Deteksi Cepat Gen InvA pada Salmonella spp. Dengan Metode …

191

J u r n a l S a i n s F a r m a s i & K l i n i s p-ISSN: 2407-7062 | e-ISSN: 2442-5435 homepage: http://jsfk.ffarmasi.unand.ac.id

PendahuluanSalmonella spp. merupakan bakteri berbentuk batang

lurus, tidak berspora, bersifat gram negatif, sehingga mempunyai komponen outer layer (lapisan luar) yang tersusun dari LPS (lipopolisakariada) dan dapat berfungsi sebagai endotoksin [1]. Salmonella spp. merupakan penyebab utama dari penyakit salmonellosis yang disebarkan melalui makanan (foodborne diseases) [2]. Salmonella spp. yang menginfeksi tubuh melalui makanan akan bertahan hidup kemudian menginvasi mukosa dari usus dan menghasilkan racun. Keracunan oleh Salmonella disebabkan karena kontaminasi Salmonella dalam jumlah yang signifikan yaitu 107 sel [3].

Salmonella spp. memiliki gen invA yang berperan dalam menyebabkan sakit pada manusia. Gen tersebut

terletak di daerah Salmonella pathogenicity island (SPI-R) yang mempunyai operon yang berfungsi sebagai tempat penyimpanan informasi genetik. Gen invA pada Salmonella spp. terletak di kromosom yang mampu menghasilkan protein yang dapat memberikan sifat invasif untuk menginvasi sel epitel yang terdapat di dalam usus. [2]

Kultur merupakan metode pembiakan bakteri dalam suatu media sebagai gold standar untuk deteksi Salmonella spp. dengan sensitivitas dan spesifisitas 100%. Akan tetapi metode ini memiliki beberapa kekurangan diantaranya: memerlukan waktu yang lama untuk analisisnya (7-14 hari), bersifat laborious, dan memerlukan lab dengan biosafety lavel yang tinggi [4]. Selain metode kultur, deteksi Salmonella spp. dapat dilakukan dengan uji serologi, uji widal, dan tes tubex. Ketiga metode

Access this article

O R I G I N A L A R T I C L E Vol. 5 No. 3 (Desember 2018) | pp. 191–200 |

Deteksi Cepat Gen InvA pada Salmonella spp. Dengan Metode PCRm

(Rapid Detection of InvA Genes in Salmonella spp. with The PCR Method)

Soni Muhsinin*, Maria Martina Sulastri, dan Dadih SupriadiSekolah Tinggi Farmasi Bandung

ABSTRACT: Salmonella spp. is a major infectious agent in humans through an oral route by contaminating food and drinks. Diseases caused by Salmonella spp. called salmonellosis. Salmonella spp. has an invA gene that causes pathogens in humans. InvA gene detection can be done by PCR method. The purpose of this study was to develop a rapid detection method for InvA gene in Salmonella spp. with the PCR method. The steps of the research method were started from Salmonella ATCC culture, Salmonella ATCC DNA Isolation, Quantitative Analysis of Salmonella ATCC DNA, Specific primary design for InvA gene detection, Primary Characterization, Optimization of PCR components. Results of isolation of Salmonella ATCC DNA were obtained with a DNA concentration of 4.5 ng / ul with DNA purity of 1.66. The PCR primers that have been designed for the InvA gene detection consist of one primary pair, namely InvA-F: 5 ‘TCGTCATTCCATTACCTACC 3’ and InvA-R: 5 ‘AAACGTTGAAAAACTGAGGA 3’ which produced 119 bp of InvA gene PCR products. InvA gene can be detected quickly using the PCR method that has been optimized by the PCR component.

Keywords: Salmonella ATCC; InvA gene; DNA Isolation; PCR.

ABSTRAK: Salmonella spp. merupakan penyebab infeksi utama pada manusia melalui rute oral dengan cara mengkontaminasi makanan dan minuman. Penyakit yang disebabkan oleh Salmonella spp. disebut salmonellosis. Salmonella spp. memiliki gen invA yang menyebabkan patogen pada manusia. Deteksi gen InvA dapat dilakukan dengan metode PCR. Tujuan penelitian ini adalah untuk pengembangan metode deteksi cepat Gen InvA pada Salmonella spp. dengan metode PCR. Tahapan metode penelitian dimulai dari kultur Salmonella ATCC, Isolasi DNA Salmonella ATCC, Analisis Kuantitatif DNA Salmonella ATCC, Desain primer spesifik untuk deteksi gen InvA, Karakterisasi primer, Optimasi komponen PCR. Hasil isolasi DNA Salmonella ATCC yang didapat dengan konsentrasi DNA sebesar 4,5 ng/ul dengan kemurnian DNA 1,66. Primer PCR yang telah didesain untuk deteksi gen InvA terdiri dari satu pasang primer, yaitu InvA-F: 5’ TCGTCATTCCATTACCTACC 3’dan InvA-R: 5’ AAACGTTGAAAAACTGAGGA 3’ yang menghasilkan produk PCR gen InvA sepanjang 119 bp. Gen InvA dapat dideteksi dengan cepat menggunakan metode PCR yang telah dioptimasi komponen PCR.

Kata kunci: Salmonella ATCC; gen InvA; Isolasi DNA; PCR.

*Corresponding Author: Soni MuhsininJl. Soekarno-Hatta No.754, Cipadung Kidul, Panyileukan,

Kota Bandung, Jawa Barat 40614| Email: [email protected]

http://jsfk.ffarmasi.unand.ac.id

mailto:soni.muhsinin%40stfb.ac.id?subject=

Deteks i Cepat Gen InvA pada Sa lmonel la spp. . . Muhsin in et . a l .

Jurnal Sa ins Farmasi & K l in is | Vol . 05 No. 03 | Desember 2018192

ini memiliki kekurangan, yaitu nilai sensitivitas sebesar 47-77 % dan nilai spesifisitas sebesar 50-85% [5,6]. Metode molekuler berbasis DNA telah banyak dikembangkan, salah satunya teknik Polymerase Chain Reaction (PCR). PCR memiliki beberapa keunggulan, diantara: cepat dalam menganalisis hasil (1 hari), memiliki nilai sensitifitas dan spesifisitas yang tinggi (>90%) [7-9]. Berdasarkan latar belakang di atas telah dilakukan penelitian yang bertujuan untuk pengembangan metode deteksi cepat Gen InvA pada Salmonella spp. dengan metode PCR.

Metode Penelitian

Kultur Salmonella ATCCKultur Salmonella ATCC didapatkan dari Politeknik

Kesehatan Bandung. Kultur tersebut kemudian disubkultur pada media agar miring NA (Oxoid) yang dimasukkan ke dalam tabung reaksi (Pyrex). Hasil koloni subkultur yang tumbuh setelah 1-2 hari diinkubasi pada suhu 37 0C, kemudian digunakan untuk isolasi DNA.

Isolasi DNA Salmonella ATCCTahapan isolasi DNA sesuai dengan yang tertera pada

protokol Wizard® Genomic DNA Purification Kit (Promega) yaitu masukan 1 ml hasil kultur pada microcetrifuge tube 1,5 ml, kemudian sentrifugasi dengan kecepatan 13.000 – 16.000 x selama 2 menit. Hilangkan supernatan, dan pellet ditambahkan 600 µl Nuclei Lysis Solution, homogenkan dengan menggunakan pipet sampai larutan tersuspensikan. Inkubasi pada suhu 80 oC selama 5 menit untuk melisiskan sel, tambahkan 3 µl larutan Rnase dan kocok tube 2 – 5 kali agar homogen. Inkubasi 15 – 60 menit pada suhu 37 oC, kemudian dinginkan sampel pada suhu kamar. Tambahkan 200 µl Protein Precipitation Solution dan vortex dengan kecepatan tinggi selama 20 detik. Inkubasi sampel diatas es selama 5 menit, sentrifugasi pada kecepatan 13.000 – 16.000 x Selma 3 menit. Pisahkan supernatan dan tambahkan 600 µl isopropanol pada suhu kamar, sentrifugasi pada kecepatan 13.000 – 16.000 x selama 2 menit. Pisahkan supernatant dan tambahkan etanol 70 % dan balik tabung beberapa kali untuk mencuci pellet, sentrifugasi pada kecepatan 13.000 – 16.000 x selama 2 menit. Tiriskan tabung pada kertas penyerap bersih dan biarkan pellet mongering selama 5 – 10 menit. Tambahkan 100 µllarutan DNA rehidrase dan inkubasi pada suhu 65 oC selama 1 jam atau inkubasi 24 jam pada suhu 4 oC. Simpan DNA pada suhu 2-8 oC [10].

Analisis Kuantitatif DNA Salmonella ATCCTahap selanjutnya dilakukan perhitungan konsentrasi

DNA menggunakan alat Nanodrop (Termo Scientific).

Konsentrasi DNA dapat dihitung dengan menggunakan rumus sebagai berikut: Konsentrasi DNA = A260 x 50 x Faktor Pengenceran [11].

Desain dan Karakterisasi Primer Spesifik untuk deteksi gen InvA

Desain primer dilakukan dengan studi literatur dan BLASTING Primer menggunakan software BLAST lewat laman http://blast.ncbi.nml.nih.gov/Blast.cgi. BLAST merupakan salah satu fitur dalam NCBI (National Centre for Biotechnology Information) yang berfungsi untuk menganalisis apakah ada kemiripan primer yang kita gunakan dengan genom lainnya pada GenBank DNA database. Software BLAST pada NCBI dapat digunakan untuk melakukan perhitungan panjang produk yang dihasilkan berdasarkan posisi forward primer dan reverse primer pada urutan gen Salmonella spp. Primer yang sudah dirancang pada tahapan sebelumnya, kemudian akan dilakukan uji primer yang meliputi, konten persen GC dari urutan primer, kemungkinan primer dimer, dan range temperature melting (Tm). [12].

Optimasi Komponen PCROptimasi komponen PCR yang dilakukan

diantaranya: Konsentrasi Template DNA (2,5 ul dan 5 ul), Taq Polimerase (0-2 U), Konsentrasi MgCl2 (0 – 3 µM), konsentrasi dNTPs (0-250 μM) [13]. Semua komponen PCR ini dilakukan amplifikasi DNA dengan menggunakan alat Thermocycler (Thermo). Profil PCR yang digunakan adalah sebagai berikut: suhu denaturasi 95 oC, annealing 50 oC dan extension 72 oC dengan jumlah siklus 35 siklus. Hasil dari amplifikasi DNA menggunakan PCR ini akan dianalisis produk PCR nya dengan menggunakan metode elektroforesis gel agarose.

Elektroforesis gel agarose produk PCRHasil amplifikasi DNA (amplicon) dianalisis

menggunakan elektroforesis gel agarosa. Konsentrasi agarosa sebesar 2 % dalam buffer TBE 1 x (Tris-borate-EDTA) dan ditambahkan pewarna Diamond sebanyak 2 µl. Amplicon dimasukan ke dalam sumuran sebanyak 5 µl yang ditambahkan 1 µl loading dye (Promega). Sebagai penanda (Marker) digunakan ladder 100 bp (Promega). Elektroforesis dijalankan dengan kondisi tegangan 110 V selama 35 menit. Hasil elektroforesis divisualisasi dibawah sinar Blue Light (Mupid) kemudian didokumentasikan sebagai hasil analisis


193Jurnal Sa ins Farmasi & K l in is | Vol . 05 No. 03 | Desember 2018

Hasil dan Diskusi

Tahapan isolasi dilakukan untuk mendapatkan DNA murni dari kultur Salmonella spp. Isolasi DNA memiliki beberapa tahapan, yaitu: (1) Lisis dinding sel; (2) Purifikasi; dan (3) Presipitasi. Isolasi DNA dilakukan sesuai dengan protocol KIT Promega [10]. Langkah awal 1 ml kultur di sentifugasi dengan kecepatan 14.500 rpm. Sentrifugasi bertujuan untuk mengendapkan sel dari komponen lainnya berdasarkan berat jenis molekul. Pemecahan sel (lisis) merupakan tahapan dari awal isolasi DNA yang bertujuan untuk mengeluarkan isi sel dengan penambahan Nuclei Lysis [14]. Tahap selanjutnya yaitu penambahan RNAse untuk menghilangkan RNA pada larutan DNA. RNAse merupakan enzim pendegradasi RNA dan protein presipitation digunakan untuk mengendapkan protein [11]. Supernatan yang mengandung DNA dipisahkan dan ditambahkan larutan isopropanol sebagai agen presipitasi lanjutan Pellet DNA kemudian dicuci dengan etanol 70% untuk menghilangkan pengotor [14]. Supernatan dipisahkan dan pellet DNA dikeringkan kemudian ditambahkan DNA rehidrase sebagai pelarut dan mencegah degradasi DNA, selanjutnya dilakukan analisis kuliatas dan kuantitas DNA [10]. Hasil Isolasi DNA dapat dilihat pada gambar 1.

DNA yang telah diisolasi kemudian dihitung kemurnian dan konsentrasinya menggunakan alat Nanodrop (Thermo Scientific) yang memiliki prisip seperti spektrofotometer. Kemurnian DNA dapat dihitung

melalui perbandingan A260 nm dengan A280 nm. Hasil isolasi DNA dikatakan murni apabila rasio perbandingan A260 nm dan A280 nm adalah 1,8- 2,0 [11]. DNA dapat menyerap cahaya ultraviolet karena keberadaan basa-basa purin dan pirimidin. Pita ganda DNA dapat menyerap cahaya UV pada 260 nm dan kontaminan protein akan menyerap cahaya pada 280 [15].

Berdasarkan hasil pengukuran diperoleh kemurnian DNA 1,66 yang menunjukan adanya sedikit kandungan protein, sehingga masih dapat digunakan untuk proses amplifikasi [11]. Berdasarkan hasil pengukuran konsentrasi DNA yang didapat yaitu 4,5 ng/µl.

Primer yang digunakan pada penelitian ini berdasarkan literatur jurnal dengan gen target InvA yaitu InvA-F: 5’ TCGTCATTCCATTACCTACC 3’ dan InvA-R: 5’ AAACGTTGAAAAACTGAGGA 3’ yang menghasilkan panjang produk 119 bp [16]. Tahap selajutnya dilakukan karakterisasi primer untuk melihat kualitas primer dengan pengujian bioinformatika menggunakan software BLAST [12]. Hasil analisis BLAST (Gambar 2) menunjukan bahwa urutan primer yang digunakan spesifik hanya terdapat pada Salmonella. Tahap selanjutnya dilakukan dilakukan uji primer untuk melihat kualitas primer dan panjang produk PCR yang dihasilkan. Berdasarkan hasil dari BLAST Primer NCBI (Gambar 3) panjang produk yang dihasilkan dari amplifikasi PCR yaitu 119 bp dengan GC % dari primer forward 45% dan reverse 35 %.

Gambar 1. Hasil isolasi DNA salmonella ATCC



Hasil pengujian pada NCBI, primer dari literatur dapat menempel pada gen InvA, untuk primer forward pada panjang 167 bp dan primer reverse 285 bp dengan menghasilkan produk 119 bp yang ditunjukan pada Gambar 3. Urutan nukleotida primer forward dan reverse terdapat pada gen InvA sehingga dapat menempel pada gen tersebut (Gambar 4).

Keberhasilan amplifikasi fragmen DNA dipengaruhi oleh beberapa faktor yaitu DNA template, primer, MgCl2, enzim polimerase, suhu, waktu dan jumlah siklus. Optimasi PCR perlu dilakukan terlebih dahulu untuk mendapatkan kondisi PCR yang tepat sehingga dihasilkan produk PCR yang spesifik [17]. Konsentrasi template DNA yang terlalu kecil sering menghasilkan pita DNA amplifikasi yang tipis dan tidak jelas. Sejalan dengan hal tersebut volume template DNA sangat berkaitan dengan konsentrasi primer dan volume total reaksi sehingga perlu dicari optimalisasi rasio antara volume template DNA dengan primer [17]. Berdasarkan hasil elektroforegram (Gambar 5), terlihat jelas perbedaan ketebalan pita DNA yang dihasilkan dari volume template DNA 0,5 µL dan 1 µL. Pita DNA pada volume 0,5 µL lebih tipis dibandingkan dengan pita pada volume 1 µl menunjukan konsentrasi template pada volume 0,5 µl terlalu kecil sehinggga menghasilkan pita yang tidak jelas.

Enzim polimerase berfungsi sebagai katalisis untuk reaksi polimerisasi DNA pada proses PCR enzim ini

diperlukan untuk tahap ekstensi DNA. Kemampuan mengkatalisis reaksi polimerasi DNA pada proses PCR yang terjadi pada tahap ekstensi. Konsentrasi enzim polimerase yang tidak tepat dapat menyebabkan hasil pita DNA yang smear, maka dari itu optimasi konsentrasi enzim polimerase diperlukan agar proses amplifikasi berjalan dengan baik [18]. Hasil elektroforegram (Gambar 6) dari optimasi konsentrasi Taq Polimerase pada konsentrasi 2 U dan 1,5 U terjadi smear pada pita DNA yang menunjukan terjadinya kelebihan konsentrasi enzim polimerase. Konsentrasi Taq polimerase yang berlebihan dapat mengakibatkan amplifikasi DNA non target yang menghasilkan produk yang tidak spesifik dan jika konsentrasi Taq polimerase rendah menyebabkan proses amplifikasi berjalan tidak baik atau tidak terjadi amplifikasi DNA [20]. Berdasarkan hasil elektroforegram (Gambar 6) konsentrasi optimal untuk Taq polimerase yaitu 1 U yang menunjukan hasil pita yang tebal dan terlihat jelas, sedangkan untuk konsentrasi 0,5 U pita yang dihasilkan kurang jelas dan tipis karena konsentrasi Taq polimerase yang rendah. Hasil pada konsentrasi 0 U tidak ada pita yang muncul menunjukan proses optimasi konsentrasi Taq polimerase tidak terjadi kontaminasi.

Konsentrasi ion Mg2+ berpengaruh besar terhadap spesifisitas dan jumlah produk (yield) PCR. Umumnya jika ion Mg2+ kurang akan menurunkan yield, sedangkan jika ion Mg2+ berlebih akan menghasilkan produk non

Gambar 2. Primer BLAST



spesifik. Magnesium mempengaruhi penempelan primer serta aktifitas enzim [21]. Kondisi optimal PCR untuk fragmen DNA yaitu pada konsentrasi ion MgCl2 1,5 µM. Hasil elektroforegram pada konsentrasi MgCl2 1,5 uM menunjukan pita cukup tebal dan jelas dari pada kosentrasi 0,5 µM dan 1 µM (Gambar 7). Konsentrasi MgCl2 1,5 µM sudah menunjukan pita yang cukup tebal sehingga diambil konsentrasi terendah yang menghasilkan hasil pita yang jelas, sedangkan pada konsentrasi 3 µM amplifikasi menunjukan hasil yang negatif. Konsentrasi ion Mg2+ yang terlalu besar menyebabkan magnesium bebas berlebih mengurangi aktivitas enzim dan banyaknya dNTPs disekitar Taq polymerase menyebabkan terjadi kesalahan dalam sintesis DNA baru dan proses amplifikasi tidak terjadi. Pada penelitian ini konsentrasi MgCl2 yang rendah menyebabkan intensitas pita yang rendah pada produk PCR. Hal ini disebabkan rendahnya aktifitas Taq polimerase. Konsentrasi MgCl2 yang tinggi juga mempengaruhi jumlah pita yang dihasilkan dan mengakibatkan penurunan intensitas [22].

dNTPs merupakan suatu campuran yang terdiri atas dATP (deoksiadenosintrifosfat), dTTP (deoksitimidin trifosfat), dCTP Konsentrasi optimal dNTPs untuk proses PCR harus ditentukan [18]. dNTPs merupakan

komponen yang sangat berhubungan dengan ion Mg2+. Hasil elektroforesis menunjukan amplifikasi negatif pada konsentrasi 250 µM dan 300 µM (Gambar 8). Konsentrasi dNTPs yang besar menyebabkan magnesium yang tersedia terikat dengan dNTPs sehingga tidak adanya magnesium bebas menyebabkan enzim polimerase tidak aktif dan tidak terjadinya amplifikasi DNA. Ada interaksi antara Mg2+ dan dNTPs menyebabkan perubahan konsentrasi dNTPs dan mempengaruhi konsentrasi Mg2+ dalam reaksi. Bila digunakan konsentrasi dNTPs yang tinggi, konsentrasi Mg2+ sebaiknya juga dinaikkan. Bila konsentrasi dNTPs berlebih, dNTPs akan berikatan Mg2+ sehingga mengurangi konsentrasi Mg2+. Ion Mg2+ berperan dalam membentuk kompleks dengan dNTPs sehingga dNTPs menjadi semakin larut, meningkatkan aktivitas enzim polimerase. Berdasarkan hasil elektroforegram (Gambar 8) menunjukan konsentrasi dNTPs yang optimal pada konsentrasi 150 µM.

Hasil penelitian menunjukan konsentrasi komponen PCR yang optimal ditunjukan pada Tabel 1 dengan kondisi amplifikasi berdasarkan literatur jurnal penelitian yaitu suhu denaturasi 95 oC, annealing 50 oC dan extension 72 oC dengan jumlah siklus 35 siklus [16].

Gambar 3. Hasil primer BLAST



Gambar 4a. Hasil penempelan primer inva gene Urutan gen InvA

Gambar 4b. Hasil penempelan primer inva gene Penempelan primer forward pada Panjang 167 bp



Gambar 4c. Hasil penempelan primer inva gene Penempelan primer reverse pada Panjang 285 bp

Gambar 5. Hasil Optimasi Konsentrasi Template DNA

Keterangan : (1) Pita hasil elekrtroforegram pada volume DNA 0,5 µl. (2) Pita hasil elekrtroforegram pada volume DNA 1 µl



Gambar 6. Hasil optimasi konsentrasi taq polimerase

Keterangan : (1) Pita hasil elekrtroforegram pada konsentrasi 2 U (2) Pita hasil elekrtroforegram pada konsentrasi 0 U (3) Pita hasil elekrtroforegram pada konsentrasi 1,5 U (4) Pita hasil elekrtroforegram pada konsentrasi 1 U (5) Pita hasil elekrtroforegram pada konsentrasi 0 U (6) Pita hasil elekrtroforegram pada konsentrasi 0,5 U



Gambar 7. Hasil optimasi konsentrasi MgCl2

Gambar 8. Hasil optimasi DNTPs

Keterangan : (1) Pita hasil elekrtroforegram pada konsentrasi 0 µM (2) Pita hasil elekrtroforegram pada konsentrasi 0,5 µM (3) Pita hasil elekrtroforegram pada konsentrasi 1 µM (4) Pita hasil elekrtroforegram pada konsentrasi 1,5 µM (5) Pita hasil elekrtroforegram pada konsentrasi 2 µM (6) Pita hasil elekrtroforegram pada konsentrasi 2,5 µM (7) Pita hasil elekrtroforegram pada konsentrasi 3 µM

Keterangan : (1) Pita hasil elekrtroforegram pada konsentrasi 50 µM (2) Pita hasil elekrtroforegram pada konsentrasi 100 µM (3) Pita hasil elekrtroforegram pada konsentrasi 150 µM U (4) Pita hasil elekrtroforegram pada konsentrasi 200 µM (5) Pita hasil elekrtroforegram pada konsentrasi 250 µM (6) Pita hasil elekrtroforegram pada konsentrasi 300 µM (7) Pita hasil elekrtroforegram pada konsentrasi 0 µM



Copyright © 2018 The author(s). You are free to share (copy and redistribute the material in any medium or format) and adapt (remix, transform, and build upon the material for any purpose, even commercially) under the following terms: Attribution — You must give appropriate credit, provide a link to the license, and indicate if changes were made. You may do so in any reasonable manner, but not in any way that suggests the licensor endorses you or your use; ShareAlike — If you remix, transform, or build upon the material, you must distribute your contributions under the same license as the original (https://creativecommons.org/licenses/by-sa/4.0/)

Tabel 1. Tabel Konsentrasi Optimal Komponen PCR

No KomponenKonsentrasi

AwalKonsentrasi

PCRVolume

1 Taq Polimerase 5 U 1 U 0,2 µl

2 Buffer 5 X 1 X 10 µl

3 MgCl2 25 µM 1,5 µM 3 µl

4 dNTPs 10 mM 150 µM 0,75 µl

5 Primer Forward 100 µM 100 nM 5 µl

6 Primer Reverse 100 µM 100 nM 5 µl

7 DNA Template 4,5 ng/µl 4,5 ng/ µl 1 µl

8 NFW ad 50 µl

KesimpulanKesimpulan dari penelitian ini, Metode PCR gel base

dapat mendeteksi gen InvA dengan primer yang spesifik dan komponen PCR yang telah dioptimasi dengan waktu analisis yang cepat.

Ucapan TerimakasihTerimakasih kepada P3M Sekolah Tinggi Farmasi

Bandung telah mendanai penelitian ini melalui hibah Riset Internal STFB tahun 2018.

Referensi[1] Jawetz, E., Melnick, J. L., Adelberg, E. A. Mikrobiologi Kedokteran,

Jakarta: EGC; 2005.[2] Pham, O. H., & McSorley, S. J. Protective host immune responses to

Salmonella infection. Future microbiology. 2015;10(1),101-110.[3] Jay, J. M., Loessner, M. J., Golden, D. A. Modern food microbiology.

Food Science Text Series. New York: Springer; 2005.[4] Dzen, S. M., Roekistiningsih, S. S., Winarsih, S., Sumarno, I. S.,

Noorhamdani, A. S. Bakteriologi Medik. Malang: Bayumedia; 2003.[5] Prasetyo, R. V., Ismoedijanto, V. Metode Diagnostik Demam Tifoid

pada Anak. Bagian Ilmu Kesehatan Anak FK Unair; 2009.[6] Olsen, S. J., Pruckler, J., Bibb, W., Thanh, N. T. M., Trinh, T. M., Minh,

N. T., Chau, N. V. Evaluation of rapid diagnostic tests for typhoid fever. Journal of clinical microbiology. 2004;42(5):1885-1889.

[7] Zeitoun, H., Kassem, M., Raafat, D., AbouShlieb, H., Fanaki, N. Microbiological testing of pharmaceuticals and cosmetics in Egypt. BMC microbiology. 2015;15(1):275.

[8] He, X., Xu, X., Li, K., Liu, B., Yue, T. Identification of Salmonella enterica Typhimurium and variants using a novel multiplex PCR assay. Food control. 2016;65:152-159.

[9] Horton, R. A., Card, R., Randall, L. P., & Teale, C. J. Differentiation of UK endemic strains of Salmonella enterica serovar Newport from epidemic North American strains by PCR detection of a truncated bapA chromosomal gene. Research in veterinary science. 2016;104:113-116.

[10] Corporation, P. Wizard ® Genomic DNA Purification Kit Wizard ® Genomic DNA. Solutions. 2009; 1123–1126.

[11] Sambrook, J., David W. Russell. Molecular Clonning : A Laboratory Manual. 3th ed. Sold Spring Harbor Laboratori Press Book 1&2; 2001.

[12] Ye, J., Coulouris, G., Zaretskaya, I., Cutcutache, I., Rozen, S., Madden, T. L. Primer-BLAST: a tool to design target-specific primers for polymerase chain reaction. BMC bioinformatics. 2012;13(1): 134.

[13] Yuwono. Teori dan Aplikasi Polymerase Chain Reaction, Panduan Eksperimen PCR untuk Memecahkan Masalah Biologi Terkini, Yogyakarta: Andi; 2006.

[14] Hoarau G, Coyer JA, Stam WT, Olsen JL. A fast and inexpensive DNA extraction/purification protocol for brown macroalgae. Molecular Ecology Notes. 2007;7:191–193.

[15] Cheng YJ, Guo WW, Yi HL, Pang XM., Deng X. An efficient protocol for genomic DNA extraction from citrus species. Plant Molecular Biology Reporter. 2003;21:177a-177g.

[16] Alves, J., Hirooka, E.Y., Oliveira, T.C.R.M. de. Development of a multiplex real-time PCR assay with an internal amplification control for the detection of Campylobacter spp. and Salmonella spp. in chicken meat.LWT Food Sci. Technol. 2016;72: 175 –181.

[17] Grunenwald, H. Optimization of Polymerase Chain Reactions. Dalam Bartlett dan Stirling (Eds). Method in Molecular Biology: PCR Protocols Second Edition. Humana Press; 2007.

[18] Jalali, M., Zaborowska, J., Jalali, M. The Polymerase Chain Reaction: PCR, qPCR, and RT-PCR. In Basic Science Methods for Clinical Researchers. 2016:1-18.

[20] Haley, S. D., Miklas, P. N., Afanador,L., Kelly, J. D. Random Amplified Polymorphic DNA (RAPD) MarkerVariability Between and Within Gene Pools of Common Bean. J. Amer. Soc. Hort. Sci. 2004;199 (1):122-125.

[21] Padmalatha, K., M.N.V. Prasad. Optimization of DNA Isolation and PCR Protocol for RAPD Analysis of Selected Medicinal and Aromatic

Deteksi Cepat Gen InvA pada Salmonella spp. Dengan Metode …

Documents

Transcript of Deteksi Cepat Gen InvA pada Salmonella spp. Dengan Metode …