PENGARUH PENGGUNAAN NANAS DAN MARKISA SEBAGAI …repository.unair.ac.id/56706/2/KKC KK PK BP 61-16...

ADLN PERPUSTAKAAN UNIVERSITAS AIRLANGGA

SKRIPSI PEMANFAATAN BONGGOL BUAH THIA A. R.

SKRIPSI

PEMANFAATAN BONGGOL BUAH NANAS UNTUK MEDIA

BIAKAN BAKTERI Lactobacillus plantarum SEBAGAI

PROBIOTIK

PROGRAM STUDI S-1 BUDIDAYA PERAIRAN

Oleh:

THIA AMINAH RAHMAWATI

SURABAYA–JAWA TIMUR

FAKULTAS PERIKANAN DAN KELAUTAN

UNIVERSITAS AIRLANGGA

SURABAYA

2016


ii


Yang bertanda tangan di bawah ini, saya :

N a m a : Thia Aminah Rahmawati

N I M : 140911064

Menyatakan dengan sebenarnya bahwa skripsi yang berjudul : “Pemanfaatan

Bonggol Buah Nanas untuk Media Biakan Bakteri Lactobacillus plantarum

sebagai Probiotik “ adalah benar hasil karya saya sendiri. Hal-hal yang bukan

karya saya dalam skripsi tersebut diberi tanda citasi dan ditunjukkan dalam daftar

pustaka.

Apabila dikemudian hari terbukti pernyataan saya tidak benar, maka saya bersedia

menerima sanksi akademik yang berlaku di Universitas Airlangga, termasuk

berupa pencabutan gelar kesarjanaan yang telah saya peroleh.

Demikian surat pernyataan yang saya buat ini tanpa ada unsur paksaan dari

siapapun dan dipergunakan sebagaimana mestinya.

Surabaya, 22 Juli 2016


iii


SKRIPSI

PEMANFAATAN BONGGOL BUAH NANAS UNTUK MEDIA BIAKAN

BAKTERI Lactobacillus plantarum SEBAGAI PROBIOTIK

Sebagai Salah Satu Syarat untuk Memperoleh Gelar Sarjana Perikanan

pada Fakultas Perikanan dan Kelautan Universitas Airlangga

Oleh :


NIM. 140911064

Mengetahui,

Komisi Pembimbing

Pembimbing Utama Pembimbing Serta

Sudarno, Ir., M. Kes.

NIP. 19550713 198601 1 001


iv


SKRIPSI

PEMANFAATAN BONGGOL BUAH NANAS UNTUK MEDIA BIAKAN

BAKTERI Lactobacillus plantarum SEBAGAI PROBIOTIK

Oleh :


140911064

Telah diujikan pada

Tanggal : 08 Juni 2016

KOMISI PENGUJI SKRIPSI

Ketua : Rahayu Kusdarwati, Ir., M.Kes.

Anggota : Agustono, Ir., M.Kes.

Prayogo , S.Pi., MP.

Sudarno, Ir., M. Kes.

Prof. Moch. Amin Alamsjah, Ir., M.Si., Ph.D

Surabaya, 08 Juni 2016

Fakultas Perikanan dan Kelautan

Universitas Airlangga

Dekan,

Dr. Mirni Lamid, drh., MP.

NIP. 19620116 19203 2 001


v


RINGKASAN

THIA AMINAH RAHMAWATI. Pemanfaatan Bonggol Buah Nanas untuk

Media Biakan Bakteri Lactobacillus plantarum sebagai Probiotik. Dosen

Pembimbing Sudarno, Ir., M. Kes. dan Prof. Moch. Amin Alamsjah, Ir.,

M.Si., Ph.D.

Probiotik merupakan mikroorganisme non patogen yang memberikan

pengaruh positif terhadap kesehatan inangnya. Untuk mendukung pertumbuhan

bakteri probiotik, diperlukan suatu substrat yang dapat menstimulasi pertumbuhan

bakteri. Salah satu media yang digunakan sebagai substrat adalah molase dan

bonggol buah nanas. Molase merupakan sumber karbon yang menyediakan

kebutuhan energi dan bonggol buah nanas membantu pH menjadi lebih asam. Hal

tersebut sesuai dengan keadaan yang dibutuhkan dalam pertumbuhan bakteri

Lactobacillus plantarum.

Tujuan dari penelitian ini adalah untuk mengetahui pengaruh pemberian

bonggol buah nanas untuk media biakan bakteri Lactobacillus plantarum sebagai

probiotik. Penelitian dilaksanakan di Balai Karantina Juanda Kelas I Surabaya

pada bulan Januari – Februari 2016. Analisis data yang digunakan dalam

penelitian ini dilakukan secara statistik dengan menggunakan uji ANAVA

(Analysis of Variance) dengan tingkat kepercayaan 95 % dan dilanjutkan dengan

uji jarak Duncan.

Hasil penelitian menunjukkan terdapat pengaruh pemberian bonggol buah

nanas terhadap jumlah total bakteri Lactobacillus plantarum. Hasil tertinggi

jumlah total bakteri ditunjukkan pada perlakuan P2 pengamatan hari ketujuh

dengan kombinasi molase 75 % dan bonggol buah nanas 25 % sebesar 108

CFU/ml. Kesimpulan dari penelitian ini bahwa bonggol buah nanas dapat

digunakan untuk media biakan bakteri Lactobacillus plantarum sebagai probiotik.


vi


SUMMARY

THIA AMINAH RAHMAWATI. The Utilization the Pinneaple’s Axis as

Media for Breeding to Lactobacillus plantarum Bacteria as Probiotic.

Academic Advisor Sudarno, Ir., M. Kes. and Prof. Moch. Amin Alamsjah,

Ir., M.Si., Ph.D.

Probiotic is a non pathogenic microorganism which gives a positive

influence to the health’s host. To support the growth of probiotic bacterial, it

needs a substrate that stimulates the growth of bacterial. A substrat for the growth

of bacterial is molasses and pinneaple’s axis. Molasses is a carbon source which

provides energy, and then pinneaple’s axis helps pH be more acid. It based on the

required situation in the growth of Lactobacillus plantarum Baterial.

The purpose of this study is to know the influence of Pinneaple’s axis as

media for breeding to Lactobacillus plantarum bacteria as probiotic. This study

has been done at Balai Karantina Juanda Kelas 1 Surabaya from January to

February 2016. This study used data analysis with statistics system which uses the

ANAVA (Analysis of Variance) test with the level of confident 95% and

continued with Duncan Test.

The result of this study shows that there are influences of Pinneaple’s axis

to the number of Lactobacilus plantarum bacterial. The highest result of the

number of bacterial was showed in p2 treatment in 7th

day observation. This

observation combined 75% molasses and 25% Pinneaple’s axis in 108 CFU/ml.

the conclusion of this study shows that pinneaple’s axis can use for media

breeding to Lactobacilus plantarum bacteria as probiotic.


vii


KATA PENGANTAR

Pertama-tama saya ucapkan puja dan puji syukur kehadirat Tuhan Yang

Maha Esa, karena atas limpahan rahmat dan hidayahnya saya dapat menyusun

laporan skripsi yang berjudul “Pemanfaatan Bonggol Buah Nanas untuk Media

Biakan Bakteri Lactobacillus plantarum sebagai Probiotik” yang telah

dilaksanakan pada tahun 2016.

Saya menyadari bahwa di dalam pembuatan laporan skripsi ini jauh dari

kata sempurna sehingga kritik dan saran sangat saya harapkan. Akhir kata,

semoga laporan skripsi ini dapat menjadi inspirasi bagi para pembaca khususnya

mahasiswa Fakultas Perikanan dan Kelautan Universitas Airlangga Surabaya dan

untuk masyarakat pada umumnya.

Surabaya, Juni 2016

Penulis


viii


UCAPAN TERIMA KASIH

Pada kesempatan ini, penulis dengan penuh rasa hormat dan penghargaan

mengucapkan terima kasih yang sebesar-besarnya kepada :

1. Ibu Dr. Mirni Lamid, drh., MP. selaku Dekan Fakultas Perikanan dan

Kelautan Universitas Airlangga.

1. Bapak Sudarno, Ir., M. Kes. dan Prof. Moch. Amin Alamsjah, Ir., M.Si., Ph.D

selaku dosen pembimbing yang telah memberikan arahan, petunjuk dan

bimbingan sejak penyusunan usulan hingga selesainya penyusunan laporan

skripsi ini.

2. Bu Rahayu Kusdarwati, Ir., M.Kes., Bapak Agustono, Ir., M.Kes. dan Bapak

Prayogo , S.Pi., MP. selaku panitia penguji yang telah membantu dan

memberikan saran dalam perbaikan hasil skripsi hingga selesai.

3. Kedua orang tua tercinta, Bapak Busar EF. dan Ibu Chotidjah, kakak tercinta

saya, Deasy Noer Wulandhari serta Gani Tri Hadi Hartato, terima kasih atas

doa yang tulus, cinta dan kasih sayang, semangat yang kuat dan kerja kerasnya

yang menjadi motivasi terbesar saya dalam menjalani kehidupan.

4. Sahabat FPK 2009, Almira, Vivin, Ajeng, Titi, Tari dan Mardiah Rahma.

Terima kasih telah mendukung saya selama kuliah dan dalam menyelesaikan

laporan Skripsi ini. Terima kasih atas dukungan dan semangatnya.

5. Keluarga besar Asrama Bibit Unggul Dinas Sosial Kalijudan Surabaya.

Terima kasih telah membantu saya dalam menyelesaikan kuliah saya.


ix


6. Balai Karantina Ikan Kelas I Juanda, Surabaya. Terima kasih atas bantuan dan

dukungan dalam penelitian saya sehingga laporan skripsi saya dapat

terselesaikan.

7. Serta semua pihak yang telah membantu penyelesaian laporan Skripsi ini.


x


DAFTAR ISI

Halaman

RINGKASAN ................................................................................................. iv

SUMMARY .................................................................................................... v

KATA PENGANTAR .................................................................................... vi

UCAPAN TERIMA KASIH ........................................................................... vii

DAFTAR ISI ................................................................................................... ix

DAFTAR TABEL ........................................................................................... xi

DAFTAR GAMBAR ...................................................................................... xii

DAFTAR LAMPIRAN ................................................................................... xiii

I PENDAHULUAN

1.1 Latar Belakang .................................................................................... 1

1.2 Rumusan Masalah ............................................................................... 3

1.3 Tujuan ................................................................................................. 4

1.4 Manfaat ............................................................................................... 4

II TINJAUAN PUSTAKA

2.1 Probiotik .............................................................................................. 5

2.1.1 Pengertian Probiotik ................................................................... 5

2.1.2 Fungsi Probiotik . ...................................................................... 6

2.1.3 Cara Pembuatan Probiotik .................................................... 7

2.1.4 Bakteri Probiotik (Lactobacillus plantarum) ............................. 8

2.2 Bonggol Buah Nanas ........................................................................... 10

III KERANGKA KONSEPTUAL DAN HIPOTESIS

3.1 Konseptual Penelitian .......................................................................... 11

3.2 Hipotesis ............................................................................................. 13

IV METODOLOGI PENELITIAN

4.1 Tempat dan Waktu Penelitian ............................................................. 14


xi


4.2 Materi Penelitian ................................................................................. 14

4.2.1 Alat Penelitian ........................................................................................ 14

4.2.2 Bahan Penelitian .................................................................................... 14

4.3 Metode Penelitian ............................................................................... 14

4.3.1 Rancangan Percobaan ............................................................... 15

4.3.2 Prosedur Kerja ........................................................................... 15

a. Persiapan Wadah Media Pertumbuhan Bakteri Probiotik .............. 15

b. Pembuatan Media Pertumbuhan Bakteri Probiotik ........................ 15

c. Pelaksanaan Penelitian .................................................................. 16

4.3.3 Parameter Penelitian .................................................................. 16

4.3.4 Analisis Data .............................................................................. 17

4.4 Alur Penelitian .................................................................................... 19

V HASIL DAN PEMBAHASAN

5.1 Hasil Penelitian ................................................................................... 20

5.1.1 Jumlah Total Bakteri (Total Plate Count) .................................. 20

5.1.2 Nilai pH ....................................................................................... 21

5.1.3 Nilai Suhu ................................................................................... 22

5.2 Pembahasan ......................................................................................... 22

VI SIMPULAN DAN SARAN

6.1 Simpulan ............................................................................................. 28

6.2 Saran ................................................................................................... 28

DAFTAR PUSTAKA ..................................................................................... 29

LAMPIRAN ………………………………………………………………… 32


xii


DAFTAR TABEL

Tabel Halaman

1. Kadar Vitamin C dalam susu, ekstrak nanas dan keju dalam 100 gram bahan

Karakteristik Isolat Lactobacillus plantarum (Titin dkk., 2011) ............... 10

2. Hasil Jumlah Total Bakteri Lactobacillus plantarum pada Variasi

Konsentrasi Molase dan Bonggol Buah Nanas selama Masa Inkubasi 7

Hari (CFU/ml) dengan Menyertakan Standar Deviasi ............................... 19

3. Rata-Rata Nilai pH pada Variasi Konsentrasi Molase dan Bonggol Buah

Nanas selama Masa Inkubasi 7 Hari .......................................................... 22

4. Nilai Suhu Ruangan pada Variasi Konsentrasi Molase dan Bonggol Buah

Nanas selama Masa inkubasi 7 Hari ........................................................... 22


xiii


DAFTAR GAMBAR

Gambar Halaman

1. Bagan Kerangka Konsep Penelitian ............................................................ 13

2. Diagram Alur Penelitian .............................................................................. 18

3. Fase Pertumbuhan Lactobacillus plantarum pada Variasi Konsentrasi Molase

dan Bonggol Buah Nanas selama Masa Inkubasi 7 Hari. .......................... 25


xiv


DAFTAR LAMPIRAN

Lampiran Halaman

1. Data Jumlah Total Bakteri Lactobacillus plantarum selama Masa

Inkubasi 7 Hari pada Konsentrasi Molase dan Bonggol Buah Nanas ......... 32

2. Data Rerata Jumlah Sel dan log Jumlah Sel pada Variasi Konsentrasi

Moilase dan Bonggol Buah Nanas ............................................................. 34

3. Data pH selama Masa Inkubasi 7 Hari pada Konsentrasi Molase dan

Bonggol Buah Nanas ................................................................................... 36

4. Penghitungan Data secara Statistika Menggunakan SPSS pada Hari Ke-0

Perlakuan ..................................................................................................... 37

5. Penghitungan Data secara Statistika Menggunakan SPSS pada Hari

Keempat Perlakuan ...................................................................................... 39

4. Penghitungan Data secara Statistika Menggunakan SPSS pada Hari

Ketujuh Perlakuan ....................................................................................... 42

5. Dokumentasi Penelitian ............................................................................... 45


1


I PENDAHULUAN

1.1 Latar Belakang

Peningkatan produksi dalam usaha budidaya dapat dicapai dengan cara

mengoptimalkan kondisi lingkungan, mendapatkan padat tebar yang tepat,

memperbaiki kualitas benih dan pemberian pakan berkualitas baik. Selain itu,

dapat pula dilakukan melalui upaya menurunkan tingkat mortalitas dan

meningkatkan laju pertumbuhan. Salah satu langkah alternatif untuk mengatasi

permasalahan tersebut adalah dengan penggunaan probiotik (Mansyur dan

Tangko, 2008).

Probiotik merupakan mikroorganisme non patogen yang jika dikonsumsi

akan memberikan pengaruh positif terhadap fisiologi dan kesehatan inangnya

(Hidayat, 2011). Penggunaan probiotik bertujuan untuk menjaga keseimbangan

mikroba dan pengendalian patogen dalam saluran pencernaan, air serta

lingkungan melalui proses biodegradasi (Mansyur dan Tangko, 2008). Adanya

bakteri probiotik pada sistem akuakultur akan menjadi penetralisir bagi sistem

pencernaan sehingga bakteri patogen dapat dihambat pertumbuhannya. Salah satu

bakteri probiotik yang sering digunakan adalah Lactobacillus plantarum

(Supriyanto dkk., 2012).

Sifat yang menguntungkan dari bakteri L. plantarum adalah dapat

digunakan untuk mendukung peningkatan kesehatan. Bakteri tersebut berperan

sebagai flora normal dalam sistem pencernaan yang berfungsi untuk menjaga

keseimbangan asam dan basa sehingga pH dalam kolon konstan (Hardiningsih


2


dkk., 2006). Selain itu, 0,2 % pakan yang diberikan kepada hewan uji ikan

bandeng memberikan respon yang baik terhadap laju pertumbuhan harian, rasio

konversi pakan dan kecernaan pakan sebagai akibat dari aktivitas mikroorganisme

Lactobacillus di dalam memperbaiki mutu pakan (Mansyur dan Tangko, 2008).

Beberapa jenis bakteri probiotik tersebut telah beredar dipasaran, baik

produk dari luar maupun dari dalam negeri. Munculnya berbagai jenis produk

bakteri probiotik menimbulkan permasalahan tersendiri karena para petambak

menggunakan probiotik tersebut tanpa mengetahui dengan jelas peruntukan dari

produk tersebut. Selain itu, komposisi jenis bakteri yang tercantum pada kemasan

suatu produk belum tentu sama dengan yang terkandung di dalamnya sehingga

memerlukan kecermatan dalam memilih suatu produk bakteri probiotik. Petambak

harus lebih cermat dan berhati-hati dalam memilih suatu produk bakteri probiotik

sehingga lebih baik petambak meramu sendiri probiotiknya (Amin dan Mansyur,

2010).

Probiotik dapat dibuat dengan biaya relatif murah dan merupakan produk

yang ramah lingkungan. Karakteristik probiotik yang efektif adalah dapat dikemas

bentuk hidup dalam skala industri, stabil dan hidup pada kurun waktu

penyimpanan lama dan kondisi lapangan, bisa bertahan hidup di dalam usus dan

menguntungkan bagi ternak (Gunawan dan Sundari, 2003). Untuk mendukung

pertumbuhan bakteri probiotik, diperlukan suatu substrat yang dapat menstimulasi

bakteri agar menghasilkan suatu metabolit yang nantinya akan berperan sebagai

penghambat dan pembunuh bakteri patogen (Supriyanto dkk., 2012).


3


Salah satu media yang digunakan sebagai substrat untuk dapat mendukung

metabolisme bakteri probiotik adalah molase. Molase merupakan media pembawa

yang selama ini sudah dikenal sebagai substrat pertumbuhan bakteri (Supriyanto

dkk., 2012). Sumber karbon yang umum digunakan adalah glukosa, molase dan

bahkan ethanol. Molase merupakan sumber karbon yang paling murah

dikarenakan molase adalah produk samping dari industri gula. Sumber karbon

tersebut akan menyediakan kebutuhan energi untuk media pertumbuhan. Oleh

karena itu, pemilihan sumber karbon memainkan peran penting dalam sisi

ekonomi dikarenakan 60-75 % bahan baku menggunakan karbon (Riadi, 2007).

Teknik pembuatan probiotik dapat dilakukan dengan dua cara yaitu pada

media inokulasi pertama ditambahkan dengan perasan buah nanas dan yang kedua

ditambahkan terasi udang (Firlana, 2011). Nanas merupakan buah yang segar dan

mudah didapatkan yang pemanfaatannya hanya terbatas pada daging buahnya saja

padahal bonggol nanas diperkirakan masih memiliki manfaat. Salah satunya

adalah untuk membantu membuat pH menjadi lebih asam yaitu berkisar 4–5

(Miskah dkk., 2009). Hal ini sesuai dengan pernyataan Ferdaus dkk. (2008) yang

menyatakan bahwa Lactobacillus plantarum merupakan jenis mikroba mesofilik

karena dapat hidup pada pH antara 4,5-6,5. Oleh karena itu, penelitian ini

bertujuan untuk membuat probiotik dengan cara yang mudah yaitu dengan

menggunakan limbah bonggol buah nanas.

1.2 Rumusan Masalah

Apakah terdapat pengaruh pemberian bonggol buah nanas untuk media

biakkan bakteri Lactobacillus plantarum sebagai probiotik?


4


1.3 Tujuan

Untuk mengetahui pengaruh pemberian bonggol buah nanas untuk media

biakkan bakteri Lactobacillus plantarum sebagai probiotik.

1.4 Manfaat

Hasil penelitian diharapkan dapat memberikan informasi mengenai

pemanfaatan pemberian bonggol buah nanas untuk media biakkan bakteri

Lactobacillus plantarum sebagai probiotik.


5


II. TINJAUAN PUSTAKA

2. 1. Probiotik

2.1.1. Pengertian Probiotik

Definisi probiotik menurut Hidayat (2011) yaitu mikroorganisme non

patogen yang jika dikonsumsi akan memberikan pengaruh positif terhadap

fisiologi dan kesehatan inangnya. Selain itu, probiotik dapat diartikan sebagai

mikroba yang dapat hidup atau berkembang dalam usus dan dapat

menguntungkan inangnya baik secara langsung maupun tidak langsung dari hasil

metabolitnya (Kompiang, 2009). Yulinery dan Nurhidayat (2012) juga

menjelaskan bahwa probiotik merupakan bakteri non patogen yang dikonsumsi

sebagai suplemen makanan sehingga terjaga keseimbangan dalam ekosistem

mikrobiota usus yang dapat menguntungkan kesehatan tubuh sehingga

memperkuat sistem imunitas, menurunkan jumlah bakteri patogen dengan

memproduksi komponen anti bakteri serta melakukan kompetisi untuk

memperoleh daerah kolonisasi.

Pada saat memilih mikroorganisme yang akan dijadikan probiotik,

persyaratan yang harus dimiliki oleh mikroba probiotik antara lain adalah tidak

bersifat patogen atau mengganggu inang, tidak bersifat patogen bagi konsumen

(manusia dan hewan lainnya), tidak mengganggu keseimbangan ekosistem, dapat

dan mudah dipelihara dan diperbanyak, dapat hidup dan bertahan serta

berkembang biak di dalam usus ikan, dapat dipelihara dalam media yang

memungkinkan untuk diintroduksikan ke dalam usus ikan dan dapat hidup dan


6


berkembang di dalam air wadah pemeliharaan ikan (Feliatra dkk., 2004).

Kompiang (2009) juga menjelaskan bahwa mikroba tersebut harus memenuhi

beberapa kriteria antara lain dapat diproduksi secara massal, tetap stabil dan

viable dalam waktu lama dalam kondisi penyimpanan dan di lapang, dapat

bertahan hidup (akan lebih baik kalau dapat tumbuh) di dalam saluran pencernaan

dan memberikan dampak yang menguntungkan pada inang.

2.1.2. Fungsi Probiotik

Penggunaan probiotik di dalam bidang budidaya bertujuan untuk menjaga

keseimbangan mikroba dan pengendalian patogen dalam saluran pencernaan, air

serta lingkungan perairan melalui proses biodegradasi (Mansyur dan Tangko,

2008). Probiotik dapat mengontrol terjadinya blooming alga sehingga dapat

menjaga kestabilan nilai pH dalam tambak, menurunkan kadar BOD (Biochemical

Oxygen Demand) dan menjaga ketersediaan oksigen bagi pertumbuhan ikan.

Suatu fungsi yang cukup penting dan sebaiknya dimiliki oleh probiotik adalah

dapat menekan perkembangan patogen dalam tambak seperti Vibrio harveyi dan

virus (Muliani dkk., 2008).

Probiotik telah digunakan dalam akuakultur untuk mengontrol penyakit

sebagai suplementasi atau bahkan dalam mengganti penggunaan senyawa-

senyawa antimikrobial (Nursyiwani dkk., 2011). Probiotik tersebut mengandung

mikroba yang menguntungkan yang dapat memperbaiki usus yang berdampak

positif terhadap kesehatan inang (Kompiang, 2009). Selain itu, Yulinery dan

Nurhidayat (2012) menjelaskan bahwa probiotik dapat memperkuat sistem


7


imunitas, menurunkan jumlah bakteri patogen dengan memproduksi komponen

anti bakteri serta melakukan kompetisi untuk memperoleh daerah kolonisasi.

Terdapat dua macam cara aplikasi probiotik yaitu melalui lingkungan (air

dan dasar tambak) serta melalui oral (dicampurkan ke dalam pakan). Penggunaan

probiotik secara langsung melalui lingkungan dapat meningkatkan efektivitas

mikroba usus yang pada gilirannya akan meningkatkan pertumbuhan (Haetami,

2008) sedangkan probiotik yang dicampurkan ke dalam pakan dapat

meningkatkan kualitas pakan dengan cara penguraian sehingga dapat

meningkatkan kecernaan pakan (Mansyur dan Tangko, 2008). Nopitawati (2010)

menjelaskan bahwa pengaruh probiotik sebagai pakan tambahan, mampu

meningkatkan imun terhadap bakteri patogen. Selain itu, probiotik juga dapat

meningkatkan nilai pakan, kontribusi enzim dalam saluran pencernaan,

menghambat bakteri patogen, anti mutan gen dan anti karsinogen, menunjang

pertumbuhan serta meningkatkan respon imun.

2.1.3. Cara Pembuatan Probiotik


yang ramah lingkungan. Faktor-faktor yang mempengaruhi kinerja probiotik

antara lain komposisi mikrobiota inang, cara pemberian probiotik, umur dan jenis

inang serta kualitas dan jenis probiotik yang digunakan (Kompiang, 2009). Untuk

mendapatkan produk imbuhan pakan yang berkualitas, dilakukan optimasi

terhadap kondisi bioproses probiotik (suhu bioproses, dosis inokulum, dan waktu

bioproses). Selanjutnya untuk melihat kualitas dan nilai manfaat produk imbuhan

pakan, dilakukan pengukuran terhadap nilai kecernaannya (Haetami, 2008).


8


Cairan bakteri EM (Effective Mikroorganisme) dapat dikembangbiakkan

sendiri dengan cara memanaskan 5 liter air sampai mendidih dan tambahkan

dengan bekatul, molase dan terasi. Setelah dingin, masukkan cairan EM dan tutup

rapat selama 2 hari. Pada hari ke-3, penutup dapat dibuka sedikit dan dapat diaduk

minimal sehari sekali. Setelah satu minggu, bakteri dapat diambil dan disimpan di

dalam botol serta terhindar dari sinar matahari. Agar bakteri mendapat kebutuhan

oksigen, maka sebaiknya tutup botol jangan ditutup terlalu rapat atau biarkan

terbuka (Subandi, 2010).

2.1.4. Bakteri Probiotik (Lactobacillus plantarum)

Bakteri probiotik yang sering digunakan adalah L. plantarum. Genus

Lactobacillus mempunyai ciri-ciri yaitu bakteri berbentuk batang/rod, gram

positif, uji katalase negatif bersifat resisten dan mampu mempertahankan

hidupnya pada kondisi pH rendah (Hardiningsih dkk., 2006). Yulinery dan

Nurhidayat (2012) menjelaskan bahwa Lactobacillus memiliki sifat aerob atau

fakultatif anaerob, cepat mencerna protein, toleran terhadap asam, berbentuk

batang pendek dalam kondisi pertumbuhan yang sesuai dan cenderung lebih

panjang di bawah kondisi yang tidak menguntungkan serta dapat menghasilkan

bakteriosin. Selain itu, bakteri Lactobacillus plantarum merupakan jenis mikroba

mesofilik yaitu bakteri yang hidup pada pH antara 4,5-6,5 (Ferdaus dkk., 2008).

Elida (2002) dalam Hanum (2010) mengatakan bahwa Lactobacillus plantarum

tergolong bakteri asam laktat homofermentatif yang tumbuh pada suhu 15 - 37 0C.


9


Sifat yang menguntungkan dari bakteri L. plantarum dalam bentuk

probiotik adalah dapat digunakan untuk mendukung peningkatan kesehatan.

Bakteri tersebut berperan sebagai flora normal dalam sistem pencernaan.

Fungsinya adalah untuk menjaga keseimbangan asam dan basa sehingga pH

dalam kolon konstan (Hardiningsih dkk., 2006). Mansyur dan Tangko (2008)

menjelaskan bahwa 0,2 % pakan yang diberikan kepada hewan uji ikan bandeng

memberikan respon yang baik terhadap laju pertumbuhan harian, rasio konversi

pakan dan kecernaan pakan sebagai akibat dari aktivitas mikroorganisme

Lactobacillus di dalam memperbaiki mutu pakan.

2. 2. Bonggol Buah Nanas

Klasifikasi buah nanas menurut Irfandi (2005) adalah sebagai berikut :

Kingdom : Plantae

Divisi : Spermatophyta

Kelas : Angiospermae

Famili : Bromeliaceae (nanas-nanasan)

Genus : Ananas

Spesies : Ananas comosus (L.) Merr.

Nanas adalah buah tropis dengan daging buah berwarna kuning, memiliki

kandungan air sebesar 90 % dan termasuk komoditas yang mudah rusak, susut

serta cepat busuk (Sinar Tani, 2008). Nanas (Ananas comosus (L.) Merr) yang

kerap dikonsumsi sebagai buah segar dapat tumbuh dan berbuah di dataran tinggi

hingga 1000 meter diatas permukaan laut. Sebagai salah satu famili Bromeliaceae,

buah nanas mengandung vitamin C dan vitamin A (retinol), masing-masing


10


sebesar 13 miligram dan 69 miligram dalam setiap 100 gram bahan (Kuntarso,

2007).

Nanas merupakan buah yang sangat familiar bagi masyarakat Indonesia.

Selama ini pemanfaatan nanas terbatas pada daging buahnya saja, sementara kulit

dan bonggolnya dibuang. Padahal, kulit dan bonggol nanas tersebut diperkirakan

masih memiliki manfaat. Salah satu manfaatnya adalah kemampuannya

mempercepat proses fermentasi tempe (Miskah dkk., 2009). Titin dkk. (2011)

menguraikan bahwa bonggol buah nanas merupakan sumber protease yang

dikenal kaya akan kandungan vitamin C. Bonggol buah nanas juga memiliki

kandungan vitamin C yang relatif banyak terlihat dengan kadar yaitu sebanyak

68,565 mg.

Tabel 1. Kadar Vitamin C dalam susu, ekstrak nanas dan keju dalam 100 gram

bahan (Titin dkk., 2011).

No. Sampel Kadar Vitamin C (mg)

1 Bonggol Buah Nanas 68,553

2 Susu 45,764

3 Keju Kontrol 66,512

4 Buah Nanas 91,833

Misgiyarta dan Widowati (2002) dalam Ernawati (2010) menyatakan

bahwa bakteri asam laktat (L. plantarum) dapat diisolasi dari berbagai sumber

antara lain kobis busuk, asinan sawi, sawi busuk, kacang panjang busuk, selada

busuk, tomat busuk, limbah tahu, susu terkontaminasi, susu kedelai, pisang busuk,

pepaya busuk, nanas busuk dan sirsak busuk. Pada proses pembuatan probiotik ini

menggunakan bahan nanas dikarenakan nanas mengandung gula, mineral dan

vitamin sehingga berpotensi sebagai sumber karbon dan mineral pada media

fermentasi (Hidayat, 2011).


11


III KERANGKA KONSEPTUAL

3.1 Konseptual Penelitian

Probiotik merupakan mikroorganisme non patogen yang memberikan

pengaruh positif terhadap kesehatan inangnya (Hidayat, 2011). Salah satu bakteri

probiotik yang sering digunakan adalah Lactobacillus plantarum. Bakteri

Lactobacillus dapat digunakan untuk peningkatan kesehatan dalam sistem

pencernaan (Hardiningsih dkk., 2006). Beberapa jenis produk probiotik telah

beredar dipasaran namun menimbulkan permasalahan

karena petambak menggunakannya tanpa mengetahui dengan jelas peruntukan

dari produk tersebut. Selain itu, komposisi jenis bakteri pada kemasan belum tentu

sama dengan yang terkandung di dalamnya sehingga memerlukan kehati-hatian

dan kecermatan dalam memilih suatu produk bakteri probiotik (Amin dan

Mansyur, 2010).


yang ramah lingkungan. Untuk mendukung pertumbuhan bakteri probiotik,

diperlukan suatu substrat yang dapat menstimulasi pertumbuhan bakteri

(Surpiyanto dkk., 2012). Salah satu media yang digunakan sebagai substrat adalah

molase. Molase merupakan sumber karbon yang akan menyediakan kebutuhan

energi untuk media pertumbuhan. Selain molase, perasan buah nanas dan terasi

dapat dijadikan sebagai media pertumbuhan bakteri probiotik (Firlana, 2011).

Buah nanas merupakan salah satu buah yang melimpah ruah di Indonesia

namun pemanfaatannya belum maksimal. Miskah dkk. (2009) menyatakan bahwa


12


pemanfaatan bonggol nanas berprinsip pada kemampuannya untuk membuat

suasana asam yaitu berkisar 4–5 pada suhu ruang (Miskah dll., 2009). Selain itu,

Ferdaus dkk. (2008) juga menyatakan bahwa Lactobacillus plantarum merupakan

jenis mikroba yang hidup pada pH antara 4,5-6,5. Oleh karena itu, penelitian ini

bertujuan untuk membuat probiotik dengan cara yang mudah yaitu dengan

menggunakan limbah bonggol buah nanas.


13


Gambar 1. Bagan kerangka konsep penelitian

Keterangan:

Dilakukan

Tidak dilakukan

3.2 Hipotesis

H1 : Terdapat pengaruh pemberian bonggol buah nanas sebagai media

pembiakan terhadap jumlah total bakteri Lactobacillus plantarum.

Probiotik

Kebutuhan pasar meningkat

Buatan Sendiri Buatan Pabrik

Membutuhkan substrat untuk pertumbuhan

bakteri probiotik Lactobacillus plantarum.

Perhitungan jumlah total bakteri (TPC)

Pembuatan mudah, harga terjangkau

dan petambak dapat memilih sendiri

jenis bakteri yang akan ditumbuhkan

Bonggol

Nanas

Komposisi jenis bakteri yang tercantum

dikemasan belum tentu sama dengan

yang terkandung di dalamnya

Membuat pH

menjadi lebih asam

Sumber karbon untuk

menghasilkan energi

Merangsang pertumbuhan bakteri

probiotik (Lactobacillus plantarum)


14


IV METODOLOGI PENELITIAN

4.1 Tempat dan Waktu Penelitian

Penelitian dilakukan di Balai Karantina Ikan Kelas I Juanda Surabaya.

Penelitian dilakukan dari bulan Januari sampai Februari 2016.

4.2 Materi Penelitian

4.2.1 Alat Penelitian

Peralatan yang dibutuhkan dalam penelitian ini yaitu botol, autoclave,

pisau, blender, spidol, bunsen, pipet, ose, panci pengukus, spatula, kompor,

timbangan analitik, tabung reaksi, termometer, kertas lakmus, rak tabung, cawan

petri, labu erlenmeyer, gelas ukur, label, gunting, isolasi, steples, spidol hitam dan

tissue.

4.2.2 Bahan Penelitian

Bahan yang digunakan dalam penelitian ini meliputi kapas, sabun cuci,

molase, bonggol buah nanas, bakteri Lactobacillus plantarum, MRS agar, MRS

broth, aquades, aluminium foil, koran, karet, dan spirtus. Bakteri L. plantarum

didapatkan di laboratorium biologi Fakultas Sains dan Teknologi (FST) UNAIR

dan suplemen makanan Rillus.

4.3 Metode Penelitian

Penelitian ini menggunakan metode eksperimental. Metode eksperimen

bertujuan untuk menyelidiki ada tidaknya hubungan sebab akibat serta seberapa


15


besar hubungan sebab akibat tersebut dengan cara membandingkan suatu

kelompok atau kesatuan eksperimen dengan kelompok atau kesatuan kontrol.

4.3.1 Rancangan Percobaan

Perlakuan yang dilakukan dalam penelitian ini bertujuan untuk mengetahui

jumlah total bakteri probiotik (Lactobacillus plantarum) yang ditumbuhkan dalam

media pertumbuhan dengan lima perlakuan. Masing-masing perlakuan

mendapatkan ulangan sebanyak lima kali dengan menggunakan Rancangan Acak

Lengkap (RAL). Perlakuan yang diberikan dalam penelitian ini adalah :

P1 : Molase 100 % dan Bonggol Nanas 0 %.

P2 : Molase 75% dan Bonggol Nanas 25 %.




4.3.2 Prosedur Kerja

a. Persiapan Wadah Media Pertumbuhan Bakteri Probiotik

Wadah yang digunakan sebagai media pertumbuhan bakteri probiotik

adalah botol kultur. Botol tersebut dicuci dengan menggunakan sabun dan dibilas

dengan air hingga bersih. Setelah itu, dilakukan sterilisasi dengan menggunakan

autoclave pada suhu 121 0C selama 15 menit (Dwidjoseputro, 2003).

b. Pembuatan Media Pertumbuhan Bakteri Probiotik

Langkah pertama adalah mencuci, memotong serta menghaluskan bonggol

buah nanas dengan menggunakan blender. Sari bonggol nanas dicampurkan ke


16


dalam panci pengukus dan dimasak selama 20 menit. Setelah masak, larutan

didinginkan hingga uap panasnya menghilang. Langkah kedua adalah

memasukkan larutan nanas dan molase ke dalam botol sesuai perlakuan. Langkah

terakhir adalah memasukkan aquades dan 10 ml Lactobacillus serta diinkubasi

selama 7 hari. Usmiati dkk. (2011) menjelaskan bahwa starter bakteri probiotik

Lactobacillus sp. memenuhi syarat sebagai produk probiotik dengan mutu yang

baik dengan lama penyimpanan 4 hari pada suhu ruang yaitu sekitar 27-30 0C.

c. Pelaksanaan Penelitian

Hal pertama yang perlu dilakukan sebelum melakukan penelitian adalah

mengecek karakterisasi bakteri Lactobacillus plantarum. Penelitian pembuatan

probiotik dilakukan selama 7 hari. Tempat penelitian berada di dalam

laboratorium dengan kondisi terhindar dari sinar matahari. Selain itu, botol

sebagai media pertumbuhan bakteri probiotik harus tertutup rapat agar tidak ada

udara yang masuk dikarenakan proses tersebut berlangsung secara anaeob.

4.3.3 Parameter Penelitian

Parameter utama dalam penelitian ini adalah perhitungan jumlah koloni

bakteri setiap hari selama 7 hari dengan menggunakan TPC (Total Plate Count).

TPC adalah perhitungan jumlah tidak berdasarkan kepada jenis, tetapi secara

kasar terhadap golongan atau kelompok besar mikroorganisme umum seperti

bakteri, fungi, mikroalgae ataupun terhadap kelompok bakteri tertentu

(Suriawiria, 1986).

Penghitungan jumlah bakteri dengan metode Koch (Total Plate Count)

adalah dengan melakukan kultur bakteri terlebih dahulu. Setelah itu, menyiapkan


17


sepuluh tabung reaksi steril yang masing-masing diisi 9 ml NaCl fisiologis dan 1

ml bakteri. Pengenceran tersebut dilakukan secara seri dari tabung pertama

sampai tabung ke sepuluh dengan memindahkan masing-masing bakteri sebanyak

1 ml. Dari masing-masing tabung reaksi, diambil 1 ml untuk dimasukkan ke

dalam cawan petri dan dituangi MRS agar yang masih cair. Setelah media dalam

cawan petri memadat, segera diinkubasikan selama 2 hari. Dilakukan

penghitungan bakteri tiga kali seminggu dengan menggunakan penghitungan yaitu

jumlah bakteri dikurangi jumlah total dikali besarnya pengenceran (penghitungan

dilakukan terhadap petri yang berisi antara 25-250).

4.3.4 Analisis Data

Analisis data yang digunakan adalah bentuk eksperimental. Analisis data

dilakukan secara statistik dengan menggunakan uji ANAVA (Analysis of

Variance) dengan tingkat kepercayaan 95 % dan dilanjutkan dengan uji jarak

Duncan (Kusriningrum, 2008).


18


4.4 Alur Penelitian

Gambar 2. Diagram alur penelitian

Persiapan alat dan bahan penelitian

Proses penanaman bakteri probiotik (Lactobacillus sp.) selama 7 hari

Analisis data

Pengamatan total bakteri probiotik

Parameter utama

Perhitungan jumlah total bakteri tiga kali seminggu dengan menggunakan

TPC (Total Plate Count)

Perlakuan P2

Molase 75 %

dan Bonggol

Nanas 25 %

Perlakuan P3

Molase 50 %

dan Bonggol

Nanas 50 %

Perlakuan P4

Molase 25 %

dan Bonggol

Nanas 75 %

Perlakuan P1

Molase 100 %

dan Bonggol

Nanas 0 %

Perlakuan P5

Molase 0 %

dan Bonggol

Nanas 100 %


19


V HASIL DAN PEMBAHASAN

5.1 Hasil Penelitian

Penelitian ini dilakukan untuk mengetahui pengaruh pemberian molase

dan bonggol buah nanas sebagai media pembiakan terhadap jumlah total bakteri

Lactobacillus plantarum dengan berbagai konsentrasi molase dan bonggol buah

nanas yang diinkubasi selama 7 hari.

5.1.1. Jumlah Total Bakteri (Total Plate Count)

Data hasil uji jumlah total bakteri terhadap berbagai konsentrasi

pemberian molase dan bonggol buah nanas selama 7 hari disajikan pada tabel 2.

Pada tabel 2 terlihat bahwa terjadi perubahan jumlah populasi Lactobacillus

plantarum yang dipengaruhi oleh konsentrasi jumlah molase dan bonggol buah

nanas.

Tabel 2. Hasil jumlah total bakteri Lactobacillus plantarum pada variasi

konsentrasi Molase dan Bonggol Buah Nanas selama masa inkubasi 7 hari

(CFU/ml) dengan menyertakan Standar Deviasi.

Waktu

Pengamatan

Perlakuan

P1 P2 P3 P4 P5

Pengamatan

Hari Ke-0 5,94a ± 0 5,94

a ± 0 5,94

a ± 0 5,94

a ± 0 5,94

a ± 0

Pengamatan

Hari Ke-4 7,95b ± 0,31 7,71

b ± 0,08 6,90

c ± 0,07 8,83

a ± 0,30 8,38

ab ± 1,07

Pengamatan

Hari Ke-7 7,35c ± 0,01 8,86

a ± 0,01 8,83

b ± 0,01 6,75

e ± 0,04 7,63

d ± 1,06

Keterangan : Superskrip berbeda dalam satu baris menunjukkan ada perbedaan

yang nyata (p<0,05).







20


lkoBerdasarkan uji ANAVA pada pengamatan hari pertama, menunjukkan

tidak adanya perbedaan antar perlakuan. Semua perlakuan pada hari pertama

menunjukkan jumlah total bakteri Lactobacillus plantarum sebanyak 105 CFU/ml.

Pada pengamatan hari keempat, terdapat perbedaan antar perlakuan. Jumlah total

bakteri tertinggi ditunjukkan pada perlakuan P4 (molase 25 % dan bonggol buah

nanas 75 %) dengan hasil 108 CFU/ml. Perlakuan P4 juga tidak berbeda dengan

perlakuan P5 (molase 0 % dan bonggol buah nanas 100 %) dengan hasil 108

CFU/ml, namun berbeda nyata dengan perlakuan P1 (molase 100 % dan bonggol

buah nanas 0 %) dengan hasil 107

CFU/ml, P2 (molase 75 % dan bonggol buah

nanas 25 %) dengan hasil 107

CFU/ml dan P3 (molase 50 % dan bonggol buah


CFU/ml. Jumlah total bakteri terendah pada hari

keempat, ditunjukkan pada perlakuan P3 dengan hasil 106

CFU/ml.

Pada pengamatan pada hari ketujuh, menunjukkan terdapat perbedaan

yang nyata antar perlakuan. Jumlah total bakteri tertinggi ditunjukkan pada

perlakuan P2 (molase 75 % dan bonggol buah nanas 25 %) dengan hasil 108

CFU/ml yang berbeda dengan perlakuan P1 (molase 100 % dan bonggol buah


CFU/ml, P3 (molase 50 % dan bonggol buah nanas 50

%) dengan hasil 108

CFU/ml, P4 (molase 25 % dan bonggol buah nanas 75 %)

dengan hasil 106

CFU/ml dan P5 (molase 0 % dan bonggol buah nanas 100 %)

dengan hasil 107

CFU/ml. Jumlah total bakteri terendah ditunjukkan pada

perlakuan P4 dengan hasil 106 CFU/ml.

Secara keseluruhan dari hasil pengamatan dari hari pertama hingga hari

ketujuh, menunjukkan bahwa perlakuan P2 yaitu menggunakan kombinasi molase


21


75 % dan bonggol buah nanas 25 % pada hari ketujuh dengan hasil 108

CFU/ml

merupakan hasil jumlah total bakteri Lactobacillus plantarum tertinggi diantara

perlakuan yang lainnya, sedangkan perlakuan P4 yaitu menggunakan kombinasi

molase 25 % dan bonggol buah nanas 75 % pada hari ketujuh dengan hasil 106

CFU/ml merupakan hasil jumlah total bakteri Lactobacillus plantarum terendah.

Hasil analisis statistik terhadap jumlah total bakteri Lactobacillus plantarum

ditunjukkan pada lampiran 4, 5 dan 6.

5.1.2. Nilai pH

Data rata-rata nilai pH terhadap perlakuan berbagai konsentrasi pemberian

molase dan bonggol buah nanas selama 7 hari disajikan pada tabel 3. Pada tabel 3

terlihat bahwa terjadi perubahan nilai pH yang dipengaruhi oleh konsentrasi

jumlah molase dan bonggol buah nanas. Perlakuan P1 yang menggunakan molase

100 % dan bonggol buah nanas 0 % memperlihatkan penurunan pH dari 4

menjadi 3,8. Perlakuan P2 yang menggunakan molase 75 % dan bonggol buah

nanas 25 % dan P4 yang menggunakan molase 75 % dan bonggol buah nanas 25

% tidak memperlihatkan penurunan pH yakni hanya 4. Perlakuan P3 yang

menggunakan molase 50 % dan bonggol buah nanas 50 % memperlihatkan

penurunan pH dari 4 menjadi 3,6 dan perlakuan P5 yang menggunakan molase

100 % dan bonggol buah nanas 0 % merupakan perlakuan yang paling drastis

dalam penurunan pH yakni dari 5 menjadi 3.


22


Tabel 3. Rata-Rata nilai pH pada variasi konsentrasi Molase dan Bonggol Buah

Nanas selama masa inkubasi 7 hari.

Perlakuan Pengamatan Hari Ke-

1 2 3 4 5 6 7

P1 4 4 4 3.8 3.8 3.8 3.8

P2 4 4 4 4 4 4 4

P3 4 4 4 4 3.6 3.6 3.6

P4 4 4 4 4 4 4 4

P5 5 5 4 4 3 3 3

5.1.3. Nilai Suhu

Data nilai suhu ruang terhadap perlakuan berbagai konsentrasi pemberian

molase dan bonggol buah nanas selama 7 hari disajikan pada tabel 5. Pada tabel 5

terlihat bahwa terjadi perubahan suhu setiap harinya, namun perubahan suhu

tersebut tidak terlalu drastis. Suhu ruang selama perlakuan terendah terdapat pada

hari keempat dengan suhu sebesar 29,5 0C, sedangkan suhu ruang selama

perlakuan tertinggi terdapat pada hari kelima dengan suhu sebesar 31 0C.

Tabel 4. Nilai suhu ruangan pada variasi konsentrasi Molase dan Bonggol Buah

Nanas selama masa inkubasi 7 hari.

Hari Ke- Suhu (0C)

1 30

2 30,5

3 30

4 29,5

5 31

6 30,5

7 30

5.2 Pembahasan

Penelitian ini menggunakan kombinasi konsentrasi molase dan bonggol

buah nanas sebagai bahan pembiakan terhadap jumlah total bakteri Lactobacillus

plantarum. Pemilihan bahan molase dan bonggol buah nanas dikarenakan kedua

bahan tersebut dapat menjadi sumber substrat bagi pertumbuhan bakteri


23


Lactobacillus plantarum. Molase merupakan sumber karbon yang menyediakan

kebutuhan energi untuk media pertumbuhan (Riadi, 2007), sedangkan nanas

digunakan dalam pembuatan probiotik karena nanas mengandung gula, mineral

dan vitamin sehingga berpotensi sebagai sumber karbon dan mineral pada media

fermentasi (Hidayat dkk., 2006).

Jumlah total bakteri Lactobacillus plantarum semua perlakuan pada hari

pertama disamakan yakni sebanyak 105 CFU/ml. Hal ini bertujuan agar diketahui

perbedaan dari masing-masing perlakuan sehingga mempermudah dalam

menganalisis data.

Perlakuan P1 dengan menggunakan kombinasi konsentrasi molase 100 %

dan bonggol buah nanas 0 % mengalami peningkatan jumlah total bakteri

Lactobacillus plantarum pada hari keempat yakni dari 105

CFU/ml menjadi 107

CFU/ml, namun pada hari ketujuh mengalami penurunan. Data penunjang lainnya

meliputi pH dan suhu juga mengalami perubahan. Perlakuan P1 memperlihatkan

penurunan pH dari 4 menjadi 3,8; sedangkan suhu mengalami perubahan dari

yang terendah 29,5 0C hingga yang tertinggi 31

0C. Dapat disimpulkan bahwa

pertumbuhan bakteri Lactobacillus plantarum yang optimal pada perlakuan ini

terjadi pada hari keempat.



Lactobacillus plantarum pada hari keempat dan ketujuh yakni dari 105 CFU/ml

menjadi 107

CFU/ml dan menjadi 108. Jumlah total bakteri Lactobacillus

plantarum pada perlakuan ini menjadi yang paling tinggi diantara semua


24


perlakuan. Data penunjang lainnya seperti pH tidak memperlihatkan penurunan

yakni hanya 4; sedangkan suhu mengalami perubahan dari yang terendah 29,5 0C

hingga yang tertinggi 31 0C. Dapat disimpulkan bahwa pertumbuhan bakteri

Lactobacillus plantarum yang optimal terjadi pada hari ketujuh.



Lactobacillus plantarum pada hari keempat dan ketujuh yakni dari 105 CFU/ml

menjadi 106

CFU/ml dan menjadi 108

CFU/ml. Data penunjang lainnya meliputi

pH dan suhu juga mengalami perubahan. Perlakuan P1 memperlihatkan penurunan

pH dari 4 menjadi 3,6; sedangkan suhu mengalami perubahan dari yang terendah

29,5 0C hingga yang tertinggi 31

0C. Dapat disimpulkan bahwa pertumbuhan

bakteri Lactobacillus plantarum yang optimal terjadi pada hari ketujuh.



Lactobacillus plantarum pada hari keempat yakni dari 105 CFU/ml menjadi 10

8

CFU/ml, namun pada hari ketujuh mengalami penurunan yakni menjadi 106

CFU/ml. Jumlah total bakteri Lactobacillus plantarum pada hari ketujuh

merupakan jumlah total bakteri menjadi yang paling rendah. Data penunjang

lainnya seperti pH tidak memperlihatkan penurunan pH yakni hanya 4; sedangkan

suhu mengalami perubahan dari yang terendah 29,5 0C hingga yang tertinggi 31

0C. Dapat disimpulkan bahwa pertumbuhan bakteri Lactobacillus plantarum yang

optimal terjadi pada hari keempat.


25


Perlakuan P5 dengan menggunakan kombinasi konsentrasi molase 0 % dan

bonggol buah nanas 100 % mengalami peningkatan jumlah total bakteri

Lactobacillus plantarum pada hari keempat yakni dari 105 CFU/ml menjadi 10

8

CFU/ml, namun pada hari ketujuh mengalami penurunan yakni menjadi 107

CFU/ml. Data penunjang lainnya meliputi pH dan suhu juga mengalami

perubahan. Perlakuan P1 memperlihatkan penurunan pH dari 5 menjadi 3;

sedangkan suhu mengalami perubahan dari yang terendah 29,5 0C hingga yang

tertinggi 31 0C. Dapat disimpulkan bahwa pertumbuhan bakteri Lactobacillus

plantarum yang optimal terjadi pada hari ketujuh.

Gambar 3. Fase Pertumbuhan Lactobacillus plantarum pada Variasi

Konsentrasi Molase dan Bonggol Buah Nanas selama Masa Inkubasi 7 Hari.

Berdasarkan Gambar 3 tersebut, secara umum hasil jumlah total bakteri

Lactobacillus plantarum mengalami peningkatan maupun penurunan pada

masing-masing perlakuan. Pada perlakuan P1, P4 dan P5 mengalami peningkatan

(fase logaritmik) pada hari keempat dan penurunan (fase kematian) pada hari


26


ketujuh. Suprihatin dan Perwitasari (2010) menjelaskan bahwa menurunnya

jumlah total bakteri Lactobacillus plantarum diakibatkan karena adanya

penurunan nutrien pada substrat yang digunakan untuk proses fermentasi.

Sedangkan pada perlakuan P2 dan P3 mengalami kenaikan (fase logaritmik) pada

hari keempat dan ketujuh. Saripah (1983) dalam Suprihatin dan Perwitasari

(2010) mengatakan semakin lama waktu fermentasi, maka pertumbuhan bakteri

juga semakin meningkat selama kondisi substrat masih memungkinkan untuk

berlangsungnya metabolisme bakteri.

Perbedaan hasil pada perlakuan kombinasi konsentrasi molase dan

bonggol buah nanas menunjukkan bahwa terdapat pengaruh pemberian bonggol

buah nanas sebagai media pembiakan bakteri Lactobacillus plantarum. Misgiyarta

dan Widowati (2002) dalam Ernawati (2010) menyatakan bahwa bakteri asam

laktat (L. plantarum) dapat diisolasi dari berbagai sumber antara lain kobis busuk,

asinan sawi, sawi busuk, kacang panjang busuk, selada busuk, tomat busuk,

limbah tahu, susu terkontaminasi, susu kedelai, pisang busuk, pepaya busuk,

nanas busuk dan sirsak busuk.

Buckle et al (1987) dalam Suprihatin dan Perwitasari (2010) menjelaskan

bahwa proses fermentasi asam laktat secara alami dapat berlangsung apabila

substrat mengandung zat gula sebesar 4-20 % dan membutuhkan zat nutrisi

seperti vitamin dan mineral untuk pertumbuhannya. Selain itu, asam laktat yang

merupakan hasil metabolit dari bakteri Lactobacillus plantarum dipengaruhi oleh

lama waktu fermentasi.


27


Nilai pH pada penelitian ini tidak mengalami penurunan yang terlalu

drastis yaitu antara 5 - 3. Hal ini sesuai dengan pernyataan Novirisandi (2012)

yang menyatakan nilai pH tidak terlalu berpengaruh terhadap jumlah sel yang

dihasilkan karena ada faktor penentu lainnya seperti unsur karbon (C) dan

nitrogen (N) yang tersedia pada media. Suprihatin dan Perwitasari (2010) juga

menjelaskan bahwa Nilai pH tersebut masih merupakan pH optimum bagi

aktivitas bakteri asam laktat yaitu sebesar 3-6. Meningkatnya jumlah total bakteri

Lactobacillus plantarum tidak selalu disertai dengan menurunnya pH karena

terdapat bahan lain yang mempengaruhi pH seperti amoniak. Selain itu,

pemanfaatan bonggol buah nanas ini berprinsip pada kemampuan untuk membuat

suasana asam yang pas bagi pertumbuhan bakteri yakni berkisar antara 4 sampai 5

(Munir, 2010).


28


VI KESIMPULAN DAN SARAN

6.1 Kesimpulan

Hasil penelitian menunjukkan terdapat pengaruh pemberian bonggol buah

nanas terhadap jumlah total bakteri Lactobacillus plantarum. Hasil tertinggi

jumlah total bakteri ditunjukkan pada perlakuan P2 pengamatan hari ketujuh

dengan kombinasi molase 75 % dan bonggol buah nanas 25 % sebesar 108

CFU/ml.

6.2 Saran

Perlu dilakukan penelitian secara lanjut untuk dapat mengeksplorasi bahan

limbah lainnya sebagai alternatif media pengganti molase bagi pertumbuhan

bakteri Lactobacillus plantarum.


29


DAFTAR PUSTAKA

Amin, M. dan A. Mansyur. 2010. Pertumbuhan Plankton pada Aplikasi Probiotik

dalam Pemeliharaan Udang Windu (Penaeus monodon Fabricius) di Bak

Terkontrol. Prosiding Forum inovasi Teknologi Akuakultur 2010. Hal

261-268.

Buletin Teknopro Hotikultura. 2004. Manfaat Nanas Bagi Kesehatan. Buletin

Teknopro Hotikultura Edisi 71 Bulan Juli Tahun 2004.

Dwidjoseputro, D. 2003. Dasar-Dasar Mikrobiologi. Penerbit Djambatan :

Jakarta. Hal 91.

Ernawati. 2010. Isolasi dan Identifikasi Bakteri Asam Laktat pada Susu kambing

Segar. Skripsi, Fakultas Sains dan Teknologi, Universitas Islam Negeri

Maulana Malik Ibrahim, Malang. 99 hal.

Feliatra, I. Efendi dan E. Suryadi. 2004. Isolasi dan Identifikasi Bakteri Probiotik

dari Ikan Kerapu Macan (Epinephelus fuscogatus) dalam Upaya Efisiensi

Pakan Ikan. Jurnal Natur Indonesia 6 (2). Hal 75-80.

Ferdaus, F., M. O. Wijayanti, E. S. Retnonigtyas dan W. Irawati. 2008. Pengaruh

pH, Konsentrasi Substrat, Penambahan Kalsium Karbonat dan Waktu

Fermentasi terhadap Perolehan Asam Laktat dari Kulit Pisang. Widya

Teknik Vol. 7, No. 1, 2008 (1-14). Hal 4.

Firlana, M. A. 2011. Teknik Pembuatan Effective Microorganism (EM) untuk

Perikanan di Biotech Agro Desa Sengon, Kecamatan Jombang, Kabupaten

Jombang, Propinsi Jawa Timur. Program Studi Budidaya Perairan,

Universitas Airlangga. 57 hal.

Gunawan dan M. M. S. Sundari. 2003. Pengaruh Penggunaan Probiotik dalam

Ransum terhadap Produktivitas Ayam. Wartazoa Vol. 13 No. 3 Th. 2003.

Hal 92-98.

Haetami, Kiki, Abun dan Y. Mulyani. 2008. Studi Pembuatan probiotik BAS

(Bacillus licheniformis, Aspergillus niger dan Sacharomices cereviseae)

sebagai Feed Suplement serta Implikasinya terhadap Pertumbuhan Ikan

Nila Merah. Universitas Padjadjaran. 53 hal.

Hanum, Z. 2010. Kemampuan Susu Fermentasi Lactobacillus plantarum

Menghambat Salmonella typhymurium secara In Vitro. Agripet Vol 10,

No. 2, Oktober 2010. Hal 34-39.


30


Hardiningsih, R., R. N. R. Napitupuli dan T. Yulinery. 2006. Isolasi dan Uji

Resistensi Beberapa Isolat Lactobacillus pada pH rendah. Biodiversitas

Vol. 7, No. 1, Januari 2006. Hal 15-17.

Hidayat, H. 2011. Karakterisasi Molekuler Bakteri Asam Laktat (BAL) dengan

Gen 16S rRNA Penghasil Enzim Protease yang Berpotensi sebagai

Probiotik dari Fermentasi Markisa Kuning (Passiflora edulis var.

flavicurpa) di Sumatera Barat. Tesis. Program Pasca Sarjana, Universitas

Andalas, Padang. 9 hal.

Irfandi. 2005. Karakterisasi Morfologi Lima Populasi Nanas (Ananas comosus

(L.) Merr.). Skripsi, Fakultas Pertanian, Institut Pertanian Bogor. 38 hal.

Kompiang, I. P. 2009. Pemanfaatan Mikroorganisme sebagai Probiotik untuk

Meningkatkan Produksi Ternak Unggas di Indonesia. Pengembangan

Inovasi Pertanian 2 (3), 2009. Hal 177-191.

Kuntarso, A. 2007. Pengembangan Teknologi Pembuatan Low Fat Fruitty Bio-

Yogurt (Lo-Bio F). Skripsi, Fakultas Teknologi Pertanian, Institut

Pertanian Bogor. 94 hal.

Kusriningrum, R. S. 2008. Buku Ajar Perancangan Percobaan. Dani Abadi :

Surabaya. Hal 13.

Mansyur, A. dan A. M. Tangko. 2008. Probiotik : Pemanfaatannya untuk Pakan

Ikan Berkualitas Rendah. Balai Riset Perikanan Budidaya Air Payau,

Maros. Media Akuakultur Volume 3 Nomor 2 tahun 2009. Hal 145-149.

Miskah, S., R. Daslam dan D. E. Suryani. 2009. Pengaruh Penambahan Ekstrak

Bonggol dan Kulit Nanas pada Proses Fermentasi Tempe. Jurnal Teknik

Kimia No. 1, Vol. 16, Januari 2009. Hal 1.

Muliani, Nurbaya dan B. R. Tampangallo. 2008. Pengaruh Rasio Bakteri

Probiotik Terhadap Perubahan Kualitas Air dan Sintasan Udang Windu,

Penaeus monodon dalam Akuarium. Jurnal Riset Akuakultur Vol. 3 No. 1

Tahun 2008. Hal 33-42.

Munir, S., S. Handayani, A. Fanani dan A. Y. Pranna. 2010. Pemanfaatan Kulit

dan Bonggol Nanas untuk Mempercepat Proses Pembuatan Tempe Guna

Meningkatkan Laba Pengusaha Tempe. PKMK-1-13-1. Hal 3.

Nopitawati. 2010. Sifat Umum Udang Vaname. Institut Pertanian Bogor. 6 hal.

Novirisandi, Rochma. 2012. Kajian Viabilitas dan Pola Pertumbuhan

Lactobacillus plantarum pada Variasi Konsentrasi Molase dan Waktu


31


Inkubasi. Hal. 39. Skripsi, Biologi, Fakultas Sains dan Teknologi,

Universitas Airlangga.

Nursyiwani, W. Asmara, A. E. T. H. Wahyuni dan Triyanto. 2011. Properti

Probiotik Isolat Bakteri Asam Laktat untuk Mengendalikan Pertumbuhan

Vibrio alginolyticus pada Ikan Kerapu Macan (Epinephelus fuscoguttatus).

Ilmu Kelautan September 2011 Volume 16 (3). Hal 151-158.

Sinar Tani. 2008. Sari Buah Nanas Kaya Manfaat, Alternatif Meningkatkan Nilai

Ekonomis Hasil Panen. Edisi 13-19 Agustus 2008. 2 hal.

Subandi, A. 2010. Pembuatan Pupuk Kompos Padat dan Cair. Hal 1-11.

Suprihatin dan D. S. Perwitasari. 2010. Pembuatan Asam Laktat dari Limbah

Kubis. ISSN 1987 – 0427. Hal 1-8.

Supriyanto, A., R. Novirisandi dan Ni’matuzahroh. 2012. Kajian Viabilitas dan

Pola Pertumbuhan Lactobacillus plantarum pada Variasi Konsentrasi

Molase dan Waktu Inkubasi. Hal 1-10.

Suriawiria, U. 1986. Buku Materi Pokok Mikrobiologi PBIO4440/3 SKS/Modul

6-9. Penerbit Alumni : Bandung. Hal 102.

Titin, F. M., A. Kusrijadi dan M. Amelia. 2011. Pemanfaatan Protease dari

Ekstrak Nanas (Ananas comosus L.merry) sebagai Koagulan dalam

Produksi Keju Cottage Berkualitas. Seminar Nasional Kimia dan

Pendidikan Kiimia III. ISBN : 978-97901533-85-0. Hal 1-9.

Usmiati, S., W. Broto dan H. Setiyanto. 2011. Karakteristik Dadih Susu Sapi yang

Menggunakan Starter Bakteri Probiotik. JITV Vol. 16 No. 2 Th. 2011 :

140-152. Hal 1.

Yulinery T. dan N. Nurhidayat. 2012. Analisis Viabilitas Probiotik Lactobacillus

Terenkapsulasi dalam Penyalut Dekstrin dan Jus Markisa (Passiflora

edulis). Jurnal Tek. Ling. Vol. 13 No. 1. Hal 109-121.


32


LAMPIRAN 1. Data jumlah total bakteri Lactobacillus plantarum selama masa

inkubasi 7 hari pada konsentrasi molase dan bonggol buah nanas

Inkubasi Perlakuan Ulangan Hasil TPC

Hari Ke-0

1

1 8.85 x 105

2 8.85 x 105

3 8.85 x 105

4 8.85 x 105

5 8.85 x 105

2

1 8.85 x 105

2 8.85 x 105

3 8.85 x 105

4 8.85 x 105

5 8.85 x 105

3

1 8.85 x 105

2 8.85 x 105

3 8.85 x 105

4 8.85 x 105

5 8.85 x 105

4

1 8.85 x 105

2 8.85 x 105

3 8.85 x 105

4 8.85 x 105

5 8.85 x 105

5

1 8.85 x 105

2 8.85 x 105

3 8.85 x 105

4 8.85 x 105

5 8.85 x 105

Hari Ke-4

1

1 2.99 x 108

2 6.62 x 107

3 6.97 x 107

4 7.69 x 107

5 5.20 x 107

2

1 4.16 x 107

2 6.35 x 107

3 4.82 x 107

4 4.43 x 107

5 6.15 x 107

3 1 8.95 x 10

6

2 9.14 x 106


33


3 6.55 x 106

4 6.55 x 106

5 8.55 x 106

4

1 3.85 x 108

2 6.08 x 108

3 2.20 x 109

4 5.52 x 108

5 4.84 x 108

5

1 5.24 x 108

2 5.45 x 107

3 5.23 x 107

4 3.90 x 107

5 1.30 x 107

Hari Ke-7

1

1 2.25x 107

2 2.30 x 107

3 2.26 x 107

4 2.14 x 107

5 2.25 x 107

2

1 7.53 x 108

2 7.12 x 108

3 7.02 x 108

4 7.05 x 108

5 7.11 x 108

3

1 6.95 x 108

2 6.77 x 108

3 6.71 x 108

4 6.58 x 108

5 6.46 x 108

4

1 2.29 x 106

2 2.36 x 106

3 2.32 x 106

4 2.17 x 106

5 2.10 x 106

5

1 4.79 x 106

2 5.50 x 106

3 5.69 x 106

4 6.05 x 106

5 5.82 x 106


34


LAMPIRAN 2. Data Rerata jumlah sel dan log jumlah sel pada variasi

konsentrasi molase dan bonggol buah nanas

Inkubasi Perlakuan Ulangan Jumlah Sel Rerata

Jumlah Sel

Log Jumlah

Sel

Rerata Log

Jumlah Sel

Hari Ke-0

1

1 885460

885460

5.94716895

5.947168947

2 885460 5.94716895

3 885460 5.94716895

4 885460 5.94716895

5 885460 5.94716895

2

1 885460

885460

5.94716895

5.947168947

2 885460 5.94716895

3 885460 5.94716895

4 885460 5.94716895

5 885460 5.94716895

3

1 885460

885460

5.94716895

5.947168947

2 885460 5.94716895

3 885460 5.94716895

4 885460 5.94716895

5 885460 5.94716895

4

1 885460

885460

5.94716895

5.947168947

2 885460 5.94716895

3 885460 5.94716895

4 885460 5.94716895

5 885460 5.94716895

5

1 885460

885460

5.94716895

5.947168947

2 885460 5.94716895

3 885460 5.94716895

4 885460 5.94716895

5 885460 5.94716895

Hari Ke-4

1

1 299090909.1 112781818.2

8.475803213 7.948385121

2 66181818.18 7.820738694

3 69727272.73 7.843402679

4 76909090.91 7.885977678

5 52000000 7.716003344

2

1 41636363.64 51800000

7.619472793 7.7079018

2 63454545.45 7.802462737

3 48181818.18 7.682883184

4 44272727.27 7.646136276

5 61454545.45 7.788554011

3 1 8954545.455 7949090.909

6.952043545 6.89549925

2 9136363.636 6.960773377


35


3 6545454.545

6.815939811

4 6554545.455 6.81654258

5 8554545.455 6.932196938

4

1 385454545.5 845818181.8

8.585973171 8.827748848

2 608181818.2 8.784033433

3 2200000000 9.342422681

4 551818181.8 8.741796006

5 483636363.6 8.684518947

5

1 524545454.5 2734109091

8.719783128 8.376318123

2 54545454.55 7.736758565

3 52363636.36 7.719029798

4 39090909.09 7.59207577

5 13000000000 10.11394335

Hari Ke-7

1

1 22454545.45

22381818.18

7.35130427

7.349763642

2 23000000 7.36172784

3 22636363.64 7.35480666

4 21363636.36 7.32967518

5 22454545.45 7.35130427

2

1 752727272.7

716363636.4

8.87663765

8.854990886

2 711818181.8 8.85236908

3 701818181.8 8.84622462

4 704545454.5 8.84790902

5 710909090.9 8.85181407

3

1 694545454.5

669454545.5

8.84170067

8.825590147

2 677272727.3 8.83076359

3 670909090.9 8.82666368

4 658181818.2 8.81834588

5 646363636.4 8.81047692

4

1 2290909.091

2249090.909

6.36000786

6.351592105

2 2363636.364 6.37358066

3 2318181.818 6.3651475

4 2172727.273 6.33700522

5 2100000 6.32221929

5

1 4790909.091

5569090.909

6.68041793

6.744435703

2 5500000 6.74036269

3 5690909.091 6.75518165

4 6045454.545 6.78142896

5 5818181.818 6.76478729


36


LAMPIRAN 3. Data pH selama masa inkubasi 7 hari pada konsentrasi molase

dan bonggol buah nanas

Perlakuan Ulangan Pengamatan Hari Ke

1 2 3 4 5 6 7

P1

1 4 4 4 3 3 3 3

2 4 4 4 4 4 4 4

3 4 4 4 4 4 4 4

4 4 4 4 4 4 4 4

5 4 4 4 4 4 4 4

Rata-Rata 4 4 4 3.8 3.8 3.8 3.8

P2

1 4 4 4 4 4 4 4

2 4 4 4 4 4 4 4

3 4 4 4 4 4 4 4

4 4 4 4 4 4 4 4

5 4 4 4 4 4 4 4

Rata-Rata 4 4 4 4 4 4 4

P3

1 4 4 4 4 3 3 3

2 4 4 4 4 4 4 4

3 4 4 4 4 3 3 3

4 4 4 4 4 4 4 4

5 4 4 4 4 4 4 4

Rata-Rata 4 4 4 4 3.6 3.6 3.6

P4

1 4 4 4 4 4 4 4

2 4 4 4 4 4 4 4

3 4 4 4 4 4 4 4

4 4 4 4 4 4 4 4

5 4 4 4 4 4 4 4

Rata-Rata 4 4 4 4 4 4 4

P5

1 5 5 4 4 3 3 3

2 5 5 4 4 3 3 3

3 5 5 4 4 3 3 3

4 5 5 4 4 3 3 3

5 5 5 4 4 3 3 3

Rata-Rata 5 5 4 4 3 3 3


37


LAMPIRAN 4. Penghitungan data secara statistika menggunakan SPSS pada hari

pertama perlakuan

Oneway

Descriptives

TPC Hari Ke-0

N Mean

Std.

Deviation

Std.

Error

95%

Confidence

Interval for

Mean

Min Max

Lower

Bound

Upper

Bound

Molase 100 % dan

Nanas 0 % 5 5.9470 .00000 .00000 5.9470 5.9470 5.95 5.95

Molase 75 % dan

Bonggol Nanas 25 % 5 5.9470 .00000 .00000 5.9470 5.9470 5.95 5.95

Molase 50 % dan

Bonggol Nanas 50 % 5 5.9470 .00000 .00000 5.9470 5.9470 5.95 5.95

Molase 25 % dan

Bonggol Nanas 75 % 5 5.9470 .00000 .00000 5.9470 5.9470 5.95 5.95

Molase 0 % dan

Bonggol Nanas 100 % 5 5.9470 .00000 .00000 5.9470 5.9470 5.95 5.95

Total 25 5.9470 .00000 .00000 5.9470 5.9470 5.95 5.95

ANOVA

TPC Hari Ke-0 Sum of Squares df

Mean

Square F Sig.

Between Groups .000 4 .000 .000 1.000

Within Groups .000 20 .000

Total .000 24


38


Post Hoc Tests

Homogeneous Subsets

Duncan

Media Pertumbuhan N

Subset for alpha = 0.05

1

Molase 100 % dan Nanas 0 % 5 5.9470

Molase 75 % dan Bonggol Nanas 25 % 5 5.9470




Sig. 1.000

Means for groups in homogeneous subsets are displayed.


39



keempat perlakuan

Oneway

Notes

Output Created 10-May-2016 15:11:33

Comments

Input Active Dataset DataSet0

Filter <none>

Weight <none>

Split File <none>

N of Rows in

Working Data

File

27

Missing Value Handling Definition of

Missing User-defined missing values are treated as missing.

Cases Used Statistics for each analysis are based on cases with

no missing data for any variable in the analysis.

Syntax ONEWAY PengamatanHariKe4 BY Perlakuan

/STATISTICS DESCRIPTIVES

/MISSING ANALYSIS

/POSTHOC=DUNCAN ALPHA(0.05).

Resources Processor Time 00:00:00.062

Elapsed Time 00:00:00.031


40


Descriptives

TPC Hari Ke-4

N Mean

Std.

Deviatio

n

Std.

Error

95%

Confidence

Interval for

Mean

Min Max

Lower

Bound

Upper

Bound

Molase 100 % dan Nanas 0 % 5 7.9484 .30150 .13483 7.5740 8.3228 7.72 8.48

Molase 75 % dan Bonggol

Nanas 25 % 5 7.7078 .08335 .03727 7.6043 7.8113 7.62 7.80


Nanas 50 % 5 6.8956 .07297 .03263 6.8050 6.9862 6.82 6.96


Nanas 75 % 5 8.8278 .29688 .13277 8.4592 9.1964 8.59 9.34

Molase 0 % dan Bonggol Nanas

100 % 5 8.3764 1.07163 .47925 7.0458 9.7070 7.59 10.11

Total 25 7.9512 .81580 .16316 7.6145 8.2879 6.82 10.11

ANOVA

TPC Hari Ke-4 Sum of Squares df Mean Square F Sig.

Between Groups 10.614 4 2.653 9.903 .000

Within Groups 5.359 20 .268

Total 15.973 24


41


Post Hoc Tests

Homogeneous Subsets

TPC Hari Ke-4

Duncan

Media Pertumbuhan N


1 2 3




Molase 0 % dan Bonggol Nanas 100 % 5 8.3764 8.3764


Sig. 1.000 .066 .183



42



ketujuh perlakuan

Oneway

Notes

Output Created 10-May-2016 15:17:52

Comments

Input Active Dataset DataSet0

Filter <none>

Weight <none>

Split File <none>

N of Rows in

Working Data File 27

Missing Value Handling Definition of Missing User-defined missing values are treated as

missing.

Cases Used Statistics for each analysis are based on cases

with no missing data for any variable in the

analysis.

Syntax ONEWAY PengamatanHariKe7 BY

Perlakuan

/STATISTICS DESCRIPTIVES

/MISSING ANALYSIS

/POSTHOC=DUNCAN ALPHA(0.05).

Resources Processor Time 00:00:00.062

Elapsed Time 00:00:00.031


43


Descriptives

TPC Hari Ke-7

N Mean

Std.

Deviati

on

Std.

Error

95%

Confidence

Interval for

Mean

Min Max

Lower

Bound

Upper

Bound

Molase 100 % dan Nanas 0 % 5 7.3498 .01195 .00534 7.3350 7.3646 7.33 7.36


Nanas 25 % 5 8.8550 .01257 .00562 8.8394 8.8706 8.85 8.88


Nanas 50 % 5 8.8256 .01226 .00548 8.8104 8.8408 8.81 8.84


Nanas 75 % 5 6.3516 .02145 .00959 6.3250 6.3782 6.32 6.37

Molase 0 % dan Bonggol Nanas

100 % 5 6.7442 .03887 .01738 6.6959 6.7925 6.68 6.78

Total 25 7.6252

1.0635

4 .21271 7.1862 8.0642 6.32 8.88

ANOVA

TPC Hari Ke-7 Sum of Squares df Mean Square F Sig.

Between Groups 27.137 4 6.784 1.401E4 .000

Within Groups .010 20 .000

Total 27.147 24


44


Post Hoc Tests

Homogeneous Subsets

TPC Hari Ke-7

Duncan

Media Pertumbuhan N


1 2 3 4 5






Sig. 1.000 1.000 1.000 1.000 1.000



45


LAMPIRAN 7. Dokumentasi Penelitian

a. Proses Penghalusan Bonggol Buah Nanas dengan Menggunakan Blender.

b. Pengidentifikasian Bakteri Lactobacillus plantarum.

c. Botol-Botol Perlakuan yang sudah diberi label.


46


d. Pengerjaan TPC (Total Plate Count).

e. Proses Pengenceran untuk Pengerjaan TPC (Total Plate Count).

f. Penyimpanan Plate hasil TPC di dalam Oven


47


g. Hasil Koloni Bakteri Lactobacillus plantarum pada proses TPC

h. Proses Pewarnaan untuk identifikasi Bakteri Lactobacillus plantarum

i. Hasil Pewarnaan berwarna ungu yang menandakan bahwa bakteri tersebut

adalah Bakteri Lactobacillus plantarum

PENGARUH PENGGUNAAN NANAS DAN MARKISA SEBAGAI …repository.unair.ac.id/56706/2/KKC KK PK BP 61-16...

Documents

Transcript of PENGARUH PENGGUNAAN NANAS DAN MARKISA SEBAGAI …repository.unair.ac.id/56706/2/KKC KK PK BP 61-16...