Kondisi Ph Ultrafiltrasi Pada Pemurnian Enzim Xilanase
-
Upload
novi-latifa -
Category
Documents
-
view
13 -
download
6
description
Transcript of Kondisi Ph Ultrafiltrasi Pada Pemurnian Enzim Xilanase
1
KONDISI pH ULTRAFILTRASI PADA PEMURNIAN ENZIM XILANASE
LAPORAN PENELITIAN
Oleh :
Ir. Darti Nurani, MSi
PROGRAM STUDI TEKNOLOGI INDUSTRI PERTANIAN INSTITUT TEKNOLOGI INDONESIA
SERPONG 2006
2
3
KONDISI pH ULTRAFILTRASI PADA PEMURNIAN XILANASE
Darti Nurani 1), AchmadinLuthfi2), Rehany Susanna C. Mooy3)
1) Dosen Program Studi Teknologi Industri Pertanian, Institut Teknologi Indonesia, Serpong
2) Peneliti Bioindustri, BPPT 3) Alumni Program Studi Teknologi Industri Pertanian, Institut Teknologi
Indonesia, Serpong
Abstrak
Pemisahan protein adalah bagian penting dari industri bioproses. Banyak bioproduk berupa protein diantaranya adalah produk enzim xilanase, sehingga proses pemisahan dan pemurnian protein perlu mendapat perhatian. Dengan keterbatasan metode pemurnian enzim melalui pemisahan protein yang memiliki berat molekul yang hampir mirip perbandingan rasionya, yaitu satu banding sepuluh, maka perlu dikaji lebih lanjut metode pemurnian enzim dengan meningkatkan atau menurunkan nilai radius hidrodinamik dari kondisi bufer (yaitu kekuatan ion dan pH). Penelitian ini bertujuan untuk mempelajari kondisi pH terbaik dan jenis membran yang tepat pada proses pemurnian enzim xilanase secara ultrafiltrasi. Penelitian ini bersifat deskriptif. Metode yang digunakan untuk pemurnian enzim xilanase adalah ultrafiltrasi dengan variasi pH 4,94; 5,80; 6,60; 7,40 dan 8,20. Proses ultrafiltrasi menggunakan dua jenis membran, yaitu polyethersulfone dan regenerated cellulose. Analisis yang dilakukan meliputi analisis kadar protein, analisis aktivitas enzim xilanase dan analisis aktivitas spesifik. Hasil pemurnian xilanase terbaik yang diperoleh dari ultrafiltrasi menggunakan membran polyethersulfone dicapai pada pH 4,94; dengan kandungan protein permeate sebesar 0,884 mg/ml, aktivitas xilanase sebesar 12,277 U/ml dan aktivitas spesifik sebesar 13,888 U/mg. Hasil pemurnian xilanase terbaik yang diperoleh dari ultrafiltrasi menggunakan membran regenerated cellulose pada pH 8,20; dengan kandungan kadar protein rentetate sebesar 0,580 mg/ml dan aktivitas enzim xilanasenya sebesar 7,192 U/ml. Kata kunci: pemurnian, xilanase, ultrafiltrasi
PENDAHULUAN
Enzim xilanase berperanan penting diantaranya di industri kertas, dalam
proses pemutihan pulp dengan membantu melepaskan lignin dari pulp. Kendala
yang dihadapi untuk memproduksi enzim xilanase adalah tahapan proses
pemurniannya. Salah satu metoda pemurnian enzim adalah cara filtrasi. Ada
4
beberapa metoda filtrasi untuk memurnikan enzim, diantaranya: reverse osmosis,
ultrafiltrasi dan mikrofiltrasi. Menurut Harrison (1994) ultrafiltrasi dikenal
sebagai proses operasi alternatif yang sangat efektif dan telah mulai diaplikasikan
secara luas di bidang farmasi dan industri pangan. Meskipun ultrafiltrasi telah
digunakan secara luas, potensinya untuk fraksinasi protein belum dieksploitasi
dalam industri bioteknologi.
Ultrafiltrasi secara tradisional telah digunakan untuk pemisahan
berdasarkan ukuran, tetapi aplikasi untuk protein yang berukuran sama sangat
jarang dilakukan. Meskipun demikian, ultrafiltrasi memungkinkan untuk mudah
diperbanyak dalam pemisahan protein untuk skala industri. Dengan sistem
ultrafiltrasi, dimungkinkan untuk penyediaan pemisahan protein dalam jumlah
besar yang mendukung kelanjutan riset di bidang ini. Oleh karena itu, akan
dilakukan penelitian proses pemurnian enzim xilanase menggunakan metoda
ultrafiltrasi pada kondisi pH dan jenis membran yang tepat.
Namun, metode pemurnian enzim melalui pemisahan protein yang
memiliki berat molekul yang hampir mirip perbandingan rasionya, yaitu satu
banding sepuluh, masih sangat terbatas (Cherkasov dan Polotsky, 1996).
Penelitian ini akan dilakukan dengan pendekatan penelitian yang telah dilakukan
oleh Saksena dan Zydney (1994), yaitu mempelajari pengaruh pH pada ukuran
protein. Berdasarkan hasil penelitian mereka menunjukkan bahwa pemisahan
protein bergantung pada titik isoelektrisnya. Adanya perubahan pH dapat
mengubah muatan pada protein dan membran.
Penelitian lanjutan yang dilakukan oleh Pujar dan Sydney (1998)
menunjukkan bahwa dengan bertambahnya muatan pada protein akan
5
menyebabkan bertambah pula volume efektifnya. Hal ini menyebabkan terjadi
difusi awan ion di sekitarprotein (the electrical double layer). Fenomena ini
digunakan dalam pemisahanxilanasedari protein non ezim sehingga diperoleh
aktivitas enzim yang tinggi dengan menggunakan metode ultrafiltrasi.
Penelitian ini bertujuan untuk mempelajari kondisi pH terbaik dan jenis
membran yang tepat pada proses pemurnian enzim xilanase secara ultrafiltrasi.
BAHAN DAN METODA
Bahan dan alat
Enzim xilanase yang digunakan pada penelitian ini dihasilkan oleh
Bacillus stearothermophillus DSM 22 (koleksi BPPTCC- Laboratorium
Teknologi Bioindustri dan Teknologi, Serpong). Bahan lain yang dibutuhkan
antara lain Na2HPO4, NaHPO4.H2O, oat spelt xylan, NaOH0,1 M, pereaksi DNS
(3,5 Dinitrosalisilic acid), xilosa, BSA (Bovine Serum Albumin), pereaksi
Bradford.
Peralatan yang digunakan dalam penelitian ini meliputi: Amiconstirred
cells, vortex, spektrofotometer, pH meter, timbangan, sentrifus, mikropipet, dan
peralatan gelas dan peralatan umum di laboratorium mikrobiologi dan biokimia.
Metoda
Penelitian ini bersifat deskriptif. Penelitian diawali dengan perlakuan
pendahuluan terhadap enzim xilanase kasar yang dihasilkan oleh Bacillus
stearothermophillus DSM 2 dengan sentrifugasi agar diperoleh enzim dengan
aktivitas tinggi dan terbebas dari sejumlah bahan pengotor, pyrogens dan virus-
6
virus serta protein-protein enzim lain selain xilanase yang dapat menyebabkan
tersumbatnya pori-pori membran, yang akan mempengaruhi proses ultrafiltrasi.
Supernatan yang diperoleh dari hasil sentrifugasi, selanjutnya divariasikan
pHnya, yaitu pH 4,94; 5,80; 6,60; 7,40 dan 8,40. Kemudian masing-masing
sampel dilakukan ultrafiltrasi dengan menggunakan membran berukuran 30 kDa
dengan dua jenis membran yang berbeda, yaitu polyethersulfone dan regenerated
cellulose.
Pengujian sampel dilakukan terhadap larutan yang tertahan di atas
membran (rentetate) dan yang lolos dari membran (permeate). Pengambilan
sampel umpan dilakukan di awal sebelum ultrafiltrasi dan pengambilan sampel
rentetate dilakukan hingga jumlah enzim tersisa 10 ml. Sampel permeate
ditampung selama proses ultrafiltrasi berlangsung, kemudian sampel dianalisis
aktivitas enzim (Bailey, 1992) dan kadar proteinnya (Bradford, 1976) serta
analisis aktifitas spesifik (Suhartono, 1989).
HASIL DAN PEMBAHASAN
Hasil pemurnian enzim xilanase dengan ultrafiltrasi menggunakan membran polyethersulfone pada kondisi pH yang berbeda Hasil analisis aktivitas enzim xilanase, kadar protein dan aktivitas spesifik produk
hasil pemurnian enzim xilanase dengan ultrafiltrasi menggunakan membran
polyethersulfone pada kondisi pH yang berbeda dapat dilihat pada Tabel 1, 2 dan
3.
7
Tabel 1. Aktivitas enzim xilanase hasil ultrafiltrasi menggunakan membran polyethersulfone pada kondisi pH yang berbeda
Produk
ultrafiltrasi pH ultrafiltrasi Aktivitas enzim (U/ml)
permeate
4,94 12,2777 5,80 2,983 6,60 5,708 7,40 2,642 8,20 1,888
rentetate
4,94 3,396 5,80 10,476 6,60 4,856 7,40 1,085 8,20 4,053
Tabel 2. Kadar protein hasil ultrafiltrasi menggunakan membran polyethersulfone pada kondisi pH yang berbeda
Produk ultrafiltrasi pH ultrafiltrasi Aktivitas enzim (mg/ml)
permeate
4,94 0,884 5,80 0,746 6,60 3,122 7,40 7,155 8,20 5,359
rentetate
4,94 5,138 5,80 2,182 6,60 5,497 7,40 3,619 8,20 5,193
Berdasarkan Tabel 1 dan 2 dapat dilihat bahwa proses ultrafiltrasi
menggunakan membran polyethersulfone paling baik dicapai pada kondisi pH
4,94. Hal ini dapat diketahui dari tingginya aktivitas enzim xilanase pada
permeate (12,777 U/ml) meskipun kandungan protein permeate sangat sedikit
(0,884 mg/ml); dan tingginya kandungan protein yang tertahan pada membran
(rentetate) sebesar 5,138 mg/ml dengan aktivitas enzim xilanasenya yang rendah
yaitu sebesar 3,396 U/ml. Hal ini diperjelas oleh hasil perhitungan aktivitas
8
spesifiknya, pada pH ultrafiltrasi 4,94, nilai aktivitas spesifiknya tertinggi
diperoleh pada produk permeate, yaitu sebesar 13,888 U/mg (Tabel 3).
Tabel 3. Aktivitas spesifik enzim hasil ultrafiltrasi menggunakan membran
polyethersulfone pada kondisi pH yang berbeda
Produk ultrafiltrasi pH ultrafiltrasi Aktivitas enzim (U/mg)
permeate
4,94 13,888 5,80 3,999 6,60 1,828 7,40 0,369 8,20 0,352
rentetate
4,94 0,661 5,80 4,801 6,60 0,883 7,40 0,299 8,20 0,780
Hal tersebut dapat disebabkan oleh tingginya titik isoelektrik protein
enzim xilanase; yaitu pada pH sebesar 9,3 (Banco, et al, 1995). Keadaan tersebut
menyebabkan tingginya tingkat kelarutan protein enzim xilanase pada pH 4,94,
sehingga memudahkan enzim tersebut lolos melewati membran.
Hasil pemurnian enzim xilanase dengan ultrafiltrasi menggunakan membran regenerated cellulose pada kondisi pH yang berbeda Hasil analisis aktivitas enzim xilanase, kadar protein dan aktivitas spesifik produk
hasil pemurnian enzim xilanase dengan ultrafiltrasi menggunakan membran
regenerated cellulose pada kondisi pH yang berbeda dapat dilihat pada Tabel 4, 5
dan 6.
9
Tabel 4. Aktivitas enzim xilanase hasil ultrafiltrasi menggunakan membran regenerated cellulose pada kondisi pH yang berbeda
Produk
ultrafiltrasi pH ultrafiltrasi Aktivitas enzim (U/ml)
permeate
4,94 12,252 5,80 2,472 6,60 4,126 7,40 1,888 8,20 4,053
rentetate
4,94 4,929 5,80 3,299 6,60 5,367 7,40 6,584 8,20 7,192
Tabel 5. Kadar protein hasil ultrafiltrasi menggunakan membran regenerated cellulose pada kondisi pH yang berbeda
Produk ultrafiltrasi pH ultrafiltrasi Aktivitas enzim (mg/ml)
permeate
4,94 4,061 5,80 2,348 6,60 3,094 7,40 2,652 8,20 6,796
rentetate
4,94 3,702 5,80 2,072 6,60 1,575 7,40 2,072 8,20 0,580
Berdasarkan Tabel 4 dan 5 dapat dilihat bahwa proses ultrafiltrasi
menggunakan membran regenerated cellulose paling baik dicapai pada kondisi
pH 8,20. Hal ini dapat diketahui dari tingginya aktivitas enzim xilanase pada
rentetate (7,192 U/ml) meskipun kandungan protein rentetate sangat sedikit
(0,580 mg/ml); dan tingginya kandungan protein yang melewati membran
(permeate) sebesar 6,796 mg/ml dengan aktivitas enzim xilanasenya yang rendah
yaitu sebesar 4,126 U/ml. Hal ini diperjelas oleh hasil perhitungan aktivitas
10
spesifiknya, pada pH ultrafiltrasi 8,20, nilai aktivitas spesifiknya tertinggi
diperoleh pada produk rentetate, yaitu sebesar 12,397 U/mg (Tabel 6).
Tabel 6. Aktivitas spesifik enzim hasil ultrafiltrasi menggunakan membran
regenerated cellulose pada kondisi pH yang berbeda
Produk ultrafiltrasi pH ultrafiltrasi Aktivitas enzim (U/mg)
permeate
4,94 3,017 5,80 1,053 6,60 1,334 7,40 0,712 8,20 0,596
rentetate
4,94 1,332 5,80 1,592 6,60 3,409 7,40 3,178 8,20 12,397
Hal tersebut dapat disebabkan oleh karena ultrafiltrasi pada pH 8,20 adalah
kondisi yang semakin mendekati titik isoelektrik protein enzim xilanase yaitu
sebesar 9,3; sehingga kelarutannya semakin rendah dan banyak yang tertahan
pada membran.
KESIMPULAN
Hasil pemurnian xilanase terbaik yang diperoleh dari ultrafiltrasi
menggunakan membran polyethersulfone dicapai pada pH 4,94; dengan
kandungan protein permeate sebesar 0,884 mg/ml, aktivitas xilanase sebesar
12,277 U/ml dan aktivitas spesifik sebesar 13,888 U/mg. Hasil pemurnian
xilanase terbaik yang diperoleh dari ultrafiltrasi menggunakan membran
regenerated cellulose pada pH 8,20; dengan kandungan kadar protein rentetate
sebesar 0,580 mg/ml dan aktivitas enzim xilanasenya sebesar 7,192 U/ml.
11
DAFTAR PUSTAKA
Bailey, M.J.,1992. Interlaboratory testing of methods for assay of xylanase activity. Journal of Biotechnology, 23: 257-270.
Blanco, 1995. Purification and properties of xylanase A from alkali-tolerant
Bacillus sp strain BP-23. American societyfor microbiology. Barcelona. Bradford, M., 1976. A rapid and sensitive method for quantitation of microgram
quantitiesof proteinutilizing theprincipleof protein-dye binding. Anal. Biochem. 72: 248-254
Cherkasov A.N. and Polotsky, A.E.,1996. The resolving power of ultrafiltration.
J.Membr, Sci. 110: 79-82. Pujar N.S and Sydney, A.L, 1998. Electrostatic effect on protein partitioningin
size-exclution chromatography and membrane ultrafiltration. J.Chromatography 796:229-238