversos campos de estudio y la
implicación social. Es esta última, la que ha tenido un protagonismo importante en los
últimos años, debido a la insistente demanda de las libertades sexuales y el respeto de las
identidades de género, así como el reconocimiento de los derechos civiles y sanitarios de
las personas transgénero.
El objetivo de estos movimientos sociales es terminar con la discriminación y la
estigmatización asociada al diagnóstico a través de la retirada de este colectivo de los dos
Manuales de Salud vigentes (DSM-5 y ICD-111). Por tanto, el debate se centra en el
derecho a acceder a una sanidad gratuita y de calidad sin necesidad del diagnóstico
psiquiátrico. Hasta el momento, una posible eliminación de la Disforia de Género de los
manuales diagnósticos podría derivar en la falta de acceso o retirada de la atención médica
y quirúrgica que hasta ahora ofrecen los servicios sanitarios a las personas con Disforia de
Género (Drescher, 2014).
En respuesta a estas demandas, los organismos competentes han conseguido establecer un
cambio a nivel terminológico y descriptivo, ya que resulta difícil conciliar una narrativa de
normalidad (sin estigma asociado al fenómeno) frente a la de patología (el fenómeno
recibe un diagnóstico, un código de diagnóstico y facilita el acceso sanitario) (Drescher,
2014; Drescher et al., 2012), pero que de alguna manera busca eliminar la connotación de
“trastorno”.
1 ICD-11 (International Classification of Diseases). Versión en español, CIE-11 (Clasificación Internacional de Enfermedades).
Joselyn Francis Cortés Cortés
30
Más allá de la controversia social, es evidente que el problema es complejo y como tal,
desde diferentes áreas del conocimiento se genera la necesidad de entender la naturaleza
del fenómeno y la manera de abordarlo.
Actualmente una de las distinciones aceptadas para describir las características asociadas a
la Disforia de Género proviene de las siglas inglesas FtM y MtF:
La persona transexual FtM (female to male), hombre transexual o Transmen, posee un
sexo cromosómico XX y un sexo gonadal femenino (ovarios). Fisiológicamente es
mujer, pero su identidad es masculina. Tiene una marcada identificación con el sexo
masculino en juegos de rol, sueños y fantasías. No suele mostrar interés por las
aficiones y/o actividades que se basan en estereotipos femeninos y lucha fuertemente
por adquirir el aspecto físico de varón (American Psychiatric Association, 2013;
Gómez-Gil, Esteva de Antonio & Berguero, 2006).
La persona transexual MtF (male to female), mujer transexual o Transfemale, posee
un sexo cromosómico XY y un sexo gonadal masculino (testículos). Fisiológicamente
es varón, pero su identidad es femenina. Tiene una marcada identificación con el sexo
femenino en roles sociales. Muestra interés por las aficiones y/o actividades basadas
en estereotipos femeninos, y manifiesta un fuerte deseo por adquirir las características
sexuales primarias y secundarias del sexo femenino (American Psychiatric
Association, 2013; Gómez-Gil et al., 2006).
1.4. Clasificación diagnóstica
En su última versión, el DSM-5 hace una distinción clara respecto a los criterios
diagnósticos de la Disforia de Género en niños y la Disforia de Género en adolescentes y
adultos (American Psychiatric Association, 2013). La disforia suele manifestarse de
manera distinta en los diferentes grupos de edad, y el tiempo de aparición de los primeros
síntomas también varía (Gooren, 2006; Nieder et al., 2011). De momento, uno de los
criterios comunes entre estas dos categorías es la “incongruencia entre el sexo natal y el
sexo que expresa” (American Psychiatric Association, 2013).
INTRODUCCIÓN
31
El DSM-5 incorpora un cambio a nivel terminológico y descriptivo, tal y como se observa
en la Tabla 1, donde el “Trastorno de identidad de género” pasa a denominarse “Disforia
de Género”. Este nuevo término tiene por finalidad centrar el diagnóstico en el “malestar
que acompaña la incongruencia entre el género expresado y el asignado” y no en la
identidad per se (American Psychiatric Association, 2013).
Tabla 1.
Comparación de las dos últimas versiones del DSM para la Disforia de Género
DSM-IV-TR (APA, 2002) DSM-5 (APA, 2013)
Denominación Trastorno de la Identidad de Género Disforia de Género
Criterios diagnósticos en función de la edad
Criterios comunes para niños, adolescentes y adultos (indicadores propios para la infancia )
Criterios diagnósticos propios para niños, adolescentes y adultos
Definición Identificación persistente con el otro sexo (énfasis en la identidad per se)
Incongruencia entre el género experimentado y el género asignado (énfasis en el género)
Subtipos Basados en la orientación sexual Se retiran los subtipos, porque ya no se consideran clínicamente útiles
Criterios de exclusión No coexiste con enfermedad intersexual
No se excluyen las personas con trastorno de diferenciación sexual. Si existe, se debe especificar
Postransición No se específica Especificar si ha hecho la transición a una vida de tiempo completo y si se ha sometido, o se está preparando, para una intervención o tratamiento médico de cambio de sexo
Nota: Tabla adaptada de “La Disforia de Género en la infancia en las clasificaciones diagnósticas” (Rodríguez, Mora, Díaz, &
GIDSEEN, 2014)
Finalmente y, después de los consensos internacionales, los criterios diagnósticos del
DSM-5 para la Disforia de Género en adolescentes y adultos (302.85-F84.1) (American
Psychiatric Association, 2013) quedan definidos de la siguiente manera:
A. Una marcada incongruencia entre el sexo que uno siente o expresa y el que se le
asigna, de una duración mínima de seis meses, manifestada por un mínimo de dos de las
características siguientes:
Joselyn Francis Cortés Cortés
32
1. Una marcada incongruencia entre el sexo que uno siente o expresa y sus
caracteres sexuales primarios o secundarios (o en los adolescentes jóvenes, los
caracteres sexuales secundarios previstos).
2. Un fuerte deseo por desprenderse de los caracteres sexuales propios primarios o
secundarios, a causa de una marcada incongruencia con el sexo que se siente o
expresa (o en los adolescentes jóvenes, un deseo de impedir el desarrollo de los
caracteres sexuales secundarios previstos).
3. Un fuerte deseo por poseer los caracteres sexuales, tanto primarios como
secundarios, correspondientes al sexo opuesto.
4. Un fuerte deseo de ser del otro sexo (o de un sexo alternativo distinto del que se le
asigna).
5. Un fuerte deseo de ser tratado como del otro sexo (o de un sexo alternativo
distinto del que se le asigna).
6. Una fuerte convicción de que uno tiene los sentimientos y reacciones típicos del
otro sexo (o de un sexo alternativo distinto del que se le asigna).
B. El problema va asociado a un malestar clínicamente significativo o a un deterioro en lo
social, laboral u otras áreas importantes del funcionamiento” (American Psychiatric
Association, 2013).
Por otra parte, la OMS (Organización Mundial de la Salud) no elimina la transexualidad de
su reciente Manual de Codificación (World Health Organization, 2018) (Tabla 2), pero la
cambia de apartado y de denominación. La “transexualidad” pasa a formar parte de las
“condiciones relativas a la salud sexual”, cambiando su nombre a "incongruencia de
género". Con estos cambios, la OMS ha querido alejarse de la connotación de trastorno,
pero sin dejar de reconocerla como una situación que requiere de los servicios sanitarios,
de esta forma se garantiza la atención de las personas transexuales con políticas sanitarias
públicas que, de otra forma, no podrían ser cubiertas.
INTRODUCCIÓN
33
Tabla 2.
Comparación de las dos últimas versiones del ICD para la Disforia de Género
ICD-10 (WHO, 1992) ICD-11 (WHO, 2018)
Clasificación Trastornos mentales y del comportamiento.
Condiciones relativas a la salud sexual.
Denominación Transexualismo. Incongruencia de Género.
Criterios diagnósticos en función de la edad
Criterios diagnósticos diferentes para cada grupo (niños, adolescentes y adultos).
Criterios diagnósticos diferentes para cada grupo (niños, adolescentes y adultos) y no especificado.
Definición
Deseo de vivir y ser aceptado como miembro del sexo opuesto. En adultos, va acompañado de un fuerte rechazo al propio cuerpo y el deseo de modificarlo.
Incongruencia marcada y persistente entre el sexo experimentado y el sexo asignado, que a menudo conduce a un deseo de "transición", para vivir y ser aceptado como persona del otro género.
Subtipos Independiente de los trastornos de la inclinación sexual y de las disfunciones sexuales.
Independiente de las disfunciones sexuales y trastornos relacionados con dolencias sexuales.
Criterios de exclusión No existencia de otro trastorno mental (esquizofrenia) o anomalía cromosómica.
Trastornos Parafílicos.
Nota: Tabla adaptada de “La disforia de Género en la infancia en las clasificaciones diagnósticas” (Rodríguez et al., 2014)
1.5.Inicio de la Disforia de Género
Los estudios sobre el desarrollo de la Disforia de Género reconocen una tipología centrada
en la edad de aparición de los primeros síntomas. Investigadores como Lawrence (2010b)
señalan dos trayectorias de desarrollo claves: aparición temprana y aparición tardía. El
DSM también reconoce o acepta esta distinción en cuanto a la edad de aparición de las
primeras manifestaciones de la disforia:
- Aparición temprana (early onset): Se inicia en la primera infancia, continúa en la
adolescencia y persiste en la etapa adulta.
- Aparición tardía (no-early onset): Comienza en torno a la etapa puberal o incluso más
tarde.
Joselyn Francis Cortés Cortés
34
Las personas que presentan una aparición temprana de la Disforia de Género (early onset)
suelen manifestar alteraciones en su identidad de género desde la infancia. Es la más
frecuente y tiene un buen pronóstico en lo que respecta al tratamiento de reasignación de
sexo, siendo bajo el riesgo de remisión. En España más del 90% de los pacientes atendidos
en las Unidades de Identidad de Género de Málaga y Barcelona se incluyen en esta
categoría (Bergero, Cano, Giraldo, Esteva de Antonio, Ortega, Gómez, & Gorneman,
2004; Gómez-Gil et al., 2011, 2006).
Por otra parte, las personas que presentan una aparición más tardía de la Disforia de
Género (no-early onset), pueden mostrar una mayor ambivalencia en cuanto a la cirugía de
reasignación de sexo. Dentro de este grupo se ha observado una mayor frecuencia de
remisiones espontáneas (Esteva de Antonio et al., 2006; Gómez-Gil, 2006; Gómez-Gil et
al., 2006). Tanto estudios nacionales como internacionales señalan que la edad media de
solicitud de cambio de sexo suele encontrarse entre los 20 y los 25 años (Bergero, Cano,
Esteva de Antonio, Giraldo, Gornemann, & Alvarez, 2001; Gómez-Gil et al., 2006;
Landén, Wålinder, & Lundström, 1998; Tsoi, 1993; Van Kesteren, Gooren, & Megens,
1996).
1.6. Orientación sexual en la población con Disforia de Género
La orientación sexual en las personas con Disforia de Género es la misma que para el resto
de la población general, es decir, podemos encontrar personas heterosexuales,
homosexuales, bisexuales, asexuales (Gómez-Gil, 2006; 2019). En los últimos años han
surgido nuevas tendencias sexuales, siendo las más relevantes los pansexuales (personas
que sienten que son sexualmente, emocionalmente o espiritualmente capaces de
enamorarse de todos los géneros), demisexuales (personas que sienten atracción sexual
exclusivamente hacia personas con las que previamente han desarrollado lazos
emocionales, estables y de cierta duración) y los antrosexuales (personas que desconocen
su orientación sexual, pero existe una flexibilidad sexual que les permite desarrollar
vínculos amorosos con cualquier persona de cualquier género e identidad) (Colmenero,
2018). Sin embargo, los estudios sociodemográficos realizados hasta la fecha (Esteva de
Antonio et al., 2006; Gómez-Gil et al., 2009; Guzmán et al., 2016; Nadales, Rodríguez, &
INTRODUCCIÓN
35
Mora, 2016; Rodríguez & García, 2012) no aportan datos de estas nuevas tendencias en la
población con Disforia de Género.
En la población general, la mayoría de los hombres son atraídos sexualmente por mujeres
(ginefilia) y en el caso de las mujeres la atracción sexual suele ser hacia los hombres
(androfilia) (Hines, 2011; Hines, Brook, & Conway, 2004). En cuanto a la población
transexual, ambos constructos aparecen definidos y se aplican para la atracción sexual o
excitación sexual, más allá del sexo biólogo, es decir, las personas transexuales MtF
pueden ser androfílicas o ginefílicas, y lo mismo ocurre con las personas FtM (American
Psychiatric Association, 2013).
Estos términos surgen en 1989 cuando Ray Blanchard propone dos taxonomías dentro de
la expresión sexual en las personas MtF, señalando que esta población era más heterogénea
que la población FtM (Blanchard, 1989; Cuypere et al., 1995; Gómez-Gil, Trilla,
Salamero, Godás, & Valdés, 2009; Lawrence, 2010b; Smith, Goozen, Kuiper, & Cohen-
Kettenis, 2005a). Según Blanchard, los transexuales MtF se pueden sentir atraídos
sexualmente por mujeres (ginefílicos), por varones (androfílicos), por ambos sexos
(bisexuales) o ningún sexo (analoerótico).
En el caso de los individuos MtF androfílicos se sienten atraídos exclusivamente por los
hombres, suelen tener comportamientos femeninos desde la infancia, presentan muchas
dificultades para adaptarse al rol masculino y tienden a presentarse a edades muy
tempranas para el tratamiento de su disforia (Blanchard, 1988, 1989). Sin embargo, esta
clasificación no ha estado exenta de polémica y existe desacuerdo entre algunos
profesionales, ya que en esta tipología, la identidad de género se reduce a una mera
cuestión de atracción (Lawrence, 2010a, 2011; Nuttbrock, Bockting, Rosenblum, Mason,
& Hwahng, 2010; Veale, 2014). En este sentido, algunos estudios sugieren que no es raro
que los individuos MtF ginefílicos se presenten como androfílicos (Fisher et al., 2013) para
aumentar sus posibilidades de reasignación de sexo mediante cirugía (Gómez-Gil et al.,
2009).
Joselyn Francis Cortés Cortés
36
Cabe señalar que tanto estudios nacionales (Gómez-Gil et al., 2006, 2009; Nadales et al.,
2016) como internacionales (Tsoi, 1992) coinciden en que la orientación es principalmente
hacia una pareja del mismo sexo biológico, con excepciones como en la población de
Bélgica (De Cuypere et al., 2007). En el caso del grupo MtF las personas muestran desde
edades tempranas (infancia y adolescencia) tendencias y comportamientos femeninos. En
algunos casos, ello les conduce a experimentar con más frecuencia situaciones de violencia
de género (Guzmán et al., 2016).
A pesar de que la orientación sexual es una variable a tener en cuenta en los estudios
clínicos y sociodemográficos, en concreto el DSM-5 ya no la tiene en cuenta para el
diagnóstico de Disforia de Género en adolescentes y adultos, pues considera que no aporta
aspectos clínicos útiles de cara a la especificación clínica de la Disforia de Género
(American Psychiatric Association, 2013).
1.7. Estudio sociodemográfico de la Disforia de Género
La investigación centrada en el estudio de variables sociodemográficas en la población
transexual sugiere muchas similitudes entre países, pero también algunas variaciones. Estas
pueden deberse al contexto socio-cultural del país o a las características propias de las
personas transexuales.
Los estudios de países europeos y Singapur (Tsoi, 1990, 1992) que investigan la edad de
solicitud de la cirugía de reasignación de sexo, muestran variaciones entre países, así como
entre las poblaciones MtF y FtM. En general, estos estudios muestran que en individuos
MtF la solicitud se realiza entre los 25 y 37 años (Okabe, 2008; Rakic, Starcevic, Maric, &
Kelin, 1996; Smith, Van Goozen, Kuiper, & Cohen-Kettenis, 2005b), mientras que los
individuos FtM son más jóvenes, y realizan la solicitud de cirugía entre los 20 y 30 años
(Burns & Farrell, 1990; Esteva de Antonio et al., 2001, 2002; Smith et al., 2005b; Van
Kesteren et al., 1996). En España, algunos estudios arrojaron cifras similares a las del resto
de Europa (media de 29,8 años para el grupo MtF y 26,34 año para el grupo FtM) (Bergero
et al., 2001; Gómez-Gil, 2006), siendo el grupo FtM el que demanda la atención quirúrgica
a más temprana edad. Según la Unidad de Identidad de Género del Hospital Clínic de
INTRODUCCIÓN
37
Barcelona el porcentaje de personas que solicitan atención antes de los 18 años es escaso,
aunque con tendencia a incrementarse (Gómez-Gil et al., 2011).
Los estudios a nivel europeo encuentran en su mayoría una razón de sexos de dos a tres
veces superior para la población MtF respecto a la población FtM (Hoenig & Kenna, 1974;
Tsoi, 1988; Wålinder, 1968; Weitze & Osburg, 1996). También los estudios españoles
arrojan que la razón de sexos sigue siendo superior para la población MtF (Nadales et al.,
2016). Además, con el tiempo se puede apreciar una tendencia al aumento de solicitudes
quirúrgicas para el grupo MtF (Rodríguez & García, 2012). Estos datos se ven respaldados
por los obtenidos en las Unidades de Identidad de Género de Málaga (Esteva de Antonio et
al., 2006) y de Barcelona (Gómez-Gil et al., 2006; 2011).
En cuanto al matrimonio, relaciones de pareja y crianza de los hijos, la investigación
sugiere que las personas con Disforia de Género presentan mayores dificultades para
establecer y mantener una relación de pareja y relaciones íntimas (De Cuypere et al., 2007;
Gómez-Gil, Zubiaurre-Elorza, Esteva de Antonio, Guillamon, & Salamero, 2014; Landén
et al., 1998; Van Kesteren et al., 1996). En relación a la variable “estado civil”, tanto el
grupo MtF como el FtM, son predominantemente “solteros” (Nadales et al., 2016). En
cuanto al matrimonio y la paternidad son significativamente más comunes entre los
individuos MtF en comparación con los individuos FtM. Tener hijos biológicos varía desde
aproximadamente el 2% (Gómez-Gil, Trilla, Salamero, Godás, & Valdés, 2009) al 10%
(Dixen, Maddever, Van Maasdam, & Edwards, 1984) en poblaciones FtM, y de 0% (Tsoi,
Kok, & Long, 1977) al 57% en poblaciones MtF (Fisher et al., 2013; Lawrence, 2005). Por
otra parte, se ha encontrado que las personas FtM tienen relaciones más estables en
comparación con las personas MtF (De Cuypere et al., 2007; Dixen et al., 1984; Gómez-
Gil et al., 2014; Landén et al., 1998; Van Kesteren et al., 1996).
Los estudios sociodemográficos señalan que la orientación sexual predominante en las
personas con Disforia de Género es heterosexual respecto a su género (Bergero et al.,
2001; Gómez-Gil, 2006; Nadales et al., 2016). Las investigaciones han demostrado que la
población FtM reporta más frecuentemente atracción sexual hacia personas del otro género
Joselyn Francis Cortés Cortés
38
en comparación con el grupo MtF (De Cuypere, Jannes, & Rubens, 1995; Gómez-Gil et
al., 2009; Landén et al., 1998; Smith et al., 2005a).
Respecto a las diferencias educativas entre las poblaciones MtF y FtM existen ciertas
discrepancias. Algunos estudios indican que las personas FtM alcanzan un nivel educativo
más alto en comparación con las personas MtF (De Cuypere et al., 1995). Otros estudios
no encuentran diferencias significativas cuando comparan ambos grupos (Herman-
Jeglińska, Grabowska, & Dulko, 2002). En cuanto a los estudios españoles, mientras
algunos coinciden con estos resultados (Gómez-Gil et al., 2006; Guzmán et al., 2016;
Rodríguez & García, 2012), otros reportan un incremento en el nivel educativo de la
población MtF (Nadales et al., 2016). En general, la población transexual cursa
prioritariamente estudios primarios y secundarios y, en menor medida, estudios
universitarios (Nadales et al., 2016).
Tanto estudios españoles (Bergero et al., 2001; Gómez-Gil, 2006) como internacionales
(Cole, O’boyle, Emory, & Meyer, 1997) señalan que las personas con Disforia de Género
desempeñan empleos de baja cualificación, y que existe una tendencia de la población FtM
a tener una mejor integración en el ámbito social y laboral (Dixen et al., 1984, 1992). El
grupo MtF suele experimentar situaciones más extremas producto de la discriminación y
exclusión social. Algunas personas se han visto en la necesidad de trabajar en empleos más
precarios y relacionados con la explotación sexual (Gómez-Gil, 2006; Sörensen & Hertoft,
1980).
En cuanto a la variable nacionalidad, uno de los últimos estudios señala una proporción
mayor de solicitantes de cirugía para las personas españolas (75%), respecto a la población
extranjera (25%), indicando una procedencia mayoritariamente Latinoamericana para este
último grupo (Nadales et al., 2016). Esteva de Antonio et al., (2012) señalan que esta
disminución en la demanda por parte de la población extranjera puede deberse al descenso
de la inmigración y a una mayor cobertura por parte del sistema sanitario nacional (Esteva
de Antonio et al., 2012). En otros países europeos se ha ido incrementando la población
extranjera que demanda atención en las Unidades de Identidad de Género (Olsson &
Möller, 2003; Van Kesteren, et al., 1996).
INTRODUCCIÓN
39
Por otra parte, el profundo malestar con el sexo biológico genera en muchas ocasiones una
fuerte necesidad de adecuación con el rol social, para lo cual muchas personas transexuales
deciden comenzar el tratamiento hormonal cruzado y la cirugía de reasignación de sexo
(Moreno, Esteva de Antonio, & GIDSEEN, 2012). En algunos casos, los primeros
síntomas de disforia aparecen a edades tempranas, provocando mucha incertidumbre. Las
personas con Disforia de Género se sienten diferentes a los demás, sienten una profunda
insatisfacción con su cuerpo lo que les lleva a buscar ayuda (Sieso, 2006); ello puede ir
acompañado en muchos casos de comorbilidades de tipo psicológico, debido al fuerte
distrés o sufrimiento que ocasiona la no aceptación del sexo biológico. Tanto los niños/as
como adolescentes, suelen presentar problemas emocionales y conductuales, derivados en
trastorno de ansiedad, trastornos disruptivos y trastornos depresivos. Estos problemas se
relacionan con la falta de aceptación por parte de los demás, llegando incluso al
ostracismo. En la etapa adulta pueden persistir problemas de ansiedad, trastornos
depresivos y fobia social (American Psychiatric Association, 2013; Gómez-Gil, 2006).
El abuso de alcohol y otras sustancias es un problema que suele afectar más a la población
MtF que a la población FtM (Gómez-Gil et., 2009). Haraldsen & Dahl (2000) encontraron
una mayor prevalencia de abuso de sustancias, trastornos de ansiedad y depresión mayor
(Haraldsen & Dahl, 2000). Según el estudio realizado por Esteva de Antonio et al., (2006)
el 82% de los jóvenes transexuales muestra una conducta suicida, desarrollando en muchos
casos depresión o ansiedad. Esta conducta se debe en algunos casos a situaciones de
maltrato físico y/o psicológico (Esteva de Antonio et al., 2006).
1.8. Estimación de la prevalencia, incidencia y razón de sexos de la Disforia de
Género
Los estudios sobre prevalencia e incidencia de la Disforia de Género son escasos y varían
de un país a otro (Tabla 3). Esta variación puede explicarse por variables metodológicas,
clínicas (diagnóstico), procedencia o edad, entre otros (Arcelus, Bouman, Van Den
Noortgate, Claes, Witcomb, & Fernandez, 2015). Actualmente, se desconoce la
prevalencia de la transexualidad en muchos países, esto puede deberse a que no todos los
estados cuentan con políticas sanitarias adecuadas para atender las necesidades asociadas a
Joselyn Francis Cortés Cortés
40
la Disforia de Género. Los datos que se conocen son aportados por países en los que la
población con Disforia de Género tiene un mejor acceso a los recursos sanitarios o una
mayor cobertura del tratamiento, como es el caso de Holanda, España, Inglaterra y
Alemania. Algunos autores resaltan que el clima social y cultural puede favorecer o
dificultar la visita de las personas a los centros sanitarios, repercutiendo en el número de
casos registrados (Ross, Wålinder, Lundström, & Thuwe, 1981). Algunos estudios
coinciden en que las cifran están subestimadas porque la mayor parte de los datos se
obtienen de los registros de las Unidades especializadas, que sólo consideran a las personas
que son atendidas para el tratamiento hormonal y quirúrgico (Arcelus et al., 2015), lo que
sugiere que una parte de la población transexual no está registrada (Wilson, Sharp, & Carr,
1999). No existen datos epidemiológicos fiables sobre la Disforia de Género en la infancia
(Gómez-Gil, 2019).
Los primeros estudios sobre prevalencia arrojaron cifras de 1/100.000 habitantes para la
población MtF y 1/400.000 para la población FtM (Pauly, 1968). En Irlanda, las últimas
cifras sobre prevalencia indican 1/10.154 para la población MtF y 1/27.668 para la
población FtM (Judge, O’Donovan, Callaghan, Gaoatswe, & O’Shea, 2014). El incremento
en la prevalencia podría deberse a una mayor aceptación social y a la evolución del
tratamiento de la Disforia de Género. Holanda es uno de los países que más datos sobre
prevalencia aporta (Tabla 3), observándose un incremento de la población transgénero en
los últimos años y una razón de sexo superior para la población MtF respecto a la FtM
(Bakker, van Kesteren, Gooren, & Bezemer, 1993; Eklund, Gooren, & Bezemer, 1988;
Kreukels, Haraldsen, De Cuypere, Richter, Gijs, & Cohen-Kettenis, 2012; Smith et al.,
2005b; Van Kesteren et al., 1996).
Los datos indican que existe una leve predominancia del grupo MtF, a excepción de
algunos estudios que señalan una predominancia del grupo FtM respecto al grupo MtF
(Dulko & Imielinski, 2004; Godlewski, 1988); sin embargo cabe destacar que la muestra
en estos estudios fue escasa. Otro estudio realizado por el grupo de Kreukels (2012) mostró
que Alemania y Noruega también presentan una leve predominancia para el grupo FtM
(Kreukels et al., 2012). En España la prevalencia sigue siendo mayor para la población
MtF (Esteva de Antonio et al., 2006; Gómez-Gil et al., 2006; Gómez-Gil et al., 2009).
INTRODUCCIÓN
41
Tabla 3.
Prevalencia y razón de sexos de la Disforia de Género en diferentes países
Autor País Prevalencia en población
MtF
Prevalencia en población
FtM
Ratio MtF/FtM
Weitze & Osburg (1996) Alemania 1/42.000 1/104.000 2,5/1 Garrels et al. (2000) “ -- -- 1,9/1 Meyer zu Hoberge (2009) “ 1/18.250 1/32.050 1,8/1 Kreukels et al. (2012) “ -- -- 1/1,3 Ross et al. (1981) Australia 1/24.000 1/150.000 6,3/1 De Cuypere et al. (2007) Bélgica 1/12.900 1/33.800 2,6/1 Kreukels et al. (2012) “ -- -- 2,5/1 De Cuypere et al., (1995) “ -- -- 1,7/1 Blanchard et al. (1987) Canadá -- -- 1,7/1 Sørensen & Hertoft (1982) Dinamarca -- -- 3,6/1 Sørensen & Hertoft (1980) “ -- -- 2,8/1 Simonsen et al., (2015) “ -- -- 1,16/1 Wilson et al., (1999) Escocia 1/7.400 1/31.200 4,2/1 Wilson et al., (1999) “ 1/12.800 1/52.100 4,1/1 Gómez-Gil et al., (2006) España 1/21.031 1/48.096 2,3/1 Gómez-Gil et al., (2009) “ -- -- 2,24/1 Esteva de Antonio et al., (2006) “ 1/9.685 1/15.456 1,6/1 Pimenoff (2006) Finlandia -- -- 1/1 Eklund et al., (1988) Holanda 1/45.000 1/200.000 4,4/1 Eklund et al., (1988) “ 1/18.000 1/54.000 3/1 Van Kesteren et al., (1996) “ 1/11.900 1/30.400 2,6/1 Bakker et al., (1993) “ 1/11.900 1/30.400 2,6/1 Kreukels et al., (2012) “ -- -- 2,3/1 Smith et al., (2005b) “ -- -- 1,5/1 Hoenig & Kenna (1974) Inglaterra 1/30.000 1/100.000 3,3/1 Ahmadzad-Asl et al., (2010) Irán 1/145.000 1/136.000 0,9/1 Hedjazi et al., (2013) “ -- -- 0,7/1 O´Gorman (1982) Irlanda del Norte 1/35.000 1/100.000 2,9/1 Judge et al., (2014) Irlanda 1/10.154 1/27.668 2,7/1 Baba et al., (2011) Japón 1/25.200 1/12.200 0,5/1 Kreukels et al., (2012) Noruega -- -- 1/1,12 Veale (2008) Nueva Zelanda 1/3.639 1/22.714 6,2/1 Dulko & Imielinski (2004) Polonia -- -- 1/3,4 Godlewski (1988) “ -- -- 1/5,5 Tsoi (1988) Singapur 1/2.900 1/8.300 2,9/1 Wålinder (1968) Suecia 1/37.000 1/103.000 2,8/1 Olsson & Möller (2003) “ -- -- 1,9/1 Landen et al., (1996) “ -- -- 1,4/1 Wålinder (1971) “ -- -- 1/1 Dhejne et al., (2014) “ 1/13.120 1/7.750 0,6/1 Pauly (1968) USA 1/100.000 1/400.000 4/1 Dixen et al., (1984) “ -- -- 1,7/1
Estudios de prevalencia ordenados por país (alfabéticamente) y ratio MtF/FtM, según las publicaciones existentes hasta el momento.
MtF=Male to Female; FtM=Female to Male.
Joselyn Francis Cortés Cortés
42
1.9. Diferenciación sexual del cerebro
1.9.1. Dimorfismo sexual
De manera general el dimorfismo sexual hace referencia a las diferencias morfológicas,
fisiológicas y conductuales que se observan entre machos y hembras de cualquier especie.
Las hembras y machos de casi todas las especies presentan diferencias en estos tres
sistemas, por tanto, algunas de estas diferencias constituyen la base de conductas
características de cada sexo, como son las reproductoras (McCarthy, 2017b). Para que una
especie se reproduzca no solo es necesaria la diferenciación del sistema reproductor, sino
también que las conductas reproductoras específicas del macho y la hembra estén
presentes. La selección sexual favorece aquellas conductas de machos y hembras más
eficaces para la reproducción, de manera que al seleccionar conductas se están
seleccionando las estructuras cerebrales que las controlan, lo que conlleva a un dimorfismo
sexual cerebral (Guillamon, 2001).
1.9.2. Determinación y diferenciación sexual
Convertirse en macho o en hembra ocurre como resultado de dos procesos, la
determinación del sexo y la diferenciación sexual. En los mamíferos, la determinación del
sexo es una función fundamentalmente de los cromosomas sexuales, XY para machos y
XX para hembras. No fue hasta la década de 1990 que el gen “SRY” (en el cromosoma Y)
fue descubierto (Sinclair et al., 1990). Este gen codifica una pequeña proteína del factor de
transcripción llamada factor determinante del testículo (TDF), que inicia una cascada de
expresión génica que dirige el desarrollo de la gónada bipotencial para convertirse en
testículos (Sinclair et al., 1990).
Uno de los primeros pasos en el desarrollo de los testículos es la regulación de la
esteroidogénesis, con una regulación a la baja de la producción de estrógenos y un
aumento de la síntesis de andrógenos. Una hormona adicional, la hormona antimülleriana
(AMH), producida por el testículo inmaduro, complementa las acciones de los andrógenos
para que el sistema de conductos de Wollfian sobreviva y se diferencie en el conducto
INTRODUCCIÓN
43
deferente y el epidídimo del varón; mientras que en el sistema de conductos femenino, los
conductos de Müller degenerarán en respuesta a la AMH. Los andrógenos fomentarán el
proceso de diferenciación, al promover la formación de un pene y escroto para formar
genitales masculinos, así como un aumento de la masa ósea y muscular, características
sexuales secundarias (Sinclair et al., 1990; Wright, Schwarz, Dean, & McCarthy, 2010). Si
no hay un TDF funcional (por ausencia del gen SRY o una mutación), las gónadas
indiferenciadas se desarrollarán como ovarios, el conducto de Müller sobrevivirá y se
convertirá en oviducto, útero y porción superior de la vagina; el conducto de Wollfian se
degenerará debido a la falta de andrógenos y los genitales formarán un clítoris, labios y la
porción restante de la vagina (Guillamon, 2001; McCarthy, 2017a). A raíz de estas
premisas se puede concluir que tanto en hombres como en mujeres, el sexo gonadal es
secundario y disociable del sexo genético. Por tanto, un individuo XX con el gen SRY
translocado en un autosoma, desarrollará testículos, y de la misma manera, un individuo
XY con un gen SRY mutado o eliminado, desarrollará ovarios (McCarthy, 2017b).
McCarthy (2017b) señala que el cerebro es también un órgano bipotencial, capaz de
desarrollar un fenotipo masculino o femenino en igual medida. Es decir, el fenotipo
cerebral está determinado, en gran parte, por el perfil hormonal generado por las gónadas.
La explicación plausible a este mecanismo se origina en la diferenciación sexual del
cerebro, la cual se produce en un periodo sensible del desarrollo prenatal (McCarthy,
2017b) (Figura 1).
La producción de hormonas testiculares durante el desarrollo embrionario organiza de
manera coordinada el cerebro y el comportamiento, en un proceso descrito por la hipótesis
organizacional/activacional de la diferenciación sexual (Phoenix, Goy, Gerall, & Young,
1959). Es decir, la testosterona masculiniza el cerebro durante un período sensible pre y
perinatal y como resultado, el cerebro masculino adulto es sensible a la actuación de la
testosterona (Amateau & McCarthy, 2004; Kudwa, Bodo, Gustafsson, & Rissman, 2005;
McCarthy, Wright, & Schwarz, 2009b; Reinisch, Ziemba, & Sanders, 1991; Todd,
Schwarz, & McCarthy, 2005).
Joselyn Francis Cortés Cortés
44
Figura 1. Diferenciación sexual en humanos.
Los cromosomas X e Y determinan el sexo gonadal, por tanto, un individuo XY (con gen SRY) desarrollará testículos,
mientras que un individuo XX (sin gen SRY) desarrollará ovarios. Las gónadas liberan hormonas en etapas muy
tempranas del desarrollo y posteriormente serán esas hormonas las que diferenciarán sexualmente el cerebro (etapa
prenatal). En particular, los testículos producen andrógenos, algunos de los cuales se convierten en estrógenos dentro de
las neuronas, y ello masculinizará al cerebro. El cerebro femenino se desarrolla en gran medida como la ruta por defecto,
como consecuencia de la ausencia del gen SRY, aunque hay cada vez más evidencias de una contribución posterior de los
esteroides ováricos durante el desarrollo puberal (McCarthy, 2017a).
El trabajo de Phoenix et al., (1959) pone de manifiesto que la inyección de testosterona a
hembras de cobaya durante la gestación alteraba sus patrones conductuales para la
reproducción. En el trabajo indicado los embriones hembra que recibieron testosterona en
el útero, al nacer presentaron genitales externos masculinos. Cuando alcanzaron la
madurez, se las castró y se les administró estradiol y progesterona para asemejarlas al
estado hormonal de una hembra típica. Las hembras androgenizadas durante la gestación
fueron incapaces de responder con lordosis a los estímulos de los machos, pero cuando se
les inyectó testosterona mostraron la conducta de monta típica del macho (Phoenix et al.,
1959). La interpretación de esta investigación fue que, durante la gestación, la testosterona
organiza en el embrión las regiones cerebrales relacionadas con la conducta sexual y
masculiniza los embriones. Cuando el animal se desarrolla y es adulto, la testosterona
activa esas mismas regiones y se genera la conducta sexual propia del macho, aunque el
individuo genéticamente sea una hembra (Phoenix et al., 1959). A partir de estos datos, los
conceptos de organización o diferenciación (durante el desarrollo embrionario y la
gestación) y activación (durante la edad adulta) por parte de las hormonas gonadales, se
INTRODUCCIÓN
45
convirtieron, con ciertos matices, en un dogma presente hasta la fecha. Así pues, parece
que en el proceso de diferenciación, la presencia o ausencia de testosterona en la etapa
embrionaria es esencial: en presencia de testosterona el cerebro se masculiniza, mientras
que en ausencia de testosterona el cerebro se feminiza, y ello es indiferente de que
genéticamente el individuo sea XX o XY (Phoenix et al., 1959).
Sin embargo, hay dimorfismos en el cerebro que derivan directamente de la expresión
genética. El diseño experimental de Phoenix et al., (1959) no explica la diferenciación
sexual de algunas regiones cerebrales y conductas dimorfas. Durante la ontogenia del
sistema nervioso se producen dimorfismos antes de la diferenciación testicular, cuando los
niveles de testosterona son todavía bajos para ser los causantes de la masculinización
(Ngun, Ghahramani, Sánchez, Bocklandt, & Vilain, 2011). Por ese motivo se pensó en la
posibilidad de un segundo mecanismo de diferenciación sexual, una acción directa de los
genes. Un ejemplo de ello es el control genético directo del dimorfismo sexual de la
sustancia negra del mesencéfalo. Esta estructura es dimorfa, la rata macho tiene un veinte
por ciento más de neuronas que expresan tirosina hidroxilasa (TH) que la hembra y se
comprobó que también expresaba el gen SRY. Dewing et al., (2006) utilizando nucleótidos
antisentido, redujeron la expresión del gen SRY comprobando que se producía una
disminución de la expresión de TH en las células dopaminérgicas de la sustancia negra. En
este caso, el dimorfismo está bajo un control genético directo del gen SRY incrementando
el número de neuronas TH en el macho y ocasionando el dimorfismo sexual indicado
(Dewing et al., 2006). A raíz de estos estudios se concluye que hay dos vías por las cuales
se puede producir dimorfismo sexual en el sistema nervioso, una por mecanismos
hormonales y otra por mecanismos genéticos directos.
1.9.3. Masculinización, feminización y desfeminización
Tal como señala McCarthy et al., (2009b) la diferenciación sexual del cerebro humano se
puede subdividir en tres procesos: masculinización, feminización y desfeminización
(Figura 2). La masculinización es un proceso de desarrollo impulsado por las hormonas
esteroideas que organizan el sustrato neural, de modo que es propicio para ser activado por
los andrógenos en la edad adulta. Ello promoverá la expresión del comportamiento sexual
Joselyn Francis Cortés Cortés
46
masculino (McCarthy et al., 2009b). En modelos animales, el comportamiento sexual
masculino es estereotipado y cuantificable, lo que permite obtener información relevante
sobre el proceso de masculinización cerebral (McCarthy, 2017b).
Figura 2. Modelo de organización/activación de los procesos de diferenciación sexual.
La feminización del cerebro es el proceso predeterminado que se produce en ausencia de altos niveles de esteroides
gonadales durante un período sensible pre y perinatal. La masculinización y la desfeminización son procesos separados,
impulsados por hormonas gonadales que organizan el sustrato neural para promover comportamientos masculinos típicos,
al tiempo que suprimen los comportamientos femeninos típicos. El sustrato neural organizado se activa con los esteroides
gonadales en adultos y se requiere para que se expresen las conductas sexuales típicas. Este modelo basado en la
hipótesis organizacional/activacional ha demostrado ser un referente sólido para dilucidar algunos, pero no todos, los
aspectos de la diferenciación sexual cerebral. Adaptado de McCarthy & Arnold (2011).
Lo opuesto a la masculinización es la feminización, un proceso organizativo que ocurre por
defecto cuando no hay suficiente exposición a los esteroides gonadales durante el período
crítico prenatal (McCarthy et al., 2009b). En roedores, el comportamiento sexual femenino
es una combinación de comportamientos de solicitud, llamados comportamientos
proceptivos y lordosis, una postura arqueada que facilita el montaje por parte del macho y
la cópula exitosa. La evidencia reciente sugiere que la feminización también es inducida
por los esteroides gonadales, pero que sucede en un momento posterior al de la
masculinización (McCarthy, 2017b; McCarthy et al., 2009b).
INTRODUCCIÓN
47
La desfeminización es el proceso de desarrollo activo por el cual se pierde la capacidad de
expresar el comportamiento sexual femenino en la edad adulta. Algunos autores señalan
que este es un proceso fisiológico separado de la masculinización (Vreeburg, Van der
Vaart, & Van der Schoot, 1977). Por otra parte, hay evidencias de que el mecanismo de
desfeminización es totalmente independiente de la acción de la PGE2 (Prostaglandina)
(Todd et al., 2005). Los ratones machos con una mutación nula para el receptor de
estrógenos beta (conocido como BERKOs), tienen una desfeminización incompleta pero
una masculinización normal, lo que sugiere un papel diferencial para cada subtipo de
receptor de estrógenos alfa y beta (Kudwa et al., 2005; McCarthy & Arnold, 2011).
1.9.4. Hormonas sexuales y desarrollo del cerebro humano
Durante el desarrollo fetal humano, el cerebro se ve influido por hormonas sexuales como
la testosterona, los estrógenos y la progesterona (Swaab, 2004; Swaab & Garcia-Falgueras,
2009). Desde las primeras etapas del desarrollo cerebral, muchas neuronas a lo largo de
todo el sistema nervioso ya tienen receptores específicos para estas hormonas (Chung,
2003). La hipótesis biológica de la diferenciación sexual del cerebro parte de los estudios
realizados en animales, con el objetivo de explicar lo que sucede en las primeras etapas del
desarrollo embrionario (Arnold & Gorski, 1984; Gorski, Gordon, & Shryne, 1978; Swaab
& Hofman, 1995).
Los estudios aceptan la idea de que los testículos se desarrollan a partir de la gónada
embrionaria bajo la influencia de una cascada de genes que comienzan con la expresión del
gen SRY que es el encargado de determinar el sexo en el cromosoma Y (Wilhelm, Palmer,
Koopman, 2007). Antes de que ocurra este proceso, la gónada embrionaria es
indiferenciada, lo que significa que tiene la capacidad potencial de convertirse tanto en
testículo como en ovario. A partir de la diferenciación urogenital, de los conductos de
Wolff y Müller, se desarrollan los tractos del sistema reproductor masculino y femenino,
respectivamente.
En el caso de los testículos, una vez desarrollados, comienzan a producir dos hormonas, la
testosterona y la hormona antimülleriana (AMH) (Scott, Mason & Sharpe 2009). Durante
Joselyn Francis Cortés Cortés
48
el desarrollo, encontramos dos periodos críticos en los cuales los niveles de testosterona
son más altos. El primer pico de testosterona ocurre entre las semanas 12 y 18 de gestación
y entre las semanas 34-41, pudiendo ser el nivel de testosterona hasta diez veces más alto
en los varones que en las niñas (Swaab, 2004). El segundo pico de testosterona tiene lugar
durante los tres primeros meses después del nacimiento, periodo en el cual los niveles de
testosterona pueden ser similares a los de un hombre adulto (Swaab, 2004). Tanto la
testosterona como la dihidrotestosterona, inducen la diferenciación de otros órganos, en el
sistema reproductor masculino (Scott et al., 2009) .
En el caso de los ovarios, éstos se desarrollan en ausencia del gen SRY bajo la influencia de
un conjunto de genes influenciados por la expresión del gen DAX1 en el cromosoma X, y
que actúan antagónicamente al gen SRY. Por tanto, el sistema reproductor femenino en el
embrión se desarrolla en ausencia de andrógenos y la posterior maduración de las
hormonas producidas por el ovario, en concreto el estradiol (Mizusaki et al., 2003).
Al final del embarazo, el nivel de α-fetoproteína disminuye, por lo cual el feto está más
expuesto a los estrógenos de la placenta, provocando una inhibición del eje gonadal
hipotálamo-hipofisario (Bakker, De Mees, Douhard, Balthazart, Gabant, Szpirer, &
Szpirer, 2006). La pérdida de esta inhibición, una vez que nace el niño, provoca un pico de
testosterona en los varones y un pico de estrógenos en las niñas. Estos picos de testosterona
fetal y neonatal, tienen una función organizadora, fijando estructuras y circuitos cerebrales
para el resto de la vida. Más tarde, los cambios hormonales que ocurren durante la
pubertad tendrán una función activadora sobre las estructuras y circuitos que se
construyeron durante el desarrollo fetal, dando lugar a patrones conductuales en una
dirección masculinizada y desfeminizada para los cerebros masculinos, y en una dirección
feminizada y desmasculinizada para los cerebros femeninos (Bao & Swaab, 2010).
Una vez que se establece la diferenciación gonadal y los órganos sexuales en masculinos o
femeninos, lo siguiente en diferenciarse es el cerebro; esto ocurre principalmente bajo la
influencia de hormonas sexuales como la testosterona, los estrógenos y la progesterona, así
como también bajo la presencia de diferentes genes (Swaab, 2004). Como la diferenciación
sexual de los genitales tiene lugar antes (primeros dos meses de embarazo) que la
INTRODUCCIÓN
49
diferenciación sexual del cerebro, que empieza en la segunda mitad del embarazo, estos
dos procesos pueden tener lugar de forma diversa uno del otro (Swaab, 2004; Swaab &
Garcia-Falgueras, 2009). Esto también significa que, en la situación de un sexo ambiguo en
el nacimiento, el grado de masculinización de los genitales puede no siempre reflejar el
grado de masculinización cerebral (Swaab, 2004). Además, los estudios muestran que las
personas con genotipo 46,XY y órganos sexuales masculinos, pueden presentar cerebros
feminizados, lo que provoca que se sientan mujeres. Las personas con genotipo 46,XX y
órganos sexuales femeninos, pueden presentar cerebros masculinizados, lo que genera que
se sientan varones. Por lo tanto, cuando el sexo genético de una persona no concuerda con
su sexo cerebral, se produce lo que conocemos como Disforia de Género (Garcia-Falgueras
& Swaab, 2008; Swaab, 2004, 2007; Swaab & Garcia-Falgueras, 2009).
1.10. Estudio de la Disforia de Género y morfometría cerebral
Actualmente las evidencias indican que existen diferencias entre hombres y mujeres con
Disforia de Género respecto a la morfometría cerebral. Estas diferencias se encuentran
tanto en el volumen cerebral total como en varias estructuras sexodimorfas. Es bien
conocido que el volumen cerebral absoluto es mayor en hombres que en mujeres (Lüders,
Steinmetz, & Jäncke, 2002; Ruigrok, Salimi, Lai, Baron-Cohen, Lombardo, Tait, &
Suckling, 2014). Sin embargo, las mujeres tienen una mayor proporción de materia gris y
los hombres una proporción mayor de materia blanca (Cosgrove, Mazure, & Staley, 2007;
Lüders et al., 2002). El objetivo de algunos estudios es averiguar si en las personas con
Disforia de Género se reflejan algunas de estas diferencias en cuanto a estructura y/o
función cerebrales. Algunos estudios señalan que el peso cerebral de las personas
transexuales parece estar en un lugar intermedio entre el de los hombres y las mujeres
(Garcia-Falgueras & Swaab, 2008; Zhou, Hofman, Gooren, & Swaab, 1995).
Unos de los primeros en llevar a cabo investigaciones sobre las diferencias anatómicas
entre transexuales y la población control fue el grupo de Emory et al., (1991). Estos autores
se centraron en el estudio del cuerpo calloso, una estructura de la materia blanca que
interconecta ambos hemisferios. Los resultados arrojaron que no había una diferencia
significativa en la forma de esta estructura entre hombres y mujeres, ni tampoco en
Joselyn Francis Cortés Cortés
50
transexuales MtF o FtM respecto a la población general (Emory, Williams, Cole, Amparo,
& Meyer, 1991). Contradiciendo estos hallazgos, el grupo de Yakota en 2005, encontró
una medida que permitió discriminar entre hombres y mujeres, con una precisión de
aproximadamente el 74%, al comparar la forma del cuerpo calloso en el plano medio
sagital. Usando esta medida, el valor en la población transexual MtF y FtM fue más
cercano a su género que a su sexo biológico (Yokota, Kawamura, & Kameya, 2005).
Por otra parte, los estudios de Rametti y colaboradores (Rametti et al., 2011a, 2011b, 2012)
utilizaron imágenes de tensor de difusión (IDT) para evaluar la anisotropía fraccionada
(FA) de los tractos de fibra de materia blanca en la población transexual y control. Cuando
se examinó al grupo MtF y a los controles masculinos y femeninos, se encontró que la
microestructura de la materia blanca de la población MtF difería de los controles en casi
todos los fascículos del cerebro (fascículos longitudinales superiores, fascículo fronto-
occipital inferior, cíngulo, fórceps menor y tracto corticoespinal) encontrándose en un
punto intermedio entre ambos grupos (hombres y mujeres control). A raíz de estos
resultados los autores concluyeron que algunos fascículos de la materia blanca no
completan el proceso de masculinización durante el desarrollo cerebral en las personas
MtF. En el caso de las personas FtM el patrón de microestructura de la materia blanca fue
más cercano al de los hombres, mostrando valores de FA más altos que el grupo control
femenino en varias regiones del cerebro (fascículo longitudinal superior, el fórceps menor
y el tracto corticoespinal, entre otros) (Rametti et al., 2011a, 2011b). En general estos
estudios muestran un patrón de microestructura estadísticamente diferente al del sexo
cromosómico, es decir, desmasculinizado en la población MtF y masculinizado en FtM
(Kranz et al., 2014b; Rametti et al., 2011a).
El grupo de Kranz et al., (2014b) utilizaron imágenes de resonancia magnética ponderada
por difusión (DM-MRI) en una muestra de transexuales MtF y FtM, y hombres y mujeres
control, para determinar la influencia del sexo biológico, la identidad de género y la
orientación sexual en varios parámetros de difusividad. Se observó que la difusividad
media (DM) era más alta en los controles femeninos, seguida por los transexuales FtM,
luego los transexuales MtF y finalmente los controles masculinos (Kranz et al., 2014a,
2014b). Para los valores de DM, los transexuales parecen ocupar una posición intermedia
INTRODUCCIÓN
51
entre los sexos. Por otra parte, no se encontraron diferencias entre los grupos en los mapas
de FA. La orientación sexual no tuvo un efecto significativo en los parámetros de
difusividad. Sus resultados no coinciden con los aportados por el grupo de Rametti et al.,
(2011a, b) quienes informaron solo de los valores de FA. Los autores encontraron que esos
valores eran mayores en los controles masculinos frente a los controles femeninos. Por otra
parte, los valores de FA en transexuales FtM estaban más cerca de los varones, mientras
que los transexuales MtF estaban en un punto intermedio de la población control
masculina. A pesar de que ambos grupos difieren en aspectos relevantes, los resultados
indican una desviación de los patrones de la microestructura de la materia blanca en las
personas transexuales desde su sexo biológico hacia los valores del género.
Por otro lado, dos estructuras cerebrales que se han reportado reiteradamente como
sexodimorfas y que además se encuentran modificadas en personas transexuales, son la
subdivisión central del núcleo de la estría terminal (BSTc) y el tercer núcleo intersticial del
hipotálamo anterior (INAH3). Tanto el BSTc como el INAH3 son de mayor tamaño en los
hombres que en las mujeres, y contienen más neuronas de somatostatina (Byne et al., 2000;
Swaab, 2007). Se cree que el BSTc está involucrado en el control de las respuestas
autónomas, neuroendocrinas y conductuales, y está estrechamente relacionado con la
amígdala, el hipocampo y la corteza prefrontal medial (Crestani, Alves, Gomes, Resstel,
Correa, & Herman, 2013). El INAH3 es uno de los cuatro grupos celulares del área
hipotalámica preóptica anterior que participa en el comportamiento sexual y maternal, y en
la secreción de gonadotropinas (Allen, Hines, Shryne, & Gorski, 1989).
García-Falgueras y Swaab (2008) encontraron que los individuos MtF tienen el tercer
núcleo intersticial del hipotálamo anterior (INAH3) más pequeño que la población general
masculina, y con un menor número de neuronas. En cuanto a la población FtM, los datos
señalan que tanto el INAH3 como el BSTc presentan características similares a las
masculinas (Garcia-Falgueras & Swaab, 2009). A pesar de encontrar diferencias a nivel
global cuando compararon el cerebro de hombres y mujeres, estos autores no encontraron
diferencias estructurales o funcionales en la subdivisión del cuarto núcleo intersticial del
hipotálamo anterior (INAH4) del núcleo uncinado (Swaab & Garcia-Falgueras, 2009).
Joselyn Francis Cortés Cortés
52
Estudios post mortem establecieron que en humanos, la subdivisión central del núcleo de la
estría terminal (BSTc) podría ser un marcador biológico potencial para la identidad de
género (Zhou et al., 1995). Pero un estudio posterior de Chung et al., (2002) encontró que
esta diferencia se hace significativa solo en la edad adulta, lo que demuestra que la
diferenciación sexual del cerebro humano puede extenderse hasta la edad adulta. Por tanto,
este núcleo no puede ser usado como un marcador biológico en edades tempranas (Chung,
De Vries, & Swaab, 2002).
Lüders et al., (2009) informaron que el patrón general de la materia gris en las personas
transexuales MtF es parecido al de los hombres control, sin embargo se observó una
excepción en el putamen, permaneciendo esta zona feminizada (Lüders, Gaser, Narr, &
Toga, 2009a). Pero los hallazgos relacionados con el putamen son contradictorios; algunos
estudios señalan un volumen de la materia gris en transexuales en concordancia con la
identidad de género, mientras que otros lo hicieron en concordancia con el sexo biológico
(Hoekzema et al., 2015; Lüders et al., 2009; Savic & Arver, 2011; Simon, Kozák, Simon,
Czobor, Unoka, Szabó, & Csukly, 2013).
Savic & Arver (2011), cuando aplicaron la morfometría basada en Voxel (VBM),
encontraron que las diferencias obtenidas entre los controles masculinos y femeninos
(volumen elevado del hipocampo en mujeres) no eran reproducibles al contrastar estos
resultados entre el grupo MtF y el grupo control masculino. Por otra parte, encontraron que
el grupo MtF tenía volúmenes más elevados de materia gris en la unión temporoparietal
derecha, corteza frontal e insular inferior derecha. Además, los volúmenes de materia gris
fueron inferiores en el putamen y en el tálamo. Por tanto, estos datos no apoyan la hipótesis
de que los cerebros de las personas MtF estén feminizados en estas regiones (Savic &
Arver, 2011).
Simon et al., (2013) analizaron los volúmenes de materia gris tanto en transexuales MtF
como en FtM, y en hombres y mujeres control, encontrando algunas diferencias en la
estructura de la materia gris de las personas transexuales en comparación con los sujetos
control en el cerebelo, el giro angular izquierdo y en el lóbulo parietal inferior izquierdo.
Además, respecto al volumen de materia gris, los sujetos transexuales no diferían
INTRODUCCIÓN
53
significativamente de los controles que compartían su identidad de género, pero eran
diferentes de los que compartían su sexo biológico (áreas en los giros precentral izquierdo
y derecho, el giro poscentral izquierdo, el cingulado posterior izquierdo, precuneus y
calcarinus, el cuneus derecho, el fusiforme derecho, el occipital medio e inferior y los giros
temporales inferior). Estos resultados apoyan la idea de que existen diferencias cerebrales
estructurales entre los sujetos control y las personas transexuales (Simon et al., 2013).
Por otra parte, existen algunas contradicciones en cuanto al grosor cortical. Hay estudios
que encontraron un aumento del grosor cortical en las mujeres en comparación con los
hombres, en áreas como el lóbulo frontal y parietal (incluyendo el giro frontal superior e
inferior, entre otros), el occipital y el lóbulo temporal (partes del giro temporal superior y
el polo temporal izquierdo) (Im, Lee, Lee, Shin, Kim, Kwon, & Kim, 2006; Sowell et al.,
2007). En otros estudios se detectó un aumento significativo del grosor cortical en hombres
respecto a las mujeres (Lüders et al., 2006).
Se han encontrado dos estudios que comparan el grosor cortical (CTh) entre los
transexuales sin tratamiento hormonal y los sujetos control (Lüders, Sánchez, Tosun,
Shattuck, Gaser, Vilain, & Toga, 2012; Zubiaurre-Elorza, Junque, Gómez-Gil, Segovia,
Carrillo, Rametti, & Guillamon, 2013). El primer estudio midió el grosor cortical en ambas
poblaciones de transexuales, MtF y FtM. El grosor cortical en los transexuales MtF mostró
signos de feminización, siendo más grueso que en los hombres control en las regiones
órbito frontal, insular y occipital medial. En transexuales FtM no hubo signos de
masculinización. Los resultados fueron similares al grupo control de mujeres, mostrando
un mayor grosor cortical en las cortezas parietales y temporales (Zubiaurre-Elorza et al.,
2013). El grupo de Lüders et al., (2012) también encontró cortezas más gruesas en
transexuales MtF, tanto en el hemisferio izquierdo (corteza frontal y órbito-frontal, el surco
central, las regiones perisilvianas, el giro paracentral) como en el hemisferio derecho (giro
pre/post central, el córtex parietal, corteza temporal, precuneus, fusiforme, lingual y giro
órbito-frontal) (Lüders et al., 2012).
A raíz de estos resultados se ha podido observar que la morfometría cerebral de las
personas transexuales MtF y FtM no parece estar del todo feminizada o masculinizada,
Joselyn Francis Cortés Cortés
54
sino más bien parece ser un mosaico de estructuras feminizadas y masculinizadas
(Guillamon et al., 2016). Pero la discordancia en los resultados impide extraer
conclusiones definitivas. Y aunque se cree que estos resultados contradictorios podrían
deberse en parte a variaciones en la terapia de reemplazo hormonal y/o a la orientación
sexual, además del tamaño de las muestras excesivamente pequeñas, hoy por hoy no es
posible definir un marcador neuroanatómico específico de la transexualidad.
1.10.1. Las hormonas y el fenotipo cerebral en la Disforia de Género
Investigaciones sobre el cerebro humano indican que la estructura, organización y
capacidades del cerebro de hombres y mujeres presentan diferencias significativas. Por otra
parte, las acciones de las hormonas sexuales son fundamentales, ya que conforman redes
neurales y procesos bioquímicos diferentes, tanto en el cerebro de hombres como en el de
mujeres, ocurriendo ello en edades tempranas del desarrollo intrauterino (Swaab & Garcia-
Falgueras, 2009). Además, no se puede ignorar que las condiciones ambientales también
conforman y organizan el cerebro de cada persona, por tanto, aunque existen diferencias
entre hombres y mujeres, estas diferencias parecen tener un origen multifactorial, en el
cual intervienen factores genéticos, hormonales y ambientales (cada vez más relacionados
con componentes epigenéticos) (McCarthy et al., 2009a).
En general el fenotipo cerebral en personas transexuales ha sido ampliamente estudiado
(Lentini, Kasahara, Arver, & Savic, 2013; Lüders et al., 2009a, 2009b, 2012; Rametti et al.,
2011a, 2011b; Zubiaurre-Elorza et al., 2013). Los estudios llevados a cabo antes y después
del tratamiento hormonal, indican dimorfismo cerebral. Es conocido que las hormonas
sexuales ejercen una influencia organizativa en la morfología del cerebro, y que éstas
pueden actuar en las etapas tempranas del desarrollo embrionario hasta las etapas adultas
del individuo (Genazzani, Pluchino, Luisi, & Luisi, 2007; Neufang et al., 2009; Witte,
Savli, Holik, Kasper, & Lanzenberger, 2010). Un estudio realizado en sujetos entre 8 y 15
años de edad mostró una relación entre los niveles de las hormonas esteroideas y el
dimorfismo sexual, incrementando/disminuyendo el volumen de materia gris en la
amígdala y en el hipocampo (Genazzani et al., 2007) .
INTRODUCCIÓN
55
En otro estudio realizado en las etapas adultas de los participantes, se demostró que las
hormonas sexuales pueden ejercer una influencia en el cerebro mediante el tratamiento
hormonal cruzado (Pol, Cohen-Kettenis, Van Haren, Peper, Brans, Cahn, & Kahn, 2006).
Para ello se estudiaron los efectos de la administración de las hormonas en un grupo de
transexuales sometido a tratamiento. Los exámenes por imagen de resonancia magnética
(IRM, o MRI por sus siglas en inglés) se realizaron antes y después de los 4 meses del
tratamiento hormonal cruzado, y se compararon con un grupo control de hombres y
mujeres. El resultado obtenido fue una reducción del volumen total del cerebro en las
personas MtF que habían recibido tratamiento con anti andrógenos y estrógenos. Por otra
parte, en las personas FtM que habían recibido tratamiento hormonal con testosterona se
observó un aumento del volumen total de cerebro y el hipotálamo. Cabe señalar que no se
encontraron diferencias significativas antes del tratamiento en el volumen cerebral, entre
las personas transexuales y el grupo control del mismo sexo, por tanto, de este estudio se
dedujo que el volumen cerebral hacia las proporciones del sexo deseado fue inducido por
el tratamiento hormonal.
El estudio de Zubiaurre-Elorza et al., (2014) analizó los efectos del tratamiento hormonal
cruzado sobre el volumen de la materia gris cortical y subcortical y el espesor cortical en
14 individuos MtF y 15 FtM. El resultado de este estudio mostró que las personas FtM
sometidas a terapia con testosterona incrementan el grosor cortical (CTh). Por tanto, el
engrosamiento de las regiones corticales está asociado a cambios en los niveles de
testosterona. Por otra parte, en las personas MtF sometidas a terapia con estrógenos y anti
andrógenos, se observó una disminución de la CTh que, por consiguiente, se relacionó con
un engrosamiento del sistema ventricular (Zubiaurre-Elorza et al., 2013; Zubiaurre-Elorza,
Junque, Gómez-Gil, & Guillamon, 2014). A pesar de que estos hallazgos coinciden con los
Joselyn Francis Cortés Cortés
56
aportados por Pol et al., (2006), no se puede obviar que esta relación es compleja y
dinámica, y que tiene en cuenta variables como la edad o el género (Nguyen et al., 2013).
Estudios recientes han encontrado una relación entre los niveles séricos del factor
neurotrófico derivado del cerebro2 (BDNF) y el volumen del hipocampo (Rizos et al.,
2011). En transexuales MtF también se encontró la reducción de estos niveles después del
tratamiento hormonal cruzado, lo que podría explicar la disminución de la materia cerebral
(Fuss, Hellweg, Van, Briken, Stalla, T’Sjoen, & Auer, 2015).
Las investigaciones muestran que las personas transexuales no tratadas hormonalmente
presentan algunas diferencias en el volumen de la materia gris subcortical (hemisférico
derecho) el cual está parcialmente feminizado o masculinizado en los transexuales MtF y
FtM respectivamente. El grosor cortical de transexuales MtF mostró signos de
feminización antes del tratamiento hormonal (regiones occipital órbito frontal, insular y
medial) (Zubiaurre-Elorza et al., 2013).
Por otra parte, un estudio analizó la materia blanca en un grupo de transexuales FtM
tratados hormonalmente durante siete meses. El resultado del escáner mostró un aumento
en los valores de anisotropía fraccional en el fascículo longitudinal superior derecho y el
tracto corticoespinal, fibretactos en los que se exhibió un patrón parecido al de un hombre
antes del tratamiento hormonal (Rametti et al., 2011b).
Debido a que el número de estudios sobre los efectos del tratamiento hormonal cruzado en
los patrones cerebrales aún es pequeño, no se pueden extraer conclusiones definitivas, pues
la variación entre estudios, respecto a la duración del tratamiento hormonal cruzado, puede
2 BDN, del inglés brain-derived neurotrophic factor, es una proteína que en los humanos está codificada por el gen BDNF. Actúa
en el cerebro y el tejido periférico
INTRODUCCIÓN
57
representar un sesgo. Sin embargo, no podemos olvidar que estos estudios aportan
evidencias plausibles de cómo funcionan las hormonas en los mecanismos cerebrales.
1.11. Vulnerabilidad genética de la transexualidad
Hasta hace pocos años, las investigaciones sobre la etiología genética de la Disforia de
Género eran escasas. Básicamente se sustentaban en los estudios realizados en gemelos
monocigotos y dicigotos, hermanos transexuales y familias con más de un caso de
transexualidad (Gómez-Gil et al., 2010, 2011, Green & Keverne, 2000, 2015; Heylens et
al., 2012). La mayor parte de los estudios han reportado una heredabilidad sustancial de los
rasgos relacionados con el género, dentro de cada sexo (Bailey, Dunne, & Martin, 2000;
Lippa & Hershberger, 1999). En un estudio de gemelos británicos (Burri & Spector, 2011)
se encontró que la atracción sexual y la CGT (childhood gender typicality) están
influenciadas por factores genéticos (que representan el 25% y el 32% de la varianza,
respectivamente). Por otra parte, las contribuciones genéticas estimadas tuvieron un
impacto mucho más débil en el AGI (adult gender identity) (11%). No se encontró ningún
efecto del entorno familiar compartido en ningún rasgo. Sin embargo, estos datos deben
tomarse con precaución ya que la medida para AGI en este estudio comprendió sólo cuatro
de los siete ítems de la escala de feminidad y masculinidad, originando una baja
consistencia interna (Burri & Spector, 2011).
Otro estudio, cuya escala estaba basada en el DSM-IV, examinó la heredabilidad y la
prevalencia del trastorno de identidad de género (GID) en 314 gemelos (Heylens et al.,
2012), así como su comorbilidad con la ansiedad de separación y la depresión, en un
estudio no retrospectivo de niños gemelos y adolescentes. El modelo que mejor describió
los datos incluyó un componente genético aditivo significativo que representa el 62% de la
varianza y un componente ambiental no compartido que representa el 38% restante de la
varianza. Una revisión sobre estudios de casos de gemelos mostró una mayor concordancia
para la Disforia de Género en los gemelos monocigóticos que en los dicigóticos, lo que
sugiere un papel importante de los factores genéticos en el desarrollo de la Disforia de
Género. La diferencia en la concordancia entre los gemelos monocigóticos y dicigóticos
fue significativa p=0,001 (Heylens et al., 2012).
Joselyn Francis Cortés Cortés
58
En general los resultados apoyan la hipótesis de que hay un componente hereditario para la
Disforia de Género. Por tanto los hallazgos sugieren que la identidad de género puede ser
mucho menos una cuestión de elección y mucho más una cuestión de biología (Coolidge,
Thede, & Young, 2002).
Gómez-Gil et al., (2010) estudiaron 995 personas transexuales (677 MtFs y 318 FtMs),
entre los cuales se encontraban 12 parejas de hermanos no gemelos. Según este estudio la
probabilidad de que una persona transexual tenga un hermano también transexual fue 4,48
veces más alta para los hermanos de un transexual MtF que para los hermanos de un
transexual FtM, y 3,88 veces más alta para los hermanos que para las hermanas de
transexuales. Además, la prevalencia de la transexualidad entre los hermanos de
transexuales fue mucho mayor que la esperada, según los datos de prevalencia de la
transexualidad en España. El estudio concluye que los hermanos de transexuales tienen
mayor probabilidad de ser transexuales que la población general, y que el riesgo es mayor
para los hermanos que para las hermanas de transexuales, y para los hermanos de MtFs
respecto a los FtMs (Gómez-Gil et al., 2010).
En otros estudios de familias se investigó la importancia que ejerce el orden de nacimiento
en la Disforia de Género. Algunos estudios señalan que los transexuales MtF androfílicos
tienden a nacer más tarde que sus hermanos (Poasa, Blanchard, & Zucker, 2004; Schagen,
Delemarre-van de Waal, Blanchard, & Cohen-Kettenis, 2012; Vanderlaan, Blanchard,
Wood, & Zucker, 2014). En una muestra española se replicaron estos estudios en una
población compuesta por 355 MtFs y 175 FtMs, teniendo en cuenta la orientación sexual
de la población analizada (Gómez-Gil et al., 2011). Los resultados mostraron que las
personas MtF androfílicos tenían más hermanos mayores que el grupo MtF ginefílico. En
comparación con las tasas esperadas en la población general, el orden de nacimiento fue
significativamente mayor en ambos grupos (MtF y FtM) y la proporción de sexos entre
hermanos fue significativamente más alta que la esperada en la población MtF. La
replicación del orden de nacimiento y el efecto de la proporción de sexos entre hermanos
de personas MtF androfílicas corrobora los hallazgos aportados por otros estudios. La
particularidad de estos estudios radica en la similitud de los resultados a pesar de haber
INTRODUCCIÓN
59
analizado poblaciones provenientes de diferentes culturas, lo que sugiere un mecanismo
común subyacente a la etiología de la transexualidad (Gómez-Gil et al., 2011).
Desde hace algunos años, las investigaciones sobre la base genética de la transexualidad se
han centrado en el estudio de polimorfismos candidatos para la Disforia de Género, sobre
todo, aquellos que están en genes relacionados con las hormonas sexuales y la
diferenciación sexual cerebral. Se plantea que algunos polimorfismos genéticos pudieran
estar involucrados en mecanismos importantes que ocurren durante el desarrollo sexual del
cerebro (Bao & Swaab, 2011), teniendo un efecto indirecto sobre la acción de las enzimas
esteroidogénicas, o sobre los receptores de esteroides gonadales, los cuales son
fundamentales para el desarrollo de la identidad de género.
Los principales genes estudiados hasta la fecha son el gen del receptor de andrógenos (AR),
el gen del receptor de estrógenos beta (ESR2), el gen de la aromatasa (CYP19A1)
(Fernández et al., 2014a, 2014b; Foreman et al., 2018; Hare et al., 2009; Henningsson et
al., 2005; Ujike et al., 2009), el gen CYP17A1 (Bentz, et al., 2008; Fernández et al., 2015,
2016) y el gen del receptor de estrógenos alfa (ESR1) (Cortés-Cortés et al., 2017; Foreman
et al., 2018).
El gen del receptor de andrógenos, AR, se ha considerado atractivo para el estudio de la
base genética de la Disforia de Género dado que una pérdida completa de la función del
receptor generalmente resulta en una identidad de género femenina, conocido como el
síndrome de insensibilidad completa a los andrógenos (CAIS). Además, algunos estudios
han indicado que un elevado número de repeticiones (CAG), dentro del rango normal, del
polimorfismo AR-rs193922933 en el gen AR, confiere un funcionamiento menos eficiente
del receptor de andrógenos (Irvine, Ma, Yu, Ross, Stallcup, & Coetzee, 2000). A este
respecto se ha informado de la presencia de un mayor número de repeticiones (CAG) en la
población transexual MtF (Henningsson et al., 2005) respecto a la población general
masculina. Una explicación preliminar podría ser que es menos probable que ocurra una
masculinización cerebral en sujetos con receptores de andrógenos menos eficientes. Por
otra parte, en este mismo estudio se encontró que repeticiones largas de los polimorfismos
CYP19-rs60271534 y ERβ-rs113770630, en presencia de una repetición corta del
Joselyn Francis Cortés Cortés
60
polimorfismo AR-rs193922933, también parecen aumentar las probabilidades de Disforia
de Género en el grupo MtF.
Hare et al., (2009) replicaron este estudio en una población de 112 personas transexuales
MtF y 258 hombres control. Investigaron tanto la implicación de los tres polimorfismos
CYP19-rs60271534, ERβ-rs113770630 y AR-rs193922933 en la base genética de la
transexualidad, como las posibles interacciones entre los tres polimorfismos, identificando
una asociación estadísticamente significativa entre el polimorfismo AR-rs193922933 y la
población MtF. Los autores detectaron un mayor número de repeticiones CAG entre la
población transexual MtF respecto a la población control masculina (p=0,04). Los otros
dos polimorfismos no mostraron diferencias estadísticamente significativas. Este estudio
proporciona evidencias de que el género masculino podría estar mediado en parte, por el
receptor de andrógenos (Hare et al., 2009). Este resultado no ha sido respaldado por otros
estudios (Fernández et al., 2014a; Ujike et al., 2009).
Por otra parte, los estudios sobre polimorfismos del gen del receptor de estrógenos beta
(ESR2) y la aromatasa (CYP19A1) también arrojaron resultados contradictorios. En
particular, Henningsson et al., (2005) encontraron que el riesgo de desarrollar Disforia de
Género en la población masculina estaba influenciado por los polimorfismos localizados
en los genes CYP19A1 y ESR2 (Henningsson et al., 2005). Sin embargo, estos datos no
fueron respaldados por otros estudios (Fernández et al., 2014a; Hare et al., 2009; Ujike et
al., 2009).
Otro estudio encontró diferencias estadísticamente significativas en el número de
repeticiones CA en el gen ESR2 en individuos FtM en comparación con el grupo control
femenino. Los datos sugirieron que el funcionamiento del receptor ERβ depende
directamente del tamaño del polimorfismo, de tal forma que un mayor número de
repeticiones implicaría una mayor activación de la transcripción, lo que podría implicar un
aumento de la desfeminización cerebral (Fernández et al., 2014b).
INTRODUCCIÓN
61
El estudio del gen CYP17A1 que codifica la 17alfa-hidroxilasa, en muestras de personas
transexuales, ha reportado una mayor prevalencia del alelo A2 del polimorfismo CYP17-
rs743572 en la población FtM, pero no en la población MtF (Bentz et al., 2008).
1.11.1.Variantes genéticas: Polimorfismos
Un polimorfismo es una variación en la secuencia de ADN en un lugar concreto del
genoma, entre los individuos de una misma población. Para que ocurra un polimorfismo el
alelo más raro debe encontrarse entre el 0,5 y el 1% de la población, es decir, debe ser lo
suficientemente frecuente como para que no pueda explicarse como una mutación aleatoria
(http://browser.1000genomes.org). Podemos considerar tres tipos de polimorfismos: Single
Nucleotide Polimorphismss (SNPs), Short Tandem Repeats (STRs) o Variable Number
Tandem Repeats (VNTRs) y Copy Number Variations (CNVs). Los SNPs son los
polimorfismos más frecuentes y su variación afecta a una sola base. En general el genoma
humano contiene aproximadamente 12 millones de SNPs (con frecuencias superiores al
0,5%), dependiendo de la población (Devuyst, 2015). Los SNPs son polimorfismos que
involucran el cambio de un único nucleótido en una posición concreta del genoma. Si el
SNP está localizado en una zona codificante (Figura 3), puede provocar un cambio de
aminoácido en la proteína y ello podría modificar su actividad o función. Los cambios
también pueden ocurrir en las regiones promotoras de un gen y modificar su expresión. Lo
mismo puede ocurrir si el cambio se produce en un intrón. Aunque los intrones no se
traducen a proteína, cambios en su estructura pueden modular la expresión del gen
(Caratachea, 2007). Otras veces, probablemente la mayoría, los cambios son silentes y no
tienen repercusiones funcionales.
Los polimorfismos de repetición (STRs o VNTRs) consisten en la repetición corta de una
secuencia de nucleótidos, la cual se repite un número variable de veces. Estas repeticiones
pueden estar conformadas por dos repeticiones (dinucleótidos), tres repeticiones
(trinucleótidos), o cuatro repeticiones (tetranucleótidos). Al igual que los SNPs, estas
repeticiones son comunes y representan entre el 1–3% del genoma humano (Gymrek et al.,
2016).
Joselyn Francis Cortés Cortés
62
Con el proyecto genoma humano, millones de polimorfismos han sido catalogados y
pueden ser utilizados a través de herramientas online como dbSNP
(https://www.ncbi.nlm.nih.gov/projects/SNP; http://grch37.ensembl.org/index.html). Dada
la relevancia de los estudios de asociación, se considera esencial estudiar aquellas
variaciones genéticas que puedan estar asociadas a fenotipos específicos, para determinar
su relación con determinados rasgos del comportamiento.
Figura 3. Clasificación de los SNPs de acuerdo a su localización en el cromosoma.
E=Exón; I=Intrón; UTR=regiones no codificantes; rSNP=regiones reguladoras; cSNP=regiones codificantes;
nsSNP=SNPS no sinónimos; sSNP=SNPs sinónimos; iSNP=regiones intrónicas; gSNP=regiones intergenómicas
Fuente: Adaptado de Caratachea (2007).
Dentro de las variaciones estructurales podemos destacar las CNV (Copy Number
Variations) y las aneuploidías cromosómicas (Feuk, Carson, & Scherer, 2006). Se
considera que al menos el 12% del genoma humano contiene CNV (Redon et al., 2006). La
identificación de las CNV a lo largo de todo el genoma puede realizarse mediante
secuenciación o bien mediante microarrays, siendo este último el método más utilizado
(Zhang, Du, Li, Zhang, Jin, & Wang, 2014). Actualmente se ha determinado que las CNV
y ciertas mutaciones estructurales pueden afectar a la variación fenotípica humana y
contribuir al desarrollo de ciertos rasgos o enfermedades (Bochukova, Huang, Keogh,
Henning, Purmann, Blaszczyk, & Hurles, 2010; McCarroll et al., 2008).
INTRODUCCIÓN
63
1.11.2. El gen del receptor de estrógenos
El receptor de estrógenos nuclear (ER) tiene dos variantes distintas en los mamíferos, el
receptor de estrógenos alfa (ERα) y el receptor de estrógenos beta (ERβ). Ambos
pertenecen a la superfamilia de factores de transcripción de los receptores nucleares (Sato,
Miyagawa, & Iguchi, 2016). Actúan como factores de transcripción modulados por ligando
y realizan funciones celulares trascendentales para el desarrollo sexual y la reproducción
(Farooq, 2015).
Cuando se produce la unión de los estrógenos a su receptor, comienza un cambio
conformacional del receptor de estrógenos (ER): se activa y dimeriza, incrementando la
fosforilación. Posteriormente entra en el núcleo de la célula y se une a la región ERE, en la
región promotora de los genes diana. En general se cree que el complejo receptor/co-
activador unido al ADN facilita la remodelación de la cromatina y la formación de un
complejo estable de pre iniciación de la transcripción (Prins & Korach, 2008).
El receptor de estrógenos alfa, viene codificado por el gen ESR1 que se localiza en el
cromosoma 6, en la región q25.1 (Yaşar, Ayaz, User, Güpür, & Muyan, 2017). Se trata de
un segmento de unos 300 kb, que consta de 8 exones y 7 intrones (Figura 4). Codifica una
proteína (ERα) de 595 aminoácidos y 66kDa (Yaşar et al., 2017).
El receptor de estrógeno alfa (ERα) desempeña un papel crítico en la mediación de la
respuesta hormonal en tejidos sensibles al estrógeno. Consiste en varios dominios
importantes para la regulación hormonal, la activación de la transcripción y la unión al
ADN (Katzenellenbogen & Katzenellenbogen, 2000). Se expresa principalmente en el
útero, en la glándula mamaria, músculo esquelético, tejido adiposo, hipófisis y en los
huesos (Yaşar et al., 2017) (https://www.gtexportal.org/home/).
Una de las hipótesis más plausibles hasta la fecha es que las variantes polimórficas del gen
ESR1 pueden producir una variedad fenotípica reflejada en diferentes sensibilidades del
receptor a su ligando, los estrógenos (Figtree, Noonan, Bhindi, & Collins, 2009).
Numerosos estudios han demostrado que diferentes polimorfismos localizados en el gen
Joselyn Francis Cortés Cortés
64
ESR1 pueden estar asociados al riesgo de tumores en varios órganos como la próstata (Li et
al., 2014), endometrio (Hu, Zhou, Feng, Wang, Su, Long, & Wei, 2012), mama
(Chattopadhyay, Siddiqui, Akhtar, Najm, Deo, Shukla, & Husain, 2014), ovario (Doherty
et al., 2010; Sakoda et al., 2008) y leimioma uterino (Feng, Lin, Zhou, Xu, Yi, & Zhao,
2013).
Figura 4. Esquema del gen ESR1 y su proteína.
El gen ESR1 consta de 8 exones y 7 intrones, está localizado en el cromosoma 6 en la posición 6q25.1
p=brazo corto del cromosoma; q=brazo largo del cromosoma. E=Exón; I=Intrón
DBD=Dominio de unión a ADN; LBD=Dominio de unión a ligando.
Fuente: adaptado de (Molina, Polanía, Osorio, & Pérez, 2008).
En la estructura del gen ESR1 se han descrito varios lugares sobre los que se asientan
distintos polimorfismos, hipotéticamente los más importantes se encuentran localizados en
la región promotora del gen, la que determina el inicio de su transcripción. Algunos de los
SNPs más estudiados del gen ESR1 son el polimorfismo ERα-rs2234693 (T>C) y el ERα-
rs9340799 (A>G) (Liu et al., 2014). Estos dos polimorfismos están localizados en el intrón
1 del gen ESR1 (Zhao, Dahlman, & Gustafsson, 2011) próximos a la región promotora.
Otro polimorfismo frecuentemente estudiado es el ERα-rs3138774, un polimorfismo de
repetición TA localizado en la región promotora del gen ESR1.
INTRODUCCIÓN
65
Por otra parte, Kudwa et al., en el 2006, realizaron un estudio con ratones knockout (KO),
para explicar el rol de los ERs en el comportamiento masculino. Con este estudio se intentó
comprobar la hipótesis de que la masculinización y la desfeminización del cerebro están
reguladas de forma independiente por los ERs (Kudwa, Michopoulos, Gatewood, &
Rissman, 2006). En un primer estudio se diseñó una cepa de ratones (KO machos) con una
alteración permanente del gen ESR1. En este caso los ratones se describieron como
subfértiles, con testículos de menor peso y recuentos de esperma reducidos, en
comparación con los compañeros de camada de tipo salvaje (WT) (Lubahn, Moyer,
Golding, Couse, Korach, & Smithies, 1993).
Además de la cópula, en machos WT y ERαKO, se compararon las preferencias y los
comportamientos motivados sexualmente. En estos casos se estudió el comportamiento de
los machos frente a las hembras, y los machos anestesiados versus las hembras, para
valorar la motivación sexual (Dominguez, Bateman, & Rissman, 2004; Wersinger &
Rissman, 2001). En todas estas tareas, los machos WT mostraron una preferencia por las
hembras, mientras que los machos ERαKO no lograron hacer esta distinción.
Dada la importancia que tiene la dopamina sobre la motivación y la recompensa sexual,
Kudwa et al., (2006) plantearon la hipótesis de que el déficit de la conducta sexual en los
machos ERαKO podría deberse a una reducción de la motivación sexual. Para probar esto,
administraron apomorfina (APO) para activar los comportamientos sexuales en los ratones
ERαKO. De hecho, en algunos estudios fueron más significativos los resultados obtenidos
en ratones machos ERαKO que recibieron inyecciones sistémicas de APO justo antes de la
prueba, mostrando montas, empuje, intromisión y eyaculaciones (Wersinger & Rissman,
2001). Estos datos son similares a los recopilados anteriormente en ratas macho con
experiencia sexual. Cuando los machos fueron castrados y probaron su comportamiento
copulador meses más tarde, se observó escaso comportamiento sexual, pero después de
administrar un agonista de la dopamina, se restauró algo de monta y empuje. Los datos
sugieren que, a pesar de la falta del gen funcional ESR1, los agonistas de la dopamina
pueden iniciar el comportamiento de la copulación masculina en adultos (Kudwa et al.,
2006). Tanto en ratones hembra ERαKO como en ratones macho ERαKO, el
comportamiento sexual masculino no se muestra a menos que se proporcione APO
Joselyn Francis Cortés Cortés
66
(Wersinger & Rissman, 2001). Los datos muestran parcialmente que el ERα está
involucrado en la masculinización cerebral (Kudwa et al., 2006).
En el caso del receptor de estrógenos beta (ERβ), codificado por el gen ESR2, se descubrió
en 1996 en ratas (Kuiper, Enmark, Pelto, Nilsson, & Gustafsson, 1996) y en tejidos
humanos (Mosselman, Polman, & Dijkema, 1996). Se localiza en el cromosoma 14, en la
región q22-q24 (Figura 5). Se trata de un segmento de unos 254 kb, que consta de 8
exones y 7 intrones. La traducción del ARNm produce un receptor de 530 aminoácidos en
humanos (Yaşar et al., 2017). Se encuentra principalmente en ovario, próstata, pulmón, en
el sistema cardiovascular y en el sistema nervioso central (Yaşar et al., 2017).
Figura 5. Esquema del gen ESR2 y su proteína.
Consta de 8 exones y 7 intrones, está localizado en el cromosoma 14 en la posición 14q23.2-23.3
p=brazo corto del cromosoma; q=brazo largo del cromosoma.
E=Exón; I=Intrón
DBD=Dominio de unión a ADN; LBD=Dominio de unión a ligando.
Fuente: adaptado de (Molina, et al., 2008).
Los estudios con ratones modificados genéticamente (ERβKO) han mostrado un tracto
reproductivo normal y fertilidad en los machos (Krege et al., 1998). Tal y como señala
Kudwa et al., (2005), a diferencia del ERα, la falta de ERβ funcional no altera la expresión
normal del comportamiento sexual masculino adulto, o la preferencia olfativa en ratones
INTRODUCCIÓN
67
machos con testículos intactos (Kudwa et al., 2005; Temple, Scordalakes, Bodo,
Gustafsson, & Rissman, 2003). Kudwa et al., (2005) también realizaron pruebas estándar
para el comportamiento sexual masculino en los machos adultos WT y ERβKO, los cuales
mostraron latencias equivalentes en los diversos componentes del comportamiento
copulatorio, siendo similares las frecuencias con las que mostraron cada comportamiento.
Mientras que los machos adultos WT y ERβKO tienen un comportamiento copulatorio
similar, se han descrito diferencias de comportamiento transitorias entre los machos WT y
ERβKO durante la pubertad. La agresión es mayor en los machos ERβKO que en los
machos WT entre las semanas 7 y 12, pero la diferencia desaparece en la semana 18
(Nomura et al., 2002). Por otra parte, la adquisición de la conducta sexual en la pubertad es
similar entre los machos WT y ERβKO. Sin embargo, mientras que los machos de ambos
genotipos comienzan a crecer, empujan e intromiten a la misma edad (aproximadamente
42 días de edad) y el inicio de la eyaculación en los machos ERβKO es, en promedio, una
semana más tarde que en los machos WT (Temple et al., 2003). Estos estudios señalan que
no hay evidencias de que la masculinización normal en ratones requiera el gen del receptor
ERβ, pero la pubertad puede verse influenciada (Kudwa et al., 2006).
En cuanto al papel que juega el ERβ en la desfeminización, los ratones hembra ERβKO
muestran una inducción normal de PR (receptor de la progesterona) por E2 y tienden a ser
más receptivas que sus compañeras de camada WT (Kudwa & Rissman, 2003; Kudwa et
al., 2006). Además, durante el ciclo estral, las hembras ERβKO son más propensas que las
hembras WT a mostrar lordosis (Ogawa, Chan, Chester, Gustafsson, Korach, & & Pfaff,
1999). El estudio de Kudwa et al., (2006) intentó determinar si el ERβ estaba involucrado
en la desfeminización. Para ello se analizó la lordosis en ratones machos WT y ERβKO
después de la castración y el tratamiento con E2 y progesterona.
En cuanto a las hembras normales, se realizaron pruebas múltiples con un intervalo de 5 a
7 días para la presentación de lordosis (Kudwa & Rissman, 2003). En este caso, las
puntuaciones en lordosis (LQ) suelen ser bajas hasta aproximadamente la cuarta semana de
la prueba, alcanzado valores más altos en la séptima prueba (alrededor de 70 de 100
posibles). Cuando se realiza esta prueba con machos WT y ERβKO, los machos WT rara
Joselyn Francis Cortés Cortés
68
vez tuvieron puntuaciones superiores a 20, pero los machos ERβKO terminaron con
puntuaciones cercanas a 45 (Kudwa et al., 2005). Esto sugiere que la falta del ERβ conduce
a una desfeminización parcial en los machos ERβKO (Kudwa et al., 2006). En otro estudio
se valoró si una activación específica del ERβ en crías de hembras normales afectaba la
manifestación de lordosis en la etapa adulta. En la edad adulta, todos los ratones fueron
ovariectomizados, preparados con hormonas y probados para el comportamiento sexual
femenino. Se encontró que el tratamiento neonatal con agonistas selectivos para ERβ,
como el DPN (Diarilpropiolnitrilo) o el E2, desfeminiza significativamente el
comportamiento de lordosis. Estos datos, y los estudios realizados en ratones machos
ERβKO, brindan un fuerte apoyo para el papel del ERβ en la desfeminización del
comportamiento (Kudwa et al., 2006).
En resumen, tanto el ERα como el ERβ están involucrados en la diferenciación sexual
cerebral, aunque de forma independiente. En algunos casos la falta de ERβ podría mejorar
la feminización en las hembras, tal vez mejorando las acciones del ERα. Los datos de
ratones KO sugieren que, en las hembras, el ERα es esencial para el comportamiento
sexual femenino y la fertilidad (Rissman, Early, Taylor, Korach, & Lubahn, 1997). Por
otra parte, las hembras ERβKO son subfértiles, mostrando aún ciclos estrales y
receptividad (Kudwa, Gustafsson, & Rissman, 2004). A pesar de estos hallazgos, aún se
desconoce qué subpoblaciones de neuronas regulan la diferenciación sexual en ratones,
pero Kudwa et al., plantean que la mPOA (área preóptica media) y las neuronas ERβ son
esenciales para la desfeminización (Kudwa et al., 2006).
1.11.3.El gen del receptor de andrógenos
El receptor de andrógenos (AR) en humanos está codificado por un gen de copia única que
se encuentra en el cromosoma X, en la región q11.2-q12 y tiene una longitud de más de 90
kb (Hsing et al., 2000). La región codificante del gen AR contiene 8 exones y 7 intrones
(Figura 6). El primer exón codifica un gran dominio transactivador amino-terminal, y
contiene varias repeticiones polimórficas (Hsing et al., 2000). El receptor de andrógenos
pertenece a la familia de receptores nucleares llamados receptores esteroideos de clase I
INTRODUCCIÓN
69
activados por ligando, que también incluye el receptor de glucocorticoides, el receptor de
progesterona y el receptor de mineralocorticoides (Mangelsdorf et al., 1995).
El receptor de andrógenos se expresa en diferentes tejidos como testículo, próstata, tejido
adiposo, hígado, músculo cardiaco, cerebro, hueso, etc. (EMBL-EBI
https://www.ebi.ac.uk/gxa/home). Cabe destacar que los andrógenos son hormonas
sexuales masculinas que se originan principalmente en los testículos, juegan un papel
fundamental en el desarrollo, diferenciación y maduración funcional de la reproducción
masculina y el mantenimiento de los caracteres sexuales secundarios masculinos
(Eisermann, Wang, Jing, Pascal, & Wang, 2014; Zuloaga, Puts, Jordan, & Breedlove,
2008).
Figura 6. Esquema del gen AR y su proteína.
El gen AR consta de 8 exones y 7 intrones, está localizado en el cromosoma X en la posición Xq11-12
p=brazo corto del cromosoma; q=brazo largo del cromosoma.
E=Exón; I=Intrón
DBD=Dominio de unión a ADN; LBD=Dominio de unión a ligando.
Fuente: adaptado de (Molina, et al., 2008).
En el gen AR encontramos dos repeticiones polimórficas, CAG y GGC, localizadas en el
exón 1. Estas han sido ampliamente estudiadas y relacionadas con el carcinoma de
próstata, mostrando una relación inversa entre el nivel de expresión del AR y la longitud de
Joselyn Francis Cortés Cortés
70
las repeticiones CAG y GGN (Li, Mercer, Gou, & Lu, 2013). En un modelo in vitro se ha
encontrado que un tracto de poliglutamina más largo dificulta la actividad de
transactivación del AR, mientras que la cadena más corta causa una mayor activación del
gen (Ashtiani, Hasheminasab, Ayati, Goulian, & Modarressi, 2011).
En estudios in vitro, las longitudes de repetición de 43 y 65 trinucleótidos asociadas con
atrofia muscular espinal y bulbar, disminuyeron los niveles de ARNm y de proteína AR,
pero no alteraron la afinidad de unión o la actividad transcripcional del receptor de
andrógenos (Ashtiani et al., 2011). Estos hallazgos indicaron que las expansiones de
glutamato hasta 66 residuos en el primer exón no alteraban la actividad funcional, pero
reducían la expresión del ARNm y de proteína AR (Choong, Kemppainen, Zhou, &
Wilson, 1996; Choong & Wilson, 1998).
Los mecanismos exactos de cómo este polimorfismo altera la eficacia y potencia de
transactivación son desconocidos. Estas alteraciones pueden modificar la amplificación de
la señal y por tanto, obtener una regulación aberrante en múltiples niveles de la cascada de
activación del AR (Kumar, Atamna, Zakharov, Bhasin, Khan, & Jasuja, 2011). La
desregulación del AR puede perturbar la fisiología normal y conducir a condiciones
patológicas (He, Minges, Lee, & Wilson, 2002) como la infertilidad masculina (Mifsud,
Sim, Boettger, Moreira, Lamb, Lipshultz, & Yong, 2001), la densidad mineral de los
huesos (Zitzmann, Brune, Kornmann, Gromoll, Junker, & Nieschlag, 2001), la enfermedad
de Alzheimer (Lehmann et al., 2003, 2004), etc., además pueden estar también implicados
en diferentes rasgos de la personalidad y en enfermedades neurodegenerativas (Davies et
al., 1997; Klement et al., 1998; Warrick, Paulson, Gray, Bui, Fischbeck, Pittman, &
Bonini, 1998).
Respecto a la Disforia de Género, uno de los primeros grupos en investigar la implicación
del polimorfismo AR-rs193922933 en la base genética de la transexualidad fue el grupo de
Henningsson et al., (2005). En el estudio se examinó la posible implicación de tres
polimorfismos, y la de sus interacciones, en el desarrollo de la Disforia de Género en la
población MtF. En concreto se analizó el polimorfismo AR-rs193922933, un polimorfismo
de repetición CAG en el primer exón del gen AR. Los sujetos analizados fueron 29
INTRODUCCIÓN
71
transexuales MtF y 229 controles masculinos. Los transexuales difirieron de los controles
respecto a la longitud media del polimorfismo de repetición del ESR2, pero no respecto a la
longitud de los otros dos polimorfismos estudiados. Sin embargo, el análisis de regresión
logística binaria reveló efectos parciales para los tres polimorfismos, así como para la
interacción entre los polimorfismos del gen AR (AR-rs193922933) y de la aromatasa
(CYP19-rs60271534) (Henningsson et al., 2005).
En el año 2009 este estudio fue replicado por Hare et al., (2009) en una población de 112
transexuales MtF y 258 hombres control. Se investigaron las asociaciones e interacciones
entre la longitud de la repetición CAG del polimorfismo AR-rs193922933, la longitud de
la repetición CA del polimorfismo ERβ-rs113770630 y la longitud de la repetición TTTA
del polimorfismo CYP19-rs60271534, en la población transexual MtF. Se encontró una
asociación significativa entre la transexualidad y el tamaño de la repetición CAG del
polimorfismo AR-rs193922933. En la población MtF el número de repeticiones fue más
alto que en la población control masculina (p=0,04). Sin embargo, los autores no
encontraron asociación para los polimorfismos CYP19-rs60271534 o ERβ-rs113770630.
Este estudio proporciona evidencias de que la identidad de género masculina podría estar
mediada, en parte, por el receptor de andrógenos (Hare et al., 2009).
En este mismo año, Ujike et al., (2009) realizaron el estudio de estos polimorfismos, y
otros, en una población transexual japonesa, teniendo en cuenta ambas poblaciones de
transexuales (MtF y FtM). Los resultados de este estudio no arrojaron diferencias
estadísticamente significativas para ninguno de los polimorfismos analizados (Ujike et al.,
2009).
También en España, en el año 2014, se realizó el estudio de estos mismos polimorfismos
en una población transexual española MtF y FtM. Se encontraron diferencias
estadísticamente significativas entre el polimorfismo ERβ-rs113770630 y la población
FtM. Este estudio hipotetiza que la función del receptor ERβ es directamente proporcional
al número de repeticiones, por lo que un mayor número implicaría hipotéticamente, una
mayor activación de la transcripción, posiblemente aumentando la función del receptor de
estrógenos y por lo tanto fomentando una menor feminización o una desfeminización del
Joselyn Francis Cortés Cortés
72
cerebro femenino. Por otro lado, el estudio de estos polimorfismos en la población MtF no
mostró ninguna asociación estadísticamente significativa entre estos polimorfismos y la
transexualidad (Fernández et al., 2014b).
1.11.4. El gen CYP19A1
La aromatasa es una enzima que pertenece a la superfamilia del citocromo P450. La
enzima cataliza la conversión de andrógenos a estrógenos, un paso fundamental en la
biosíntesis de estrógenos (Harada, Ogawa, Shozu, Yamada, Suhara, Nishida, & Takagi,
1992). La aromatasa está codificada por un único gen, el CYP19A1, localizado en el
cromosoma 15q21.2 (Simpson et al., 1994). El gen CYP19A1 abarca al menos 70 kb de
ADN genómico y contiene 10 exones. El sitio de inicio de la traducción es en el exón 2 y
el sitio de terminación es en el exón 10 (Toda et al., 1990) (Figura 7).
Figura 7. Esquema del gen CYP19A1 y su proteína.
Consta de 10 exones y 9 intrones, está localizado en el cromosoma 15 en la posición q21.2
p=brazo corto del cromosoma; q=brazo largo del cromosoma. E=Exón; I=Intrón
DBD=Dominio de unión a ADN; LBD=Dominio de unión a ligando.
Fuente: adaptado de (Molina, et al., 2008).
La enzima aromatasa se localiza principalmente en el ovario y la placenta, y participa en la
regulación de las funciones reproductivas, como el ciclo sexual del ovario, mediante la
INTRODUCCIÓN
73
producción inductiva de estrógenos que actúan como una hormona esteroide sexual
(Harada et al., 1992).
Por otra parte se ha demostrado que la aromatasa está distribuida en otros tejidos extra
gonadales como el músculo (Longcope, Pratt, Stephen, & Fineberg, 1978), el hígado
(Toda, Simpson, Mendelson, Shizuta, & Kilgore, 1994), los folículos pilosos (Schweikert,
Milewich, & Wilson, 1975), el tejido adiposo (Schindler, Ebert, & Friedrich, 1972) y el
cerebro (Ryan, Naftolin, Reddy, Flores, & Petro, 1972). Estos hallazgos sugieren que el
estrógeno producido por la aromatasa tiene funciones fisiológicas no solo como hormona
esteroidea sexual, sino también en el crecimiento o la diferenciación. Los estudios indican
que el CYP19A1 puede expresarse en varias áreas del cerebro, como el diencéfalo, ganglios
basales, cerebelo, el neocórtex temporal y frontal, tálamo dorsal, hipocampo, amígdala, etc.
(Hayes, Seminara, DeCruz, Boepple, & Crowley, 2000; Steckelbroeck, Heidrich, Stoffel,
Hans, Schramm, Bidlingmaier, & Klingmüller, 1999; Stoffel, Watzka, Schramm,
Bidlingmaier, & Klingmüller, 1999) (EMBL-EBI https://www.ebi.ac.uk/gxa/home).
El gen CYP19A1 ha sido estudiado en la población con Disforia de Género MtF por el
grupo de Henningsson et al., (2005). Estos autores encontraron una interacción entre los
tres polimorfismos analizados, pero no encontraron una implicación directa del
polimorfismo CYP19A1-rs60271534 en la Disforia de Género (Henningsson et al., 2005).
Posteriormente este estudio fue replicado por Hare et al., (2009) y Ujike et al., (2009).
También fue estudiado en una población española, no encontrando diferencias
estadísticamente significativas (Fernández et al., 2014a, 2014b).
1.11.5.El gen CYP17A1
El gen CYP17A1 codifica el esteroide 17-alfa-hidroxilasa, también conocido como
esteroide 17-alfa-monooxigenasa, que media tanto la actividad de la 17-alfa-hidroxilasa
como la 17,20-liasa. Estas funciones permiten que las glándulas suprarrenales y las
gónadas sinteticen glucocorticoides 17-alfa-hidroxilados (a través de la actividad de 17-
alfa-hidroxilasa) y esteroides sexuales (a través de la actividad de 17,20-liasa) (Chung,
Joselyn Francis Cortés Cortés
74
Picado-Leonard, Haniu, Bienkowski, Hall, Shively, & Miller, 1987; Van den Akker et al.,
2002; Yao, Huang, Kang, Zhang, Wang, & Tian, 2013).
El gen CYP17A1 se encuentra localizado en el cromosoma 10q24.32 (Sparkes, Klisak, &
Miller, 1991) contiene 8 exones y 7 intrones (Picado-Leonard & Miller, 1987) (Figura 8).
En 1988, Kagimoto et al., informaron de la estructura exónica, así como las secuencias en
los límites del exón/intrón en el sitio de inicio de la transcripción (Kagimoto, Winter,
Kagimoto, Simpson, &Waterman, 1988).
Dentro de las glándulas suprarrenales, el CYP17A1 no se expresa en la zona glomerular por
lo que los mineralocorticoides se sintetizan a partir de la pregnenolona y progesterona. En
la zona fascicular el CYP17A1 se expresa, pero sólo tiene actividad 17α-hidroxilasa por lo
que se sintetizan glucocorticoides a partir de 17-OH pregnenolona y de 17-OH
progesterona.
Figura 8. Esquema del gen CYP17A1 y su proteína.
El gen CYP17A1 consta de 8 exones y 7 intrones, está localizado en el cromosoma 10 en la posición q24.32.
p=brazo corto del cromosoma; q=brazo largo del cromosoma. E=Exón; I=Intrón
DBD=Dominio de unión a ADN; LBD=Dominio de unión a ligando.
Fuente: adaptado de (Molina, et al., 2008).
INTRODUCCIÓN
75
Solo en la zona interna de la zona reticular de la corteza suprarrenal y en los tejidos
gonadales están presentes las tres proteínas, de modo que se producen reacciones de
hidroxilación y liasa para generar finalmente la dehidroepiandrosterona3 (DHEA), el
precursor de todos los esteroides sexuales subsiguientes (Yadav, Petrunak, Estrada, &
Scott, 2017). La actividad hidroxilasa y la liasa son reguladas por la NADPH4-citocromo
P450 reductasa, pero además la actividad liasa es regulada por NADPH-citocromo b5
reductasa y se expresa en la zona reticular (Zhang, Hamdane, Im, & Waskell, 2008).
En el CYP17A1 se han descrito más de cien polimorfismos, la mayor parte de ellos
localizados en las zonas intrónicas del gen, y solo algunos pocos han sido estudiados a
nivel poblacional (Gilep, Sushko, & Usanov, 2011). Uno de los SNPs más estudiados es el
CYP17-rs743572 (-34T>C). Este SNP podría crear un sitio de unión al factor de
transcripción Sp-1 adicional en la región promotora del gen, incrementando la
transcripción del gen (Rai, Sharma, Misra, Kumar, & Mittal, 2014) (EMBL-EBI
https://www.ebi.ac.uk/gxa/home). En un estudio realizado en el año 2000, la expresión del
gen CYP17A1 en células de la teca, aisladas de ovarios poliquísticos (PCO), fue más
elevada en comparación con las células de la teca aisladas de ovarios normales
(Wickenheisser, Quinn, Nelson, Legro, Strauss, & Mcallister, 2000). También este gen se
ha asociado con problemas del corazón debido a su participación en la esteroidogénesis, ya
que al parecer los corticosteroides tienen efectos específicos sobre la estructura cardíaca
(Kayes & White, 2000). Flück et al., (2003) señalaron que la mayor parte de la biosíntesis
de testosterona en los testículos humanos se produce a través de la conversión de
3 La dehidroepiandrosterona (DHEA) es una prohormona endógena secretada por las glándulas suprarrenales (zona reticulares).
4 Nicotinamida-Adenina-Dinucleótido-Fosfato, biomolécula relacionada con el poder reductor, es la forma reducida en la
reacción de óxido-reducción (Redox) del NADP+. Implicada en el anabolismo celular, interviene en la síntesis de ácidos nucleicos y de lípidos
Joselyn Francis Cortés Cortés
76
pregnenolona en dehidroepiandrosterona a través de la vía delta-5 (Flück, Miller, &
Auchus, 2003).
En cuanto a las deficiencias asociadas al 17-alfa-hidroxilasa/17,20-liasa se identificó una
duplicación de cuatro bases en el gen CYP17A1, lo que resultó en la pérdida de ambas
actividades enzimáticas (Kagimoto et al., 1988) y unos casos de deficiencia aislada de
17,20-liasa. Cabe destacar que hasta ese momento se habían encontrado 18 mutaciones del
CYP17A1 en 28 pacientes; todas las mutaciones habían afectado por igual las dos
actividades (Geller, Auchus, Mendonça, & Miller, 1997).
Carey et al., (1994) estudiaron 14 familias caucásicas con el síndrome de ovario
poliquístico (PCO) o calvicie de patrón masculino prematuro, en los cuales se identificó
una mutación -34T>C (alelos A1 y A2, respectivamente) localizada en la región promotora
del gen CYP17A1. En este caso el cambio de base creó un sitio de reconocimiento para la
enzima de restricción MspA1, lo que permitió un procedimiento de selección simple. Los
resultados del estudio arrojaron una asociación significativa entre el alelo A2 y los
miembros con ovarios poliquísticos o calvicie de patrón masculino (Carey et al., 1994).
Esto indica que la expresión del gen CYP17A1 puede verse directamente afectada por este
polimorfismo, provocando altos niveles de estradiol, progesterona y testosterona en plasma
y suero.
Actualmente, algunas mutaciones del gen CYP17A1 se asocian a diversas enfermedades
como la endometriosis (Kado et al., 2002), el cáncer de mama (Feigelson, Coetzee,
Kolonel, Coetzee, Kolonel, Ross, & Henderson, 1997) el cáncer de próstata (Lunn, Bell,
Mohler, & Taylor, 1999) y enfermedades neurodegenerativas (Chace et al., 2012).
En cuanto a la Disforia de Género, Bentz fue uno de los primeros en investigar la
implicación de este gen y, más concretamente el polimorfismo CYP17-rs743572 (-34T>C)
en una población transexual. El grupo de Bentz et al., (2008) realizó un estudio de casos y
controles, en el cual se evaluaron las frecuencias alélicas y genotípicas del polimorfismo
CYP17-rs743572 en una serie de transexuales caucásicos (102 MtFs y 49 FtMs) y se
compararon con 1.671 controles (756 hombres y 915 mujeres). Los resultados obtenidos
INTRODUCCIÓN
77
apoyan la asociación entre el polimorfismo CYP17-rs743572 y la transexualidad en la
población FtM, y que el alelo mutado (A2) está sobrerrepresentado en la población
transexual (Bentz et al., 2008).
En el año 2015, Fernández et al., replicaron este estudio en una población caucásica
española. La población estaba compuesta por 293 personas transexuales (151 MtFs y 142
FtMs) y 335 controles (167 hombres control y 168 mujeres control). El resultado de este
estudio arrojó que la frecuencia del alelo A2 fue mayor en el grupo FtM (0,45) respecto al
grupo control femenino (0,38), al grupo control masculino (0,39), o al grupo MtF (0,36).
Este patrón FtM>MtF alcanzó diferencias estadísticamente significativas (p=0,041),
aunque las frecuencias alélicas no fueron específicas de género en la población general
(p=0,887). Los resultados de este estudio señalan que el polimorfismo CYP17-rs743572 no
es dependiente de sexo, pero sí parece estar relacionado con el origen geográfico y étnico.
Por otra parte, este estudio respalda parcialmente una relación entre el alelo mutado A2 y
la Disforia de Género para el grupo FtM (Fernández et al., 2015).
OBJETIVOS
81
El objetivo general de esta investigación fue el estudio de la base genética de la Disforia de
Género en adultos (302.85-F84.1) DSM-5 (American Psychiatric Association, 2013) en
una población FtM (female to male) y MtF (male to female) de origen caucásico y
residentes en España.
El orden de presentación de los trabajos tiene un sentido conceptual, no cronológico.
PRIMER ESTUDIO : Analyses of karyotype by G-banding and high-resolution
microarrays in a Gender Dysphoria population. Genes Genomics. 2018; 40(5):465-
473. doi: 10.1007/s13258-017-0646-0.
Objetivos específicos:
1. Analizar citogenéticamente (bandas G) y molecularmente (HD-microarray) el cariotipo
de una población con Disforia de Género FtM y MtF residente en España.
2. Contrastar la prevalencia de las alteraciones cromosómicas en la población transexual
respecto a la población general.
3. Contrastar los resultados obtenidos con las principales investigaciones realizadas hasta la
fecha.
SEGUNDO ESTUDIO: The CYP17-MspA1 rs743572 polymorphism is not associated
with Gender Dysphoria. Genes & Genomic. 2016; 38(12):1145-1150. doi:
10.1007/s13258-016-0456-9.
Objetivos específicos:
1. Estudio de asociación del polimorfismo CYP17-rs743572 y su implicación en la base
genética de la Disforia de Género mediante el estudio de las frecuencias alélicas y
genotípicas en la población transexual (FtM y MtF) y en la población control.
2. Contrastar los resultados obtenidos con las principales investigaciones realizadas hasta la
fecha.
Joselyn Francis Cortés Cortés
82
TERCER ESTUDIO : Genotypes and haplotypes of the estrogen receptor α gene
(ESR1) are associated with Female-to-Male Gender Dysphoria. J Sex Med. 2017;
14(3):464-472. doi: 10.1016/j.jsxm.2016.12.234.
Objetivos específicos:
1. Análisis de la implicación del gen ESR1 en la base genética de la Disforia de Género
mediante el estudio de las frecuencias alélicas y genotípicas de tres polimorfismos situados
en el gen ESR1: el microsatélite (TA)n, ERα-rs3138774, situado en la región promotora del
gen, el polimorfismo definido por la enzima de restricción PvuII (T397C) (ERα-rs2234693)
y el polimorfismo definido por la enzima XbaI (A351G) (ERα-rs9340799), ambos
localizados en el intrón 1 del gen ESR1.
2. Estudio de asociación genética simple de cada uno de los polimorfismos y la Disforia de
Género.
3. Estudio del desequilibrio de ligamiento entre los tres polimorfismos.
4. Estudio de asociación múltiple de los tres polimorfismos y su implicación en la base
genética de la Disforia de Género.
CUARTO ESTUDIO: Molecular basis of Gender Dysphoria: androgen and estrogen
receptor interaction. Psychoneuroendocrinology. 2018; 98:161-167. doi:
10.1016/j.psyneuen.2018.07.032.
Objetivos específicos:
1. Análisis de asociación de los polimorfismos ERβ-rs113770630, ERα-rs9340799, AR-
rs193922933 y CYP19-rs60271534 mediante el modelo de regresión logística binaria, en
dos poblaciones independientes: la población genéticamente mujer (FtM vs grupo control
femenino) y la población genéticamente varón (MtF vs grupo control masculino).
2. Análisis de interacción cruzada “backward stepwise” comenzando con el modelo más
complejo (inclusión de los cuatro polimorfismos) y continuando con el modelo más simple
(efecto entre pares).
MATERIAL Y MÉTODOS
85
3.1. Sujetos
La población total analizada consistió en 549 MtFs, 425 FtMs, y 599 mujeres y 728 varones
controles. El diagnóstico y la selección de las personas con Disforia de Género se llevaron
a cabo a través del Servicio de Psiquiatría y Psicología Clínica del Institut Clínic de
Neurociencias del Hospital Clínic (Universitat de Barcelona) y del Servicio de Trastornos
de la Identidad de Género en Andalucía (Hospital Carlos Haya de Málaga).
La muestra comenzó a reclutarse en el año 2010; durante los tres primeros años el
diagnóstico fue realizado por los especialistas de psiquiatría y psicología de las Unidades
de Identidad de Género del Hospital Clinic de Barcelona y del Hospital Carlos Haya de
Málaga, aplicando el DSM-IV-TR (American Psychiatric Association, 2000) (Desorden de
la Identidad de Género en Adolescentes y Adultos 302.85). A partir del año 2014 el
diagnóstico se realizó siguiendo los criterios del DSM-5 (American Psychiatric
Association, 2013) (Disforia de Género en Adolescentes y Adultos, 302.85). Cabe señalar
que todos los sujetos de nuestro estudio cumplen la definición de transexuales que se
establece en el DSM-IV-TR: todos sentían una “fuerte y persistente identificación con el
otro sexo, y expresaron un fuerte deseo de transición social de hombre a mujer o de mujer
a hombre que implicaba la transición mediante tratamiento hormonal cruzado y en la
mayoría de los casos, cirugía de reasignación”.
Los criterios de exclusión consistieron en la existencia de trauma cerebral, desorden
neurológico o historial de abuso de alcohol o drogas. Se aplicaron tres criterios de
inclusión: aparición temprana de los síntomas de disforia (antes de la pubertad), ser
androfílicos (en el caso de la población MtF) o ginefílicos (en el caso de la población FtM)
y tener una edad entre 18 y 47 años en el momento del inicio de la investigación. Con estos
criterios, 39 MtFs y 1 FtM fueron excluidos. Para los estudios moleculares se excluyeron los
individuos con aneuploidía cromosómica, inversiones y translocaciones (11 MtF y 8 FtM)
(Fernández et al., 2018). Las características sociodemográficas y clínicas de las poblaciones de
transexuales fueron descritas previamente (Gómez-Gil et al., 2009).
Joselyn Francis Cortés Cortés
86
Los grupos de hombres y mujeres control fueron descritos en estudios previos (Soriguer et
al., 2013). Esta población se seleccionó a partir del censo Pizarra (Málaga). La edad de
inclusión fue de 18-65 años. Los individuos fueron excluidos del estudio si habían sido
hospitalizados por cualquier motivo en las cuatro semanas anteriores al estudio, si estaban
embarazadas, si estaban institucionalizadas en centros geriátricos o si presentaban
cualquier condición médica severa o desorden psiquiátrico (estas condiciones también
fueron aplicadas a la población transexual). La distribución de la edad y el sexo no
difirieron de la población general (Soriguer et al., 2013).
La investigación comenzó previa aprobación de los comités de Ética del Hospital Clínic de
Barcelona, Hospital Carlos Haya de Málaga, la Universidad de A Coruña y la Universidad
Nacional de Educación a Distancia, Madrid (UNED).
3.2. Extracción de sangre periférica
En las Unidades de Identidad de Género del Hospital Clinic de Barcelona y del Hospital
Carlos Haya de Málaga se realizó la extracción de sangre de los participantes. Para el
estudio citológico se extrajo 5ml de sangre periférica en tubos con anticoagulante heparina
(Verma & Babu, 1995) y para el análisis molecular se extrajo 5ml de sangre en tubos con
anticoagulante EDTA (disodium ethylenediaminetetra acetate) para la posterior obtención
del ADN genómico (Aldridge et al., 1984). Las muestras se enviaron el mismo día de la
extracción, por mensajería urgente, al laboratorio de Psicobiología de la UDC para su
estudio.
3.3. Análisis citogenético y molecular del cariotipo
Los cromosomas se obtuvieron de acuerdo con las técnicas estándar de cultivo de
linfocitos T (Moorhead, Nowell, Mellman, Battips, & Hungerford, 1960; den Nijs,
Gonggrijp, Augustinus, & Leeksma 1985) con pequeñas modificaciones (Fernández,
1995). Las muestras se trataron con la enzima tripsina para la obtención del cariotipo por
bandas G, seguido de una tinción con Giemsa (Seabright, 1971).
MATERIAL Y MÉTODOS
87
El análisis molecular del cariotipo se llevó a cabo en la Unidad de Biología Molecular de
los servicios de apoyo a la investigación (SAI) de la UDC, con el microarray de alta
densidad CytoScan™ HD, de Applied Biosystems™, que permite el análisis de las
variaciones del número de copias (CNV, del inglés copy number variation) en el genoma
completo del individuo. El array CytoScan HD incluye 2,67 millones de marcadores CNV,
aproximadamente 750.000 SNPs y 1,9 millones de sondas no polimórficas para la
cobertura de todo el genoma (https://www.mscience.com.au/upload/pages/affy-
microarray/cl00731-rev1-cytoscanhd_brochure-low-res.pdf) (Kearney, South, Wolff,
Lamb, Hamosh, & Rao, 2011). Las CNVs constituyen la fuente de variación genética más
importante que contribuye de forma significativa a nuestra individualidad (Mengual,
2013). Las CNVs se definen como deleciones y duplicaciones de segmentos de ADN que
varían en tamaño, desde 1kb a varios Mb (Iafrate et al., 2004; Sebat et al., 2004) estando
presentes en un número de copias variable, comparables posteriormente con un genoma de
referencia. La mayoría de CNVs son variantes benignas del genoma que no causan
patologías y que contribuyen significativamente a la diversidad fenotípica humana.
Para el análisis molecular del cariotipo primeramente se extrajo el ADN genómico
mediante el kit comercial DNeasy Blood & Tissue Kit de Qiagen (Madrid) y se prosiguió
con el procedimiento diseñado por la casa comercial Applied Biosystems™ que se muestra
a continuación (Figura 9).
El análisis de los resultados se llevó a cabo con el programa Affymetrix® Chromosome
Analysis Suite (ChAS) 2.0 de acuerdo con las instrucciones del fabricante
(www.affymetrix.com/chas). La clasificación de CNVs se obtuvo de la información
depositada en las bases de datos públicas internacionales: GeneCards®
http://www.genecards.org/, MedGen http://www.ncbi.nlm.nih.gov/, ClinVar
http://www.ncbi.nlm.nih.gov/clinvar y Database of Genomic Variants http://dgv.tcag.ca.,
OMIM (https://www.omim.org/) y RefSeq (http://www.ncbi.nlm.nih.gov/RefSeq/).
Joselyn Francis Cortés Cortés
88
Figura 9. Protocolo del microarray de alta densidad CytoScan™ HD diseñado por la casa comercial Applied
Biosystems™.
MATERIAL Y MÉTODOS
89
3.4. Estudio de polimorfismos
Una vez realizado el análisis citogenético y molecular del cariotipo se procedió, mediante
amplificación por PCR, al estudio de los polimorfismos AR-rs193922933, ERβ-
rs113770630, CYP19-rs60271534, ERα-rs3138774, ERα-rs9340799, ERα-rs2234693 y
CYP17-rs743572 (Tabla 4) localizados en los genes AR, ESR2, CYP19A1, ESR1 y
CYP17A1 respectivamente, en la población con Disforia de Género y en la población
control. Cuatro de los polimorfismos analizados son polimorfismos de repeticiones cortas
en tándem (STRs): ERβ-rs113770630, ERα-rs3138774, AR-rs193922933 y CYP19-
rs60271534, y tres son polimorfismos de un único nucleótido (SNPs): ERα-rs9340799,
ERα-rs2234693 y CYP17-rs743572 (Tabla 4). En el caso de los polimorfismos de
repetición o STRs, el genotipo se realizó mediante electroforesis de capilaridad (3130 XL
Genetic Analyzer, Applied Biosystems), y el tamaño de los alelos fue determinado
mediante el programa informático GeneMapper-5 (2012 Applied Biosystems). En el caso
de los polimorfismos de única base o SNPs, los genotipos se obtuvieron a partir de la
digestión enzimática del producto de amplificación, con 5 unidades de las correspondientes
enzimas de restricción: PvuII (New England BioLabs, United Kingdom), XbaI (Roche,
Spain) o MspA1I (New England BioLabs, United Kingdom) (Tabla 4), durante toda la
noche a 37ºC. A continuación se llevó a cabo la visualización de los resultados mediante
electroforesis no desnaturalizante en gel de poliacrilamida al 6% (GE Healthcare, Spain).
La ausencia de restricción en cada caso fue especificada como C, G o A1 respectivamente.
Los genotipos resultantes fueron, con la enzima PvuII C/C, C/T y T/T, con la enzima XbaI
G/G, A/G y A/A, y con la enzima MspA1I A1/A1, A1/A2 y A2/A2, siguiendo la
nomenclatura empleada por (Bentz et al., 2008).
90
Tabla 4.
Condiciones de las reacciones de amplificación por PCR que se emplearon en los estudios moleculares.
Gen Polimorfismo Tipo de
polimorfismo
Secuencia implicada en el polimorfismo
Secuencia de los primers Descripción Condiciones de la PCR Tamaño del fragmento
(pb) AR
rs193922933 STR (CAG)n 5’-GTGCGCGAAGTGATCCAGA-3’ HEX 5’-GTTCCTCATCCAGGACCAGGTA-3’
(Sleddens et al., 1992) 35 ciclos: 92º C 1 min
56º C 1 min 72º C 1 min
202-268
ESR2
rs113770630 STR (CA)n 5’-GGTAAACCATGGTCTGTACC-3’ FAM 5’-AACAAAATGTTGAATGAGTGGG-3’
(Tsukamoto et al., 1998) 35 ciclos: 92º C 40 s
57º C 40 s 72º C 40 s
125-177
CYP19A1
rs60271534 STR (TTTA)n 5’-GCAGGTACTTAGTTAGCTAC-3’ NED 5’-TTACAGTGAGCCAAGGTCGT-3’
(Polymeropoulos et al., 1991) 35 ciclos: 92º C 1 min
58º C 1 min 72º C 1 min
153-193
ESR1
rs3138774 STR (TA)n 5’-GACGCATGATATACTTCACC-3’ FAM 5’-GCAGAATCAAATATCCAGATG-3’
(Van Meurs et al., 2003) 45 ciclos: 94º C 40 s
59º C 40 s 72º C 40 s
160-194
ESR1
rs9340799 SNP A>G 5’-GATATCCAGGGTTATGTGGCA-3’ 5’-AGGTGTTGCCTATTATATTAACCTTGA-3’
(Van Meurs et al., 2003) 45 ciclos: 94º C 50 s
60º C 50 s 72º C 50 s
346
ESR1
rs2234693 SNP T>C 5’-GATATCCAGGGTTATGTGGCA-3’ 5’-AGGTGTTGCCTATTATATTAACCTTGA-3’
(Van Meurs et al., 2003) 45 ciclos: 94º C 50 s
60º C 50 s 72º C 50 s
346
CYP17A1
rs743572 SNP T>C
5’-CATTCGCACTCTGGAGTC-3’ 5’-AGGCTCTTGGGGTACTTG-3’
(Carey et al., 1994) 35 ciclos: 92º C 1 min
56º C 1 min 72º C 1 min
459
MATERIAL Y MÉTODOS
91
3.5.Tratamiento estadístico de los resultados
Para evaluar la posible implicación de los diferentes polimorfismos en la base genética de
la Disforia de Género, se analizaron las frecuencias alélicas y genotípicas en dos grupos
poblacionales independientes, en función de su sexo genético: mujer (grupo FtM vs grupo
control femenino) y varón (grupo MtF vs grupo control masculino). Los análisis se
realizaron con el programa SPSS 23.0 (IBM Corp, Armonk, NY, USA) y el software
SNPStats (https://www.snpstats.net/) considerando significativo un valor de p<0,05.
Para los polimorfismos de repetición STR, el análisis de las frecuencias se realizó con el
test Kruskal-Wallis y el análisis de la varianza. En cuanto a los polimorfismos de una única
base o SNPs, se analizaron las frecuencias alélicas y genotípicas, el equilibrio Hardy-
Weinberg, los diferentes modelos de herencia (co-dominante, dominante, recesivo, sobre-
dominante y aditivo), análisis de interacción mediante regresión logística binaria, con el
software gratuito SNPStats (https://www.snpstats.net/) (Solé, Guinó, Valls, Iniesta, &
Moreno, 2006). En el caso de los polimorfismos situados muy próximos entre sí dentro del
cromosoma, se realizó el estudio del desequilibrio de ligamiento, la estimación de las
frecuencias haplotípicas y el análisis de asociación de los diferentes haplotipos con la
transexualidad.
Para analizar el posible efecto combinado entre los diferentes polimorfismos se realizó un
análisis de interacción cruzada mediante un modelo de regresión logística binaria, siempre
en dos grupos poblacionales independientes en función del sexo genético: grupo FtM vs
grupo control femenino y grupo MtF vs grupo control masculino. Este análisis se realizó
comenzando por el modelo más complejo (efecto combinado de todos los polimorfismos
entre sí) y continuando paso a paso (stepwise) hasta el más sencillo (efectos por parejas o
pairwise). La tasa de falsos positivos en estas pruebas múltiples se controló con la
corrección de Bonferroni, ajustando el valor de corte al número de pruebas realizadas en
cada paso.
Joselyn Francis Cortés Cortés
92
Para poder realizar el análisis de interacción entre los polimorfismos, fue necesario
previamente convertir los polimorfismos de tipo STR en variables dicotómicas (alelos
cortos vs alelos largos). Las frecuencias alélicas y genotípicas se calcularon transformando
los valores de los alelos en cortos (S) o largos (L) respecto a la mediana del grupo control
correspondiente. Los genotipos resultantes fueron S/S (corto-corto), L/L (largo-largo), y
S/L (corto-largo).
En el caso del polimorfismo AR-rs193922933, que se localiza en el cromosoma X, los
individuos con cariotipo 46,XY presentan un único alelo, mientras que los 46,XX
presentan dos alelos. Por esta razón el polimorfismo AR-rs193922933 fue fijado, ajustando
los modelos logísticos para cada alelo (S) vs (L) por separado.
RESULTADOS
95
La presente Tesis Doctoral está enmarcada en la modalidad de compendio de
publicaciones. En este apartado se incorporan los resultados de dichas publicaciones que
constituyen el cuerpo de la investigación realizada, siguiendo un orden lógico de
presentación de los datos, que no es coincidente con la fecha de publicación de los
artículos.
4.1. PRIMER ESTUDIO
Analyses of karyotype by G-banding and high-resolution microarrays in a gender
dysphoria population. Genes and Genomics. 2018; 40(5):465-473. doi:
10.1007/s13258-017-0646-0
Vol.:(0123456789)1 3
Genes & Genomics https://doi.org/10.1007/s13258-017-0646-0
RESEARCH ARTICLE
Analyses of karyotype by G-banding and high-resolution microarrays in a gender dysphoria population
Rosa Fernández1,6 · Antonio Guillamón2 · Esther Gómez‑Gil3 · Isabel Esteva4 · Mari Cruz Almaraz4 · Joselyn Cortés‑Cortés1 · Beatriz Lamas1 · Estefanía Lema5 · Eduardo Pásaro1
Received: 10 June 2017 / Accepted: 29 December 2017 © The Genetics Society of Korea and Springer Science+Business Media B.V., part of Springer Nature 2018
AbstractGender Dysphoria is characterized by a marked incongruence between the cerebral sex and biological sex. To investigate the possible influence of karyotype on the etiology of Gender Dysphoria we carried out the cytogenetic analysis of karyo-types in 444 male-to-females (MtFs) and 273 female-to-males (FtMs) that attended the Gender Identity Units of Barcelona and Málaga (Spain) between 2000 and 2016. The karyotypes from 23 subjects (18 MtFs and 5 FtMs) were also analysed by Affymetrix CytoScan™ high-density (HD) arrays. Our data showed a higher incidence of cytogenetic alterations in Gender Dysphoria (2.65%) than in the general population (0.53%) (p < 0.0001). When G-banding was performed, 11 MtFs (2.48%) and 8 FtMs (2.93%) showed a cytogenetic alteration. Specifically, Klinefelter syndrome frequency was significantly higher (1.13%) (p < 0.0001), however Turner syndrome was not represented in our sample (p < 0.61). At molecular level, HD microarray analysis revealed a 17q21.31 microduplication which encompasses the gene KANSL1 (MIM612452) in 5 out of 18 MtFs and 2 out of 5 FtMs that corresponds to a copy-number variation region in chromosome 17q21.31. In conclusion, we confirm a significantly high frequency of aneuploidy, specifically Klinefelter syndrome and we identified in 7 out of 23 GD individuals the same microduplication of 572 Kb which encompasses the KANSL1 gene.
Keywords 17q21.31 microduplication · Aneuploidy · Gender Dysphoria · KANSL1 · Klinefelter syndrome
Introduction
The condition defined as Gender Dysphoria in adolescents and adults in the fifth edition of the Diagnostic and Statisti-cal Manual of Mental Disorders (DSM-5) (American Psy-chiatric Association 2013), Gender identity disorders in the revised text of the fourth edition (DSM-IV-TR) (American
Psychiatric Association 2000), Transsexualism in the Inter-national Statistical Classification of Diseases 10th revision (ICD-10) (World Health Organization 1993) or Gender Incongruence in the forthcoming ICD-11 (Drescher et al. 2012), is characterized by a marked incongruence between one’s experienced gender and biological sex. The disorder is characterised seeking hormonal treatment and surgical sex reassignment to the experienced gender.
The etiology is complex, but some hypotheses suggest that Gender Dysphoria (GD) arises from inconsistent cer-ebral and genital sexual differentiation (Guillamón et al. 2016). The involvement of genetic factors in GD has been suggested mainly in familial studies (Green 2000), reports of siblings being concordant for GD (Gómez-Gil et al. 2010; Heylens et al. 2012) and analyses of polymorphisms (Hare et al. 2009; Henningsson et al. 2005; Ujike et al. 2009; Fernández et al. 2014a, b, 2015, 2016; Cortés-Cortés et al. 2017).
But humans differ not only at the level of DNA sequence. It has recently been discovered that humans can also differ in the number of copies of each gene
Online ISSN 2092-9293Print ISSN 1976-9571
* Rosa Fernández [email protected]
1 Department of Psychology, Universidade da Coruña, A Coruña, Spain
2 Department of Psychobiology, UNED, Madrid, Spain3 Unit of Gender Identity, Clinic Hospital, Barcelona, Spain4 Unit of Transsexualism and Gender Identity, Carlos Haya
Hospital, Malaga, Spain5 Department of Family, School and Society, Universidad
Internacional de la Rioja, Logroño, Spain6 Department of Psychology, Facultad Ciencias de la
Educación, Universidade da Coruña, 15071 A Coruña, Spain
Genes & Genomics
1 3
(CNV = copy number variants). A difference in the copy number of a gene can increase or decrease the level of that gene’s activity (Redon et al. 2006; de Smith et al. 2008) and contribute to human genetic and phenotypic diver-sity (Itsara et al. 2012). High-resolution microarray-based CNV analysis provides a method to detect microdeletions and microduplications that are undetectable by standard karyotype analysis or fluorescence in situ hybridization (FISH) (Shaikh et al. 2009). This technique also provide a more accurate measurement of mosaicism level (Bal-lif et al. 2006; Cheung et al. 2007; Scott et al. 2010) in comparison with traditional cytogenetic analysis. But to the best of our knowledge, there are no studies to date that have applied HD arrays technology in GD. The aim of this study is to analyse the karyotype at cytogenetic and molec-ular level in the largest GD population analysed to date.
Materials and methods
Subjects
The subjects analysed were 444 male-to-females (MtFs) and 273 female-to-males (FtMs) GD adults that visited the Gender Identity Units of Barcelona and Málaga (Spain) between 2000 and 2016 seeking hormonal and surgical sex reassignment. The diagnosis was made using the DSM-IV-TR or DSM-5 (American Psychiatric Association 2000, 2013), and the ICD-10 (World Health Organization 1993). Nevertheless, all subjects in our study fulfill the concept of transsexualism as defined in DSM-5: all sought a social transition from male-to-female or female-to-male that involved somatic transition through cross-sex hormone treatment and, in some cases, genital surgery.
Sociodemographic and clinical characteristics have been described in detail elsewhere (Bartolucci et al. 2015; Gómez-Gil et al. 2012, 2013, 2014; Guzmán-Parra et al. 2016). Briefly, GD patients frequently had low employ-ment status, lived with their parents, and mainly had a sexual orientation toward same-biological sex partners. The most frequent psychiatric diagnoses were adjustment disorder and social phobia in both groups, and alcohol and substance-related disorders in the MtF group. A remark-able percentage of both groups have attempted suicide (22.8%) or have had suicidal thoughts (52.3%). MtFs were older than FtMs when requesting sex reassignment, but did not differ in age when starting hormonal therapy (often on their own); fewer MtFs had employment requiring higher education qualifications and more had previous and cur-rent histories of alcohol and substance abuse or depend-ence than FtMs.
Cytogenetic analyses
Chromosomes were obtained according to standard tech-niques from peripheral lymphocytes and treated with trypsin for G-banding (Moorhead et al. 1960; Seabright 1971).
Molecular analyses by high‑density arrays
Genomic DNA was extracted using the DNeasy Blood & Tissue Kit from Qiagen (Madrid). The genome-wide DNA copy number analyses were performed with Affymetrix CytoScan™ high-density (HD) array (Madrid) in accord-ance with the manufacturer’s instructions. It has a high reso-lution (1 probe/880 bp; 2.6 million probes-1.9 million CN and non-polymorphic, 750,000 single nucleotide polymor-phism (SNP) probes, and it encompasses almost all known OMIM and RefSeq genes.
Copy number analysis was performed using Affymetrix® Chromosome Analysis Suite (ChAS) 2.0. The classifica-tion of CNV was obtained from information deposited in public international databases, such as GeneCards® http://www.genecards.org, MedGen http://www.ncbi.nlm.nih.gov/medgen, ClinVar http://www.ncbi.nlm.nih.gov/clinvar and Database of Genomic Variants http://dgv.tcag.ca.
Data analysis
All statistical analyses were performed with the IBM SPSS Statistic 23 programme. The chi-squared (χ2) test was used to compare the prevalence of karyotypes. A two-tailed p value of 0.05 was considered to be statistically significant with a 95% confidence interval.
Results
Seven hundred and seventeen karyotypes were determined by G-banding (Table 1), 444 MtFs and 273 FtMs. The ratio of MtF:FtM was 1.63. There were 433 MtFs and 265 FtMs with an unremarkable karyotype. Klinefelter syndrome was confirmed in 5 MtFs, with or without mosaicism. The Y-heterochromatic region was deleted in 2 individuals. Ten pericentric inversions were also found: two pericentric inver-sions of chromosome 12, five pericentric inversions of chro-mosome 9 and three pericentric inversions of chromosome 2. There were two Robertsonian translocations: one between chromosomes 13 and 14, and one between chromosomes 9 and 22 (Table 1).
The percentage of altered karyotypes was very similar in MtF (2.48%) and FtM groups (2.93%) (χ2 = 0.127; p < 0.72) (2.65% in global GD group). The frequency of chromosomal
Genes & Genomics
1 3
alterations reported in the general population is lower; Maeda et al. (1991) found a frequency of 0.53% in a series of 14,835 live-born infants (χ2 = 47.45; p < 0.0001). Five MtF individuals were diagnosed with Klinefelter syndrome, three as no mosaics 47,XXY and two as mosaics, corresponding to a frequency of 1.13% among the MtF population. The rate is significantly higher than expected compared to the gen-eral male population (0.09%) (χ2 = 29.78; p < 0.001). Maeda et al. (1991) reported seven male infants with a 47,XXY karyotype in a consecutive series of 14,835 liveborn infants (7608 males and 7227 females). On the other hand, we did not find any karyotype with a Turner complement (45,X) with or without mosaicism, but the difference was not sta-tistically significant with regards to the general population (χ2 = 0.264; p < 0.61).
Moreover, balanced reciprocal translocations are the most frequent chromosome rearrangements in humans, occur-ring in 0.16–0.20% (1/625–1/500) of live births (Hook and Hamerton 1977; Van Dyke et al. 1983; Jacobs et al. 1992). Two MtF individuals showed balanced reciprocal transloca-tions t(13;14) and t(9;22), corresponding to a frequency of 0.28% among the GD population (Table 1). The rate was not statistically significant with regards to the general population (χ2 = 0.211; p < 0.65).
Additionally, pericentric inversions are also a common chromosomal anomaly in the general population. Particu-larly, pericentric inversion of chromosome 9 is one of the most common variations of the human karyotype with no clinical significance (McGowan-Jordan et al. 2016). This inversion involves the heterochromatic region of chromo-some 9 and exists in multiple forms, with inv(9)(p12q13) being the most common (Starke et al. 2002). The estimated frequency varies from 1 to 4%, depending on the population studied, but Šípek et al. (2015) identified 421 total cases of inv(9) among 26,597 individuals analyzed and the total incidence of inv(9) was 1.6% with a higher, although not
statistically significant, prevalence in females. In our GD population we identified ten individuals with pericentric inversions, the inv(9) being the most frequent. The rate is not statistically significant with regards to the general population (χ2 = 0.155; p < 0.69). But, although the pericentric inversion of chromosome 9 is one of the most common variations of the human karyotype, it has no clinical significance.
Additionally, the karyotypes from 23 subjects (18 MtFs and 5 FtMs) were analyzed by Affymetrix high-density arrays. All the gain/loss polymorphisms are described in Table 2. The same 17q21.31 microduplication in position chr17:44,187,491–44,784,639 out of the 424 kb critical region (41,046,729–41,470,954 Mb, hg17) was found in 5 out of 18 MtFs and 2 out of 5 FtMs. The microduplica-tion ranged between 572 and 597 Kb and encompasses the gene KANSL1 (MIM612452) (Fig. 1). This polymorphism was described in a control population by Sebat et al. (2004) as CNP 79, an unstable but non pathogenic copy number polymorphic region (Sharp et al. 2006). Large copy number polymorphic variants (CNVs) have been recently found as structural polymorphisms of the human genome of unknown biological significance. The GD population examined by HD-arrays was in good health without any significant medi-cal history.
Discussion
The two main findings of our study are: firstly, our data confirms a significantly higher frequency of cytogenetic alterations and specifically a significantly higher frequency of Klinefelter syndrome, in GD population. Secondly, we found the same microduplication at 17q21.31 in 7 out of 23 individuals in position chr17:44,187,491–44,784,639. This microduplication encompasses the KANSL1 gene (MIM612452) and was described in the control population
Table 1 Cytogenetic analysis of G-banding karyotype in the MtF and FtM population
MtF population FtM population
Karyotype N % Karyotype N %
Karyotype available 444 100 Karyotype available 273 100Unremarkable karyotype 46,XY 433 97.52 Unremarkable karyotype 46,XX 265 97.0747,XXY 3 0.6846,XY/47,XXY (60%/ 40%) 1 0.2347,XYY/48,XXYY (90%/ 10%) 1 0.2346,XY,Yqh- 2 0.4546,XY, inv(12)(p11q21) 0 0 46,XX, inv(12)(p11q21) 2 0.7346,XY, inv(9)(p11q12) 1 0.23 46,XX, inv(9)(p11q12) 4 1.4746,XY, inv(2)(p11q13) 1 0.23 46,XX, inv(2)(p11q13) 2 0.7345,XY, t(13;14)(q10:q10) 1 0.2346,XY/46,XY, t(9;22)(q34;q11) (60%/ 40%) 1 0.23Total in MtF population 11 2.48 Total in FtM population 8 2.93
Genes & Genomics
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Genes & Genomics
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as a non pathogenic copy number polymorphic region of unknown biological significance.
The frequency of cytogenetic alterations found in the cur-rent study (2.65% in a population of 717 GD individuals) appears to be quite similar to those previously reported by Bearman (2007) and Inoubli et al. (2011) (Table 3). Bear-man (2007) reported a frequency of 2.5% of altered karyo-types in a population of 400 GD people, and Inoubli et al. (2011) reported a frequency of 2.45% for karyotype altera-tions in a population of 368 individuals (Inoubli et al. 2011). However, Auer et al. (2013) found a slightly higher overall frequency of chromosomal abnormality rate of 2.9% in a population of 139 subjects (56 MtFs and 83 FtMs).
Wylie and Steward (2008) found one Klinefelter syn-drome with mosaicism in a population of 52 GD individuals, whereas Hengstschläger et al. (2003) observed one balanced translocation in a group of 61 GD individuals (Table 3). The frequency of karyotype alterations found by Hengstschläger et al. (2003), Wylie and Steward (2008), and Vujovic et al. (2009) differs significantly from our data, but the samples analyzed by these authors were very small. Furthermore, the Barr body technique used by Auer et al. (2013) only determines the number of inactive X chromosomes and is not applicable to the study of other chromosomal altera-tions. Most disconcerting is the study of Vujovic et al. (2009) determining a 0% prevalence of aneuploidy. Unfor-tunately those authors did not specify the type of technique employed, the number of cells analyzed or the origin of those cells.
In our study, 5 MtF individuals were diagnosed with Klinefelter syndrome, corresponding to a frequency of 1.13% among MtFs. The rate is significantly higher than expected compared to the general population, but we cannot rule out a probable underdiagnosis in the general population, as suggested by Bojesen and Gravholt (2007). Klinefelter syndrome is the most common sex-chromosome aneuploidy in humans, affecting approximately 1 in every 600 new-born males (Wikström and Dunkel 2011). Testosterone levels are significantly lower in Klinefelter men, starting at puberty (Smyth and Bremner 1998). Furthermore, Klinefelter boys are less likely to show stereotypical masculine interests, and are less sexually interested in girls compared to their 46,XY counterparts (Ngun et al. 2014) which could be a conse-quence of lower testosterone levels at puberty (Bancroft et al. 1982; Ratcliffe et al. 1982). This lower testosterone level could also be involved in the increased rate of gender disconformity observed among Klinefelter males. In fact, several studies suggest a genetic vulnerability of GD based on deregulation in sexual hormone levels (testosterone and estrogens) during prenatal and neonatal development (Swaab 2007).
Additionally, at molecular level, the same 17q21.31 microduplication in position chr17:44,187,491–44,784,639 Ta
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was found in 5 out of 18 MtFs and 2 out of 5 FtMs. The microduplication encompasses the gene KANSL1 whose disruption is associated with the full clinical spectrum of 17q21.31 microdeletion syndrome (MIM 610,443) also known as the Koolen-De Vries Syndrome (Zollino et al. 2012; Moreno-Igoa et al. 2015). But, while the 17q21.31 microdeletion associated phenotype is now clearly estab-lished, the microduplication shows variable penetrance and expressivity. It is associated with very variable phenotypes, but behavioural problems and poor social interaction seem
to be the most prevalent (Grisart et al. 2009). The seven GD individuals with a 17q21.31 microduplication showed a normal phenotype, without any related clinical features.
The KANSL1 protein is an evolutionarily conserved reg-ulator of the chromatin modifier KAT8, which influences gene expression through histone H4 lysine 16 (H4K16) acetylation. RNA sequencing studies and the presence of learning deficiencies in Drosophila melanogaster mutants suggest an important role for this gene in the regulation of complex brain function (Koolen et al. 2012).
Fig. 1 Chromosome Analysis representation. The same 17q21.31 microduplication in position chr17:44,187,491–44,784,639 was found in 5 out of 18 MtFs and 2 out of 5 FtMs. The microduplication ranged between 572 and 597 Kb and encompasses the gene KANSL1 (MIM612452)
Table 3 Major cytogenetic studies in Gender Dysphoria
a Based only on karyotype results
Publication Investigation Methodology Sample N Frequency of aneuploidy
Total MtF FtM
Auer et al. (2013) Retrospective analysis G banding/Barr body Lymphocytes/Hair root 139 (56 MtF/83 FtM)a 2.9a 1.2a 5.4a
Our results Cytogenetic G banding Lymphocytes 717 (444 MtF/273 FtM) 2.65 2.48 2.93Bearman (2007) Not specified Not specified Not specified 400 2.5 – –Inoubli et al. (2011) Retrospective analysis G banding Lymphocytes 368 (251 MtF/117 FtM) 2.45 3.18 0.85Wylie and Steward (2008) Cytogenetic Not specified Not specified 52 (46 MtF/6 FtM) 1.92 2.17 0Hengstschläger et al.
(2003)Cytogenetic G banding, FISH Lymphocytes 61 (30 MtF/31FtM) 1.64 3.33 0
Vujovic et al. (2009) Not specified Not specified Not specified 147(71MtF/76 FtM) 0 0 0
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1 3
The present study has several strengths. This is the first time that HD-microarray technology has been applied in a GD population. But it also has limitations. For example, microarray-based analysis will not detect genomic altera-tions that do not result in changes in the amount of genetic material (copy neutral alterations), such as balanced trans-locations and inversions. Furthermore, we only analyzed 23 subjects (18 MtFs and 5 FtMs) at molecular level and it would be desirable to increase the number of subjects analyzed.
Conclusions
The analysis of karyotype by G-banding and by HD arrays in GD population allowed us to confirm the inexistence of a karyotype alteration specific to GD. But, although we do not know its significance, we confirm a higher incidence of aneuploidy and a higher frequency of Klinefelter syndrome than in the general population. Additionally, we found the same microduplication at 17q21.31 in 7 out of 23 individuals that encompasses the gene KANSL1.
Acknowledgements We are grateful to the patients and controls who participated in the study. We also are grateful to all the people who contributed to this work.
Author contributions Conception and design: RF, EP, AG, EG-G, IE, MCA. Acquisition of data: RF, JC-C, LB, LE. Analysis and interpreta-tion of data: RF, EP, AG, EG-G, IE, MCA, JC-C, LB, LE. Drafting the article: RF, EP, AG, EG-G, IE, MCA, JC-C, LB, LE. Revising it for intellectual content: EP, AG, RF, EG-G, IE.
Funding This work was supported by Grants FPU-MECD 15/02558 (to J.C.C.), PSI2010-15115 (to E.P.), PSI2014-58004-P (to A.G.) and the Xunta de Galicia (grant number ED431B 2016/013).
Compliance with ethical standards
Conflict of interest The authors Rosa Fernández, Antonio Guillamón, Esther Gómez-Gil, Isabel Esteva, Mari Cruz Almaraz, Joselyn Cortés-Cortés, Beatriz Lamas, Estefanía Lema, and Eduardo Pásaro declare that they have no conflict of interest.
Ethical approval The study was initiated after obtaining approval from the Ethics Committees of the Universidad de A Coruña (Spain), the Clínic Hospital of Barcelona (Spain), the Carlos Haya Hospital of Mál-aga (Spain) and the Universidad Nacional de Educación a Distancia (UNED) of Madrid (Spain). We drafted a protocol and obtained written informed consent from each of the participants in the study.
References
Amer ican Psych ia t r i c Assoc ia t ion (2000) Diagnos-tic and statistical manual of mental disorders, 4th edn.
DSM-IV-TR. American Psychiatric Publishing, Inc., Wash-ington, DC. https://doi.org/10.1176/dsm10.1176/appi.books.9780890420249$4dsm-iv-tr
American Psychiatric Association (2013) Diagnostic and statistical manual of mental disorders, 5th edn. DSM-5. American Psychi-atric Publishing, Inc., Washington, DC. https://doi.org/10.1176/appi.books.9780890425596.893619
Auer MK, Fuss J, Stalla GK, Athanasoulia AP (2013) Twenty years of endocrinologic treatment in transsexualism: analyzing the role of chromosomal analysis and hormonal profiling in the diagnostic work-up. Fertil Steril 100:1103–1110. https://doi.org/10.1016/j.fertnstert.2013.05.047
Ballif BC, Rorem EA, Sundin K, Lincicum M, Gaskin S, Coppinger J, Kashork CD, Shaffer LG, Bejjani BA (2006) Detection of low-level mosaicism by array CGH in routine diagnostic specimens. Am J Med Genet A 140:2757–2767. https://doi.org/10.1002/ajmg.a.31539
Bancroft J, Axworthy D, Ratcliffe S (1982) The personality and psycho-sexual development of boys with 47 XXY chromosome constitution. J Child Psychol Psychiatry 23:169–180. https://doi.org/10.1111/j.1469-7610.1982.tb00061.x
Bartolucci C, Gómez-Gil E, Salamero M, Esteva I, Guillamón A, Zubi-aurre L, Molero F, Montejo AL (2015) Sexual quality of life in gender-dysphoric adults before genital sex reassignment surgery. J Sex Med 12:180–188. https://doi.org/10.1111/jsm.12758
Bearman G (2007) Karyotyping and genetics in the transgendered population. In: Ettner R, Monstrey S, Eyler AE (eds) Principles of transgender medicine and surgery. The Haworth Press, Inc., Binghamton, pp 223–232
Bojesen A, Gravholt CH (2007) Klinefelter syndrome in clinical prac-tice. Nat Clin Pract Urol 4:192–204. https://doi.org/10.1038/ncpuro0775
Cheung SW, Shaw CA, Scott DA, Patel A, Sahoo T, Bacino CA, Purs-ley A, Li J, Erickson R, Gropman AL et al (2007) Microarray-based CGH detects chromosomal mosaicism not revealed by conventional cytogenetics. Am J Med Genet A 143A:1679–1686. https://doi.org/10.1002/ajmg.a.31740
Cortés-Cortés J, Fernández R, Teijeiro N, Gómez-Gil E, Esteva I, Almaraz MC, Guillamón A, Pásaro E (2017) Genotypes and hap-lotypes of the estrogen receptor alpha gene (ESR1) are associated with female-to-male gender dysphoria. J Sex Med 14:464–472. https://doi.org/10.1016/j.jsxm.2016.12.234
de Smith AJ, Walters RG, Froguel P, Blakemore AI (2008) Human genes involved in copy number variation: mechanisms of origin, functional effects and implications for disease. Cytogenet Genome Res 123:17–26. https://doi.org/10.1159/000184688
Drescher J, Cohen-Kettenis P, Winter S (2012) Minding the body: situ-ating gender identity diagnoses in the ICD-11. Int Rev Psychiatry 24:568–577. https://doi.org/10.3109/09540261.2012.741575
Fernández R, Esteva I, Gómez-Gil E, Rumbo T, Almaraz MC, Roda E, Haro-Mora JJ, Guillamón A, Pásaro E (2014a) Association study of ERβ, AR, and CYP19A1 genes and MtF transsexualism. J Sex Med 11:2986–2994. https://doi.org/10.1111/jsm.12673
Fernández R, Esteva I, Gómez-Gil E, Rumbo T, Almaraz MC, Roda E, Haro-Mora JJ, Guillamón A, Pásaro E (2014b) The (CA)n poly-morphism of ERβ gene is associated with FtM transsexualism. J Sex Med 11:720–728. https://doi.org/10.1111/jsm.12398
Fernández R, Cortés-Cortés J, Esteva I, Gómez-Gil E, Almaraz MC, Lema E, Rumbo T, Haro-Mora JJ, Roda E, Guillamón A et al (2015) The CYP17 MspA1 polymorphism and the gender dyspho-ria. J Sex Med 12:1329–1333. https://doi.org/10.1111/jsm.12895
Fernández R, Cortés-Cortés J, Gómez-Gil E, Esteva de Antonio I, Almaraz MC, Guillamón A, Pásaro E (2016) The CYP17-MspA1 rs743572 polymorphism is not associated with gender dyspho-ria. Genes Genomics 38:1145–1150. https://doi.org/10.1007/s13258-016-0456-9
Genes & Genomics
1 3
Gómez-Gil E, Esteva I, Almaraz MC, Pasaro E, Segovia S, Guil-lamon A (2010) Familiality of gender identity disorder in non-twin siblings. Arch Sex Behav 39:546–552. https://doi.org/10.1007/s10508-009-9524-4
Gómez-Gil E, Zubiaurre-Elorza L, Esteva I, Guillamon A, Godás T, Almaraz MC, Halperin I, Salamero M (2012) Hormone-treated transsexuals report less social distress, anxiety and depression. Psychoneuroendocrinology 37:662–670. https://doi.org/10.1007/s11136-013-0497-3
Gómez-Gil E, Gutiérrez F, Cañizares S, Zubiaurre-Elorza L, Mon-ràs M, Esteva de Antonio I, Salamero M, Guillamón A (2013) Temperament and character in transsexuals. Psychiatry Res 210:969–974. https://doi.org/10.1016/j.psychres.2013.07.040
Gómez-Gil E, Zubiaurre-Elorza L, Esteva de Antonio I, Guilla-mon A, Salamero M (2014) Determinants of quality of life in Spanish transsexuals attending a gender unit before genital sex reassignment surgery. Qual Life Res 23:669–676. https://doi.org/10.1016/j.psyneuen.2011.08.010
Green R (2000) Birth order and ratio of brothers to sisters in trans-sexuals. Psychol Med 30:789–795. https://doi.org/10.1017/S0033291799001932
Grisart B, Willatt L, Destrée A, Fryns J-P, Rack K, de Ravel T, Rosenfeld J, Vermeesch JR, Verellen-Dumoulin C, Sandford R (2009) 17q21.31 microduplication patients are characterised by behavioural problems and poor social interaction. J Med Genet 46:524–530. https://doi.org/10.1136/jmg.2008.065367
Guillamón A, Junqué C, Gómez-Gil E (2016) A review of the status of Brain structure research in transsexualism. Arch Sex Behav 45:1615–1648. https://doi.org/10.1007/s10508-016-0768-5
Guzmán-Parra J, Sánchez-Álvarez N, de Diego-Otero Y, Pérez-Costillas L, Esteva de Antonio I, Navais-Barranco M, Castro-Zamudio S, Bergero-Miguel T (2016) Sociodemographic char-acteristics and psychological adjustment among transsexuals in Spain. Arch Sex Behav 45:587–596. https://doi.org/10.1007/s10508-015-0557-6
Hare L, Bernard P, Sánchez FJJ, Baird PNN, Vilain E, Kennedy T, Har-ley VRR (2009) Androgen receptor repeat length polymorphism associated with male-to-female transsexualism. Biol Psychiatry 65:93–96. https://doi.org/10.1016/j.biopsych.2008.08.033
Hengstschläger M, van Trotsenburg M, Repa C, Marton E, Huber JC, Bernaschek G (2003) Sex chromosome aberrations and trans-sexualism. Fertil Steril 79:639–640. https://doi.org/10.1016/S0015-0282(02)04805-7
Henningsson S, Westberg L, Nilsson S, Lundstrom B, Ekselius L, Bodlund O, Lindstrom E, Hellstrand M, Rosmond R, Eriksson E et al (2005) Sex steroid-related genes and male-to-female trans-sexualism. Psychoneuroendocrinology 30:657–664. https://doi.org/10.1016/j.psyneuen.2005.02.006
Heylens G, De Cuypere G, Zucker KJ, Schelfaut C, Elaut E, Vanden Bossche H, De Baere E, T’Sjoen G (2012) Gender identity dis-order in twins: a review of the case report literature. J Sex Med 9:751–757. https://doi.org/10.1111/j.1743-6109.2011.02567.x
Hook E, Hamerton J (1977) The frequency of chromosome abnormali-ties detected in consecutive newborn studies—differences between studies—results by sex and by severity of phenotypic involvement. In: Hook E, Porter L (eds) Population cytogenetics. Academic Press, New York, pp 66–79
Inoubli A, De Cuypere G, Rubens R, Heylens G, Elaut E, Van Cae-negem E, Menten B, T’Sjoen G (2011) Karyotyping, is it worth-while in transsexualism? J Sex Med 8:475–478. https://doi.org/10.1111/j.1743-6109.2010.02130.x
Itsara A, Vissers LELM, Steinberg KM, Meyer KJ, Zody MC, Koolen DA, de Ligt J, Cuppen E, Baker C, Lee C et al (2012) Resolv-ing the breakpoints of the 17q21.31 microdeletion syndrome with next-generation sequencing. Am J Hum Genet 90:599–613. https://doi.org/10.1016/j.ajhg.2012.02.013
Jacobs PA, Browne C, Gregson N, Joyce C, White H (1992) Estimates of the frequency of chromosome abnormalities detectable in unse-lected newborns using moderate levels of banding. J Med Genet 29:103–108
Koolen DA, Kramer JM, Neveling K, Nillesen WM, Moore-Barton HL, Elmslie F V, Toutain A, Amiel J, Malan V, Tsai AC-H et al (2012) Mutations in the chromatin modifier gene KANSL1 cause the 17q21.31 microdeletion syndrome. Nat Genet 44:639–641. https://doi.org/10.1038/ng.2262
Maeda T, Ohno M, Matsunobu A, Yoshihara K, Yabe N (1991) A cytogenetic survey of 14,835 consecutive liveborns. Jinrui Iden-gaku Zasshi 36:117–129. https://doi.org/10.1007/BF01876812
McGowan-Jordan J, Simons A, Schmid M (2016) ISCN: an inter-national system for human cytogenomic nomenclature. Karger Publishers, Basel
Moorhead PS, Nowell PC, Mellman WJ, Battips DM, Hungerford DA (1960) Chromosome preparations of leukocytes cultured from human peripheral blood. Exp Cell Res 20:613–616. https://doi.org/10.1016/0014-4827(60)90138-5
Moreno-Igoa M, Hernández-Charro B, Bengoa-Alonso A, Pérez-Juana-del-Casal A, Romero-Ibarra C, Nieva-Echebarria B, Ramos-Arroyo MA (2015) KANSL1 gene disruption associated with the full clinical spectrum of 17q21.31 microdeletion syndrome. BMC Med Genet 16:68. https://doi.org/10.1186/s12881-015-0211-0
Ngun TC, Ghahramani NM, Creek MM, Williams-Burris SM, Barseghyan H, Itoh Y, Sánchez FJ, McClusky R, Sinsheimer JS, Arnold AP et al (2014) Feminized behavior and brain gene expres-sion in a novel mouse model of Klinefelter syndrome. Arch Sex Behav 43:1043–1057. https://doi.org/10.1007/s10508-014-0316-0
Ratcliffe SG, Bancroft J, Axworthy D, McLaren W (1982) Klinefelter’s syndrome in adolescence. Arch Dis Child 57:6–12
Redon R, Ishikawa S, Fitch KR, Feuk L, Perry GH, Andrews TD, Fiegler H, Shapero MH, Carson AR, Chen W et al (2006) Global variation in copy number in the human genome. Nature 444:444–454. https://doi.org/10.1038/nature05329
Scott SA, Cohen N, Brandt T, Toruner G, Desnick RJ, Edelmann L (2010) Detection of low-level mosaicism and placental mosaicism by oligonucleotide array comparative genomic hybridization. Genet Med 12:85–92. https://doi.org/10.1097/GIM.0b013e3181cc75d0
Seabright M (1971) A rapid banding technique for human chro-mosomes. Lancet 2:971–972. https://doi.org/10.1016/S0140-6736(71)90287-X
Sebat J, Lakshmi B, Troge J, Alexander J, Young J, Lundin P, Månér S, Massa H, Walker M, Chi M et al (2004) Large-scale copy num-ber polymorphism in the human genome. Science 305:525–528. https://doi.org/10.1126/science.1098918
Shaikh TH, Gai X, Perin JC, Glessner JT, Xie H, Murphy K, O’Hara R, Casalunovo T, Conlin LK, D’Arcy M et al (2009) High-res-olution mapping and analysis of copy number variations in the human genome: a data resource for clinical and research appli-cations. Genome Res 19:1682–1690. https://doi.org/10.1101/gr.083501.108
Sharp AJ, Hansen S, Selzer RR, Cheng Z, Regan R, Hurst JA, Stewart H, Price SM, Blair E, Hennekam RC et al (2006) Discovery of previously unidentified genomic disorders from the duplication architecture of the human genome. Nat Genet 38:1038–1042. https://doi.org/10.1038/ng1862
Šípek A, Panczak A, Mihalová R, Hrčková L, Suttrová E, Sobotka V, Lonský P, Kaspříková N, Gregor V (2015) Pericentric inversion of human chromosome 9 epidemiology study in Czech males and females. Folia Biol (Praha) 61:140–146
Smyth CM, Bremner WJ (1998) Klinefelter syndrome. Arch Intern Med 158:1309–1314. https://doi.org/10.1001/archinte.158.12.1309
Starke H, Seidel J, Henn W, Reichardt S, Volleth M, Stumm M, Behrend C, Sandig KR, Kelbova C, Senger G et al (2002) Homologous
Genes & Genomics
1 3
sequences at human chromosome 9 bands p12 and q13-21.1 are involved in different patterns of pericentric rearrangements. Eur J Hum Genet 10:790–800. https://doi.org/10.1038/sj.ejhg.5200889
Swaab DF (2007) Sexual differentiation of the brain and behavior. Best Pract Res Clin Endocrinol Metab 21:431–444. https://doi.org/10.1016/j.beem.2007.04.003
Ujike H, Otani K, Nakatsuka M, Ishii K, Sasaki A, Oishi T, Sato T, Okahisa Y, Matsumoto Y, Namba Y et al (2009) Association study of gender identity disorder and sex hormone-related genes. Prog Neuro-Psychopharmacol Biol Psychiatry 33:1241–1244. https://doi.org/10.1016/j.pnpbp.2009.07.008
Van Dyke DL, Weiss L, Roberson JR, Babu VR (1983) The frequency and mutation rate of balanced autosomal rearrangements in man estimated from prenatal genetic studies for advanced maternal age. Am J Hum Genet 35:301–308
Vujovic S, Popovic S, Sbutega-Milosevic G, Djordje-vic M, Gooren L (2009) Transsexualism in Serbia: a
twenty-year follow-up study. J Sex Med 6:1018–1023. https://doi.org/10.1111/j.1743-6109.2008.00799.x
Wikström AM, Dunkel L (2011) Klinefelter syndrome. Best Pract Res Clin Endocrinol Metab 25:239–250. https://doi.org/10.1016/j.beem.2010.09.006
World Health Organization (1993) The ICD-10. Classification of men-tal and behavioural disorders. Diagnostic criteria for research. World Health Organization, Geneva
Wylie KR, Steward D (2008) A consecutive series of 52 transsexual people presenting for assessment and chromosomal analysis at a gender identity clinic. Int J Transgenderism 10:147–148. https://doi.org/10.1080/15532730802297330
Zollino M, Orteschi D, Murdolo M, Lattante S, Battaglia D, Stefanini C, Mercuri E, Chiurazzi P, Neri G, Marangi G (2012) Mutations in KANSL1 cause the 17q21.31 microdeletion syndrome phe-notype. Nat Genet 44:636–638. https://doi.org/10.1038/ng.2257
RESULTADOS
105
4.2. SEGUNDO ESTUDIO
The CYP17-MspA1 rs743572 polymorphism is not associated with Gender
Dysphoria. Genes and Genomics. 2016; 38(12):1145-1150. doi: 10.1007/s13258-016-
0456-9
RESEARCH ARTICLE
The CYP17-MspA1 rs743572 polymorphism is not associatedwith gender dysphoria
Rosa Fernandez1• Joselyn Cortes-Cortes1
• Esther Gomez-Gil2 • Isabel Esteva3•
Mari Cruz Almaraz3• Antonio Guillamon4,5
• Eduardo Pasaro1
Received: 31 May 2016 / Accepted: 11 July 2016 / Published online: 18 July 2016
� The Genetics Society of Korea and Springer-Science and Media 2016
Abstract Gender dysphoria is commonly thought to arise
from discrepant cerebral and genital sexual differentiation.
Increasing evidence supports the idea of genetic vulnera-
bility. The purpose of this paper was to investigate whether
the polymorphism CYP17-MspA1 rs743572 is associated
with gender dysphoria. Fragments that included the
rs743572 polymorphism were PCR amplified and digested
with MspA1 in 317 MtFs, 223 FtMs, 358 control men and
264 control women. The allele/genotype frequencies were
compared between groups, with the 1000 Genomes Data
Base and with international literature. Allele and genotype
frequencies did not differ significantly between the FtM
and female control groups (v2 = 0.631; p = 0.43 and
v2 = 2.767; p = 0.25), or between the MtF and male
control groups (v2 = 0.105; p = 0.74 and v2 = 0.789;
p = 0.67). A2 frequency was higher in the FtM (0.43) than
the female control group (0.41), male control group (0.40),
or MtF group (0.39), but this difference did not reach
statistical significance. Genotype frequencies did not differ
significantly between groups (p = 0.66), between geno-
types (p = 0.4) or between sexes (p = 0.66). Our data
contradict previous findings about the CYP17-MspA1
rs743572 polymorphism and gender dysphoria and concur
with the 1000 Genomes Data Base, which shows that the
allele frequencies vary between countries and ethnicities
but not between sexes. Our data do not support a hypo-
thetical involvement of the rs743572 polymorphism in the
genetic basis of gender dysphoria.
Keywords CYP17A1 � CYP17-MspA1 polymorphism �Female-to-male � Gender dysphoria � Male-to-female �rs743572
Introduction
Gender dysphoria in adolescents and adults (DSM-V)
(American Psychiatric Association 2013), also known as
gender identity disorder in DSM-IV-TR (American Psy-
chiatric Association 2000), transsexualism in the ICD-10
(World Health Organization 1993) or gender incongruence
in the future ICD-11 (Drescher et al. 2012), is characterized
by a marked incongruence between ones experienced
gender and biological sex (American Psychiatric Associa-
tion 2013).
The etiology is complex, but some hypotheses suggest
that gender dysphoria arises from discrepant cerebral and
genital sexual differentiation (Guillamon et al. 2016).
Biological and environmental factors both contribute to
gender identity (Cohen-Kettenis and Gooren 1999; Heylens
et al. 2012; Savic et al. 2010), but there is also increasing
evidence to support the idea of genetic vulnerability (Fer-
nandez et al. 2014; Hare et al. 2009; Henningsson et al.
2005; Ujike et al. 2009).
In 2008 Bentz et al. (2008) expanded the list of genes
involved in gender dysphoria to include gene CYP17A1 in
a case-control study in a transsexual population of North-
ern European ancestry (Austria) consisting of 102 MtF
& Rosa Fernandez
1 Departamento de Psicologıa (Area Psicobiologıa), Facultad
Ciencias de la Educacion, Universidade da Coruna,
15071 A Coruna, Spain
2 Gender Identity Unit, Clinic Hospital, Barcelona, Spain
3 Gender Identity Unit, Carlos Haya Hospital, Malaga, Spain
4 Department of Psychobiology, UNED, Madrid, Spain
5 Spanish Academy of Psychology, Madrid, Spain
123
Genes Genom (2016) 38:1145–1150 Online ISSN 2092-9293
DOI 10.1007/s13258-016-0456-9 Print ISSN 1976-9571
(male-to-female) and 49 FtM (female-to-male) subjects.
They found that carrying the mutated allele C (also known
as A2) was significantly associated with FtM, but not with
MtF gender dysphoria. Dominant, recessive, and gene-
dosage genetic models were analyzed, and all three models
confirmed the association between allele A2 and gender
dysphoria but only in the FtM group. Our group analyzed
the same polymorphism (Fernandez et al. 2015) in an
European-origin population from Spain, and found a sex-
dependent allele distribution FtM[MtF that reached sta-
tistical significance although the allele frequencies were
not gender specific in the general population. This could
suggest A2 involvement in the genetic basis of gender
dysphoria since allele frequencies in the general population
seem to be clearly related to geographic origin and ethnic
background but not sex. Nevertheless, the significant dif-
ferences only existed between FtM and MtF but not
between FtM and control XX or between MtF and control
XY groups. Moreover, the odds ratio analysis indicated no
significant differences in the three genetic models of heri-
tability examined: dominant, recessive, and gene dosage
(Fernandez et al. 2015).
The discovery that the CYP17A1 gene is polymorphic
prompted investigation of the role of gene variants in the
etiology of multiple diseases and conditions in which
estrogens or androgens play an important role (Sharp
2004). The single base change of T (thymine) to C (cy-
tosine) creates a recognition site for the restriction enzyme
MspA1, allowing a simple screening procedure. The T[C
change is considered a gain of function mutation, and the
mutant homozygote CC genotype (also called A2/A2) has
been linked to elevated levels of serum and tissue con-
centrations of testosterone, progesterone and estradiol
(Feigelson et al. 2002).
The aim of this study was to determine in a larger
sample whether the single-nucleotide polymorphism
CYP17-MspA1, also known as rs743572, is associated with
gender dysphoria.
Method
Subjects
The analyzed groups were comprised of 317 MtFs, 223
FtMs, 358 control males and 264 control females recruited
through the Andalusian Gender Identity Unit (Carlos Haya
Hospital of Malaga, Spain) and the Gender Identity Unit of
Catalonia (Clınic Hospital of Barcelona, Spain). All sub-
jects were diagnosed with gender dysphoria in adults
(302.85) according to the DSM-V (American Psychiatric
Association 2013) or DSM-IV-TR (American Psychiatric
Association 2000) and were examined by an endocrinolo-
gist to rule out anomalies of the external genitalia and
internal sex organs. Criteria for exclusion were head
trauma, neurological disorder, major medical condition and
history of alcohol and/or drug abuse. All dysphoric subjects
presented early-onset and were attracted to individuals of
their natal sex.
The control groups consisted of two random groups of
individuals who were pair matched for sex, ethnicity and
geographical origin adjusted with the dysphoric groups. All
participants were of Spanish origin with European ances-
try, and free of any neurological, systemic, or psychiatric
illness, as verified in a detailed interview.
Genetic analysis
Genomic DNA was extracted from peripheral blood using
the DNeasy Blood & Tissue Kit (Qiagen, Madrid, Spain).
A fragment of CYP17A1 was amplified by polymerase
chain reaction (PCR) following the specifications outlined
by Carey et al. (Carey et al. 1994), obtaining a fragment of
459 bp that included the site of the T-to-C substitution
polymorphism. The amplification product was digested
overnight with enzyme MspA1 (New England Biolabs,
Madrid, Spain) in accordance with the manufacturer’s
instructions and visualized in a 6 % polyacrylamide non-
denaturing electrophoresis gel (GeneGel Excel 12.5/24 Kit
from GE Healthcare, Barcelona, Spain). Genotype was
distinguished as follows: the presence of the base change
(C) in both alleles (homozygous A2/A2 individuals) will
generate fragments of 124 and 335 bp. Heterozygous
individuals (CT) will have three fragments of 459, 335 and
124 bp (heterozygous A1/A2). A homozygous (T) individ-
ual would only generate an uncut PCR product of 459 bp
(homozygous A1/A1 individuals) (Fig. 1).
To ascertain the allele and genotype frequencies of this
polymorphism in the general population in other countries
and continents, we also compared our A2 allele frequency
with data from the 1000 Genomes Data Base http://www.
1000genomes.org.
Statistical analysis
Differences in allele and genotype frequencies were ana-
lyzed by Chi square test. The odds ratio (OR) test was used
to measure the strength of the association between geno-
types and gender dysphoria by the different models of
heritability. All statistical analyses were performed by the
free online software SNPStats, http://bioinfo.iconcologia.
net/SNPstats (Sole et al. 2006). A P value B0.05 was
considered significant.
1146 Genes Genom (2016) 38:1145–1150
123
Results
Allele and genotype frequencies did not differ significantly
between the FtM and female control group (v2 = 0.631;
p = 0.43 and v2 = 2.767; p = 0.25 allele and genotype
frequencies respectively), or between the MtF and male
control group (v2 = 0.105; p = 0.74 and v2 = 0.789;
p = 0.67). Allele and genotype frequencies did not differ
significantly between the female and male control groups,
either (v2 = 0.277; p = 0.87 and v2 = 0.128; p = 0.72
respectively).
The frequency of the A2 allele was higher in the FtM
(0.43) than the female control group (0.41), male control
group (0.40) or MtF group (0.39), but this pattern did not
reach statistical significance. Furthermore, genotype fre-
quencies did not differ significantly between groups
(p = 0.66) (Table 1), between genotypes (p = 0.4)
(Table 2) or between sexes (p = 0.66) (Table 3). The OR
data also indicate no significant differences (Table 4).
When we compared allele and genotype frequencies
between our investigation and the Austrian study, we found
no significant differences between gender dysphoric pop-
ulations, neither between the two FtM groups (v2 = 0.022;
p = 0.88 and v2 = 0.033; p = 0.98 allele and genotype
frequencies respectively), nor between the two MtF groups
(v2 = 0.021; p = 0.88 and v2 = 1.161; p = 0.56 allele
and genotype frequencies respectively). However, the dif-
ferences were significant when we compared the female
control groups: v2 = 15.409; p = 0.000086 and
v2 = 17.428; p = 0.00016, for allele and genotype fre-
quencies respectively, and the male control groups:
v2 = 0.036; p = 0.849 and v2 = 6.059; p = 0.048).
The prevalence rates for A1 and A2 in our control
groups were very similar to those found in the Data Base
1000 Genomes, http://www.1000genomes.org and also to
other studies in European populations (Fernandez et al.
2015). The 1000 Genomes Data Base is the first project to
sequence the genomes of a large number of people in order
to provide a comprehensive resource on human genetic
variation. Data from the 1000 Genomes Project is available
to the worldwide scientific community through freely
accessible public databases. Allele frequencies provided by
the 1000 Genomes Data Base and MEDLINE showed an
ethnically and geographically specific but not sex-depen-
dent distribution. In Asian men, the A2 frequency varied
from 0.61 in Shanghai or Taiwan to 0.31 in India. In Asian
women, A2 varied from 0.60 in Taiwan to 0.15 in India. In
Europe, the data were homogenous among countries
without significant differences (Table 5). The allele fre-
quencies in our control groups were similar to those found
in the MEDLINE search and the 1000 Genomes Data Base.
Discussion
Based on the hypothesis that the CYP17-MspA1 rs743572
polymorphism is associated with gender dysphoria in FtM
people (Bentz et al. 2008; Fernandez et al. 2015), we
analyzed an European-ancestry Spanish population of 317
MtFs, 223 FtMs, 358 control males and 264 control
females. We compared the allele/genotype frequencies
between female and male control groups, and, since the
allele distribution for the CYP17-MspA1 rs743572 poly-
morphism did not differ between control men and women,
we cannot propose a sex-dependent allele distribution in
the general population. What is more, and contrary to the
findings in our previous work (Fernandez et al. 2015), the
differences between FtM and MtF were not significant. The
reason for the lack of significance could be related to the
increased number of individuals analyzed in respect to the
previous work.
Our data contradict previous findings about the CYP17-
MspA1 rs743572 polymorphism and gender dysphoria but
concur with the 1000 Genomes Data Base, which reports
that the allele frequencies vary between countries and
ethnicities but not between sexes. Furthermore, the
CYP17A1 gene is encoded on chromosome 10, not a sex
chromosome, so it is consequently to be expected that men
and women would have the same allele distribution
(Denschlag et al. 2006; Young et al. 1999).
Fig. 1 Polyacrylamide gel photography illustrating the different
genotypes after the enzymatic digestion with MspAI: A1/A1 showing
a single band of 459 bp (cases C-040, M1-027, M1-028); A2/A2 with
two bands of 335 and 124 bp (cases C-039, C-041, C-043, C-046) and
A1/A2: with three bands of 459, 335 and 124 bp (C-042, C-044,
C-045, M1-025, M1-029)
Genes Genom (2016) 38:1145–1150 1147
123
Therefore, our data do not corroborate that the CYP17-
MspA1 rs743572 polymorphism is sex dependent in the
general population and we cannot confirm the existence of
a pattern for A2 between groups, because data reflecting
this pattern did not reach statistical significance.
Gender dysphoria is a complex trait, thus multiple sus-
ceptibility genes interact with one another and with hor-
monal, psychological and neurodevelopmental factors to
produce the phenotype. In this case, and contrary to Bentz
et al. (2008) and our previous work (Fernandez et al. 2015),
our data, after enlargement of the sample, does not suggest
the involvement of the A2 allele in the genetic basis of
gender dysphoria.The discrepancy between the current
study and our previous work (Fernandez et al. 2015) could
be the result of the sample size, although the discrepancy
with Bentz et al. (2008) may be the result of the stratifi-
cation of the female control group from Austria.
Table 1 CYP17-MspA1 allele
and genotype frequenciesA1 A2 v2 p
CYP17-MspA1 allele and genotype frequencies
FtM 254 192 (0.43) FtM vs. control XX 0.631 0.43a
Control XX 314 214 (0.41) Control XX vs. control XY 0.128 0.72a
MtF 388 246 (0.39 MtF vs. control XY 0.074 0.78a
Control XY 433 283 (0.40) FtM vs. control XX vs. control XY vs. MtF 2.18 0.53a
A1/A1 A1/A2 A2/A2 v2 p
FtM 74 106 43 FtM vs. control XX 2.767 0.25a
Control XX 87 140 37 Control XX vs. control XY 0.277 0.87a
MtF 113 162 42 MtF vs. control XY 0.532 0.77a
Control XY 120 193 45 FtM vs. control XX vs. control XY vs. MtF 6.455 0.37a
a Non significant differences with respect to control group; p[ 0.05
Table 2 CYP17-MspA1
polymorphism and sex cross-
classification interaction
(n = 1162, crude analysis)
XX XY
Control FtM OR (95 % CI) Control MtF OR (95 % CI)
CYP17-MspA1 polymorphism and sex cross-classification interaction (n = 1162, crude analysis)
A1/A1 87 74 1.00 120 113 1.11 (0.74–1.66)
A1/A2 140 106 0.89 (0.60–1.33) 193 162 0.99 (0.68–1.43)
A2/A2 37 43 1.37 (0.80–2.34) 45 42 1.10 (0.65–1.85)
Interaction p value: 0.63a
a Non significant differences with respect to control group; p[ 0.05
Table 3 Sex within CYP17-MspA1 (n = 1162, crude analysis)
Control Dysphoria OR (95 % CI)
Sex within CYP17-MspA1 (n = 1162, crude analysis)
A1/A1 XX 87 74 1.00
XY 120 113 1.11 (0.74–1.66)
A1/A2 XX 140 106 1.00
XY 193 162 1.11 (0.80–1.54)
A2/A2 XX 37 43 1.00
XY 45 42 0.80 (0.44–1.48)
Test for interaction in the trend: 0.43a
a Non significant differences with respect to control group; p[ 0.05
Table 4 CYP17-MspA1 polymorphism within sex (n = 1162, crude
analysis)
Control Dysphoria OR (95 % CI)
CYP17-MspA1 polymorphism within sex (n = 1162, crude analysis)
XX A1/A1 87 74 1.00
A1/A2 140 106 0.89 (0.60–1.33)
A2/A2 37 43 1.37 (0.80–2.34)
XY A1/A1 120 113 1.00
A1/A2 193 162 0.89 (0.64–1.24)
A2/A2 45 42 0.99 (0.61–1.62)
Test for interaction in the trend: 0.63a
a Non significant differences with respect to control group; p[ 0.05
1148 Genes Genom (2016) 38:1145–1150
123
Conclusions
Contrary to Bentz et al. (2008) and our previous work (Fer-
nandez et al. 2015), we found that the CYP17-MspA1 rs743572
polymorphism is not associated with gender dysphoria.
Acknowledgments This work was supported by Grants PSI2010-
15115 (EP) and PSI2014-58004-P (AG). We are grateful to the
patients and control subjects who voluntarily participated in the study.
Compliance with ethical standards
The study initiated after obtaining approval from the Ethics Com-
mittees of the University of A Coruna (Spain), Clınic Hospital
(Barcelona. Spain), and Carlos Haya Hospital (Malaga. Spain).
Conflict of interest The authors declare that they have no conflict of
interest.
References
American Psychiatric Association (2000) Diagnostic and statistical
manual of mental disorders, 4th edn. DSM-IV-TR, Washington
American Psychiatric Association (2013) Diagnostic and statistical
manual of mental disorders, 5th edn. American Psychiatric
Publishing Inc, DSM-V
Bentz E-K, Hefler LA, Kaufmann U, Huber JC, Kolbus A, Tempfer
CB (2008) A polymorphism of the CYP17 gene related to sex
steroid metabolism is associated with female-to-male but not
male-to-female transsexualism. Fertil Steril 90:56–59
Carey AH, Waterworth D, Patel K, White D, Little J, Novelli P,
Franks S, Williamson R (1994) Polycystic ovaries and premature
male pattern baldness are associated with one allele of the steroid
metabolism gene CYP17. Hum Mol Genet 3:1873–1876
Cohen-Kettenis PT, Gooren LJG (1999) Transsexualism: a review of
etiology, diagnosis and treatment. J Psychosom Res 46:315–333
Denschlag D, Bentz E-K, Hefler L, Pietrowski D, Zeillinger R,
Tempfer C, Tong D (2006) Genotype distribution of estrogen
receptor-alpha, catechol-O-methyltransferase, and cytochrome
P450 17 gene polymorphisms in Caucasian women with uterine
leiomyomas. Fertil Steril 85:462–467
Drescher J, Cohen-Kettenis P, Winter S (2012) Minding the body:
situating gender identity diagnoses in the ICD-11. Int Rev
Psychiatry 24:568–577
Feigelson S, Mckean-cowdin R, Henderson E (2002) Concerning the
CYP17 Msp A1 polymorphism and breast cancer risk: a meta-
analysis. Mutagenesis 17:445–446
Fernandez R, Esteva I, Gomez-Gil E, Rumbo T, Almaraz MC, Roda
E, Haro-Mora J-J, Guillamon A, Pasaro E (2014) The (CA)n
Table 5 CYP17-MspA1 association with FtM dysphoria (n = 487, crude analysis) and CYP17-MspA1 association with MtF dysphoria
(n = 675, crude analysis)
Heredability model Genotype Control XX FtM OR (95 % CI) p value AIC BIC
CYP17-MspA1 association with FtM dysphoria (n = 487, crude analysis)
Codominant A1/A1 87 (33 %) 74 (33.2 %) 1.00 0.25a 674.9 687.5
A1/A2 140 (53 %) 106 (47.5 %) 0.89 (0.60–1.33)
A2/A2 37 (14 %) 43 (19.3 %) 1.37 (0.80–2.34)
Dominant A1/A1 87 (33 %) 74 (33.2 %) 1.00 0.96a 675.7 684
A1/A2-A2/A2 177 (67 %) 149 (66.8 %) 0.99 (0.68–1.45)
Recessive A1/A1-A1/A2 227 (86 %) 180 (80.7 %) 1.00 0.12a 673.2 681.6
A2/A2 37 (14 %) 43 (19.3 %) 1.47 (0.91–2.37)
Overdominant A1/A1-A2/A2 124 (47 %) 117 (52.5 %) 1.00 0.23a 674.2 682.6
A1/A2 140 (53 %) 106 (47.5 %) 0.80 (0.56–1.15)
Log-additive – – – 1.11 (0.86–1.45) 0.42a 675 683.4
Heredability model Genotype Control XY MtF OR (95 % CI) p value AIC BIC
CYP17-MspA1 association with MtF dysphoria (n = 675, crude analysis)
Codominant A1/A1 120 (33.5 %) 187 (34.6 %) 1.00 0.3a 1610.6 1630.8
A1/A2 193 (53.9 %) 268 (49.6 %) 0.89 (0.69–1.15)
A2/A2 45 (12.6 %) 85 (15.7 %) 1.15 (0.80–1.66)
Dominant A1/A1 120 (33.5 %) 187 (34.6 %) 1.00 0.63a 1610.7 1625.9
A1/A2-A2/A2 238 (66.5 %) 353 (65.4 %) 0.94 (0.74–1.20)
Recessive A1/A1-A1/A2 313 (87.4 %) 455 (84.3 %) 1.00 0.21a 1609.3 1624.5
A2/A2 45 (12.6 %) 85 (15.7 %) 1.24 (0.89–1.72)
Overdominant A1/A1-A2/A2 165 (46.1 %) 272 (50.4 %) 1.00 0.18a 1609.1 1624.3
A1/A2 193 (53.9 %) 268 (49.6 %) 0.85 (0.68–1.08)
Log-additive – – – 1.03 (0.87–1.22) 0.75a 1610.8 1626
a Non significant differences with respect to control group; p[ 0.05
Genes Genom (2016) 38:1145–1150 1149
123
polymorphism of ERb gene is associated with FtM transsexu-
alism. J Sex Med 11:720–728
Fernandez R, Cortes-Cortes J, Esteva I, Gomez-Gil E, Almaraz MC,
Lema E, Rumbo T, Haro-Mora J-J, Roda E, Guillamon A, Pasaro
E (2015) The CYP17MspA1 Polymorphism and the Gender
Dysphoria. J Sex Med 12:1329–1333
Guillamon A, Junque C, Gomez-Gil E (2016) A review of the status
of Brain structure research in transsexualism. Arch Sex Behav.
doi:10.1007/s10508-016-0768-5
Hare L, Bernard P, Sanchez FJJ, Baird PNN, Vilain E, Kennedy T,
Harley VRR (2009) Androgen receptor repeat length polymor-
phism associated with male-to-female transsexualism. Biol
Psychiatry 65:93–96
Henningsson S, Westberg L, Nilsson S, Lundstrom B, Ekselius L,
Bodlund O, Lindstrom E, Hellstrand M, Rosmond R, Eriksson E
et al (2005) Sex steroid-related genes and male-to-female
transsexualism. Psychoneuroendocrinology 30:657–664
Heylens G, De Cuypere G, Zucker KJ, Schelfaut C, Elaut E, Vanden
Bossche H, De Baere E, T’Sjoen G (2012) Gender identity
disorder in twins: a review of the case report literature. J Sex
Med 9:751–757
Savic I, Garcia-Falgueras A, Swaab DF (2010) Sexual differentiation
of the human brain in relation to gender identity and sexual
orientation. Prog Brain Res 186:41–62
Sharp L (2004) CYP17 gene polymorphisms: prevalence and
associations with hormone levels and related factors.A huge
review. Am J Epidemiol 160:729–740
Sole X, Guino E, Valls J, Iniesta R, Moreno V (2006) SNPStats: a
web tool for the analysis of association studies. Bioinformatics
22:1928–1929
Ujike H, Otani K, Nakatsuka M, Ishii K, Sasaki A, Oishi T, Sato T,
Okahisa Y, Matsumoto Y, Namba Y et al (2009) Association
study of gender identity disorder and sex hormone-related genes.
Prog Neuropsychopharmacol Biol Psychiatry 33:1241–1244
World Health Organization (1993) The ICD-10. Classification of
mental and behavioural disorders. Diagnostic Criteria for
Research, Geneva
Young IE, Kurian KM, Annink C, Kunkler IH, Anderson VA, Cohen
BB, Hooper ML, Wyllie AH, Steel CM (1999) Short commu-
nication A polymorphism in the CYP17 gene is associated with
male breast cancer. Br J Cancer 81:141–143
1150 Genes Genom (2016) 38:1145–1150
123
RESULTADOS
113
4.3. TERCER ESTUDIO
Genotypes and Haplotypes of Estrogen Receptor α Gene (ESR1) Are Associated
With Female-to-Male Gender Dysphoria. Journal of Sexual Medicine. 2017;
11(3):720-728. doi: 10.1016/j.jsxm.2016.12.234
TRANSGENDER HEALTH
Genotypes and Haplotypes of the Estrogen Receptor a Gene (ESR1) AreAssociated With Female-to-Male Gender Dysphoria
Joselyn Cortés-Cortés,1 Rosa Fernández, PhD,1 Nerea Teijeiro,1 Esther Gómez-Gil, MD,2 Isabel Esteva, MD,3
Mari Cruz Almaraz, MD,3 Antonio Guillamón, MD,4 and Eduardo Pásaro, PhD1
ABSTRACT
Received M1DepartameCoruña, Sp2Unidad de3Unidad deMálaga, Sp
4Departame
Copyright ªElsevier Inc.http://dx.doi
464
Introduction: Gender dysphoria, a marked incongruence between one’s experienced gender and biological sex, iscommonly believed to arise from discrepant cerebral and genital sexual differentiation. With the discovery thatestrogen receptor b is associated with female-to-male (FtM) but not with male-to-female (MtF) genderdysphoria, and given estrogen receptor a involvement in central nervous system masculinization, it was hy-pothesized that estrogen receptor a, encoded by the ESR1 gene, also might be implicated.
Aim: To investigate whether ESR1 polymorphisms (TA)n-rs3138774, PvuII-rs2234693, and XbaI-rs9340799and their haplotypes are associated with gender dysphoria in adults.
Methods: Molecular analysis was performed in peripheral blood samples from 183 FtM subjects, 184 MtFsubjects, and 394 sex- and ethnically-matched controls.
Main Outcome Measures: Genotype and haplotype analyses of the (TA)n-rs3138774, PvuII-rs2234693, andXbaI-rs9340799 polymorphisms.
Results: Allele and genotype frequencies for the polymorphism XbaI were statistically significant only in FtM vscontrol XX subjects (P ¼ .021 and P ¼ .020). In XX individuals, the A/G genotype was associated with a lowrisk of gender dysphoria (odds ratio [OR] ¼ 0.34; 95% CI ¼ 0.16e0.74; P ¼ .011); in XY individuals, the A/Agenotype implied a low risk of gender dysphoria (OR ¼ 0.39; 95% CI ¼ 0.17e0.89; P ¼ .008). Binary logisticregression showed partial effects for all three polymorphisms in FtM but not in MtF subjects. The threepolymorphisms were in linkage disequilibrium: a small number of TA repeats was linked to the presence of PvuIIand XbaI restriction sites (haplotype S-T-A), and a large number of TA repeats was linked to the absence of theserestriction sites (haplotype L-C-G). In XX individuals, the presence of haplotype L-C-G carried a low risk ofgender dysphoria (OR ¼ 0.66; 95% CI ¼ 0.44e0.99; P ¼ .046), whereas the presence of haplotype L-C-Acarried a high susceptibility to gender dysphoria (OR ¼ 3.96; 95% CI ¼ 1.04e15.02; P ¼ .044). Globalhaplotype was associated with FtM gender dysphoria (P ¼ .017) but not with MtF gender dysphoria.
Conclusions: XbaI-rs9340799 is involved in FtM gender dysphoria in adults. Our findings suggest differentgenetic programs for gender dysphoria in men and women. Cortés-Cortés J, Fernández R, Teijeiro N, et al.Genotypes and Haplotypes of the Estrogen Receptor a Gene (ESR1) Are Associated With Female-to-MaleGender Dysphoria. J Sex Med 2017;14:464e472.
Copyright � 2016, International Society for Sexual Medicine. Published by Elsevier Inc. All rights reserved.
Key Words: Estrogen Receptor a; Estrogen Receptor b; Gender Dysphoria; rs3138774; rs2234693; rs9340799
ay 24, 2016. Accepted December 21, 2016.
nto de Psicología, Área Psicobiología, Universidade da Coruña, Aain;
Identidad de Género, Hospital Clinic, Barcelona, Spain;
Transexualidad e Identidad de Género, Hospital Carlos Haya,ain;
nto de Psicobiología, UNED, Madrid, Spain
2016, International Society for Sexual Medicine. Published byAll rights reserved..org/10.1016/j.jsxm.2016.12.234
INTRODUCTION
Transsexualism in the International Classification of Diseases,Tenth Revision (ICD-10),1 gender identity disorder in adolescentsand adults in the Diagnostic and Statistical Manual of MentalDisorders, Fourth Edition, Text Revision (DSM-IV-TR),2 genderdysphoria (GD) in adolescents and adults in the Diagnostic andStatistical Manual of Mental Disorders, Fifth Edition (DSM-5),3 orgender incongruence in the future International Classification of
J Sex Med 2017;14:464e472
Association of ESR1 With Female-to-Male Gender Dysphoria 465
Diseases, Eleventh Revision4 is characterized by a marked incon-gruence between one’s experienced gender and biological sex.1,5
The etiology is complex, but some hypotheses suggest that GDarises from discrepant cerebral and genital sexual differentiation.6
Biological and environmental factors contribute to gender iden-tity,7e9 but increasing evidence supports the idea of geneticvulnerability. Henningsson et al10 found significant differenceswhen they examined estrogen receptor (ER) b in a male-to-female(MtF) population. They suggested that a long ERb polymorphismis more common in the MtF population. Hare et al11 alsoexamined an MtF population and found a significant associationbetween the androgen receptor and GD. Moreover, Ujike et al,12
in a Japanese population of female-to-male (FtM) and MtF sub-jects, found no significant differences for any examined poly-morphism (androgen receptor, ERa, ERb, cytochrome P4502C19, and progesterone receptor). Sosa et al13 did not find sig-nificant differences when they studied the relation between long-term estrogen administration and ERa in an MtF population.
Our group analyzed the same polymorphisms and found anassociation between ERb and GD in FtM subjects14 but not inMtF subjects.15
Estrogens regulate many physiologic processes, includingnormal cell growth, development, and tissue-specific generegulation in the reproductive tract and central nervoussystem.16e18 The biological actions of estrogens are mediatedby binding to one of two specific ERs, ERa or ERb, whichbelong to the nuclear receptor superfamily of ligand-regulatedtranscription factors.16 Once bound by estrogens, the ERundergoes a conformational change leading to dimerization(homodimer ERa-a, homodimer ERb-b, or heterodimerERa-b), allowing the receptor to interact with high affinitywith specific DNA sequences (ERE) located in or nearpromoter regions of target genes19,20 and thereby modulate thetranscription process.21e24
The two ERs are products of different genes from differentchromosomes,25,26 exhibit different estrogen-binding affinities,27
and have distinct transcriptional properties. In the absence of thea or the b receptor, the other ER mediates the effects of estrogenon gene transcription.18 However, when the two ERs are coex-pressed, they normally form the ERa-b heterodimer in whichERb inhibits ERa transcriptional activity.18 Moreover, charac-terization of mice lacking ERa and/or ERb has demonstratedthat ERa is primarily involved in masculinization and ERb has amajor role in defeminization of sexual behaviors.28
Because our previous data pointed to the involvement ofERb in GD14 and ERa is primarily involved in central nervoussystem masculinization,28 we suspected ERa would be involvedin GD.
Therefore, the purpose of this study was to investigatethe implication of ERa, encoded by gene ESR1, in GD througha molecular analysis of three polymorphisms: (TA)n-rs3138774,PvuII-rs2234693, and XbaI-rs9340799.
J Sex Med 2017;14:464e472
METHODS
SubjectsThe sample was composed of 367 gender dysphoric volun-
teers (183 FtM and 184 MtF subjects) recruited through theAndalusian Gender Identity Unit (Carlos Haya Hospital, Má-laga, Spain) and the Gender Identity Unit of Cataluña (ClinicHospital of Barcelona, Barcelona, Spain). All subjects werediagnosed with transsexualism (code F64.0) according to theICD-101 or with gender identity disorder in adolescents oradults (code 302.85) according to the DSM-IV-TR.2 Thepatients were examined by an endocrinologist to rule outanomalies of the external genitalia and internal sex organsbecause a possible association with other genetic factors couldbias the results.
The diagnosis was made after several sessions with two mentalhealth professionals (a psychiatrist and a psychologist). We usedsemistructured sociodemographic, clinical, and psychiatricinterviews.29 Sociodemographic and clinical characteristics froma similar Spanish sample have been described in detailelsewhere.30e34
The exclusion criteria were head trauma, neurologic disorder,major medical condition, and history of alcohol and/or drugabuse. All subjects presented early-onset GD (begins in child-hood and continues into adolescence and adulthood) and wereattracted to individuals of their natal sex. Sexual orientation inpatients was established by asking what partner (a man, awoman, both, or neither) the patient would prefer or feelattraction to. The two conditions were determined by the twomental health specialists in a clinical interview.
The control groups consisted of two random groups of in-dividuals, 192 women and 202 men, who previously participatedin metabolic and genetic studies and who were pair-matched fornatal sex, ethnicity, and geographic origin. All participants wereCaucasian and free of any neurologic, systemic, or psychiatricillness as verified in a detailed interview.
The study was initiated after obtaining approval from theethics committees of the University of A Coruña, Clinic Hospital(Barcelona) and the Carlos Haya Hospital (Málaga). We drafteda protocol and obtained written, informed consent from eachparticipant in the study.
Cytogenetic AnalysisPeripheral blood samples were extracted for cytologic and
molecular analyses. Chromosomes were prepared from peripheralblood according to standard techniques35 to obtain G-bandingkaryotypes.36
Molecular AnalysisGenomic DNA was extracted from ethylenediaminetetra-
acetic acidetreated blood samples using the DNeasy Blood &Tissue Kit from Qiagen (Madrid, Spain).
466 Cortés-Cortés et al
Genotyping (TA)n-rs3138774 PolymorphismA polymerase chain reaction (PCR) fragment was generated
using the primers 50-GACGCATGATATACTTCACC-30FAMand 50-GCAGAATCAAATATCCAGATG-3037 and a protocolof 94�C, 59�C, and 72�C for 40 seconds each for 45 cycles. ThePCR product was analyzed using a capillary electrophoresis 3130XL Genetic Analyzer from Applied Biosystems (Madrid, Spain).The GeneMapper-5 program (2012; Applied Biosystems) iden-tified allele lengths ranging from 160 bp (10 TA repeats) to 194bp (27 TA repeats).
The TA allele frequencies were calculated by considering themedian of the TA repeats obtained in the two control groups as thecutoff point to differentiate short (S) from long (L) alleles. If an allelewas below themedian in the control group, then it was considered ashort allele. When an allele was above the median from the controlgroup, then it was considered a long allele. In the FtM group wetook the median from the control XX group, and in the MtF groupwe took the median from the control XY group. Genotypes weredefined as S/S (short-short), L/L (long-long), or S/L (short-long).
Genotyping PvuII-rs2234693 and XbaI-rs9340799Polymorphisms
The PvuII-rs2234693 and XbaI-rs9340799 polymorphismswere analyzed by PCR restriction fragment-length polymorphism.A 346-bp fragment was generated by the primers 50-GATATC-CAGGGTTATGTGGCA-30 and 50-AGGTGTTGCCTATTA-TATTAACCTTGA-3037with a protocol of 94�C, 60�C, and 72�Cfor 50 seconds each for 45 cycles. Ten microliters of PCR productwas digested by PvuII 5 U (BioLabs, Lawrenceville, GA, USA) orXbaI 7 U (Roche, Basel, Switzerland) restriction enzymes andincubated overnight at 37�C. The digestion products were visual-ized in a 6% polyacrylamide gel (GEHealthcare, Barcelona, Spain).Absence of restriction sites for one or other of the polymorphismswas specified as C or G, respectively. The genotypes resulting fromdigestion with PvuII were C/C, C/T, and T/T and the genotypesresulting from XbaI digestion were G/G, A/G, and A/A.
Statistical MethodsAnalyses were performed using SPSS 23.0 (IBM Corp,
Armonk, NY, USA), with a P value lower than .05 consideredsignificant. The mean number of TA repeats was analyzed by theKruskal-Wallis test, the Mann-Whitney U-test, and analysis ofvariance.
The association and linkage disequilibrium analyses wereperformed using the free online software SNPStats (http://bioinfo.iconcologia.net/SNPstats).38 Linkage disequilibrium is alack of independence, in the statistical sense, between the allelesat two loci in a general population. This lack of independence isdue to a closer localization in the same chromosome and it has itsorigin during meiosis.
The SNPStats program analyzes linkage disequilibrium bymatrices with the statistical D, D0, and Pearson r values and asso-ciated P values. D compares the observed with the expected
frequency of one haplotype. If two loci are in linkage equilibrium,then D0 is equal to 0; if two loci are in linkage disequilibrium, thanD0 is equal to 1. Correlation between a pair of loci is calculated usingPearson r or, frequently, r2, which ranges from 0 to 1. If two loci arein complete linkage equilibrium, then r2 is equal to 0; and if two lociare in complete linkage disequilibrium, then r2 is equal to 1.
A missing value for any response, polymorphism, or covariatewas cause for exclusion of that individual from that analysis.
RESULTS
The genotype frequencies for the (TA)n, PvuII, and XbaIpolymorphisms were in Hardy-Weinberg equilibrium (P ¼ .38,P ¼ .08, and P ¼ .24, respectively).
(TA)n-rs3138774 PolymorphismThe allele distribution of the (TA)n polymorphism is plotted in
Figure 1. It was consistently bimodal in all groups, with two peaksat 15 and 24 repeats and the distribution trough at 19 repeats.The mean number of repeats was analyzed by the Kruskal-Wallistest (c2 ¼ 0.743; P ¼ .863), Mann-Whitney U-test (FtM vscontrol XX, P ¼ 0.589; MtF vs control XY, P ¼ .548), andanalysis of variance (F ¼ 0.506; P ¼ .678). No analysis showedany significant difference.
The analyses of allele and genotype frequencies showed nosignificant differences between the FtM and control XX groups(c2 ¼ 2.166; P ¼ .141; c2 ¼ 2.5; P ¼ .286, respectively) orbetween the MtF and control XY groups (c2 ¼ 0.923; P ¼ .336;c2 ¼ 0.979; P ¼ .613, respectively).
PvuII-rs2234693 PolymorphismNo significant differences for the PvuII polymorphism were
found in analyses for allele and genotype frequencies between theFtM and control XX groups (c2 ¼ 0.521; P ¼ .470; c2 ¼ 1.209;P ¼ .546, respectively) or between the MtF and control XYgroups (c2 ¼ 1.355; P ¼ .244; c2 ¼ 2.961; P ¼ .227 for alleleand genotype frequencies, respectively).
XbaI-rs9340799 PolymorphismThe allele and genotype frequencies for the XbaI polymorphism
were significantly different between the FtM and control XXgroups (c2 ¼ 5.324; P ¼ .021; c2 ¼ 7.774; P ¼ .020, respec-tively), but they were not significantly different between the MtFand control XY groups (c2 ¼ 2.678; P ¼ .102; c2 ¼ 2.637;P ¼ .267, respectively).
The odds ratio (OR) analyses for theXbaI polymorphism showedsignificant differences between the FtM and control XX groups(Table 1) for multiple patterns of genetic inheritance, but notbetween the MtF and control XY groups (Table 2). Genotype A/Gshowed a protective effect against GD for codominant, dominant,over-dominant, and long-additive patterns of inheritance. Nosignificant differences were found for the other two polymorphismsin any of the groups (Tables 1 and 2).
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Figure 1. Allele frequency of (TA)n-rs3138774 polymorphism in FtM, MtF, control XX and control XY groups. FtM ¼ female-to-male;MtF ¼ male-to-female.
Table 1. Association analysis by odds ratio in FtM vs control XX groups
Model of inheritance Genotype Control XX, n (%) FtM, n (%) OR (95% CI) P value
(TA)n association with FtM (n ¼ 206,crude analysis)
Codominant S/S 27 (23.1) 29 (32.6) 1.00 .29†
S/L 63 (53.9) 44 (49.4) 0.65 (0.34e1.25)L/L 27 (23.1) 16 (18) 0.55 (0.25e1.24)
Dominant S/S 27 (23.1) 29 (32.6) 1.00 .13†
S/L-L/L 90 (76.9) 60 (67.4) 0.62 (0.33e1.15)Recessive S/S-S/L 90 (76.9) 73 (82) 1.00 .37†
L/L 27 (23.1) 16 (18) 0.73 (0.37e1.46)Over-dominant S/S-L/L 54 (46.1) 45 (50.6) 1.00 .53†
S/L 63 (53.9) 44 (49.4) 0.84 (0.48e1.46)Log-additive — — — 0.73 (0.49e1.10) .13†
PvuII association with FtM (n ¼ 273,crude analysis)
Codominant T/T 38 (30.4) 47 (31.8) 1.00 .55†
T/C 65 (52) 82 (55.4) 1.02 (0.60e1.75)C/C 22 (17.6) 19 (12.8) 0.70 (0.33e1.48)
Dominant T/T 38 (30.4) 47 (31.8) 1.00 .81†
T/C-C/C 87 (69.6) 101 (68.2) 0.94 (0.56e1.57)Recessive T/T-T/C 103 (82.4) 129 (87.2) 1.00 .27†
C/C 22 (17.6) 19 (12.8) 0.69 (0.35e1.34)Over-dominant T/T-C/C 60 (48) 66 (44.6) 1.00 .57†
T/C 65 (52) 82 (55.4) 1.15 (0.71e1.85)Log-additive — — — 0.87 (0.61e1.25) .45†
XbaI association with FtM (n ¼ 128,crude analysis)
Codominant A/A 19 (31.7) 38 (55.9) 1.00 .02*A/G 32 (53.3) 22 (32.4) 0.34 (0.16e0.74)G/G 9 (15) 8 (11.8) 0.44 (0.15e1.34)
Dominant A/A 19 (31.7) 38 (55.9) 1.00 .006*A/G-G/G 41 (68.3) 30 (44.1) 0.37 (0.18e0.76)
Recessive A/A-A/G 51 (85) 60 (88.2) 1.00 .59†
G/G 9 (15) 8 (11.8) 0.76 (0.27e2.10)Over-dominant A/A-G/G 28 (46.7) 46 (67.7) 1.00 .016*
A/G 32 (53.3) 22 (32.4) 0.42 (0.20e0.86)Log-additive — — — 0.56 (0.33e0.94) .025*
FtM ¼ female-to-male; L ¼ long allele; OR ¼ odds ratio; S ¼ short allele.*Significant differences compared with control group (P � .05).†Non-significant differences compared with control group (P > .05).
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Association of ESR1 With Female-to-Male Gender Dysphoria 467
Table 2. Association analysis by odds ratio in MtF vs control XY groups
Model of inheritance GenotypeControl XY,n (%) MtF, n (%) OR (95% CI) P value
(TA)n association with MtF (n ¼ 221, crude analysis)Codominant L/L 43 (25.1) 10 (20) 1.00 .61*
S/L 90 (52.6) 26 (52) 1.24 (0.55e2.81)S/S 38 (22.2) 14 (28) 1.58 (0.63e3.98)
Dominant L/L 43 (25.1) 10 (20) 1.00 .45*S/L-S/S 128 (74.8) 40 (80) 1.34 (0.62e2.91)
Recessive L/L-S/L 133 (77.8) 36 (72) 1.00 .4*S/S 38 (22.2) 14 (28) 1.36 (0.67e2.78)
Over-dominant L/L-S/S 81 (47.4) 24 (48) 1.00 .94*S/L 90 (52.6) 26 (52) 0.97 (0.52e1.83)
Log-additive — — — 1.26 (0.80e2.00) .32*PvuII association with MtF (n ¼ 265, crude analysis)
Codominant T/T 25 (30.9) 53 (28.8) 1.00 .21*T/C 46 (56.8) 92 (50) 0.94 (0.52e1.71)C/C 10 (12.3) 39 (21.2) 1.84 (0.79e4.27)
Dominant T/T 25 (30.9) 53 (28.8) 1.00 .74*T/C-C/C 56 (69.1) 131 (71.2) 1.10 (0.62e1.95)
Recessive T/T-T/C 71 (87.7) 145 (78.8) 1.00 .078*C/C 10 (12.3) 39 (21.2) 1.91 (0.90e4.04)
Over-dominant T/T-C/C 35 (43.2) 92 (50) 1.00 .31*T/C 46 (56.8) 92 (50) 0.76 (0.45e1.29)
Log-additive — — — 1.27 (0.86e1.86) .23*XbaI association with MtF (n ¼ 94, crude analysis)
Codominant A/A 23 (52.3) 18 (36) 1.00 .27*A/G 16 (36.4) 23 (46) 1.84 (0.76e4.46)G/G 5 (11.4) 9 (18) 2.30 (0.66e8.07)
Dominant A/A 23 (52.3) 18 (36) 1.00 .11*A/G-G/G 21 (47.7) 32 (64) 1.95 (0.85e4.45)
Recessive A/A-A/G 39 (88.6) 41 (82) 1.00 .36*G/G 5 (11.4) 9 (18) 1.71 (0.53e5.56)
Over-dominant A/A-G/G 28 (63.6) 27 (54) 1.00 .34*A/G 16 (36.4) 23 (46) 1.49 (0.65e3.41)
Log-additive — — — 1.59 (0.88e2.88) .12*
L ¼ long allele; MtF ¼ male-to-female; OR ¼ odds ratio; S ¼ short allele.*Non-significant differences compared with control group (P > .05).
468 Cortés-Cortés et al
The interaction analysis of the XbaI polymorphism with the sexcovariate showed that genotype A/G had a protective effect againstGD in XX individuals (FtM vs control XX; OR ¼ 0.34; 95%CI ¼ 0.16e0.74; P ¼ .011), whereas genotype A/A had a pro-tective effect in XY individuals (MtF vs control XY; OR ¼ 0.39;95% CI ¼ 0.17e0.89; P ¼ .008; Table 3).
Interaction Among Three PolymorphismsTo analyze the interaction between the three polymorphisms
and GD, we applied a binary logistic regression modelincluding the three polymorphisms and all their possibleinteractions. We used Wald statistics to evaluate the signifi-cance of the model coefficients. All these interactions werestatistically significant in the FtM (Table 4) but not in the MtFgroup.
Linkage Disequilibrium Analysis and HaplotypeFrequency EstimationLinkage disequilibrium was detected among the three poly-
morphisms ([TA]n-PvuII,D0 ¼ 0.865; r¼ 0.777;P< .001; [TA]n-XbaI, D0 ¼ 0.808; r ¼ 0.609; P < .001); a small number of TArepeats was linked to the presence of the two restriction sites(haplotype S-T-A), whereas a larger number of TA repeats waslinked to their absence (haplotype L-C-G; Table 5).Haplotype 1 (S-T-A) consistently accounted for approximately half the alleles(48.6% and 44.4%) and haplotype 2 (L-C-G) accounted for almosta third (31.5% and 33.03%).Haplotypes 7 and 8were absent in theFtM and control XX groups (Table 5).Whenwe compared the FtMwith the control XX group, haplotype L-C-G had a protective effect(OR¼ 0.66; 95%CI¼ 0.44e0.99; P¼ .046), whereas haplotypeL-C-A implied a strong susceptibility to GD (OR ¼ 3.96; 95%
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Table 3. Interaction analysis of XbaI polymorphism with covariate sex
Control GD OR (95% CI)
XbaI and sex cross-classification interaction (n ¼ 222, crude analysis)A/AXX 19 38 1.00XY 23 18 0.39 (0.17e0.89)*
A/GXX 32 22 0.34 (0.16e0.74)*XY 16 23 0.72 (0.31e1.67)
G/GXX 9 8 0.44 (0.15e1.34)XY 5 9 0.90 (0.26e3.06)
Interaction P ¼ .011*Sex within XbaI (n ¼ 222, crude analysis)
A/AXX 19 38 1.00XY 23 18 0.39 (0.17e0.89)*
A/GXX 32 22 1.00XY 16 23 2.09 (0.90e4.83)
G/GXX 9 8 1.00XY 5 9 2.02 (0.48e8.63)
Test for interaction of trend ¼ 0.0077*XbaI within sex (n ¼ 222, crude analysis)
XXA/A 19 38 1.00A/G 32 22 0.34 (0.16e0.74)*G/G 9 8 0.44 (0.15e1.34)
XYA/A 23 18 1.00A/G 16 23 1.84 (0.76e4.46)G/G 5 9 2.30 (0.66e8.07)
Test for interaction of trend ¼ 0.011*
GD ¼ gender dysphoria; OR ¼ odds ratio.*Significant differences compared with control group (P � .05).
Association of ESR1 With Female-to-Male Gender Dysphoria 469
CI¼ 1.04e15.02;P¼ .044).Global haplotypewas associatedwithFtM GD (P ¼ .017) but not with MtF GD.
DISCUSSION
Results showed an association between ERa and FtM GD.The XbaI-rs9340799 allele, genotype, and haplotype
Table 4. Binary logistic regression analyses of polymorphisms andpolymorphism interactions for susceptibility to GD in FtM group
df Wald P value
(TA)n 1 4.454 .035*PvuII 1 4.626 .031*XbaI 1 6.998 .008*(TA)n by PvuII 2 5.093 .024*(TA)n by XbaI 2 4.487 .034*XbaI by PvuII 2 5.203 .023*(TA)n by PvuII by XbaI 3 5.737 .017*
*Significant differences compared with control group (P � .05).
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frequencies differed significantly between the FtM and controlXX groups.
The observation that genotype A/G was more frequent in thecontrol XX group than in the FtM group suggests that this XbaIheterozygote genotype favored a cerebral feminization process. Incontrast, genotype A/A was more frequent in the control XYgroup than in the MtF group, suggesting that this secondgenotype favored a cerebral masculinization process.
The L-C-G haplotype was associated with lower susceptibilityto developing GD in the FtM group. Conversely, the haplotypeL-C-A increased the risk of developing it.
Our data are consistent with the two available studies on ERainvolvement in GD. Ujike et al12 found no statistically signifi-cant differences when they analyzed the (TA)n polymorphism ina gender dysphoric population. When Sosa et al13 analyzed thePvuII and XbaI polymorphisms in an MtF population, theyfound no significant differences. We also found no statistically
Table 5. (TA)n, PvuII, and XbaI haplotype frequencies estimation and haplotype association with GD
FtM vs control XX
Haplotype frequencies estimation and haplotype association with FtM (n ¼ 375, crude analysis)
(TA)n PvuII XbaI Total Control FtMCumulativefrequency OR (95% CI) P value
1 S T A 0.486 0.449 0.522 0.486 1.00 —
2 L C G 0.315 0.358 0.272 0.801 0.66 (0.44e0.99) .046*3 L T A 0.077 0.098 0.056 0.878 0.45 (0.15e1.29) .14†
4 L C A 0.071 0.026 0.116 0.949 3.96 (1.04e15.02) .044*5 S C G 0.034 0.033 0.032 0.984 0.86 (0.20e3.77) .84†
6 S C A 0.015 0.033 0 1 0.00 (�Inf to Inf) 17 S T G 0 0 0 1 — —
8 L T G 0 0 0 1 — —
Global haplotype association P ¼ .017*
MtF vs control XY
Haplotype frequencies estimation and haplotype association with MtF (n ¼ 386, crude analysis)
(TA)n PvuII XbaI Total Control MtFCumulativefrequency OR (95% CI) P value
1 S T A 0.444 0.451 0.449 0.444 1.00 —
2 L C G 0.330 0.29 0.354 0.774 1.19 (0.77e1.83) .43†
3 L T A 0.104 0.136 0.075 0.878 0.56 (0.21e1.49) .25†
4 L C A 0.053 0.073 0.033 0.932 0.49 (0.11e2.09) .34†
5 S T G 0.037 0.025 0.047 0.969 1.94 (0.29e13.00) .49†
6 S C A 0.019 0.017 0.023 0.989 1.43 (0.18e11.55) .74†
7 S C G 0.007 0.007 0.009 0.997 1.97 (0.08e49.48) .68†
8 L T G 0.003 0 0.007 1 — —
Global haplotype association P ¼ .63†
FtM ¼ female-to-male; L ¼ long allele; MtF ¼ male-to-female; OR ¼ odds ratio; S ¼ short allele.*Significant differences compared with control group (P � .05).†Non-significant differences compared with control group (P > .05).
470 Cortés-Cortés et al
significant differences in the MtF group for these poly-morphisms. To the best of our knowledge, this is the first studyto analyze the XbaI polymorphism in an FtM population.
The XbaI and PvuII polymorphisms are located in the firstintron of the ESR1 gene and have a significant effect on the levelof protein synthesis.39 Herrington et al40 noted that the T/Ctransition associated with loss of the PvuII site results in apotential binding site for transcription factors that couldaugment in vitro transcription of a downstream reporterconstruct by 10-fold. Thus, in some settings, the presence of theC allele might amplify ERa transcription.40
In addition, Maruyama et al41 demonstrated that the PvuIIand XbaI polymorphisms are associated with transcriptionalactivity. They detected a weak but significant enhancing activitythat differed between haplotypes: enhancer activity by allele Gwas higher than the activity by allele A.
Tangentially, pharmacogenetic studies on osteoporosis havesuggested that women with haplotype C-G have a greatersensitivity to hormone treatment with estrogens than otherwomen,42 and other studies have reported that haplotype L-C-Gprotects against osteoporotic fractures.43 Also, in vitro studieshave indicated that HeLa cells with haplotype C-G show higherexpression than those with haplotype T-A.41
In contrast, the (TA)n polymorphism is situated in the ESR1promoter region44 and previous studies have shown that poly-morphisms in the proximity of gene promoters can significantlyinfluence transcriptional regulation.45
Our results and the fact that ESR1 genetic variants influencean individual’s estrogen sensitivity phenotype46 suggest thathaplotype L-C-G could protect against GD in the FtM groupthrough a variation in estrogen sensitivity.42 Therefore, accord-ing to our data and in conjunction with our previous work,14,15
FtM GD is related to ERa and ERb. On the one hand, alarger number of CA repeats in ERb promotes a defeminiza-tion process in the FtM population14; on the other, ERa playsa role in the development of GD in the FtM group throughthe genotypes and haplotypes of polymorphisms (TA)n-rs3138774, PvuII-rs2234693, and XbaI-rs9340799.
The present study has several strengths. To the best of ourknowledge, this is the largest sample of individuals with GD tobe analyzed. Moreover, this is the first time that the haplotypesof polymorphisms (TA)n-rs3138774, PvuII-rs2234693, andXbaI-rs9340799 have been analyzed in a gender dysphoricpopulation.
Special attention was given to sample homogeneity. Some-times the lack of homogeneity (ie, ethnicity, sex, geographic
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Association of ESR1 With Female-to-Male Gender Dysphoria 471
origin, or other characteristics of dysphoric groups such as onsettime or sexual orientation, etc) can result in a non-genuine ge-netic diversity and an undesirable heterogeneity of the results. Inthis study, all individuals who participated were Caucasian; allpersons with GD had an early onset and were attracted to sub-jects of their natal sex, and control groups were comparable tothe FtM and MtF groups in their natal sex, ethnicity, andgeographic origin.
Our study has limitations. Because of the duration of thestudies, some patients were diagnosed using the DSM-5 criteriaand some using the DSM-IV-TR criteria. The control popula-tion was not specifically investigated for sexual orientation andmight be biased by self-selection. Furthermore, a cause-effectrelation cannot be established by an association study, and theresults should be interpreted with caution.
In addition, the software used for the association and thelinkage disequilibrium analyses excluded any individual with amissing value for any response, polymorphism, or covariate.Thus, because of the small sample, to confirm the implication ofthe two ERs in FtM GD, the study of a larger group should beundertaken, including replication in other populations and an-alyses of other polymorphisms for the gene studied in the presentstudy (by meta-analysis) and other steroidogenesis genes.
CONCLUSIONS
Our results suggest that polymorphism XbaI-rs9340799 andthe haplotypes L-C-G and L-C-A are associated with FtM GD inadults. Our findings also suggest different genetic programs forFtM and MtF individuals, but the result of this study must beconfirmed by meta-analysis given our small sample.
ACKNOWLEDGMENTSWe are grateful to the patients and controls who participated
in the study. We also are grateful to all the people whocontributed to this work.
Corresponding Author: Rosa Fernández, PhD, Departamentode Psicología, Área Psicobiología, Universidade da Coruña, ACoruña, Spain. Tel: 34-981167000; Fax: 34-981167115;E-mail: [email protected]
Conflicts of Interest: The authors report no conflicts of interest.
Funding: This work was supported by grants PSI2010-15115(to E.P.) and PSI2014-58004-P (to A.G.).
STATEMENT OF AUTHORSHIP
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(a) Conception and Design
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Rosa Fernández; Esther Gómez-Gil; Isabel Esteva; AntonioGuillamón; Eduardo Pásaro
(b) Acquisition of Data
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(c) Analysis and Interpretation of Data
Rosa Fernández; Esther Gómez-Gil; Isabel Esteva; Mari CruzAlmaraz; Antonio Guillamón; Eduardo PásaroCategory 2
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Joselyn Cortés-Cortés; Rosa Fernández; Nerea Teijeiro; EstherGómez-Gil; Isabel Esteva; Mari Cruz Almaraz; AntonioGuillamón; Eduardo Pásaro(b) Revising It for Intellectual Content
Rosa Fernández; Esther Gómez-Gil; Isabel Esteva; AntonioGuillamón; Eduardo PásaroCategory 3
(a) Final Approval of the Completed Article
Joselyn Cortés-Cortés; Rosa Fernández; Nerea Teijeiro; EstherGómez-Gil; Isabel Esteva; Mari Cruz Almaraz; AntonioGuillamón; Eduardo PásaroREFERENCES1. World Health Organization. The ICD-10. Classification of
mental and behavioural disorders. Diagnostic criteria forresearch. Geneva: World Health Organization; 1993.
2. American Psychiatric Association. Diagnostic and statisticalmanual of mental disorders. 4th ed, text revision.Washington,DC: American Psychiatric Association; 2000.
3. American Psychiatric Association. Diagnostic and statisticalmanual of mental disorders. 5th ed. Arlington, VA: AmericanPsychiatric Publishing; 2013.
4. Drescher J, Cohen-Kettenis P, Winter S. Minding the body:situating gender identity diagnoses in the ICD-11. Int RevPsychiatry 2012;24:568-577.
5. Cohen-Kettenis PT, Pfäfflin F. The DSM diagnostic criteria forgender identity disorder in adolescents and adults. Arch SexBehav 2010;39:499-513.
6. Guillamón A, Junqué C, Gómez-Gil E. A review of the status ofbrain structure research in transsexualism. Arch Sex Behav2016;45:1615-1648.
7. Cohen-Kettenis PT, Gooren LJG. Transsexualism: a review ofetiology, diagnosis and treatment. J Psychosom Res 1999;46:315-333.
8. Savic I, Garcia-Falgueras A, Swaab DF. Sexual differentiation ofthe human brain in relation to gender identity and sexualorientation. Prog Brain Res 2010;186:41-62.
9. Heylens G, De Cuypere G, Zucker KJ, et al. Gender identitydisorder in twins: a review of the case report literature. J SexMed 2012;9:751-757.
10. Henningsson S, Westberg L, Nilsson S, et al. Sex steroid-related genes and male-to-female transsexualism. Psycho-neuroendocrinology 2005;30:657-664.
11. Hare L, Bernard P, Sánchez FJJ, et al. Androgen receptorrepeat length polymorphism associated with male-to-femaletranssexualism. Biol Psychiatry 2009;65:93-96.
12. Ujike H, Otani K, Nakatsuka M, et al. Association study ofgender identity disorder and sex hormone-related genes. ProgNeuropsychopharmacol Biol Psychiatry 2009;33:1241-1244.
472 Cortés-Cortés et al
13. Sosa M, Jódar E, Arbelo E, et al. Serum lipids and estrogenreceptor gene polymorphisms in male-to-female transsexuals:effects of estrogen treatment. Eur J Intern Med 2004;15:231-237.
14. Fernández R, Esteva I, Gómez-Gil E, et al. The (CA)n poly-morphism of ERb gene is associated with FtM transsexualism.J Sex Med 2014;11:720-728.
15. Fernández R, Esteva I, Gómez-Gil E, et al. Association study ofERb, AR, and CYP19A1 genes and MtF transsexualism. J SexMed 2014;11:2986-2994.
16. Pettersson K, Gustafsson JA. Role of estrogen receptor betain estrogen action. Annu Rev Physiol 2001;63:165-192.
17. Couse JF, Korach KS. Estrogen receptor null mice: what havewe learned and where will they lead us? Endocr Rev 1999;20:358-417.
18. Matthews J, Gustafsson J-A. Estrogen signaling: a subtlebalance between ER alpha and ER beta. Mol Interv 2003;3:281-292.
19. Li C, Briggs MR, Ahlborn TE, et al. Requirement of Sp1 andestrogen receptor alpha interaction in 17beta-estradiol-mediated transcriptional activation of the low density lipo-protein receptor gene expression. Endocrinology 2001;142:1546-1553.
20. Safe S. Transcriptional activation of genes by 17 beta-estradiolthrough estrogen receptor-Sp1 interactions. Vitam Horm2001;62:231-252.
21. Ponglikitmongkol M, Green S, Chambon P. Genomic organi-zation of the human oestrogen receptor gene. EMBO J 1988;7:3385-3388.
22. Beato M, Herrlich P, Schütz G. Steroid hormone receptors:many actors in search of a plot. Cell 1995;83:851-857.
23. Robinson-Rechavi M, Escriva Garcia H, Laudet V. The nuclearreceptor superfamily. J Cell Sci 2003;116:585-586.
24. Yang CF, Shah NM. Representing sex in the brain, one moduleat a time. Neuron 2014;82:261-278.
25. Menasce LP, White GR, Harrison CJ, et al. Localization of theestrogen receptor locus (ESR) to chromosome 6q25.1 by FISHand a simple post-FISH banding technique. Genomics 1993;17:263-265.
26. Enmark E, Pelto-Huikko M, Grandien K, et al. Human es-trogen receptor beta-gene structure, chromosomal localiza-tion, and expression pattern. J Clin Endocrinol Metab 1997;82:4258-4265.
27. Kuiper GG, Carlsson B, Grandien K, et al. Comparison of theligand binding specificity and transcript tissue distribution ofestrogen receptors alpha and beta. Endocrinology 1997;138:863-870.
28. Kudwa AE, Michopoulos V, Gatewood JD, et al. Roles of es-trogen receptors alpha and beta in differentiation of mousesexual behavior. Neuroscience 2006;138:921-928.
29. Gómez-Gil E, Trilla A, Salamero M, et al. Sociodemographic,clinical, and psychiatric characteristics of transsexuals fromSpain. Arch Sex Behav 2009;38:378-392.
30. Bartolucci C, Gómez-Gil E, Salamero M, et al. Sexual quality oflife in gender-dysphoric adults before genital sex reassignmentsurgery. J Sex Med 2015;12:180-188.
31. Gómez-Gil E, Gutiérrez F, Cañizares S, et al. Temperament andcharacter in transsexuals. Psychiatry Res 2013;210:969-974.
32. Gómez-Gil E, Zubiaurre-Elorza L, Esteva de Antonio I, et al.Determinants of quality of life in Spanish transsexualsattending a gender unit before genital sex reassignment sur-gery. Qual Life Res 2014;23:669-676.
33. Gómez-Gil E, Zubiaurre-Elorza L, Esteva I, et al. Hormone-treated transsexuals report less social distress, anxiety anddepression. Psychoneuroendocrinology 2012;37:662-670.
34. Guzmán-Parra J, Sánchez-Álvarez N, de Diego-Otero Y, et al.Sociodemographic characteristics and psychological adjust-ment among transsexuals in Spain. Arch Sex Behav 2016;45:587-596.
35. Moorhead PS, Nowell PC, Mellman WJ, et al. Chromosomepreparations of leukocytes cultured from human peripheralblood. Exp Cell Res 1960;20:613-616.
36. Seabright M. A rapid banding technique for human chromo-somes. Lancet 1971;2:971-972.
37. van Meurs JBJ. Association of 50 estrogen receptor alpha genepolymorphisms with bone mineral density, vertebral bone areaand fracture risk. Hum Mol Genet 2003;12:1745-1754.
38. Solé X, Guinó E, Valls J, et al. SNPStats: a web tool for theanalysis of association studies. Bioinformatics 2006;22:1928-1929.
39. Laurie CC, Stam LF. The effect of an intronic polymorphism onalcohol dehydrogenase expression in Drosophila melanogaster.Genetics 1994;138:379-385.
40. Herrington DM, Howard TD, Brosnihan KB, et al. Commonestrogen receptor polymorphism augments effects of hor-mone replacement therapy on E-selectin but not C-reactiveprotein. Circulation 2002;105:1879-1882.
41. Maruyama H, Toji H, Harrington CR, et al. Lack of an associ-ation of estrogen receptor alpha gene polymorphisms andtranscriptional activity with Alzheimer disease. Arch Neurol2000;57:236-240.
42. Gennari L, De Paola V, Merlotti D, et al. Steroid hormonereceptor gene polymorphisms and osteoporosis: a pharma-cogenomic review. Expert Opin Pharmacother 2007;8:537-553.
43. Ioannidis JPA, Ralston SH, Bennett ST, et al. Differential ge-netic effects of ESR1 gene polymorphisms on osteoporosisoutcomes. JAMA 2004;292:2105-2114.
44. del Senno L, Aguiari GL, Piva R. Dinucleotide repeat poly-morphism in the human estrogen receptor (ESR) gene. HumMol Genet 1992;1:354.
45. Iwashita S, Koyama K, Nakamura Y. VNTR sequence on hu-man chromosome 11p15 that affects transcriptional activity.J Hum Genet 2001;46:717-721.
46. Figtree GA, Noonan JE, Bhindi R, et al. Estrogen receptorpolymorphisms: significance to human physiology, diseaseand therapy. Recent Pat DNA Gene Seq 2009;3:164-171.
J Sex Med 2017;14:464e472
RESULTADOS
123
4.4. CUARTO ESTUDIO
Molecular basis of Gender Dysphoria: androgen and estrogen receptor interaction.
Psychoneuroendocrinology. 2018; 98:161-167. doi: 10.1016/j.psyneuen.2018.07.032
Contents lists available at ScienceDirect
Psychoneuroendocrinology
journal homepage: www.elsevier.com/locate/psyneuen
Molecular basis of Gender Dysphoria: androgen and estrogen receptorinteraction
Rosa Fernándeza, Antonio Guillamonb,⁎⁎, Joselyn Cortés-Cortésa, Esther Gómez-Gilc,Amalia Jácomed, Isabel Estevae, MariCruz Almaraze, Mireia Moraf, Gloria Arandaf,Eduardo Pásaroa,⁎
a Departamento de Psicología, Universidade da Coruña, A Coruña, SpainbDepartamento de Psicobiología, Universidad Nacional de Educación a Distancia, Madrid, SpaincUnidad de Identidad de Género, Hospital Clínic, Barcelona, Spaind Departamento de Matemáticas, Universidade da Coruña, A Coruña, SpaineUnidad de Transexualidad e Identidad de Género, Hospital Carlos Haya, Málaga, SpainfDepartmento de Endocrinología y Nutrición, Hospital Clínic, Barcelona, Spain
A R T I C L E I N F O
Keywords:Androgen receptorAromataseEstrogen receptorFemale-to-male transsexualsGender dysphoriaMale-to-female transsexuals
A B S T R A C T
Background: Polymorphisms in sex steroid receptors have been associated with transsexualism. However, pub-lished replication studies have yielded inconsistent findings, possibly because of a limited sample size and/or theheterogeneity of the transsexual population with respect to the onset of dysphoria and sexual orientation. Weassessed the role of androgen receptor (AR), estrogen receptors alpha (ERα) and beta (ERβ), and aromatase(CYP19A1) in two large and homogeneous transsexual male-to-female (MtF) and female-to-male (FtM) popu-lations.Methods: The association of each polymorphism with transsexualism was studied with a twofold subject-controlanalysis: in a homogeneous population of 549 early onset androphilic MtF transsexuals versus 728 male controls,and 425 gynephilic FtMs versus 599 female controls. Associations and interactions were investigated using binarylogistic regression.Results: Our data show that specific allele and genotype combinations of ERβ, ERα and AR are implicated in thegenetic basis of transsexualism, and that MtF gender development requires AR, which must be accompanied byERβ. An inverse allele interaction between ERβ and AR is characteristic of the MtF population: when either ofthese polymorphisms is short, the other is long. ERβ and ERα are also associated with transsexualism in the FtMpopulation although there was no interaction between the polymorphisms. Our data show that ERβ plays a keyrole in the typical brain differentiation of humans.Conclusion: ERβ plays a key role in human gender differentiation in males and females.
1. Introduction
Transsexualism in ICD-10 (World Health Organization, 1993),Gender Identity Disorder in DSM-IV-TR (American PsychiatricAssociation, 2000), Gender Dysphoria in DSM-5 (American PsychiatricAssociation, 2013) or Gender Incongruence in ICD-11 (World HealthOrganization, 2018) are characterized by a marked incongruence be-tween one´s experienced gender and biological sex (World HealthOrganization, 1993). Transsexuals are individuals who seek, or have
undergone, a social transition from male-to-female (MtF) or female-to-male (FtM) that in many, but not all cases involves a somatic transitionthrough cross-sex hormone treatment and genital surgery (AmericanPsychiatric Association, 2013). One way to approach the study of fac-tors contributing to gender development is to compare MtF and FtMindividuals to others with typical gender identification.
A review of the genetic literature on transsexualism has shown thatconcordance is higher in monozygotic than in dizygotic twins amongboth MtF and FtM individuals (Heylens et al., 2012), pointing to a
https://doi.org/10.1016/j.psyneuen.2018.07.032Received 1 June 2018; Received in revised form 27 July 2018; Accepted 31 July 2018
⁎ Corresponding author at: Departamento de Psicología, Facultad Ciencias de la Educación. Campus Elviña. Universidade da Coruña, 15071, A Coruña, Spain.⁎⁎ Corresponding author at: Departamento de Psicobiología, Universidad Nacional de Educación a Distancia, C/Juan del Rosal, 10. 28040, Madrid, Spain.E-mail addresses: [email protected] (R. Fernández), [email protected] (A. Guillamon), [email protected] (J. Cortés-Cortés),
[email protected] (E. Gómez-Gil), [email protected] (A. Jácome), [email protected] (I. Esteva), [email protected] (M. Almaraz),[email protected] (M. Mora), [email protected] (G. Aranda), [email protected] (E. Pásaro).
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0306-4530/ © 2018 The Authors. Published by Elsevier Ltd. This is an open access article under the CC BY-NC-ND license (http://creativecommons.org/licenses/BY-NC-ND/4.0/).
T
genetic basis underlying transsexual development. In addition, differ-ences have been reported by studies of genetic polymorphisms insteroid receptors and enzymes implicated in the sexual differentiationof brain (Henningsson et al., 2005; Hare et al., 2009; Ujike et al., 2009;Fernández et al., 2014a,b, 2016; Cortés-Cortés et al., 2017). Differenceswere also reported in anatomical post mortem (Swaab, 2004) and in vivobrain studies (Guillamón et al., 2016). Moreover, MRI (Magnetic Re-sonance Imaging) studies show differing brain morphologies in MtF,FtM, females and males, reflecting different brain phenotypes that mayoriginate in atypical developmental effects produced by sex hormonesin specific cortical regions (Guillamón et al., 2016) and subcorticalstructures (Zhou et al., 1995).
The biological actions of sex steroids are mediated by binding tospecific nuclear receptors that are members of an extended family oftranscription factors. The ligand–receptor complex translocates to thenucleus and promotes sex-specific gene expression (Matthews andGustafsson, 2003). The direct induction of gene expression via activa-tion of the estrogen receptors (ERs) α and β and the androgen receptor(AR) is the presumptive route for brain masculinization (Sato et al.,2004; Kudwa et al., 2006).
In lower mammals ERα is primarily involved in masculinization,while ERβ has a major function in defeminization of sexual behavior(Kudwa et al., 2006). In rodents, estradiol induces two independentdevelopmental processes: masculinization of neural circuits that willsupport male-typical reproductive behaviors in adults and defeminiza-tion, the loss of the ability to display typical adult female behavior,which is also an active developmental process (McCarthy, 2008).However, it is believed that in non-human primates (Wallen, 2005), aswell as in humans (Swaab, 2004), estrogenic metabolites from andro-gens are not critical to masculinization and defeminization (Wallen,2005).
All these observations have led to the study of the involvement ofDNA polymorphisms of ERβ, ERα, AR, and the aromatase (CYP19A1) intranssexuality (Henningsson et al., 2005; Hare et al., 2009; Ujike et al.,2009; Fernández et al., 2014a,b, 2016; Cortés-Cortés et al., 2017).However, the reported results have been inconsistent or negative(Meyer-Bahlburg, 2011). The lack of agreement between differentpublications might be due to the small samples studied and/or theheterogeneity of the transsexual population in relation to the onset ofthe gender dysphoria (i.e. before or after puberty) and sexual orienta-tion.
In order to address all these questions, this work studied the im-plication of the polymorphisms (CA)n-ERβ (rs113770630), XbaI-ERα(rs9340799), (CAG)n-AR (rs193922933) and (TTTA)n-CYP19A1(rs60271534) in a large and homogenous sample of 549 early onsetandrophilic MtFs vs 728 male controls and 425 early onset gynephilicFtMs vs 599 female controls. The analyses were conducted in-dependently for a somatically1 female population (FtM vs female con-trols) and a somatically male population (MtF vs male controls).
Moreover, because it is unknown whether androgen and estrogengenotypes interact with each other in the genesis of gender, we alsoanalyzed the cross interactions between the AR polymorphism and theother above-mentioned polymorphisms (ERβ, ERα and CYP19A1).
2. Methods and materials
2.1. Participants
The initial population was 599 MtFs, 434 FtMs, and 599 female and728 male controls recruited through the Gender Units of the HospitalClínic of Barcelona (Spain) and the Hospital Carlos Haya of Málaga(Spain). As we began collecting the sample in 2010, during the first
three years transsexuals were diagnosed using the DSM-IV-TR(American Psychiatric Association, 2000) (Gender Identity Disorder inAdolescent or Adults 302.85), which is focused on gender identity perse, but, since 2014, we have used the DSM-5 (American PsychiatricAssociation, 2013) [Gender Dysphoria (GD) in Adolescents and Adults,302.85], which focuses on dysphoria as the clinical problem. However,all subjects in our study fulfill the definition of transsexuals stated inDSM-IV-TR: all felt a strong and persistent identification with the othersex, and expressed a strong desire for a social transition from male tofemale or female to male that involved somatic transition by cross-sexhormone treatment and, in most, genital surgery. The initial exclusioncriteria were head trauma, neurological disorder, major medical con-dition and history of alcohol and/or drug abuse. We applied three in-clusion criteria to this population: early onset of GD (before puberty),being androphilic (MtF) or gynephilic (FtM) and aged between 18 and47 years old at enrollment. With these criteria 39 MtFs and 1 FtM wereexcluded. We also excluded individuals with chromosome aneuploidy,inversions and translocations (11 MtFs and 8 FtMs). Sociodemographicand clinical characteristics from a transsexual Spanish sample of similarcharacteristics have been described in detail elsewhere (Gómez-Gilet al., 2009).
Male and female control groups were described in a previous study(Soriguer et al., 2013). They were selected randomly from a countrycensus (Pizarra, Málaga, Spain). The inclusion age was 18–65 years.Individuals were excluded if they had been hospitalized for any reasonin the four weeks prior to the evaluation, were pregnant, in a geriatricinstitution, or had a severe medical or psychiatric disorder (these ex-clusion criteria were also applied to the transsexual population). Theage and sex sample distribution was not different from the generalpopulation distribution (Soriguer et al., 2013). The controls were free ofchromosomal anomalies. The final sample of the study was made up of549 MtFs, 425 FtMs, and 599 female and 728 male controls.
The study was initiated after obtaining approval from the EthicsCommittees of the Clínic Hospital, Carlos Haya Hospital, Universidadde A Coruña, and Universidad Nacional de Educación a Distancia(Madrid).
2.2. Cytogenetic analysis
Chromosomes were prepared according to standard techniques fromperipheral blood (Moorhead et al., 1960) to obtain G-banding kar-yotypes (Seabright, 1971).
2.3. Molecular analysis
Genomic DNA was extracted from EDTA blood samples using theDNeasy Blood & Tissue Kit from Qiagen (Madrid, Spain).Polymorphisms were selected for study on the basis of their knownimplication in the development of cerebral sex differences in humans(Raznahan et al., 2010) and had already been studied by ourselves andothers (Henningsson et al., 2005; Hare et al., 2009; Ujike et al., 2009;Fernández et al., 2014a,b, 2016; Cortés-Cortés et al., 2017). The poly-morphisms selected for each gene were as follows, for the ESR2 gene:(CA)n-ERβ (rs113770630); for the ESR1 gene: XbaI-ERα (rs9340799);for the AR gene: (CAG)n-AR (rs193922933); and for the aromataseCYP19A1 gene: (TTTA)n-CYP19A1 (rs60271534) (Supplemental FigureS1). These polymorphic regions were amplified by PCR following thepreviously outlined protocols (Fernández et al., 2014a,b; Cortés-Cortéset al., 2017) (Supplemental Table 1).
Three of the polymorphisms analyzed were short tandem repeatpolymorphisms (STRs): (CA)n-ERβ, (CAG)n-AR and (TTTA)n-CYP19A1;and one was a single nucleotide polymorphism (SNP): XbaI-ERα. In thecase of tandem polymorphisms, genotyping was performed by auto-mated capillary electrophoresis (3130 XL Genetic Analyzer, AppliedBiosystems, Spain), and allele length was determined by theGeneMapper-5 program (2012 Applied Biosystems, Spain). In the case
1With respect to FtMs and MtFs, the use of the word “somatically” refers toindividuals natally assigned as females or males respectively.
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of the XbaI-ERα polymorphism, genotyping was performed by theovernight digestion of the PCR product with the enzyme XbaI (Roche,Spain) (Supplemental Table 1) and visualized in a 6% polyacrylamidenon-denaturing electrophoresis gel (GE Healthcare, Spain). The geno-types resulting from digestion with XbaI were G/G, A/G, and A/A.
2.4. Statistical methods
First, to evaluate for possible associations with transsexualism,comparisons between MtF vs male controls and FtM vs female controlswere performed: for the repeat length of the STR polymorphisms ap-plying Mann-Whitney test, and for the SNP polymorphism with theallele and genotype frequencies and Chi-squared test, using SPSS® 23.0software.
Second, to seek a combined effect of the polymorphisms ERβ, ERα,AR and CYP19A1 in transsexualism, a cross-interaction analysis wascarried out with a binary logistic regression model, separately in twoindependent populations: somatically females (FtM vs female controls)and somatically males (MtF vs male controls). The AR gene is located atthe X chromosome, so 46,XY individuals have only one allele. For thatreason, the AR polymorphism was fixed, fitting the logistic models foreach AR allele separately. The analyses were performed using the freeonline software SNPStats, http://bioinfo.iconcologia.net/SNPstats (Soléet al., 2006), estimating the odds ratio (OR) for each genotype combi-nation with respect to the reference.
For the cross-interaction analyses it was necessary to transform thetandem polymorphisms into dichotomous variables, short (S) vs long (L)alleles, taking as a cutoff the median obtained in the correspondingcontrol groups (ERβ: short ≤ 26.66 for males and short ≤ 26.61 forfemales; AR: short ≤ 18.55 for males and short ≤ 18.67 for females;CYP19A1: short ≤ 8.22 for males and females). Genotypes were S/S(short-short), L/L (long-long), and S/L (short-long) for ERβ andCYP19A1 polymorphisms, and S vs L for AR polymorphism. A backwardstepwise cross-interaction analysis was performed, starting with themost complex model (combined effect of all polymorphisms) and con-tinuing to the simplest one (pairwise effects). False positive rate in thesemultiple tests was controlled with the Bonferroni correction, adjustingthe significance cutoff to the number of tests conducted in each step.
In all cases, a missing value for any response, polymorphism, orcovariate was cause for exclusion of that individual from the analysis,considering a p-value lower than 0.05 as significant.
3. Results
3.1. Analyses of tandem polymorphisms
The allele distribution for each tandem polymorphism was analyzedwithin two independent populations taking into account the biologicalsex: MtF vs male controls and FtM vs female controls. A total of 19different alleles were identified for the ERβ (ranging from 18 to 41repeats), 23 for AR (ranging from 6 to 33) and 12 for CYP19A1 (rangingfrom 4 to 24), see Supplemental Figure S2) There were not significantdifferences between MtFs and control males in the distribution of repeatnumbers of ERβ (U=358850; Z=−0.49; p=0.623), AR (Mann-Whitney U=88953.5; Z=−0.56, p=0.578), and CYP19A1(U=359230; Z=−1.83; p=0.067). Between FtMs vs female controls,only the ERβ polymorphism showed significant differences(U= 205830; Z=−2.90; p=0.004), in contrast to AR (Mann-WhitneyU=217790.5; Z=1.18; p= 0.236), and CYP19A1 (U= 230290.5;Z=−0.81; p= 0.418).
3.2. Analyses of single nucleotide polymorphisms
The allele and genotype frequencies for the XbaI-ERα polymorphismwere significantly different between FtMs and female controls(χ2=4.049; p=0.044; and χ2=11.237; p=0.004, respectively). In
MtFs vs male controls, neither the allele nor the genotype frequencieswere significantly different (χ2=2.686; p=0.101; and χ2=5.366;p=0.068, respectively) (Table 1).
3.3. Cross interaction analysis
For the cross interaction analyses, the tandem polymorphisms weredichotomized into short and long allele groups. The cross interactionanalyses were performed stepwise starting with the most complexmodel (ERβ with CYP19A1 and XbaI-ERα polymorphisms by AR), andthen pairwise comparisons (ERβ with CYP19A1 and ERβ with XbaI-ERαby AR), always considering somatically females and somatically malesas two independent populations.
3.4. Interaction analysis between polymorphisms ERβ, CYP19A1 and XbaI-ERα by AR
The cross interaction between ERβ, CYP19A1 and XbaI-ERα ad-justed by AR showed statistical significance in the somatically males(Supplemental Table 2) and in the somatically females (SupplementalTable 3). The OR for transsexuality was greater for somatically malescarrying a short allele for ERβ, a long allele for aromatase, a G allele forXbaI-ERα and a short allele for AR (SLGS) [OR=15.74 (1.14–218.14);p=0.0394], using the SSAS genotype as reference category (short allelefor ERβ, short allele for aromatase, A allele for XbaI-ERα and shortallele for AR). For somatically females carrying a long allele for ERβ, ashort allele for aromatase, an A allele for XbaI-ERα and a genotype S/Sfor AR (LSA, A/A) [OR=16.91 (1.37–208.58); p=0.0271], using theSSA A/A genotype as reference category (Supplemental Table 4).However, the differences were not significant when Bonferroni cor-rections were used. The interaction between ERβ, CYP19A1 and XbaI-ERα by AR for susceptibility to transsexualism in somatically males andsomatically females was significant (p=0.0038 and p=0.0029 re-spectively).
3.5. Interaction analysis between polymorphisms ERβ and CYP19A1 by AR
The cross interaction between ERβ and CYP19A1 adjusted by ARshowed statistical significance in somatically males (Table 2) and insomatically females (Supplemental Table 5). The OR was significantlylower for MtFs carrying the LLL genotype: long allele for ERβ, longallele for CYP19A1 and long allele for AR [OR=0.52 (0.35–0.79);p=0.0016], remaining significant after Bonferroni correction (0.05/7= 0.007), compared to the reference category SSL genotype: shortallele for ERβ, short allele for CYP19A1 and long allele for AR. The ORwas significantly higher for FtMs carrying the LLS/L genotype: longallele for ERβ, long allele for CYP19A1 and S/L genotype for AR
Table 1XbaI-ERα allele/genotype frequencies in male-to-female vs control XY and fe-male-to-male vs control XX groups.
Allele/Genotype frequencies All subjects Control XY MtF χ2 P
A 0.625 0.672 0.599 2.686 0.101G 0.375 0.328 0.401A/A 0.394 0.484 0.343 5.366 0.068A/G 0.463 0.376 0.512G/G 0.143 0.140 0.145
Allele/Genotypefrequencies
All subjects Control XX FtM χ2 P
A 0.633 0.584 0.675 4.049 0.044*G 0.367 0.416 0.325A/A 0.404 0.299 0.496 11.237 0.004*A/G 0.457 0.570 0.358G/G 0.139 0.131 0.146
MtF: male-to-female transsexuals; FtM: female-to-male transsexuals.
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[OR=3.33 (1.11–10.02); p=0.0318], but the differences were notsignificant when Bonferroni corrections were used (0.05/11=0.0045).The interaction between ERβ and CYP19A1 by AR was significant forsusceptibility to transsexualism in somatically males and somaticallyfemales (p=0.0076 and p=0.0012 respectively).
3.6. Interaction analysis between polymorphisms ERβ and XbaI-ERα by AR
The interaction between ERβ and XbaI-ERα by AR was only sig-nificant in somatically males (p=0.001) (Table 3), not in somaticallyfemales (Supplemental Table 5). The cross interactions between ERβand XbaI-ERα adjusted by AR showed that in somatically males the ORwas significantly lower carrying a short allele for ERβ, an A allele forXbaI-ERα and a short allele for AR [OR=0.10 (0.03 - 0.39;p=0.0004], remaining significant after Bonferroni correction (0.05/7= 0.007) (Table 3).
3.7. Interaction analysis between the polymorphisms by AR
The analyses of the polymorphisms by AR only showed significantdifferences in ERβ in somatically males (Tables 4 and 5) with interac-tion p-values of 0.001 and 0.0034. Somatically males carrying the longAR allele with genotype S/L for ERβ [OR=0.40 (0.23 - 0.70);p=0.0013] (Table 4) was a combination with statistical significancethat remained significant after Bonferroni correction. There is also aninverse relationship between the long AR allele in combination with theERβ S/S genotype (Table 5) [OR=2.81 (1.38–5.70); p=0.0043] thatincrease the risk of transsexuality that remained significant after Bon-ferroni correction (Table 5).
4. Discussion
Our study resulted in three main findings. First, there is an inter-action between the ERβ and AR polymorphisms in the development ofatypical gender identity in the MtF population involving an inverserelationship between these polymorphisms. Second, the development ofgender in the FtM population is associated with ERβ and/or ERα, but nointeraction between these polymorphisms was found. Third, both ERs(α and β) are involved in typical male and female gender development.
The androphilic MtF population presents an inverse relationshipbetween ERβ and AR such that the short AR polymorphism is associatedwith the L/L ERβ genotype, while, on the contrary, the long AR poly-morphism is associated with the S/S ERβ genotype.
Neither of these two polymorphisms on its own is associated with
Table 2Logistic regression analysis results for possible cross interaction between ERβ and CYP19A1 by AR, and OR for MtF transsexualism.
ERβ and CYP19A1 by AR cross-classification interaction table (n=855, crude analysis)
AR
Alleles L S
ERβ CYP19A1 Frequency OR (95% CI) P OR (95% CI) P
S S 0.2691 1.00 (reference) 0.33 (0.14 - 0.77) 0.0107*L L 0.2665 0.52 (0.35 - 0.79) 0.0016*† 0.47 (0.21 - 1.03) 0.0623L S 0.2244 0.65 (0.37 - 1.12) 0.1274 0.46 (0.22 - 0.96) 0.0384*S L 0.2400 0.77 (0.47 - 1.25) 0.2989 0.37 (0.18 - 0.77) 0.0073*
Interaction p-value: 0.0076*.The risk for each genotype is compared with regard to the reference category 1.00 (reference): SSL: short allele for ERβ, short allele for aromatase, and long allele forAR. *Statistically significant (p≤ 0.05). †Significant after the Bonferroni correction (p < 0.05/7=0.007).
Table 3Logistic regression analysis results for possible cross interaction between ERβ and XbaI-ERα by AR, and OR for MtF transsexualism.
ERβ and XbaI-ERα by AR cross-classification interaction table (n= 884, crude analysis)
AR
Alleles L S
ERβ XbaI-ERα Frequency OR (95% CI) P OR (95% CI) P
S A 0.3668 1.00 (reference) 0.10 (0.03 - 0.39) 0.0004*†L A 0.2964 0.56 (0.28 - 1.10) 0.0964 0.37 (0.15 - 0.91) 0.0303*L G 0.1950 0.82 (0.45 - 1.50) 0.5289 0.25 (0.08 - 0.79) 0.0175*S G 0.1418 0.90 (0.28 - 2.88) 0.8692 1.22 (0.24 - 6.16) 0.8218
Interaction p-value=0.001*.The risk for each genotype is compared with regard to the reference category (1.00 reference). *Statistically significant (p≤ 0.05). †Significant after the Bonferronicorrection (p < 0.05/7=0.007).
Table 4Binary logistic regression analysis of ERβ by AR in male-to-female and controlXY groups, and OR for MtF transsexualism.
ERβ within AR (n= 827, crude analysis)
AR ERβ Control XY MtF OR (95% CI) P
L S/S 0.05 0.12 (1.00 reference)S/L 0.34 0.30 0.40 (0.23 – 0.70) 0.0013*†L/L 0.12 0.11 0.41 (0.22 – 0.78) 0.0057*†
S S/S 0.11 0.12 (1.00 reference)S/L 0.35 0.27 0.72 (0.45 - 1.16) 0.1747L/L 0.04 0.10 2.36 (1.16 - 4.78) 0.0173*
Interaction p-value=0.001*.MtF: male-to-female transsexuals. The risk for each genotype is compared withregard to the reference category 1.00 (reference): S/S genotype for ERβ.*Statistically significant (p≤ 0.05). †Significant after the Bonferroni correction(p < 0.05/4=0.0125).
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MtF. AR is necessary, but insufficient on its own without ERβ for genderdevelopment in MtF. The OR for the interaction between ERβ and AR isheightened by a further association with the XbaI-ERα polymorphism.The highest risk for transsexuality is observed in somatically male in-dividuals carrying a short allele (S) for the ERβ polymorphism togetherwith a G allele for XbaI-ERα and a short allele (S) for AR (SGS geno-type) compared to the reference category SAS, short allele (S) for theERβ together with an A allele for XbaI-ERα and a short allele (S) for AR.However, the differences were not significant when Bonferroni cor-rections were used
Furthermore, there is a lower risk for transsexuality in somaticallymale individuals when the short allele (S) for AR is associated with theshort allele (S) for ERβ and the A allele for ERα (SAS genotype) com-pared to the reference category SAL, short allele (S) for the ERβ to-gether with an A allele for XbaI-ERα and a long allele (L) for AR.
Previous studies evaluated polymorphism interactions using abinary logistic regression model (Henningsson et al., 2005; Hare et al.,2009; Ujike et al., 2009). However, cross-interaction analysis betweenpolymorphisms is additionally used here. Our results confirmed thoseobtained by Henningsson et al. (Henningsson et al., 2005), who sug-gested an interaction between ERβ and AR, but, what is more, we areable to specify the genotypes involved. We found that fewer CAG re-peats in the AR polymorphism increases the risk of transsexuality incomparison to the presence of a higher number of CAG repeats, in in-teraction with the L/L genotype for ERβ (Table 4). Like Hare et al.(2009), we also found an association between the AR polymorphismand MtF. However, we found, the association was restrictive since a lownumber of CAG repeats in the AR increases the risk of transsexuality ininteraction with the L/L genotype for ERβ (Table 4), and, vice versa,more CAG repeats in the AR increases the risk of transsexuality in in-teraction with the S/S genotype for the ERβ (Table 5). The Ujike et al.study (Ujike et al., 2009) is not really comparable to ours or otherstudies mentioned above because it used the average instead of themedian to establish long and short alleles. Considering the work ofHenningsson et al. (2005) and Hare et al. (2009) together with ourresults, and taking into account the different origins of the analyzedpopulations, we could say that the implication of the AR in genderdysphoria in MtF is a consistent finding.
ER α and β also play a key role in the gynephilic FtM population.Specific variants of ERβ and ERα polymorphisms are associated withFtM. Interestingly, there is no interaction between these polymorph-isms. ERα, particularly the XbaI-ERα polymorphism, has a significanteffect: an A/A genotype implied a greater susceptibility to transsexu-ality, while genotype A/G showed a protective effect. With respect tothe ERβ polymorphism, we found a direct association between thenumber of CA repeats and transsexuality, confirming our previous re-port (Fernández et al., 2014a).
One important observation that is directly derived from our analysisis that androphilic MtFs and gynephilic FtMs share a common feature:
the involvement of the same polymorphisms in the estrogen receptors.Moreover, these polymorphisms have been related to sexually di-morphic behavior like Alzheimer's disease, depression, obsessive com-pulsive disorder, schizophrenia, FtM dysphoria and others (Brandiet al., 1999; Ji et al., 2000; Corbo et al., 2006; Boada et al., 2012; Panet al., 2014).
Estrogen is an important regulator of brain growth and differ-entiation and the ERs have a key function in sexual differentiation ofbrain and behavior (McCarthy, 2008). Additionally, ER α and β arefound in both the developing (González et al., 2007) and adult humanbrain (Osterlund et al., 2000). ER expression shows sex differences(Ishunina et al., 2002).
With respect to the typical masculinization of the brain in XY sub-jects, it was proposed that direct androgen action on the brain is crucialfor the development of a male gender identity and heterosexuality andthat the aromatization theory, developed from rodent experiments,would be of secondary importance in our species (Swaab, 2004). Incontrast, our results show that both ERs and AR receptors are involvedin the development of transsexuality in the androphilic MtF population.As well as by androgens acting on AR, ERs can be activated by estradiolresulting from the aromatization of testosterone (Lephart, 1996). Thearomatase enzyme is already present in human fetuses (Naftolin et al.,1971). Moreover, dihydrotestosterone, a reduced testosterone meta-bolite, can be further metabolized to 5α-androstene-3β,17β-diol, amolecule that preferentially binds to ERβ (Kuiper et al., 1997). Ourresults show the involvement of ERα and β in the typical developmentof gender in men and women.
At the present stage, it is very difficult to fit molecular, brain andbehavioral findings together. This is because there are complex inter-actions among hormones, receptors and enzymes (Swift-Gallant andMonks, 2017), as well as species-specific behaviors, and the expressionof sex differences in the brain shows two morphological patterns underdifferent hormonal controls (Guillamón and Segovia, 1996). MRI stu-dies before cross-sex hormone treatment show that androphilic MtFsand gynephilic FtMs present a type of intersexuality restricted to thebrain. The brain of androphilic MtFs shows a mixture of masculine,feminine and demasculinized traits, and gynephilic FtMs also show amixture of feminine, masculine and defeminized traits (Guillamónet al., 2016). Both groups share common genotypic and phenotypicfeatures: first, the involvement of the two ERs in gender dysphoria, andsecond, their cortex is thicker than gender-typical males, but this hap-pens in different regions than in males (Guillamón et al., 2016). Theseobservations support our hypothesis that MtFs and FtMs undergo anatypical developmental process with respect to the sexual differentia-tion of their cortex (Guillamón et al., 2016) (Fig. 1).
5. Conclusions
We have found that key receptors implicated in sexual differentia-tion of the brain have a specific allele combination for ERβ, ERα, andAR in the MtF population, whose gender differentiation is associatedwith a specific genotypic combination of ERs and AR polymorphisms.Also, FtM gender is associated with specific polymorphisms of the ERβand ERα receptors. Thus, ERα and ERβ play a key role in the typicalsexual differentiation of the brain in our species.
Declarations of interest
None.
Contributors
Each author declares his/her individual contribution to the article.All authors have participated in the research and/or article preparation.All authors have approved the final article.
Table 5Binary logistic regression analysis of AR within ERβ in male-to-female andcontrol XY groups, and OR for MtF transsexualism.
AR within ERβ (n= 827, crude analysis)
ERβ AR Control XY MtF OR (95% CI) P
S/S L 24 44 (1.00 reference)S 49 44 0.49 (0.26-0.93) 0.0279*
S/L L 151 112 (1.00 reference)S 156 101 0.87 (0.62-1.24) 0.4392
L/L L 53 40 (1.00 reference)S 17 36 2.81 (1.38-5.70) 0.0043*†
Test for interaction in the trend= 0.0034*.MtF: male-to-female transsexuals. The risk for each genotype is compared withregard to the reference category 1.00 (reference). *Statistically significant(p≤ 0.05). †Significant after the Bonferroni correction (p < 0.05/3=0.0166).
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Authorship
All authors have made substantial contributions to all of the fol-lowing:
(1) The conception and design of the study (RF, AG, EP), diagnosis(EGG, IE, MCA, MM, GA) and acquisition of data (RF, JCC, EGG, IE,MCA, MM, GA, EP), or analysis and interpretation of data (RF, AG, AJ,EP).
(2) Drafting the article or revising it critically for important in-tellectual content (RF, AG, EP).
(3) All authors have approved the final article.
Financial disclosure
This work was supported by grants from the Spanish Ministry ofScience and Innovation [PSI2014 - 58004-P (AG)] and the Xunta deGalicia [grant number ED431B 2016/013 (EP)]. J. Cortés-Cortés wassupported by a doctoral fellowship FPU 15/02558.
Conflicts of interest
The authors report no conflicts of interest.
Acknowledgments
We are grateful to the patients and controls who participated in thestudy.
Appendix A. Supplementary data
Supplementary material related to this article can be found, in theonline version, at doi:https://doi.org/10.1016/j.psyneuen.2018.07.032.
References
American Psychiatric Association, 2000. Diagnostic and Statistical Manual of MentalDisorders, 4th ed. DSM-IV-TR, Washington, DC.
American Psychiatric Association, 2013. Diagnostic and Statistical Manual of MentalDisorders, 5th ed. DSM-5, Washington, DC.
Boada, M., Antunez, C., López-Arrieta, J., Caruz, A., Moreno-Rey, C., Ramírez-Lorca, R.,Morón, F.J., Hernández, I., Mauleón, A., Rosende-Roca, M., Martínez-Lage, P., Marín,J., Tárraga, L., Alegret, M., Pedrajas, J.R., Urda, N., Royo, J.L., Saez, M.E., Gayán, J.,González-Pérez, A., Real, L.M., Ruiz, A., Galán, J.J., 2012. Estrogen receptor alphagene variants are associated with Alzheimer’s disease. Neurobiol. Aging 33https://doi.org/10.1016/j.neurobiolaging.2010.06.016. 198.e15-24.
Brandi, M.L., Becherini, L., Gennari, L., Racchi, M., Bianchetti, A., Nacmias, B., Sorbi, S.,Mecocci, P., Senin, U., Govoni, S., 1999. Association of the estrogen receptor alphagene polymorphisms with sporadic Alzheimer’s disease. Biochem. Biophys. Res.Commun. 265, 335–338. https://doi.org/10.1006/bbrc.1999.1665.
Corbo, R.M., Gambina, G., Ruggeri, M., Scacchi, R., 2006. Association of estrogen re-ceptor alpha (ESR1) PvuII and XbaI polymorphisms with sporadic Alzheimer’s dis-ease and their effect on apolipoprotein E concentrations. Dement. Geriatr. Cogn.Disord. 22, 67–72. https://doi.org/10.1159/000093315.
Cortés-Cortés, J., Fernández, R., Teijeiro, N., Gómez-Gil, E., Esteva, I., Almaraz, M.,Guillamón, A., Pásaro, E., 2017. Genotypes and haplotypes of the estrogen receptoralpha gene (ESR1) are associated with female-to-male gender Dysphoria. J. Sex. Med.14, 464–472. https://doi.org/10.1016/j.jsxm.2016.12.234.
Fernández, R., Esteva, I., Gómez-Gil, E., Rumbo, T., Almaraz, M., Roda, E., Haro-Mora, J.,Guillamón, A., Pásaro, E., 2014a. The (CA)n polymorphism of ERβ gene is associatedwith FtM transsexualism. J. Sex. Med. 11, 720–728. https://doi.org/10.1111/jsm.12398.
Fernández, R., Esteva, I., Gómez-Gil, E., Rumbo, T., Almaraz, M.C., Roda, E., Haro-Mora,J.-J., Guillamón, A., Pásaro, E., 2014b. Association study of ERβ, AR, and CYP19A1genes and MtF transsexualism. J. Sex. Med. 11, 2986–2994. https://doi.org/10.1111/jsm.12673.
Fernández, R., Cortés-Cortés, J., Gómez-Gil, E., Esteva, I., Almaraz, M., Guillamón, A.,Pásaro, E., 2016. The CYP17-MspA1 rs743572 polymorphism is not associated withgender dysphoria. Genes Genomics 38, 1145–1150. https://doi.org/10.1007/s13258-016-0456-9.
Gómez-Gil, E., Trilla, A., Salamero, M., Godás, T., Valdés, M., 2009. Sociodemographic,clinical, and psychiatric characteristics of transsexuals from Spain. Arch. Sex. Behav.38, 378–392. https://doi.org/10.1007/s10508-007-9307-8.
González, M., Cabrera-Socorro, A., Pérez-García, C.G., Fraser, J.D., López, F.J., Alonso, R.,Meyer, G., 2007. Distribution patterns of estrogen receptor alpha and beta in thehuman cortex and hippocampus during development and adulthood. J. Comp.Neurol. 503, 790–802. https://doi.org/10.1002/cne.21419.
Guillamón, A., Segovia, S., 1996. Sexual dimorphism in the CNS and the role of steroids.In: Stone, T.W. (Ed.), CNS Neurotransmitters and Neuromodulators: NeuroactiveSteroids. CRC Press, Florida, pp. 127–152.
Guillamón, A., Junqué, C., Gómez-Gil, E., 2016. A review of the status of brain structure
Fig. 1. Hypothetical development of gender dysphoria in gynephilic FtM and androphilic MtF populations during prenatal period. Estrogens could act directly viaERα and/or ERβ in the FtM population. In MtFs, but not in FtMs, the intervention of testosterone via AR is also necessary. Specific variants (alleles) could affect thelevel of ERα and ERβ expression. S= Short allele; L= Long allele; A=Adenine.
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166
research in transsexualism. Arch. Sex. Behav. 45, 1615–1648. https://doi.org/10.1007/s10508-016-0768-5.
Hare, L., Bernard, P., Sánchez, F.J.J., Baird, P.N.N., Vilain, E., Kennedy, T., Harley,V.R.R., 2009. Androgen receptor repeat length polymorphism associated with male-to-female transsexualism. Biol. Psychiatry 65, 93–96. https://doi.org/10.1016/j.biopsych.2008.08.033.
Henningsson, S., Westberg, L., Nilsson, S., Lundstrom, B., Ekselius, L., Bodlund, O.,Lindstrom, E., Hellstrand, M., Rosmond, R., Eriksson, E., Landen, M., 2005. Sexsteroid-related genes and male-to-female transsexualism. Psychoneuroendocrinology30, 657–664. https://doi.org/10.1016/j.psyneuen.2005.02.006.
Heylens, G., De Cuypere, G., Zucker, K.J., Schelfaut, C., Elaut, E., Vanden Bossche, H., DeBaere, E., T’Sjoen, G., 2012. Gender identity disorder in twins: a review of the casereport literature. J. Sex. Med. 9, 751–757. https://doi.org/10.1111/j.1743-6109.2011.02567.x.
Ishunina, T.A., Wouda, J., Fisser, B., Swaab, D.F., 2002. Sex differences in estrogen re-ceptor alpha and beta expression in vasopressin neurons of the supraoptic nucleus inelderly and Alzheimer’s disease patients: no relationship with cytoskeletal altera-tions. Brain Res. 951, 322–329. https://doi.org/10.1016/S0006-8993(02)03269-9.
Ji, Y., Urakami, K., Wada-Isoe, K., Adachi, Y., Nakashima, K., 2000. Estrogen receptorgene polymorphisms in patients with Alzheimer’s disease, vascular dementia andalcohol-associated dementia. Dement. Geriatr. Cogn. Disord. 11, 119–122doi:https://doi.org/17224.
Kudwa, A.E., Michopoulos, V., Gatewood, J.D., Rissman, E.F., 2006. Roles of estrogenreceptors alpha and beta in differentiation of mouse sexual behavior. Neuroscience138, 921–928. https://doi.org/10.1016/j.neuroscience.2005.10.018.
Kuiper, G.G., Carlsson, B., Grandien, K., Enmark, E., Häggblad, J., Nilsson, S., Gustafsson,J.A., 1997. Comparison of the ligand binding specificity and transcript tissue dis-tribution of estrogen receptors alpha and beta. Endocrinology 138, 863–870. https://doi.org/10.1210/endo.138.3.4979.
Lephart, E.D., 1996. A review of brain aromatase cytochrome P450. Brain Res. Brain Res.Rev. 22, 1–26. https://doi.org/10.1016/S0165-0173(96)00002-1.
Matthews, J., Gustafsson, J., 2003. Estrogen signaling: a subtle balance between ER alphaand ER beta. Mol. Interv. 3, 281–292. https://doi.org/10.1124/mi.3.5.281.
McCarthy, M., 2008. Estradiol and the developing brain. Physiol. Rev. 88, 91–124.https://doi.org/10.1152/physrev.00010.2007.
Meyer-Bahlburg, H., 2011. Transsexualism (“Gender Identity Disorder”) – A CNS-LimitedForm of Intersexuality?, in: MI New, J.S. (eds) (Ed.), Hormonal and Genetic Basis ofSexual Differentiation Disorders and Hot Topics in Endocrinology: Proceedings of the2nd World Conference. pp. 75–79.
Moorhead, P.S., Nowell, P.C., Mellman, W.J., Battips, D.M., Hungerford, D.A., 1960.Chromosome preparations of leukocytes cultured from human peripheral blood. Exp.Cell Res. 20, 613–616. https://doi.org/10.1016/0014-4827(60)90138-5.
Naftolin, F., Ryan, K.J., Petro, Z., 1971. Aromatization of androstenedione by limbicsystem tissue from human foetuses. J. Endocrinol. 51, 795–796. https://doi.org/10.1677/joe.0.0510795.
Osterlund, M., Gustafsson, J., Keller, E., Hurd, Y., 2000. Estrogen receptor beta (ERbeta)messenger ribonucleic acid (mRNA) expression within the human forebrain: distinctdistribution pattern to ERalpha mRNA. J. Clin. Endocrinol. Metab. 85, 3840–3846.https://doi.org/10.1210/jcem.85.10.6913.
Pan, Y., Li, Y., Shen, H., 2014. Meta-analysis of the association between polymorphisms ofestrogen receptor α genes rs9340799 and rs2234693 and Alzheimer’s disease: evi-dence from 23 articles. Am. J. Alzheimers Dis. Other Demen. 29, 704–711. https://doi.org/10.1177/1533317514534760.
Raznahan, A., Lee, Y., Stidd, R., Long, R., Greenstein, D., Clasen, L., Addington, A., 2010.Longitudinally mapping the influence of sex and androgen signaling on the dynamicsof human cortical maturation in adolescence. Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 107,16988–16993. https://doi.org/10.1073/pnas.1006025107.
Sato, T., Matsumoto, T., Kawano, H., Watanabe, T., Uematsu, Y., Sekine, K., Fukuda, T.,Aihara, K.-I., Krust, A., Yamada, T., Nakamichi, Y., Yamamoto, Y., Nakamura, T.,Yoshimura, K., Yoshizawa, T., Metzger, D., Chambon, P., Kato, S., 2004. Brainmasculinization requires androgen receptor function. Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A.101, 1673–1678. https://doi.org/10.1073/pnas.0305303101.
Seabright, M., 1971. A rapid banding technique for human chromosomes. Lancet 2,971–972. https://doi.org/10.1016/S0140-6736(71)90287-X.
Solé, X., Guinó, E., Valls, J., Iniesta, R., Moreno, V., 2006. SNPStats: a web tool for theanalysis of association studies. Bioinformatics 22, 1928–1929. https://doi.org/10.1093/bioinformatics/btl268.
Soriguer, F., Gutiérrez-Repiso, C., Rubio-Martín, E., García-Fuentes, E., Almaraz, M.C.,Colomo, N., Esteva de Antonio, I., de Adana, M.S.R., Chaves, F.J., Morcillo, S., Valdés,S., Rojo-Martínez, G., 2013. Metabolically healthy but obese, a matter of time?Findings from the prospective Pizarra study. J. Clin. Endocrinol. Metab. 98,2318–2325. https://doi.org/10.1210/jc.2012-4253.
Swaab, D.F., 2004. Sexual differentiation of the human brain: relevance for genderidentity, transsexualism and sexual orientation. Gynecol. Endocrinol. 19, 301–312.
Swift-Gallant, A., Monks, D.A., 2017. Androgenic mechanisms of sexual differentiation ofthe nervous system and behavior. Front. Neuroendocrinol. 46, 32–45. https://doi.org/10.1016/j.yfrne.2017.04.003.
Ujike, H., Otani, K., Nakatsuka, M., Ishii, K., Sasaki, A., Oishi, T., Sato, T., Okahisa, Y.,Matsumoto, Y., Namba, Y., Kimata, Y., Kuroda, S., 2009. Association study of genderidentity disorder and sex hormone-related genes. Prog. Neuropsychopharmacol. Biol.Psychiatry 33, 1241–1244. https://doi.org/10.1016/j.pnpbp.2009.07.008.
Wallen, K., 2005. Hormonal influences on sexually differentiated behavior in nonhumanprimates. Front. Neuroendocrinol. 26, 7–26. https://doi.org/10.1016/j.yfrne.2005.02.001.
World Health Organization, 1993. The ICD-10. Classification of Mental and BehaviouralDisorders. Diagnostic Criteria for Research, Geneva.
World Health Organization, 2018. The ICD-11. International Classification of Diseases forMortality and Morbidity Statistics Eleventh Revision. https://icd.who.int/.
Zhou, J.N., Hofman, Ma, Gooren, L.J., Swaab, D.F., 1995. A sex difference in the humanbrain and its relation to transsexuality. Nature. https://doi.org/10.1038/378068a0.
R. Fernández et al. Psychoneuroendocrinology 98 (2018) 161–167
167
DISCUSIÓN
133
5.1. Análisis citogenético y molecular del cariotipo en una población con Disforia de
Género
El objetivo principal de esta Tesis fue profundizar en el conocimiento de la base genética,
citogenética y molecular, de la Disforia de Género (DSM-5) (American Psychiatric
Association, 2013), trastorno de la conducta de etiología compleja en donde intervienen la
acción de diferentes hormonas, genes, interacciones gen-gen y gen-ambiente, durante las
etapas pre y perinatal del desarrollo cerebral (McCarthy, Herold, & Stockman, 2018).
El primer trabajo (Fernández et al., 2018) consistió en el estudio citogenético del cariotipo
mediante bandas-G, en una población transexual de 717 sujetos (444 MtFs y 273 FtMs), y
el estudio molecular del cariotipo en 23 sujetos (18 MtFs y 5 FtMs) mediante el microarray
de alta densidad CytoScan™ high-density (HD) de Affymetrix.
Los datos mostraron una mayor frecuencia de las alteraciones citogenéticas en la población
con Disforia de Género (2,65%) respecto a la población general (0,53%) (p<0,0001). La
frecuencia de las alteraciones citogenéticas en nuestra población con Disforia de Género es
similar a la frecuencia señalada por otros autores como Bearman (2007) que encontró una
frecuencia del 2,5% en una población de 400 individuos con Disforia de Género, e Inoubli
et al., (2011) que señalan una frecuencia del 2,45% en una población de 368 individuos
transexuales analizados. Sin embargo, nuestros datos difieren de los aportados por otros
autores como Hengstschläger et al., (2003), Wylie & Stewardy (2008), Auer et al., (2013)
y Vujovic et al., (2009). Estas discrepancias podrían ser debidas al tamaño de las
poblaciones analizadas, excesivamente pequeñas en alguno de estos estudios, o a la
diversidad de las técnicas empleadas. La mayor discrepancia se da respecto al trabajo de
Vujovic et al., (2009), quienes señalan un 0% de aneuploidías en la población transexual
analizada (Vujovic, Popovic, Sbutega, Djordjevic, & Gooren, 2009)
En general, hemos podido comprobar que las técnicas empleadas por los diferentes autores
en el establecimiento del cariotipo no fueron homogéneas. En el estudio de Auer et al.,
(2013) se utilizó la técnica del corpúsculo de Barr que determina exclusivamente el número
de cromosomas X inactivos en las células (Barr y Bertram, 1949) a partir del análisis de
Joselyn Francis Cortés Cortés
134
núcleos, no metafases, lo que nos lleva a pensar que los datos presentados por estos autores
podrían ser una subestimación de la realidad.
En relación a la población transexual española, cuando realizamos el estudio de los
cromosomas mediante bandas G, once de los individuos MtF y ocho FtMs mostraron
alteraciones citogenéticas. En concreto, entre las alteraciones detectadas podemos señalar
una translocación en mosaico t(9;22) relacionada con una leucemia mieloide crónica, y
otras reordenaciones cromosómicas como inv(9) (p11q12), t(13;14) y Yqh(-).
La inversión pericéntrica del cromosoma 9, inv(9) (p11q12), es uno de los reordenamientos
cromosómicos más frecuentes en la población general (Hsu, Benn, Tannenbaum, Perlis, &
Carlson, 1989). Aunque parece que no se correlaciona con alteraciones fenotípicas, existen
numerosos informes que indican que podría conducir a condiciones clínicas alteradas,
como la infertilidad. Las inversiones pericéntricas resultan de un evento de dos
interrupciones en el que hay una ruptura en cada brazo cromosómico, incluyendo el
centrómero (Hartl, 2000). Una inversión no suele tener un efecto fenotípico en la mayoría
de los portadores heterocigotos de inversión pericéntrica, como es el caso de nuestra
población.
En cuanto a las translocaciones Robertsonianas (fusión centromérica de dos cromosomas
acrocéntricos) ocurren con una prevalencia de 1/1.000 en la población general (Gardner &
Sutherland, 1996). Las más comunes son las formas no homólogas, es decir, aquellas que
involucran a dos cromosomas acrocéntricos diferentes: dos cromosomas del grupo D
diferentes (cromosomas 13, 14 y 15), dos cromosomas del grupo G diferentes (21 y 22) o
un cromosoma del grupo D y otro del grupo G (Scriven, Flinter, Braude, & Ogilvie, 2001).
La translocación Robertsoniana más común se origina entre los cromosomas 13 y 14. Esta
translocación D/D constituye aproximadamente el 75% de todas las traslocaciones
Robertsonianas (Gardner & Sutherland, 1996). Algunos individuos con t(13; 14) presentan
infertilidad o abortos espontáneos recurrentes (Harris, Hankins, & Begleiter, 1979).
Respecto a la deleción Yqh(-) presente en dos de los individuos MtF analizados, implica
una pequeña pérdida de la región heterocromática del brazo largo del cromosoma Y (Hsu
DISCUSIÓN
135
et al. 1989). La variación en el tamaño del brazo largo del cromosoma Y sin consecuencias
fenotípicas difiere entre personas e incluso entre grupos étnicos, y la herencia de una
longitud constante ha sido bien documentada (Bhasin, 2005; Verma, Huq, & Dosik, 1983).
En general se cree que ser portador de una deleción del brazo largo del cromosoma Yq- no
implica ningún efecto deletéreo.
Respecto al síndrome de Klinefelter (47,XXY o 46,XY/47,XXY) se pudo confirmar una
mayor frecuencia de este síndrome en la población MtF (1,13%) respecto a la población
general masculina (0,02%) , siendo esta diferencia estadísticamente significativa (p=0,001),
mientras que el síndrome de Turner no estaba presente en la población transexual española
analizada (p<0,61). Sin embargo no podemos descartar, como señalan Bojesen y Gravholt
(2007), que entre la población general, el síndrome de Klinefelter no esté
infradiagnosticado, dada la gran variabilidad fenotípica que se da en el mismo.
El síndrome de Klinefelter es la aneuploidía sexual más común en humanos que afecta
aproximadamente a 1 de cada 600 recién nacidos varones (Wikström & Dunkel, 2011). En
estas personas, al comienzo de la pubertad, los niveles de testosterona son
significativamente más bajos que en el resto de la población (Smyth & Bremner, 1998) y,
como consecuencia de ello, se ha podido observar que los varones con síndrome de
Klinefelter suelen mostrar menos interés en los estereotipos masculinos y menor atracción
hacia las mujeres que sus compañeros 46,XY (Ngun et al., 2014).
Generalmente el fenotipo característico del síndrome de Klinefelter se hace evidente solo
después de la pubertad, ya que durante la infancia la función pituitaria gonadal es
relativamente normal (Wikström & Dunkel, 2008). A partir de la mitad de la pubertad, se
produce una degeneración testicular donde los niveles de testosterona disminuyen
mostrando una clara disminución de andrógenos (Smyth & Bremner, 1998; Wikström,
Dunkel, Wickman, Norjavaara, Ankarberg, & Raivio, 2006) que impide que las
características sexuales secundarias se desarrollen completamente (Visootsak & Graham,
2006). Por tanto, el comportamiento menos masculinizado podría estar relacionado con
bajos niveles de testosterona. Autores como Brancroft et al., (1982) también encontraron
en esta población evidencias de retraso o deterioro en el desarrollo del interés sexual
Joselyn Francis Cortés Cortés
136
(Bancroft, Axworthy, & Ratcliffe, 1982; Ratcliffe, Bancroft, Axworthy, & McLaren,
1982). En un estudio de caso, Zastowny et al., señalaron que en este síndrome, el
comportamiento atípico en la adolescencia puede reducirse con un tratamiento de
testosterona exógena (Zastowny, Lehman, & Dickerson, 1988).
La disconformidad con el género que experimentan algunas personas con el síndrome de
Klinefelter, podría explicarse por los bajos niveles de testosterona (Swaab, 2007), ya que
en los individuos con una cariotipo 46,XY, durante el neurodesarrollo cerebral, la acción
directa de la testosterona sobre el cerebro del feto provoca su masculinización, mientras
que la falta de esta hormona produce el efecto contrario (Savic, Garcia-Falgueras, &
Swaab, 2010).
Fundamentalmente lo que hacen las hormonas gonadales es potenciar las áreas en donde
interactúan con sus receptores, generando, y potenciando así, los circuitos neuronales
específicos del sexo (Nugent, Schwarz, & McCarthy, 2011). Por tanto, la teoría sobre la
desregularización de la actividad hormonal sexual durante el desarrollo pre y perinatal del
cerebro (Hoekzema et al., 2015) parece ser congruente con los últimos estudios genéticos
que muestran una susceptibilidad a la Disforia de Género relacionada con genes implicados
en la diferenciación sexual (Cortés-Cortés et al., 2017; Fernández et al., 2014b; Fernández
et al., 2018; Foreman et al., 2018; Hare et al., 2009; Henningsson et al., 2005).
Además de realizar el análisis del cariotipo mediante bandas G, en nuestro estudio
incorporamos la tecnología de los HD-microarrays con el fin de detectar microduplicaciones
y/o microdeleciones que no son apreciables con las técnicas tradicionales de citogenética
(Haraksingh, Abyzov, & Urban, 2017). La aplicación de esta técnica nos permitió encontrar
trece ganancias y dos pérdidas, distribuidas entre los cromosomas 4, 9, 10, 11, 15 y 17. La
microduplicación 17q21.31, en la posición chr17:44,187,491–44,784,639, se detectó en 7
de los 23 individuos analizados. Esta alteración se ha podido definir en ambas poblaciones
de transexuales, siendo ligeramente menor la incidencia en el grupo MtF (5/18 individuos)
respecto al grupo FtM (2/5 individuos). Esta microduplicación varió entre 572-597 Kb
dependiendo del sujeto analizado, pero abarcó en todos los casos el gen KANSL1 (OMIM
612,452). Este polimorfismo fue descrito por primera vez en una población control por
DISCUSIÓN
137
Sebat et al., (2004) como una región polimórfica inestable pero no patogénica (Sharp et al.,
2006). Las investigaciones realizadas hasta el momento muestran que la duplicación del
gen KANSL1 es un polimorfismo común, que se observa en el 12% de las poblaciones
analizadas (León et al., 2017).
El gen KANSL1 proporciona instrucciones para sintetizar una subunidad de un grupo de
proteínas llamadas “complejo regulador KAT8”. Este complejo se considera un complejo
de histona acetiltransferasa (HAT) que regula la expresión genética mediante la
modificación de la cromatina (https://ghr.nlm.nih.gov/gene/KANSL1). Ya que controla la
actividad de otros muchos genes, esta proteína juega un papel importante en el desarrollo y
función de numerosos órganos del cuerpo. Según los datos aportados por el Proyecto NIH
Genotype-Tissue Expression (GTEx) https://www.gtexportal.org (Figura 10), en humanos
la proteína KAT8 se expresa en la mayoría de los órganos y tejidos del cuerpo, antes del
nacimiento, tanto en hombres como en mujeres (Figura 11) y a lo largo de toda la vida. La
expresión media máxima se localizó en los hemisferios cerebelosos (expresión media
máxima: 20.58 RPKM5), tanto en hombres como en mujeres.
5 RPKM: Unidad de expresión de un gen (Reads Per Kilobase Million). La fórmula para realizar el cálculo es la siguiente:
Joselyn Francis Cortés Cortés
138
Figura 10. Representación de los niveles de expresión del gen KANSL1.
La expresión del gen KANSL1 se representa como “lágrimas” coloreadas, en donde la altura corresponde a los niveles de expresión media (TPM) para cada tejido analizado, y el color representa
el tejido analizado. Los colores fueron asignados conforme a la GTEx (Consortium publication convention). Los datos se basan en el análisis de 8.555 muestras post-mortem obtenidas a partir de
570 individuos (hombres y mujeres) adultos. Las muestras post-mortem corresponden a donantes sanos de edad comprendida entre los 20 y 79 años. TPM: Unidades de expresión génica
(Transcripts Per Million). Fuente: GTEx Analysis Release V7 (dbGaP Accession phs000424.v7.p2) el 16/07/2019. https://www.gtexportal.org/home/gene/ENSG00000120071.8.
DISCUSIÓN
139
Figura 11. Representación de los niveles de expresión diferencial del gen KANSL1 en hombres y mujeres, en tejido cerebral.
Se representa la expresión diferencial del gen KANSL1 en hombres (azul) y mujeres (rosa), en el tejido cerebral. La altura de las “lágrimas” coloreadas corresponde a los niveles de expresión
media (TPM) para cada tejido analizado, y el color representa el sexo biológico. TPM: Unidades de expresión génica (Transcripts Per Million). Fuente: GTEx Analysis Release V7 (dbGaP
Accession phs000424.v7.p2) el 16/07/2019. https://www.gtexportal.org/home/gene/ENSG00000120071.8.
Joselyn Francis Cortés Cortés
140
La interrupción del gen KANSL1 se asocia con un fenotipo clínico severo denominado
síndrome de microdeleción 17q21.31 (MIM 610,443) también conocido como síndrome de
Koolen-De Vries (Moreno, Hernández, Bengoa, Aranzazu, Romero, Nieva, & Ramos,
2015; Zollino et al., 2015). Pero, mientras que el síndrome de microdeleción 17q21.31 está
claramente asociado a un fenotipo concreto y bien establecido, la microduplicación
muestra una penetrancia y expresividad variables, encontrándose asociado a una variedad
fenotípica que implica, aunque no necesariamente, problemas conductuales y pobre
interacción social (https://omim.org/entry/613533) (Grisart et al., 2009).
La importancia de nuestro trabajo se basa en que nuestro grupo es el único que hasta la
fecha ha aplicado la tecnología de los HD-microarrays al estudio molecular del cariotipo
en una población con Disforia de Género. Pero dicha técnica también presenta algunas
limitaciones importantes, dado que no detecta alteraciones citogenéticas balanceadas, es
decir, sin pérdida o ganancia de material genético, como translocaciones equilibradas o
inversiones.
Hoy en día, las técnicas citogenéticas convencionales como las bandas G proporcionan
información más superficial, en comparación con las nuevas técnicas moleculares que
permiten un estudio en profundidad de los cromosomas. Sin embargo, el estudio del
cariotipo sigue siendo un requisito exigido y previo al tratamiento hormonal cruzado para
el cambio de sexo en la población transexual en muchos países, entre otros, el nuestro. Ello
es así dado que el objetivo de las mismas no es detectar el origen del trastorno, sino
descubrir la presencia de alteraciones del cariotipo, especialmente aquellas relacionadas
con los cromosomas sexuales (síndrome de Turner, síndrome de Klinefelter, etc.) que
podrían distorsionar el tratamiento hormonal cruzado, más que dar una explicación al
origen del trastorno en sí mismo. Es esta la razón por la que se sigue considerando el
estudio del cariotipo como paso previo, y una parte esencial, del período de transición
antes de la terapia hormonal.
DISCUSIÓN
141
5.2. Estudio del polimorfismo CYP17-rs743572 en una población con Disforia de
Género
El CYP17A1 es un gen muy importante para la biosíntesis del estradiol, ya que determina
la cantidad de pregnenolona y progesterona que será utilizada en la síntesis de estrógenos y
andrógenos, así como también la cantidad restante que dará lugar a la síntesis de cortisol
(Kristensen & Børresen-Dale, 2000).
Uno de los polimorfismos más estudiados del gen CYP17A1 es el polimorfismo CYP17-
rs743572, o también denominado CYP17A1 34T-C o MspA1-CYP17A1, en el que se
produce un cambio de Timina a Citosina (T-C) en la posición 34 de la secuencia de ADN.
Esta mutación crea un cambio en la región promotora del gen (CCACC en lugar de
CCACT), que se cree que está relacionado con un aumento de la expresión de dicho gen
(Denschlag, Bentz, Hefler, Pietrowski, Zeillinger, Tempfer, & Tong, 2006) (EMBL-EBI
https://www.ebi.ac.uk/gxa/home). Feigelson et al., (1997) asoció este polimorfismo a
niveles elevados de estradiol, progesterona y testosterona, en suero y plasma (Feigelson et
al., 1997, 1998) considerándolo un marcador de riesgo de cáncer en mujeres. Algunos
estudios reforzaron estos hallazgos vinculando este SNP a enfermedades dependientes del
funcionamiento de los estrógenos como la endometriosis (Asghar et al., 2005;
Szczepańska, Wirstlein, Skrzypczak, & JagodzińskI, 2013) y el cáncer de mama
(Chakraborty, Murthy, Chintamani, Bhatnagar, Mohil, Sharma, & Saxena, 2007; Chang et
al., 2005; Feigelson et al., 1997; Kristensen, Haraldsen, Anderson, Kåresen, & Gabrielsen,
1999).
Los niveles atípicos de hormonas sexuales durante el periodo prenatal y las diferencias en
la sensibilidad de los correspondientes receptores, parecen jugar un papel muy importante
en la etiología de la transexualidad (Blanchard & Klassen, 1997) de manera que lo que se
propone es que la actividad hormonal influye en el desarrollo cerebral, masculinizándolo o
feminizándolo, a través de cambios en la sensibilidad de los receptores específicos (Van
Goozen, Slabbekoorn, Gooren, Sanders, & Cohen-Kettenis, 2002).
Joselyn Francis Cortés Cortés
142
El primer trabajo que relacionó el polimorfismo CYP17-rs743572 con la Disforia de
Género fue realizado por Bentz et al., (2008) en una población austríaca. Los autores
encontraron que el alelo mutado C (A2, siguiendo la nomenclatura utilizada en la
investigación) estaba sobrerrepresentado en la población transexual FtM respecto a la
población control femenina; en concreto encontraron diferencias estadísticamente
significativas cuando compararon las frecuencias alélicas y genotípicas en la población
FtM frente al grupo control de mujeres, indicando un patrón de distribución alélica
específico para la población transexual FtM.
Los autores analizaron diferentes modelos de heredabilidad (dominante, recesivo y
codominante) confirmando la asociación entre el alelo A2 y la Disforia de Género en la
población FtM. Además encontraron una distribución alélica sexo dependiente en la
población control, de tal forma que el grupo control masculino mostraba una frecuencia del
alelo A2 significativamente mayor respecto al grupo control femenino (A2: 604/1.512
[40%] vs 573/1.826 [31%] respectivamente; p=0,001). La población transexual MtF
mostraba frecuencias alélicas equivalentes a sus controles masculinos, mientras que la
población FtM no seguía el mismo patrón específico del sexo. Al contrario, la distribución
alélica en la población FtM era equivalente a la distribución alélica en la población MtF y
en la población control masculina.
Teniendo en cuenta el estudio de Bentz et al., (2008) y nuestros resultados previos sobre
genes candidatos para la Disforia de Género (Fernández et al., 2015; Fernández et al.,
2014a, 2014b) consideramos relevante ampliar nuestro estudio previo del polimorfismo
CYP17-rs743572 (Fernández et al., 2015), dado que se presumía que la enzima CYP17
podría jugar un papel importante en la diferenciación sexual del cerebro, a través de la
interacción con las hormonas sexuales (Swaab, 2007).
En 2016 ampliamos nuestro estudio del polimorfismo CYP17-rs743572 en una población
española con Disforia de Género compuesta por 317 MtFs, 223 FtMs, 358 controles
masculinos y 264 controles femeninos (Fernández et al., 2016). Al contrario que Bentz et
al., (2008), en la población española las frecuencias alélicas y genotípicas no mostraron
diferencias estadísticamente significativas entre las poblaciones FtM vs grupo control
DISCUSIÓN
143
femenino (p=0,43 y p=0,25 para las frecuencias alélicas y genotípicas respectivamente) ni
tampoco entre las poblaciones MtF vs grupo control masculino (p=0,74 y p=0,67).
Además, las frecuencias alélicas y genotípicas tampoco diferían significativamente entre
ambos grupos control, al contrario de lo que sugerían Bentz y colaboradores. Corroborando
nuestro estudio previo, las frecuencias genotípicas no diferían ni entre grupos (p=0,66), ni
entre genotipos (p=0,4) ni entre sexos (p=0,66).
Así mismo, comparamos las frecuencias alélicas y genotípicas obtenidas en nuestro estudio
con las obtenidas por Bentz et al., (2008), pudiendo observar que las frecuencias alélicas y
genotípicas de la población transexual no diferían entre la población española y la
austríaca. Únicamente el grupo control femenino austríaco aportaba diferencias
estadísticamente significativas respecto a la población control femenina española
(p=0,000086 y p=0,00016, frecuencias alélicas y genotípicas respectivamente) (Figura 12).
Figura 12. Representación de las frecuencias alélicas del alelo A2 del polimorfismo CYP17-rs743572 en una población austríaca (Bentz et al., 2008) y española (Fernández et al., 2016) con Disforia de Género y sus grupos control.
FtM= población female to male; MtF=población male to female; CXX= grupo control femenino; CXY= grupo control masculino
Para comprobar si el polimorfismo CYP17-rs743572 era realmente dependiente del sexo
en la población general, tal como sugerían Bentz et al., (2008), y para descartar un posible
Joselyn Francis Cortés Cortés
144
error debido a la selección de la muestra control, realizamos una revisión sistemática de
todas las investigaciones publicadas hasta ese momento sobre el polimorfismo CYP17-
rs743572. La búsqueda se realizó en la base de datos MEDLINE incorporando los estudios
realizados en humanos, y publicados en habla inglesa, que diferenciasen las variables sexo,
etnia y país de origen. La búsqueda se llevó a cabo incorporando los términos: “rs743572”,
“CYP17 polymorphism”, CYP17A1 polymorphism” y “cytochrome P450c17”. Un total de
1.444 trabajos de investigación fueron seleccionados (Figura 13).
Se aplicaron los siguientes criterios de inclusión: 1) estudios caso-control; 2)
investigaciones con grupo control sano y sin mezcla de sexos o de etnias; 3)
investigaciones que indicasen las frecuencias alélicas y/o genotípicas; 4) N del grupo
control igual o superior a 100. Cuando el mismo grupo control fue usado en diferentes
publicaciones, solo se tuvo en cuenta el grupo con mayor N. A partir de la lectura del
abstract, un total de 1.125 artículos fueron descartados por incumplir claramente alguna de
estas premisas; 319 artículos fueron seleccionados para su revisión mediante la lectura del
artículo completo. Finalmente 78 artículos fueron tenidos en cuenta para el cálculo de las
frecuencias alélicas y genotípicas en la población control según sexo, etnia y país de
origen.
Por otra parte, también se utilizó la base de datos del Proyecto 1000 Genomes
(http://www.internationalgenome.org/) que es el primer proyecto internacional que
secuenció los genomas de un elevado número de personas con el fin de proporcionar un
recurso completo sobre la variabilidad genética humana. Esta base es de libre acceso y está
disponible para la comunidad científica, por lo que fue utilizada para obtener las
frecuencias alélicas del polimorfismo CYP17-rs743572 según el país de origen, sexo y
etnia.
Según los resultados de nuestra revisión bibliográfica y los obtenidos a partir del Proyecto
1000 Genomes, las frecuencias alélicas del polimorfismo CYP17-rs743572 mostraron una
distribución diferencial étnica y geográfica, pero nunca dependiente del sexo. Es decir, en
ningún país, raza o etnia observamos diferencias estadísticamente significativas entre
sexos, a excepción del trabajo de Bentz et al., (2008). Los mismos autores en una
DISCUSIÓN
145
publicación anterior sobre la implicación de este polimorfismo en la formación de
leiomiomas uterinos en una población caucásica australiana, tampoco encontraron una
distribución del polimorfismo dependiente del sexo en la población general (Denschlag et
al., 2006).
Figura 13. Esquema de selección de trabajos utilizado en la revisión bibliográfica del gen CYP17A1.
Joselyn Francis Cortés Cortés
146
Las frecuencias alélicas del polimorfismo CYP17-rs743572 en la población española
fueron similares a las obtenidas en el estudio de revisión bibliográfica, y también similares
a las obtenidas a partir de la base de datos 1000 Genomes, no encontrándose en ningún
caso diferencias estadísticamente significativas.
Nuestros resultados, por tanto, contradicen los aportados por Bentz et al., (2008) sobre la
implicación del polimorfismo CYP17-rs743572 en la base genética de la transexualidad,
basándonos, no solo en la población española analizada, sino también en los datos
derivados de 1000 Genomes y de los obtenidos en la revisión bibliográfica.
Por tanto, nuestros datos no corroboran que el polimorfismo CYP17-rs743572 muestre una
distribución dependiente del sexo en la población general, ni tampoco podemos confirmar
que el alelo A2 esté sobrerrepresentado en la población transexual. De hecho, el gen
CYP17A1 se encuentra localizado en el cromosoma 10, no en el cromosoma X, por lo que
parece consecuente esperar una distribución alélica no dependiente del sexo (Denschlag et
al., 2006; Young et al., 1999).
Las discrepancias existentes entre nuestro trabajo y el estudio de Bentz et al., (2008) se
pueden deber a problemas en la selección de su muestra control femenina, pues formaron
este grupo con mujeres que realizaban consultas médicas por desórdenes perimenopáusicos
en los Hospitales Universitarios de Austria y Alemania. En este sentido los datos obtenidos
por el grupo de Bentz y colaboradores sobre el polimorfismo CYP17-rs743572, podrían
estar relacionados con enfermedades dependientes del funcionamiento de los estrógenos
(Asghar et al., 2005; Szczepańska et al., 2013). En conclusión, podemos afirmar que según
nuestros datos, el polimorfismo CYP17-rs743572 no está asociado a la Disforia de Género.
5.3. Estudio molecular del gen ESR1 en una población con Disforia de Género
El receptor de estrógenos (ER) alfa y beta, pertenece a una superfamilia de receptores
nucleares (Hewitt, Harrell, & Korach, 2005) que son factores de transcripción que regulan
en cascada la expresión de múltiples genes, de manera dependiente de unión a ligando, en
respuesta específica a señales fisiológicas y patológicas (Aranda & Pascual, 2001). En los
DISCUSIÓN
147
seres humanos los genes ESR1 y ESR2 codifican los receptores de estrógenos ERα y ERβ
respectivamente. Los dos receptores muestran una distribución diferente en el tejido
cerebral (Figura 14), diferentes afinidades de unión a los estrógenos (Kuiper, Carlsson,
Grandien, Enmark, Häggblad, Nilsson, & Gustafsson, 1997) y también diferentes
propiedades transcripcionales (Matthews & Gustafsson, 2003).
Figura 14. Representación de los niveles de expresión de los genes ESR1 y ESR2, en tejido cerebral en humanos.
La expresión de los genes ESR1 y ESR2 se representa como “lágrimas”, en donde la altura corresponde a los niveles de
expresión media (TPM) para cada tejido analizado. Los datos se basan en el análisis de 8.555 muestras post-mortem
obtenidas a partir de 570 individuos (hombres y mujeres) adultos. Las muestras post-mortem corresponden a donantes
sanos de edad comprendida entre los 20 y 79 años. TPM: Unidades de expresión génica (Transcripts Per Million).
Fuente: Portal GTEx el 14/07/2019, número de acceso phs000424.vN.pN https://www.gtexportal.org/home/
Joselyn Francis Cortés Cortés
148
Una vez unido a los estrógenos, el receptor experimenta un cambio conformacional que
conduce a la dimerización (homodímero ERα-α, homodímero ERβ-β o heterodímero ERα-
β), lo que permite al receptor interactuar con mayor o menor afinidad con secuencias de
ADN específicas, ubicadas en las regiones promotoras de los genes diana (Li, Briggs,
Ahlborn, Kraemer, & Liu, 2001; Safe, 2001) y, de ese modo, modular el proceso de
transcripción de múltiples genes en un proceso en cascada (Matthews & Gustafsson, 2003;
Ponglikitmongkol, Green, & Chambon, 1988) que contribuye a los efectos potentes y
duraderos de los esteroides en los sistemas en desarrollo, incluido el cerebro (McCarthy,
2009b).
Estudios previos sobre la etiología de la Disforia de Género encontraron una asociación
entre el polimorfismo de repetición ERβ-rs113770630, situado en el gen ESR2, y la
Disforia de Género (Fernández et al., 2014b; Henningsson et al., 2005). Dada la
importancia de los estrógenos en los procesos del neurodesarrollo, su creciente vinculación
con los procesos de desfeminización y masculinización cerebral, y la implicación
previamente demostrada del ESR2 en la base genética de la Disforia de Género (Fernández
et al., 2014b; Henningsson et al., 2005), se consideró relevante estudiar la posible
implicación del gen ESR1 en la Disforia de Género en la población transexual española, a
través del estudio de polimorfismos genéticos situados en este gen. En concreto nos
centramos en tres polimorfismos próximos entre sí, situados en la región promotora del gen
ESR1 o en sus proximidades: el polimorfismo de repetición (TA)n ERα-rs3138774
localizado en la región promotora, y los polimorfismos de un solo nucleótido (SNPs) ERα-
rs2234693 y ERα-rs9340799 localizados en el intrón 1. Estos dos últimos polimorfismos
han sido ampliamente estudiados y ligados a numerosas variaciones patogénicas
relacionadas con los estrógenos como el cáncer de mama (Andersen, Heimdal, Skrede,
Tveit, Berg, & Børresen, 1994; Clemons & Goss, 2001; Parl, Cavener, & Dupont, 1989;
Pedram, Razandi, Wallace, & Levin, 2006), el cáncer endometrial (Ashton et al., 2009,
2010; Weiderpass, Persson, Melhus, Wedren, Kindmark, & Baron, 2000), la densidad ósea
(Kobayashi, Inoue, Hosoi, Ouchi, Shiraki, & Orimo, 1996) y la migraña (Brandes, 2006;
Colson, Lea, Quinlan, MacMillan, & Griffiths, 2004).
DISCUSIÓN
149
Estos tres polimorfismos se encuentran dentro, o flanqueando, la región promotora del gen
ESR1 que codifica el receptor de estrógenos alfa (ERα), un factor de transcripción cuatro
veces más afín a los estrógenos que el receptor de estrógenos beta (ERβ) (Kuiper et al.,
1997). En este trabajo hipotetizamos que variaciones en la secuencia del promotor o
regiones próximas a él, podrían alterar la transcripción del gen ESR1, que a su vez podrían
modificar características importantes del receptor ERα (concentración del receptor en
diferentes tejidos cerebrales, alteración de la distribución del receptor en los diferentes
tejidos, variaciones en la sensibilidad del receptor, variaciones en la proporción de
heterodímeros ERα-ERβ respecto a los homodímeros ERα-ERα o ERβ-ERβ, etc.)
(Hernández-Romano, Martínez-Barnetche, & Valverde-Garduño, 2009). Los cambios
indicados podrían originar a su vez modificaciones en la afinidad del receptor por los
estrógenos circulantes durante una etapa pre o peri natal crítica durante el desarrollo
cerebral y, como consecuencia, la respuesta del receptor ERα ante los estrógenos podría
verse alterada en la población transexual por la herencia de diferentes haplotipos. Por todas
estas razones se creyó relevante poder analizar estos tres polimorfismos en la población
transexual española. En concreto se analizó una población constituida por 183 FtMs, 184
MtFs y 394 individuos control.
Cuando analizamos la frecuencias alélicas y genotípicas de los tres polimorfismos (ERα-
rs3138774, ERα-rs2234693 y ERα-rs9340799) encontramos diferencias significativas para
el polimorfismo ERα-rs9340799 en la población FtM respecto al grupo control de mujeres.
En concreto detectamos una sobrerrepresentación del alelo A y del genotipo A/A en la
población FtM respecto a la población control femenina. El hecho de que el genotipo
heterocigoto A/G aparezca más frecuentemente ligado al grupo control femenino que a la
población FtM, sugiere que el genotipo A/G podría favorecer el proceso de feminización
cerebral, mientras que el genotipo A/A, más frecuente en la población FtM que en la
población control femenina, y menos frecuente en la población MtF que en la población
control masculina, podría estar relacionado con el proceso de masculinización cerebral.
El test Odds ratio (OR) mostró diferencias estadísticamente significativas para múltiples
modelos de herencia (codominante, dominante y aditivo). Concretamente, el genotipo A/A
mostró ser un factor de riesgo para la población con cariotipo femenino (FtM vs grupo
Joselyn Francis Cortés Cortés
150
control femenino), mientras que el genotipo A/G resultó ser protector para los mismos
grupos de población.
El análisis de interacción entre los tres polimorfismos fue realizado mediante un modelo de
regresión logístico binario incluyendo los tres polimorfismos y todas las posibles
interacciones entre ellos. Todas estas interacciones fueron estadísticamente significativas
para la población FtM, pero no para la población MtF.
Encontramos además un desequilibrio de ligamiento entre los tres polimorfismos, de tal
forma que un menor número de repeticiones (alelo corto, S) del polimorfismo ERα-
rs3138774, tendía a heredarse más frecuentemente con los alelos T (ERα-rs2234693) y A
(ERα-rs9340799) (haplotipo S-T-A), mientras que un mayor número de repeticiones (alelo
largo, L) del polimorfismo ERα-rs3138774 tendía a heredase más frecuentemente con los
alelos C (ERα-rs2234693) y G (ERα-rs9340799) (haplotipo L-C-G). Cuando se
compararon las frecuencias haplotípicas en la población FtM frente a la población control
femenina, encontramos que el haplotipo L-C-G estaba asociado a una baja susceptibilidad
de Disforia de Género (efecto protector), mientras que el haplotipo L-C-A estaba asociado
a una alta susceptibilidad de Disforia de Género (factor de riesgo) en la población
genéticamente femenina. No se obtuvieron valores significativos cuando se compararon las
frecuencias haplotípicas entre el grupo MtF y el grupo control masculino.
La implicación de estos polimorfismos en la Disforia de Género en la población FtM
podría estar estrechamente relacionada con su localización en el gen. Como se ha
mencionado anteriormente, los polimorfismos ERα-rs2234693 y ERα-rs9340799 se
localizan en el primer intrón del gen ESR1, próximos a la región promotora. Aunque los
intrones no se traducen a proteína (Tabor, Risch, & Myers, 2002), cambios en su secuencia
pueden modular la expresión del gen (Aronow et al., 1989). En esta línea, Laurie y Stam
(1994), demostraron que los polimorfismos intrónicos tienen efecto en la síntesis de
proteínas (Laurie & Stam, 1994), y dado que estos polimorfismos (ERα-rs2234693 y ERα-
rs9340799) se encuentran en el intrón 1 del gen, podrían estar involucrados en su
expresión.
DISCUSIÓN
151
Maruyama et al., (2000) encontraron que los polimorfismos ERα-rs2234693 y ERα-
rs9340799 muestran una débil, pero significativa, actividad potenciadora de la expresión
del gen ESR1. En concreto, en estudios in vitro encontraron que la expresión debida a la
presencia del alelo G era mayor que la debida al alelo A (Maruyama et al., 2000). La
expresión del gen ESR1 difería entre los diferentes haplotipos, lo que sugiere una afinidad
individual del receptor dependiente de secuencia.
Por otro lado, los estudios sobre osteoporosis indican que las mujeres con haplotipo C-G
tienen una mayor sensibilidad al tratamiento hormonal con estrógenos (Gennari, De Paola,
Merlotti, Martini, & Nuti, 2007) respecto a otros haplotipos. Otro estudio analizó los
mismos polimorfismos para determinar si existía una asociación entre los diferentes
haplotipos y las fracturas óseas, encontrando concretamente que el haplotipo L-C-G
protege a la mujeres menopaúsicas contra las fracturas óseas (Ioannidis et al., 2004). Por
otra parte, los estudios in vitro señalan que las células HeLa con haplotipo C-G, mostraban
una mayor expresión del gen frente al haplotipo T-A (Maruyama et al., 2000). Todos estos
datos tomados en conjunto nos indican que realmente la variación en la secuencia
promotora e intrónica, influye en la actividad del gen ESR1, produciendo una graduación
de la afinidad del receptor por su ligando, dependiente de secuencia.
Tomando todos estos datos en consideración podemos hipotetizar que las variaciones en la
secuencia de la región promotora del gen ESR1 (o haplotipos) pueden modular la
transcripción del gen, y a su vez modificar características importantes del receptor ERα,
como su capacidad de respuesta a los estrógenos circulantes durante un período crítico de
desarrollo prenatal, cuando el cerebro es sensible a los efectos organizativos de la
testosterona y su metabolito, el estradiol. Y dado que las hormonas esteroideas se
encuentran entre las moléculas de señalización más poderosas y duraderas del cuerpo
(McCarthy, 2009), y que además, una pequeña variación en la sensibilidad del receptor
implicaría diferentes efectos en diferentes tejidos cerebrales (Schwarz & McCarthy, 2008),
no es descartable que una pequeña variación en la secuencia de la región promotora del
gen ESR1 podría implicar un gran cambio a nivel cerebral.
Joselyn Francis Cortés Cortés
152
En resumen podemos decir que nuestros resultados indican que la región promotora del
gen ESR1 es un serio candidato para aumentar la lista de genes implicados en la base
genética de la Disforia de Género, de manera que la respuesta del ERα a los estrógenos
podría verse alterada en la población FtM, debido a la herencia de secuencias concretas
(haplotipos) de la región promotora del gen ESR1. Además, nuestros datos continúan
apoyando la hipótesis de que la Disforia es un rasgo humano complejo, con una base
poligénica, que involucra interacciones entre esteroides, receptores de esteroides y
múltiples genes y polimorfismos.
5.4. Estudio de interacción de los genes ESR1, ESR2, AR y CYP19A1 en la Disforia de
Género
Como ya hemos comentado con anterioridad, la etiología de la transexualidad es compleja
y multifactorial, en donde parecen intervenir factores hormonales, genéticos, ambientales e
incluso epigenéticos (McCarthy et al., 2018) en etapas pre y perinatales.
Por otro lado, la revisión de la literatura nos muestra que la concordancia entre gemelos
monocigóticos es mayor que entre gemelos dicigóticos, tanto en la población MtF como en
la población FtM (Heylens et al., 2012), lo que parece señalar la existencia de un
componente genético. De hecho, la lista de genes implicados en la etiología de la Disforia
de Género se incrementa lentamente cada día. Los polimorfismos genéticos analizados
hasta el momento están relacionados fundamentalmente con los receptores de esteroides
(receptor de andrógenos AR y receptor de estrógenos ER, alfa y beta), además de las
enzimas aromatasa CYP19A1 y citocromo P450 (CYP17A1), ambas implicadas en la
diferenciación sexual.
En mamíferos inferiores, el ERα está implicado principalmente en la masculinización
cerebral, mientras que el ERβ juega un papel importante en la desfeminización del
comportamiento sexual (Kudwa et al., 2006). En roedores, el estradiol induce dos
procesos: la masculinización de los circuitos neuronales implicados en el comportamiento
reproductor masculino, y la desfeminización, es decir la pérdida de la conducta sexual
femenina en adultos. Sin embargo, se cree que en primates no humanos (Wallen, 2005), así
DISCUSIÓN
153
como también en humanos (Swaab, 2004), los metabolitos derivados de los andrógenos no
parecen jugar un papel crítico en la masculinización o desfeminización (Wallen, 2005).
Hasta el momento, los estudios sobre polimorfismos localizados en los genes AR, ESR2 y
CYP19A1, en la población transexual, no han sido del todo concluyentes, o a veces incluso
contradictorios (Meyer-Bahlburg, 2011). Ello se puede deber a múltiples factores entre los
que podemos destacar el tamaño de las muestras analizadas (en algunos casos muy
pequeñas), a la falta de homogeneidad de la población transexual analizada, sobre todo
respecto al tiempo de aparición de los primeros síntomas de disforia, (early onset vs no-
early onset), a la orientación sexual de la muestra (androfílicos vs ginefílicos), o incluso,
en algunos casos, al origen poblacional de la muestra.
En el presente trabajo se analizó la implicación de los siguientes polimorfismos: ERβ-
rs113770630, CYP19-rs60271534, ERα-rs9340799 y AR-rs193922933, en una de las
mayores poblaciones analizadas hasta el momento, compuesta por 549 MtF androfílicos
early onset vs 728 controles masculinos, y 425 FtM ginefílicos early onset vs 599 controles
femeninos. Los análisis se realizaron de forma independiente en la población
genéticamente femenina (FtM vs grupo control femenino) y en la población genéticamente
masculina (MtF vs grupo control masculino). Se analizaron las frecuencias alélicas y
genotípicas de cada uno de los polimorfismos y su implicación en la Disforia de Género,
así como la posible interacción entre los cuatro polimorfismos.
El estudio de las frecuencias alélicas y genotípicas demostró la existencia de diferencias
estadísticamente significativas para los polimorfismos ERβ-rs113770630 y ERα-rs9340799
en la población FtM respecto a la población control femenina, confirmando los resultados
obtenidos previamente (Cortés-Cortés et al., 2017; Fernández et al., 2014a, 2014b). En la
población MtF, el estudio individual de los polimorfismos no mostró diferencias
estadísticamente significativas respecto a la población control masculina.
Una vez analizados los cuatro polimorfismos individualmente, se procedió al estudio de las
interacciones cruzadas entre polimorfismos mediante un modelo de regresión logística
binario, siempre en dos grupos poblacionales independientes en función del sexo genético:
Joselyn Francis Cortés Cortés
154
grupo FtM vs grupo control femenino y grupo MtF vs grupo control masculino. Este
análisis se realizó comenzando por el modelo más complejo (efecto combinado de todos
los polimorfismos entre sí), continuando paso a paso (stepwise) hasta el más sencillo
(efectos por parejas o pairwise).
En el estudio de interacción entre polimorfismos encontramos diferencias estadísticamente
significativas, tanto en la población MtF como en la población FtM. El factor de riesgo fue
mayor para la población genéticamente masculina (MtF vs grupo control masculino)
portadora de la combinación alélica S-L-G-S (alelo corto “short” para el polimorfismo
ERβ-rs113770630, alelo largo para el polimorfismos CYP19-rs60271534, alelo G para el
polimorfismo ERα-rs9340799, y alelo corto para el polimorfismo AR-rs193922933.
Mientras que para la población genéticamente femenina (FtM vs grupo control femenino)
la combinación alélica estadísticamente significativa fue L-S-A-S (alelo largo para el
polimorfismo ERβ-rs113770630, alelo corto para el polimorfismo CYP19-rs60271534,
alelo A para el polimorfismo ERα-rs9340799 y alelo corto para el polimorfismo AR-
rs193922933.
La interacción entre los polimorfismos del ERβ, el CYP19A1 y el AR también fue
estadísticamente significativa tanto para la población genéticamente masculina como para
la población genéticamente femenina. La combinación alélica L-L-L (alelo largo para
ERβ-rs113770630, alelo largo para CYP19-rs60271534 y alelo largo para AR-
rs193922933), siendo una combinación alélica protectora para la población masculina. Sin
embargo, el OR fue de riesgo para la población genéticamente femenina portadora de la
combinación L-L-S y L-L-L (alelo largo para ERβ-rs113770630, alelo largo para CYP19-
rs60271534 y el genotipo S/L para el AR-rs193922933). La misma combinación alélica es
por tanto protectora para la población genéticamente masculina, mientras que es de riesgo
para la población genéticamente femenina.
El estudio de interacción entre los polimorfismos del ERβ, ERα y AR mostró diferencias
estadísticamente significativas en la población masculina, pero no en la población
femenina. La combinación alélica S-A-S (alelo corto para ERβ-rs113770630, alelo A para
DISCUSIÓN
155
ERα-rs9340799 y alelo corto para AR-rs193922933) implicó un factor protector para la
población genéticamente masculina.
El estudio de interacción pairwise entre cada uno de los polimorfismos y el polimorfismo
del AR, mostró diferencias estadísticamente significativas para la población genéticamente
masculina. La combinación L-S/L (alelo largo para el polimorfismo AR-rs193922933 y el
genotipo S/L para el polimorfismo ERβ-rs113770630) mostró diferencias estadísticamente
significativas. Encontramos también una relación inversa entre el alelo largo del AR-
rs193922933 y el genotipo S/S del ERβ-rs113770630 que incrementa el riesgo de
transexualidad en la población masculina. Pero estos dos polimorfismos individualmente
no están asociados a la Disforia de Género en la población masculina, por lo que
podríamos resumir nuestros datos diciendo que el AR es necesario, pero insuficiente por sí
mismo, en el desarrollo del género en la población masculina (Figura 15).
Figura 15. Modelo hipotético de la Disforia de Género.
Desarrollo de la transexualidad en las poblaciones FtM ginéfilico y MtF androfílico durante el período prenatal. Los
estrógenos podrían actuar directamente a través de ERα y/o ERβ en la población FtM. En el caso de la población MtF, la
intervención de la testosterona a través del AR también es esencial. Los alelos que podrían afectar el nivel de expresión
de ERα y ERβ. S = alelo corto; L = alelo largo; A = Adenina.
Joselyn Francis Cortés Cortés
156
Figura 16. Representación de los niveles de expresión de los genes AR, ESR1 y ESR2, en tejido cerebral en humanos.
La expresión de los genes AR, ESR1 y ESR2 se representa como “lágrimas”. La altura corresponde a los niveles de expresión media (TPM) para cada tejido cerebral analizado. Los datos se basan en el análisis de 8.555 muestras post-mortem obtenidas a partir de 570 individuos (hombres y mujeres) adultos sanos, de edad comprendida entre los 20 y 79 años. TPM: Unidades de expresión génica (Transcripts Per Million). Fuente: Portal GTEx el 14/07/2019, número de acceso phs000424.vN.pN https://www.gtexportal.org/home/
DISCUSIÓN
157
La interacción entre los polimorfismos del ERβ y el AR se fortalece cuando interaccionan
a su vez con el polimorfismo del ERα. Así, el mayor riesgo de transexualidad se observa
en los varones portadores de la combinación S-G-S (alelo corto para ERβ-rs113770630,
alelo G para ERα-rs9340799 y alelo corto para AR-rs193922933). Estos tres genes (ESR1,
ESR2 y AR) se expresan de forma diferencial en el cerebro (Figura 16), en hombres y
mujeres, por lo que su interacción en las etapas pre y peri natales sería plausible.
En los estudios anteriores sobre los polimorfismos genéticos relacionados con la Disforia
de Género (Hare et al., 2009; Henningsson et al., 2005; Ujike et al., 2009) los autores
también realizaron un análisis de interacción entre polimorfismos. Nuestros datos
confirmaron los aportados por Henningsson et al., (2005), quienes sugirieron una
interacción entre el ERβ y el AR, pero nosotros fuimos capaces, además, de especificar los
componentes de dicha interacción. Nosotros encontramos que un menor número de
repeticiones CAG del polimorfismo del AR incrementa el riesgo de transexualidad cuando
interacciona con el genotipo L/L (largo/largo) del polimorfismo del ERβ. Al igual que
Hare et al., (2009) encontramos una asociación entre el AR y la población MtF, pero
además nuestro grupo especificó la naturaleza de dicha interacción: así, un menor número
de repeticiones CAG del polimorfismo del AR incrementa el riesgo de transexualidad en
interacción con el genotipo L/L (largo/largo) para el ERβ, y viceversa, un mayor número
de repeticiones CAG del AR incrementa el riesgo de transexualidad en interacción con el
genotipo S/S (corto/corto) del ERβ.
Considerando conjuntamente los trabajos de Henningsson et al., (2005), Hare et al., (2009)
y nuestros datos, creemos que la implicación del AR en la Disforia de Género, y por tanto
en la formación del género, es un dato consistente. Los receptores de estrógenos ERα y
ERβ también están implicados en la transexualidad en la población FtM. Pero nuestros
datos no apoyan una interacción entre ambos receptores. En concreto la presencia del
genotipo A/A del ERα es un factor de riesgo para la población genotípicamente femenina,
mientras que el genotipo A/G es un factor protector. Respecto al ERβ, existe una
asociación directa entre el número de repeticiones CA y el riesgo de transexualidad, lo que
confirma nuestros resultados previos (Fernández et al., 2014b).
Joselyn Francis Cortés Cortés
158
Por tanto, nuestro estudio se podría resumir en tres hallazgos que creemos fundamentales:
– Nuestros datos confirman que los receptores ERβ y AR están implicados en la Disforia
de Género. Que además en la población genéticamente masculina ambos
polimorfismos (ERβ-rs113770630 y AR-rs193922933) presentan una relación inversa
entre sí, de tal forma que, si uno de los alelos es corto, el otro es largo, y viceversa.
– El desarrollo del género en la población FtM está asociado a ambos receptores de
estrógenos, ERβ y/o ERα, no existiendo interacción entre ellos.
– Ambos receptores de estrógenos, ERβ y ERα, están implicados en el desarrollo del
género, tanto masculino como femenino.
Respecto a la masculinización cerebral, se ha propuesto que la acción directa de los
andrógenos sobre el cerebro es crucial para el desarrollo de la identidad de género
masculina y la heterosexualidad, y que la teoría de la aromatización, desarrollada a partir
de experimentos con roedores, podría ser de importancia secundaria en nuestra especie
(Swaab, 2004). Sin embargo, nuestros resultados muestran que tanto el receptor de
andrógenos como ambos receptores de estrógenos están involucrados en el desarrollo de la
transexualidad en la población MtF.
En conclusión, podemos decir que los receptores ERα, ERβ y AR están implicados en la
diferenciación sexual del cerebro, y que existen combinaciones alélicas específicas que
conllevan más riesgo de disforia. Que en la población MtF están implicados ambos
receptores de estrógenos, ERα y ERβ, así como el receptor de andrógenos AR. Mientras
que en la población FtM están implicados ambos receptores de estrógenos, ERα y ERβ.
Por tanto, se puede concluir que tanto el ERα como el ERβ juegan un papel clave en la
diferenciación sexual del cerebro en nuestra especie.
CONCLUSIONES
161
1. Hemos establecido, a partir de los datos citogenéticos y moleculares del cariotipo,
que no existe una alteración cromosómica específica asociada a la Disforia de
Género.
2. Existe un incremento de las aneuploidías en la población con Disforia de Género
respecto a la población general. En concreto, la frecuencia del síndrome de
Klinefelter es significativamente más elevada entre la población MtF respecto a la
población general masculina.
3. El polimorfismo CYP17-rs743572 no está implicado en la base genética de la
Disforia de Género.
4. El polimorfismo ERα-rs9340799 está implicado en la base genética de la Disforia de
Género, en la población FtM.
5. Nuestros resultados apoyan la implicación de los receptores ERα, ERβ y AR en la
diferenciación sexual del cerebro, existiendo combinaciones alélicas específicas de
estos genes que conllevan más riesgo de Disforia de Género.
6. En la etiología de la Disforia de Género, en la población FtM, están implicados
ambos receptores de estrógenos, ERα y ERβ. En la población MtF están implicados
ambos receptores de estrógenos, ERα y ERβ, y el receptor de andrógenos AR.
7. En nuestra especie, los receptores ERα y ERβ juegan un papel clave en la
diferenciación sexual del cerebro.
BIBLIOGRAFÍA
165
Ahmadzad-Asl, M., Jalali, A., Alavi, K., Naserbakht, M., Taban, M., Mohseninia, K., &
Eftekhar, M. (2010). The epidemiology of transsexualism in Iran. Journal of Gay &
Lesbian Mental Health, 15(1), 83–93. https://doi.org/10.1080/19359705.2011.530580.
Aldridge, J., Kunkel, L., Bruns, G., Tantravahi, U., Lalande, M., Brewster, T., … &
Roderick, T. (1984). A strategy to reveal high-frequency RFLPs along the human X
chromosome. American Journal of Human Genetics, 36(3), 546.
https://doi.org/PMC1684472.
Allen, L., Hines, M., Shryne, J., & Gorski, R. (1989). Two sexually dimorphic cell groups
in the human brain. Journal of Neuroscience, 9(2), 497–506.
https://doi.org/10.1523/JNEUROSCI.09-02-00497.1989.
Amateau, S., & McCarthy, M. (2004). Induction of PGE2 by estradiol mediates
developmental masculinization of sex behavior. Nature Neuroscience, 7(6), 643–650.
https://doi.org/10.1038/nn1254.
American Psychiatric Association. (2000). Diagnostic and Statistical Manual of Mental
Disorders, 4th Ed. DSM-IV-TR. Washington, DC. https://doi.org/10.1176/dsm
10.1176/appi.books.9780890420249.dsm-iv-tr.
American Psychiatric Association. (2013). Diagnostic and Statistical Manual of Mental
Disorders, 5th Ed. DSM-5. Washington, DC.
https://doi.org/10.1176/appi.books.9780890425596.893619.
Andersen, T., Heimdal, K., Skrede, M., Tveit, K., Berg, K., & Børresen, A. (1994).
Oestrogen receptor (ESR) polymorphisms and breast cancer susceptibility. Human
Genetics. 94(6), 665-670.
Aranda, A., & Pascual, A. (2001). Nuclear hormone receptors and gene expression.
Physiological Reviews, 81(3), 1269–1304.
https://doi.org/10.1152/physrev.2001.81.3.1269.
Arcelus, J., Bouman, W., Van Den Noortgate, W., Claes, L., Witcomb, G., & Fernandez,
F. (2015). Systematic review and meta-analysis of prevalence studies in
transsexualism. European Psychiatry, 30(6), 807–815.
Joselyn Francis Cortés Cortés
166
https://doi.org/10.1016/j.eurpsy.2015.04.005.
Aronow, B., Lattier, D., Silbiger, R., Dusing, M., Hutton, J., Jones, G., … & Witte, D.
(1989). Evidence for a complex regulatory array in the first intron of the human
adenosine deaminase gene. Genes & Development, 3(9), 1384–1400.
https://doi.org/10.1101/gad.3.9.1384.
Asghar, T., Yoshida, S., Nakago, S., Morizane, M., Ohara, N., Motoyama, S., … &
Nakago, S. (2005). Lack of association between endometriosis and the CYP17
MspA1 polymorphism in UK and Japanese populations. Gynecological
Endocrinology, 20(2), 59–63. https://doi.org/10.1080/09513590400020856.
Ashtiani, Z., Hasheminasab, S., Ayati, M., Goulian, B., & Modarressi, M. (2011). Are
GSTM1, GSTT1 and CAG Repeat Length of Androgen Receptor Gene
Polymorphisms Associated with Risk of Prostate Cancer in Iranian Patients?
Pathology & Oncology Research, 17(2), 269–275. https://doi.org/10.1007/s12253-
010-9309-z.
Ashton, K., Proietto, A., Otton, G., Symonds, I., McEvoy, M., Attia, J., … & Scott, R.
(2009). Estrogen receptor polymorphisms and the risk of endometrial cancer. BJOG:
An International Journal of Obstetrics & Gynaecology, 116(8), 1053–1061.
https://doi.org/10.1111/j.1471-0528.2009.02185.x.
Ashton, K., Proietto, A., Otton, G., Symonds, I., McEvoy, M., Attia, J., … & Scott, R.
(2010). Polymorphisms in genes of the steroid hormone biosynthesis and metabolism
pathways and endometrial cancer risk. Cancer Epidemiology, 34(3), 328–337.
https://doi.org/10.1016/J.CANEP.2010.03.005.
Auer, M., Fuss, J., Stalla, G., & Athanasoulia, A. (2013). Twenty years of endocrinologic
treatment in transsexualism: Analyzing the role of chromosomal analysis and
hormonal profiling in the diagnostic work-up. Fertility and Sterility, 100(4), 1103–
1110. https://doi.org/10.1016/j.fertnstert.2013.05.047.
Baba, T., Endo, T., Ikeda, K., Shimizu, A., Honnma, H., Ikeda, H., … & Saito, T. (2011).
Distinctive Features of Female-to-Male Transsexualism and Prevalence of Gender
Identity Disorder in Japan. The Journal of Sexual Medicine, 8(6), 1686–1693.
BIBLIOGRAFÍA
167
https://doi.org/10.1111/j.1743-6109.2011.02252.x.
Bailey, J. M., Dunne, M. P., & Martin, N. G. (2000). Genetic and environmental influences
on sexual orientation and its correlates in an Australian twin sample. Journal of
Personality and Social Psychology, 78(3), 524-536. http://dx.doi.org/10.1037/0022-
3514.78.3.524
Bakker, A., van Kesteren, P., Gooren, L., & Bezemer, P. (1993). The prevalence of
transsexualism in the Netherlands. Acta Psychiatrica Scandinavica, 87(4), 237–238.
https://doi.org/10.1111/j.1600-0447.1993.tb03364.x.
Bakker, J., De Mees, C., Douhard, Q., Balthazart, J., Gabant, P., Szpirer, J., & Szpirer, C.
(2006). Alpha-fetoprotein protects the developing female mouse brain from
masculinization and defeminization by estrogens. Nature Neuroscience, 9(2), 220–
226. https://doi.org/10.1038/nn1624.
Bancroft, J., Axworthy, D., & Ratcliffe, S. (1982). The personality and psycho-sexual
development of boys with 47 XXY chromosome constitution. Journal of Child
Psychology and Psychiatry, and Allied Disciplines, 23(2), 169–180.
https://doi.org/10.1111/j.1469-7610.1982.tb00061.x.
Bao, A., & Swaab, D. (2010). Sex differences in the brain, behavior, and neuropsychiatric
disorders. The Neuroscientist : A Review Journal Bringing Neurobiology, Neurology
and Psychiatry, 16(5), 550–565. https://doi.org/10.1177/1073858410377005.
Bao, A., & Swaab, D. (2011). Sexual differentiation of the human brain: Relation to gender
identity, sexual orientation and neuropsychiatric disorders. Frontiers in
Neuroendocrinology, 32(2), 214–226. https://doi.org/10.1016/j.yfrne.2011.02.007.
Barr, M. L., & Bertram, E. G. (1949). A Morphological Distinction between Neurones of
the Male and Female, and the Behaviour of the Nucleolar Satellite during Accelerated
Nucleoprotein Synthesis. In Problems of Birth Defects (pp. 101–102). Dordrecht:
Springer Netherlands. https://doi.org/10.1007/978-94-011-6621-8_11.
Bearman, G. (2007). Karyotyping and genetics in the transgendered population. Principles
of transgender medicine and surgery. Binghampton: Haworth Press.
Joselyn Francis Cortés Cortés
168
Benjamin, H. (1967). Transsexual Phenomenon. Transactions of the New York Academy of
Sciences, 29(4), 428-430. https://doi.org/10.1111/j.2164-0947.1967.tb02273.x
Bentz, E., Hefler, L., Kaufmann, U., Huber, J., Kolbus, A., & Tempfer, C. (2008). A
polymorphism of the CYP17 gene related to sex steroid metabolism is associated with
female-to-male but not male-to-female transsexualism. Fertility and Sterility, 90(1),
56–59. https://doi.org/10.1016/j.fertnstert.2007.05.056.
Bergero, T., Cano, G., Esteva de Antonio, I., Giraldo, F., Gornemann, I., & Alvarez, P.
(2001). Evaluación diagnóstica y seguimiento psicológico en la Unidad de Trastornos
de Identidad de Género de Andalucía (Málaga). Cirugía Plástica
Iberolatinoamericana, 27, 263–272.
Bergero, T., Cano, G., Giraldo, F., Esteva de Antonio, I., Ortega, M., Gómez, M., &
Gorneman, I. (2004). La transexualidad: asistencia multidisciplinar en el sistema
público de salud. Revista de La Asociación Española de Neuropsiquiatría, (89), 9–20.
Bhasin, MK. (2005). Human population cytogenetics: a review. International Journal of
Human Genetics. 5(2):83–152.
Blanchard, R. (1988). Nonhomosexual gender dysphoria. Journal of Sex Research, 24(1),
188–193. https://doi.org/10.1080/00224498809551410.
Blanchard, R. (1989). The concept of autogynephilia and the typology of male gender
dysphoria. Journal of Nervous and Mental Disease, 177(10), 616–623.
https://doi.org/10.1097/00005053-198910000-00004.
Blanchard, R., & Klassen, P. (1997). H-Y antigen and homosexuality in men. Journal of
Theoretical Biology, 185(3), 373–378. https://doi.org/10.1006/jtbi.1996.0315.
Blanchard, R., Clemmensen, L., & Steiner, B. (1987). Heterosexual and homosexual
gender dysphoria. Archives of Sexual Behavior, 16(2), 139–152.
https://doi.org/10.1007/BF01542067.
Bochukova, E., Huang, N., Keogh, J., Henning, E., Purmann, C., Blaszczyk, K., & Hurles,
M. (2010). Large, rare chromosomal deletions associated with severe early-onset
BIBLIOGRAFÍA
169
obesity. Nature, 463(7281), 666–670. https://doi.org/10.1038/nature08689.
Bojesen, A., & Gravholt, C. (2007). Klinefelter syndrome in clinical practice. Nature
clinical practice. Urology, 4(4), 192. https://doi.org/10.1038/ncpuro0775.
Brandes, J. L. (2006). The Influence of Estrogen on Migraine. JAMA Journal of the
American Medical Association, 295(15), 1824.
https://doi.org/10.1001/jama.295.15.1824.
Burns, A., & Farrell, M. (1990). Clinical features of patients attending a gender-identity
clinic. The British Journal of Psychiatry, 157, 265–268.
https://doi.org/10.1192/bjp.157.2.265.
Burri, A., & Spector, T. (2011). Recent and lifelong sexual dysfunction in a female UK
population sample: prevalence and risk factors. The Journal of Sexual Medicine, 8(9),
2420–2430. https://doi.org/10.1111/j.1743-6109.2011.02341.x.
Byne, W., Lasco, M., Kemether, E., Shinwari, A., Edgar, M., Morgello, S., … & Tobet, S.
(2000). The interstitial nuclei of the human anterior hypothalamus: an investigation of
sexual variation in volume and cell size, number and density. Brain Research, 856(1–
2), 254–258. https://doi.org/10.1016/S0006-8993(99)02458-0.
Caratachea, M. A. (2007). Polimorfismos genéticos: Importancia y aplicaciones. Artemisa,
20(3), 213–221.
Carey, A., Waterworth, D., Patel, K., White, D., Little, J., Novelli, P., … & Williamson, R.
(1994). Polycystic ovaries and premature male pattern baldness are associated with
one allele of the steroid metabolism gene CYP17. Human Molecular Genetics, 3(10),
1873–1876. https://doi.org/10.1093/hmg/3.10.1873.
Chace, C., Pang, D., Weng, C., Temkin, A., Lax, S., Silverman, W., … & Tycko, B.
(2012). Variants in CYP17 and CYP19 cytochrome P450 genes are associated with
onset of Alzheimer’s disease in women with down syndrome. Journal of Alzheimer’s
Disease, 28(3), 601–612. https://doi.org/10.3233/JAD-2011-110860.
Chakraborty, A., Murthy, N., Chintamani, C., Bhatnagar, D., Mohil, R., Sharma, P., &
Joselyn Francis Cortés Cortés
170
Saxena, S. (2007). CYP17 gene polymorphism and its association with high-risk north
Indian breast cancer patients. Journal of Human Genetics, 52(2), 159–165.
https://doi.org/10.1007/s10038-006-0095-0.
Chang, J., Gertig, D., Chen, X., Dite, G., Jenkins, M., Milne, R., … & Spurdle, A. (2005).
CYP17 genetic polymorphism, breast cancer, and breast cancer risk factors:
Australian Breast Cancer Family Study. Breast Cancer Research : BCR, 7(4), R513-
21. https://doi.org/10.1186/bcr1040.
Chattopadhyay, S., Siddiqui, S., Akhtar, M., Najm, M., Deo, S., Shukla, N., & Husain, S.
(2014). Genetic polymorphisms of ESR1, ESR2, CYP17A1, and CYP19A1 and the
risk of breast cancer: a case control study from North India. Tumor Biology, 35(5),
4517–4527. https://doi.org/10.1007/s13277-013-1594-1.
Choong, C., & Wilson, E. (1998). Trinucleotide repeats in the human androgen receptor : a
molecular basis for disease. Journal of Molecular Endocrinology, 21(3), 235–258.
Choong, C., Kemppainen, J., Zhou, Z., & Wilson, E. (1996). Reduced androgen receptor
gene expression with first exon CAG repeat expansion. Molecular Endocrinology,
10(12), 1527–1535. https://doi.org/10.1210/mend.10.12.8961263.
Chung, B., Picado-Leonard, J., Haniu, M., Bienkowski, M., Hall, P., Shively, J., & Miller,
W. (1987). Cytochrome P450c17 (steroid 17 alpha-hydroxylase/17, 20 lyase): cloning
of human adrenal and testis cDNAs indicates the same gene is expressed in both
tissues. Proceedings of the National Academy of Sciences, 84(2), 407–411.
https://doi.org/10.1073/pnas.84.2.407.
Chung, W. (2003). Sexual differentiation of the human and rodent forebrain.
90644645191. PhD thesis, https://hdl.handle.net/11245/1.212022.
Chung, W., De Vries, G., & Swaab, D. (2002). Sexual differentiation of the bed nucleus of
the stria terminalis in humans may extend into adulthood. Journal of Neuroscience,
22(3), 1027–1033. https://doi.org/10.1523/JNEUROSCI.22-03-01027.2002.
Clemons, M., & Goss, P. (2001). Estrogen and the Risk of Breast Cancer. New England
Journal of Medicine, 344(4), 276–285.
BIBLIOGRAFÍA
171
https://doi.org/10.1056/NEJM200101253440407.
Cole, C., O’boyle, M., Emory, L., & Meyer, W. (1997). Comorbidity of gender dysphoria
and other major psychiatric diagnoses. Archives of Sexual Behavior, 26(1), 13–26.
http://dx.doi.org/10.1023/A:1024517302481.
Colmenero, R. M. (2018). Rompiendo la brecha de la heteronormatividad. Identidad de
género y nuevas tendencias sexuales en educación primaria. Revista Internacional de
Apoyo a La Inclusión, Logopedia, Sociedad y Multiculturalidad, 4(3), 165–173.
https://doi.org/10.17561/riai.v4.n3.11.
Colson, N., Lea, R., Quinlan, S., MacMillan, J., & Griffiths, L. (2004). The estrogen
receptor 1 G594A polymorphism is associated with migraine susceptibility in two
independent case/control groups. Neurogenetics, 5(2), 129–133.
https://doi.org/10.1007/s10048-004-0181-4.
Coolidge, F., Thede, L., & Young, S. (2002). The heritability of gender identity disorder in
a child and adolescent twin sample. Behavior Genetics, 32(4), 251–257.
https://doi.org/10.1023/A:1019724712983.
Cortés-Cortés, J., Fernández, R., Teijeiro, N., Gómez-Gil, E., Esteva de Antonio, I.,
Almaraz, M., … & Pásaro, E. (2017). Genotypes and Haplotypes of the Estrogen
Receptor α Gene (ESR1) Are Associated With Female-to-Male Gender Dysphoria.
The Journal of Sexual Medicine, 14(3), 464–472.
https://doi.org/10.1016/J.JSXM.2016.12.234.
Cosgrove, K., Mazure, C., & Staley, J. (2007). Evolving Knowledge of Sex Differences in
Brain Structure, Function, and Chemistry. Biological Psychiatry, 62(8), 847–855.
https://doi.org/10.1016/j.biopsych.2007.03.001.
Crestani, C., Alves, F., Gomes, F., Resstel, L., Correa, F., & Herman, J. (2013).
Mechanisms in the Bed Nucleus of the Stria Terminalis Involved in Control of
Autonomic and Neuroendocrine Functions: A Review. Current Neuropharmacology,
11(2), 141–159. https://doi.org/10.2174/1570159X11311020002.
Joselyn Francis Cortés Cortés
172
Database of Genomic Variants. A curated catalogue of human genomic structural
variation. http://dgv.tcag.ca
Davies, S., Turmaine, M., Cozens, B., DiFiglia, M., Sharp, A., Ross, C., … & Bates, G.
(1997). Formation of neuronal intranuclear inclusions underlies the neurological
dysfunction in mice transgenic for the HD mutation. Cell, 90(3), 537–548.
https://doi.org/10.1016/S0092-8674(00)80513-9.
De Cuypere, G., Jannes, C., & Rubens, R. (1995). Psychosocial functioning of transsexuals
in Belgium. Acta Psychiatrica Scandinavica, 91(3), 180–184.
https://doi.org/10.1111/j.1600-0447.1995.tb09763.x.
De Cuypere, G., Van Hemelrijck, M., Michel, A., Carael, B., Heylens, G., Rubens, R., …
& Monstrey, S. (2007). Prevalence and demography of transsexualism in Belgium.
European Psychiatry, 22(3), 137–141. https://doi.org/10.1016/j.eurpsy.2006.10.002.
den Nijs, JI., Gonggrijp, HS., Augustinus, E., & Leeksma, CH. (1985). Hot bands: a simple
G-banding method for leukaemic metaphases. Cancer genetics and cytogenetics,
15(3-4):373-374. https://doi.org/10.1016/0165-4608(85)90181-5.
Denschlag, D., Bentz, E., Hefler, L., Pietrowski, D., Zeillinger, R., Tempfer, C., & Tong,
D. (2006). Genotype distribution of estrogen receptor-alpha, catechol-O-
methyltransferase, and cytochrome P450 17 gene polymorphisms in Caucasian
women with uterine leiomyomas. Fertility and Sterility, 85(2), 462–467.
https://doi.org/10.1016/j.fertnstert.2005.07.1308.
Devuyst, O. (2015). The 1000 Genomes Project: Welcome to a New World. Peritoneal
Dialysis International : Journal of the International Society for Peritoneal Dialysis,
35(7), 676–677. https://doi.org/10.3747/pdi.2015.00261.
Dewing, P., Chiang, C., Sinchak, K., Sim, H., Fernagut, P., Kelly, S., … & Vilain, E.
(2006). Direct Regulation of Adult Brain Function by the Male-Specific Factor SRY.
Current Biology, 16(4), 415–420. https://doi.org/10.1016/J.CUB.2006.01.017.
Dhejne, C., Öberg, K., Arver, S., & Landén, M. (2014). An analysis of all applications for
sex reassignment surgery in Sweden, 1960--2010: Prevalence, Incidence, and Regrets.
BIBLIOGRAFÍA
173
Archives of Sexual Behavior, 43(8), 1535–1545. https://doi.org/10.1007/s10508-014-
0300-8.
Dixen, J., Maddever, H., Van Maasdam, J., & Edwards, P. (1984). Psychosocial
characteristics of applicants evaluated for surgical gender reassignment. Archives of
Sexual Behavior, 13(3), 269–276. https://doi.org/10.1007/BF01541653.
Doherty, J., Rossing, M., Cushing, K., Chen, C., Van Den Berg, D., Wu, A., … &
Chenevix, G. (2010). ESR1/SYNE1 polymorphism and invasive epithelial ovarian
cancer risk: an Ovarian Cancer Association Consortium study. Cancer Epidemiology
and Prevention Biomarkers, 19(1), 245–250. https://doi.org/10.1158/1055-9965.EPI-
09-0729.
Dominguez, E., Bateman, H., & Rissman, E. (2004). Background matters: the effects of
estrogen receptor α gene disruption on male sexual behavior are modified by
background strain. Hormones and Behavior, 46(4), 482–490.
https://doi.org/10.1016/j.yhbeh.2004.05.006.
Drescher, J. (2014). Controversies in Gender Diagnoses. LGBT Health, 1(1), 10–14.
https://doi.org/10.1089/lgbt.2013.1500.
Drescher, J., Cohen-Kettenis, P., & Winter, S. (2012). Minding the body: Situating gender
identity diagnoses in the ICD-11. International Review of Psychiatry, 24(6), 568–577.
https://doi.org/10.3109/09540261.2012.741575.
Dulko, S., & Imielinski, C. (2004). The Epidemiology of Transsexualism in Poland.
Journal of Psychosomatic Research, 56(6), 637.
https://doi.org/10.1016/j.jpsychores.2004.04.245.
Eisermann, K., Wang, D., Jing, Y., Pascal, L., & Wang, Z. (2014). Androgen receptor gene
mutation, rearrangement, polymorphism. Translational Andrology and Urology, 2(3),
137–147. https://doi.org/10.3978/j.issn.2223-4683.2013.09.15.
Eklund, P., Gooren, L., & Bezemer, P. (1988). Prevalence of transsexualism in the
Netherlands. The British Journal of Psychiatry, 152(5), 638–640.
https://doi.org/10.1192/bjp.152.5.638.
Joselyn Francis Cortés Cortés
174
EMBL-EBI. Expression Atlas. https://www.ebi.ac.uk/gxa/home
Emory, L., Williams, D., Cole, C., Amparo, E., & Meyer, W. (1991). Anatomic variation
of the corpus callosum in persons with gender dysphoria. Archives of Sexual
Behavior, 20(4), 409–417. https://doi.org/10.1007/BF01542620.
ENSEMBL. The Ensembl project GRCh37. http://grch37.ensembl.org/index.html
Esteva de Antonio, I., Bergero, T., Giraldo, F., Cano, G., Ruiz de Adana, S., Crespillo, C.,
& Soriguer, F. (2002). Unidad de trastornos de identidad de género de Andalucía.
Experiencia del primer año de funcionamiento. Endocrinología y Nutrición, 49(3),
71–74.
Esteva de Antonio, I., Giraldo, F., Bergero, T., Cano, G., Crespillo, C., Ruiz de Adana, S.,
… & Soriguer, F. (2001). Evaluación endocrinológica y tratamiento hormonal de la
transexualidad en la Unidad de Trastornos de Identidad de Género de Andalucía
(Málaga). Cirugía Plástica Iberolatinoamericana, 27, 273–280.
Esteva de Antonio, I., Gómez-Gil, E., Almaraz, M., Martínez, J., Bergero, T., Olveira, G.,
& Soriguer, F. (2012). Organización de la asistencia a la transexualidad en el sistema
sanitario público español. Gaceta Sanitaria, 26(3), 203–209.
https://doi.org/10.1016/j.gaceta.2011.10.021.
Esteva de Antonio, I., Gonzalo, M., Yahyaoui, R., Domínguez, M., Berguero, T., Giraldo,
F., & Soriguer, F. (2006). Epidemiología de la transexualidad en Andalucía, atención
especial al grupo de adolescentes. Cuad Med Psicosom, 78(78), 65–70.
http://dialnet.unirioja.es/servlet/oaiart?codigo=2271465.
Farooq, A. (2015). Structural and Functional Diversity of Estrogen Receptor Ligands.
Current Topics in Medicinal Chemistry, 15(14), 1372–1384.
https://doi.org/10.2174/1568026615666150413154841.
Feigelson, H., Coetzee, G., Kolonel, L., Coetzee, G., Kolonel, L., Ross, R., & Henderson,
B. (1997). A Polymorphism in the CYP17 Gene Increases the Risk of Breast Cancer.
Cancer Research, 57(6), 1063–1065.
BIBLIOGRAFÍA
175
Feigelson, H., Shames, L., Pike, M., Coetzee, G., Stanczyk, F., & Henderson, B. (1998).
Cytochrome P450c17alpha gene (CYP17) polymorphism is associated with serum
estrogen and progesterone concentrations. Cancer Res, 58(4), 585–587.
Feng, Y., Lin, X., Zhou, S., Xu, N., Yi, T., & Zhao, X. (2013). The associations between
the polymorphisms of the ER-α gene and the risk of uterine leiomyoma (ULM).
Tumor Biology, 34(5), 3077–3082. https://doi.org/10.1007/s13277-013-0874-0.
Fernández, R. (1995). Estudio citogenético y molecular del mosaicismo cromosómico en el
síndrome de Turner. Doctoral thesis, University of A Coruña, Spain.
https://doi.org/10.13140/RG.2.2.10409.80482.
Fernández, R., Cortés-Cortés, J., Esteva de Antonio, I., Gómez-Gil, E., Almaraz, M. C.,
Lema, E., … Pásaro, E. (2015). The CYP17 MspA1 Polymorphism and the Gender
Dysphoria. The Journal of Sexual Medicine, 12(6), 1329–1333.
https://doi.org/10.1111/jsm.12895.
Fernández, R., Cortés-Cortés, J., Gómez-Gil, E., Esteva de Antonio, I., Almaraz, M. C.,
Guillamon, A., & Pásaro, E. (2016). The CYP17-MspA1 rs743572 polymorphism is
not associated with gender dysphoria. Genes and Genomics, 38(12), 1145–1150.
https://doi.org/10.1007/s13258-016-0456-9.
Fernández, R., Esteva de Antonio, I., Gómez-Gil, E., Rumbo, T., Almaraz, M. C., Roda,
E., … & Pásaro, E. (2014a). Association study of ERβ, AR, and CYP19A1 genes and
MtF transsexualism. The Journal of Sexual Medicine, 11(12), 2986–2994.
https://doi.org/10.1111/jsm.12673.
Fernández, R., Esteva de Antonio, I., Gómez-Gil, E., Rumbo, T., Almaraz, M. C., Roda,
E., … & Pásaro, E. (2014b). The (CA)n Polymorphism of ER β Gene is Associated
with FtM Transsexualism. The Journal of Sexual Medicine, 11(3), 720–728.
https://doi.org/10.1111/jsm.12398.
Fernández, R., Guillamon, A., Cortés-Cortés, J., Gómez-Gil, E., Jácome, A., Esteva de
Antonio, I., … & Pásaro, E. (2018). Molecular basis of Gender Dysphoria: androgen
and estrogen receptor interaction. Psychoneuroendocrinology, 98, 161–167.
https://doi.org/10.1016/j.psyneuen.2018.07.032.
Joselyn Francis Cortés Cortés
176
Fernández, R., Guillamon, A., Gómez-Gil, E., Esteva de Antonio, I., Almaraz, M. C.,
Cortés-Cortés, J., ..., & Pásaro, E. (2018). Analyses of karyotype by G-banding and
high-resolution microarrays in a gender dysphoria population. Genes and Genomics,
40(5), 465–473. https://doi.org/10.1007/s13258-017-0646-0.
Feuk, L., Carson, A., & Scherer, S. (2006). Structural variation in the human genome.
Nature Reviews Genetics, 7(2), 85. https://doi.org/10.1038/nrg1767.
Figtree, G., Noonan, J., Bhindi, R., & Collins, P. (2009). Estrogen receptor
polymorphisms: significance to human physiology, disease and therapy. Recent
Patents on DNA & Gene Sequences, 3(3), 164–171.
https://doi.org/10.2174/187221509789318397.
Fisher, A., Bandini, E., Casale, H., Ferruccio, N., Meriggiola, M., Gualerzi, A., … &
Maggi, M. (2013). Sociodemographic and clinical features of gender identity
disorder: An italian multicentric evaluation. Journal of Sexual Medicine, 10(2), 408–
419. https://doi.org/10.1111/j.1743-6109.2012.03006.x.
Flück, C., Miller, W., & Auchus, R. (2003). The 17, 20-lyase activity of cytochrome
P450c17 from human fetal testis favors the Δ5 steroidogenic pathway. The Journal of
Clinical Endocrinology & Metabolism, 88(8), 3762–3766.
https://doi.org/10.1210/jc.2003-030143.
Foreman, M., Hare, L., York, K., Balakrishnan, K., Sánchez, F., Harte, F., … & Harley, V.
(2018). A genetic link between gender dysphoria and sex hormone signalling. The
Journal of Clinical Endocrinology & Metabolism, 104(2), 390–396.
https://doi.org/doi.org/10.1210/jc.2018-01105.
Fuss, J., Hellweg, R., Van, E., Briken, P., Stalla, G., T’Sjoen, G., & Auer, M. (2015).
Cross-sex hormone treatment in male-to-female transsexual persons reduces serum
brain-derived neurotrophic factor (BDNF). European Neuropsychopharmacology,
25(1), 95–99. https://doi.org/10.1016/j.euroneuro.2014.11.019.
Garcia-Falgueras, A., & Swaab, D. F. (2008). A sex difference in the hypothalamic
uncinate nucleus: relationship to gender identity. Brain : A Journal of Neurology,
131(Pt 12), 3132–3146. https://doi.org/10.1093/brain/awn276.
BIBLIOGRAFÍA
177
Garcia-Falgueras, A., & Swaab, D. F. (2009). Sexual hormones and the brain: an essential
alliance for sexual identity and sexual orientation. Pediatric Neuroendocrinology, 17,
22–35. https://doi.org/10.1159/000262525.
Gardner, R.J.M. & Sutherland, G.R. (1996). Chromosome Abnormalities and Genetic
Counselling. 2nd edn, Oxford University Press, Oxford.
Garrels, L., Kockott, G., Michael, N., Preuss, W., Renter, K., Schmidt, G., … &
Windgassen, K. (2000). Sex ratio of transsexuals in Germany: the development over
three decades. Acta Psychiatrica Scandinavica, 102(6), 445–448.
https://doi.org/10.1034/j.1600-0447.2000.102006445.x.
Geller, D., Auchus, R., Mendonça, B., & Miller, W. (1997). The genetic and functional
basis of isolated 17, 20–lyase deficiency. Nature Genetics, 17(2), 201–205.
https://doi.org/10.1038/ng1097-201.
Genazzani, A., Pluchino, N., Luisi, S., & Luisi, M. (2007). Estrogen, cognition and female
ageing. Human Reproduction Update, 13(2), 175–187.
https://doi.org/10.1093/humupd/dml042.
GeneCards®. Human Gene Database. http://www.genecards.org
Gennari, L., De Paola, V., Merlotti, D., Martini, G., & Nuti, R. (2007). Steroid hormone
receptor gene polymorphisms and osteoporosis: a pharmacogenomic review. Expert
Opinion on Pharmacotherapy, 8(5), 537–553.
https://doi.org/10.1517/14656566.8.5.537.
Gilep, A., Sushko, T., & Usanov, S. (2011). At the crossroads of steroid hormone
biosynthesis: the role, substrate specificity and evolutionary development of CYP17.
Biochimica Et Biophysica Acta-Proteins and Proteomics, 1814(1), 200–209.
https://doi.org/10.1016/j.bbapap.2010.06.021.
Godlewski, J. (1988). Transsexualism and anatomic sex ratio reversal in Poland. Archives
of Sexual Behavior, 17(6), 547–548. https://doi.org/10.1007/BF01542342.
Gómez-Gil, E. (2006). La atención a la transexualidad por la unidad de salud mental del
Joselyn Francis Cortés Cortés
178
Hospital Clínico en los últimos años. Cuadernos de Medicina Psicosomática y
Psiquiatria de Enlace, (78), 55–64.
Gómez-Gil, E. (2019). Disforia de género. In Manual de sexología clínica. Capítulo 12.
Editorial Panamericana.Madrid.
Gómez-Gil, E., & Esteva de Antonio, I. (2006). Ser transexual. Editorial Glosa. Barcelona.
Gómez-Gil, E., & Nogués, J. P. (2002). Transexualidad : un reto para el sistema sanitario
español, Medicina clínica, 118(11), 418–420.
Gómez-Gil, E., Esteva de Antonio, I., & Berguero, T. (2006). La transexualidad,
transexualismo o trastorno de la identidad de género en el adulto: Concepto y
características básicas. Cuadernos de Medicina Psicosomática y Psiquiatria de
Enlace, 8, 7–12.
Gómez-Gil, E., Esteva de Antonio, I., Almaraz, M. C., Pásaro, E., Segovia, S., &
Guillamon, A. (2010). Familiality of Gender Identity Disorder in Non-Twin Siblings.
Archives of Sexual Behavior, 39(2), 546–552. https://doi.org/10.1007/s10508-009-
9524-4.
Gómez-Gil, E., Esteva de Antonio, I., Almaraz, M., Godás, T., Halperin, I., & Soriguer, F.
(2011). Demanda de atención sanitaria en las unidades de identidad de género de
Andalucía y Cataluña durante la década 2000 a 2009. Revista Clinica Espanola,
211(5), 233–239. https://doi.org/10.1016/j.rce.2011.02.002.
Gómez-Gil, E., Esteva de Antonio, I., Carrasco, R., Almaraz, M. C., Pasaro, E., Salamero,
M., & Guillamon, A. (2011). Birth Order and Ratio of Brothers to Sisters in Spanish
Transsexuals. Archives of Sexual Behavior, 40(3), 505–510.
https://doi.org/10.1007/s10508-010-9614-3.
Gómez-Gil, E., Trilla, A., Godás, T., Halperin, I., Puig, M., Vidal, Á., & Peri, J. (2006).
Estimación de la prevalencia, incidencia y razón de sexos del transexualismo en
Cataluña según la demanda asistencial. Actas Españolas de Psiquiatría, 34(5), 296–
302.
BIBLIOGRAFÍA
179
Gómez-Gil, E., Trilla, A., Salamero, M., Godás, T., & Valdés, M. (2009).
Sociodemographic, clinical, and psychiatric characteristics of transsexuals from
Spain. Archives of Sexual Behavior, 38(3), 378–392. https://doi.org/10.1007/s10508-
007-9307-8.
Gómez-Gil, E., Zubiaurre-Elorza, L., Esteva de Antonio, I., Guillamon, A., & Salamero,
M. (2014). Determinants of quality of life in Spanish transsexuals attending a gender
unit before genital sex reassignment surgery. Quality of Life Research, 23(2), 669–
676. https://doi.org/10.1007/s11136-013-0497-3.
Gooren, L. (2006). The biology of human psychosexual differentiation. Hormones and
Behavior, 50(4), 589–601. https://doi.org/10.1016/j.yhbeh.2006.06.011.
Gorski, R., Gordon, J., & Shryne, J. (1978). Evidence for a morphological sex difference
within the medial preoptic area of the rat brain. Brain Research, 148(2), 333–346.
https://doi.org/10.1016/0006-8993(78)90723-0.
Green, R., & Keverne, E. (2000). The disparate maternal aunt-uncle ratio in male
transsexuals: an explanation invoking genomic imprinting. Journal of Theoretical
Biology, 202(1), 55–63. https://doi.org/10.1006/jtbi.1999.1039.
Green, R., & Keverne, E. (2015). Transsexual in The International Encyclopedia of Human
Sexuality. John Wiley & Sons editors. doi: 10.1002/9781118896877.
Grisart, B., Willatt, L., Destrée, A., Fryns, J., Rack, K., De Ravel, T., … & Sandford, R.
(2009). 17q21. 31 microduplication patients are characterized by behavioural
problems and poor social interaction. Journal of Medical Genetics, 46(8), 524–530.
https://doi.org/10.1136/jmg.2008.065367.
Grupo de trabajo sobre trastornos de identidad de género (2003). Trastornos de identidad
de género: guía clínica para el diagnóstico y tratamiento. Endocrinología y Nutrición,
50(1), 19–33. https://medes.com/publication/7570.
GTEx. The Genotype-Tissue Expression. https://www.gtexportal.org.
Guillamon, A. (2001). La diferenciación sexual del cerebro. Publicación de La Lección
Joselyn Francis Cortés Cortés
180
Magistral En El Claustro de Inauguración Del Curso (Madrid, UNED).
Guillamon, A., Junque, C., & Gómez-Gil, E. (2016). A review of the status of brain
structure research in transsexualism. Archives of Sexual Behavior, 45(7), 1615–1648.
https://doi.org/10.1007/s10508-016-0768-5.
Guzmán, J., Sánchez, N., de Diego, Y., Pérez, L., Esteva de Antonio, I., Navais, M., …
Bergero, T. (2016). Sociodemographic Characteristics and Psychological Adjustment
Among Transsexuals in Spain. Archives of Sexual Behavior, 45(3), 587–596.
https://doi.org/10.1007/s10508-015-0557-6.
Gymrek, M., Willems, T., Guilmatre, A., Zeng, H., Markus, B., Georgiev, S., … & Sharp,
A. (2016). Abundant contribution of short tandem repeats to gene expression variation
in humans. Nature Genetics, 48(1), 22. https://doi.org/10.1038/ng.3461.
Harada, N., Ogawa, H., Shozu, M., Yamada, K., Suhara, K., Nishida, E., & Takagi, Y.
(1992). Biochemical and molecular genetic analyses on placental aromatase (P-
450AROM) deficiency. Journal of Biological Chemistry, 267(7), 4781–4785.
Haraksingh, R., Abyzov, A., & Urban, A. (2017). Comprehensive performance comparison
of high-resolution array platforms for genome-wide Copy Number Variation (CNV)
analysis in humans. BMC Genomics, 18(1), 321. https://doi.org/10.1186/s12864-017-
3658-x.
Haraldsen, I., & Dahl, A. (2000). Symptom profiles of gender dysphoric patients of
transsexual type compared to patients with personality disorders and healthy adults.
Acta Psychiatrica Scandinavica, 102(4), 276–281. https://doi.org/10.1034/j.1600-
0447.2000.102004276.x.
Hare, L., Bernard, P., Sánchez, F., Baird, P., Vilain, E., Kennedy, T., & Harley, V. (2009).
Androgen Receptor Repeat Length Polymorphism Associated with Male-to-Female
Transsexualism. Biological Psychiatry, 65(1), 93–96.
https://doi.org/10.1016/j.biopsych.2008.08.033.
Harris, D.J., Hankins, L. & Begleiter, M.L. (1979) Reproductive risk of t(13q14q)carriers:
case report and review. Americam Journal Medical Genetics, 3, 175–181.
BIBLIOGRAFÍA
181
https://doi.org/10.1002/ajmg.1320030208
Hartl, DL. (2000). Our uncertain heritage: Genetics and human diversity. 5th ed. New
York: Harper and Row Publishers.
Hayes, F., Seminara, S., DeCruz, S., Boepple, P., & Crowley Jr, W. (2000). Aromatase
inhibition in the human male reveals a hypothalamic site of estrogen feedback. The
Journal of Clinical Endocrinology & Metabolism, 85(9), 3027–3035.
https://doi.org/10.1210/jcem.85.9.6795.
He, B., Minges, J., Lee, L., & Wilson, E. (2002). The FXXLF motif mediates androgen
receptor-specific interactions with coregulators. Journal of Biological Chemistry,
277(12), 10226–10235. https://doi.org/10.1074/jbc.M111975200.
Hedjazi, A., Zarenezhad, M., Hoseinzadeh, A., Hassanzadeh, R., Hosseini, S., Mohammad,
V., & Hedjazi, A. (2013). Socio-demographic characteristics of transsexuals referred
to the forensic medicine center in southwest of Iran. North American Journal of
Medical Sciences, 5(3), 224–227. https://doi.org/10.4103/1947-2714.109198.
Hengstschläger, M., van Trotsenburg, M., Repa, C., Marton, E., Huber, J., & Bernaschek,
G. (2003). Sex chromosome aberrations and transsexualism. Fertility and Sterility,
79(3), 639–640. https://doi.org/10.1016/S0015-0282(02)04805-7.
Henningsson, S., Westberg, L., Nilsson, S., Lundström, B., Ekselius, L., Bodlund, O., … &
Landén, M. (2005). Sex steroid-related genes and male-to-female transsexualism.
Psychoneuroendocrinology, 30(7), 657–664. https://doi.org/10.1016/j.psyneuen.
2005.02.006.
Herman-Jeglińska, A., Grabowska, A., & Dulko, S. (2002). Masculinity, Femininity, and
Transsexualism. Archives of Sexual Behavior, 31(6), 527–534.
https://doi.org/1020611416035.
Hernández-Romano, J., Martínez-Barnetche, J., & Valverde-Garduño, V. (2009).
Polimorfismos reguladores y su participación en la patogenia de enfermedades
complejas en la era posgenómica. Salud Publica de Mexico, 51(3), S455-S462.
Joselyn Francis Cortés Cortés
182
Hewitt, S., Harrell, J., & Korach, K. (2005). Lessons in estrogen biology from knockout
and transgenic animals. Annual Review of Physiology, 67(3), 285–308.
https://doi.org/10.1146/annurev.physiol.67.040403.115914.
Heylens, G., De Cuypere, G., Zucker, K., Schelfaut, C., Elaut, E., Vanden Bossche, H., …
& T’Sjoen, G. (2012). Gender Identity Disorder in Twins: A Review of the Case
Report Literature. The Journal of Sexual Medicine, 9(3), 751–757.
https://doi.org/10.1111/j.1743-6109.2011.02567.x.
Hines, M. (2011). Prenatal endocrine influences on sexual orientation and on sexually
differentiated childhood behavior. Frontiers in Neuroendocrinology, 32(2), 170–182.
https://doi.org/10.1016/j.yfrne.2011.02.006.
Hines, M., Brook, C., & Conway, G. S. (2004). Androgen and psychosexual development:
Core gender identity, sexual orientation, and recalled childhood gender role behavior
in women and men with congenital adrenal hyperplasia (CAH). Journal of Sex
Research, 41(1), 75–81. https://doi.org/10.1080/00224490409552215
Hoekzema, E., Schagen, S., Kreukels, B., Veltman, D., Cohen-Kettenis, P., Delemarre-van
de Waal, H., & Bakker, J. (2015). Regional volumes and spatial volumetric
distribution of gray matter in the gender dysphoric brain. Psychoneuroendocrinology,
55, 59–71. https://doi.org/10.1016/j.psyneuen.2015.01.016.
Hoenig, J., & Kenna, J. (1974). Prevalence of transsexualism in England and Wales.
British Journal of Psychiatry, 124(579), 181–190.
https://doi.org/10.1192/bjp.124.2.181.
Hsing, A., Gao, Y., Wu, G., Wang, X., Deng, J., Chen, Y., … & Chang, C. (2000).
Polymorphic CAG and GGN repeat lengths in the androgen receptor gene and
prostate cancer risk: a population-based case-control study in China. Cancer
Research, 60(18), 5111–5116.
Hsu, L. Y., Benn, P. A., Tannenbaum, H. L., Perlis, T. E., Carlson, A. D. (1989).
Chromosomal polymorphisms of 1, 9, 16, and Y in 4 major ethnic groups: a large
prenatal study. American Journal of Medical Genetics, 26, 95–101.
https://doi.org/10.1002/ajmg.1320260116.
BIBLIOGRAFÍA
183
Hu, X., Zhou, Y., Feng, Q., Wang, R., Su, L., Long, J., & Wei, B. (2012). Association of
endometriosis risk and genetic polymorphisms involving biosynthesis of sex steroids
and their receptors: an updating meta-analysis. European Journal of Obstetrics &
Gynecology and Reproductive Biology, 164(1), 1–9.
https://doi.org/10.1016/j.ejogrb.2012.05.008.
Iafrate, J., Feuk, L., Rivera, M., Listewnik, M., Donahoe, P., Qi, Y., … & Lee, C. (2004).
Detection of large-scale variation in the human genome. Nature Genetics, 36(9), 949.
https://doi.org/10.1038/ng1416.
IGSR. The International Genome Sample Resource. The 1000 Genomes Project.
http://www.internationalgenome.org/
Im, K., Lee, J., Lee, J., Shin, Y., Kim, I., Kwon, J., & Kim, S. (2006). Gender difference
analysis of cortical thickness in healthy young adults with surface-based methods.
NeuroImage, 31(1), 31–38. https://doi.org/10.1016/j.neuroimage.2005.11.042.
Inoubli, A., De Cuypere, G., Rubens, R., Heylens, G., Elaut, E., Van Caenegem, E., … &
T’Sjoen, G. (2011). Karyotyping, is it worthwhile in transsexualism? The Journal of
Sexual Medicine, 8(2), 475–478. https://doi.org/10.1111/j.1743-6109.2010.02130.x.
Ioannidis, J., Ralston, S., Bennett, S., Brandi, M., Grinberg, D., Karassa, F., … & Albagha,
O. (2004). Differential genetic effects of ESR1 gene polymorphisms on osteoporosis
outcomes. JAMA, 292(17), 2105–2114. https://doi.org/10.1001/jama.292.17.2105.
Irvine, R., Ma, H., Yu, M., Ross, R., Stallcup, M., & Coetzee, G. (2000). Inhibition of
p160-mediated coactivation with increasing androgen receptor polyglutamine length.
Human Molecular Genetics, 9(2), 267–274. https://doi.org/10.1093/hmg/9.2.267.
Judge, C., O’Donovan, C., Callaghan, G., Gaoatswe, G., & O’Shea, D. (2014). Gender
dysphoria prevalence and comorbidities in an Irish adult population. Frontiers in
Endocrinology, 5(87), 1–5. https://doi.org/10.3389/fendo.2014.00087.
Kado, N., Kitawaki, J., Obayashi, H., Ishihara, H., Koshiba, H., Kusuki, I., … & Honjo, H.
(2002). Association of the CYP17 gene and CYP19 gene polymorphisms with risk of
endometriosis in Japanese women. Human Reproduction, 17(4), 897–902.
Joselyn Francis Cortés Cortés
184
https://doi.org/10.1093/humrep/17.4.897.
Kagimoto, M., Winter, J., Kagimoto, K., Simpson, E., & Waterman, M. (1988). Structural
characterization of normal and mutant human steroid 17α-hydroxylase genes:
molecular basis of one example of combined 17α-hydroxylase/17, 20 lyase
deficiency. Molecular Endocrinology, 2(6), 564–570. https://doi.org/10.1210/mend-2-
6-564.
Katzenellenbogen, B., & Katzenellenbogen, J. (2000). Estrogen receptor transcription and
transactivation Estrogen receptor alpha and estrogen receptor beta: regulation by
selective estrogen receptor modulators and importance in breast cancer. Breast
Cancer Research, 2(5), 335. https://doi.org/10.1186/bcr78.
Kayes, K., & White, P. (2000). Steroidogenic enzyme gene expression in the human heart.
The Journal of Clinical Endocrinology & Metabolism, 85(7), 2519–2525.
https://doi.org/10.1210/jcem.85.7.6663.
Kearney, H., South, S., Wolff, D., Lamb, A., Hamosh, A., & Rao, K. (2011). American
College of Medical Genetics recommendations for the design and performance
expectations for clinical genomic copy number microarrays intended for use in the
postnatal setting for detection of constitutional abnormalities. Genetics in Medicine,
13(7), 676. https://doi.org/10.1097/GIM.0b013e31822272ac.
Klement, I., Skinner, P., Kaytor, M., Yi, H., Hersch, S., Clark, B., … & Orr, H. (1998).
Ataxin-1 nuclear localization and aggregation: role in polyglutamine-induced disease
in SCA1 transgenic mice. Cell, 95(1), 41–53. https://doi.org/10.1016/S0092-
8674(00)81781-X.
Kobayashi, S., Inoue, S., Hosoi, T., Ouchi, Y., Shiraki, M., & Orimo, H. (1996).
Association of bone mineral density with polymorphism of the estrogen receptor
gene. Journal of Bone and Mineral Research : The Official Journal of the American
Society for Bone and Mineral Research, 11(3), 306–311.
https://doi.org/10.1002/jbmr.5650110304.
Kranz, G., Hahn, A., Kaufmann, U., Kublbock, M., Hummer, A., Ganger, S., … &
Lanzenberger, R. (2014a). Cerebral serotonin transporter asymmetry in females,
BIBLIOGRAFÍA
185
males and male-to-female transsexuals measured by PET in vivo. Brain Structure and
Function, 219(1), 171–183. https://doi.org/10.1007/s00429-012-0492-4.
Kranz, G., Hahn, A., Kaufmann, U., Kublbock, M., Hummer, A., Ganger, S., … &
Lanzenberger, R. (2014b). White Matter Microstructure in Transsexuals and Controls
Investigated by Diffusion Tensor Imaging. Journal of Neuroscience, 34(46), 15466–
15475. https://doi.org/10.1523/JNEUROSCI.2488-14.2014.
Krege, J., Hodgin, J., Couse, J., Enmark, E., Warner, M., Mahler, J. . . ., & Smithies, O.
(1998). Generation and reproductive phenotypes of mice lacking estrogen receptor β.
Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America,
95(26), 15677–15682. https://doi.org/10.1073/pnas.95.26.15677.
Kreukels, B., Haraldsen, I., De Cuypere, G., Richter, H., Gijs, L., & Cohen-Kettenis, P.
(2012). A European network for the investigation of gender incongruence: The ENIGI
initiative. European Psychiatry, 27(6), 445–450.
https://doi.org/10.1016/J.EURPSY.2010.04.009.
Kristensen, V., & Børresen, A. (2000). Molecular epidemiology of breast cancer: genetic
variation in steroid hormone metabolism. Mutation Research/Reviews in Mutation
Research, 462(2–3), 323–333. https://doi.org/10.1016/S1383-5742(00)00018-1.
Kristensen, V., Haraldsen, E., Anderson, K., Kåresen, R., & Gabrielsen, O. (1999). CYP17
and Breast Cancer Risk: The Polymorphism in the 5’ Flanking Area of the Gene Does
Not Influence Binding to Sp-1. Cancer Research, 59(12), 2825–2828.
http://cancerres.aacrjournals.org/cgi/content/abstract/59/12/2825.
Kudwa, A., & Rissman, E. (2003). Double Oestrogen Receptor α and β Knockout Mice
Reveal Differences in Neural Oestrogen-Mediated Progestin Receptor Induction and
Female Sexual Behaviour. Journal of Neuroendocrinology, 15(10), 978–983.
https://doi.org/10.1046/j.1365-2826.2003.01089.x.
Kudwa, A., Bodo, C., Gustafsson, J., & Rissman, E. (2005). A previously uncharacterized
role for estrogen receptor beta: defeminization of male brain and behavior.
Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America,
102(12), 4608–4612. https://doi.org/10.1073/pnas.0500752102.
Joselyn Francis Cortés Cortés
186
Kudwa, A., Gustafsson, J., & Rissman, E. (2004). Estrogen receptor β modulates estradiol
induction of progestin receptor immunoreactivity in male, but not in female, mouse
medial preoptic area. Endocrinology, 145(10), 4500–4506.
https://doi.org/10.1210/en.2003-1708.
Kudwa, A., Michopoulos, V., Gatewood, J., & Rissman, E. (2006). Roles of estrogen
receptors α and β in differentiation of mouse sexual behavior. Neuroscience, 138(3),
921–928. https://doi.org/10.1016/j.neuroscience.2005.10.018.
Kuiper, G., Carlsson, B., Grandien, K., Enmark, E., Häggblad, J., Nilsson, S., &
Gustafsson, J. (1997). Comparison of the ligand binding specificity and transcript
tissue distribution of estrogen receptors alpha and beta. Endocrinology, 138(3), 863–
870. https://doi.org/10.1210/endo.138.3.4979.
Kuiper, G., Enmark, E., Pelto, M., Nilsson, S., & Gustafsson, J. (1996). Cloning of a novel
receptor expressed in rat prostate and ovary. Proceedings of the National Academy of
Sciences of the United States of America, 93(12), 5925–5930.
https://doi.org/10.1073/pnas.93.12.5925.
Kumar, R., Atamna, H., Zakharov, M., Bhasin, S., Khan, S., & Jasuja, R. (2011). Role of
the androgen receptor CAG repeat polymorphism in prostate cancer, and spinal and
bulbar muscular atrophy. Life Sciences, 88(13–14), 565–571.
https://doi.org/10.1016/j.lfs.2011.01.021.
Landén, M., Wålinder, J., & Lundström, B. (1998). Clinical characteristics of a total cohort
of female and male applicants for sex reassignment: A descriptive study. Acta
Psychiatrica Scandinavica, 97(3), 189–194. https://doi.org/10.1111/j.1600-
0447.1998.tb09986.x.
Laurie, C., & Stam, L. (1994). The effect of an intronic polymorphism on alcohol
dehydrogenase expression in Drosophila melanogaster. Genetics, 138(2), 379–385.
Lawrence, A. A. (2005). Sexuality Before and After Male-to-Female Sex Reassignment
Surgery. Archives of Sexual Behavior, 34(2), 147–166.
https://doi.org/10.1007/s10508-005-1793-y.
BIBLIOGRAFÍA
187
Lawrence, A. A. (2010a). A validation of Blanchard’s typology: Comment on Nuttbrock et
al. (2010). Archives of Sexual Behavior, 39(5), 1011–1015.
https://doi.org/10.1007/s10508-010-9615-2.
Lawrence, A. A. (2010b). Sexual orientation versus age of onset as bases for typologies
(subtypes) for gender identity disorder in adolescents and adults. Archives of Sexual
Behavior, 39(2), 514–545. https://doi.org/10.1007/s10508-009-9594-3.
Lawrence, A. A. (2011). Further validation of Blanchard’s typology: A reply to Nuttbrock,
Bockting, Rosenblum, Mason, and Hwahng (2010). Archives of Sexual Behavior, 40,
1089–1091. https://doi.org/10.1007/s10508-011-9742-4.
Lehmann, D., Butler, H., Warden, D., Combrinck, M., King, E., Nicoll, J., … & Esiri, M.
(2003). Association of the androgen receptor CAG repeat polymorphism with
Alzheimer’s disease in men. Neuroscience Letters, 340(2), 87–90.
https://doi.org/10.1016/S0304-3940(03)00069-7.
Lehmann, D., Hogervorst, E., Warden, D., Smith, A., Butler, H., & Ragoussis, J. (2004).
The androgen receptor CAG repeat and serum testosterone in the risk of Alzheimer’s
disease in men. Journal of Neurology, Neurosurgery & Psychiatry, 75(1), 163–164.
Lentini, E., Kasahara, M., Arver, S., & Savic, I. (2013). Sex Differences in the Human
Brain and the Impact of Sex Chromosomes and Sex Hormones. Cerebral Cortex,
23(10), 2322–2336. https://doi.org/10.1093/cercor/bhs222.
León, LE., Benavides, F., Espinoza, K., Vial, C., Alvarez, P., Palomares, M., Lay-Son, G.,
Miranda, M., & Repetto, G.M. (2017). Partial microduplication in the histone
acetyltransferase complex member KANSL1 is associated with congenital heart
defects in 22q11.2 microdeletion syndrome patients. Scientific reports, 7(1795), 1-8.
https://doi.org/10.1038/s41598-017-01896-w.
Li, C., Briggs, M., Ahlborn, T., Kraemer, F., & Liu, J. (2001). Requirement of Sp1 and
estrogen receptor alpha interaction in 17beta-estradiol-mediated transcriptional
activation of the low density lipoprotein receptor gene expression. Endocrinology,
142(4), 1546–1553. https://doi.org/10.1210/endo.142.4.8096.
Joselyn Francis Cortés Cortés
188
Li, J., Mercer, E., Gou, X., & Lu, L. (2013). Ethnical disparities of prostate cancer
predisposition: genetic polymorphisms in androgen-related genes. American Journal
of Cancer Research, 3(2), 127-151.
Lippa, R., & Hershberger, S. (1999). Genetic and environmental influences on individual
differences in masculinity, femininity, and gender diagnosticity: Analyzing data from
a classic twin study. Journal of Personality, 67(1), 127–155.
https://doi.org/10.1111/1467-6494.00050.
Liu, Y., Liu, Y., Huang, X., Sui, J., Mo, C., Wang, J., … & Qin, X. (2014). Association of
PvuII and XbaI polymorphisms in estrogen receptor alpha gene with the risk of
hepatitis B virus infection in the Guangxi Zhuang population. Infection, Genetics and
Evolution, 27(0), 69–76. https://doi.org/10.1016/j.meegid.2014.07.002.
Longcope, C., Pratt, H., Stephen, S., & Fineberg, E. (1978). Aromatization of androgens
by muscle and adipose tissue in vivo. The Journal of Clinical Endocrinology &
Metabolism, 46(1), 146–152. https://doi.org/10.1210/jcem-46-1-146.
Lubahn, D., Moyer, J., Golding, T., Couse, J., Korach, K., & Smithies, O. (1993).
Alteration of reproductive function but not prenatal sexual development after
insertional disruption of the mouse estrogen receptor gene. Proceedings of the
National Academy of Sciences of the United States of America, 90, 11162–11166.
https://doi.org/10.1073/pnas.90.23.11162.
Lüders, E., Gaser, C., Narr, K., & Toga, A. (2009a). Why Sex Matters: Brain Size
Independent Differences in Gray Matter Distributions between Men and Women.
Journal of Neuroscience, 29(45), 14265–14270.
https://doi.org/10.1523/JNEUROSCI.2261-09.2009.
Lüders, E., Narr, K., Thompson, P., Rex, D., Woods, R., DeLuca, H., … & Toga, A.
(2006). Gender effects on cortical thickness and the influence of scaling. Human
Brain Mapping, 27(4), 314–324. https://doi.org/10.1002/hbm.20187.
Lüders, E., Sánchez, F., Gaser, C., Toga, A., Katherine, L., Hamilton, L., & Vilain, E.
(2009b). Regional gray matter variation in male-to-female transsexualism.
Neuroimage, 46(4), 904–907. https://doi.org/10.1016/j.neuroimage.2009.03.048.
BIBLIOGRAFÍA
189
Lüders, E., Sánchez, F., Tosun, D., Shattuck, D., Gaser, C., Vilain, E., & Toga, A. (2012).
Increased Cortical Thickness in Male-to-Female Transsexualism. Journal of
Behavioral and Brain Science, 2(3), 357–362.
https://doi.org/10.4236/jbbs.2012.23040.
Lüders, E., Steinmetz, H., & Jäncke, L. (2002). Brain size and grey matter volume in the
healthy human brain. NeuroReport, 13(17).
https://doi.org/10.1097/01.wnr.0000049603.85580.da.
Lunn, R., Bell, D., Mohler, J., & Taylor, J. (1999). Prostate cancer risk and polymorphism
in 17 hydroxylase (CYP17) and steroid reductase (SRD5A2). Carcinogenesis, 20(9),
1727–1731. https://doi.org/10.1093/carcin/20.9.1727.
Mangelsdorf, D., Thummel, C., Beato, M., Herrlich, P., Schütz, G., Umesono, K., ..., &
Evans, R. (1995). The nuclear receptor superfamily: the second decade. Cell, 83, 835–
839. https://doi.org/10.1016/0092-8674(95)90199-x.
Maruyama, H., Toji, H., Harrington, C., Sasaki, K., Izumi, Y., Ohnuma, T., … & Emson,
P. (2000). Lack of an association of estrogen receptor α gene polymorphisms and
transcriptional activity with Alzheimer disease. Archives of Neurology, 57(2), 236–
240. https://doi.org/10.1001/archneur.57.2.236.
Matthews, J., & Gustafsson, J. (2003). Estrogen signaling: a subtle balance between ER
alpha and ER beta. Molecular Interventions, 3(5), 281–292.
https://doi.org/http://dx.doi.org/10.1124/mi.3.5.281.
McCarroll, S., Huett, A., Kuballa, P., Chilewski, S., Landry, A., Goyette, P., … & Xavier,
R. (2008). Deletion polymorphism upstream of IRGM associated with altered IRGM
expression and Crohn’s disease. ature genetics. Nature genetics, 40, 1107–1112.
https://doi.org/10.1038/ng.215.
McCarthy, M. M. (2009). The two faces of estradiol: effects on the developing brain. The
Neuroscientist : A Review Journal Bringing Neurobiology, Neurology and Psychiatry,
15(6), 599–610. https://doi.org/10.1177/1073858409340924.
McCarthy, M. M. (2017a). Sex and the Developing Brain. In Colloquium Series on The
Joselyn Francis Cortés Cortés
190
Developing Brain (pp. 1–141). Morgan & Claypool Life Sciences.
https://doi.org/10.4199/C00018ED1V01Y201010DBR001.
McCarthy, M. M. (2017b). Sex Differences in the Brain: Focus on Developmental
Mechanisms. In Principles of Gender-Specific Medicine (pp. 129–148).
https://doi.org/10.1016/B978-0-12-803506-1.00033-4.
McCarthy, M. M., & Arnold, A. P. (2011). Reframing sexual differentiation of the brain.
Nature Neuroscience, 14(6), 677–683. https://doi.org/10.1038/nn.2834.
McCarthy, M. M., Auger, A. P., Bale, T. L., De Vries, G. J., Dunn, G. A., Forger, N. G.,
… Wilson, M. E. (2009a). The epigenetics of sex differences in the brain. The Journal
of Neuroscience : The Official Journal of the Society for Neuroscience, 29(41),
12815–12823. https://doi.org/10.1523/JNEUROSCI.3331-09.2009.
McCarthy, M., Herold, K., & Stockman, S. (2018). Fast, furious and enduring: Sensitive
versus critical periods in sexual differentiation of the brain. Physiology & Behavior,
187, 13-19. https://doi.org/10.1016/j.physbeh.2017.10.030.
McCarthy, M., Wright, C., & Schwarz, J. (2009b). New tricks by an old dogma:
Mechanisms of the Organizational/Activational Hypothesis of steroid-mediated
sexual differentiation of brain and behavior. Hormones and Behavior, 55(5), 655–665.
https://doi.org/10.1016/J.YHBEH.2009.02.012.
Mengual, L. (2013). Nuevos conceptos en Biología Molecular aplicada a la investigación
traslacional. Archivos Españoles de Urología, 1(1), 401–408.
Meyer zu Hoberge, S. (2009). Prevalence, incidence and sex ratio of transsexualism in
Germany established by counting applications of the German Transsexual Act during
the period 1991 until 2000. Unpublished doctoral thesis, Medical Faculty Christian-
Albrechts-Universität zu Kiel, Kiel, Germany. https://doi.org/1019984406/34.
Meyer-Bahlburg, H. (2011). Transsexualism (“Gender Identity Disorder”)–A CNS-Limited
Form of Intersexuality? In Hormonal and Genetic Basis of Sexual Differentiation
Disorders and Hot Topics in Endocrinology: Proceedings of the 2nd World
Conference (pp. 75–79). Springer.
BIBLIOGRAFÍA
191
Mifsud, A., Sim, C., Boettger, H., Moreira, S., Lamb, D., Lipshultz, L., & Yong, E. (2001).
Trinucleotide (CAG) repeat polymorphisms in the androgen receptor gene: molecular
markers of risk for male infertility. Fertility and Sterility, 75(2), 275–281.
https://doi.org/10.1016/S0015-0282(00)01693-9.
Mizusaki, H., Kawabe, K., Mukai, T., Ariyoshi, E., Kasahara, M., Yoshioka, H., … &
Morohashi, K. (2003). Dax-1 (dosage-sensitive sex reversal-adrenal hypoplasia
congenita critical region on the X chromosome, gene 1) gene transcription is
regulated by wnt4 in the female developing gonad. Molecular Endocrinology, 17(4),
507–519. https://doi.org/10.1210/me.2002-0362.
Molina, S., Polanía, D., Osorio, P., & Pérez, J. (2008). Diagnóstico prenatal de
ambigüedad genital, correlación posnatal y revisión de la literatura. Universitas
Médica, 49(2), 259–276.
Moorhead, P., Nowell, P., Mellman, W., Battips, D., & Hungerford, D. (1960).
Chromosome preparations of leukocytes cultured from human peripheral blood.
Experimental Cell Research, 20(3), 613–616. https://doi.org/10.1016/0014-
4827(60)90138-5.
Moreno, M., Hernández, B., Bengoa, A., Aranzazu, J., Romero, C., Nieva, B., & Ramos,
M. (2015). KANSL1 gene disruption associated with the full clinical spectrum of
17q21.31 microdeletion syndrome. BMC Medical Genetics, 16, 68.
https://doi.org/10.1186/s12881-015-0211-0.
Moreno, Ó., Esteva De Antonio, I., Grupo de Identidad y Diferenciación Sexual de la
SEEN (GIDSEEN). (2012). [Clinical practice guidelines for assessment and treatment
of transsexualism. SEEN Identity and Sexual Differentiation Group (GIDSEEN)].
Endocrinología y nutrición: órgano de la Sociedad Española de Endocrinología y
Nutrición, 59(6), 367–382. https://doi.org/10.1016/j.endonu.2012.02.001.
Mosselman, S., Polman, J., & Dijkema, R. (1996). ERβ: identification and characterization
of a novel human estrogen receptor. FEBS Letters, 392(1), 49–53.
https://doi.org/10.1016/0014-5793(96)00782-X.
Nadales, M., Rodríguez, M., & Mora, P. (2016). Evolución del perfil sociodemográfico de
Joselyn Francis Cortés Cortés
192
personas con disforia de género. Cuadernos de Medicina Psicosomática y Psiquiatria
de Enlace, (119), 35–41.
NCBI: The National Center for Biotechnology Information. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/
NCBI ClinVar. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/clinvar/
NCBI dbSNP. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/snp/
Neufang, S., Specht, K., Hausmann, M., Güntürkün, O., Herpertz-Dahlmann, B., Fink, G.,
& Konrad, K. (2009). Sex Differences and the Impact of Steroid Hormones on the
Developing Human Brain. Cerebral Cortex, 19(2), 464–473.
https://doi.org/10.1093/cercor/bhn100.
Ngun, T., Ghahramani, N., Creek, M., Williams-Burris, S., Barseghyan, H., Itoh, Y., … &
Vilain, E. (2014). Feminized behavior and brain gene expression in a novel mouse
model of Klinefelter Syndrome. Archives of Sexual Behavior, 43(6), 1043–1057.
https://doi.org/10.1007/s10508-014-0316-0.
Ngun, T., Ghahramani, N., Sánchez, F., Bocklandt, S., & Vilain, E. (2011). The genetics of
sex differences in brain and behavior. Frontiers in Neuroendocrinology, 32(2), 227–
246. https://doi.org/10.1016/j.yfrne.2010.10.001.
Nguyen, T., McCracken, J., Ducharme, S., Botteron, K., Mahabir, M., Johnson, W., … &
Group, for the B. D. C. (2013). Testosterone-Related Cortical Maturation Across
Childhood and Adolescence. Cerebral Cortex, 23(6), 1424–1432.
https://doi.org/10.1093/cercor/bhs125.
Nieder, T., Herff, M., Cerwenka, S., Preuss, W., Cohen‐Kettenis, P., De Cuypere, G., … &
Richter, H. (2011). Age of onset and sexual orientation in transsexual males and
females. The Journal of Sexual Medicine, 8(3), 783–791.
https://doi.org/10.1111/j.1743-6109.2010.02142.x.
NLM US. National Library of Medicine. https://ghr.nlm.nih.gov/gene/KANSL1
BIBLIOGRAFÍA
193
Nomura, M., Durbak, L., Chan, J., Smithies, O., Gustafsson, J., Korach, K., …, & Ogawa,
S. (2002). Genotype/age interactions on aggressive behavior in gonadally intact
estrogen receptor β knockout (βERKO) male mice. Hormones and behavior, 41(3),
288–296. https://doi.org/10.1006/hbeh.2002.1773.
Nugent, B., Schwarz, J., & McCarthy, M. (2011). Hormonally mediated epigenetic
changes to steroid receptors in the developing brain: Implications for sexual
differentiation. Hormones and Behavior, 59(3), 338–344.
https://doi.org/10.1016/J.YHBEH.2010.08.009.
Nuttbrock, L., Bockting, W., Rosenblum, A., Mason, M., & Hwahng, S. (2010). The
limitations of Blanchard’s typology: A response to Lawrence (2010). Archives of
Sexual Behavior, 39, 1017–1020. https://doi.org/10.1007/s10508-010-9638-8.
O’Gorman, E. (1982). A retrospective study of epidemiological and clinical aspects of 28
transsexual patients. Archives of Sexual Behavior, 11(3), 231–236.
https://doi.org/10.1007/BF01544991.
Ogawa, S., Chan, J., Chester, A., Gustafsson, J., Korach, K., & & Pfaff, D. (1999).
Survival of reproductive behaviors in estrogen receptor β gene-deficient (βERKO)
male and female mice. Proceedings of the National Academy of Sciences of the
United States of America, 96(22), 12887–12892.
https://doi.org/10.1073/pnas.96.22.12887.
Okabe, N. (2008). Clinical characteristics of patients with gender identity disorder at a
Japanese gender identity disorder clinic. Psychiatry Research, 157(1), 315–318.
https://doi.org/10.1016/j.psychres.2007.07.022.
Olsson, S., & Möller, A. (2003). On the incidence and sex ratio of transsexualism in
Sweden, 1972–2002. Archives of Sexual Behavior, 32(4), 381–386.
https://doi.org/10.1023/A:1024051201160.
OMIM. Online Mendelian Inheritance in Man. An Online Catalog of Human Genes and
Genetic Disorders. https://www.omim.org/
Joselyn Francis Cortés Cortés
194
OMIM. Entry 613533. Chromosome 17q21.31 Duplication Syndrome.
https://omim.org/entry/613533
Parl, F., Cavener, D., & Dupont, W. (1989). Genomic DNA analysis of the estrogen
receptor gene in breast cancer. Breast Cancer Research and Treatment, 14(1), 57–64.
https://doi.org/10.1007/BF01805976.
Pauly, I. (1968). The current status of the change of Sex Operation. Journal of Nervous &
Mental Disease, 147(5), 460–471. https://doi.org/10.1097/00005053-196811000-
00003.
Pedram, A., Razandi, M., Wallace, D., & Levin, E. (2006). Functional Estrogen Receptors
in the Mitochondria of Breast Cancer Cells. Molecular Biology of the Cell, 17(5),
2125–2137. https://doi.org/10.1091/mbc.e05-11-1013.
Phoenix, C., Goy, R., Gerall, A., & Young, W. (1959). Organizing action of prenatally
administered testosterone propionate on the tissues mediating mating behavior in the
female guinea pig. Endocrinology, 65(3), 369–382. https://doi.org/10.1210/endo-65-
3-369.
Picado, J., & Miller, W. (1987). Cloning and sequence of the human gene for P450cl7
(steroid 17α-hydroxylase/17, 20 lyase): similarity with the gene for P450c21. Dna,
6(5), 439–448. https://doi.org/10.1089/dna.1987.6.439.
Pimenoff, V. (2006). On the care of transsexuals in Finland. International Journal of
Transgenderism, 9(2), 23–33. https://doi.org/10.1300/J485v09n02_04.
Poasa, K., Blanchard, R., & Zucker, K. (2004). Birth order in transgendered males from
Polynesia: a quantitative study of Samoan fa’afāfine. Journal of Sex & Marital
Therapy, 30(1), 13–23. https://doi.org/10.1080/00926230490247110.
Pol, H., Cohen-Kettenis, P., Van Haren, N., Peper, J., Brans, R., Cahn, W., … & Kahn, R.
(2006). Changing your sex changes your brain: influences of testosterone and
estrogen on adult human brain structure. European Journal of Endocrinology, 155,
S107–S114. https://doi.org/10.1530/eje.1.02248.
BIBLIOGRAFÍA
195
Polderman, T. J. C., Kreukels, B. P. C., Irwig, M. S., Beach, L., Chan, Y. M., Derks, E. M.,
Esteva, I., Ehrenfeld, J., Heijer, M. D., Posthuma, R. L., Tishelman, A., Davis, L. K.
International Gender Diversity Genomics Consortium. (2018). The Biological
Contributions to Gender Identity and Gender Diversity: Bringing Data to the Table.
Behavior genetics, 48(2):95-108. https://doi.org/ 10.1007/s10519-018-9889-z.
Polymeropoulos, M., Xiao, H., Rath, D., & Merril, C. (1991). Tetranucleotide repeat
polymorphism at the human aromatase cytochrome P-450 gene (CYP19). Nucleic
Acids Research, 19(1), 195. https://doi.org/10.1093/nar/19.1.195.
Ponglikitmongkol, M., Green, S., & Chambon, P. (1988). Genomic organization of the
human oestrogen receptor gene. The EMBO Journal, 7(11), 3385–3388.
Prins, G., & Korach, K. (2008). The role of estrogens and estrogen receptors in normal
prostate growth and disease. Steroids, 73(3), 233–244.
https://doi.org/10.1016/j.steroids.2007.10.013.
Rai, R., Sharma, K., Misra, S., Kumar, A., & Mittal, B. (2014). CYP17 polymorphism
(rs743572) is associated with increased risk of gallbladder cancer in tobacco users.
Tumor Biology, 35(7), 6531–6537. https://doi.org/10.1007/s13277-014-1876-2.
Rakic, Z., Starcevic, V., Maric, J., & Kelin, K. (1996). The outcome of sex reassignment
surgery in Belgrade: 32 patients of both sexes. Archives of Sexual Behavior, 25(5),
515–525. https://doi.org/10.1007/BF02437545.
Rametti, G., Carrillo, B., Gómez-Gil, E., Junque, C., Segovia, S., Gomez, Á., &
Guillamon, A. (2011a). The microstructure of white matter in male to female
transsexuals before cross-sex hormonal treatment. A DTI study. Journal of
Psychiatric Research, 45(7), 949–954.
https://doi.org/10.1016/j.jpsychires.2010.11.007.
Rametti, G., Carrillo, B., Gómez-Gil, E., Junque, C., Segovia, S., Gomez, Á., &
Guillamon, A. (2011b). White matter microstructure in female to male transsexuals
before cross-sex hormonal treatment. A diffusion tensor imaging study. Journal of
Psychiatric Research, 45(2), 199–204.
https://doi.org/10.1016/j.jpsychires.2010.05.006.
Joselyn Francis Cortés Cortés
196
Rametti, G., Carrillo, B., Gómez-Gil, E., Junque, C., Zubiaurre, L., Segovia, S., …
Guillamon, A. (2012). Effects of androgenization on the white matter microstructure
of female-to-male transsexuals. A diffusion tensor imaging study.
Psychoneuroendocrinology, 37(8), 1261–1269.
https://doi.org/10.1016/j.psyneuen.2011.12.019.
Ratcliffe, S., Bancroft, J., Axworthy, D., & McLaren, W. (1982). Klinefelter’s syndrome in
adolescence. Archives of Disease in Childhood, 57(1), 6–12.
Redon, R., Ishikawa, S., Fitch, K., Feuk, L., Perry, G., Andrews, D., … & Chen, W.
(2006). Global variation in copy number in the human genome. Nature, 444(7118),
444. https://doi.org/10.1038/nature05329.
RefSeq. Reference Sequence Database. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/refseq/
Reinisch, J., Ziemba, M., & Sanders, S. (1991). Hormonal contributions to sexually
dimorphic behavioral development in humans. Psychoneuroendocrinology, 16(1–3),
213–278. https://doi.org/10.1016/0306-4530(91)90080-D.
Rissman, E., Early, A., Taylor, J., Korach, K., & Lubahn, D. (1997). Estrogen receptors are
essential for female sexual receptivity. Endocrinology, 138(1), 507–510.
https://doi.org/10.1210/endo.138.1.4985.
Rizos, E., Papathanasiou, M., Michalopoulou, P., Mazioti, A., Douzenis, A., Kastania, A.,
… Lykouras, L. (2011). Association of serum BDNF levels with hippocampal
volumes in first psychotic episode drug-naive schizophrenic patients. Schizophrenia
Research, 129(2–3), 201–204. https://doi.org/10.1016/j.schres.2011.03.011.
Rodríguez, M., Mora, P., Díaz, M., & GIDSEEN. (2014). La disforia de género en la
infancia en las clasificaciones diagnósticas. Cuadernos de Medicina Psicosomática y
Psiquiatria de Enlace, 110, 25–35.
Ross, M., Wålinder, J., Lundströ, B., & Thuwe, I. (1981). Cross‐cultural approaches to
transsexualism: A comparison between Sweden and Australia. Acta Psychiatrica
Scandinavica, 63(1), 75–82. https://doi.org/10.1111/j.1600-0447.1981.tb00652.x.
BIBLIOGRAFÍA
197
Ruigrok, A., Salimi, G., Lai, M., Baron-Cohen, S., Lombardo, M., Tait, R., & Suckling, J.
(2014). A meta-analysis of sex differences in human brain structure. Neuroscience &
Biobehavioral Reviews, 39, 34–50. https://doi.org/10.1016/j.neubiorev.2013.12.004.
Safe, S. (2001). Transcriptional activation of genes by 17 beta-estradiol through estrogen
receptor-Sp1 interactions. Vitamins and Hormones, 62, 231–252.
https://doi.org/10.1016/S0083-6729(01)62006-5.
Sakoda, L., Blackston, C., Doherty, J., Ray, R., Lin, M., Stalsberg, H., … Chen, C. (2008).
Polymorphisms in Steroid Hormone Biosynthesis Genes and Risk of Breast Cancer
and Fibrocystic Breast Conditions in Chinese Women. Cancer Epidemiology
Biomarkers & Prevention, 17(5), 1066–1073. https://doi.org/10.1158/1055-9965.EPI-
07-2680.
Sato, T., Miyagawa, S., & Iguchi, T. (2016). Subchapter 94G - Estradiol-17β. Handbook of
Hormones, (520-e94G-4). Academic Press. Yoshio Takei, Hironori Ando, Kazuyoshi
Tsutsui Editors. https://doi.org/10.1016/B978-0-12-801028-0.00226-9.
Savic, I., & Arver, S. (2011). Sex Dimorphism of the Brain in Male-to-Female
Transsexuals. Cerebral Cortex, 21(11), 2525–2533.
https://doi.org/10.1093/cercor/bhr032.
Savic, I., Garcia-Falgueras, A., & Swaab, D. (2010). Sexual differentiation of the human
brain in relation to gender identity and sexual orientation. Progress in Brain
Research, 186, 41–62. https://doi.org/10.1016/B978-0-444-53630-3.00004-X.
Schagen, S., Delemarre-van de Waal, H., Blanchard, R., & Cohen-Kettenis, P. (2012).
Sibling Sex Ratio and Birth Order in Early-Onset Gender Dysphoric Adolescents.
Archives of Sexual Behavior, 41(3), 541–549. https://doi.org/10.1007/s10508-011-
9777-6.
Schindler, A., Ebert, A., & Friedrich, E. (1972). Conversion of androstenedione to estrone
by human fat tissue. The Journal of Clinical Endocrinology & Metabolism, 35(4),
627–630. https://doi.org/10.1210/jcem-35-4-627.
Schwarz, J., & McCarthy, M. (2008). Steroid-induced sexual differentiation of the
Joselyn Francis Cortés Cortés
198
developing brain: multiple pathways, one goal. Journal of Neurochemistry, 105(5),
1561–1572. https://doi.org/10.1111/j.1471-4159.2008.05384.x.
Schweikert, H., Milewich, L., & Wilson, J. (1975). Aromatization of androstenedione by
isolated human hairs. The Journal of Clinical Endocrinology & Metabolism, 40(3),
413–417. https://doi.org/https://doi.org/10.1210/jcem-40-3-413.
Scott, H., Mason, J., & Sharpe, R. (2009). Steroidogenesis in the fetal testis and its
susceptibility to disruption by exogenous compounds. Endocrine Reviews, 30(7),
883–925. https://doi.org/https://doi.org/10.1210/er.2009-0016.
Scriven, P. N., Flinter, F. A., Braude, P. R., & Ogilvie, C. M. (2001). Robertsonian
translocations—reproductive risks and indications for preimplantation genetic
diagnosis. Human Reproduction, 16(11), 2267–2273, https://doi.org/10.1093/
humrep/16.11.2267.
Seabright, M. (1971). A rapid technique for human chromosomes. Lancet, 2(7731), 971-
972. https://doi.org/10.1016/S0140-6736(71)90287-X.
Sebat, J., Lakshmi, B., Troge, J., Alexander, J., Young, J., Lundin, P., … & Chi, M.
(2004). Large-scale copy number polymorphism in the human genome. Science,
305(5683), 525–528. https://doi.org/10.1126/science.1098918.
Sharp, A., Hansen, S., Selzer, R., Cheng, Z., Regan, R., Hurst, J., … & Eichler, E. (2006).
Discovery of previously unidentified genomic disorders from the duplication
architecture of the human genome. Nature Genetics, 38(9), 1038–1042.
https://doi.org/10.1038/ng1862.
Sieso, T. (2006). Repercusiones personales, familiares, sociales y laborales de la
transexualidad. Cuaderno de Medicina Psicosomática y Medicina de Enlace, 78, 21–
23.
Silverman, I., Choi, J., & Peters, M. (2007). The Hunter-Gatherer Theory of Sex
Differences in Spatial Abilities: Data from 40 Countries. Archives of Sexual Behavior,
36(2), 261–268. https://doi.org/10.1007/s10508-006-9168-6.
BIBLIOGRAFÍA
199
Simon, L., Kozák, L., Simon, V., Czobor, P., Unoka, Z., Szabó, Á., & Csukly, G. (2013).
Regional grey matter structure differences between transsexuals and healthy controls.
A voxel based morphometry study. PLoS ONE, 8(12), 1–10.
https://doi.org/10.1371/journal.pone.0083947.
Simonsen, R., Hald, G., Giraldi, A., & Kristensen, E. (2015). Sociodemographic Study of
Danish Individuals Diagnosed with Transsexualism. Sexual Medicine, 3(2), 109–117.
https://doi.org/10.1002/sm2.48.
Simpson, E., Mahendroo, M., Means, G., Kilgore, M., Hinshelwood, M., Graham, S., … &
Michael, M. (1994). Aromatase cytochrome P450, the enzyme responsible for
estrogen biosynthesis. Endocrine Reviews, 15(3), 342–355.
https://doi.org/https://doi.org/10.1210/edrv-15-3-342.
Sinclair, A., Berta, P., Palmer, M., Hawkins, J., Griffiths, B., Smith, M., … & Goodfellow,
P. (1990). A gene from the human sex-determining region encodes a protein with
homology to a conserved DNA-binding motif. Nature, 346(6281), 240–244.
https://doi.org/10.1038/346240a0.
Sleddens, H., Oostra, B., Brinkmann, A., & Trapman, J. (1992). Trinucleotide repeat
polymorphism in the androgen receptor gene (AR). Nucleic Acids Research, 20(6),
1427. https://doi.org/10.1093/nar/20.6.1427-a.
Smith, Y., Van Goozen, S., Kuiper, A., & Cohen-Kettenis, P. (2005a). Sex reassignment:
outcomes and predictors of treatment for adolescent and adult transsexuals.
Psychological Medicine, 35(1), 89–99. https://doi.org/10.1017/S0033291704002776.
Smith, Y., Van Goozen, S., Kuiper, A., & Cohen-Kettenis, P. (2005b). Transsexual
subtypes: Clinical and theoretical significance. Psychiatry Research, 137(3), 151–160.
https://doi.org/10.1016/j.psychres.2005.01.008.
Smyth, C., & Bremner, W. (1998). Klinefelter Syndrome. Archives of Internal Medicine,
158(12), 1309. https://doi.org/10.1001/archinte.158.12.1309.
SNPStats. A web tool for SNP analysis. https://www.snpstats.net/
Joselyn Francis Cortés Cortés
200
Solé, X., Guinó, E., Valls, J., Iniesta, R., & Moreno, V. (2006). SNPStats: a web tool for
the analysis of association studies. Bioinformatics, 22(15), 1928–1929.
https://doi.org/10.1093/bioinformatics/btl268.
Sörensen, T., & Hertoft, P. (1980). Sexmodifying operations on transsexuals in Denmark
in the period 1950–1977. Acta Psychiatrica Scandinavica, 61(1), 56–66.
https://doi.org/https://doi.org/10.1111/j.1600-0447.1980.tb00565.x.
Soriguer, F., Gutiérrez, C., Rubio, E., García, E., Almaraz, M., Colomo, N., … & Rojo, G.
(2013). Metabolically healthy but obese, a matter of time? Findings from the
prospective Pizarra study. The Journal of Clinical Endocrinology and Metabolism,
98(6), 2318–2325. https://doi.org/http://dx.doi.org/10.1210/jc.2012-4253.
Sowell, E., Peterson, B., Kan, E., Woods, R., Yoshii, J., Bansal, R., … & Toga, A. (2007).
Sex Differences in Cortical Thickness Mapped in 176 Healthy Individuals between 7
and 87 Years of Age. Cerebral Cortex, 17(7), 1550–1560.
https://doi.org/10.1093/cercor/bhl066.
Sparkes, R., Klisak, I., & Miller, W. (1991). Regional mapping of genes encoding human
steroidogenic enzymes: P450scc to 15q23–q24, adrenodoxin to 11q22; adrenodoxin
reductase to 17q24–q25; and P450c17 to 10q24–q25. DNA and Cell Biology, 10(5),
359–365. https://doi.org/https://doi.org/10.1089/dna.1991.10.359.
Steckelbroeck, S., Heidrich, D., Stoffel, B., Hans, V., Schramm, J., Bidlingmaier, F., &
Klingmüller, D. (1999). Characterization of aromatase cytochrome P450 activity in
the human temporal lobe. The Journal of Clinical Endocrinology & Metabolism,
84(8), 2795–2801. https://doi.org/10.1210/jcem.84.8.5876.
Stoffel, B., Watzka, M., Schramm, J., Bidlingmaier, F., & Klingmüller, D. (1999).
Expression of CYP19 (aromatase) mRNA in different areas of the human brain. The
Journal of Steroid Biochemistry and Molecular Biology, 70(4–6), 237–241.
https://doi.org/10.1016/S0960-0760(99)00114-4.
Stoller, R. (1968). Sex and Gender. (S. House, Ed.). New York.
Swaab, D. F. (2004). Sexual differentiation of the human brain: relevance for gender
BIBLIOGRAFÍA
201
identity, transsexualism and sexual orientation. Gynecological Endocrinology, 19(6),
301–312. https://doi.org/10.1080/09513590400018231.
Swaab, D. F. (2007). Sexual differentiation of the brain and behavior. Best Practice &
Research Clinical Endocrinology & Metabolism, 21(3), 431–444.
https://doi.org/10.1016/j.beem.2007.04.003.
Swaab, D. F., & Garcia-Falgueras, A. (2009). Sexual differentiation of the human brain in
relation to gender identity and sexual orientation. Functional Neurology, 24(1), 17–
28.
Swaab, D. F., & Hofman, M. (1995). Sexual differentiation of the human hypothalamus in
relation to gender and sexual orientation. Trends in Neurosciences, 18(6), 264–270.
https://doi.org/10.1016/0166-2236(95)80007-O.
Szczepańska, M., Wirstlein, P., Skrzypczak, J., & JagodzińskI, P. (2013). Polymorphic
variants of CYP17 and CYP19A and risk of infertility in endometriosis. Acta
Obstetricia et Gynecologica Scandinavica, 92(10), 1188–1193.
https://doi.org/10.1111/aogs.12210.
Tabor, H., Risch, N., & Myers, R. (2002). Candidate-gene approaches for studying
complex genetic traits: practical considerations. Nature Reviews Genetics, 3(5), 1–7.
https://doi.org/10.1038/nrg796.
Temple, J., Scordalakes, E., Bodo, C., Gustafsson, J., & Rissman, E. (2003). Lack of
functional estrogen receptor β gene disrupts pubertal male sexual behavior. Hormones
and Behavior, 44(5), 427–434. https://doi.org/10.1016/j.yhbeh.2003.09.002.
Thermo Fisher Scientific. Chromosome Analysis Suite (ChAS).
https://www.affymetrix.com/chas
Toda, K., Merashima, M., Kawamoto, T., Sumimoto, H., Yokoyama, Y., Kuribayashi, I.,
… & Sagara, Y. (1990). Structural and functional characterization of human
aromatase P‐450 gene. European Journal of Biochemistry, 193(2), 559–565.
https://doi.org/10.1111/j.1432-1033.1990.tb19372.x.
Joselyn Francis Cortés Cortés
202
Toda, K., Simpson, E., Mendelson, C., Shizuta, Y., & Kilgore, M. (1994). Expression of
the gene encoding aromatase cytochrome P450 (CYP19) in fetal tissues. Molecular
Endocrinology, 8(2), 210–217. https://doi.org/10.1210/mend.8.2.8170477.
Todd, B., Schwarz, J., & McCarthy, M. (2005). Prostaglandin-E2: A point of divergence in
estradiol-mediated sexual differentiation. Hormones and Behavior, 48(5), 512–521.
https://doi.org/10.1016/J.YHBEH.2005.07.011.
Tsoi, W. (1988). The prevalence of transsexualism in Singapore. Acta Psychiatrica
Scandinavica, 78(4), 501–504. https://doi.org/10.1111/j.1600-0447.1988.tb06373.x.
Tsoi, W. (1990). Developmental profile of 200 male and 100 female transsexuals in
Singapore. Archives of Sexual Behavior, 19(6), 595–605.
https://doi.org/10.1007/BF01542468.
Tsoi, W. (1992). Male and female transsexuals: A comparison. Singapore Medical
Journal, 33(2), 182–185.
Tsoi, W. (1993). Follow-up study of transsexuals after sex-reassignment surgery.
Singapore Medical Journal, 34(6), 515–517.
Tsoi, W., Kok, L., & Long, F. (1977). Male transsexualism in Singapore: A description of
56 cases. The British Journal of Psychiatry, 131(4), 405–409.
https://doi.org/10.1192/bjp.131.4.405.
Tsukamoto, K., Inoue, S., Hosoi, T., Orimo, H., & Emi, M. (1998). Isolation and radiation
hybrid mapping of dinucleotide repeat polymorphism at the human estrogen receptor
beta locus. Journal of Human Genetics, 43(1), 73–74.
https://doi.org/10.1007/s100380050043.
Ujike, H., Otani, K., Nakatsuka, M., Ishii, K., Sasaki, A., Oishi, T., … & Kuroda, S.
(2009). Association study of gender identity disorder and sex hormone-related genes.
Progress in Neuro-Psychopharmacology and Biological Psychiatry, 33(7), 1241–
1244. https://doi.org/10.1016/j.pnpbp.2009.07.008.
US National Library of Medicine https://ghr.nlm.nih.gov/gene/KANSL1
BIBLIOGRAFÍA
203
Van den Akker, E., Koper, J., Boehmer, A., Themmen, A., Verhoef, M., Timmerman, M.,
… & De Jong, F. (2002). Differential inhibition of 17α-hydroxylase and 17, 20-lyase
activities by three novel missense CYP17 mutations identified in patients with
P450c17 deficiency. The Journal of Clinical Endocrinology & Metabolism, 87(12),
5714–5721. https://doi.org/10.1210/jc.2001-011880.
Van Goozen, S., Slabbekoorn, D., Gooren, L., Sanders, G., & Cohen-Kettenis, P. (2002).
Organizing and activating effects of sex hormones in homosexual transsexuals.
Behavioral Neuroscience, 116(6), 982–988. https://doi.org/10.1037/0735-
7044.116.6.982.
Van Kesteren, P., Gooren, L., & Megens, J. (1996). An epidemiological and demographic
study of transsexuals in the Netherlands. Archives of Sexual Behavior, 25(6), 589–
600. https://doi.org/10.1007/BF02437841.
Van Meurs, J., Schuit, S., Well, A., van der Klift, M., Bergink, A., Arp, P., … & Pols, H.
(2003). Association of 5’ estrogen receptor alpha gene polymorphisms with bone
mineral density, vertebral bone area and fracture risk. Human Molecular Genetics,
12(14), 1745–1754. https://doi.org/10.1093/hmg/ddg176.
Vanderlaan, D., Blanchard, R., Wood, H., & Zucker, K. (2014). Birth order and sibling sex
ratio of children and adolescents referred to a gender identity service. PloS One, 9(3),
e90257. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0090257.
Veale, J. (2008). Prevalence of transsexualism among New Zealand passport holders.
Australian & New Zealand Journal of Psychiatry, 42(10), 887–889.
https://doi.org/10.1080/00048670802345490.
Veale, J. (2014). Evidence Against a Typology: A Taxometric Analysis of the Sexuality of
Male-to-Female Transsexuals. Archives of Sexual Behavior, 43(6):1177-1186.
https://doi.org/10.1007/s10508-014-0275-5.
Verma, R., & Babu, A. (1995). Human chromosomes: manual of basic techniques.
Chromosome Research, 4(1), 80–81. https://doi.org/10.1007/BF02254950.
Verma, R. S., Huq, A., & Dosik, H. (1983). Racial variation of a non-fluorescent segment
Joselyn Francis Cortés Cortés
204
of the Y chromosome in East Indians. Journal of Medical Genetics, 20:102–106.
https://doi.org/10.1136/jmg.20.2.102.
Visootsak, J., & Graham, J. (2006). Klinefelter syndrome and other sex chromosomal
aneuploidies. Orphanet Journal of Rare Diseases, 1(1), 42.
https://doi.org/10.1186/1750-1172-1-42.
Vreeburg, J., Van der Vaart, P., & Van der Schoot, P. (1977). Prevention of central
defeminization but not masculinization in male rats by inhibition neonatally of
oestrogen biosynthesis. Journal of Endocrinology, 74(3), 375–382.
https://doi.org/10.1677/joe.0.0740375.
Vujovic, S., Popovic, S., Sbutega, G., Djordjevic, M., & Gooren, L. (2009).
Transsexualism in Serbia: A twenty-year follow-up study. Journal of Sexual
Medicine, 6(4), 1018–1023. https://doi.org/10.1111/j.1743-6109.2008.00799.x.
Wålinder, J. (1968). Transsexualism: definition, prevalence sex distribution. Acta
Psychiatrica Scandinavica, 43(S203), 255–258. https://doi.org/10.1111/j.1600-
0447.1968.tb02000.x.
Wålinder, J. (1971). Incidence and sex ratio of transsexualism in Sweden. The British
Journal of Psychiatry, 119(549), 195–196. https://doi.org/10.1192/bjp.119.549.195.
Wallen, K. (2005). Hormonal influences on sexually differentiated behavior in nonhuman
primates. Frontiers in Neuroendocrinology, 26(1), 7–26.
https://doi.org/10.1016/j.yfrne.2005.02.001.
Warrick, J., Paulson, H., Gray, G., Bui, Q., Fischbeck, K., Pittman, R., & Bonini, N.
(1998). Expanded polyglutamine protein forms nuclear inclusions and causes neural
degeneration in Drosophila. Cell, 93(6), 939–949. https://doi.org/10.1016/S0092-
8674(00)81200-3.
Weiderpass, E., Persson, I., Melhus, H., Wedren, S., Kindmark, A., & Baron, J. (2000).
Estrogen receptor gene polymorphisms and endometrial cancer risk. Carcinogenesis,
21(4), 623–627. https://doi.org/10.1093/carcin/21.4.623.
BIBLIOGRAFÍA
205
Weitze, C., & Osburg, S. (1996). Transsexualism in Germany: empirical data on
epidemiology and application of the German Transsexuals’ Act during its first ten
years. Archives of Sexual Behavior, 25(4), 409–425.
Wersinger, S., & Rissman, E. (2001). Oestrogen Receptor α is Essential for Female-
Directed Chemo-Investigatory Behaviour but is not Required for the Pheromone-
Induced Luteinizing Hormone Surge in Male Mice. Journal of Neuroendocrinology,
12(2), 103–110. https://doi.org/10.1046/j.1365-2826.2000.00418.x.
Wickenheisser, J., Quinn, P., Nelson, V., Legro, R., Strauss, J., & Mcallister, J. (2000).
Differential activity of the cytochrome P450 17α-hydroxylase and steroidogenic acute
regulatory protein gene promoters in normal and polycystic ovary syndrome theca
cells. The Journal of Clinical Endocrinology & Metabolism, 85(6), 2304–2311.
https://doi.org/10.1210/jcem.85.6.6631.
Wikström, A., & Dunkel, L. (2008). Testicular Function in Klinefelter Syndrome.
Hormone Research in Paediatrics, 69(6), 317–326.
https://doi.org/10.1159/000117387.
Wikström, A., & Dunkel, L. (2011). Klinefelter syndrome. Best Practice & Research
Clinical Endocrinology & Metabolism, 25(2), 239–250.
https://doi.org/10.1016/J.BEEM.2010.09.006.
Wikström, A., Dunkel, L., Wickman, S., Norjavaara, E., Ankarberg, C., & Raivio, T.
(2006). Are adolescent boys with Klinefelter syndrome androgen deficient? A
longitudinal study of Finnish 47, XXY boys. Pediatric Research, 59(6), 854.
https://doi.org/10.1203/01.pdr.0000219386.31398.c3.
Wilhelm, D., Palmer, S., & Koopman, P. (2007). Sex Determination and Gonadal
Development in Mammals. Physiological Reviews, 87(1), 1–28.
https://doi.org/10.1152/physrev.00009.2006.
Wilson, P., Sharp, C., & Carr, S. (1999). The prevalence of gender dysphoria in Scotland:
A primary care study. British Journal of General Practice, 49(449), 991–992.
https://doi.org/10.0000/ncbi.nlm.nih.gov/PMC13135.
Joselyn Francis Cortés Cortés
206
Witte, V., Savli, M., Holik, A., Kasper, S., & Lanzenberger, R. (2010). Regional sex
differences in grey matter volume are associated with sex hormones in the young
adult human brain. NeuroImage, 49(2), 1205–1212.
https://doi.org/10.1016/J.NEUROIMAGE.2009.09.046.
World Health Organization. (1993). The ICD-10. Classification of Mental and Behavioural
Disorders: Diagnostic Criteria for Research. (W. H. Organization., Ed.). Geneva.
World Health Organization. (2018). The ICD-11 Classification of Mental and Behavioural
Disorders: Diagnostic Criteria for Research. (W. H. Organization., Ed.). Geneva.
Wright, C., Schwarz, J., Dean, S., & McCarthy, M. (2010). Cellular mechanisms of
estradiol-mediated sexual differentiation of the brain. Trends in Endocrinology &
Metabolism, 21(9), 553–561. https://doi.org/10.1016/j.tem.2010.05.004.
Wylie, K., & Steward, D. (2008). A Consecutive Series of 52 Transsexual People
Presenting for Assessment and Chromosomal Analysis at a Gender Identity Clinic.
International Journal of Transgenderism, 10(3–4), 147–148.
https://doi.org/10.1080/15532730802297330.
Yadav, R., Petrunak, E., Estrada, D., & Scott, E. (2017). Structural insights into the
function of steroidogenic cytochrome P450 17A1. Molecular and Cellular
Endocrinology, 441, 68–75. https://doi.org/10.1016/j.mce.2016.08.035.
Yao, F., Huang, S., Kang, X., Zhang, W., Wang, P., & Tian, Q. (2013). CYP17A1
mutations identified in 17 Chinese patients with 17α-hydroxylase/17, 20-lyase
deficiency. Gynecological Endocrinology, 29(1), 10–15.
https://doi.org/10.3109/09513590.2012.705373.
Yaşar, P., Ayaz, G., User, S., Güpür, G., & Muyan, M. (2017). Molecular mechanism of
estrogen–estrogen receptor signaling. Reproductive Medicine and Biology, 16(1), 4–
20. https://doi.org/10.1002/rmb2.12006.
Yokota, Y., Kawamura, Y., & Kameya, Y. (2005). Callosal shapes at the midsagittal plane:
MRI differences of normal males, normal females, and GID. Annual International
Conference of the IEEE Engineering in Medicine and Biology Society, 3, 3055–3058.
BIBLIOGRAFÍA
207
https://doi.org/10.1109/IEMBS.2005.1617119.
Young, I., Kurian, K., Annink, C., Kunkler, I., Anderson, V., Cohen, B., … Steel, C.
(1999). Short Communication A polymorphism in the CYP17 gene is associated with
male breast cancer. British Journal of Cancer, 81(1), 141–143.
https://doi.org/10.1038/sj.bjc.6690663.
Zastowny, T., Lehman, A., & Dickerson, F. (1988). Klinefelter’s syndrome and
psychopathology: a case study of the combined effects of nature and nurture. The
International Journal of Psychiatry in Medicine, 17(2), 155–162.
https://doi.org/10.2190/2E5M-1YLC-DJKH-7EW8.
Zhang, H., Hamdane, D., Im, S., & Waskell, L. (2008). Cytochrome b5 inhibits electron
transfer from NADPH-cytochrome P450 reductase to ferric cytochrome P450 2B4.
The Journal of Biological Chemistry, 283(9), 5217–5225.
https://doi.org/10.1074/jbc.M709094200.
Zhang, X., Du, R., Li, S., Zhang, F., Jin, L., & Wang, H. (2014). Evaluation of copy
number variation detection for a SNP array platform. BMC Bioinformatics, 15(1), 50.
https://doi.org/10.1186/1471-2105-15-50.
Zhao, C., Dahlman, K., & Gustafsson, J. (2011). ESR2 (Estrogen Receptor 2 (ER beta)).
Atlas of Genetics and Cytogenetics in Oncology and Haematology, 13(3), 201–203.
https://doi.org/10.4267/2042/44425.
Zhou, J., Hofman, M., Gooren, L., & Swaab, D. (1995). A sex difference in the human
brain and its relation to transsexuality. Nature, 378, 68–70.
https://doi.org/10.1038/378068a0.
Zitzmann, M., Brune, M., Kornmann, B., Gromoll, J., Junker, R., & Nieschlag, E. (2001).
The CAG repeat polymorphism in the androgen receptor gene affects bone density
and bone metabolism in healthy males. Clinical Endocrinology, 55(5), 649–657.
https://doi.org/10.1046/j.1365-2265.2001.01391.x.
Zollino, M., Marangi, G., Ponzi, E., Orteschi, D., Ricciardi, S., Lattante, S., … & Zackai,
E. (2015). Intragenic KANSL1 mutations and chromosome 17q21.31 deletions:
Joselyn Francis Cortés Cortés
208
broadening the clinical spectrum and genotype-phenotype correlations in a large
cohort of patients. Journal of Medical Genetics, 52(12), 804–814.
https://doi.org/10.1136/jmedgenet-2015-103184.
Zubiaurre-Elorza, L., Junque, C., Gómez-Gil, E., & Guillamon, A. (2014). Effects of cross-
sex hormone treatment on cortical thickness in transsexual individuals. Journal of
Sexual Medicine, 11(5), 1248–1261. https://doi.org/10.1111/jsm.12491.
Zubiaurre-Elorza, L., Junque, C., Gómez-Gil, E., Segovia, S., Carrillo, B., Rametti, G., &
Guillamon, A. (2013). Cortical thickness in untreated transsexuals. Cerebral Cortex,
23(12), 2855–2862. https://doi.org/10.1093/cercor/bhs267.
Zuloaga, D., Puts, D., Jordan, C., & Breedlove, M. (2008). The role of androgen receptors
in the masculinization of brain and behavior: What we’ve learned from the testicular
feminization mutation. Hormones and Behavior, 53(5), 613–626.
https://doi.org/10.1016/j.yhbeh.2008.01.013.