analisa btm

16
1. PEWARNA Identifikasi Jenis Pewarna Kromatografi secara luas digunakan untuk pemisahan pewarna makanan sintetik. Kromatografi kertas telah digunakan pada tahun 1950. Pada tahun 1970an, penggunaan KLT lebih disukai oleh banyak laboratorium. Teknik ini masih digunakan oleh banyak laboratorium karena peralatan yang digunakan sederhana. Namun telah dikembangkan metode baru yang memberikan keuntungan yang lebih besar, seperti HPLC dan elektroforesis kapiler (Wirasto, 2008). 1. Kromatografi kertas Untuk mengetahui jenis zat pewarna umumnya digunakan metode Kromatografi Kertas. Prinsip kerjanya adalah kromatografi kertas dengan larutan pengembang (eluen). Setelah zat pewarna diteteskan diujung kertas rembesan (elusi), air dari bawah akan mampu menyeret zat-zat pewarna yang larut dalam air (zat pewarna makanan) lebih jauh dibandingkan dengan zat pewarna tekstil.Setelah zat pewarna yang diidentifikasi telah diketahui, maka dapat disimpulkan jenis zat warna yang digunakan pada makanan tersebut (http://digilib.unimus.ac.id ). Kromatografi kertas sesuai untuk pemisahan pewarna, tetapi metode ini memakan banyak waktu. Selain itu, metode ini memberikan resolusi yang jelek dan kadang-kadang bercak yang terbentuk tidak terdeteksi dengan baik, menunjukkan terbentuknya ekor yang dapat mempengaruhi harga Rf (Wirasto, 2008). Berikut ini contoh prosedur analisis zat warna yang terdapat dalam bahan makanan. a. Tahap Ekstraksi Untuk sampel cairan, ambil 25 mL sampel dimasukkan ke dalam polyamida sepanjang 2 cm sedangkan sampel padatan dilarutkan dalam 25 mL air panas. Zat pewarna yang terserap dicuci dengan 5 mL aseton sebanyak 5 kali kemudian dengan 5 mL air panas sebanyak 5 mL untuk menghilangkan pengotor seperti gula, asam dan sebagainya. Untuk melepas zat pewarnanya dielusi dengan 20 mL NaOH-metanolat. Larutan yang diperoleh diatur pHnya menjadi 5 – 6 dengan menambahkan larutan asam asetat metanolat. Larutan zat warna metanolat diuapkan dengan Buchi rotavapor menjadi volume 1 mL sebelum diteteskan pada kertas untuk pemisahan kromatografi. b. Analisa Kromatografi Sampel sebanyak 2 µL diteteskan pada kertas Whatman dengan ukuran 12 x 20 cm. Jarak penetesan 1,5 cm dari batas bawah kertas dan jarak antara penetesan berikutnya 1,5 cm. Kertas dibiarkan mengering selama 15 menit di udara terbuka dan kemudian dielusi di dalam bejana yang telah berisi eluen jenuh. Eluen yang digunakan untuk pemisahan campuran zat warna ditunjukkan pada tabel berikut ini. Kode Eluen Komposisi A B n-Butanol – Asam asetat – Air n-Butanol – Etanol – Air – NH 4 OH 20 : 10 : 50 50 : 25 : 25 : 10

description

btm

Transcript of analisa btm

1. PEWARNAIdentifikasi Jenis PewarnaKromatografi secara luas digunakan untuk pemisahan pewarna makanan sintetik. Kromatografi kertas telah digunakan pada tahun 1950. Pada tahun 1970an, penggunaan KLT lebih disukai oleh banyak laboratorium. Teknik ini masih digunakan oleh banyak laboratorium karena peralatan yang digunakan sederhana. Namun telah dikembangkan metode baru yang memberikan keuntungan yang lebih besar, sepertiHPLCdan elektroforesis kapiler (Wirasto, 2008).1. Kromatografi kertasUntuk mengetahui jenis zat pewarna umumnya digunakan metode Kromatografi Kertas. Prinsip kerjanya adalah kromatografi kertas dengan larutan pengembang (eluen). Setelah zat pewarna diteteskan diujung kertas rembesan (elusi), air dari bawah akan mampu menyeret zat-zat pewarna yang larut dalam air (zat pewarna makanan) lebih jauh dibandingkan dengan zat pewarna tekstil.Setelah zat pewarna yang diidentifikasi telah diketahui, maka dapat disimpulkan jenis zat warna yang digunakan pada makanan tersebut (http://digilib.unimus.ac.id).Kromatografi kertas sesuai untuk pemisahan pewarna, tetapi metode ini memakan banyak waktu. Selain itu, metode ini memberikan resolusi yang jelek dan kadang-kadang bercak yang terbentuk tidak terdeteksi dengan baik, menunjukkan terbentuknya ekor yang dapat mempengaruhi harga Rf (Wirasto, 2008).Berikut ini contoh prosedur analisis zat warna yang terdapat dalam bahan makanan.a. Tahap EkstraksiUntuk sampel cairan, ambil 25 mL sampel dimasukkan ke dalam polyamida sepanjang 2 cm sedangkan sampel padatan dilarutkan dalam 25 mL air panas. Zat pewarna yang terserap dicuci dengan 5 mL aseton sebanyak 5 kali kemudian dengan 5 mL air panas sebanyak 5 mL untuk menghilangkan pengotor seperti gula, asam dan sebagainya. Untuk melepas zat pewarnanya dielusi dengan 20 mL NaOH-metanolat. Larutan yang diperoleh diatur pHnya menjadi 5 6 dengan menambahkan larutan asam asetat metanolat. Larutan zat warna metanolat diuapkan dengan Buchi rotavapor menjadi volume 1 mL sebelum diteteskan pada kertas untuk pemisahan kromatografi.b. Analisa KromatografiSampel sebanyak 2 L diteteskan pada kertas Whatman dengan ukuran 12 x 20 cm. Jarak penetesan 1,5 cm dari batas bawah kertas dan jarak antara penetesan berikutnya 1,5 cm. Kertas dibiarkan mengering selama 15 menit di udara terbuka dan kemudian dielusi di dalam bejana yang telah berisi eluen jenuh. Eluen yang digunakan untuk pemisahan campuran zat warna ditunjukkan pada tabel berikut ini.KodeEluenKomposisi

ABn-Butanol Asam asetat Airn-Butanol Etanol Air NH4OH20 : 10 : 5050 : 25 : 25 : 10

Setelah 45 menit di dalam bejana, kertas diambil dan dikeringkan untuk selanjutnya di analisa secara kualitatif dan kuantitatif jika eluen dapat memisahkan zat pewarna dengan baik. Analisa kualitatif dilakukan dengan mengukur harga Rf sampel dibandingkan dengan zat pewarna standar yang dipakai. Untuk analisa kuantitatif, noda yang terjadi discan menggunakan TLC-scanner dan luas puncak yang diperoleh diubah menjadi konsentrasi dengan kalibrasi standar (Tahidetal., 1987).2. Kromatografi Lapis Tipis (KLT)Kromatografi lapis tipis ialah metode pemisahan fisikokimia. Lapisan yang memisahkan, yang terdiri dari bahan yang berbutir-butir (fase diam), ditempatkan pada penyangga berupa plat gelas, logam, atau lapisan yang cocok. Campuran yang dipisah, berupa larutan, ditotolkan berupa bercak atau pita (awal). Setelah plat atau lapisan ditaruh di dalam bejana tertutup rapat yang berisi larutan pengembang yang cocok (fase gerak), pemisahan terjadi selama perambatan kapiler (pengembangan).Kromatografi lapis tipis (KLT) telah banyak digunakan pada analisis pewarna sintetik. KLT merupakan metode pemisahan yang lebih mudah, lebih cepat, dan memberikan resolusi yang lebih baik dibandingkan kromatografi kertas. KLT tidak sebaikHPLCuntuk pemisahan dan identifikasi, tetapi metode ini relatif sederhana dan dapat digunakan untuk memisahkan campuran yang kompleks. Meskipun demikian KLT tidak mahal dan dapat digunakan secara mudah di industri makanan .------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------------Alat-alat yang digunakana.Beaker glassb.Batang pengadukc.Penangas aird.Erlenmeyere.Benang wol bebas lemakf.Kertas saring whatman no.1g.Bejana kromatografih.Pipet ukur 5ml, 50mli.Pipet kapiler3.3 Reagena.Eterb.NH4OH 1%c.NH4OH 10%d.Asam Asetat 6%e.Eluen (chlorofom : methanol : air) 15:5:3f.Standar Rhodamin B3.4 Cara kerjaa.Persiapkan benang wool, dibebaskan dari lemak dengan cara dicuci dengan eter kemudian dikeringkan.b.Persiapkan kertas kromatografi :ditandai dengan garis pensil 1cm dari tepi kertas sebagai garis akhir, dengan demikian jarak antara garis awal dan akhir adalah 7cm, ini adalah jarak tempuh eluen.c.Sampel, dipipet 50ml sampel (minuman ringan) kemudian ditambahkan asam asetat 6% hingga bereaksi sedikit asam.d.Sampel yang sudah siap (sudah ditambahkan dengan sedikit asam asetat dan benang wool) dipanaskan, kemudian warna melekat pada wool. Setelah wool dicuci, dilarutkan dengan NH4OH 10% kemudian dipekatkan lalu ditotolkan pula zat warna standar/pembanding.e.Setelah totolan kering, kemudian dimasukan dalam bejana kromatografi yang lebih dahulu diisi (dijenuhkan) dengan eluen.f.Ditunggu sampai larutan naik sampai garis atas.g.Kemudian kertas dikeluarkan dan dibiarkan kering dan diamati bercak/noda yang terjadi, kemudian dibandingkan dengan bercak zat warna standar serta dihitung nilai Rf

2. Analisis Pengawet dan Pemanis Pada MakananBAHAN PENGAWET DAN BAHAN PEMANIS SINTETIKA. PENDAHULUANBahan pengawet organik yang banyak digunakan yaitu asambenzoat, ester asam p-hidroksi benzoate, asam salisilat dan lain sebagainya. Sedangkan bahan pemanis sintetik yang banyak digunakan yaitu sakarin, dulsin dan siklamat.Berikut adalah cara penetapan senywa senyawa tersebut di atas dan pada umumnya hanya dilakukan analisa kualitatif saja.Pereaksi1. NaOH 10 % 9. Anisaldehid2. HCl (1+3) 10. Petroleum eter3. Eter 11. H2SO4 (1+3)4. BaCl2 12. KMnO4 5 %5. NaNO2 13. NaOH padat6. NH3 14. KNO2 10 %7. FeCl3 0.5 % 15. CuSO4 1 %8. HNO3

Peralatan1. Labu pemisah2. Pinggan porselen3. Pipet Mohr dan Volumetrik; 10 dan 25 ml4. Penangas air5. Buret 50 ml6. Gelas ukur 10 dan 100 ml7. Waring blenderPersiapan Sampela. Padatan atau semi padatan1. Hancurkan 50 100 g bahan dengan 300 400 ml air dalam waring blender.2. Tambahkan NaOH 10 % sampai larutan menjadi alkalis (basa)3. Biarkan selama 2 jam, kemudian di saringb. Cairan1. Ambil 50 100 ml sample, tambahkan NaOH 10 % sampai alkalis2. Saring dengan kapas. Jika sample berkadar gula tinggi, encerkansampai total padatan terlarut 10 15 %

PengujianSiklamat (sikloheksilsulfamat)1. Tambahkan 2 g BaCl ke dalam 100 ml filtrate dari persiapan sample. Biarkan 2 menitkemudian di saring.2. Asam filtrate dengan 10 ml HCl dan tambahkan 0.2 g NaNO2. Terbentuknya endapan putih BaSO4 menunjukkan adanya sikloheksilsulfamat.

Benzoat, salisilat, sakarin, dulsin dan lainnya1. Pipet 100 ml atau lebih filtrate dari persiapan sample, masukkan kedalam labu pemisah.2. Tambahkan HCl (1+3) sampai asam (gunakan kertas litmus sebagai indikator). Tambahkanlagi 5 10 ml HCl (1+3).3. Ekstrak dengan 75 100 ml eter. Jika perlu ekstrak kembali lapisan air dengan eter lagi.4. Cuci ekstrak eter sebanyak 3 kali, masing masing dengan 5 ml air. Masukkan ekstrak eter ke dalam pinggan porselin.5. Uapkan eter dalam penangas air. Residu yang dihasilkan mengandung asam benzoat atau eternya, asam salisilat, sakarin, dulsin dan atau bahan terekstrak lainnya.6. Larutkan residu yang diperoleh dalam air. Jika perlu panaskan sampai 80 85 OC selama 10 menit.7. Larutan yang diperoleh di bagi 3 untuk pengujian selanjutnya (larutan A, B dan C).a. Pengujian asam benzoat1. Kedalam larutan A ditambahkan beberapa tetes NH3 sampai larutan menjadi basa.2. Hilangkan kelebihan NH3 dengan penguapan3. Larutkan kembali residu dengan air panas, saring bila diperlukan4. Tambahkan beberapa tetes FeCl3 netral 0.5 %. Terbentuknya endapan Ferribenzoat yangberwarna salmon menunjukkan adanya asam benzoat.

b. Pengujian asam salisilatKedalam larutan B ditambahkan 1 tetes FeCl3 netral 0.5 %. Jika ada asam salisilat, maka larutan akan berwarna ungu.c. Pengujian asam p-hidroksi benzoat dan esternya, sakarin dan atau dulsin1. Tambahkan basa (NH3 atau NaOH) kedalam larutan C sampai menjadi alkali.2. Ekstrak larutan dengan menggunakan eter dalam labu pemisah. Dari hasil ekstraksi ini akan diperoleh dua lapisan yaitu lapisan eter (D) dan lapisan air (E)

Pengujian Sakarin dan Asam p-Hidroksibenzoat1. Lapisan air yang diperoleh (E) diasamkan, kemudian diekstrak dengan petroleum eter. Akan terbentuk dua lapisan. Lapisan air digunakan untuk pengujian sakarin dan asam p-Hidroksibenzoat.2. Ekstrak lapisan air yang diperoleh dengan eter, uapkan eter dari ekstrak eter yang diperoleh.3. Residu yang tinggal dirasakan masis atau tidak dengan indra pencipta, jika manis menunjukkan adanya sakarin (bila kadar sakarin yang ada 20 mg/kg contoh biasanya dapat di uji dengan cara ini).4. Larutkan residu dalam 15 ml air. Larutan dibagi dua (larutan F 10 ml, dan larutan G 5 ml).5. Untuk menguji adanya sakarin :a. Kedalam 10 ml larutan F ditambahkan 2 ml H2SO4 encer (1+3). Panaskan sampai mendidih.b. Tambahkan sedikit berlebih larutan KMnO4 % sampai terbentuk warna merah jambu yang persisten, dinginkan.c. Tambahkan kurang lebih 1 g NaOH. Saring, masukkan filtrat ke dalam pinggan porselin. Uapkan sampai kering.d. Panaskan pada 210 215 OC dalam tanur selama 20 menit. Larutkan residu dalam air.e. Pindahkan larutan ke dalam labu pemisah, asamkan dan ekstrak dengan eter. Uapkan eter.f. Larutkan residu dalam air. Tambahkan 1 tetes FeCl3 netral 0.5 %. Terbentuknya warna violet menandakan adanya asam salisilat yang dibentuk dari sakarin6. Untuk menguji adanya asam p-Hidroksibenzoat :a. Netralkan 5 ml larutan G dengan NH4.b. Uji dengan pereaksi million. Terbentuknya warna merah mawar menunjukkan adanya asam p-Hidroksibenzoat.

B. NATRIUM BENZOAT : ANALISA KUANTITATIFPrinsipDalam sample yang sudah dijenuhi oleh larutan NaCl, asam benzoate yang ada dalam sample diubah menjadi Natrium Benzoat yang larut air dengan penambahan NaOH.Jika larutan Natrium Benzoat si asamkan dengan HCl berlebih, akan terbentuk asam benzoate yang larut dalam air yang dapat diekstrak dengan kloroform. Kloroform dapat di hilangkan dengan penguapan, residu yang mengandung asam benzoate dilarutkan dalam alcohol dan dititrasi dengan NaOH standart.Pereaksi1. NaCl2. NaOH 10 %3. HCl (1+3)4. Khloroform5. NaOH 0.05 NPeralatan1. Labu takar 500 ml dan 250 ml2. Labu pemisah 500 ml3. BuretCara kerjaPersiapan sampelProsedur Umum1. Homogenkan sampel, jika padatan atau semi padatan harus digiling terlebih dahulu. Pindahkan 100 g sampel ke dalam labu takar 500 ml.2. Tambahkan NaCl powder dalam jumlah yang cukup untuk menjenuhkan air yang ada dalam sampel, kemudian buat alkali dengan penambahan larutan NaOH 10 % (periksa dengan kertas litmus).3. Encerkan sampai tanda tera dengan larutan NaCl jenuh. Kocok merata.4. Biarkan sedikitnya 2 jam dengan pengocokan berkali kali secara berkala. Lebih disukai bila dibiarkan semalaman. Saring dengan kertas Whatman No. 4.5. Jika sampel mengandung banyak lemak yang dapat mengkontaminasi filtrate, tambahkan beberapa ml larutan NaOH ke dalam filtrate, kemudian ekstrak dengan eter sebelum penetapan selanjutnya.6. Jika sampel mengandung alcohol, perlakuan seperti mempersiapkan sampel cider.Sampel Saus Tomat1. Ke dalam 100 g sampel ditambahkan 15 g NaCl dan pindahkan campuran ke dalam labu takar 500 ml, cuci wadah semula dengan lebih kurang 150 ml larutan NaCl januh.2. Tambahkan NaOH 10 % sampai alkali, kemudian tepatkan sampai tanda tera dengan larutan NaCl jenuh. Biarkan selama sedikitnya 2 jam, kocok setiap selang waktu tertentu, sentrifusa jika perlu, kemudian saring.Cider yang Mengandung Alkohol dan Produk Sejenisnya1. Ke dalam 250 ml sampel tambvahkan NaOH 10 % sampai alkalis, uapkan pada penangas uap sampai volume larutan menjadi 100 ml.2. Pindahkan sampel ke dalam labu takar 250 ml, tambahkan 30 g NaCl, kocok sampai larut.3. Tepatkan sampai tanda tera dengan larutan NaCl jenuh. Biarkan sedikitnya selama 2 jam, kocok secara teratur dan kemudian di saring.Jellies, Jam, Preserves, dan Marmalades1. Campurkan 100 150 g sampel dengan 300 ml larutan NaCl jenuh. Tambahkan 15 g NaCl dan buat larutan menjadi alkali dengan NaOH 10 %.2. Pindahkan ke dalam labu takar 500 ml dan encerkan sampai tanda tera dengan larutan NaCl jenuh.3. Biarkan sedikitnya selama 2 jam, kocok teratur, sentrifusa bila perlu dan kemudian disaring.Penetapan Sampel1. Pipet 100 ml atau secukupnya (bisa lebih asal tepat) filtrate sampel, masukkan ke dalam labu pemisah. Netralkan dengan penambahan HCl encer (1+3) dan tambahkan lagi 5 ml HCl (sesudah netral)2. Ekstrak dengan menggunakan kloroform beberapa kali dengan volume kloroform berturut turut 70, 50, 40 dan 30 ml. untuk mencegah pembentukan emulsi, goyang goyang secara kontinu setiap kali ekstraksi dengan gerakan rotasi. Lapisan kloroform biasanya memisah dengan mudah sesudah di biarkan beberapa menit.3. Jika terbentuk emulsi, hilangkan dengan mengocok lapisan kloroform menggunakan gelas pengaduk atau dengan memindahkan dan memisahkan emulsi dengan menggunakan labu pemisah lain atau dengan sentrifusa beberapa menit.4. Setiap kali ekstraksi selesai, ambil bagian jernih kloroform sebanyak mungkin, usahakan jangan tercampur dengan emulsi. Jika lapisan kloroform yang diperoleh kurang jernih, maka perlu dicuci dengan aquades sampai jernih.5. Pindahkan seluruh ekstrak kloroform yang di peroleh ke dalam Erlenmeyer 250 ml yang kering, cuci labu pemisah (tempat ekstrak kloroform) dengan 5 10 kloroform.6. Destilasi dengan lambat pada suhu rendah sampai volume ekstrak seperempat dari volume semula. Kemudian uapkan sampai kering pada suhu kamar di atas penangas air sampai tinggal beberapa tetes cairan saja yang tinggal.7. Keringkan residu semalaman (atau sampai bau asam asetat hilang jika sampelnya adalah saus tomat) dalam desikator yang berisi H2SO4 pekat.8. Larutan residu asam benzoat dalam 50 ml alkohol netral (cek dengan fenolftalen), tambahkan 12 15 ml air dan 1 atau 2 tetes indicator fenolftalen dan titrasi dengan NaOH 0.05 N.Perhitungan(1 ml NaOH 0.05 N = 0.0072 g sodium benzoate anhidrat)Volume larutanTiter x N NaOH x 144 x yang dibuat pada x 106ppm sodium persiapan sampelbenzoat an =hidrat Volume yang diambil x berat sampel x 1000untuk penetapan

C. ZAT WARNA SINTETISPrinsipSerat wool digunakan untuk analisis zat warna, karena sifatnya yang dapat mengabsorpsi zat warna baik yang asam maupun yang basa. Serat wool dan sutra mengandung protein amfoter yang mempunyai afinitas terhadap asam maupun basa dengan membentuk garam. Dengan mengamati perubahan warna dari benang wool yang telah dicelupkan dalam berbagai pereaksi, jenis zat warna dapat di tentukan.Pereksi1. HCl encer (1 + 9)2. NaOH 10 %3. HCl pekat4. H2SO4 pekat5. NH4OH 12 %Peralatan1. Gelas piala2. Lempeng tetes3. Pipet tetesCara Kerja1. 30 50 ml sampel cairan diasamkan dengan larutan HCl encer. Jika padatan, campur 25 g sampel dengan air dan kemudian homogenkan baru diambil 30 50 ml seperti di atas.2. Masukkan benang wool ( 20 cm) ke dalam larutan, didihkan selama 30 menit.3. Benang wool di angkat, cuci dengan air dingin.4. Keringkan, di potong menjadi empat bagian.5. Tempatkan keempat potongan benang wool di atas lempeng tetes (atau masing masing potongan dalam satu gelas piala kecil), kemudian masing masing potongan ditetesi dengan NaOH 10 %, HCl pekat, NH4OH 12 % dan H2SO4 pekat.6. Amati perubahan warna yang terjadi, bandingkan dengan standart daftar warna.(Penuntun PratikAnalisis Pangan 1988)PENETAPAN ZAT TAMBAHAN DALAM MAKANAN

Bahan kimia yang sering di tambahkan , seperti asam benzoat, natrium benzoate, gas belerang dioksida atau kalium metabisulfit sebagai sumber SO2, salisilat, asam borat, formaldehida, garam dapur (NaCl) dan gula.1. Penetapan Zat Pengaweta. Penetapan belerang dioksidaAcara 1 :Penetapan belerang dioksida (SO2)Tujuan :Menghitung jumlah belerang dioksida dengan metoda penyulingan SO2 total.Alat alat :- Alat penyuling- Gelas piala- Buret- Erlenmeyer- Pembakar gas Bunsen- Pipet ukur- Penyambung alat penyuling- Pipet tetesBahan bahan :- Sari buah, anggur, minuman- HCl pekat (35 37 %)- Standart iod 0.05 N- Larutan amilum/pati 0.5 %Urutan Kerja :1. Masukkan 25 50 ml sampel yang akan dianalisa ke dalam tabung destilasi, tambah dengan 20 ml HCl.2. Pasanglah alat destilasi dan gelas penampung hasil destilasi yang berisi dengan air sebanyak 50 ml dan di tambah indicator kanji 3 4 tetes.3. Pasanglah buret yang berisi larutan iod 0.05 N di atas gelas penampung.4. Tambahkan larutan iod ke dalam gelas piala setetes demi setetes sampai warna tetap biru. Ujung pendingin harus tetap tercelup pada air dalam gelas penerima.5. Panaskan labu suling dan lakukan penyulingan.6. Apabila warna biru berubah saat penyulingan, tambahkan larutan iod dari buret sampai biru kembali.7. Kalau warna biru tidak berubah selama satu menit, maka penyulingan diakhiri ( dianggap selesai).8. Catat jumlah larutan iod yang diperlukan untuk meningkatkan gas SO2 yang di bebaskan.

b. Penetapan natrium benzoateAcara 1 :Penetapan Na-Benzoat secara kuantitatifTujuan :Menghitung kadar zat pengawet Na-Benzoat yang terdapat dalam suatu bahan.Alat alat :- Neraca analitik- Mortar- Labu ukur- Pipet ukur- Corong dan kertas saring Whatman no. 4- Gelas ukur- Kertas pH- Erlenmeyer- Corong pemisah- Gelas piala- Buret- Pipet tetesBahan bahan :- Contoh yang akan dianalisa (makanan dalam kaleng)- Kloroform- NaOH 10 %- NaCl 30 %- Air suling- HCl (1 : 3)- Alkohol (4 : 1)- Naoh 0.5 N- Indikator penolptalenUrutan Kerja :1. Masukkan 100 g contoh dalam bentuk cairan atau contoh padatan yang telah di haluskan dan kemudian di encerkan sampai 300 ml.2. Tambahkan 10 ml NaOH 10% dan 10 ml NaCl 30%, kemudian tambah dengan air sampai volume 400 ml dan saring. Kemudian dikocok selama 2 jam dan biarkan.3. Tambahkan air suling ke dalam labu takar sampai volumenya 500 ml kemudian saring dengan menggunakan kertas Whatman no. 44. Pipet 100 ml filtrate (hasil saringan) dalam botol pengocok, lalu netralkan dengan HCl (1 : 3) dan di test dengan kertas pH.5. Tambahkan 50 ml kloroform dan kocok perlahan lahan untuk menghindari terbentuknya emulsi.6. Pindahkan ke dalam botol pemisah dan pisahkan larutannya. Kemudian ambil 25 ml cairan melalui kran (bagian bawah) dan masukkan ke dalam gelas piala. Diamkan beberapa waktu sampai kloroform menguap habis.7. Larutkan residu dengan 50 ml alcohol (4 : 1), kemudian tambahkan air suling dan titrasi dengan larutan NaOH 0.05 N sampai pH tepat 0.1 atau warna merah jambu dengan menggunakan indicator pheenolpthale.Perhitungan1 ml NaOH 0.05 N = 0.0072 g natrium benzoate anhidrat.

c. Penentuan asam salisilatAcara :Penentuan asam salisilat secara kualitatif.Tujuan :Melakukan pengujian/analisa kualitatif asam salisilat yang terdapat dalam bahan makanan.Alat alat- Erlenmeyer- Gelas piala- Pipet ukur- Sendok porselin- Penangas air- Pemanas/lampu spiritus- Cawan penguapanBahan bahan :- Bahan yang akan dianalisa (minuman ringan)- Air suling- Asam sulfat 4 N- Larutan Ferriklorida- Air brom- Asam asetat- SpiritusUrutan kerja :1. Larutkan 1 bagian contoh dalam 4 bagian air suling, aduk dan bila perlu disaring2. Ambil kira kira 50 100 ml larutan, kemudian diasamkan dengan asam sulfat encer (4 N)3. Kemudian kocoklah 2 kali dengan 20 ml petroleum eter4. Larutan yang telah tercampur baik tersebut, diuapkan eternya pada penangas air sampai potreleum eternya kering5. Residu di larutkan dalam air dan setengah dari larutan yang di dapat dicampur dengan beberapa tetes larutan ferriklorida6. Sisanya yang lain dicampurkan dengan air brom7. Apabila terdapat asam salisilat dalam bahan (contoh) maka dengan ferriklorida akan menjadi berwarna violet yang tidak hilang pada penambahan dengan spiritus atau sedikit asam cuka/asetat8. Pada penambahan dengan air brom terjadi endapan putih

d. Penentuan asam benzoateAcara :Penentuan asam benzoate secara kualitatifTujuan :Melakukan pengujian kualitatif asam benzoate dalam suatu bahan (makanan/minuman)Alat alat :- Gelas piala- Erlenmeyer- Corong gelas- Pipet ukur- Pemanas/lampu spiritus- Oven- Penangas air- TermometerBahan bahan :- Bahan yang akan dianalisis- Air suling- Asam sulfat 4 N- Petroleum eter- Asam nitrat berasap (HNO3 65 %)- H2SO4 pekat- KNO3- Amonia mendidih- (NH4)2- (NH4)2S- Hidroksil amine-HCl- Kertas saringUrutan kerja :1. Satu bagian contoh dilarutkan dalam 4 bagian air, diaduk dan bila perlu disaring.2. Ambil kira kira 50 100 ml larutan (filtrate) yang kemudian diasamkan dengan asam sulfat 4 N, dua kali dikocok berturut turut dengan 20 ml dan 10 ml potreleum eter.3. Larutan yang mengandung potreleum eter tersebut dipanaskan pada penangas air sampai habis menguap.4. Residu yang tertinggal ditetesi dengan 10 tetes H2SO4 pekat atau dengan 1 tetes asam nitrat berasap (HNO3 65 %) juga dapat digunakan 50 ml KNO3.5. Kemudian panaskan dengan oven sampai suhu 180 OC selama 3 menit.6. Setelah dingin cairan dibuat alkalis dengan menambah ammonia dan kemudian di didihkan.7. Setelah dingin diberi (NH4)2S atau 40 mg hidroksil amine-HCl.8. Timbulnya warna merah coklat menunjukkan adanya asam benzoate.

e. Penetapan asam borat dan boraksAcara :Penetapan asam borat dan asam boraksTujuan :Melakukan pengujian/analisa secara kuantitatif adanya zat pengawet boraks atau asam borat.Alat alat :- Pipet ukur- Penangas air- Erlenmeyer- Cawan pengabuan- Batang pengaduk- Pipet tetes- Pipet volumetric- Gelas piala- Kertas saringBahan bahan :- Contoh yang dianalisa (susu dalam kaleng)- Asam tumerat- HCl- NH4OH- Air kapur (lime water)- Air suling- Kertas pHUrutan kerja :1. Buatlah kertas tumerat dari kertas saring yang dicelupkan dalam asam tumerat dan dikeringkan di udara.2. Asamkan contoh yang akan dianalisa dengan HCL, dengan perbandingan 7 ml HCl dalam 100 ml contoh.3. Celupkan kertas tumerat tadi ke dalam contoh yang telah diasamkan da diamkan kertas tersebut mongering di udara.4. Jika terdapat boraks atau asam borat, maka kertas akan berwarna merah.5. Penambahan NH4OH akan mengubah kertas tumerat tersebut menjadi hijau gelap. Penambahan dilakukan seperti pada HCl.6. Bandingkan dengan perlakuan blanko.

2. Penetapan Zat Pemanis BuatanYang dimaksud dengan zat pemanis buatan adalah zat zat selain gula yang digunakan untuk memberi atau menambah rasa manis dalam makanan dan minuman, contohnya sakarin, siklamat dan garam garamnya.Penambahan itu dilakukan dengan dosis/ukuran yang tertentu, karena dapat mengganggu kesehatan. Pada umumnya zat zat tersebut termasuk senyawa aromatis serta berupa hablur tidak berwarna atau berwarna putih, tidak berbau atau berbau aromatic lemak, rasanya manis, larut dalam air, sukar larut dalam pelarut organic lemah.Disamping itu masing masing zat pemanis buatan mempunyai sifat yang berbeda dengan lainnya, seperti sakarin yang sukar larut dalam air dingin, tapi larut dalam air panas, larut dalam etanol, tapi sukar larut dalam kloroform. Sedangkan natrium siklamat sukar larut dalam etanol dan tidak larut sama selaki dalam kloroform dan dalam eter.Penyimpanan zat pemanis buatan dilakukan dalam wadah yang tertutup rapat, karena mudah mengikat air yang ada di sekitarnya.a. Penetapan sakarinAcara 1 :Pengujian sakarin secara kualitatifTujuan :Menguji ada atau tidaknya sakarin sebagai zat pemanis buatan dalam makanan/minuman.Alat alat :- Neraca analitik- Pipet ukur- Gelas piala- Pemanas- Pipet tetesBahan bahan :- Contoh makanan/minuman- Larutan NaOH (1 : 20)- Larutan HCl 13 %- Larutan FeCl3 1 N- Asam asetat 50 %- KNO2 10 %- Larutan CuSO4 1 %- Air panas- Petroleum eterUrutan kerja 1a :Dengan cara mengubah sakarin menjadi asam salisilat :1. Masukkan 100 mg contoh ke dalam gelas piala2. Larutkan dalam 5 ml larutan NaOH (1 : 20)3. Uapkan sampai kering di atas api kecil dan kemudian didinginkan4. Larutkan dalam 20 ml HCl 13 % ditambah setetes larutan FeCl3 1 N5. Amatilah perubahan warna yang terjadi, apabila larutan berwarna violet berarti ada asam siklamat yang terbentuk dari sakarinUrutan kerja 1b :Dengan cara Jorrissen test :1. Ambil 50 ml contoh, diasamkan dengan HCl, lalu diekstraksi2. Hasil ekstraksi yang tidak mengandung petroleum eter dilarutkan dengan sedikit air panas3. Setelah dingin, ambil 10 ml larutan dan ditambahkan 4 5 tetes KNO2 10 %, 4 5 tetes asam asetat 50 % dan 1 tetes CuSO4 1 %4. Jika terdapat asam salisilat, larutan akan berubah menjadi warna merahAcara 2a :Penetapan kadar sakarinTujuan :Menghitung jumlah kandungan sakarin sebagai zat pemanis buatanAlat alat :- Neraca- Oven- Gelas ukur- Buret- ErlenmeyerBahan bahan :- Contoh yang akan dianalisa (makanan/minuman)- Larutan NaOH 0.1 N- Indikator phenolpthalenUrutan kerja :1. Ambillah sebanyak 0.3 g contoh yang telah dikeringkan pada suhu 105 OC selama 2 jam dan dilarutka dalam 75 ml air mendidih dan kemudian didinginkan.2. Titrasi dengan larutan NaOH 0.1 N dengan 3 tetes indicator phenolpthalen.Perhitungan :Tiap ml NaOH 0.1 N setara dengan 18.32 mg sakarinCatatan :Untuk bahan bahan yang berwarna perlu disaring terlebih dahulu sehingga penggunaan indicator phenolpthalen dapat terlihat dengan sempurna.

Acara 2b :Penetapan kadar Na-sakarinTujuan :Menghitung jumlah kandungan Na-sakarin sebagai zat pemanis buatan dalam suatu makanan atau minuman.Alat alat :- Neraca analitik- Oven- Pipet ukur- Buret- Erlenmeyer- Pipet tetesBahan bahan :- Contoh (makanan/minuman)- Asam asetat glacial- Asam perklorat 0.1 N- Kristal violetUrutan kerja :1. Ambillah 0.3 g contoh yang telah di keringkan pada suhu 120 OC selama 4 jam yang kemudian di larutkan dalam 20 ml asam asetat glacial.2. Titrasilah dengan asam perklorat 0.1 N dengan 2 tetes larutan kristal violet sebagai indicator, sehingga warna ungu larutan berubah menjadi biru kemudian hijau3. Buatlah percobaan blanko (tanpa contoh)

Acara 3 :Pengujian dulsin secara kualitatifTujuanMenguji ada atau tidaknya dulsin sebagai zat pemanis buatan dalam makanan/minuman.Alat alat :- Gelas piala- Corong- Erlenmeyer- Gelas ukur- Neraca- Penangas airBahan bahan :- Contoh (makanan/minuman)- Larutan H3PO4 25 %- Kloroform- Serbuk tragakan- Larutan asam karbonat- Larutan merkuri nitrat 1 -2 g HgO yang baru saja dicuci dengan air dan dilarutkan dalam NHO3, tambahkan larutan NaOH (konsentrasi tak penting) sehingga endapan yang terjadi tidak larut lagi, kemudian tambahkan air sampai volume 15 ml cairannya didekantasi dan dapat digunakan.- PbO2 padatUrutan kerja :1. Contoh yang akan diuji dilarutkan dalam 4 bagian berat air dan bila perlu dilakukan penyaringan.2. Ambillah 50 100 ml larutan diasamkan dengan larutan asam phosphate 25 % dan kocok dengan kloroform.3. Tambahkan 5 10 g serbuk tragakan dan kocok kuat kuat.4. Tuangkan cairannya ke dalam gelas piala dan kemudian uapkan.5. Sisa penguapan yang diperoleh dilarutkan dengan larutan asam karbonat encer dan kemudian disaring.6. Filtratnya diuapkan sampai kering, suspensikan sisa penguapan 5 ml dan 4 tetes merkuri nitrat.7. Panaskan 5 10 menit di atas penangas air dan tambahkan sedikit PbO2.8. Amati perubahan warna yang terjadi, jika warna menjadi violet berarti ada dulsin.

Acara 4 :Penetapan kadar natrium siklamatTujuan :Menghitung jumlah kandungan natrium siklamat dalam suatu bahan makanan/minuman.Alat alat :- Neraca- Oven- Pipet ukur- Buret- ErlenmeyerBahan bahan :- contoh makanan/minuman- Asam asetat glacial- Asam perkhlorat- Larutan kristal violetUrutan kerja :1. Ambillah 0.3 g contoh yang sudah di keringkan pada suhu 120 OC selama 4 jam dan masukkan ke dalam Erlenmeyer.2. Larutkan dengan 20 ml asam asetat glacial.3. Lakukan titrasi dengan asam perkhlorat 0.1 N dan menggunakan 2 tetes kristal violet sebagai indicator.Perhitungan :1 ml asam perkhlorat 0.1 N setara dengan 20.12 mg natrium siklamat (C6H12NNaO3S)

3. Penetapan Zat Warna TambahanYang dimaksud dengan zat warna tambahan dalam bahan makanan adalah zat warna yang bukan zat warna asli bahan makanan. Zat tersebut ditambah dalam makanan agar warna makanan lebih menarik. Zat warna tambahan disebut juga zar warna sintetis, sebagai contoh, amaranth, erythresine, saffranine dan lainnya.Pada umumnya untuk mengetahui kandungan zat warna dalam bahan makanan/minuman dilakukan analisa secara kualitatif yang pada prinsipnya menguji larutan makanan dengan benang wool putih yang tidak berlemak. Setelah diketahui bahwa dalam makana/minuman terdapat bahan pewarna tambahan, dilanjutkan pengujian dengan larutan asam dan larutan basa. Sehingga dengan demikian dapat diketahui apakah zat warna tambahan dalam suatu makanan/minuman itu termasuk zat warna tambahan yang memenuhi persyaratan dalam makanan/minuman.Untuk mengetahui kadar atau dosis zat warna tambahan yang digunakan jarang sekali dilakukan analisanya. Hal ini disebabkan karena penambahannya hanya sebagai bahan untuk memperindah atau menarik selera konsumen atau dengan kata lain penambahan tersebut dilakukan secukupnya saja sesuai dengan selera. Penambahan yang terlalu banyak akan mengakibatkan warna menjadi jelek dan mempengaruhi rasa. Analisa zat warna yang lebih teliti dilakukan secara khromatografi.Acara :Pengujian zat warna tambahanTujuan :Mengetahui ada tidaknya zat warna yang ditambahkan dalam makanan/minuman.Alat alat :- neraca analitik- Gelas piala- Gelas ukur- Pemanas- Pipet tetesBahan bahan :- Contoh makanan/minuman yang berwarna (jam, saus tomat, sirup, minuman ringan)- Larutan KHSO3 10 %- Larutan HCl pekat- Larutan H2SO4 pekat- Larutan NaOH 10 %- Larutan NH4OH 10 %- Benang wool putih yang tidak berlemakUrutan kerja :1. Masukkan 50 ml contoh ke dalam gelas piala dan tambahkan 5 ml larutan KHSO3 10 % dan masukkan pula 10 cm benang wool putih yang tidak berlemak.2. Didihkan campuran tersebut selama 10 menit dan kemudian didinginkan.3. Setelah dingin angkat benang wool dan cuci dengan air suling dan kemudian dikeringkan.4. Amati warna yang terbentuk, apabila benanf wool berwarna, berarti ada zat warna tambahan.5. Benang wool dipotong potong dan potongan tersebut ditetesi dengan NH4OH 10 %. Jika berubah menjadi hijau kotor berarti menunjukkan adanya zat warna alam. Jika terbentuk warna lain, maka kemungkinan terdapat zat warna tambahan.6. Ambil 3 potong benang wool lainnya yang masing masing diuji dengan 1 2 tetes HCl pekat, H2SO4 pekat dan larutan NaOH 10 %.7. Amati perubahan perubahan warna yang terjadi pada setiap potong benang wool.http://kharismamerrin.blogspot.com/2012/10/analisis-pengawet-dan-pemanis-pada.html