i

Kode/Nama Rumpun Ilmu* :165/ Teknologi Pangan dan Gizi

LAPORAN

PENELITIAN HIBAH BERSAING

Aktivitas antioksidan Lactobacillus spp isolat feses bayi untuk pengembangan probiotik

(Aktivitas Antioksidan Lactobacillus spp Isolat Feses Bayi Secara in vivo Pada Tikus Putih Dengan Pakan Lemak Tinggi)

(Tahun ke Dua dari rencana 3 tahun)

PENGUSUL

Ir. Komang Ayu Nocianitri, M.Agr.Sc. NIDN: 0008036801 Ir. I Nengah Sujaya, M.Agr.Sc., Ph.D. Dr. Drs. Yan Ramona, M.App.Sc.

NIDN: 0031126651 NIDN: 0022106401

UNIVERSITAS UDAYANA DENPASAR

OKTOBER 2016

ii

iii

RINGKASAN

Aktivitas Antioksidan Lactobacillus spp Isolat Feses Bayi Secara in vivo Pada Tikus Putih

Dengan Pakan Lemak Tinggi

Oleh Komang Ayu Nocianitri 1#, I N Sujaya2, Yan Ramona 3

1)Jurusan Ilmu dan Teknologi Pangan - FTP, 2) PS Ilmu Kesehatan Masyarakat, Fak. Kedokteran, Universitas Udayana, 3) PS Biologi Fakultas MIPA, Unud

# Email : nocianitri68@yahoo.com

Probiotik adalah mikroorganisme hidup yang apabila diberikan pada jumlah yang tepat dapat bermanfaat bagi kesehatan saluran pencernaan (FAO. 2002). Pada awalnya, konsumsi probiotik bertujuan untuk memodulasi dan meningkatkan keseimbangan mikroba usus, akan tetapi saat ini, strain probiotik telah dikembangkan untuk merespon target fisiologis tertentu. Probiotik telah diketahui memberikan dampak menyehatkan pada individu karena dapat meningkatkan keseimbangan mikroba yang menguntungkan dalam saluran pencernaan (Fuller, 1989). Salah satu dampak menyehatkan dari probiotik adalah mempunyai aktivitas sebagai antioksidan (Sekhon, 2010; Kim, 2006ab; Gao, 2011, Basileios et al., 2011, Chu-Chyn et al., 2009).

Pola konsumsi pangan dewasa ini lebih banyak mengkonsumsi pangan siap saji (fast food) yang banyak mengandung lemak dan rendah serat. Makanan berlemak disamping dapat meningkatkan kadar kolesterol darah juga dapat menjadi sumber radikal bebas yang secara endogen dapat membentuk peroksidasi lipid di dalam tubuh. Didalam tubuh terdapat sistem antioksidan untuk melawan radikal bebas secara endogen. Peningkatan radikal bebas melebihi antioksidan endogen dalam tubuh dapat menimbulkan stres oksidatif. Keseimbangan antara radikal bebas dan antioksidan akan terganggu apabila keseimbangan mikroflora usus terganggu. Salah satu cara untuk menjaga keseimbangan mikroflora usus untuk mencegah terjadinya stress oksidatif adalah dengan konsumsi probiotik. Mikroorganisme memiliki sistem antioksidan untuk menjaga tingkat radikal bebas yang tidak beracun bagi sel (Farr dan Kogoma, 1991). Aktivitas antioksidan dari mikroorganisme merupakan salah satu cara untuk meningkatkan ketahanan terhadap stress oksidatif.

Sifat fungsional dari mikroba probiotik bersifat spesifik strain, dimana setiap strain probiotik mempunyai sifat fungsional yang berbeda. Bakteri asam laktat yang telah diisolasi dari feses bayi mempunyai potensi untuk dikembangkan sebagai probiotik, akan tetapi sifat-sifat fungsional (aktivitas antioksidan) dari probiotik tersebut perlu dieksplorasi lebih jauh.

Hasil penelitian tahun I yaitu pengujian aktivitas antioksidan dari beberapa strain Lactobacillus sp isolat feses bayi secara in vitro menunjukkan bahwa penghambatan peroksidasi lipid berkisar antara 10,12% sampai dengan 83,02%, kemampuan untuk

iv

menangkap radikal hidroksil (OH-) berkisar antara 16,50% sampai dengan 46,73% dan kemampuan untuk mengikat (mengkelat) logam Fe (Fe2+) berkisar antara 3,94% sampai dengan 44 52%. Isolat Lactobacillus sp. FBB 60 dan Lactobacillus sp. FBB 81 mempunyai aktivitas antioksidan yang tinggi secara in vitro yaitu mempunyai kemampuan penghambatan peroksidasi lipid 61,20% dan 57,01%, kemampuan untuk menangkap radikal hidroksil (OH-) 29,71% dan 29,31% dan kemampuan untuk mengikat (mengkelat) logam Fe (Fe2+ yaitu 31,54% dan 44 52%.

Penelitian tahun ke dua bertujuan untuk menguji aktivitas antioksidan dari probiotik terseleksi secara in vivo pada tikus putih dengan pakan lemak tinggi. Penelitian ini menggunakan tikus putih strain Wistar yang diberikan pakan standar dan pakan lemak tinggi dan perlakuan probiotik selama 3 minggu. Variabel yang diamati meliputi: total bakteri asam laktat dan pH pada sekum; sedangkan aktivitas antioksidan pada hati dan serum meliputi: ensim-ensim antioksidan (SOD, Gluthation Peroksidase), dan MDA (malondialdehid).

Hasil sementara diperoleh bahwa uji konfirmasi terhadap isolat Lactobacillus sp. FBB 60 dan Lactobacillus sp. FBB 81menunjukkan kedua isolat termasuk bakteri Gram positif, katalase negatif, tidak membentuk gas dengan bentuk batang berantai. Populasi isolat Lactobacillus sp. FBB 60 pada OD 2,514 sebesar 3,03 x 1010 cfu/ml dan isolat Lactobacillus sp. FBB 81 pada OD 2,629 sebesar 2,74 x 1010 cfu/ml. Perlakuan Lactobacillus sp. FBB60 dengan pakan lemak tinggi dapat menurunkan kadar MDA 2,66% pada hati dan 2,70% pada serum, sedangkan perlakuan Lactobacillus sp. FBB81 menurunkan kadar MDA 8,81% pada hati dan 9,46% pada serum. Aktivitas enzim GPx meningkat 13,17% dengan pemberian Lactobacillus sp. FBB60 dan 24,67% pada Lactobacillus sp. FBB81. Hasil ini menandakan bahwa kedua isolat mempunyai aktivitas sebagai antioksidan in vivo dengan menghambat peroksidasi lipid. Kata kunci : probiotik, antioksidan, lactobacillus

v

PRAKATA

Puji syukur penulis panjatkan ke hadirat Tuhan Yang Maha Kuasa karena berkat

rahmat-Nya laporan penelitian yang berjudul “ Aktivitas antioksidan Lactobacillus spp isolat

feses bayi untuk pengembangan probiotik” ini dapat diselesaikan tepat pada waktunya.

Melalui penelitian ini diharapkan dapat diperoleh kandidat probiotik asli Indonesia yang

memiliki potensi sebagai strain probiotik yang dapat dikembangkan sebagai makanan

fungsional (functional food).

Dalam mengerjakan penelitian ini penulis memperoleh banyak bantuan dan dukungan dari

berbagai pihak, oleh sebab itu pada kesempatan ini penulis ingin mengucapkan terima kasih

kepada :

1. Kementerian Riset, Teknologi dan Pendidikan Tinggi, yang telah membiayai penelitian

ini.

2. Bapak Prof. Dr. Ir. I Nyoman Gde Antara, M.Eng., selaku Kepala Lembaga Penelitian

dan Pengabdian kepada Masyarakat, Universitas Udayana yang telah mendanai penelitian

ini melalui alokasi dana Hibah Bersaing

3. Bapak Dr. Ir. I D.G. Mayun Permana, MS selaku Dekan Fakultas Teknologi Pertanian,

Universitas Udayana atas segala dukungan yang diberikan

4. Staf UPT. Laboratorium Biosains dan Bioteknologi beserta seluruh pihak yang turut

berperan dalam penelitian dan penyusunan laporan ini yang tidak bisa penulis sebutkan

satu per satu.

Peneliti menyadari laporan penelitian ini masih jauh dari sempurna, untuk itu penulis

sangat mengharapkan kritik dan saran yang membangun dari pembaca untuk

penyempurnaannya. Penulis berharap semoga laporan penelitian ini dapat memberikan

sumbangan bagi bidang ilmu pengetahuan.

Bukit Jimbaran, 9 Agustus 2016

Tim Peneliti,

vi

DAFTAR ISI

Hal

JUDUL ……………………………………………………………………….. i

HALAMAN PENGESAHAN ………………………………………………... ii

RINGKASAN ………………………………………………………………... iii

PRAKATA …………………………………………………………………… v

DAFTAR ISI ………………………………………………………………... vi

BAB I PENDAHULUAN …………………………………………………... 1

BAB II KAJIAN PUSTAKA ……………………………………………….. 4

BAB III TUJUAN DAN MANFAAT …..…………………………………... 11

BAB IV. METODOLOGI PENELITIAN …………………………………... 12

BAB V. HASIL YANG TELAH DICAPAI …………………………………. 17

BAB VI. RENCANA TAHAP BERIKUTNYA .............................................. 18

BAB VII. KESIMPULAN DAN SARAN …………………………………… 18

DAFTAR PUSTAKA ………………………………………………………... 19

1

BAB I. PENDAHULUAN

1. Latar Belakang

Pola konsumsi pangan dewasa ini lebih banyak mengkonsumsi pangan siap saji

(fast food) yang banyak mengandung lemak dan rendah serat. Pola makan yang

mengandung lemak tinggi, khususnya yang mengandung kolesterol tinggi dan lemak

jenuh, memberikan peluang meningkatkan kadar kolesterol darah, umumnya

meningkatkan kemungkinan seseorang menderita arterosklerosis. Makanan berlemak

disamping dapat meningkatkan kadar kolesterol darah juga dapat menjadi sumber

radikal bebas yang secara endogen dapat membentuk peroksidasi lipid di dalam tubuh.

Dewasa ini pangan fungsional berkembang dengan pesat, dimana pangan yang

dikonsumsi diharapkan tidak hanya dapat memenuhi kebutuhan zat nutrisi, tetapi juga

dapat menstimulasi salah satu fungsi khusus dalam kesehatan individu. Bakteri asam

laktat (BAL) telah banyak dimanfaatkan oleh industri pangan dalam menciptakan

produk pangan fungsional untuk memelihara kesehatan saluran pencernaan manusia,

yang dikenal dengan istilah probiotik. Probiotik adalah mikroorganisme hidup yang

apabila diberikan pada jumlah yang tepat dapat bermanfaat bagi kesehatan saluran

pencernaan (FAO. 2002).

Pada awalnya, konsumsi probiotik bertujuan untuk memodulasi dan

meningkatkan keseimbangan mikroba usus, akan tetapi saat ini, strain probiotik telah

dikembangkan untuk merespon target fisiologis tertentu. Probiotik telah diketahui

memberikan dampak menyehatkan pada individu karena dapat meningkatkan

keseimbangan mikroba yang menguntungkan dalam saluran pencernaan (Fuller, 1989).

Beberapa dampak menyehatkan dari probiotik antara lain: penanggulangan diare

(Salazar et al., 2007; Pant et al., 2007 ; Tabbers dan Benninga, 2007; Collado et al.,

2009 ), menstimulasi sistem kekebalan tubuh (Isolauri et al., 2001 ; Isolauri dan

Salminen, 2008), mencegah kanker kolon dan usus (Pato, 2003; Liong, 2008),

penanggulangan dermatitis atopik pada anak-anak (Betsi et al., 2008; Torii et al., 2010),

menurunkan kadar kolesterol darah (Ooi et al., 2010; Kumar et al., 2012; Lee et al.,

2

2009),dan sebagai antioksidan (Sekhon, 2010; Kim, 2006ab; Gao, 2011, Basileios et al.,

2011, Chu-Chyn et al., 2009).

Radikal bebas dapat merusak makromolekul seperti merusak lipid membran sel,

DNA, protein dan menyebabkan stres oksidatif sel (Valko et al, 2006). Didalam tubuh

terdapat sistem antioksidan untuk melawan radikal bebas secara endogen. Antioksidan

endogen adalah antioksidan yang dihasilkan oleh tubuh yang terdiri atas enzim-enzim

superoksida dismutase (SOD), glutation peroksidase (GPx) atau glutation reduktase

(GR) serta enzim katalase (CAT) dan antioksidan non enzimatik seperti glutation

(GSH), transferin, asam urat dan lain lain. Peningkatan radikal bebas melebihi

antioksidan endogen dalam tubuh dapat menimbulkan stres oksidatif. Keseimbangan

antara radikal bebas dan antioksidan akan terganggu apabila keseimbangan mikroflora

usus terganggu. Salah satu cara untuk menjaga keseimbangan mikroflora usus untuk

mencegah terjadinya stress oksidatif adalah dengan konsumsi probiotik.

Mikroorganisme memiliki sistem antioksidan untuk menjaga tingkat radikal bebas yang

tidak beracun bagi sel (Farr dan Kogoma, 1991). Aktivitas antioksidan dari

mikroorganisme merupakan salah satu cara untuk meningkatkan ketahanan terhadap

spesies oksigen reaktif (ROS).

Bakteri asam laktat (BAL) banyak dipergunakan sebagai probiotik. Disisi lain,

probiotik yang beredar di Indonesia pada saat ini kebanyakan dari strain yang bukan asli

Indonseia (import). Hal ini memacu penelitian untuk menggali potensi BAL dari sumber

alam Indonesia untuk meningkatkan derajat kesehatan penduduk Indonesia. Serangkaian

penelitian telah dilakukan untuk mengisolasi BAL dari feses bayi sehat (23 strain) yang

mempunyai potensi sebagai probiotik (Koleksi UPT laboratorium terpadu biosain dan

bioteknologi, Unud). Beberapa BAL yang telah diisolasi mempunyai ketahanan yang

baik pada kondisi saluran pencernaan seperti pH rendah (pH 2, 3, dan 4) dan empedu

(deoksi kolat), mampu melewati kondisi usus dengan kandungan 0,4 mM sodium deoksi

kolat dan pankreatin sehingga isolat ini mempunyai potensi sebagai probiotik (Sujaya et

al., 2008 a,b: Febianingsih et al., 2007; Marsia et al., 2007 dan Nocianitri et al., 2011)

Sifat fungsional dari mikroba probiotik bersifat spesifik strain, dimana setiap

strain probiotik mempunyai sifat fungsional yang berbeda. Bakteri asam laktat yang

3

telah diisolasi dari feses bayi mempunyai potensi sebagai probiotik isolat lokal, akan

tetapi sifat-sifat fungsional (aktivitas antioksidan) dari probiotik tersebut perlu

dieksplorasi lebih jauh, sehingga dapat dipergunakan untuk pengembangan pangan

fungsional.

4

BAB II. KAJIAN PUSTAKA

1. Probiotik

Lilley dan Stiwel pada tahun 1965 pertama kali mengemukakan istilah probiotik

sebagai sejenis senyawa yang dihasilkan oleh satu organism yang mampu menstimulasi

pertumbuhan organisme lain (Neha et al., 2012). Probiotik didefinisikan sebagai

mikroorganisme hidup yang apabila dikonsumsi dalam jumlah yang cukup dapat

memberikan manfaat kesehatan bagi yang mengkonsumsinya FAO (2002). Menurut

Fuller (1989), probiotik adalah bakteri hidup suplemen bahan makanan yang

memberikan efek menguntungkan bagi manusia dengan menjaga keseimbangan bakteri

menguntungkan di dalam saluran pencernaan. Pengertian-pengertian tentang probiotik

menyatakan bahwa baik strain maupun produk dari bakteri probiotik tersebut telah

terbukti secara ilmiah aman dan dapat memberikan manfaat bagi kesehatan (Salminen et

al., 2004). Probiotik bermanfaat bagi kesehatan karena mikroba tersebut dapat

meningkatkan keseimbangan mikroba yang menguntungkan dalam saluran pencernaan

(Fuller, 1989). Bahan makanan yang mengandung probiotik juga tergolong pangan

fungsional jika secara nyata memiliki pengaruh terhadap satu atau lebih fungsi tubuh

sehingga memberikan efek kesehatan ataupun pengobatan pada manusia diluar nilai

nutrisi yang dimiliki (Salminen et al. 2004).

Probiotik umumnya dari golongan bakteri asam laktat (lactobacilli dan

bifidobacteria) karena bakteri ini telah diterima sebagai food grade bacteria dan telah

dianggap sebagai bakteri yang aman (GRAS, generally recognized as safe) karena

dipergunakan dalam produksi bahan pangan terfermentasi secara alamiah. Penelitian

tentang bakteri asam laktat dalam saluran pencernaan manusia menunjukkan bahwa

lactobacilli dan bifidobacteria merupakan spesies BAL dominan disamping itu Weisella

spp., Pediococcus spp, dan Leuconostoc spp. merupakan populasi yang sangat terbatas

(Vaughan et al., 2002; Sujaya et al., 2003a).

Produk probiotik bakteri yang beredar di pasar secara garis besar tujuan

penggunaannya adalah: (1) probiotik untuk mencegah diarrhea: Lactobacillus

acidophilus dikombinasikan dengan Lactobacillus bulgaricus, Lactobacillus. rhamnosus

5

GG, Enterococcus faecium SF68i dan Bifidobacterium longum, Saccharomyces

boulardi; (2) probiotik untuk gastroenteritis akut: L. rhamnosus GG, Lactobacillus

reuteri, Lactobacillus casei strain Shirota, Enterococcus faecium SF68 dan Sacc.

boulardi; (3) probiotik untuk traveller’s diarrhea: L. acidophilus, L. acidophilus

dikombinasikan dengan L. bulgaricus, Lactobacillus fermentum strain KLD, L.

rhamnosus GG dan Sacc. boulardi (Marteau et al., 2001).

Pada awal perkembangan era probiotik, L.casei strain Shirota (Yakult) serta L.

rhamnosus GG, merupakan dua strain lactobacilli yang mengawali perkembangan

probiotik bakteri. Seiring dengan kemajuan teknologi, beberapa strain baru

dikembangkan sebagai probiotik dengan harapan dapat memberikan berbagai

keunggulan spesifik pada aspek kesehatan (Klaenhammer dan Kullen, 1999). Beberapa

kriteria yang diharapkan dalam pengembangan probiotik baru seperti: (1) kecocokan

(untuk probiotik konsumsi manusia sebaiknya diisolasi dari saluran pencernaan manusia

sehingga mengurangi resiko toksisitasnya); (2) kecocokan dalam teknologi

pengembangan/produksi dimana diharapkan mudah diproduksi secara masal/skala besar,

viabilitas yang tinggi, tidak mengganggu nilai sensoris bahan pangan apabila diikutkan

dalam bahan pangan tertentu, stabil secara genetis dan memungkinkan dilakukan

rekayasa genetika; (3) kemampuan bersaing seperti mampu bertahan dan berkembang

biak di dalam saluran pencernaan, tahan terhadap kondisi saluran pencernaan (asam

empedu, pH rendah), mampu bersaing dengan flora normal di dalam saluran pencernaan,

dan mampu melakukan adhesi pada sel epitel saluran pencernaan; (4) efek fungsional

seperti mampu menimbulkan dampak menyehatkan, antagonis terhadap patogen,

produksi zat antimikrobial, imunstimulator, anti karsinogenik dan anti mutagenik,

produksi bioaktif (enzyme, vaccines, peptida) (Klaemhammer dan Kullen, 1999).

Telah diketahui bahwa probiotik memberikan dampak menyehatkan pada

individu yang mengkonsumsinya. Beberapa aspek menyehatkan probiotik antara lain:

penanggulangan diare (Salazar et al., 2007; Pant et al., 2007 ; Tabbers dan Benninga,

2007; Collado et al., 2009 ), menstimulasi sistem kekebalan (immune) tubuh (Isolauri et

al., 2001 ; Isolauri dan Salminen, 2008), menurunkan kadar kolesterol (Ooi et al., 2010;

Kumar et al., 2012; Lee et al., 2009), pencegahan kanker kolon dan usus (Pato, 2003;

6

Liong, 2008), penanggulangan dermatitis atopik pada anak-anak (Betsi et al., 2008;

Torii et al., 2010), dan sebagai antioksidan (Sekhon, 2010; Kim, 2006; Gao, 2011,

Basileios et al., 2011, Chin-Chyn et al., 2009). Dengan berbagai aspek menyehatkan

(efek fungsional) dari probiotik, maka memberi potensi baru dalam pengembangan

makanan fungsional

2.2 Aktivitas antioksidan dari probiotik

Antioksidan merupakan senyawa yang diperlukan oleh tubuh untuk melindungi

sel-sel tubuh dari kerusakan yang diakibatkan oleh radikal bebas. Radikal bebas adalah

molekul yang memiliki satu atau lebih elektron yang tidak berpasangan pada orbit

terluarnya. Dalam upaya penstabilan diri atau pemulihan keganjilan elektronnya,

elektron pada radikal bebas tersebut secara cepat ditransfer atau menarik elektron

makromolekul biologis sekitarnya seperti asam lemak jenuh, protein, polisakarida, asam

nukleat, dan asam deoksiribonukleat. Radikal bebas sangat diperlukan bagi

kelangsungan beberapa proses fisiologis dalam tubuh terutama untuk transportasi

elektron. Bila jumlah radikal bebas dalam tubuh lebih tinggi dari jumlah sistem

antioksidan maka akan terjadi stress oksidatif. Radikal bebas dapat merusak

makromolekul seperti merusak lipid membran sel, DNA, protein dan menyebabkan stres

oksidatif sel (Valko et al, 2006). Makromolekul yang teroksidasi akan terdegradasi dan

jika makromolekul tersebut merupakan bagian dari sel atau organelnya maka akan

berakibat pada kerusakan sel (Halliwell & Gutteridge, 1999)

Radikal bebas dapat berasal dari dalam tubuh (endogenus) maupun luar tubuh

(eksogenus). Secara endogen radikal bebas merupakan hasil sampingan proses

metabolisme. Radikal bebas secara endogen dapat berasal dari makanan sumber lipid

yang dapat membentuk peroksidasi lipid di dalam tubuh, maupun pada keadaan kondisi

stress, sakit dan olah raga yang berlebihan. Menurut Hwang et al. (2005) yang termasuk

kedalam radikal bebas endogenus adalah superoksida (O-), hidroksil (OH-), hidrogen

peroksida (H2O2), dan peroksinitrit. sedangkan radikal bebas eksogenus dapat berasal

dari radiasi, asap rokok, kabut asap, emisi kendaraan, NO2 dan NO. Peningkatan radikal

7

bebas melebihi antioksidan endogen dalam tubuh dapat menimbulkan stres oksidatif,

sehingga menyebabkan terjadinya penurunan antioksidan.

Di dalam tubuh terdapat mekanisme antioksidan atau anti radikal bebas secara

endogenik, tetapi bila jumlah radikal bebas dalam tubuh berlebih maka dibutuhkan

antioksidan yang berasal dari sumber alami atau sintetik dari luar tubuh. Berdasarkan

sumbernya antioksidan dibagi dua yaitu antioksidan endogen dan antioksidan eksogen.

Antioksidan endogen adalah antioksidan yang dihasilkan oleh tubuh yang terdiri atas

enzim-enzim superoksida dismutase (SOD), glutation peroksidase (GPx) atau glutation

reduktase (GR) serta enzim katalase (CAT) dan antioksidan non enzimatik seperti

glutation (GSH), transferin, asam urat dan lain lain. Antioksidan eksogen adalah

antioksidan yang dibutuhkan dari luar seperti senyawa senyawa flavonoid, vitamin C,

vitamin E dan karotenoid yang banyak ditemukan dalam sayur-sayuran dan buah-buahan

(Heinonen and Albanes, 1994). Mekanisme antioksidan dalam menangkal radikal bebas

adalah dengan cara: (1) mengkatalisir pemusnahan radikal bebas dalam sel oleh enzim

superoksida dismutase (SOD), katalase (CAT), gluthathion peroksidase (GPx),

gluthathion reduktase (GR), (2) pengikatan ion logam seperti Fe2+ dan Cu2+ oleh

antioksidan logam transisi terikat protein seperti: transferin, haptoglobin, hemopeksin

dan seruloplasmin, dan (3) pembersihan spesies oksigen reaktif (ROS) oleh antioksidan

dengan senyawa-senyawa yang memiliki berat molekul kecil yang dapat menerima dan

memberi elektron dari atau ke radikal bebas, sehingga membentuk senyawa baru yang

stabil seperti: glutation tereduksi (GSH), asam askorbat, bilirubin, α-tokoferol dan asam

urat (Halliwell & Gutteridge, 1999).

Konsumsi probiotik atau produk-produk pangan yang mengandung probiotik

merupakan salah satu cara ideal untuk menjaga keseimbangan mikroflora usus. Apabila

keseimbangan mikroflora usus terganggu, maka keseimbangan antara radikal bebas dan

antioksidan juga terganggu dan dampaknya adalah terjadi stress oksidatif. Bakteri

probiotik menunjukkan aktivitas antioksidan melalui mekanisme: (1) memperkuat

pertahanan seluler dengan mensekresikan enzim antioksidan; (2) melepaskan dan

memacu produksi GSH yaitu antioksidan nonenzimatik utama dan penangkap radikal

8

bebas; (3) meningkatkan produksi biomolekul antioksidan tertentu, seperti EPSS, dan (4)

pengikatan ion logam (Basileios et al., 2011).

Superoksida dismutase (SOD) merupakan enzim antioksidan endogen yang

menjadi lini pertahanan pertama antioksidan tubuh dalam melindungi sel dari radikal

bebas (Fridovich 1995). Superoxide dismutase (SOD) merupakan enzim antioksidan

endogen yang paling efektif dalam mengkatalisis dan mengkonversi radikal bebas anion

superoksida menjadi molekul oksigen dan hidrogen peroksida. SOD bekerja melalui

sistem pertahanan preventif, menghambat atau merusak proses pembentukan radikal

bebas. Spesies probiotik mempunyai kemampuan dalam memproduksi dan melepaskan

SOD. Lactobacillus plantarum dan Lactococcus lactis mampu memproduksi dan

melepaskan SOD dan menunjukkan efek anti inflamasi dalam TNBS kolitis model

(Basileios et al., 2011). Lactobacillus casei Zhang mampu meningkatkan aktivitas SOD

dan GSH-Px pada hati dan serum tikus hyperlipidemik (Zhang et al., 2010). Penelitian

lain menunjukkan bahwa Lactobacillus gasseri mampu menghasilkan Mn-SOD yang

dapat mengurangi radang usus pada tikus (Caroll et al., 2007). Dua strain Lactobacillus

fermentum E-3 dan E-18 dan Streptococcus thermophilus menunjukkan aktivitas

antioksidan yang signifikan karena mampu memproduksi SOD (Kullisaar et al., 2002

dan Chang and Hassan, 1997).

Molekul antioksidan non-enzimatik intraseluler yang paling penting adalah

glutathione (GSH). Glutathione adalah tripeptide yang berisi grup sulfhidril (-SH)

(glutamin, sistein, and glisin) dan sangat efisien dalam mendetoksifikasi spesies reaktif

oksigen dan peroksida. Dalam reaksi berantai oksidatif, GSH dikonversi menjadi bentuk

glutathione disulfida teroksidasi (GSSG). Salah satu fungsi yang paling penting dari

GSH adalah bertindak sebagai penangkap radikal hidroksil (OH.) apabila radikal

hidroksil tidak dapat dihilangkan dengan reaksi enzimatik (Pompella et al., 2003). Strain

probiotik bifidobacterium dan lactococcus dapat langsung menghasilkan atau memacu

pelepasan glutathione ke usus, sehingga bisa memiliki nilai terapi yang potensial

(Musenga et al., 2007). Strain probiotik Lactobacillus fermentum dapat memproduksi

GSH dan prekursor dipeptida γ-Glu-Sis yang memfasilitasi pemulihan peradangan

jaringan pada model TNBS kolitis tikus secara in vitro (Peran et al., 2006). Penelitian

9

lain menunjukkan bahwa jumlah GSH meningkat pada pankreas setelah pemberian

probiotik Lactobacillus acidophilus W70, L. Casei W56, L. salivarius W24,

Lactococcus lactis W58, Bifidobacterium bifidum W23, dan B. lactis W52 (Lutgendorff

et al., 2008).

Probiotik dapat menunjukkan aktivitas antioksidan dengan memproduksi

senyawa antioksidan tertentu untuk mengurangi stres oksidatif yaitu eksopolisakarida

(EPS). Eksopolisakarida merupakan rantai panjang polisakarida terdiri dari gula atau

turunan gula, seperti galaktosa, glukosa, dan rhamnosa. Bakteri probiotik melepaskan

EPS ke lingkungan sekitarnya untuk melindungi diri mereka dari kondisi yang tidak

menguntungkan seperti pada pH dan suhu yang ekstrim. Kodali dan Sen (2008)

melaporkan bahwa probiotik bakteri Bacillus coagulans RK-02 mensintesis EPS

ekstraselular dan EPS ini menunjukkan aktivitas antioksidan dan menunjukkan

penangkapan radikal bebas secara signifikan bila dibandingkan dengan standar

antioksidan seperti vitamin C dan vitamin E secara in vitro.

Probiotik selain memproduksi zat dengan aktivitas antioksidan dan penangkapan

radikal bebas juga menunjukkan aktivitas pengikatan ion logam. Ion logam berhubungan

dengan patogenesis berbagai penyakit kronis seperti penyakit jantung koroner,

karsinogenesis, dan arthritis, terutama dengan memacu produksi radikal bebas melalui

reaksi Fenton. Ion logam transisi dapat memulai peroksidasi lipid dan memulai reaksi

berantai dengan memecah hidroperoksida (ROOH) menjadi peroxyl (ROO*) dan radikal

Alkyoxyl (RO*). Ion besi dan ion tembaga merupakan ion yang sangat reaktif dan

memainkan peran pada reaksi berantai radikal bebas. Lin dan Yen (1999) melaporkan

bahwa Streptococcus thermophilus 821 dan Bifidobacterium longum memiliki

kemampuan tinggi dalam mengikat logam Cu2+ dan Fe2+. Amanatidou et al. (2001) dan

Lee et al. (2005) melaporkan bahwa Lactobacillus sake dan L. casei KCTC 3260

mempunyai kemampuan dalam mengikat ion logam Fe.

2.3. Penelitian yang telah dilakukan

Penelitian yang telah dilakukan untuk mengisolasi BAL dari feses bayi sehat

mendapatkan 23 isolat yang mempunyai potensi sebagai probiotik (Koleksi UPT

10

laboratorium terpadu biosain dan bioteknologi, Unud). Isolat BAL yang telah diisolasi

mempunyai ketahanan yang baik pada kondisi saluran pencernaan seperti pH rendah (pH

2, 3, dan 4) dan empedu (deoksi kolat), mampu melewati kondisi usus dengan

kandungan 0,4 mM sodium deoksi kolat dan pankreatin sehingga isolat ini mempunyai

potensi sebagai probiotik

Tabel 1. Peta jalan penelitian sifat fungsional probiotik isolat asli Indonesia

• Penelitian yang telah dilakukan: Uji in vitro isolat bakteri asam laktat: - Tahan terhadap pH rendah - Stabil terhadap garam empedu - Menghambat patogen - Mampu menempel pada usus

Luaran: 23 Isolat Bakteri asam laktat yang potensial sebagai probiotik

• Penelitian yang akan dilakukan 1. Penelitian Tahun I Uji aktivitas antioksidan Isolat probiotik secara in vitro Variabel yang diamati: • Penghambatan peroksidasi lipid • aktivitas penangkapan radikal hidroksil • aktivitas pengikatan ion Fe

Luaran: Satu isolat probiotik yang mempunyai aktivitas antioksidan tinggi secara in vitro

2. Penelitian Tahun II Aktivitas antioksidan isolat probiotik terseleksi secara in

vivo pada tikus putih dengan pakan lemak tinggi. Variabel Yang diamati: • Total BAL • pH Sekum • Aktivitas antioksidan (SOD, GPx,) dan MDA pada hati

Probiotik yang mempunyai aktivitas antioksidan tinggi secara in vivo

3. Penelitian Tahun III Pengembangan probiotik dalam bentuk mikroenkapsulasi

serta ketahanan resuksiasinya Variabel Yang diamati: • Viabilitas isolate probiotik • Ketahanan probiotik pada berbagai suhu

Produk mikroenkapsulasi probiotik yang mempunyai aktivitas antioksidan serta cara penyajiannya

11

BAB III. TUJUAN DAN MANFAAT

1.1. Tujuan Penelitian

BAL yang disolasi dari feses bayi merupakan strain BAL yang sangat potensial

untuk dikembangkan menjadi probiotik baru, akan tetapi sifat-sifat fungsional dari

probiotik tersebut perlu dieksplorasi lebih jauh. Tujuan dari penelitian ini adalah untuk

mengetahui aktivitas antioksidan dari probiotik isolat feses bayi secara in vivo pada tikus

putih dengan pakan lemak tinggi.

1.2. Manfaat Penelitian

Potensi bioteknologi dan kesehatan BAL yang diisolasi dari feses bayi, dapat

memberi potensi baru pada probiotik isolat lokal dalam pengembangan pangan

fungsional untuk meningkatkan derajat kesehatan masyarakat Indonesia.

12

BAB IV. METODOLOGI PENELITIAN

4.1. Subyek penelitian

Subyek yang dipergunakan pada penelitian ini adalah isolat probiotik

Lactobacillus sp. FBB 60 dan Lactobacillus sp. FBB 81 koleksi dari UPT Lab. Terpadu

Biosain dan Bioteknologi Unud.

Pelaksanaan penelitian

Penelitian ini menggunakan Rancangan Acak Kelompok (RAK), dengan 3

perlakuan yaitu:

Pakan standar

PL: Pakan lemak tinggi

PL + P1 : Pakan lemak tinggi dan 0,5 ml probiotik Lactobacillus sp. FBB 60

PL + P2 : Pakan lemak tinggi dan 0,5 ml probiotik Lactobacillus sp. FBB 81

Penelitian ini menggunakan tikus putih strain Wistar dengan berat kurang lebih

80 g. Setiap perlakuan terdiri dari 6 ekor tikus yang masing-masing diberikan pakan

sesuai perlakuan. Komposisi pakan standar dan pakan lemak tinggi dapat dilihat pada

Tabel 2. Pada masa aklimatisasi tikus diberikan pakan standar selama 1 minggu,

dilanjutkan dengan pemberian pakan lemak tinggi dan perlakuan probiotik selama 4

minggu. Skema penelitian dengan hewan coba terdapat pada Gambar 2.

Keterangan: P1: strain probiotik Lactobacillus sp. FBB 60 P2 : strain probiotik Lactobacillus sp. FBB 81

Gambar 1. Skema penelitian dengan hewan coba.

Pakan standar

Pakan standar

Pakan standar

Pakan standar

Perlakuan sampling

Pakan lemak tinggi

Pakan standar

1 minggu 4 minggu

Pakan lemak tinggi + P1

Pakan lemak tinggi + P2

13

Kandidat probiotik diambil sebanyak satu loop ose dan diinokulasikan kedalam 5

ml media MRS broth. Tabung reaksi diinkubasi aerob selama 24 jam pada suhu 370C.

Biakan yang telah tumbuh pada 5ml media MRS Broth divortex (untuk mendapatkan

biakan yang homogen), kemudian diambil sebanyak 1 ml dimasukkan ke dalam

eppendrof dan disentrifugasi dengan kecepatan 5000 rpm selama 5 menit untuk

memisahkan massa sel dan supernatan. Kemudian supernatan dibuang dan massa sel

yang diperoleh dicuci sebanyak 2 kali dengan larutan salin (NaCl 0,85%) untuk

menghilangkan sisa-sisa media. Pencucian dilakukan dengan menambahkan 1ml salin

pada massa sel, divortex hingga homogen, disentrifugasi dengan kecepatan 5000 rpm

selama 5 menit. Pada tahap akhir, massa sel disuspensikan dengan salin sehingga

didapatkan konsentrasi suspensi +109sel/ml

Tabel 2. Komposisi Pakan (g/kg) AOAC, 1990

Komponen Pakan standar (1) Pakan tinggi lemak Kasein 100 100 Minyak jagung 80 - Lemak Babi - 100 Campuran Mineral 50 50 Campura vitamin 10 10 Selulosa (CMC) 10 10 Air 50 50 Pati jagung 700 680

Pemberian probiotik pada tikus putih dan pengambilan sampel

Suspensi bakteri probiotik yang diperoleh diberikan pada tikus putih dengan

metode oral gavage yaitu dengan cara memberikan suspensi sebanyak 0,5 ml pada tikus

putih sesuai perlakuan dengan menggunakan sonde. Sebagai kontrol tikus putih lainnya

diberikan salin. Perlakuan ini diberikan sekali dalam sehari selama 4 minggu (pada jam

12.00-13.00 WITA), setelah pemberian makan pada tikus putih. Berat badan tikus

ditimbang setiap hari selama pemberian perlakuan.

Pengambilan sampel dilakukan setelah 3 minggu perlakuan. Tikus dimatikan

dengan dibius menggunakan kloroform 10%, lalu abdomen tikus dibedah, organ hati dan

14

sekum diambil untuk dinalasis selanjutnya. Organ hati terlebih dahulu dicuci dengan

larutan fisiologis salin. Sebanyak 10% jaringan hati dalam larutan fisiologis dihancurkan

pada glass homogenizer dingin, kemudian homogenate disentrifuse pada suhu 4oC

dengan kecepatan 4000 x g selama 15 menit. Supernatan disimpan pada suhu -80oC

sampai siap untuk dianalisis.

Variabel yang diamati

Pada penelitian tahap ini variabel yang diamati pada sekum tikus putih meliputi:

total bakteri asam laktat dan pH ; sedangkan aktivitas antioksidan pada hati dan serum

meliputi: ensim-ensim antioksidan (SOD, Gluthation Peroksidase), dan MDA

(malondialdehid).

1. Total Bakteri asam laktat pada sekum tikus

Isi sekum dikeluarkan dan ditampung dalam tabung steril yang berisi larutan

saline (NaCl 0,85%) 9 ml (pengenceran 10-1) dan dihomogenkan. Selanjutnya 0,1 ml

suspensi isi sekum dimasukkan ke dalam tabung pengencer yang berisi 0,9 ml salin,

sehingga didapat pengenceran 10-2, divortex hingga homogen kemudian diencerkan

lebih lanjut sampai pengenceran 10-6. Penghitungan total populasi BAL dilakukan

dengan mengambil 0,1ml sampel yang telah diencerkan (pengenceran 10-3-10-6) disebar

pada permukaan media MRS Agar yang telah ditambah Bromo Cresol Purple (BCP),

kemudian diinkubasi secara anaerob selama 24 jam pada suhu 37o C dengan

menggunakan Anaerobic gas pouch dalam anerobic chamber. Koloni bakteri yang

tumbuh dihitung menggunakan metode pengenceran dengan asumsi bahwa satu koloni

yang tumbuh berasal dari satu sel. Total populasi bakteri didapatkan dengan mengalikan

jumlah koloni yang tumbuh dengan faktor pengenceran (Fardiaz, 1993).

2. Pengukuran pH pada sekum

Isi sekum diukur pHnya menggunakan pH meter (TOA ion meter IM 40S) yang

sebelumnya telah dikalibrasi dengan buffer pH 4 dan pH 7. Isi sekum yang telah

diencerkan sebanyak 1 kali (1:1), kemudian dihomogenkan dengan divortex. Selanjutnya

pH isi sekum diukur dengan mencelupkan elektroda pH meter ke dalam sampel dan

hasilnya dicatat.

15

3. Analisis Kadar MDA pada serum dan Hati Tikus (nmol/mg)

Preparasi sampel dari organ hati dilakukan mengikuti Singh et al. (2002).

Sebanyak 0,5 ml supernatan hati atau serum ditambah 2,0 ml HCl dingin (0,25 N) yang

mengandung 15% TCA, 0,38% TBA dan 0,5% BHT. Campuran dipanaskan 80oC

selama satu jam. Setelah dingin, campuran disentrifus pada 3500 rpm selama 10 menit.

Absorbansi supernatan diukur pada 532 nm. Sebagai larutan standar digunakan

tetraetoksipropana (TEP).

4. Analisis Aktivitas Enzim Superoksida Dismutase (SOD) Hati Tikus (%)

Aktivitas superoksida dismutase (SOD) diukur dengan menggunakan Superoxide

Dismutase (SOD) activity assay Kit (BioVision K335-100) dan cara kerjanya mengikuti

prosedur yang terdapat pada Kit yang dipergunakan.

Persiapan larutan uji meliputi:

1. Larutan kerja WST: 1 ml WST dilarutkan dengan 19 ml Assay buffer.

2. Larutan kerja enzim: larutan enzim disentrifuse selama 5 detik kemudian

dicampur dengan baik dengan menggunakan pipet. Larutkan 15µL larutan enzim

dengan 2,5 ml dilution buffer.

Pengujian aktivitas enzim dilakukan dengan membuat 4 jenis campuran larutan

yaitu: sampel, blanko 1, blanko 2 dan blanko 3. Larutan sampel terdiri dari 20 µL

sampel, 200 µL larutan kerja WST, dan 20 µL larutan kerja enzim. Blanko 1 terdiri dari

20 µL dionized water (dd H2O), 200 µL larutan kerja WST, dan 20 µL larutan kerja

enzim. Blanko 2 terdiri dari 20 µL sampel, 200 µL larutan kerja WST, dan 20 µL

dilution buffer. Blanko 3 terdiri dari 20 µL dionized water (dd H2O), 200 µL larutan

kerja WST, dan 20 µL dilution buffer. Keempat campuran diinkubasi pada suhu 37oC

selama 20 menit dan absorbansi diukur pada panjang gelombang 450 nm menggunakan

microplate reader. Aktivitas enzim SOD (% tingkat penghambatan) dihitung dengan

rumus:

(A B1 – A B3) – (A S – A B2) Tingkat penghambatan (%) = --------------------------------------- X 100% ……….. (4)

(A B1 – A B3)

16

Keterangan: A = Absorbansi B = Blanko S = Sampel

5. Aktivitas Enzim Glutation Peroksida (GPx) Hati Tikus (U/mg)

Aktivitas enzim Glutation Peroksida (GPx) diukur dengan menggunakan

Glutathione Peroxidase Activity Colorimetric Assay Kit (BioVision) dan cara kerjanya

mengikuti prosedur yang terdapat pada Kit yang dipergunakan.

Pembuatan kurva standar NADPH:

Kurva standar dibuat dengan larutan standar 1 mM NADPH (25 µL larutan

NADPH 40 mM ditambahkan 975 µL d H2O). Larutan standar 1 mM NADPH dipipet

berturut-turut 0 µL, 20 µL, 40 µL, 60 µL, 80 µL dan 100 µL dan ditambahkan assay

buffer berturut –turut 100 µL, 80 µL, 60 µL, 40 µL, 20 µL, dan 0 µL. Absorbansi diukur

pada panjang gelombang 340 nm dan plot dalam bentuk kurva standar dengan

persamaan garis lurus.

Persiapan sampel :

Sampel hati yang telah dihancurkan sebanyak 0,1 g ditambahkan 0,2 ml assay

buffer dingin dicampur sempurna dengan cara divortek. Sampel disentrifuse dengan

kecepatan 10000 g selama 5 menit pada suhu 4oC. Supernatan diambil sebanyak 20 – 50

µL dimasukkan kedalam 96-well plate dan ditambahkan assay buffer sampai volume 50

µL.

Pengujian aktivitas enzim GPx dilakukan dengan membuat 3 jenis campuran yaitu

: sampel, kontrol positif dan kontrol reagent (RC). Kontrol positif dibuat dengan

mencampurkan 5-10 µL GPx kontrol positif dengan assay buffer sampai volume 50 µL,

sedangkan kontrol reagent menggunakan assay buffer sebanyak 50 µL. Sampel, kontrol

positif dan kontrol reagent masing-masing sebanyak 50 µL ditambahkan 40 µL

campuran reaksi yang mengandung 33 µL assay buffer, 3 µL larutan NADPH 40 mM, 2

µL larutan glutathione reduktase (GR) dan 2 µL larutan glutathione (GSH) dicampur

dengan sempurna dan diinkubasi selama 15 menit pada suhu 25oC. Ketiga campuran

reaksi ditambahkan 10 µL cumene hydroperoxide dan divortek, kemudian diukur

17

absorbansinya pada panjang gelombang 340nm (A1). Waktu dihitung mulai dari

penambahan cumene hydroperoxide sampai pengukuran absorbansi yang pertama (T1).

Ketiga campuran reaksi diinkubasi pada suhu suhu 25oC selama 5 menit dan absorbansi

kembali diukur pada panjang gelombang 340nm (A2). Waktuyang diperlukan dari

pengukuran absorbansi yang pertama dan kedua dicatat (T2).

Perhitungan aktivitas enzim GPx adalah sebagai berikut:

Δ A340 nm = [(A1 sampel- A2 sampel) – (A1 RC – A2 RC)]

Plot Δ A340 nm pada kurva standar untuk mendapatkan jumlah NADPH (B)

B Aktivitas GPx (nmol/min/ml) = ----------------------------- x P \ (T2 – T1) X V

Keterangan: B = jumlah NADPH yang ditunkan antara T1 – T2 (n mol) P = Pengenceran sampel T1 = waktu pembacaan absorbansi pertama (A1) dalam menit T2 = waktu pembacaan absorbansi kedua (A2) dalam menit V = jumlah sampel yang dimasukkan ke dalam well (ml)

Analisis data

Data yang diperoleh dalam penelitian ini akan dianalisis dengan análisis ragam, apabila

perlakuan berpengaruh nyata akan dilanjutkan dengan pembedaan uji Duncan Multiple

Range Test (Steel dan Torrie, 1993).

18

BAB V. HASIL YANG TELAH DICAPAI

Penelitian ini bertujuan untuk mengetahui aktivitas antiokasidan dari probiotik

isolat feses bayi (Lactobacillus sp. FBB 60 dan Lactobacillus sp. FBB 81) secara in vivo

pada tikus putih dengan pakan lemak tinggi. Hasil sementara diperoleh bahwa uji

konfirmasi terhadap isolat Lactobacillus sp. FBB 60 dan Lactobacillus sp. FBB 81 dapat

dilihat pada Tabel 4.

Tabel 3. Uji konfirmasi terhadap isolat Lactobacillus sp. FBB 60 dan FBB 81 Isolat Cat Gram Katalase Gas Morfologi

Lactobacillus sp. FBB 60 + - - batang

Lactobacillus sp. FBB 81 + - - batang

Populasi isolat Lactobacillus sp. FBB 60 dan Lactobacillus sp. FBB 81 pada

Nilai optical density (OD) tertentu dapat dilihat pada Tabel 5. Tikus percobaan diberikan

perlakuan probiotik sebesar 109 sel/ml per ekor tikus per hari selama 4 minggu.

Tabel 4. Nilai OD dan populasi dari Lactobacillus sp. FBB 60 dan FBB 81

Isolat Nilai optical density (OD) Populasi

Lactobacillus sp. FBB 60 2,514 3,03 x 1010 cfu/ml

Lactobacillus sp. FBB 81 2,629 2,74 x 1010 cfu/ml

Lactobacillus sp. FBB 60 Lactobacillus sp. FBB 81

Gambar 1. Isolat Lactobacillus sp. FBB 60 dan Lactobacillus sp. FBB 81 dalam MRS broth dan MRS agar.

19

Tikus putih yang digunakan pada penelitian ini mempunyai berat awal rata-rata

untuk perlakuan pakan standar 89,4 g, pakan tinggi lemak 88,2 g, pakan tinggi dan

Lactobacillus sp. FBB 60 sebesar 96.9 g dan pakan tinggi dan Lactobacillus sp. FBB 81

sebesar 94,6 g. Setelah pemberian probiotik selama 4 minggu, rata-rata konsumsi pakan

per hari, total konsumsi pakan, dan penambahan berat dapat dilihat pada Tabel 4.

Tabel 4. Rata-rata berat akhir dan penambahan berat tikus dengan perlakuan

Lactobacillus sp. FBB60 dan Lactobacillus sp. FBB 81 dengan pakan lemak tinggi.

Perlakuan Berat akhir tikus (g) Pertambahan berat tikus (g) PS 125,2 31,0 PL 88,7 0,5 PL-FBB60 101,1 4,1 PL-FBB81 93,3 3,6

Total bakteri asam laktat dan pH sekum dengan perlakuan Lactobacillus sp.

FBB60 dan Lactobacillus sp. FBB81 dengan pakan lemak tinggi dapat dilihat pada

Tabel 5. Rata-rata nilai pH untuk keempat perlakuan tidak berbeda yaitu dari 6,65

sampai dengan 6,72. Perlakuan Lactobacillus sp. FBB60 dan Lactobacillus sp. FBB81

tidak dapat menurunkan pH sekum, Total bakteri asam laktat turun dengan perlakuan

pakan lemak tinggi. Perlakuan Lactobacillus sp. FBB60 sedikit meningkatkan total

bakteri asam laktat.

Tabel 5. Total bakteri asam dan pH sekum dengan perlakuan Lactobacillus sp. FBB 60 dan Lactobacillus sp. FBB 81 dengan pakan lemak tinggi

Perlakuan pH Total Bakteri Asam laktat (cfu/g) sekum

PS 6,65 + 0,05 6,16 x 10 7

PL 6,71 + 0,05 5,56 x 10 7

PL-FBB60 6,72 + 0,08 7,68 x 10 7

PL-FBB81 6,72 + 0,03 5,15 x 10

7

20

A B

C D

Gambar 2. Hasil PCR sekum tikus

Keterangan: A; perlakuan pakan standar; B; perlakuan pakan lemak tinggi; C perlakuan PL-FBB60; D; PL-FBB81; M= Marker 100bp

Dari hasil PCR sekum tikus menunjukkan bahwa perlakuan pakan standar

(Gambar 2A) dan pakan lemak tinggi (Gambar 2B) tidak terdapat DNA Lactobacillus

FBB60 dan FBB81 karena pita dari DNA sekum tikus yang diuji tidak ada yang sama

dengan kontrol ( K1 atau K2). Pada perlakuan pakan lemak tinggi dengan Lactobacillus

FBB60 (Gambar 2C) terdapat 5 pita dari DNA sekum tikus yang diuji menunjukkan

kesamaan dengan kontrol Lactobacillus FBB60 (K1), dan perlakuan pakan lemak tinggi

dengan Lactobacillus FBB81 (Gambar 2D) terdapat 5 pita dari DNA sekum tikus yang

diuji menunjukkan kesamaan dengan kontrol Lactobacillus FBB81 (K2). Hal ini

mengindikasikan bahwa Lactobacillus FBB60 dan Lactobacillus FBB81 mampu

21

bertahan dalam kondisi saluran pencernaan tikus dan memberikan efek positif bagi

kesehatan saluran pencernaan.

Malondialdehida merupakan salah satu produk akhir dari peroksidasi lipid

terutama asam lemak tidak jenuh yang dapat dihasilkan melalui oksidasi oleh radikal

bebas dan digunakan sebagai indikator aktivitas radikal bebas dalam tubuh. Peningkatan

konsentrasi MDA membuktikan adanya reaksi peroksidasi lipida pada tubuh. Lipid

peroksida dapat meningkatkan permeabilitas membran dan menganggu distribusi ion-ion

yang mengakibatkan kerusakan fungsi sel dan organela (Devlin, 2002).

Hasil penelitian ini menunjukkan bahwa pemberian Lactobacillus sp. FBB60 dan

Lactobacillus sp. FBB81 dapat menurunkan kadar MDA pada hati dan serum serta

meningkatkan aktivitas enzim GPx pada hati tikus (Tabel 6). Dibandingkan dengan

pemberian pakan standar (SD), pemberian pakan lemak tinggi (HF) meningkatkan kadar

MDA 14,40% pada hati dan 28,70% pada serum. Perlakuan Lactobacillus sp. FBB60

dengan pakan lemak tinggi dapat menurunkan kadar MDA 2,66% pada hati dan 2,70%

pada serum, sedangkan perlakuan Lactobacillus sp. FBB81 menurunkan kadar MDA

8,81% pada hati dan 9,46% pada serum. Hasil penelitian sebelumnya menunjukkan

bahwa pemberian yoghurt yang mengandung probiotik L.acidophilus La5 and

Bifidobacterium lactis Bb12 pada pasien diabetes tipe 2 secara nyata dapat menurunkan

MDA pada serum (Ejtahed et al., 2012). Zhang et al., (2010) juga melaporkan bahwa

pemberian L. casei Zhang pada tikus dengan pakan tinggi lemak dapat menurunkan

kadar MDA dan meningkatkan aktivitas enzim SOD dan GPx pada hati dan serum.

Tabel 6. Kadar MDA pada hati dan serum dan aktivitas enzim GPx pada hati tikus

dengan perlakuan Lactobacillus sp. FBB 60 dan Lactobacillus sp. FBB 81 dengan pakan lemak tinggi

Perlakuan MDA hati (nmol/g hati)

MDA serum (nmol/ml)

Aktivitas enzim GPx (U/g hati)

PS 7,09 + 0,75 3,19 + 0,58 2.09 + 0.51 PL 8,11 + 1,20 4,11 + 0,80 1.50 + 1.00 PL-FBB60 7,89 + 2,11 4,00 + 0,93 1.72 + 0.63 PL-FBB81 7,39 + 1,03 3,72 + 1,04 1.98 + 0.71

22

Enzim GPx termasuk enzim antioksidan intrasel yang diproduksi dalam tubuh

yang berperan penting yang berfungsi menangkal radikal bebas sehingga dapat

mencegah peroksidasi lipid. Aktivitas enzim GPx lebih rendah 28,32% pada perlakuan

lemak tinggi dibandingkan dengan perlakuan pakan standar. Pemberian Lactobacillus

sp. FBB60 meningkatkan aktivitas enzim GPx 13,17% dan meningkat 24,67% pada

Lactobacillus sp. FBB81. Peningkatan aktivitas enzim GPx dengan pemberian

Lactobacillus sp. FBB60 dan Lactobacillus sp. FBB81 disebabkan karena penggunaan

enzim GPx untuk menangkal radikal bebas lebih sedikit pada perlakuan PL-FBB60 dan

PL-FBB81 dibandingkan dengan kontrol (PL). Hal ini didukung oleh data kadar MDA

pada hati dan serum yang lebih rendah dengan pemberian Lactobacillus sp. FBB60 dan

Lactobacillus sp. FBB81.

23

BAB VI. SIMPULAN DAN SARAN

6.1. Simpulan

Dari hasil penelitian dapat disimpulkan bahwa:

1. Pemberian probiotik dengan pakan tinggi lemak tidak berpengaruh terhadap pH

sekum tikus.

2. Pemberian Lactobacillus sp. FBB60 dapat meningkatkan total BAL sedangkan

Lactobacillus sp. FBB81 tidak dapat meningkatkan total BAL pada sekum.

3. Lactobacillus sp. FBB60 dan Lactobacillus sp. FBB81 dapat menurunkan kadar

MDA pada hati dan serum tikus dengan pakan lemak tinggi.

4. Aktivitas enzim GPx pada hati lebih tinggi dengan pemberian Lactobacillus sp.

FBB60 dan Lactobacillus sp. FBB81

5. Aktivitas antioksidan dari Lactobacillus sp. FBB81 lebih baik dibandingkan

dengan Lactobacillus sp. FBB60.

6.2. Saran

Dari hasil penelitian ini dapat disarankan untuk mengembangkan kandidat

probiotik Lactobacillus sp. FBB81 dalam bentuk produk mikroenkapsulasi dan menguji

viabilitasnya dalam berbagai suhu sehingga dapat diaplikasikan pada produk pangan

fungsional.

24

DAFTAR PUSTAKA

Amanatidou, A., Bennik, M.H., Gorris, L.G., Smid, E.J. 2001. Superoxide dismutase plays an important role in the survival of Lactobacillus sake upon exposure to elevated oxygen. Arch. Microbiol.: 176: 79-88.

Basileios, G., Spyropoulos, Evangelos, P., Misiakos, Constantine F., Christos, N.,

Stoidis. 2011. Review: Antioxidant Properties of Probiotics and Their Protective Effects in the Pathogenesis of Radiation-Induced Enteritis and Colitis. Dig. Dis. Sci.: 56: 285–294

Betsi, G. I., Papadavid, E., and Falagas, M.E. 2008. Probiotics for the Treatment or

Prevention of Atopic Dermatitis: A Review of the Evidence From Randomized Controlled Trials. Am. J. Clin. Dermatol.: 9 (2) : 93 - 103.

Carroll, I.M., Andrus, J.M., Bruno-Ba´rcena, J.M., Klaenhammer, T.R., Hassan, H.M.,

and Threadgill, D.S. 2007. Anti-inflammatory properties of Lactobacillus gasseri expressing manganese superoxide dismutase using the interleukin 10-deficient mouse model of colitis. Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol.:293: G729–G738.

Chang, S.K. and Hassan, H.M. 1997. Characterization of superoxide dismutase in

Streptococcus thermophilus. Appl Environ Microbiol.: 63: 3732–3735. Collado, M. C., Isolauri, E., Salmien ,S., and Sanz , Y. 2009. The impact of probiotic on

gut health. Curr Drug Metab.: 10 (1): 68-78. Chu-Chyn, O., Tsong-Ming, L., Jaw- Ji, T., Jyh-Herng, Y., Haw -Wen, C., dan Meei-

Yn, L. 2009. Antioxidative Effect of Lactic Acid Bacteria: Intact Cells vs. Intracellular Extracts. Journal of Food and Drug Analysis: 17 (3) : 209-216

FAO/WHO. 2002. Joint FAO/WHO Working Group Report on Drafting Guidelines for

the Evaluation of Probiotics in Food. London. Farr, S. B. and Kogoma, T. 1991. Oxidative stress response in Escherichia coli and

Salmonellas typhimurium. Microbiol. Rev.: 55: 561-585. Fuller, R. 1989. A Review, Probiotic in Man and Animals. Journal of Applied

Bacteriology : 66: 365-378. Fridovich, I. 1995. Superoxide radical and superoxide dismutases. Annu. Rev.Biochem. :

64: 97-112

25

Gao,D., Zhu, G., Gao, Z., Liu, Z., Wang, L., and Guo, W., 2011. Antioxidative and hypolipidemic effect of lactic acid bacteria from pickled Chinese cabbage. Journal of Medicinal Plant Research : 5(8) : 1439-1446.

Hardiningsih, R. dan Nurhidayat, N. 2006. Pengaruh Pemberian Pakan

Hiperkolesterolemia Terhadap Bobot Badan Tikus Putih Wistar yang Diberi Bakteri Asam Laktat. Biodiversitas: 7(2) : 127-130

Heinonen, O.P, and Albanes, D., 1994, The effect of vitamin E and β-carotene on the

incidence of lung cancer and other cancer in male smokers. J.Med. :330: 1029-1035.

Halliwell, B. and Gutteridge, J. M. C. 1999. Free radicals in Biology and Medicine.

Clarendon Press. Isolauri, E, Sutas, Y., Kankaanpaa, Arvilommi, P. H., and Salminen, S. 2001. Probiotics:

effects on immunity. Am. J. Clin. Nutr. : 73 (2) : 444 – 450. Isolauri, E. and Salminen .S. 2008. Probiotics: Use in Allergic Disorders: a Nutrition,

Allergy, Mucosal Immunology, and Intestinal Microbiota (NAMI) Research Group Report. J. Clin. Gastroenterol. : 42 (2) : 91 – 96.

Kodali, V.P., Sen, R. 2008. Antioxidant and free radical scavenging activities of an

exopolysaccharide from a probiotic bacterium. J. Biotechnol :3 : 245–251. Klaenhammer, T.R. and Kullen, M.J. 1999. Selection and design of probiotics. Int. J.

Food Microbiol. : 50: 45-57. Kim, H. S. , Chae, H. S., Jeong, S. G., Ham,J. S., Im, S. K., Ahn, C. N. and Lee, J. M.

2005. Antioxidant Activity of Some Yogurt Starter Cultures. Asian-Aust. J. Anim. Sci. : 18 ( 2) : 255-258

Kim, H.S., Jeong, S.G., Ham, J.S., Chae, H.S., Lee, J.M., and Ahn, C.N., 2006a.

Antioxidative and probiotic properties of Lactobacillus gasseri NLRI-312 isolated from Korean infant feces. Asian-Aust. J. Anim. Sci. :19: 1335-1341.

Kim, H.S., Chae, H.S., Jeong, S.G., Ham, J.S., Im, S.K., Ahn, C.N., and Lee, J.M.

2006b. In vitro antioxidative properties of lactobacilli. Asian-Aust. J. Anim. Sci. :19. (2) : 262-265.

Kumar, M., Nagpal, R., Kumar, Hemalatha, R., Verma,V., Kumar, A., Chakraborty, C.,

Singh, B., Marotta, F., Jain, S., and Yadav, H., 2012. Experimental Diabetes Research. Article ID 902917, 14 pages doi:10.1155/2012/902917

26

Kullisaar, T., Zilmer, M,, Mikelsaar ,M., Vihalemm, T., Annuk, H., Kairane, C., Kilk, A. 2002. Two antioxidative Lactobacilli strains as promising probiotics. Int. J. Food Microbiol.:72: 215-224.

Lee, D.K., Jang, S., Baek, E.H., Kim, M.J., Lee, K.S., Shin, H.S., Chung, M.J., Kim,

J.E., Lee, K.O., and Ha, N.J. 2009. Lactic acid bacteria affect serum cholesterol levels, harmful fecal enzyme activity, and fecal water content. Lipids in Health and Disease. :8: 21

Lee, J., Hwang, K., Chung, M.Y., Chao, D.H., and Park, C.S. (2005). Resistance of

Lactobacillus casei KCTC 3260 to reactive oxygen species (ROS): Role for a metal ion chelating effect. J. Food Science: 70: 388-391.

Lin, M.Y., and Yen, C.L. 1999. Antioxidative ability of lactic acid bacteria. J. Agric.

Food Chem. : 47 : 1460–1466. Lutgendorff, F., Trulsson, L.M., van Minnen, L.P. 2008. Probiotics enhance pancreatic

glutathione biosynthesis and reduce oxidative stress in experimental acute pancreatitis. Am. J. Physiol. Gastrointest Liver Physiol.: 295: G1111–G1121.

Musenga, A., Mandrioli, R., Bonifazi, P., Kenndler, E., Pompei, A., and Raggi, M.A.

2007. Sensitive and selective determination of glutathione in probiotic bacteria by capillary electrophoresis-laser induced fluorescence. Anal Bioanal Chem. : 387 : 917–924.

Marteau, P.R., de Vrese, M., Cellier, C.J., and Schrezeenmeier, J. 2001. Protection from

gastrointestinal deseases with the use of probiotics. Am. J. Clin. Nutr.: 73: 430S-436S.

Neha, A., Kamaljit, S., Ajay, B., dan Tarun, G., 2012. Probiotic: as effective treatment

of diseases. www.irjponline : 3 (1): 96 - 101 Ooi, L.G. dan Liong, M. T. 2010. Cholesterol-Lowering Effects of Probiotics and

Prebiotics: A Review of in Vivo and in Vitro. Int. J. Mol. Sci.: 11(6): 2499–2522. Pato, U. 2003. Potensi bakteri asam laktat yang diisolasi dari dadih untuk menurunkan

resiko penyakit kanker. Jurnal Natur Indonesia : 5(2): 162-166. Pompella, A., Visvikis, A., Paolicchi, A., De Tata V., and Casini , A.F. 2003. The

changing faces of glutathione, a cellular protagonist. Biochem Pharmacol. : 66 : 1499–1503.

27

Peran, L., Camuesco, D., and Comalada, M. 2006. Lactobacillus fermentum, a probiotic capable to release glutathione, prevents colonic inflammation in the TNBS model of rat colitis. Int. J. Colorectal Dis. : 21 : 737–746.

Pant. N., Marcotte, H., Brussow, H., Svensson, L., and Hammarstrom, L. 2007.

Effective Prophylaxis Against Rotavirus Diarrhea Using a Combination of Lactobacillus rhamnosus GG and Antibodies. BMC Microbiol. :7 (86): 2180 – 2187.

Sujaya, I N., Utami, D, N.M., Suariani, N.L.P., Widarini, N.P., Nocianitri, K.A.,

Nursini, N.W.. 2008a. Potensi Lactobacillus Spp. Isolat Susu Kuda Sumbawa Sebagai Probiotik. J. Vet. : 9 : 33-40.

Steel, R.G.D. dan Torrie, J.H. 1993. Prinsip dan prosedur statistic. Penerjemah Bambang

Sumantri, PT. Gramedia Pustaka Utama, Jakarta Sulistyowati. 2008. Pemanfaatan Yoghurt Sebagai Bahan Penurun Trigliserida Darah

Manusia. WAHANA :51 (2) : 18-26. Sanders, M. E. 2000. Symposium: Probiotic Bacteria: Implications Sujaya, I N., Minamida, K., Sone, T., Yokota, A., Asano, A. and Tomita, F. 2003.

Effects of Long Term Ingestion of DFAIII on Human Intestinal Microbiota. Ann. Meeting of Japan Society for Lactic Acid Bacteria, Tokyo.

Salminen, S., Wright, A.V., and Ouwehand, A., 2004. Lactic acid bacteria,

microbiological and functional aspects. Marcel Dekker Inc. USA. Salazar-Lindo, E., Figueroa-Quintanilla, D., Caciano, M. I., Reto-Valiente, V.,

Chauviere, G. and Colin, P. 2007. Effectiveness and Safety of Lactobacillus LB in the Treatment of Mild Acute Diarrhea in Children. J. Ped. Gastroenterol. Nutr. : 44 : 571-576.

Torii, S., Torii, A., Itoh, K., Urisu, A., Terada, A., Fujisawa, T., Yamada, K., Suzuki, H.,

Ishida, Y., Nakamura, F., Kanzato, H., Sawada, D., Nonaka, A., Hatanaka, M., and Fujiwara, S. 2010. Effects of Oral Administration of Lactobacillus acidophilus L-92 on the Symptoms and Serum Markers of Atopic Dermatitis in Children. Int. Arch. Allergy Immunol. :154(3): 236-245

Tabbers, M.M. and Benninga, M.A.. 2007. Administration of Probiotic Lactobacilli to

Children With Gastrointestinal Problems : There is Still Little Evidence. Ned. Tijdschr. Geneeskd. : 151 (40) : 2198 – 2202

28

Uni, I. A. S. M. 2012. Isolasi Bakteri Asam Laktat Penghidrolisis Garam Empedu dari Feses Bayi dan Uji Ketahanannya Terhadap pH Rendah untuk Pengembangan Probiotik. Skripsi. Jurusan Biologi, Fakultas MIPA. Unud. Denpasar.

Valko, M, et aI, 2006, Free radical, metal and antioxidant in oxidative stress inducced

cancer, J.Chem-BioI, Rusia :160 : 1-40. Vaughan, E.E., de Vries, M.C., Zoetendal, E.G., Ben-Amor, K., Akkermans, A.D.L.,

and de Vos, W. M. 2002. The Intestinal LABs. Antonie Van Leeuwenhoek. : 82(1-4):341-352.

WHO (World Health Organization). 2004. Death From Conorary Heart Disease, Risk

Factor : Lipid, Available : www. WHO.int/06lipids040527 (Accessed : 2011, April 12)

Zhang, Y., Du, R., Wang, L., Zhang, H. 2010. The antioxidative effects of probiotic

Lactobacillus casei Zhang on the hyperlipidemic rats. Eur. Food Res. Technol. : 231:151–158