IDENTIFIKASI AKTIVITAS DAN POPULASI MIKRO ORGANISME DAN MAKRO ORGANISME TANAH … · 2018. 12....
Transcript of IDENTIFIKASI AKTIVITAS DAN POPULASI MIKRO ORGANISME DAN MAKRO ORGANISME TANAH … · 2018. 12....
IDENTIFIKASI AKTIVITAS DAN POPULASI MIKRO ORGANISME
DAN MAKRO ORGANISME TANAH PADA LAHAN SAWAH
TANAMANCABAI RAWIT (Capsicun frutescens l.) DI DESA
ANTIROGO KECAMATAN SUMBERSARI
KABUPATEN JEMBER
LAPORAN PRAKTIKUM
Oleh
Kelompok A1
PROGRAM STUDI ILMU TANAH
FAKULTAS PERTANIAN
UNIVERSITAS JEMBER
2018
IDENTIFIKASI AKTIVITAS DAN POPULASI MIKRO ORGANISME
DAN MAKRO ORGANISME TANAH PADA LAHAN SAWAH
TANAMANCABAI RAWIT (Capsicun frutescens l.) DI DESA
ANTIROGO KECAMATAN SUMBERSARI
KABUPATEN JEMBER
LAPORAN PRAKTIKUM
diajukan guna melengkapi tugas praktikum dan memenuhi salah satu syarat untuk
menyelesaikan mata kuliah Biologi Tanah
Kelompok 1/A:
Fernanda Azmi Hariyadi (171510301059)
Syahrul Efendi (171510301057)
Rhisma Evina Happy P. (171510301049)
Aisyah Valentini Sonia (171510301006)
Amadea Candra (171510301064)
PROGRAM STUDI ILMU TANAH
FAKULTAS PERTANIAN
UNIVERSITAS JEMBER
2018
i
ii
IDENTIFIKASI AKTIVITAS DAN POPULASI MIKRO ORGANISME
DAN MAKRO ORGANISME TANAH PADA LAHAN SAWAH
TANAMANCABAI RAWIT (Capsicun frutescens l.) DI DESA
ANTIROGO KECAMATAN SUMBERSARI
KABUPATEN JEMBER
Fernanda Azmi Hariyadi, Syahrul Efendi, Rhisma Evina Happy P.,
Aisyah Valentini Sonia, Amadea Candra
RINGKASAN
Cabai rawit (Capsicum frutescens L.) merupakan salah satu tanaman
hortikultura dari famili Solanaceae yang memiliki nilai ekonomi tinggi. Faktor
tanah mempengaruhi tumbuhnya tanaman cabe rawit (Capsicum frutescens L.).
Tanah merupakan salah satu komponen penting selain air. Tanah memberikan
peran penting dalam kehidupan pertumbuhan makhluk hidup terlebih pada bidang
pertanian salah satunya adalah sifat biologinya yang sangat berpengaruh pada
pertumbuhan tanaman cabai rawit. Tujuan penelitian ini untuk mengetahui sifat
biologi tanah pada lahan cabai rawit yang berada di Antirogo, Jember. Metode
praktikum ini dilakukan dengan cara mengidentifikasi sifat biologi tanah di lahan
cabe rawit. Pada praktikum biofisik tanah cara pengambilan sampel tanah sawah
dengan pola zigzag lalu tanah dimonolitkan kemudian di ambil satu klip untuk
disimpan dalam icebox. Tanah yang tidak ditaruh icebox akan diuji dengan PUTK
dengan menguji kandungan N, P, C-Organik, dan pH. Pada praktikum Soil Fauna,
pengambilan sampel dengan cara penempatan ajir untuk menentukan titik
pengambilan sampel. Bor tanah digunakan untuk mengambil sampel dengan
kedlaman 0-5cm, 10-15cm, dan 15-20 cm. Sampel tanah akan di letakkan pada
alat Berlesse-Tullgren dengan volume 50cm3 dengan menggunakan lampu 15W
agar fauna tanah terpisah dari tanah dan dilakukan selama 4 hari. Pada praktikum
respirasi, sampel tanah seberat 100g dimasukkan ke dalam 1 botol plastik yang
berisi 10 ml 0,2N. Toples ditutup dan diinkubasi selama 7 hari. Setelah 7 hari,
sampel tanah di beri KOH dan CO2 dan ditambahkan 2 tetes indikator feneptalin
dan titrasi dengan 0,2 N HCL sampai larutan berwarna bening. Larutan KOH
ditetesi metil orange sebanyak 2 tetes lalu titrasi kembali dengan HCL 0,2 N
sampai warna yang awalnya kuning berubah orange. Kadar CO2 diperoleh setelah
setiap toples dikurangi kadar CO2 pada stoples tanah pengukuran dilakukan
dengan pengeringan oven pada suhu 105C. Pada praktikum populasi MO total terdapat 3 kegiatan antara lain pengambilan sampel tanah, penyebaran mikroba
dan penghitungan koloni.
Kata Kunci : Cabai Rawit, Tanah, Biologi Tanah
iii
IDENTIFICATION OF ACTIVITIES AND MICRO ORGANISM AND
MACRO POPULATION OF SOIL ORGANISMS IN RICE FIELDS
LAND IN (Capsicun frutescens l.) IN VILLAGE
ANTIROGO JEMBER DISTRICT
Fernanda Azmi Hariyadi, Syahrul Efendi, Rhisma Evina Happy P.,
Aisyah Valentini Sonia, Amadea Candra
SUMMARY
Cayenne pepper (Capsicum frutescens L.) is one of the horticultural plants
of the Solanaceae family that has high economic value. Soil factors affect the
growth of cayenne (Capsicum frutescens L.). Soil is one of the important
components other than water. Soil provides an important role in the growth of
living things, especially in agriculture, one of which is its biological properties
which
are very influential on the growth of cayenne pepper. The purpose of this study
was to determine the biological properties of soil on the raw chili land in
Antirogo, Jember. This practicum method is carried out by identifying the
biological properties of the soil in the cayenne pepper field. In the soil biophysical
practicum, how to take a sample of zigzag rice field and then monolith the soil
which has been monolithed will be taken one clip to be stored in an ice box. Land
that is not placed in an ice box will be tested with PUTS by testing the content of
N, P, C-Organic, and Ph. In the Soil Fauna practicum, sampling by placing a
marker to determine the sampling point. The soil drill is used to take samples with
a depth of 0-5cm, 10-15cm, and 15-20 cm. The soil sample will be placed on a
Berlesse-Tullgren device with a volume of 50cm3 using a 15W lamp as an
irradiation so that the soil fauna is separated from the soil and carried out for 4
days. In the respiration practicum, a sample of soil weighing 100g is inserted into
a plastic bottle containing 10 ml of 0.2N. The jar was closed and incubated for 7
days. After 7 days, soil samples were given KOH and CO2 and added 2 drops of
feneptalin indicator and titrated with 0.2 N HCL until the solution was clear. The
KOH solution is dripped with 2 drops of methyl orange and then titrate again with
0.2 N HCL until the initially yellow color turns orange. CO2 levels were obtained
after each jar was reduced by CO2 levels in the soil jars measurements were
made by drying the oven at 105C. In the total MO population practicum there are 3 activities including soil sampling, microbial distribution and colony
counting. In the specific organism population practicum there are several
procedures such as determining samples, flotation and screening methods and
observation and identification.
Keyword : Cayenne pepper, Soil, Soil Biology
iv
DAFTAR ISI
RINGKASAN ...................................................................................................... ii
DAFTAR ISI ........................................................................................................ iv
BAB 1. PENDAHULUAN .................................................................................. 1
1.1 Latar Belakang ............................................................................................. 1
1.2 Rumusan Masalah ......................................................................................... 2
1.3 Tujuan ........................................................................................................... 2
1.4 Manfaat ......................................................................................................... 3
BAB 2. TINJAUAN PUSTAKA ......................................................................... 4
2.1 Klasifikasi Tanah .......................................................................................... 4
2.2 Biofisik Tanah................................................................................................ 5
2.3 Soil Fauna ...................................................................................................... 5
2.4 Respirasi Tanah ............................................................................................. 6
2.5 Populasi Mikroorganisme Total ................................................................. 6
2.6 Mikroorganisme Bakteri Ralstonia Salanacearum ................................... 7
BAB 3. METODE PRAKTIKUM ..................................................................... 8
3.1 Biofisik Tanah................................................................................................ 8
3.1.1 Waktu dan Tempat ...................................................................................... 8
3.1.2 Alat dan Bahan ............................................................................................. 8
3.1.2.1 Alat ............................................................................................................ 8
3.1.2.2 Bahan......................................................................................................... 8
3.1.3 Prosedur........................................................................................................ 8
3.1.4 Diagram Alir ............................................................................................... 10
3.2 Soil Fauna ...................................................................................................... 12
3.2.1 Waktu dan Tempat ...................................................................................... 12
3.2.2 Alat dan Bahan ............................................................................................ 12
3.2.2.1 Alat ........................................................................................................... 12
v
3.2.2.2 Bahan ........................................................................................................ 12
3.2.3 Prosedur ....................................................................................................... 12
3.2.3.1 Pengukuran Faktor Fisik Lingkungan ...................................................... 13
3.2.3.2 Pelabelan .................................................................................................. 13
3.2.3.3 Pemisahan Fauna Tanah dan Pengelompokannya ................................... 13
3.2.4 Diagram Alir ............................................................................................... 14
3.3 Respirasi Tanah ............................................................................................. 15
3.3.1 Waktu dan Tempat ...................................................................................... 15
3.3.2 Alat dan Bahan ............................................................................................ 15
3.3.2.1 Alat ........................................................................................................... 15
3.3.2.2.Bahan ........................................................................................................ 15
3.3.3 Prosedur ....................................................................................................... 15
3.3.4 Perhitungan ................................................................................................. 16
3.3.5 Diagram Alir ............................................................................................... 18
3.4 Populasi Mikroorganisme Dalam Tanah ................................................... 19
3.4.1 Waktu dan Tempat ...................................................................................... 19
3.4.2 Alat dan Bahan ............................................................................................ 19
3.4.2.1 Alat ........................................................................................................... 19
3.4.2.2 Bahan ........................................................................................................ 19
3.4.3 Prosedur ....................................................................................................... 19
3.4.4 Diagram Alir ............................................................................................... 21
3.5 Populasi Mikroorganisme Spesifik Tanah .................................................. 23
3.5.1 Waktu dan Tempat ...................................................................................... 23
3.5.2 Alat dan Bahan ............................................................................................ 23
3.5.2.1 Alat ........................................................................................................... 23
3.5.2.1 Bahan ....................................................................................................... 23
3.2.3 Prosedur ....................................................................................................... 23
3.2.4 Diagram Alir ................................................................................................ 25
BAB 4. HASIL DAN PEMBAHASAN ............................................................. 28
4.1 Hasil ............................................................................................................... 28
vi
4.1.1 Biofisik Tanah ............................................................................................. 28
4.1.2 Soil Fauna .................................................................................................... 30
4.1.3 Respirasi Tanah ........................................................................................... 32
4.1.4 Populasi Mikroorganisme Total Tanah ....................................................... 34
4.1.5 Populasi Mikroorganisme Spesifik Tanah .................................................. 34
4.2 Pembahasan Umum ..................................................................................... 35
BAB 5. PENUTUP .............................................................................................. 43
5.1 Kesimpulan .................................................................................................... 43
5.2 Saran ............................................................................................................... 43
Daftar Pustaka
vii
Lampiran
Peta Jenis Tanah
Dokumentasi
Lembar ACC
Flowchart
viii
DAFTAR TABEL
Tabel Judul Halaman
4.1 Kondisi Lingkungan 28
4.2 Sifat Kimia Tanah 28
4.3 Soil Fauna Titik 1 30
4.4 Soil Fauna Titik 2 31
4.5 Respirasi Tanah 32
4.6 Populasi MO Total Tanah 34
4.7 Pengamatan Warna Nodul 34
ix
DAFTAR GAMBAR
Gambar Judul Halaman
4..1 Grafik Respirasi Tanah 33
1
BAB 1. PENDAHULUAN
1.1 Latar Belakang
Cabai rawit (Capsicum frutescens L.) merupakan salah satu tanaman
hortikultura dari famili Solanaceae yang tidak saja memiliki nilai ekonomi
tinggi, tetapi juga karena buahnya yang memiliki kombinasi warna, rasa, dan nilai
nutrisi yang lengkap. Pertumbuhan cabai rawit memiliki dua faktor yaotu faktor
internal dan faktor eksternal. Faktor internal sendiri yang mempengaruhi
pertumbuhan cabai seperti enzim dan hormon, sedangkan faktor eksternal lebih ke
faktor lingkungan yang mempengaruhi pertumbuhan cabai yaitu seperti
kelembapan suhu tanah, pH tanah, cahaya matahari, dan jumlah kandungan air
dalam tanah merupakan faktor eksternal penting.
Tanah merupakan salah satu komponen penting selain air. Tanah
memberikan peran penting dalam kehidupan pertumbuhan makhluk hidup terlebih
pada bidang pertanian. Ketika tanah tercemar oleh suatu zat berbahaya atau
beracun dari pembuangan limbah yang terus menerus maka zat tersebut dapat
menguap, tersapu air hujan ataupun masuk kedalam tanah. Hal ini akan
mempengaruhi karakteristik sifat tanah khususnya pada tingkat kesuburan tanah
tersebut yang akan berpengaruh terhadap pertumbuhan dan perkembangan
tanaman khususnya untuk tanaman cabai rawit yang sanagat rentan terhadap air
hujan karena bisa gagal panen.
Kesuburan tanah merupakan potensi tanah untuk menyediakan unsur hara
yang diperlukan dalam bentuk yang tersedia serta seimbang untuk menjamin
pertumbuhan tanaman yang maksimum dan berpengaruh. Tanah yang benar-benar
subur adalah apabila didukung oleh faktor-faktor pertumbuhan. Komponen kimia
tanah berperan besat terhadap menentukan ciri dan sifat tanah dan status
kesuburan tanah tersebut. Selain itu, sifat kimia tanah berperan dalam
menjelaskan serta menentukan reaksi-reaksi kimia yang menyangkut dalam
masalah ketersediaan unsur hara bagi tanaman tersebut sehingga sangat
berpengaruh. Selain itu sifat fisika tanah ikut mempengaruhi tingkat kesuburan
tanah tersebut. Keadaan fisika tanah meliputi, tekstur, kelembaban, struktur,
2
kedalaman efektif, dan tata udara tanah. Sifat-sifat tanah tersebut berpengaruh
terhadap kondisi fisik tanah dalam menentukan penetrasi akar di dalam tanah,
drainase, retensi air, aerasi, dan nutrisi tanaman terutama pada tanaman cabai
rawit.
Biologi tanah adalah ilmu yang mempelajari mahluk-mahluk hidup
didalam tanah. Karena ada bagian-bagian hidup di dalam tanah, maka tanah itu
disebut sebagai ―Living System‖ contohnya akar tanaman dan organisme lainnya
di dalam tanah. Biologi tanah adalah studi yang mempelajari tentang aktivitas
mikroorganisme dan organisme di dalam tanah. Organisme-organisme yang
termasuk di dalamnya seperti cacing tanah, nematode, fungi, bakteri dan sejumlah
arthropoda. Komposisi materi organic dalam tanah sangat berpengaruh terhadap
kesuburan, kualitas, dan struktur tanah sehingga biologi tanah berperan penting
terhadap karakteristik tanah.
Mikroorganisme adalah organisme yang berukuran sangat kecil sehingga
tidak dapat dilihat dengan mata telanjang. Organisme tanah berperan penting
dalam mempercepat penyediaan hara dan juga sebagai sumber bahan organik
tanah. Penambahan bahan organik dalam tanah akan menyebabkan aktivitas dan
populasi mikrobiologi dalm tanah meningkat, terutama berkaitan dengan aktivitas
dekomposisi dan meneralisasai bahan organik. Aktivitas mikroorganisme dalam
tanah sangat berpengaruh terhadap sifat fisik, kimia dan biologi pada tanah. Tanah
dengan adanya mikroorganisme ini akan berpengaruh pada tingkat kesuburan
tanah, karena mikroorganisme memegang peranan penting dalam proses pelpukan
bahan organik dalam tanah sehingga unsur hara menjadi tersedia bagi tanaman
(Prayudyaningsih, 2015).
1.2 Rumusan Masalah
1. Bagaimana kondisi biofisik tanah tanaman cabai rawit di Antirogo, Jember ?
2. Apa saja soil fauna yang terdapat pada tanah tanaman cabai rawit di Antirogo,
Jember ?
3. Bagaimana proses respirasi yang terjadi pada tanaman cabai rawit di Antirogo,
Jember ?
3
4. Berapa jumlah populasi mikroorganisme total pada tanaman cabai rawit di
Antirogo, Jember ?
5. Berapa jumlah populasi mikroorganisme Pseudomonas solanacearum pada
tanaman cabe rawit di Antirogo, Jember ?
1.3 Tujuan
1. Mengetahui fisik biologis tanah dalam pemanfaatannya sebagai lahan untuk
penanaman cabai.
2. Mengetahui hewan yang ada dalam tanah lahan cabai baik hewan yang
berukuran mikro, meso maupun makro yang dapat mempengaruhi tanaman
cabai yang ditanam.
3. Mengetahui aktivitas dari mikroorganisme. di dalam tanah pada tanaman cabe
rawit.
4. Mengetahui berapa banyak populasi mikroorganisme total pada tanah tanaman
cabai rawit.
5. mengidentifikasi dan menghitung populasi Pseudomonas solanacearum dengan
menggunakan metode agar nutrient (NA).
1.4 Manfaat
1. Bagi pemerintah agar lebih mengetahui potensi apa saja yang terdapat pada
lahan tanaman cabai agar dapat dikembangkan dengan optimal.
2. Bagi masyarakat sekitar agar lebih mengetahui potensi yang ada pada tanaman
cabai agar dapat di manfaatkan dengan baik.
3. Bagi mahasiswa agar menjadi ilmu yang bermanfaat bagi kelanjutan
perkuliahan dan dapat diamalkan dalam masyarakat sehingga bermanfaat.
4
BAB 2. TINJAUAN PUSTAKA
2.1 Klasifikasi Tanaman Cabai
Tanaman cabai merupakan salah satu tanaman holtikultura yang sehari-
hari dibutuhkan oleh masyarakat Indonesia. Cabai merupakan tanaman perdu dari
family terung-terungan (Solanaceae) dan tergolong tanaman semusim. Tanaman
cabai tidak akan tumbuh dengan baik jika kekuranan air dalam proses
pertumbuhannya begitu juga air yang diberikan pada tanaman cabai terlalu banyak
tanaman tidak akan tumbuh dengan baik (Imtiyaz dkk, 2017). Menurut Cahyono
(2003) tanaman cabai rawit diklasifikasikan sebagai berikut:
Divisi : Spermatophyta (tumbuhan berbiji)
Subdivisi : Angiospermae (biji berada di dalam buah)
Kelas : Dicotyledonae (biji berkeping dua atau biji belah)
Ordo (Bangsa) : Corolliforea
Family (suku) : Solanaceae
Genus (marga) : Capsicum
Spesies (jenis) : Capsicum frutescens L.
2.2 Biofisik Tanah
Tanah merupakan salah satu komponen yang paling banyak memiliki jenis
habitat di bumi dan merupakan satu kumpulan yang paling beragam
organismenya. Tanah terbentuk karena adanya faktor-faktor lingkungan yang
bekerja dalam masa yang panjang. Tanah tersusun dari komponen mineral,
organik, air dan udara. Tanah merupakan salah satu penunjang yang membantu
kehidupan semua makhluk hidup yang ada di bumi baik tanaman, hewan maupun
manusia. Tanah memiliki struktur yang berongga-rongga sehingga memudahkan
akar untuk tumbuh dan bernafas (Briones, 2014).
Kondisi lingkungan seperti kondisi iklim dan tanah yang sesuai bagi
pertumbuhan tanaman merupakan syarat utama budidaya suatu tanaman. Keadaan
iklim yang sangat berpengaruh terhadap pertumbuhan tanaman cabai diantaranya
suhu udara, kelembaban udara, curah hujan dan cahaya matahari. Sebagai media
5
tempat pertumbuhan tanaman tanah merupakan faktor penting yang menentukan
keberhasilan proses produksi. Tanaman cabai lebih cocok ditanam pada jenis
tanah andosol yang kaya akan bahan organik. Sifat fisik, kimia dan biologi tanah
memiliki keterkaitan antara yang satu dengan yang lainnya dan saling
mempengaruhi untuk mendapatkan kesuburan tanah. Sifat fisik tanah yang baik
dapat memperbaiki drainase tanah sehingga dapat mencegah terjadinya genangan
air dan dapat meningkatkan kandungan oksigen. Sifat kimia tanah yang perlu
diperhatikan adalah Ph. Ph berpengaruh terhadap organisme yang berada di dalam
tanah sehingga mempengaruhi kesuburan tanah. Tanah yang memiliki sifat
biologi yang baik banyak terdapat zat-zat hara yang diperlukan tanaman
(Cahyono, 2003).
2.3 Soil Fauna
Soil fauna merupakan hewan yang hidup di dalam tanah, baik yang
hidupnya di permukaan tanah maupun yang hidupnya berada di dalam tanah.
Hewan tanah merupakan bagian dari ekosistem tanah. Berdasarkan ukuran
tubuhnya hewan-hewan yang berada di dalam tanah tersebut dikelompokkan
menjadi jenis hewan mikrofauna, mesofauna dan makrofauna. Keberadaan fauna
tanah sangat dipengaruhi oleh faktor lingkungan diantaranya yaitu faktor biotik
dan faktor abotik. Faktor biotik yang mempengaruhi antara lain fungi, dan
tanaman. Sedangkan faktor abiotik yaitu faktor yang tidak hidup meliputi tekstur
tanah, struktur tanah, pH, salinitas, kadar bahan organik dan unsur mineral tanah,
sehingga dapet berperan secara langsung maupun tidak langsung bagi tanah
(Nurrohman dkk, 2018).
Fauna tanah merupakan bagian dari ekosistem tanah yang kehidupannya
berinteraksi dengan yang satu dan faktor yang lainnya dari suatu lingkungan
tempat dimana mereka hidup. Makrofauna tanah memiliki peran penting dalam
dekomposisi bahan organik tanah yang berguna untuk menyediakan unsur hara.
Mesofauna tanah berdampak positif bagi kesuburan tanah hal itu dapat terjadi jika
perkembangan dan aktivitas mesofauna berlangsung dengan baik. Kesuburan pada
tanah memiliki peran yang utama dalam pertumbuhan dan berkembangan
6
tanaman. Kesuburan pada tanah akan memberikan dampak yang positif seperti
meningkatnya produksi dan produktivitas pada tanaman yang dibudidayakan
(Hilwan dan Handayani, 2013).
Organisme tanah mempunyai peran sebagai salah satu indikator kesuburan
tanah. Adanya organisme di dalam tanah menandakan kualitas dari tanah tersebut
subur. Kelompok hewan tanah sangat beragam mulai dari nematode, annelida,
arthropoda, molusca, rotifer dan protozoa. Fauna tanah menempati kategori
hunian tertentu yang terdapat dalam tubuh tanah sesuai dengan ciri anatomi dan
ciri fisiologis yang dimilikinya (Marsandi dkk, 2017).
2.4 Respirasi Tanah
Respirasi tanah merupakan salah satu indikator dari aktifitas biologi
seperti mikroba, akar atau kehidupan lain di dalam tanah dan aktivitas ini sangat
penting untuk ekosistem dalam tanah (Tanam and Tiga, 2017). Respirasi tanah
juga salah satu indikator aktivitas mikroba di dalam tanah. Pengukuran respirasi
tanah dilakukan untuk mengetahui penggunaan O2 dan pembebasan CO2,
sehingga dapat di tentukan tingkat respirasi dengan mengukur O2 yang digunakan
oleh mikroba tanah. Aktifitas mikroorganisme di dalam tanah juga di pengaruhi
oleh bahan organik, kelembapan, aerasi dan sumber energi. Kelembapan dan
temperatur yang sesuai dapat mempengaruhi jumlah CO2 yang di hasilkan oleh
mikroorganisme yang ada di dalam tanah.
2.5 Populasi Mikroorganisme Total
Jumlah mikroorganisme tanah yang melimpah menggambarkan tingkat
kesuburan tanah dan sifat tanah secara biologis. Mikroorganisme yang ada di
dalam tanah sangat membantu untuk proses dekomposisi bahan organik pada
tanaman tingkat tinggi, dalam proses dekomposisi sisa tumbuhan dihancurkan
menjadi unsur yang dapat di gunakan oleh tanaman(Setyawan dkk, 2017).
Populasi mikroorganisme yang ada di dalam tanah sangat banyak, untuk
mengetahui perkembangan atau pertumbuhan suatu mikroorganisme diperlukan
suatu perhitungan yang harus dilakukan dan terdapat dua proses perhitungan yaitu
secara perhitungan langsung dan tidak langsung. Penggunaan perhitungan secara
7
tidak langsung memiliki kelebihan yang dapat di gunakan untuk isolasi dan
identifikasi bakteri yang masih hidup. Organisme tanah berperan sangat penting
dalam mempercepat penyediaan hara dan juga sebagai sumber bahan organik
tanah.
2.6 Mikroorganisme Bakteri Ralstonia Solanacearum
Menurut Ningtyas (2015), salah satu penyebab tidak tercapainya potensi
hasil cabai adalah karena serangan hama dan penyakit. Layu bakteri (Ralstonia
solanacearum) merupakan penyakit utama yang menyerang pertanaman cabai.
Bakteri ralstonia solanasearum merupakan salah satu gangguan penyakit yang
dapat menginfeksi tanaman melai akar dan menyerang pembuluh xylem sehingga
bakteri ini sulit untuk dikendalikan karena dapat bertahan di tanah dan gula
selama bertahun-tahun. Bakteri Ralstonia solanacearum termasuk ke dalam famili
Burkholderiaceae. Bakteri ini menginfeksi akar tanaman melalui luka yang terjadi
secara tidak langsung pada waktu proses pemindahan tanaman maupun luka
akibat tusukan nematoda akar, dan secara langsung masuk ke dalam bulu
akar/akar yang sangat muda dengan melarut dinding sel.
8
BAB 3. METODE PRAKTIKUM
3.1 Biofisik Tanah
3.1.1 Waktu dan Tempat Praktikum
Praktikum dengan acara biofisik tanah ini dilakukan di lapang yaitu di
Desa Antirogo Kecamatan Sumbersari Kabupaten Jember pada hari Rabu, 26
September 2018 pukul 11.45-14.00 WIB.
3.1.2 Alat dan Bahan
3.1.2.1 Alat
1. Sekop atau sendok tanah
2. Bor tanah
3. Kantung plastik contoh
4. pisau/gunting
5. Ember/baskom plastic
6. Kotak es
3.1.2.2 Bahan
1. Alkohol 90-95 %
2.Botol selai bertutup atau botol lain yang sejenis (untuk contoh tanah anaerobic)
3. Parafilm atau selotip
3.1.3 Prosedur Penelitian
1. Mencatat keadaan umum fisik lingkungan dilokasi pengambilan contoh,
anatara lain :jenis penggunaan tanah, vegetasi atau tanaman yang diusahakan,
riwayat penggunaan tanah (bila tersedia), lereng, ketinggian tempat, dan
keadaan permukaan tanah (berbatu, dan lain-lain)
2. Mencatat tanaman inang (legume) yang tumbuh dilokasi pengambilan contoh
dan mengambil contohnya untuk mengidentifikasinya hal tersebut khusus
contoh tanah untuk trapping mikroba symbiosis seperti rhizobia.1)
Pengambilan contoh tanah non-rizosfer-tanah non-rizosfer merupakan bagian
9
tanah tanpa akar dan tanah yang melekat pada akar.
3. Membersihkan permukaan tanah di lokasi/titik pengambilan contoh dari
tanaman dan seresah (litter). Kemudian menetapkan volume penggalian tanah,
misalnya 20 x 20 x 20 cm atau 10 x 10 x 20 cm (Panjang, lebar dan
kedalaman), yang penting ukuran volume pengambilan contoh ini konsisten di
tiap titik pengambilan contoh.
4. Menggali tanah dengan sendok tanah atau spatula (kape). Menggunakan bor
tanah untuk mengambil contoh tanah pada kedalaman tertentu.
5. Membersihkan tanah galian dari sisa tanaman dan potongan akar.
6. Memasukkan sejumlah tanah dengan volume atau berat tertentu (sesuai
kebutuhan) ke dalam kantong plastik dengan sendok tanah dan memberi label.
Menggunakan botol selai bertutup atau yang sejenis untuk contoh tanah
anaerobic. Untuk contoh komposit, memasukkan contoh tanah ini ke dalam
ember atau baskom plastic dan menggabungkan dengan anak contoh tanah
lain. Setelah mengaduk rata dengan sendok tanah, sejumlah tanah dengan
volume atau berat tertentu (sesuai kebutuhan) memasukkan ke dalam kantung
plastik dan memberi label.
7. Memasukkan segera contoh tanah ke dalam kotak es agar terhindar dari suhu
tinggi. Melakukan pemberian es batu dalam kotak es bila perjalanan contoh
tanah ke laboratorium memerlukan waktu lama.
8. Untuk pengambilan contoh tanah di tempat lain, mencuci semua peralatan
dengan air dan setrika seperti dijelaskan pada bagian alat dan bahan diatas.
10
3.1.4 Diagram Alir Biofisik Tanah
Membersihkan permukaan tanah di lokasi/titik pengambilan contoh dari
tanaman dan seresah (litter). Kemudian menetapkan volume penggalian
tanah, misalnya 20 x 20 x 20 cm atau 10 x 10 x 20 cm (Panjang, lebar dan
kedalaman), yang penting ukuran volume pengambilan contoh ini konsisten
di tiap titik pengambilan contoh.
Menggali tanah dengan sendok tanah atau spatula (kape). Menggunakan bor
tanah untuk mengambil contoh tanah pada kedalaman tertentu.
Membersihkan tanah galian dari sisa tanaman dan potongan akar
. Mencatat tanaman inang (legume) yang tumbuh dilokasi pengambilan contoh
dan mengambil contohnya untuk mengidentifikasinya hal tersebut khusus
contoh tanah untuk trapping mikroba symbiosis seperti rhizobia.1)
Mencatat keadaan umum fisik lingkungan dilokasi pengambilan contoh,
anatara lain :jenis penggunaan tanah, vegetasi atau tanaman yang diusahakan,
riwayat penggunaan tanah (bila tersedia), lereng, ketinggian tempat, dan
keadaan permukaan tanah (berbatu, dan lain-lain)
11
Memasukkan sejumlah tanah dengan volume atau berat tertentu (sesuai
kebutuhan) ke dalam kantong plastik dengan sendok tanah dan memberi
label. Menggunakan botol selai bertutup atau yang sejenis untuk contoh
tanah anaerobic. Untuk contoh komposit, memasukkan contoh tanah ini ke
dalam ember atau baskom plastic dan menggabungkan dengan anak contoh
tanah lain. Setelah mengaduk rata dengan sendok tanah, sejumlah tanah
dengan volume atau berat tertentu (sesuai kebutuhan) memasukkan ke
dalam kantung plastik dan memberi label.
Memasukkan segera contoh tanah ke dalam kotak es agar terhindar dari
suhu tinggi. Melakukan pemberian es batu dalam kotak es bila perjalanan
contoh tanah ke laboratorium memerlukan waktu lama.
Untuk pengambilan contoh tanah di tempat lain, mencuci semua peralatan
dengan air dan setrika seperti dijelaskan pada bagian alat dan bahan diatas.
12
3.2 Soil Fauna
3.2.1 Waktu dan Tempat Praktikum
Penelitian ini dilakukan di Labolatorium Biologi Tanah, Fakultas
Pertanian Universitas Jember pada hari Rabu, 3 Oktober 2018 pukul 11.45-14.10
WIB.
3.2.2 Alat dan Bahan
3.2.2.1 Alat
1. Meteran kayu ukuran 1m, meteran gulung ukuran 50 m terbuat dari logam atau
fiber glas, meteran siku dari kayu atau logam
2. Kayu/bamboo persegi dengan ukuran 25x25 cm
3. Cangkul
4. Mikroskop
5. Termometer
6. Higrometer
3.2.2.2 Bahan
1. Sampel tanah dari lahan tanaman cabai
2. Kantung kain (dari kain katun)
3.2.3 Prosedur Penelitian
1. Menetapkan lokasi titik pengambilan sampel tanah
2. Menetapkan posisi blok dengan ukuran 25x25 cm
3. Meletakkan kayu/bamboo yang berbentuk persegi dengan ukuran 25x25 cm ke
posisi blok yang sudah ditentukan
4. Mencangkul sisi-sisi blok hingga kedalaman 20-30 cm
5. Mengambil tanah blok
6. Meletakkan tanah sampel ke kain yang sudah disediakan
7. Mengamati fauna tanah yang ada di tanah tersebut
8. Setelah selesai mengamati makrofauna, sampel tanah dikembalikan ke tempat
semula.
13
3.2.3.1 Pengukuran Faktor Fisik Lingkungan
Pada saat pengumpulan hasil tangkapan, lakukan pengukuran suhu
udara, suhu tanah, dan kelembabab udara relatif serta keadaan cuaca
(Lembaga Penelitian Tanah, 1979; Suin, 2003). Pengukuran suhu udara
dilakukan dengan menggunakan thermometer yang digantungkan kira-kira
satu meter di atas permukaan tanah, sedangkan untuk mengukur suhu tanah,
masukkan thermometer ke dalam tanah dengan cara membuat lubang
menggunakan besi berdiameter sama dengan thermometer yang digunakan,
kemudian masukkan termometer ke dalam lubang tersebut sampai kedalaman
yang dikehendaki, missal untuk lapisan olah cukup sampai kedalaman 20 cm.
Gunakan hygrometer untuk mengukur kelembaban udara relatif, pengukuran
dilakukan antara 9.00 sampai jam 11.00.
3.2.3.2 Pelabelan
Pada saat pekerjaan di lapangan, beri label semua contoh yang diambil
dan simpan pada tempat-tempat khusus sesuai keperluan seperti kantung kain
katun untuk contoh tanah, botol-botol tempat menyimpan contoh sesuai
tempat, waktu pengambilan, kedalaman tanah, dan lain-lain. Setelah seluruh
keperluan pengambilan contoh telah siap, kemudian contoh dibawa ke
laboratorium untuk diidentifikasi. Siapkan buku catatan khusus untuk
mencatat keadaan yang tidak berhubungan langsung dengan pekerjaan
pengambilan contoh tanah, namun mendukung dan mempengaruhi secara
langsung keberadaan fauna tanah di lapangan, seperti suhu udara, cuaca,
musim, tipe agrosistem, dll, yang perlu dicatat secara khusus.
3.2.3.3 Pemisahan Fauna Tanah dan Pengelompokannya
Pisah-pisahkan contoh hewan permukaan tanah dari lapangan dengan
metode sortasi dengan tangan, menurut jenisnya dengan menggunakan
stereomikroskop, setelah dihitung kemudian awetkan dalam larutan formalin
4%. Contoh fauna tanah yang diambil menurut kedalaman yang telah
ditentukan masukkan kedalam kantung yang dibuat dari kain katun, dan
14
contoh tanah dalam perjalanan ke laboratorium tidak boleh lebih dari empat
jam agar hewan tidak mati di perjalanan (Anderson & Ingram, 1993).
3.2.4 Diagram Alir Soil Fauna
Menetapkan lokasi titik pengambilan sampel tanah.
Menetapkan posisi blok dengan ukuran 25x25 cm.
Meletakkan kayu/bamboo yang berbentuk persegi dengan ukuran 25x25
cm ke posisi blok yang sudah ditentukan.
Mencangkul sisi-sisi blok hingga kedalaman 20-30 cm
Mengambil tanah blok
Meletakkan tanah sampel ke kain yang sudah disediakan
Mengamati fauna tanah yang ada di tanah tersebut
Setelah selesai mengamati makrofauna, sampel tanah dikembalikan ke
tempat semula
15
3.3 Respirasi Tanah
3.3.1 Waktu dan Tempat
Praktikum ini dilaksanakan di Laboratorium Biolodi Tanah, Fakultas
Pertanian Universitas Jember. Penelitian ini dilakukan pada bulan Oktober 2018
sampai selesai.
3.3.2 Alat dan Bahan
3.3.2.1 Alat
1. Buret
2. Stoples plastik kedap udara
3. Botol pastik
4. Stirer
5. Labu Erlenmeyer
6. Corong
7. Beker glass
3.3.2.2 Bahan
1. KOH 0,5N
2. BaCL2 3N
3. HCl 0,2N
4. Indikator fenoptalin dan metil orange 0,1% (1 g/100 ml alkohol 96%)
3.3.3 Prosedur
1. Memasukan 100 g contoh tanah pada kapasitas lapang ke dalam stoples, dan 1
botol plastik terbuka berisi 10 ml 0,2 N KOH (untuk mengikat gas CO2 yang
dilepaskan dari respirasi mikroba dalam contoh tanah), lalu stoples ditutup
rapat (kedap udara) selama inkubasi 7 hari. Cara yang sama dilakukan untuk
kontrol, yaitu stoples yang tidak diisi contoh tanah. Setelah 7 hari, ambil botol
plastik yang berisi KOH dan CO2 yang sudah terikat, lalu menambahkan 2
tetes indikator fenoptalin dan titrasi dengan 0,2 N HCl sampai warna larutan
berubah dari merah muda (pink) menjadi bening.
16
2. Selanjutnya menetesi KOH dengan 2 tetes metil orange sehingga larutan
berubah menjadi kuning. Titrasi kembali dengan HCl 0,2 N sampai warna
kuning berubah menjadi oranye. - Kadar CO2 pada masing-masing perlakuan
diperoleh setelah dikurangi kadar CO2 pada stoples tanpa tanah (blanko).
Kadar air tanah ditentukan setelah pengukuran CO2 dan hasil dinyatakan
dalam berat kering oven 105o C.
3.3.4 Perhitungan
( )
Keterangan:
r = jumlah CO2 yang dihasilkan
a = ml HCl untuk stoples dengan contoh tanah
b = ml HCl untuk stoples tanpa contoh tanah (blanko)
t = normalitas HCl (lihat perhitungan t di bawah)
n = jumlah hari inkubasi
100 = 100 g contoh tanah
2,4 = dari perhitungan sbb : 1 ml HCl 0,2 N = 1 x 0,2 = 0,2 me HCl 0,2
me HCl setara 0,2 me CO2 0,2 x 44 mg CO2 = 8,8 mg CO2 (berat molekul
CO2 = 44) C / CO2 = (12 / 44) x 8,8 mg = 2,4 mg CO2-C
Penentuan normalitas :
Masukkan 16,67 ml HCl 37% (12 N) ke dalam labu ukur 1 l, kemudian
encerkan dengan akuades sampai volume 1.000 ml.
Masukkan 9,535 g boraks (Na2B4O7.H2O BM = 381,42) ke dalam labu ukur
250 ml dan encerkan dengan akuades sampai volume 250 ml.
Masukkan 10 ml boraks dan 2 tetes indikator metil orange ke dalam labu
Erlenmeyer, lalu titrasi dengan HCl.
17
Perhitungan
a mg t = —————— 381,42 / 2
keterangan : t = moralitas HCL
Catatan : Karena HCl yang distandarisasi 0,2 N maka larutan yang
dipakai boraks 0,2 N
18
3.3.5 Diagram Alir Respirasi Tanah
Masukkan 100 g contoh tanah pada kapasitas lapang kedalam stoples, dan
1 botol plastik terbuka berisi 10 ml 0,2 N KOH (untuk mengikat gas CO2
yang dilepaskan dari respirasi mikroba dalam contoh tanah), lalu stoples
ditutup rapat (kedap udara) selama inkubasi 7 hari
Selanjutnya tetesi KOH dengan 2 tetes metil orange sehingga larutan
berubah menjadi kuning. Titrasi kembali dengan HCl 0,2 N sampai
warna kuning berubah menjadi orange.
Kadar CO2 pada masing-masing perlakuan diperoleh setelah
dikurangi kadar CO2 pada stoples tanpa tanah (blanko). Kadar tanah
ditentukan setelah pengukuran CO2 dan hasil dinyatakan dalam berat
kering oven 1050 C.
19
3.4 Penetapan Populasi Mikroorganisme Total
3.4.1 Waktu dan Tempat Praktikum
Praktikum ini dilaksanakan di Laboratorium Biologi Tanah, Fakultas
Pertanian Universitas Jember. Penelitian dilakukan pada bulan Oktober 2018
sampai dengan selesai.
3.4.2 Alat dan Bahan
3.4.2.1 Alat
1. Erlenmeyer 250 ml
2. Tabung reaksi
3. Autoclave
4. Micropipete
5. Bunsen
6. Cawan petri
7. Colonoy Counter Number
8. Media PCA (Plate Count Agar)
3.4.2.2 Bahan
1. Larutan fisiologis (8.5 gr/liter)
2. Alkohol
3. Spiritus
4. Kapas Steril
3.4.3 Prosedur Praktikum
1. Masing-masing kelompok menyiapkan cawan petri steril dan larutan fisiologis
9 ml dalam tabung reaksi dan diautoclav.
2. Menyiapkan contoh tanah timbang ke dalam 90 ml larutan fisiologis yang di
tetapkan dalam elenmeyer 250 ml, larutan tersebut bernilai , kemudian
melalukan pengojokan selama 15 menit.
3. Membuat seri pengenceran dengan cara memipet sejumlah 1 ml ke
dalam larutam fisologis di tabung reaksi kemudian menvortex agar suspensi
20
mikrobia homogen. Suspensi yang baru di buat ini adalah pengenceran 100
kali atau Begitulah sampai memperoleh pengenceran
4. Memipet 1 ml dari pengenceran . dan ke dalam cawan petri
steril dan mengulangi sampai 3 kali setiap pengenceran tersebut.
5. Menyiapkan media PCA yang telah didinginkan dengan temperatur 40-45°C,
kemudian menuangkan dalam petri tersebut ±15 ml melewati busem, memutar
3 kali agar media rata seluruh cawan.
6. Setelah benar-benar padat, menginkubasikan pada temperatur yang
diinginkan, meletakkan cawan secara terbalik pada inkubator agar uap air tida
menempel pada cawan petri.
7. Menginkubasikan selama 5-7 hari kemudian melakukan perhitungan. Jumlah
koloni di dua cawan petri yang berturut-turut pengencerannya dari contoh
yang dama harus merupakan kelipatan 20 yang sama dengan pengenceran.
8. Bila pengenceran yang paling tinggi jumlah koloninya melebihi 300 koloni,
berarti pengenceran pencawan petri terlalu rendah, sebaliknya bila
pengenceran yang paling rendah jumlah koloni kurang dari 30 koloni, berarti
pengenceran terlalu tinggi, jika semua sudah cawan petri menghasilkan koloni
yang memuaskan maka memilih cawan petri yang berisi 30-300 koloni
percawan petri. Untuk memudahkan perhitungan menggunakan Colony
Counter Number.
9. Mengalikan rata-rata jumlah koloni percawan petri dengan faktor pengenceran
untuk mendapatkan jumlah mikroorganisme total per-gram contoh (tanah)
kering udara. Mengkonversikan hasi ini ke jumlah mikroorganisme didalam 1
gram tanah kering mutlak dengan memperhitungkan kadar air tanah.
Perhitungan koloni dengan aturan bahwa dalam satu petridisc hanya dapat
dihitung jika terdapat populasi 30-300 koloni, jika kurang dari 30 atau lebih dari
300 disebut ―spreader‖ yang berarti data tidak valid.
( ) ( ) ( )
Keterangan :
fp = faktor pengenceran pada petridisc yang koloninya dihitung
bk = berat kering contoh tanah (g) = berat basah x (1 – kadar air)
21
3.4.4 Diagram Alir Penetapan Mikroorganisme Dalam Tanah
Menyiapkan contoh tanah timbang ke dalam 90 ml larutan fisiologis yang di
tetapkan dalam elenmeyer 250 ml, larutan tersebut bernilai , kemudian
melalukan pengojokan selama 15 menit.
Membuat seri pengenceran dengan cara memipet sejumlah 1 ml ke dalam
larutam fisologis di tabung reaksi kemudian menvortex agar suspensi mikrobia
homogen. Suspensi yang baru di buat ini adalah pengenceran 100 kali atau Begitulah sampai memperoleh pengenceran
menyiapkan cawan petri steril dan larutan fisiologis 9 ml dalam tabung reaksi dan
diautoclav
Memipet 1 ml dari pengenceran . dan ke dalam cawan petri steril
dan mengulangi sampai 3 kali setiap pengenceran tersebut.
Setelah benar-benar padat, menginkubasikan pada temperatur yang diinginkan,
meletakkan cawan secara terbalik pada inkubator agar uap air tida menempel
pada cawan petri.
Menyiapkan media PCA yang telah didinginkan dengan temperatur 40-45°C,
kemudian menuangkan dalam petri tersebut ±15 ml melewati busem, memutar 3
kali agar media rata seluruh cawan.
22
Menginkubasikan selama 5-7 hari kemudian melakukan perhitungan. Jumlah
koloni di dua cawan petri yang berturut-turut pengencerannya dari contoh yang
dama harus merupakan kelipatan 20 yang sama dengan pengenceran.
Bila pengenceran yang paling tinggi jumlah koloninya melebihi 300 koloni,
berarti pengenceran pencawan petri terlalu rendah, sebaliknya bila
pengenceran yang paling rendah jumlah koloni kurang dari 30 koloni, berarti
pengenceran terlalu tinggi, jika semua sudah cawan petri menghasilkan koloni
yang memuaskan maka memilih cawan petri yang berisi 30-300 koloni
percawan petri. Untuk memudahkan perhitungan menggunakan Colony
Counter Number.
Mengalikan rata-rata jumlah koloni percawan petri dengan faktor
pengenceran untuk mendapatkan jumlah mikroorganisme total per-gram
contoh (tanah) kering udara. Mengkonversikan hasi ini ke jumlah
mikroorganisme didalam 1 gram tanah kering mutlak dengan
memperhitungkan kadar air tanah.
23
3.5 Populasi Mikroorganisme Pseudomonas Solanacearum
3.5.1 Waktu dan Tempat Praktikum
Praktikum ini dilaksanakan di Laboratorium Biologi Tanah, Fakultas
Pertanian Universitas Jember. Penelitian dilakukan pada bulan Oktober 2018
sampai dengan selesai.
3.5.2 Alat dan Bahan
3.5.2.1 Alat
1. Erlenmayer 250 ml
2. Tabung reaksi
3. Autoclave
4. Micropippete
5. Bunsen
6. Cawan petri
7. Laminar air flow
8. Colony counter number
3.5.2.1 Bahan
1. Sampel Tanah Cabai
2. Larutan Fisiologis
3. Alkohol
4. Kapas Steril
5. Media NA (Nutrien Agar)
3.5.3 Prosedur Praktikum
1. Menyiapkan cawan petri steril dan larutan fisiologis 9 ml dalam tabung reaksi
dan diautoclave.
2. Menyiapkan contoh tanah timbang 10 gram ke dalam 90 ml larutan fisiologis
yang ditempatkan dalam Erlenmeyer 250 ml, larutan tersebut bernilai .
24
3. Membuat seri pengenceran dengan cara memipet sejumlah 1 ml ke
dalam larutan fisiologis di tabung reaksi kemudian di vortex agar suspensi
bacteria homogen. Suspensi yang baru dibuat ini adalah pengenceran 100 kali
atau . Begitulah seterusnya sampai diperoleh pengenceran .
4. Pipet 1 ml dari pengenceran . dan ke dalam cawan petri steril
dan ulang sampai 3 kali setiap pengencaran tersebut.
5. Menyiapkan media NA yang telah didinginkan dengan temperature 40 – 45ºC,
kemudian tuangkan dalam petri tersebut + 15 ml lewat bunsen, putar 3 kali
agar media rata keseluruh cawan.
6. Setelah media benar–benar padat, inkubasikan pada temperatur yang
diinginkan letakkan cawan terbalik pada incubator agar uap air tidak
menempel pada cawan petri.
7. Inkubasikan 5 –7 hari kemudian lakukan perhitungan. Jumlah koloni di dua
cawan petri yang berturut – turut pengencerannya dari contoh yang sama harus
merupakan kelipatan 10 yang sama dengan pengenceran.
8. Bila dari pengenceran yang paling tinggi jumlah koloni melebihi 300 koloni
percawan petri berarti bahwa pengenceran terlalu rendah, sebaliknya bila
pengenceran yang paling rendah jumlah koloni kurang dari 30, ini berarti
bahwa pengenceran terlalu tinggi, jika semua cawan petri menghasilkan
koloni yang memuaskan, pilih cawan petri yang berisi 30 sampai 300 koloni
percawwan petri. Untuk memudahkan perhiutungan gunakan Colony Counter
Number.
9. Perhitungan dari hasil. Kalikan rata – rata jumlah koloni per cawan petri
dengan faktor pengenceran untuk mendapatkan jumlah mikroorganisme total
per gram contoh (tanah) kering udara. Hasil ini dikonversikan ke jumlah
mikroorganisme didalam 1 gram tanah kering mutlak dengan
memperhitungkan kadar air tanah.
25
3.5.4 Diagram Alir Populasi Mikroorganisme Pseudomonas Solanacearum
Membuat seri pengenceran dengan cara memipet sejumlah 1 ml ke
dalam larutan fisiologis di tabung reaksi kemudian di vortex agar suspensi
bacteria homogen. Suspensi yang baru dibuat ini adalah pengenceran 100
kali atau . Begitulah seterusnya sampai diperoleh pengenceran .
Memipet 1 ml dari pengenceran . dan ke dalam cawan petri
steril dan ulang sampai 3 kali setiap pengencaran tersebut.
Menyiapkan media NA yang telah didinginkan dengan temperature 40 –
45ºC, kemudian menuangkan dalam petri tersebut + 15 ml lewat bunsen,
putar 3 kali agar media rata keseluruh cawan.
Menyiapkan cawan petri steril dan larutan fisiologis 9 ml dalam tabung
reaksi dan diautoclave.
Menyiapkan contoh tanah timbang 10 gram ke dalam 90 ml larutan
fisiologis yang ditempatkan dalam Erlenmeyer 250 ml, larutan tersebut
bernilai untuk menguji pseudomonas solanacearum.
Setelah media benar–benar padat, menginkubasikan pada temperatur yang
diinginkan meletakkan cawan terbalik pada incubator agar uap air tidak
menempel pada cawan petri.
26
Bila dari pengenceran yang paling tinggi jumlah koloni melebihi 300
koloni percawan petri berarti bahwa pengenceran terlalu rendah,
sebaliknya bila pengenceran yang paling rendah jumlah koloni kurang
dari 30, ini berarti bahwa pengenceran terlalu tinggi, jika semua cawan
petri menghasilkan koloni yang memuaskan, pilih cawan petri yang berisi
30 sampai 300 koloni percawwan petri. Untuk memudahkan perhiutungan
gunakan Colony Counter Number.
Perhitungan dari hasil. Kalikan rata – rata jumlah koloni per cawan petri
dengan faktor pengenceran untuk mendapatkan jumlah mikroorganisme
spesifik per gram contoh (tanah) kering udara. Hasil ini dikonversikan ke
jumlah mikroorganisme didalam 1 gram tanah kering mutlak dengan
memperhitungkan kadar air tanah.
Menginkubasikan 5 –7 hari kemudian lakukan perhitungan. Jumlah koloni
di dua cawan petri yang berturut – turut pengencerannya dari contoh yang
sama harus merupakan kelipatan 10 yang sama dengan pengenceran.
28
BAB 4. HASIL DAN PEMBAHASAN
4.1 Hasil
4.1.1 Biofisik Tanah
Tabel 4.1 Kondisi Lingkungan
1. Form No : 003/Lab BT/JT/2018
2. Kode SL (Satuan Lahan) : -
3. Tanggal Pemantauan : 26 September 2018
4. Nama Kelompok : A1
5. GPS-UTM : X = 8º 8’ 46‖
Y = 113º 43’ 52‖
6. Ketinggian : 117 mdpl
7. Jenis Tanah : Alluvial Kelabu
8. Lokasi : Dusun : Antirogo
Desa : Antirogo
Kecamatan : Sumbersari
Kabupaten : Jember
Propinsi : Jawa Timur
9. Vegetasi : Tanaman cabai
Tabel 4.2 Sifat Kimia Tanah
Analisis Satuan Harkat
pH 6-7 Netral
Nitrogen >2 cm Tinggi
Posfor Ada Tinggi
Kalium Ada Rendah
Sifat kimia tanah pada lokasi pengamatan dapat dilihat pada tabel diatas.
Analisis yang dilakukan mencakup pH tanah, kandungan nitrogen, kandungan
fosfor, dan kandungan kalium. Analisis dilakukan dengan menggunakan PUTS
atau Perangkat Uji Tanah Sawah. Hasil analisis menunjukkan bahwa pH tanah
29
pada tanaman cabai menunjukkan pH antara 6-7 dengan harkat netral. Kandungan
nitrogen menunjukkan hasil bahwa tanah pada tanaman cabai menunjukkan hasil
tinggi busa >2 cm dengan harkat tinggi. Kandungan fosfor menunjukkan hasil
bahwa tanah pada tanamn cabai adalah alluvial kelabu dengan harkat tinggi.
Kandungan kalium pada tanaman cabai tergolong dalam harkat rendah.
30
4.1.2 SOIL FAUNA
Tabel 4.3 Titik Pengambilan Sampel Pertama
No. Jenis Makro Fauna Jumlah Deskripsi
1. Cacing Tanah
1 1. Kingdom: Animalia
2. Kelas: Oligachaeta
3. Famili: Lumbricidae
4. Spesies: Lumbricus
terrestris
5. Filum: Annemalida
6. Ordo: Terricobe
7. Genus: Lumbricus
Ciri-Ciri:
Tidak memiliki tulang
belakang
Tubuhnya terdidi dari cincin/segmen
Tubuhnya berbentuk tabung (silindris)
berwarna merah keunguan
2. Semut Hitam
17 1. Kingdom: Animalia
2. Kelas: Hexapoda
3. Famili: Fermadae
4. Spesies: Lucius
Fuliginosus
5. Filum: Anthropoda
6. Ordo: Hymenoptera
7. Genus: Lacius
Ciri-Ciri:
Berwarna hitam
Memiliki antena
Tubuhnya terdiri dari
kepala, dada dan perut
Memiliki 3 pasang kaki dibagian dada
31
Tabel 4.4 Titik Pengambilan Sampel Kedua
No. Jenis Makro Fauna Jumlah Deskripsi
1. Semut Hitam
22 1. Kingdom: Animalia
2. Kelas: Hexapoda
3. Famili: Fermadae
4. Spesies: Lucius
Fuliginosus
5. Filum: Anthropoda
6. Ordo: Hymenoptera
7. Genus: Lacius
Ciri-Ciri:
Berwarna hitam
Memiliki antena
Tubuhnya terdiri dari kepala, dada dan perut
Memiliki 3 pasang kaki dibagian dada
2. Rayap
5 1. Kingdom: Animalia
2. Kelas: Insecta
3. Famili: Mastutemitidae
4. Filum: Anthropoda
5. Orde: Blattodea
Ciri-Ciri:
Memiliki ukurang tubuh kecil
Bertubuh lunak dan berjalan lambat
Memiliki antena berbentuk lurus
kedepan
Berdasarkan praktikum yang telah dilakukan, maka didapatkan beberapa
soil fauna yang ditemukan. Pengambilan sampel dibagi menjadi dua titik, yaitu
titik pertama dan titik kedua pada lahan tanaman cabai yang sama. Soil fauna pada
titik pertama adalah cacing tanah dan semut hitam yang berjumlah 1 dan semut
hutam sebanyak 17 ekor. Semut hitam ditemukan pada kedalaman sekitar 3-5 cm,
sedangkan cacing tanah ditemukan pada kedalamn sekitar 10 cm. Soil fauna yang
didapatkan pada titik kedua hampir sama dengan pengambilan sampel pada titik
yang pertama, yaitu semut hitam dan rayap yang berjumlah 22 dan rayap 5 ekor.
32
4.1.3 Respirasi Tanah
Tabel 4.5 Pengamatan Respirasi Tanah
Pengamatan
Ke-
Tanggal a b T n R
1 17-10-18 2,6 ml 0,3 0,2 7 15,77
2 24-10-18 1,3 ml 0,5 0,2 7 7,54
3 31-10-18 1,2 ml 0,9 0,2 7 2,06
4 7-10-18 3,5 ml 2,4 0,2 7 7,54
Hasil respirasi tanah yang berasal dari tanaman cabai dapat dilihat pada
tabel diatas. Pengamatan dilakukan selama 4 kali dalam 4 minggu. Munggu
pertama menunjukkan bahwa CO2 yang dihasilkan sebesar 15,77. Pada
pengamatan minggu kedua menunjukkan bahwa CO2 yang dihasilkan menurun
drastis yaitu sebesar 7,45. Pada pengamatan minggu ketiga menunjukkan bahwa
CO2 terus mengalami penurunan yaitu sebesar 2.06. pada minggu ke emmpat
menunjukkan bahwa CO2 kembali meninggat menjadi 7,45.masing-masing
diamati setiap minggu selama 4 minggu berturut-turut proses respirasi tanah. Data
yang memeperoleh hasil respirasi tertinggi adalah pada minggu pertama dan data
yang menghasilkan CO2 terendah adalah pada pengamatan minggu ke tiga.
Perhitungan:
( )
Keterangan :
r = jumlah CO2 yang dihasilkan
a = ml HCL untuk stoplesdengan contoh tanah
b = ml HCL untuk stoples tanpa contoh tanah (blanko)
t = normalitas HCL
n = jumlah hari inkubasi
Normalitas HCL = 0,2 N
33
Perhitungan jumlah CO2 yang dihasilkan :
a. Perthitungan ke-1
( )
( )
Mg CO2/hari
b. Pengamatan ke-2
( )
( )
Mg CO2/hari
c. Pengamatan ke-3
( )
( )
Mg CO2/hari
d. Perhitungan ke-4
( )
( )
Mg CO2/hari
0
2
4
6
8
10
12
14
16
18
Minggu Ke-1 Minggu Ke-2 Minggu Ke-3 Minggu Ke-4
Grafik Respirasi Tanah
CO2
34
4.1.4 Populasi Mikroorganisme Total Tanah
Tabel 4.6 Populasi Mikroorganisme Total Tanah
Jenis Mikroorganisme ∑ Populasi (CFU/gram)
Mikroorganisme Total
Perhitungan :
∑ Rata-rata = ( )
=
=
∑ Koloni Terhitung = ∑
=
=
∑ Sel Bakteri =
=
=
=24,32 x 10
8 =2,43 x 10
7 CFU/gram
Kadar Air Tanah =
BK Tanah = Berat Basah x (1 - Kadar Air)
= 5 x (1 – 0,26)
= 5 x 0,74
= 3,7
Hasil pengamatan populasi mikroorganisme total pada tanaman cabai
dapat dilihat pada tabel diatas. Pengamatan dilakukan dengan masa penyimpanan
selama 5 hari. Hasil pengamatan populasi mikroorganisme total menunjukkan
bahwa dari rata-rata pengenceran 10-7
adalah sebesar 9 × 107.
35
4.1.5 Populasi Mikroorganisme Spesifik Tanah
Tabel 4.7 Populasi Mikroorganisme Spesifik Tanah
No Jenis Bakteri ∑ Bakteri Ket
1 Pseudomonas
Perhitungan :
∑ rata-rata = ( )
=
∑ Koloni Tehitung = ∑
=
=
∑ Populasi Bakteri = ∑
=
=
= = CFU/gram
Kadar Air Tanah =
BK Tanah = Berat Basah x (1 - Kadar Air)
= 5 x (1 – 0,26)
= 5 x 0,74
= 3,7
Hasil pengamatan moroorganisme yang berasal dari tanaman cabai dapat
dilihat pada tabel diatas. Pengamatan mokroorganisme bakteri Pseudomonas
dalam tanah dilakukan sekali dengan lama penyimpanan selama 5 hari sebelum
dilakukan pengamatan. Hasil pengamatan menunjukkan bahwa rata-rata pada
pengenceran 10-7
sebesar 40 × 10-7.
36
4.2 Pembahasan Umum
Praktikum yang dilakukan yaitu Pengambilan sampel tanah diambil di
lokasi yaitu Desa Antirogo. Ketinggian Desa Antirogo yaitu 117 mdpl, dengan
menggunakan pola acak, pola zigzag, dan pola diagonal. Sampel tanah yang
diambil dari lapang merupakan jenis tanah alluvial kelabu. Vegetasi dari contoh
sampel tanah yang diambil untuk dilakukan penelitian tersebut yaitu dengan
mengunakan tanaman cabai. Pengujian tanah yang dilakukan ini dengan
menggunakan alat yaitu PUTS. PUTS ini merupakan suatu alat bantu yang
digunakan untuk menganalisis kadar hara yang terdapat di dalam tanah untuk
menentukan kandungan N, P, K dan pH dari tanah yang sudah diambil sampelnya.
Pengujian Nitrogen (N) pada sampel tanah yag telah diambil yaitu
memiliki hasil yang tinggi. Kandungan Nitrogen (N) yang tinggi dapat dilihat dari
cairan yang digunakan untuk menguji memiliki hasil yaitu warna hijau tua. Warna
hijau tua tersebut menunjukkan bahwa contoh sampel tanah tersebut banyak
memiliki kandungan Nitrogen (N) yang tinggi, dengan kandungan nitrogen yang
tinggi dapat dilakukan rekomendasi pemupukan urea sebanyak 300 kg. Unsur
Nitrogen (N) merupakan unsur hara utama bagi pertumbuhan tanaman, pada
umumnya unsur tersebut sangat diperlukan untuk pertumbuhan atau pembentukan
bagian vegetative tanaman seperti daun, batang dan akar. Unsur Nitrogen (N)
sangat penting untuk mendukung pertumbuhan tanaman karena tanaman yang
kekurangan unsur Nitrogen (N) akan mengalami pertumbuhan yang lambat,
daunnya sempit dan tanaman tetap pendek sehinga pertumbuhan tanaman akan
terhambat (Purnomo dkk., 2017)
Pengujian Posfor (P) yang dilakukan pada sampel tanah yang telah diambil
yaitu memiliki hasil yang tinggi. Hasil yang tinggi akan menunjukkan cairan yang
di uji berwarna biru muda. Hasil tersebut dapat dilakukan rekomendasi pupuk SP-
36 sebanayak 50 kg / ha. Kandungan unsur Posfor (P) yang tinggi sangat
berpengaruh terhadap pertumbuhan dan perkembangan tanaman, karena unsur
Posfor (P) berpengaruh terhadap perluasan permukaan daun sehingga laju
fotosintesis tanaman dapat meningkat, dengan meingkatnya laju fotosisntesi,
pertumbuhan tinggi tanaman juga akan mengalami peningkatan, sehingga unsur
37
Posfor (P) di dalam tanah memegang peran yang sangat penting pada tanaman
(Jamilah dkk., 2016).
Kalium (K) yang terdapat pada contoh sampel tanah yang diambil setelah
dilakukan pengujian memiliki hasil kalium (K) yang rendah dapat dilihat dari
cairan yang digunakan untuk analisis memiliki warna kuning keemasan. Hal
tersebut menandakan unsur Kalium (K) yang terdapat pada contoh sampel tanah
yang diambil di Desa Antirogo dengan vegetasi tanaman cabai tersebut rendah,
sehingga pada lahan tanaman cabai tersebut direkomendasikan untuk memberikan
pupuk KCl sebanyak 50 kg/ha dan 5 t jerami/ha. Seperti yang dikemukakan oleh
Subandi (2013) unsur kalium sangat penting karena unsur kalium relatif
dibutuhkan oleh tanaman agar tanaman dapat tumbuh dengan normal dan
berproduksi secara optimal. Unsur Kaliuam (K) sangat menentukan kualitas dan
kuantitas hasil tanaman karena unsur Kalium (K) memiliki peran yang penting
yaitu berperan dalam sintesis protein, proses dan translokasi hasil fotosintesis,
Peningkatan ketahanan tanaman terhadap gangguan hama dan penyakit.
Kandungan Ph yang terdapat pada contoh sampel tanah yang diambil yaitu
memiliki ph 6-7. Kandungan pH tersebut menunjukkan keadaan tanah tersebut
netral,kandungan pH tersebut dapat diketahui dengan terlihatnya cairan yang
digunakan untuk menguji sampel tanah tersebut berwarna kekuningan sehingga
hasil tersebut menunjukkan keadaan pH yang netral, pH atau kemasan tanah dapat
disebbkan oleh beberapa factor diantaranya yaitu bahan induk tanah, bahan
organic tanah, hirdolisis aluminium reaksi oksidasi terhadap mineral tertentu dan
pencucian basa-basa di dalam tanah, sehingga pada lahan tersebut
direkomendasikan untuk menggunakan system drainase yang konvension
(Syahputra dan Razali, 2015).
Berdasarkan pengujian kandungan pH tanah sawah titik pertama dan titik
kedua yang diketahui netral, maka diperoleh beberapa jenis soil fauna yang
terdapat dalam petak pengambilan sampel. Pengambilan sampel tanah dilakukan
dengan metode kuadrat, yaitu membuat kuadrat di atas tanah dengan luasan
tertentu, selebar 25cm x 25cm dengan kedalaman 10-25cm. Petakan yang telah
dibuat kemudian digali sesuai dengan kedalaman yang telah di tentukan. Kedalam
38
tanah galian yang diambil sangat berpengaruh terhadap jenis fauna yang
diperoleh.
Hasil dari penggalian tanah tersebut kemudian diletakkan diatas kain untuk
dilakukan pengamatan jenis fauna dan menghitung jumlah fauna yang terdapat
dalam tanah sampel dan diketahui titik 1 dan titik 2 maka diperoleh beberapa jenis
fauna, yaitu cacing berjumlah 1 ekor, semut hitam berjumlah kurang lebih 39
ekor, dan rayap sebanyak 5 ekor. Cacing tanah merupakan hewan animalia,
memiliki bentuk tubuh pipih. Fungsi cacing tanah dalam tanah adalah untuk
meningkatkan infiltrasi air dan aerase tanah dibuat oleh cacing tanah dapat
meningkatkan masuknya air dalam tanah lebih tinggi dibandingkan tanpa adanya
saluran cacing tanah (Gbarakoro T.N and Zabbey N, 2013). Keragaman
makroorganisme atau makrofauna memiliki populasi yang cukup banyak
dikarenakan lahan tersebut memiliki kandungan pH netral, dan memiliki
kandungan N dan P yang tinggi tetapi kandungan K rendah. Kandungan N,P,K
yang diketahui sehingga terdapat populasi makroorganisme seperti semut, rayap,
cacing, dll.
Populasi semut hitam dalam tanah sampel yang diperoleh memiliki jumlah
yang berbeda, dimana jumlah populasi semut hitam pada titik pengambilan
sampel kedua lebih banyak dibandingkan pada titik sampel pertama. Semut dapat
melakukan daur ulang dengan cara memasukkan bahan organik mati atau sekarat
dan nutrisi dalam tanah. Banya juga jenis yang aktif membubarkan bibit bebagai
jenis tanaman. Karena jumlah populasi semut yang banyak, semut dapat
membantu tumbuhan dalam siklus reproduksi tanaman, misalnya dalam
membantu penyerbukan dengan begitu maka semut dan tanaman menunjukkan
sifat timbal balik yang cukup besar. Semut tidak hanya membantu proses
penyerbukan namun juga memberi pupuk pada tanaman dengan nutrisi penting
(Moh Ikdal, dkk. 2014).
Rayap yang terdapat dalam tanah sampel memang tidak terlalu banyak
yaitu hanya berkisat 5 ekor saja. Rayap merupan salah satu hewan purba karena
sudah ada sejak 200 juta tahun silam. Pada umumnya rayap dikenal sebagai
serangga yang menyebabkan kerugian terhadap lingkungan. Namun dalam tanah
39
rayap berpengaruh penting yaitu rayap membuat sarang dengan cara menggali
lubang berupa pori-pori kecil pada tanah, akibatnya air dapat meresap lebih jauh
dalam tanah. Dalam sebuah riset yang terdapat dalam junal Science, pera peneliti
menyatakan bahwa tanaman yang tumbuh disekitar sarang rayap dapat tumbuh
lebih lama pada kindisi kering. Gundukan sarang rayap dapat menjadi pertahanan
potensial untuk menghadapi perubahan iklim dan dapat mencegah tanah menjadi
lebih tandus.
Indikator suburnya tanah ditentukan dengan melihat populasi
mikroorganisme dalam suatu tanah tertentu disebut respirasi tanah.
Mikroorganisme memiliki pengaruh yang sangat penting bagi kesuburan tanah.
Mikroorganisme tanah memiliki peran sebagai dekomposer bahan-bahan organik
yang dapat menjadi nutrisi baru bagi tanah dan kandungan hara pada tanah
mencukupi bagi tanaman tersebut. Mengidentifikasi dan mengetahui aktifitas dan
jumlah mikroorganisme dalam tanah dapat menggunakan metode penghitungan
jumlah mikroorganisme secara langsung dan juga menghitung kadar
karbondioksida yang dikeluarkan atau dilepas oleh mikroorganisme dalam jangka
waktu tertentu. Mengetahui kesuburan tanah dapat diketahui dengan cara lain
seperti korelasi antara jumlah C organic tanah dengan jumlah mikroorganisme
tanah, yang berkorelasi semakin tinggi nilai C organic tanah maka jumlah
mikroorganisme di dalam tanah tersebut dipastikan banyak yang berkorelasi juga
dengan jumlah karbondioksida yang dihasilkan mikroorganisme tanah juga tinggi
(Nasution dkk, 2015).
Kadar karbon setiap minggunya mengalami perubahan. Mulai minggu 1
hingga minggu ke 3 mengalami penurunan secara signifikan hal ini dikarenakan
jumlah C-organik dalam tanah yang menurun sehingga aktifitas mikroorganisme
terbatas yang mempengaruhi jumlah karbondioksida yang dihasilkan. Hasil dari
minggu ke 4 mengalami peningktan dari minggu ke 3 hal ini dikarenakan aktifitas
jumlah C-organik dan mikroorganisme yang meningkat sehingga terjadi
perubahan pada minggu sebelumnya yang semula turun menjadi naik (Putri dkk,
2017).
Mikroorganisme merupakan organisme yang berukuran kecil sehingga
40
tidak dapat dilihat dengan mata telanjang. Mikroorganisme dapat disebut mikroba
atau jasad renik. Tanah yang subur mengandung lebih dari 100 juta
mikroorganisme per gram tanah. Kehadiran mikroorganisme tanah bermanfaat
seperti bakteri pelrut fospat dan bakteri penambat nitrogen non-simbiotik yang
diharapkan dapat meningkatkan kesuburan tanah (Prayudyaningsih, 2015).
Jumlah total mikroorganisme yang terdapat dalam tanah digunakan
sebagai indeks kesuburan tanah (fertility indeks). Populasi yang tinggi
menggambarkan adanya suplai makanan atau energi yang cukup ditambah lagi
dengan temperatur yang sesuai, ketersediaan air yang cukup, kondisi ekologi lain
yang mendukung perkembangan mikroorganisme pada tanah tersebut.
Berdasarkan hasil pengamatan populasi mikroorganisme total tanah
menggunakan media agar dapat diketahui total populasi mikroorganismenya yaitu
0,06 x (FU)/ Sel mikroba yang masih hidup ditumbuhkan ke dalam
media agar sehingga sel mikroba akan berkembangbiak dan membentuk koloni
yang dapat dilihat langsung dengan mata tanpa alat bantu mikroskop. Berdasarkan
3 sampel cawan dengan pengenceran terdapat 1 cawan
yang berhasil dilihat populasi bakteri yang telah dilakukan pengenceran,
kemudian mengitung jumlah koloni pada cawan tersebut. Cawan yang dipilih dan
dihitung merupakan cawan yang mengandung jumlah koloni 30-300 koloni.
Perhitungan koloni untuk menghitung jumlah total mikroorganisme fungi dan
bakteri yang dilakukan menggunakan pengenceran.
Bakteri yang berperan sebagai pelarut fosfat pada tanah telah banyak
ditemukan, diantaranya genera Pseudomonas, Micrococcus, Bacillus,
Azotobacter, Microbacterium dan Flavobacterium. Bakteri pelarut Fosfat adalah
bakteri aerob khemoorganotrof yang berbentuk batang lurus atau lengkung dengan
ukuran tiap sel bakteri 0,5-0,1µm x 1,5-4,0µm. Bakteri Pelarut Fosfat dapat
membantu mengurai senyawa-senyawa kompleks yang tidak dapat diserap
tanaman menjadi tersedia dan dapat digunakan oleh tanaman. Bakteri Pelarut
Fosfat tidak membentuk spora dan bereaksi negatif terhadap pewarnaan gram.
Bakteri Pelarut Fosfat di dalam tanah berjumlah 3-15% dari populasi bakteri.
Bakteri Pelarut Fosfat merupakan bakteri dekomposer yang mengkonsumsi
41
senyawa karbon sederhana, seperti eskudrat akar dan sisa tanaman yang dapat
mengkonversi energi dalam bahan organik tanah menjadi bentuk yang bermanfaat
untuk organisme tanah lain dalam rantai makanan tanah (Aditya dkk, 2015).
Bakteri pelarut fosfat dalam tanah dapat dilakukan dengan isolasi bakteri
pelarut fosfat atau uji fostase. Uji fosfatase dilakukan untuk melihat kemampuan
hidup bakteri pelarut fosfat. Media Agar yang sudah disterilkan disebarkan merata
ke dalam cawan petri. Kemudiam dilakukan pengamatan secara makroskopis
terhadap cawan yang telah di isolasi selama 72 jam dengan suhu 30°C dengan
melihat jumlah koloninya untuk kepentingan lebih lanjut dapat dilakukan
pengamatan secara mikroskopis untuk melihat morfologi bakteri mulai dari
bentuk dan warna sel dengan pewarnaan gram. Isolasi Pseudomonas dilakuakan
dengan sesteril mungkin untuk hasil isolasi yang tidak terkontaminasi oleh bakteri
yang terdapat diluar sampel tanah (Setiawati dkk, 2014).
Pseudomonas terbagi atas grup, diantaranya adalah sub-grup berpendarfluor
(Fluorescent) yang dapat mengeluarkan pigmen phenazine. Kemampuan
menghasilkan pigmen phenazine juga dijumpai pada kelompok tak
berpendarfluor. Isolat bakteri yang dilakukan dengan media Agar hanya dapat
menumbukan bakteri pelarut fosfat saja sehingga dapat disimpulkan bahwa
bakteri yang terisolasi adalah Bakteri Pelarut Fosfat salah satunya jenis dari
Pseudomonas dengan jumlah 0,83 x . Kemampuan Pseudomonas dalam
mendegradasi jenis hidrokarbon dalam keberhasilannya dalam bioremediasi
lingkungan akibat pencemaran hidrokarbon dalam interaksi antara pseudomonas
dengan senyawa hidrokarbon. Pseudomonas merupakan bakteri
hidrokarbonoklastik yang mampu mendegradasi berbagai jenis hidrokarbon.
Keberhasilan penggunaan bakteri pseudomonas dalam upaya remediasi
lingkungan akibat pencemaran hidrokarbon membutuhkan pemahaman tentang
mekanisme interaksi antara bakteri pseudomonas dengan senyawa hidrokarbon.
Selain itu bakteri dari genus Bacillus termasuk bakteri yang memiliki kemampuan
yang tinggi dalam melarutkan fosfat. Kemampuan bakteri pseudomonas dalam
mendegradasi hidrokarbon dan dalam menghasilkan biosurfaktan menunjukkan
bahwa isolat bakteri pseudomonas berpotensi untuk digunakan dalam upaya
42
bioremediasi lingkungan akibat pencemaran hidrokarbon (Lukito dkk, 2013).
42
BAB 5. KESIMPULAN DAN SARAN
5.1 Kesimpulan
1. Praktikum yang dilakukan yaitu biofisik tanah dengan mengamati
kandungan N,P,K dan Ph di dalam tanah. Kandungan N dan kandungan P
pada sampel tanah tersebut tinggi sedangkan kandungan K rendah dan
kandungan Ph nya yaitu netral.
2. Soil fauna yang telah didapatkan pada titik pengambilan sampel pertama
yaitu cacing tanah dan semut hitam, sedangkan soil fauna yang didapatkan
pada titik pengambilan sampel kedua yaitu semut hitam dan rayap
3. Praktikum respirasi tanah dengan 4 kali titrasi yang dilakukan hasil tertinggi
terdapat pada pengamatan pertama dengan hasil 15,77 dan hasil paling
rendah terdapat pada pengamatan ketiga dengan hasil 2,06
4. Praktium populasi mikroorganisme total yang didapatkan yaitu dengan
populasi 0,06 x 10 ⁶
5. Praktikum yang dilakukan dengan mengamati bakteri yang spesifik yaitu
pseudomonas didapatkan hasil bakteri yaitu 0,83 x 10 ֿֿ ⁵
5.2 Saran
Sebaiknya praktikum Biologi Tanah yang dilakukan lebih baik lagi dari
persiapan segi alat yang akan digunakan untuk praktikum maupun dari segi
teknisnnya dan sebaiknya pengembalian tabel acc lebih cepat.
DAFTAR PUSTAKA
Aditya M, Idwar, dan Nurbaiti. 2015. Aplikasi Bakteri Pelarut Fosfat Isolat No.
68 dengan Berbagai Takaran Batuan Fosfat Pada Medium Gambut dalam
Meningkatkan Pertumbuhan dan Produksi Kacang Hijau (Vigna Radiata
L.). Varietas 129. JOM Faperta. 2(2): 1-15.
Briones, J. M. 2014. Soil Fauna And Soil Functions : a Jigsaw Puzzle.
Environmental Science. 2(7) : 1-22
Cahyono B. 2003. Teknik Budidaya dan Analisis Usahatani Cabai Rawit.
Kanisius : Yogyakarta.
Gbarakoro T. N and Zabbey N. 2013. Soil Makrofauna Diversity and Responses
to Agro-Herbicide Toxicities in Rainforest Zone of the Niger Delt,
Nigeria. Applied Journal of Hygiene. Vol 2 (1): 01-07.
Hilwan, I. dan Handayani, P. E. 2013. Keanekaragaman Mesofauna dan
Makrofauna Tanah Pada Areal Bekas Tambang Timah di Kabupaten
Belitung, Provinsi Kepulauan Bangka-Belitung. Silvikultur Tropika. 4(1)
: 35-41
Imtiyaz, H., Prasetio, H. B., dan Hidayat, N. 2017. Sistem Pendukung Keputusan
Budidaya Tanaman Cabai Berdasarkan Prediksi Curah Hujan.
Pengembangan Teknologi Informasi dan Ilmu Komputer. 1(9) : 733-738.
Jamilah, M., Purnomowati dan Dwiputranto, U. 2016. Pertumbuhan Cabai Merah
(Capsicum annuum L.) Pada Tanah Masam yang Diinokulasi Mikoriza
Vesikula Arbuskula (MVA) Campuran dan Pupuk Fosfat. Biosfera. 33(1)
: 37-45.
Lukito A. B. D., Goretti M., dan Goeltom M. T. Pertumbuhan Bakteri
Pseudomonas aeruginosa dan Dekolorisasi Senyawa Pewarna Stroberi
Red dan Orange Yellow dalam Kondisi Curah. Ilmiah Mahasiswa
Universitas Surabaya. 2(1): 1-16.
Marsandi, F., Hermansah, Agustian, Yasin, S. 2017. Keanekaragaman Organisme
Tanah dan Hubungannya dengan Keanekragaman Spesies Tumbuhan
Kawasan Hutan Hujan Tropis Pinang-Pinang, Padang, Indonesia. Pros
Sem Nas Masy Biodiv Indon. 3(2) : 309-318.
Moh. Ikbal, Nugroho Susetya Putra, dan Edhi Martono. 2014. Keragaman Semut
Pada Ekosistem Tanaman Kakao Di Desa Banjaroya Kecamatan
Kalibawang Yogyakarta. Jurnal Perlindungan Tanaman Indonesia.
18(2):79-88.
Nasution N. A. P., dkk. Respirasi Tanah Pada Sebagian Lokasi Di Hutan Taman
Nasional Bukit Barisan Selatan (TNBBS). Jurnal Agrotek Tropika, Vol
3, No. 3: 427-433 2015.
Ningtyas, D.A., N.Basuki., dan Respatijarti.2015. Seleksi sifat ketahanan tanaman
cabai besar (Capsicum annuum L.) pada populasi f2 terhadap penyakit
Layu bakteri (Ralstonia solanacearum). Produksi Tanaman. 3(8) :632-
629.
Nurrohman, E., Rahardjanto, A., dan Wahyuni, S. 2018. Studi Hubungan
Keanekaragaman Makrofauna Tanah Dengan Kandungan C-Organik dan
Organophosfat Tanah di Perkebunan Cokelat (Theobroma cacao L.)
Kalibaru Banyuwangi.
Pangestu, E., Sri Y., Ainin N., dan Henrie B.2017. Pengaruh sistem olah tanah
dan aplikasi herbisida Terhadap respirasi tanah pada lahan
pertanaman jagung (zea mays) musim tanam ke tiga. Agrotek Tropika.
5(2) :113– 118.
Prayudyaningsih, R., Nursyamsi., dan R, Sari.2015. Mikroorganisme Tanah
Bermanfaat Pada Rhizosfer Tanaman Umbi Di Bawah Tegakan Hutan
Rakyat Sulawesi Selatan. Pros Sem Nas Masy Biodiv Indon. 1(4) :954-
959.
Purnomo, A. E., Sutrisno, E. dan Sumiyati, S. 2017. Pengaruh Variasi C/N Rasio
Terhadap Produksi Kompos Dan Kandungan Kalium (K), Pospat (P)
DariI Batang Pisang Dengan Kombinasi Kotoran Sapi Dalam Sistem
Vermicomposting. Teknik Lingkungan. 6(2):1-15.
Putri N. A. R., dkk. Pengaruh Sistem Olah Tanah dan Aplikasi Mulsa Bagas
Terhadap Respirasi Tanah Pada Pertanaman Tebu (Saccharum
Officinarum L) Ratoon Ke-1 Periode 2 Di PT Gunung Madu Plantations.
Jurnal Agrotek Tropika. Vol 5, No. 2: 109-112, 2017.
Setyawan, D., H. Hanum. 2014. Respirasi Tanah sebagai Indikator Kepulihan
Lahan Pascatambang Batubara di Sumatera Selatan. Lahan Suboptimal.
3(1) :71-75.
Setiawati M. R., Suryatmana P., Hindersah R., Fitriatin B. N. dan Herdiyantoro D.
2014. Karakterisasi Isolat Bakteri Pelarut Fosfat Untuk Meningkatkan
Ketersediaan P Pada Media Kultur Cair Tanaman Jagung (Zea Mays L.).
Ilmu Hayati dan Fisik. 16(1) : 30-34.
Subandi. 2013. Peran dan Pengelolaan Hara Kalium Untuk Produksi Pangan di
Indonesia. Pengembangan Inovasi Pertanian. 6(1) : 1-10.
Syahputra, E, Fauzi dan Razali. 2015. Karakteristik Sifat Kimia Sub Grup Tanah
Ultisol di Beberapa Wilayah Sumatera Utara. 4(1) : 1796-1803.
Utami, Nur Hikmah. 2009. Kajian Sifat Fisik,Sifat Kimia Dan Sifat Biologi Tanah
Paska Tambang Galian C Pada Tiga Penutupan Lahan (Studi Kasus
Pertambangan Pasir (Galian C) Di Desa Gumulung Tonggoh, Kecamatan
Astanajapura, Kabupaten Cirebon, Provinsi Jawa Barat). Skripsi : Institut
Pertanian Bogor.
LAMPIRAN
Peta Jenis Tanah
Dokumentasi
Acara 1. Biofisik Tanah
Acara 2. Soil Fauna
Acara 3. Respirasi Tanah
Acara 4. Populasi Mikroorganisme Total Tanah
Acara 5. Mikroorganisme spesifik