TESIS ANALISIS MERKURI PADA BERBAGAI JENIS IKAN YANG ...

TESIS

ANALISIS MERKURI PADA BERBAGAI JENIS IKAN

YANG BEREDAR DI KOTA MEDAN DENGAN

SPEKTROFOTOMETRI SERAPAN ATOM

OLEH:

JHAN SABERLAN PURBA

NIM 177014006

PROGRAM STUDI MAGISTER ILMU FARMASI

FAKULTAS FARMASI

UNIVERSITAS SUMATERA UTARA

MEDAN

2020


ii

TESIS




OLEH:

JHAN SABERLAN PURBA

NIM 177014006


FAKULTAS FARMASI


MEDAN

2020


iii




TESIS

Diajukan sebagai salah satu syarat untuk memperoleh

Gelar Magister dalam Ilmu Farmasi pada Fakultas Farmasi

Universitas Sumatera Utara

OLEH:

JHAN SABERLAN PURBA

NIM 177014006


FAKULTAS FARMASI


MEDAN

2020


iv


v

PENGESAHAN TESIS


PERSETUJUAN TESIS

Nama Mahasiswa : Jhan Saberlan Purba

Nomor Induk Mahasiswa : 177014006

Program Studi : Magister Ilmu Farmasi

Judul Tesis : Analisis Merkuri pada Berbagai Jenis Ikan yang

Beredar Di Kota Medan dengan Spektrofotometri

Serapan Atom

Telah diuji dan dinyatakan LULUS di depan Komisi Penguji Tesis pada hari

Kamis tanggal dua bulan tujuh tahun dua ribu dua puluh.

Menyetujui:

Komisi Penguji Tesis

Ketua : Prof. Dr. Jansen Silalahi, M.App.Sc.,Apt.

Sekretaris : Prof. Dr. Ginda Haro, M.Sc.,Apt.

Anggota : Prof. Dr. Muchlisyam M.Si.,Apt.

Prof. Dr. Siti Morin Sinaga, M.Sc.,Apt.


vi


vii


viii




ABSTRAK

Ikan merupakan salah satu sumber merkuri dan kadar merkuri maksimum

yang diizinkan dalam ikan oleh BPOM RI adalah 0,5 mg / kg. Penelitian ini

dilakukan untuk mengetahui kadar merkuri pada ikan yang sering dikonsumsi di

Kota Medan Indonesia. Sampel ikan dikumpulkan dari 7 pasar ikan tradisional

dan 1 supermarket di Medan pada bulan Desember 2019. Sampel ikan

dikeringkan menggunakan oven pada suhu 1030C hingga tercapai berat kering

yang konstan. Kemudian dilakukan proses digesti dengan menggunakan asam

nitrat dan asam perklorat pekat . Penentuan kadar merkuri dilakukan

menggunakan metode CV-AAS dengan spektrofotometer serapan atom Perkin

Elmer 900 H yang dilengkapi dengan MHS15 (Mercury Hidride System).

Hasil penelitian menunjukkan bahwa kadar merkuri pada ikan pelagis

ditemukan nyata pada tuna sirip kuning (Thunnus albacares) sebesar 27,3865 ±

0,3326 µg/kg; tongkol (Euthynnus affinis) sebesar 17,8570 ± 0,0121 µg/kg;

cakalang (Katsuwonus pelamis) sebesar 17,4507 ± 1,5893 µg/kg; tenggiri

(Scomberomorus commersonii) sebesar 10,5767 ± 0,1862 µg/kg; kerapu

(Epinepheus fuscoguttatus) sebesar 9,9736 ± 0,9115 µg/kg; kembung (Rastreliger

kanagurta) sebesar 6,5364 ± 0,1935 µg/kg dan pada ikan dumersal ditemukan

nyata pada kakap merah (Lutjanus campechanus) sebesar 14,0966 ± 0,8555

µg/kg; pari (Dasyatis sp) sebanyak 61,3146 ± 0,8149 µg/kg; manyung (Arius

thalassinus) sebesar 13,2533 ± 0,7586 µg/kg; bawal hitam (Parastromateus niger)

sebanyak 10,7755 ± 0,4605 µg/kg; sarden (Sardinella sp) 6,5464 ± 0,1036 µg/kg.

Hasil penelitian menunjukkan bahwa ikan yang lebih besar memiliki kadar

merkuri yang lebih tinggi. Kadar merkuri dalam sampel ikan yang dianalisis

masih berada di bawah kadar maksimum yang diizinkan oleh BPOM RI.

Kata Kunci: Merkuri, Ikan, Spektrofotometer Serapan Atom-MHS 15.


ix

ANALYSIS OF MERCURY IN FISH, NORTH SUMATERA

INDONESIA BY ATOMIC ABSORPTION

SPECTROPHOTOMETER

ABSTRACT

Fish is a source of mercury and the maximum level of mercury permitted

in fish by BPOM RI is 0.5 mg/kg. This study was conducted to determine the

level of mercury in fish often consumed in Medan Indonesia. Fish samples were

collected from 7 traditional fish market outlets and 1 supermarket in Medan in

December 2019. Fish samples were dried using an oven at 1030C untill a constant

dry weight was attained. Then, the digestionprocess was carried out using

concentrated nitric acid and perchloric acid. Determination of mercury level was

carried out using CV-AAS method with 900 H Perkin Elmer atomic absorption

spectrophotometer equipped with MHS15 (Mercury Hidride System).

The results showed that the level of mercury in pelagic fish was found

significantly in yellowfin tuna (Thunnus albacares) of 27.3865 ± 0.3326 µg/kg;

mackerel tuna (Euthynnus affinis) of 17.8570 ± 0.0121 µg/kg; skipjack tuna

(Katsuwonus pelamis) of 17.4507 ± 1.5893 µg/kg; spanish mackerel

(Scomberomorus commersonii) of 10.5767 ± 0.1862 µg/kg; grouper (Epinepheus

fuscoguttatus) of 9.9736 ± 0.9115 µg/kg; mackerel (Rastreliger kanagurta) of

6.5364 ± 0.1935 µg/kg and dumersal fish were found significantly in red snapper

(Lutjanus campechanus) of 14.0966 ± 0.8555 µg/kg; stingray (Dasyatis sp) of

61.3146 ± 0.8149 µg/kg; ariid catfish (Arius thalassinus) of 13.2533 ± 0.7586

µg/kg; black pomfret (Parastromateus niger) of 10.7755 ± 0.4605 µg/kg; sardine

(Sardinella sp) of 6.5464 ± 0.1036 µg/kg. The results showed that the larger fish

has the higher mercury level. The level of mercury in these analyzed fish samples

was below maximum level permitted by BPOM RI.

Keyword: Mercury, Fish, Atomic Absorption Spectrophotometer-MHS 15


x

DAFTAR ISI

HALAMAN SAMPUL ................................................................................. i

HALAMAN JUDUL I …………………………………………………….. ii

HALAMAN JUDUL II ……………………………………………………. iii

HALAMAN PENGESAHAN TESIS ........................................................... iv

HALAMAN PERSETUJUAN TESIS …………………………………….. v

HALAMAN PERNYATAAN ORISINALITAS .......................................... vi

KATA PENGANTAR .................................................................................. vii

ABSTRAK .................................................................................................... viii

ABSTRACT .................................................................................................... ix

DAFTAR ISI ................................................................................................. x

DAFTAR TABEL ......................................................................................... xii

DAFTAR GAMBAR .................................................................................... xiii

DAFTAR LAMPIRAN ................................................................................. xiv

BAB I PENDAHULUAN .............................................................................. 1

1.1 Latar Belakang .....................................................................................

Error! Bookmark not defined.

1.2 Perumusan Masalah ............................................................................. 5

1.3 Hipotesis .............................................................................................. 6

1.4 Tujuan Penelitian ................................................................................. 6

1.5 Manfaat Penelitian ............................................................................... 6

1.6 Kerangka Pikir Penelitian .................................................................... 7

BAB II TINJAUAN PUSTAKA ................................................................... 8

2.1 Merkuri .............................................................................................. 8

2.1.1 Karakteristik Merkuri ........................................................................ 8

2.1.2 Merkuri di Lingkungan ..................................................................... 8

2.1.3 Sumber Merkuri di Lingkungan ........................................................ 17

2.1.4 Sumber Paparan Merkuri pada Manusia ........................................... 23

2.1.5 Sumber Merkuri dalam Makanan ...................................................... 27

2.1.6 Keracunan Metil Merkuri ................................................................. 32

2.1.7 Paparan Merkuri pada Manusia ......................................................... 35

2.1.8 Toksisitas Merkuri ............................................................................. 36

2.1.9 Manfaat dan Resiko Konsumsi Ikan ................................................. 39

2.1.10 Penurunan Kadar Merkuri Melalui Metode Pengolahan ................... 41

2.1.11 Analisis Resiko Merkuri .................................................................... 44

2.1.12 Kadar Batas Maksimum Cemaran Merkuri ...................................... 46

2.2 Ikan .................................................................................................... 47

2.2.1 Jenis-jenis ikan .................................................................................. 47

2.2.2 Jenis ikan yang ada di Kota Medan ................................................... 48


xi

2.3 Analisa Merkuri dalam Ikan .............................................................. 57

2.3.1 Digesti ............................................................................................... 57

2.3.2 Metode Penetapan Kadar Merkuri .................................................... 58

2.4 Validasi Metode Analisis .................................................................. 64

BAB III METODE PENELITIAN................................................................. 67

3.1 Alat dan Bahan .................................................................................. 67

3.1.1 Alat-alat .............................................................................................. 67

3.1.2 Bahan-bahan ....................................................................................... 67

3.1.3 Sampel ............................................................................................... 67

3.2 Prosedur Penelitian ............................................................................. 68

3.2.1 Metode Pengambilan Sampel ............................................................ 68

3.2.2 Penyiapan Sampel ............................................................................. 68

3.2.3 Digesti ............................................................................................... 69

3.2.4 Analisis Merkuri dalam ikan .............................................................. 70

3.3 Analisis Kuantitatif ............................................................................ 70

3.3.1 Pembuatan Kurva Kalibrasi Merkuri ................................................. 70

3.4 Peentuan Kadar Merkuri dalam Ikan ................................................ 71

3.5 Analisis Data Secara Statistik ........................................................... 72

3.5.1 Membandingkan Rata-rata Pengukuran dengan Hasil Sebenarnya .. 72

3.5.2 Uji Perolehan Kembali (Recovery) ................................................... 73

3.5.3 Simpangan Baku Relatif (RSD) ........................................................ 73

3.5.4 Penentuan Batas Deteksi dan Batas Kuantitasi ................................. 74

BAB IV HASIL DAN PEMBAHASAN ...................................................... 75

4.1 Kurva Kalibrasi Merkuri ................................................................... 75

4.2 Kadar Merkuri dalam Ikan ................................................................ 76

4.3 Validitas Metode Analisis ................................................................. 81

4.3.1 Perolehan Kembali (Recovery) .......................................................... 81

4.3.2 Simpangan Baku Relatif (RSD) ....................................................... 82

4.3.3 Batas Deteksi dan Batas Kuantitasi ................................................... 82

4.4 Analisa Resiko Merkuri ..................................................................... 83

BAB V KESIMPULAN DAN SARAN ........................................................ 85

5.1 Kesimpulan ........................................................................................ 85

5.2 Saran .................................................................................................. 85

DAFTAR PUSTAKA .................................................................................... 87


xii

DAFTAR TABEL

2.1 Sumber Merkuri di Lingkungan .................................................... 22

2.2 Sumber Merkuri Kegiatan Antropogenik ..................................... 22

2.3 Kadar Merkuri dalam Ikan di Berbagai Negara ............................ 28

2.4 Keracunan Metil Merkuri pada Manusia ...................................... 34

2.5 Kadar Batas Maksimum Cemaran Merkuri di Beberapa Negara . 46

2.6 Rentang Keberterimaan Recovery pada Setiap

Konsentrasi Analit pada Sampel .................................................. 65

4.1 Kadar Merkuri pada Berbagai Jenis Ikan di Kota Medan ............ 77

4.2 Hasil Perhitungan Perolehan Kembali (Recovery) ...................... 81

4.3 Hasil Perhitungan Simpangan Baku Relatif (RSD) ..................... 82

4.4 Hasil Perhitungan Batas Deteksi dan Batas Kuantitasi................. 83

4.5 Hasil Perhitungan Nilai PTWI, RQ dan Status Keamanan ........... 83


xiii

DAFTAR GAMBAR

1.1 Kerangka pikir penelitian ............................................................. 7

2.1 Siklus Merkuri ............................................................................. 9

4.1 Kurva Kalibrasi Larutan Baku Merkuri ....................................... 75

4.2 Grafik Kadar Merkuri pada berbagai Jenis Ikan di Kota Medan .. 78


xiv

DAFTAR LAMPIRAN

1. Gambar Alat .................................................................................. 95

2. Data Spesifikasi Sampel .............................................................. 98

3. Bagan Alir Pembuatan Larutan Uji............................................... 99

4. Bagan Alir Pembuatan Larutan Standar ....................................... 100

5. Tabel Distribusi t........................................................................... 101

6. Data Kalibrasi Merkuri Dengan Spektrofotometri Serapan Atom,

Perhitungan Persamaan Garis Regresi dan Koefisien Korelasi (r) 102

7. Data Pengukuran Asorbansi Larutan Sampel .................. ………. 104

8. Contoh Perhitungan Kadar Merkuri pada Ikan ............................. 107

9. Perhitungan Statistik Kadar Merkuri pada Ikan............................ 108

10. Rekapitulasi Kadar Merkuri Setelah Perhitungan Statistik .......... 122

11. Contoh Perhitungan Uji Recovery Merkuri pada Ikan Sardin ...... 123

12. Hasil Perhitungan Uji Perolehan Kembali (Recovery) ................. 123

13. Perhitungan Simpangan Baku (SD) dan Simpangan Baku Relatif

(RSD) Merkuri pada Ikan Sardin ................................................. 124

14. Perhitungan Batas Deteksi dan Batas Kuantitasi Merkuri ............ 125

15. Analisa Resiko Merkuri ................................................................ 126

16. Data Baku Hasil Penelitian Penelitian .......................................... 127

17. Peraturan Kepala Badan Pengawas Obat dan Makanan RI .......... 146

18. Gambar Sampel Ikan..................................................................... 152


1

BAB I

PENDAHULUAN

1.1 Latar Belakang

Merkuri adalah salah satu logam paling beracun yang ditemukan di alam

dan oleh badan pemerintah amerika serikat menempatkan merkuri nomor ketiga

dibawah arsenik dan plumbum. Keracunan merkuri adalah hasil paparan senyawa

merkuri atau unsur merkuri yang menghasilkan berbagai efek toksik tergantung

pada bentuk kimianya dan rute paparannya. Rute utama paparan manusia terhadap

metil merkuri sebagian besar melalui ikan, makanan laut, dan satwa liar yang

telah terkontaminasi. Toksisitas metil merkuri dikaitkan dengan kerusakan sistem

saraf pada orang dewasa, Ibu hamil dan gangguan perkembangan sistem syaraf

pada bayi dan anak-anak (Kevin, dkk., 2014).

Merkuri berada dalam lingkungan dilepaskan melalui proses alami dan

antropogenik. Pelepasan merkuri secara alami seperti gunung berapi, pembakaran

hutan, penguapan laut, aktivitas geologi diperkirakan mencapai 4.800 ton/tahun.

Antropogenik diperkirakan menyumbang sekitar 2.200 ton / tahun seperti

pertambangan batu bara, pertambangan emas, pembakaran minyak dan gas alam,

Industri klor-alkali, amalgam gigi dan limbah produk konsumen. Transformasi

kimia yang kompleks dalam siklus merkuri menghasilkan merkuri dalam bentuk

anorganik (Hg0, Hg+, Hg2+) dan organik (CH3Hg, CH3(2)Hg) (UNEP, 2013).

Dalam siklus merkuri di lingkungan air, merkuri (Hg2+) dan merkuri (Hg+)

dapat diubah menjadi metil merkuri (CH3Hg+) melalui biometilasi oleh

mikroorganisme air dan kemudian terakumulasi dalam rantai makanan. Metil

merkuri dianggap sebagai salah satu transformasi kimia yang paling penting


2

secara toksikologis karena tidak hanya bioavailabilitas dan toksisitas metil

merkuri yang meningkat tetapi pada kenyataannya paparan metil merkuri pada

manusia juga meningkat. Saat ini, paparan merkuri pada manusia sering terjadi

melalui konsumsi ikan (Annual, 2014).

Pencemaran yang terjadi dari kegiatan antropogenik mengakibatkan ikan

mengakumulasi bahan pencemar berbahaya seperti logam berat. Akumulasi logam

berat tersebut akan membahayakan manusia yang mengkonsumsinya. Salah satu

jenis logam berat yang berbahaya dan dapat terakumulasi dalam ikan adalah

merkuri karena memiliki toksisitas tinggi pada konsentrasi rendah. Toksisitas

merkuri yang tinggi tersebut mengakibatkan hanya bakteri anaerobik saja yang

dapat melakukan mobilisasi terhadap logam ini. Hal ini disebabkan proses reduksi

Hg2+ menjadi Hg0 terjadi pada kondisi anoksik (Suratno, dkk., 2017).

Sejak tragedi Teluk Minamata di Jepang sebagian besar kekhawatiran

terjadi pada keberadaan merkuri dalam ikan karena makanan laut merupakan

sumber utama merkuri. Industri kimia Jepang Chisso Corporation tahun 1932

memproduksi asetaldehid untuk bahan baku pembuatan plastik dengan

menggunakan merkuri sulfat (HgSO4) sebagai katalis. Limbah merkuri sulfat

masuk ke dalam lingkungan air dan mengalami perubahan bentuk oleh bakteri

menjadi metil merkuri yang terdapat pada ikan dan penyakit minamata terjadi

ketika nelayan disekitar industri mengkonsumsi ikan tersebut (Cladis 2014;

Zillioux, 2015).

Pentingnya konsumsi ikan untuk kesehatan dan gizi telah menjadikan ikan

sebagai sumber makanan penting bagi manusia selama ribuan tahun. Sekitar satu

miliar orang mengandalkan ikan sebagai sumber utama protein hewani. Ikan


3

adalah sumber protein, mineral dan lemak yang penting bagi tubuh manusia. Ikan

mengandung senyawa fungsional yang bermanfaat bagi kesehatan yaitu Omega-3

rantai panjang asam lemak tak jenuh yang terdiri dari Eicosapentaenoic (EPA)

dan Docosahexaenoic (DHA) (Myers, dkk., 2007).

Banyak penelitian telah melakukan analisis risiko-manfaat pada ikan.

Secara umum, beberapa penelitian sepakat bahwa ada manfaat yang signifikan

mengkonsumsi ikan yang mengandung asam lemak rantai panjang untuk

peningkatan kesehatan, tetapi di sisi lain bahwa efek negatif dari metil merkuri

dapat menyebabkan gangguan kesehatan terutama bagi populasi yang rentan

termasuk wanita hamil, ibu menyusui dan anak-anak. DHA, asam arakidonat

(AA) dan omega-6 PUFA sangat penting untuk pengembangan sistem saraf pusat

dalam janin manusia. Efek neurotoksik metil merkuri pada Janin dan bayi yang

sedang tumbuh adalah yang paling sensitif oleh karena itu, wanita hamil dan

menyusui harus berhati-hati saat mengonsumsi makanan laut (Chan, 2011 ;

Cladis, 2014).

Berdasarkan data Badan Pusat Statistik (2018) rata-rata konsumsi ikan di

Indonesia 324 gram ikan per orang per minggu dan data dari Badan Ketahanan

Pangan Pemerintah Kota Medan (2016) menjelaskan bahwa masyarakat kota

medan mengkonsumsi 91,69 gram ikan per orang per hari. Akumulasi merkuri

dalam tubuh ikan menjadi perhatian penting yang terkait dengan masalah

kesehatan, sehingga perlu dilakukan penelitian terhadap ikan yang mengandung

merkuri. Ambang batas konsentasi merkuri dalam ikan yang diizinkan oleh Badan

Pengawasan Obat dan Makanan Republik Indonesia (BPOM-RI 2018) sebesar 0,5

mg/kg dan WHO/FAO sebesar 0,5 – 1,0 mg/kg.


4

Dalam penelitian sebelumnya yang dilakukan oleh Rosmidah, (2004)

analisa kadar merkuri pada ikan yang diperoleh dari Tempat Pelelangan Ikan

Belawan. Hasil penelitian menunjukkan kadar merkuri ikan tongkol sebesar

0,0001265 mg/kg, ikan pari sebesar 0,0001122 mg/kg, ikan gembung sebesar

0,0000779 mg/kg, ikan kerapu sebesar 0,0001179 mg/kg, ikan dencis sebesar

0,0001151 mg/kg.

Berdasarkan penelitian yang dilakukan oleh Nasution, (2015) tentang

efektivitas larutan jeruk nipis terhadap penurunan kadar merkuri (Hg) pada ikan

tongkol (Euthynnus sp). Pada penelitian ini kadar merkuri pada ikan tongkol yang

diperoleh dari Tempat Pelelangan Ikan Belawan sebesar 0,0875 mg/kg. Penelitian

Datuela, (2015) Analisis Kandungan Merkuri (Hg) pada Jenis Ikan Demersal di

Pasar Tradisional Bilato Kabupaten Gorontalo menunjukkan ikan kakap merah

0,27 mg/kg, ikan kerapu 0,25 mg/kg,

Pasar Tradisional merupakan salah satu tempat umum yang berfungsi

sebagai tempat proses jual beli yang ditandai dengan adanya tawar menawar

dalam mencari kesepakatan dan salah satu produk jual belinya adalah ikan.

Sumber ikan laut yang diperjualbelikan pada pasar tradisional di kota Medan

diperoleh dari Laut Belawan, Laut Sibolga, Laut Serdang Bedagai, Laut Tanjung

Balai dan Laut Aceh. Beberapa penelitian sebelumnya telah menunjukkan adanya

kadar merkuri pada ikan yang berasal tempat pelelangan ikan Belawan yang

merupakan salah satu sumber ikan yang terdapat di pasar tradisional. Hal ini

menjadi dasar peneliti, pentingnya melakukan penelitian untuk mengetahui kadar

merkuri pada beberapa jenis ikan yang sering dikonsumsi yang terdapat di pasar

tradisional di kota Medan. Analisa kadar merkuri dalam beberapa jenis ikan yang


5

sering dikonsumsi di Medan di pasar tradisional belum pernah dilakukan

sebelumnya. Tujuan dari penelitian ini adalah untuk mengetahui kadar merkuri

pada beberapa jenis ikan yang sering dikonsumsi di Medan yang diperoleh dari

pasar tradisional.

Penentuan kadar merkuri pada ikan dilakukan dengan metode CV-AAS

(Cold Vapour Atomic Absorption Spectrophotometer) dengan alat Atomic

Absorption Spectrophotometer 900H-MHS 15 (Mercury Hidride System). CV-

AAS (Cold Vapour Atomic Absorption Spektrophotometry) bekerja berdasarkan

prinsip kerja dari Atomic Absorption Spektrophotometry (AAS) dengan

menggunakan metodologi pemisahan uap dingin untuk mencegah kehilangan

merkuri karena penguapan, dalam teknik ini merkuri direduksi menjadi keadaan

dasar (Hg0).

1.2 Perumusan Masalah

Berdasarkan latar belakang diatas maka perumusan masalah penelitian ini

adalah sebagai berikut:

a. Bagaimana variasi kandungan merkuri pada jenis ikan yang beredar di kota

Medan ?

b. Apakah kadar merkuri dari berbagai jenis ikan yang beredar di kota Medan

masih dibawah kadar batas maksimum cemaran merkuri yang ditetapkan oleh

Badan POM RI (2018) ?

c. Apakah beberapa jenis ikan yang beredar di kota medan aman untuk

dikonsumsi ?


6

1.3 Hipotesis

Berdasarkan perumusan masalah diatas maka hipotesis penelitian ini

adalah:

a. Ikan yang beredar di kota Medan mengandung merkuri dalam jumlah yang

bevariasi.

b. Kadar merkuri dalam beberapa jenis ikan yang beredar di kota Medan masih

dibawah kadar batas maksimum cemaran merkuri yang ditetapkan oleh Badan

POM RI (2018).

c. Ikan yang beredar di kota Medan masih aman untuk dikonsumsi.

1.4 Tujuan Penelitian

Berdasarkan hipotesis diatas maka tujuan penelitian ini antara lain:

a. Untuk mengetahui kadar merkuri beberapa jenis ikan yang berdar di kota

Medan.

b. Untuk mengetahui apakah kadar merkuri pada beberapa jenis ikan yang

beredar di kota Medan masih dibawah kadar batas maksimum cemaran

merkuri yang ditetapkan oleh Badan POM RI (2018).

c. Untuk mengetahui bahwa beberapa jenis ikan yang beredar dikota Medan

aman untuk dikonsumsi.

1.5 Manfaat Penelitian

Berdasarkan tujuan penelitian diatas maka manfaat penelitian ini adalah

memberikan informasi kepada masyarakat tentang kadar merkuri pada beberapa

jenis ikan yang beredar di kota Medan dan apakah masih dibawah kadar batas

maksimum cemaran merkuri yang ditetapkan oleh Badan POM RI (2018)

sehingga aman untuk dikonsumsi.


7

1.6 Kerangka Pikir Penelitian

Penelitian ini merupakan penelitian deskriptif yang bertujuan untuk

menggambarkan karakteristik suatu keadaan secara sistematis yaitu penetapan

kadar merkuri pada berbagai jenis ikan yang beredar di kota Medan. Kerangka

pikir peneitian lihat dalam Gambar 1.1

Kadar merkuri memenuhi

atau tidak memenuhi standar

Peraturan Kepala Balai POM

RI No.05 Tahun 2018

Penentuan Kadar

Merkuri (Hg)

menggunakan metode

CV-AAS (Cold Vapour

Atomic Absorption

Spectrophotometry)

dengan alat Atomic

Absorption

Spectrophotometer

900H – MHS 15

(Mercury Hidride

System).

Gambar 1.1 Kerangka Pikir Penelitian

Pasar Tradisional

Ikan Simpang

Selayang

Ikan Manyung

dan Ikan Sardin

Pasar Tradisional

Ikan Glugur

Ikan Kakap

Merah dan Ikan

Pari

Pasar Tradisional Ikan

Padang Bulan

Ikan Kembung

Pasar Tradisional

Ikan Johor

Ikan Bawal Hitam

Pasar Tradisional

Ikan Sambu

Ikan Kerapu

Pasar Tradisional

Ikan Petisah

Ikan Cakalang dan

Ikan Tenggiri

Super Market

Berastagi

Ikan Tuna

Pasar Tradisional

Ikan Sei

Sekambing Ikan

Tongkol

Ikan Tongkol


8

BAB II

TINJAUAN PUSTAKA

2.1 Merkuri

2.1.1 Karakteristik Merkuri

Merkuri adalah unsur kimia yang memiliki nomor atom 80, berat atom

200,5924, titik lebur 38,8oC, titik didih 356,7oC, densitas 13,534 g/cm3, gravitasi

13,55, tekanan uap 1,22 x 10-3 mmHg pada 20oC (2,8 x 10-3 mmHg pada 30oC),

dan kelarutan dalam air 5,6 x 10-7 g/l pada 25oC, sangat mudah menguap,

kejenuhan gas merkuri diatmosfir mengandung sekitar 18 mg Hg/m3 pada 24,0oC.

Merkuri adalah logam berat berkilau, putih keperakan dengan semburat

kebiruan yang samar dan satu-satunya logam yang cair pada suhu kamar. Relatif

stabil, padat dan memiliki tegangan permukaan tinggi. Di bawah titik lelehnya

merkuri adalah padatan putih. Dalam keadaan gas merupakan uap tidak berwarna.

(Beckers dan Rinklebe, 2017).

2.1.2 Merkuri di Lingkungan

2.1.2.1 Bentuk Merkuri

Merkuri yang terdapat di lingkungan secara kimia terdiri dari tiga bentuk

di antaranya adalah unsur merkuri (Hg0) atau merupakan gas merkuri , merkuri

anorganik (Hg+dan Hg2+) dan merkuri organik yaitu metil merkuri (CH3Hg+) dan

dimetil merkuri (CH3HgCH3) yang terikat pada protein tubuh hewan seperti ikan

(Clarkson dan Magos, 2006).

Merkuri terdapat di alam dalam bentuk biji merkuri yang dalam bentuk

senyawa disebut sinabar. Senyawa merkuri yang paling melimpah adalah HgS

yang terjadi dalam tiga polimorf: sinabar, metasinabar dan hipersinabar.


9

Diperkirakan biji merkuri ini sebagai sumber pencemaran merkuri secara alami.

Beberapa senyawa merkuri anorganik dipakai secara luas pada industri di tahun

1900an walaupun sebagian besar sudah diganti dengan zat yang lebih aman atau

kadar merkurinya sudah semakin diperkecil. Misalnya, merkuri arsenat

(HgHAsO4) untuk campuran cat tahan air; merkuri benzoat (Hg(C7G5O2)2)

sebagai obat penyakit syphilis; merkuri khlorida (HgCl2) untuk bahan pembunuh

kuman, penyamakan kulit, pengawet kayu; merkuri sianida (Hg(CN)2 ) untuk

campuran sabun anti jamur, fotografi; merkuri oksida (HgO) sebagai pewarna

merah atau kuning pada cat, fungisida dan kosmetik; merkuri sulfida (HgS) dan

(Hg2CrO4 ) sebagai pewarna hitam dan hijau pada cat (Adlim, 2016).

2.1.2.2 Siklus dan Gambar Merkuri di lingkungan

Siklus merkuri di lingkungan dan makanan dapat dilihat pada Gambar 2.1.

Gambar 2.1 Siklus Merkuri (sumber : biodesign Mercury)


http://wiki.biodesign.cc/wiki/Mercury

10

1. Merkuri di Atmosfir

Unsur merkuri (Hg0) merupakan bentuk utama merkuri di atmosfer karena

mudah menguap dan relatif kurang reaktif dibandingkan dengan bentuk merkuri

lainnya. Gas merkuri (Hg0) diatmosfer memiliki umur sekitar 6-24 bulan yang

relatif lama dibandingkan dengan bentuk merkuri lain yang berada di atmosfer

hanya beberapa minggu saja. Umur gas merkuri (Hg0) yang begitu lama sangat

berperan dalam penyebarannya keseluruh bagian bumi. Sumber merkuri secara

global pada lingkungan melibatkan emisi alami (pertukaran gas dari kerak bumi,

aktivitas gunung berapi, proses panas bumi, penguapan dari tanah, sedimen, air),

emisi ulang merkuri oleh alam dan kegiatan antropogenik yang memiliki

pengaruh besar terhadap peningkatan kadar merkuri di atmosfer.

Setelah gas merkuri (Hg0) memasuki atmosfer, ia teroksidasi menjadi

merkuri anorganik (Hg2+), jauh lebih tidak mudah menguap, lebih larut dalam air

dan jauh lebih reaktif daripada gas merkuri (Hg0). Akibatnya Hg2+ dengan cepat

diendapkan ke permukaan tanah dan air. Perubahan bentuk Hg0 ke Hg2+

merupakan proses transformasi kimia yang aktif meskipun dipahami bahwa

prosesnya dipengaruhi oleh berbagai faktor termasuk keberadaan oksidan (radikal

ozon dan hidroksil), halida (brom dan klor) dan suhu (WHO, 2010).

2. Merkuri dalam Sistem Air Tawar

Merkuri yang ada di atmosfer mencapai ekosistem air tawar melalui

pengendapan langsung ke permukaan air danau, melalui erosi tanah, limpasan

daerah aliran sungai, serta pembuangan dari sumber antropogenik seperti pabrik

pengolahan air limbah, klor-alkali dan industri lain yang menggunakan merkuri

dan drainase tambang. Endapan merkuri basah dan kering yang masuk ke daerah


11

aliran sungai dan permukaan air danau sebagian besar adalah Hg2+. Sebagian

besar merkuri terlarut dalam bentuk koloid dan partikulat lain dalam sistem air

tawar bersifat anorganik, Merkuri dalam sistem air tawar dapat mengalami

perubahan bentuk yang dilakukan oleh beberapa jenis bakteri anaerob sulfat dan

pereduksi besi menjadi zat merkuri organik yaitu metil merkuri dan dimetil

merkuri. Metil merkuri dan dimetil merkuri dapat dibiomagnifikasi menjadi

tingkat-tingkat yang lebih tinggi dan berpotensi toksik dalam jaringan makanan

dalam kondisi fisik dan kimia tertentu.

Merkuri akan kembali ke atmosfir dari sistem air melalui penguapan Hg0,

aerosolisasi Hg2+ dan sejumlah kecil metil merkuri dari permukaan air tawar.

Selain itu ada penghilangan sebagian Hg dari sistem air tawar dari sekuestrasi

metil merkuri dalam biota yang dikeluarkan dari ekosistem melalui jaringan

makanan. Meskipun demikian ada peningkatan dalam konsentrasi merkuri dalam

sistem air tawar di sebagian besar wilayah dunia. Tingkat pengendapan atmosfer

yang tidak merata dari satu lokasi ke lokasi lain disebabkan efisiensi perubahan

bentuk merkuri anorganik yang tidak sama menjadi metilmerkuri dan akan

menghasilkan bahaya kontaminasi metil merkuri melalui konsumsi ikan (WHO,

2010).

3. Merkuri dalam Sistem Kelautan

Proses keberadaan merkuri dalam sistem air laut hampir sama dengan

sistem air tawar dimana Hg2+ dapat diendapkan ke laut dengan pengendapan

kering atau basah dan merkuri Hg0 dengan pengendapan basah. Berbeda dengan

sistem air tawar sebagian besar sumber merkuri yang berada dilaut berasal dari

pengendapan atmosfer, meskipun ada beberapa contoh spesifik seperti pelepasan


12

merkuri dari industri atau pertambangan yang masuk ke dalam sistem kelautan

(seperti Teluk Minimata di Jepang). Secara umum Hg2+ yang diendapkan ke

lautan dapat direduksi menjadi Hg0, diadsorpsi ke partikel atau koloid atau

biometilasi. Reduksi Hg2+ ke Hg0 dapat dimediasi secara biologis, fotokimia dan

proses oksidasi. Akibatnya Hg0, Hg2+, metil merkuri, dan dimetil merkuri

semuanya dapat ditemukan di lautan.

Pertukaran merkuri di permukaan laut dianggap cepat. Pengukuran oleh

Mason dan Sheu (2002) telah membuktikan kompleksitas siklus merkuri pada

permukaan laut dan atmosfer karena adanya peningkatan oksidasi Hg0 dan

pembentukan gas reaktif merkuri di lapisan batas laut. Para peneliti

memperkirakan bahwa endapan kering gas reaktif merkuri ke laut adalah 35% dari

total sumber merkuri ke laut. Evaluasi ulang lebih lanjut dari siklus merkuri

global menunjukkan bahwa ada transfer merkuri dari lingkungan darat ke laut dan

konsentrasi merkuri pada laut dalam telah meningkat beberapa persen per tahun.

Demikian pula sumber antropogenik di darat telah meningkatkan jumlah merkuri

pada lapisan permukaan bumi dengan adanya akumulasi di lingkungan darat yang

menyumbang hampir 80% dari sumber aktivitas manusia. (WHO, 2010).

4. Merkuri di Tanah dan Sedimen

Merkuri ada secara alami di sedimen dan tanah dengan konsentrasi

tertentu tergantung pada karakteristik geologi regional. Kerak bumi hanya

mengandung sejumlah kecil merkuri dengan konsentrasi rata-rata 0,08 bagian per

juta (ppm). Namun ada banyak terdapat pada sinabar (HgS) yang mengandung

0,1-2,5% merkuri lebih dari 12.000 kali rata-rata kelimpahan merkuri kerak bumi.

Peningkatan konsentrasi merkuri dalam tanah permukaan juga dapat dihasilkan


13

dari pengendapan atmosfer jangka panjang Hg2+, limpasan permukaan dan

kontaminasi industri. Setelah disimpan di tanah Hg2+ diubah menjadi senyawa

merkuri yang kompleks dengan anion organik dalam bahan organik atau tanah

liat. Sebagian besar merkuri dalam tanah terikat dalam matriks organik dan

anorganik menyebabkan tidak mudah bergerak atau rentan terhadap pencucian

melalui limpasan air kecuali dalam kasus gangguan ekologis yang luas, seperti

penggundulan hutan. Penyerapan merkuri ke matriks partikulat tergantung pada

pH serta konsentrasi klorida dan bahan organik. Secara umum dengan

meningkatnya pH dan Cl penyerapan merkuri ke bahan organik berkurang.

Pengaruh pH dan Cl akan melemah di mana tanah mengandung bahan organik

yang tinggi.

Sejumlah besar Hg0 dalam tanah mudah menguap ke atmosfer atau hilang

melalui penyerapan bakteri atau botani. Merkuri dapat diserap oleh dedaunan

yang dapat masuk ke dalam tanah setelah jatuhnya daun. Studi penelitian telah

menunjukkan bahwa tanaman tertentu dapat mengambil merkuri, seperti tanaman

padi yang secara efektif menyerap metil merkuri yang ditemukan di tanah sawah.

(WHO, 2010).

5. Biometilasi Merkuri

Dalam siklus merkuri dilingkungan air, metilasi merkuri anorganik (Hg2+)

dianggap sebagai salah satu transformasi yang paling penting secara toksikologis

karena tidak hanya ketersediaan hayati dan toksisitas merkuri yang meningkat

tetapi pada kenyataannya paparan metilmerkuri terhadap manusia juga meningkat.

Proses metilasi merkuri melibatkan mikoorganisme yang mampu mengoksidasi

dan mereduksi merkuri. Salah satu bentuk metilasi merkuri adalah metil merkuri.


14

Metil merkuri terakumulasi oleh ikan dan mamalia laut lainnya melalui pola

rantai makanan dan akan mencapai konsentrasi tertinggi pada spesies predator

ikan besar. Proses paparan yang terjadi ketika manusia mengkonsumsi ikan.

Mikroorganisme tertentu juga dapat melakukan proses demetilasi metil merkuri

(CH3Hg+) dengan mengubah Hg2+ menjadi Hg0 dan akan kembali menguap ke

udara. Dengan demikian, mikroorganisme diyakini memainkan peran penting

dalam keberadaan merkuri di lingkungan (Annual, 2014).

Proses metilasi merkuri dapat dibagi menjadi dua proses yaitu :

a. Metilasi Merkuri

Metilasi merkuri terjadi ketika merkuri anorganik (Hg2+) dikonversi

menjadi metil merkuri oleh bakteri pereduksi sulfat oleh donor grup metil. Secara

luas diklaim bahwa metilasi merkuri dalam sistim lingkungan air merupakan

mekanisme utama pembentukan metil merkuri dan diduga bahwa metilasi merkuri

dilakukan oleh mikroorganisme yang dipengaruhi methylcobalamin, turunan

vitamin B12 (methylcorrinoid) dan proses tersebut melibatkan transfer

nonenzimatik metil gugus metilkobalamin ke ion merkuri. Bakteri pereduksi

sulfat adalah metilator utama merkuri di lingkungan meskipun proses metilasi

merkuri oleh bakteri pereduksi sulfat belum dapat didefinisikan dengan baik.

Tiga jalur telah diusulkan sebagai proses metilasi merkuri yaitu pertama

jalur asetil koenzim dapat terjadi di mana metil-tetrahidrofolat sebagai donor grup

metil. Kedua jalur metabolisme asetat menggunakan enzim metiltransferase.

Ketiga sintesa metionin.Tak satu pun dari jalur ini yang menjelaskan proses

metilasi secara memuaskan yang dilakukan oleh bakteri pereduksi sulfat. Lebih

dari satu mekanisme faktor metilasi walaupun jalur yang sesungguhnya untuk


15

menjelaskan secara detail proses metilasi merkuri masih belum sempurna.

Metilasi merkuri dipengaruhi oleh beberapa faktor dalam kondisi yang

menguntungkan seperti suhu cukup tinggi, kondisi asam, salinitas rendah,

konsentrasi sulfida rendah, kondisi anaerob dan tingkat tinggi bahan organik

terlarut. Perlu dicatat bahwa faktor-faktor ini tidak berdiri sendiri dan sering

berinteraksi untuk membentuk sistem sinergis yang kompleks serta efek antagonis

(Annual, 2014; Zillioux, 2015)

b. Demetilasi Merkuri

Demetilasi metil merkuri meliputi proses biotik dan abiotik. Dalam proses

demetilasi, reduksi metil merkuri dikonversi menjadi Hg0 sedangkan oksidasi

demetilasi menghasilkan produk Hg2+. Melalui jalur mer-detoksifikasi lingkungan

air mengalami degradasi yang disebabkan oleh gen bakteri mer-operon. Proses

detoksifikasi melibatkan gen mer-B yang mengkode enzim organomercurial-lyase

untuk memecah metil merkuri membentuk metana dan Hg2+ sebagai produk

sampingan sementara gen mer-A mereduksi Hg2+ menjadi Hg0 dan dengan

demikian metil merkuri dikonversi. ke suatu bentuk yang dapat dengan mudah

berubah dalam suatu lingkungan (Annual, 2014).

c. Faktor-faktor yang mempengaruhi proses metilasi

Menurut Lange, dkk., (1993) pada sebuah penelitian dengan menggunakan

metilmerkuri pada ikan largemouth bass di 53 danau Florida terbukti berkorelasi

positif dengan usia ikan (korelasi terkuat) dan ukuran ikan dan berkorelasi dengan

alkalinitas, kalsium, klorofil ɑ, konduktansi, kadar magnesium, pH, kadar nitrogen

total dan fosfor total. Dalam penelitian ditemukan bahwa pH menyumbang 41%


16

sementara klorofil ɑ dan alkalinitas menyumbang 45% yang meyebabkan kadar

merkuri lebih tinggi pada usia ikan yang lebih lama.

Menurut Hickey, dkk., (2005) mempelajari efek kimia air pada Hg pada

747 ikan spesies campuran dari 31 danau Ontario dan 11 danau di Nova Scotia,

Kanada. Penelitian tersebut membuktikan pengaruh pH air terhadap tingginya

kadar metil merkuri pada ikan sebesar 77,7% dalam variasi konsentrasi metil

merkuri, sementara kadar metil merkuri pada ikan dengan karbon organik terlarut

(DOC) hanya menyumbang 2,7% dari variasi konsentrasi metil merkuri. Dari

hasil penelitian tersebut menyimpulkan bahwa dengan mengurangi hujan asam

dan adanya mitigasi akan mengurai kadar pH dan secara signifikan mengurangi

kadar Hg dalam lingkungan air (Zillioux, 2015).

6. Bioakumulasi Merkuri

Bioakumulasi adalah penyerapan bersih kontaminan dari waktu ke waktu

dalam suatu organisme yang mengalami paparan terus menerus. Tingkat serapan

metil merkuri yang lebih besar dari tingkat eliminasi dalam jaringan tubuh

menjelaskan mengapa bioakumulasi metil merkuri yang terjadi pada organisme

laut meningkat seiring dengan bertambahnya usia. Weiner dkk. 2003; Das dkk,

2003 menjelaskan ada beberapa faktor biologis dan lingkungan yang dapat

mempengaruhi penyerapan dan akumulasi metil merkuri dalam jaringan makanan

lingkungan air yang meliputi usia, ukuran tubuh, preferensi makanan, posisi

trofik, jenis kelamin, tingkat metabolisme dan keanekaragaman geografis. Ikan

yang lebih besar atau lebih tua akan memakan ikan kecil yang mengandung metil

merkuri pada tingkat trofik yang lebih tinggi mengalami bioakumulasi dan


17

biomassa lebih banyak dibandingkan ikan yang lebih kecil yang mengandung

metil merkuri pada tingkat trofik yang lebih rendah.

Variasi kadar metil merkuri pada ikan juga dapat dijelaskan oleh

perbedaan dalam strategi pemberian makan, mobilitas, lokasi mencari makan serta

perilaku migrasi. Bioakumulasi berkorelasi baik dengan meningkatnya ukuran

tubuh dan usia. Biomagnifikasi di sisi lain menunjukkan peningkatan konsentrasi

merkuri antara tingkat konsumen berturut-turut dalam rantai makanan. Predator

tingkat tinggi biasanya memiliki konsentrasi merkuri yang lebih tinggi bila

dibandingkan dengan konsumen primer (Annual, 2014).

2.1.3 Sumber Merkuri di Lingkungan

Merkuri adalah unsur alami dan banyak ditemukan di seluruh dunia.

Banyak sumber merkuri alami menciptakan tingkat dasar pada lingkungan yang

telah ada sejak itu jauh sebelum manusia muncul. Merkuri terkandung dalam

banyak mineral, termasuk cinnabar, bijih yang ditambang untuk menghasilkan

merkuri. Sebagian besar permintaan merkuri saat ini dipenuhi oleh pasokan dari

sumber industri dan stok pertambangan merkuri. Merkuri juga hadir sebagai

pengotor dalam banyak mineral berharga ekonomis lainnya, khususnya logam

non-ferro, dan dalam bahan bakar fosil, khususnya batubara.

Aktivitas manusia, terutama penambangan dan pembakaran batu bara telah

meningkatkan mobilisasi merkuri ke lingkungan dengan meningkatkan jumlah di

atmosfer, tanah, air tawar, dan lautan. Sebagian besar dari emisi kegiatan manusia

dan pelepasan merkuri ini terjadi sejak 1800, terkait dengan revolusi industri yang

didasarkan pada pembakaran batu bara, peleburan bijih logam dan demam emas di

berbagai bagian dari dunia (UNEP, 2013).


18

Ada beberapa sumber merkuri di lingkungan :

1. Sumber emisi alami merkuri

Merkuri dalam kerak bumi dapat dilepaskan dengan berbagai cara ke

udara, air dan darat. Pelapukan alami batu-batuan yang mengandung merkuri

bersifat terus menerus dan ada di mana-mana sehingga memungkinkan merkuri

dilepaskan ke udara dan mengendap ke danau, sungai dan tanah. Gunung berapi

memancarkan merkuri saat meletus. Aktivitas panas bumi juga dapat melepaskan

merkuri dari bawah tanah dan memancarkannya ke atmosfer dan lautan. Beberapa

laporan menunjukkan bahwa sumber-sumber emisi alam menyumbang sekitar

10% dan sekitar 55 % re-emisi atau re-mobilisasi proses alami yang terjadi

sekitar 5500-7550 ton/tahun (UNEP, 2013).

2. Pembakaran batu bara

Pembakaran batu bara sedikit banyaknya menggunakan bahan bakar fosil

adalah salah satu sumber antropogenik paling signifikan menghasilkan emisi

merkuri ke atmosfer. Batubara tidak mengandung merkuri dalam konsentrasi

tinggi tetapi gabungan dari sejumlah besar batubara yang terbakar membuktikan

bahwa sebagian besar merkuri yang ada dalam batubara dipancarkan ke atmosfer

dan menghasilkan sumber emisi yang besar dari sektor ini. Kandungan merkuri

batubara sangat bervariasi dan menunjukkan tingkat ketidakpastian dalam

memperkirakan emisi merkuri dari pembakaran batubara (UNEP, 2013).

3. Penambangan, peleburan, produksi logam besi dan non-besi

Penambangan, peleburan, produksi logam besi dan non-besi merupakan

sumber besar emisi merkuri secara global ke udara dan pelepasan merkuri ke

lingkungan air. Dalam penambangan dan pengolahan logam sebagian besar


19

merkuri dipancarkan, diendapkan dalam air dan tanah atau dijual untuk digunakan

dalam berbagai produk dan akan menjadi sumber merkuri secara antropogenik

yang terkait dengan penggunaan yang disengaja. Jumlah produksi logam merkuri

yang relatif kecil membuat penambangan merkuri jauh lebih kecil menghasilkan

emisi merkuri dibandingan penambangan logam lain yang memiliki bahaya

merkuri (UNEP, 2013).

4. Produksi semen

Produksi semen pada umumnya menggunakan bahan bakar fosil untuk

memanaskan bahan-bahan yang dibutuhkan untuk membuat semen. Bahan bakar

fosil merupakan sumber utama antropogenik dari emisi merkuri. Baik bahan baku

ataupun bahan bakar mungkin mengandung merkuri dan menyebabkan emisi.

Jumlah merkuri yang terlibat sangat bervariasi tergantung kandungan merkuri

yang terdapat pada bahan bakar fosil dan bahan baku. Di beberapa negara dalam

memproduksi semen, juga meningkatkan penggunaan bahan bakar alternatif yang

lain dan ini menyebabkan limbah yang mungkin mengandung merkuri dan dapat

menambah emisi dari pembakaran semen (UNEP, 2013).

5. Pemurnian minyak

Pemurnian minyak melepaskan merkuri karena cadangan minyak

diketahui mengandung merkuri pada konsentrasi rendah. Merkuri dihilangkan dari

sebagian besar produk minyak bumi dan gas alam sebelum pembakaran dan

karena itu emisi saat pembakaran menjadi rendah. Sebagian besar merkuri dalam

minyak mentah dikaitkan dengan limbah padat yang dibuang di tempat

pembuangan sampah. Namun, emisi dan pelepasan selama penyulingan minyak


20

mentah memang terjadi dan ini telah dikuantifikasi untuk pertama kalinya dalam

laporan tahun 2010 (UNEP, 2013).

6. Artisanal dan penambangan emas skala kecil emas

Artisanal dan penambangan emas skala kecil adalah sumber utama emisi

dan pelepasan merkuri di seluruh dunia. Dalam Artisanal dan penambangan emas

skala kecil, penambang menggunakan merkuri untuk membuat amalgam yang

memisahkan emas dari bahan lain. Mereka kemudian harus memisahkan merkuri

dari emas. Menghitung emisi dari sektor ini memberi tantangan khusus karena

Artisanal dan penambangan emas skala kecil tersebar luas dan seringkali tidak

diatur dan mungkin ilegal.

Ketidakpastian tentang perkiraan emisi dari sektor artisanal dan

penambangan emas skala kecil cukup tinggi memberikan respon yang kurang baik

bagi para penambang. Penambang pada umumnya miskin dan memiliki sedikit

kesadaran tentang bahaya merkuri dan perangkat pengontrol polusi yang sulit

diperoleh. Hal ini menjadi suatu alasan mendasar bahaya salah satu kontaminan

yang masuk dalam tubuh manusia adalah kontaminan merkuri melalui

penambangan (UNEP, 2013).

7. Limbah dari produk konsumen

Limbah dari produk konsumen yang mengandung merkuri banyak terdapat

di tempat pembuangan sampah atau insinerator. Merkuri masih digunakan dalam

berbagai produk, termasuk baterai, cat, sakelar, perangkat listrik dan elektronik,

termometer, pengukur tekanan darah, lampu hemat energi dan neon, pestisida,

fungisida, obat-obatan, dan kosmetik. Setelah digunakan banyak produk yang

mengandung merkuri menjadi limbah.


21

Merkuri dalam tempat pembuangan sampah perlahan-lahan dapat

dimobilisasi kembali ke lingkungan, limbah yang dibakar dapat menjadi sumber

utama merkuri ke atmosfer terutama dari pembakaran yang tidak terkontrol.

Untuk itu perlu adanya usaha untuk menghindari paparan merkuri melalui

teknologi alat yang canggih. Teknologi alat yang canggih seperti Insinerator

dengan kontrol canggih memiliki emisi rendah. (UNEP, 2013).

8. Proses industri

Merkuri digunakan dalam sejumlah proses industri. Penggunaan industri

utama adalah dalam industri klor-alkali di mana teknologi sel merkuri dapat

digunakan dalam produksi klorin dan kaustik soda. Merkuri juga digunakan

sebagai katalis dalam produksi vinil klorida monomer (VCM) dari asetilena.

Pelepasan merkuri ke sistem air sebagai hasil dari produk industri saat ini timbul

dari banyak produk sampingan atau limbah. Seperti halnya pelepasan emisi ke

atmosfer, pelepasan merkuri dalam air berasal dari dua sumber utama. Pertama,

merkuri dilepaskan dengan air buangan dari tempat di mana merkuri digunakan.

Kedua, merkuri dapat larut ke dalam air dari tempat pembuangan yang

mengandung merkuri dalam limbah (UNEP, 2013).

Data yang dikeluarkan oleh United Nation Environment Programme

(UNEP) atau organisasi Program lingkungan Perserikatan Bangsa-Bangsa

menjelaskan dalam laporan kegiatan Global Mercury Asessment 2013 bahwa ada

sekitar 5500 - 8900/tahun yang terdapat dalam lingkungan. Sumber merkuri

dilingkungan dapat dijelaskan pada Tabel 2.1 dan Tabel 2.2.


22

100

Tabel 2.1 Sumber Merkuri di Lingkungan

Tabel 2.2 Sumber Merkuri Kegiatan Antropogenik

No

Sumber Merkuri

Emisi

(ton)

Rata-rata

Emisi (ton)

Persen

(%)

1 Pembakaran Batu Bara 474 304 - 678 24

2 Pembakaran minyak dan gas alam 9,9 4,5 – 16,3 1

3 Produksi utama logam besi 45,5 20,5 - 241 2

4 Produksi utama bukan logam besi

(Al, Cu, Pb, Zn)

193 82 - 660 10

5 Pertambangan emas skala besar 97,3 0,7 - 247 5

6 Tambang produksi merkuri 11,7 6.9 – 17,9 <1

7 Produksi semen 173 65.5 - 646 9

No

Sumber Merkuri

Jumlah (ton)

Persen

(%)

1 Sumber alami

• Kerak Bumi

• Gunung Berapi

< 600

80 - 600

10,32

2 Re-emisi dan Re-mobilisasi

• Penguapan tanah dan tumbuhan

• Lautan

• Pembakaran Hutan

1700 – 2800

2000 - 2950

300 - 600

54,62

3 Antropogenik 1010 - 4070 35,06

Total 80 - 11620


23

8 Pemurnian minyak 16 7,3 – 26,4 1

9 Daerah yang terkontaminasi 82,5 70 -95 4

10 Pertambangan skala emas kecil 724 410 - 1040 37

11 Industri klor-alkali 28,4 10,2 – 54,7 1

12 Limbah produk konsumen 95,6 23,7 - 330 5

13 Kremasi (amalgam gigi) 3,6 0,9 – 11,9 <1

Total 1960 1010 - 4070 100

Sumber : (UNEP, 2013)

2.1.4 Sumber Paparan Merkuri pada Manusia

1. Industri Pertambangan

Merkuri juga digunakan dalam berbagai proses industri. Emisi merkuri

yang terkait dengan pertambangan emas industri / skala besar dan penambangan

emas tradisionil/skala kecil sangat signifikan di sejumlah negara. Penambangan

emas bertanggung jawab dalam beberapa sumber emisi dari bahan baku yang

digunakan. Beberapa metode produksi emas menggunakan merkuri untuk

melarutkan emas dari bijih dan endapan alluvial menghasilkan pelepasan

sekunder substansial ketika kontrol emisi tidak ada.

Penambangan Emas tradisional / skala kecil menghadirkan tantangan

khusus karena biasanya penambangan berskala kecil tersebar dan seringkali ilegal

dan tidak diatur. Selain itu, para penambang pada umumnya miskin, memiliki

sedikit sumber daya untuk berinvestasi dalam menyediakan perangkat untuk

mengontrol polutan merkuri dan mungkin memiliki sedikit kesadaran tentang

bahaya merkuri meskipun telah mengalami efek neurologis dan lainnya.


24

Diperkirakan 10-15 juta orang di 55 negara terlibat dalam penambangan

emas skala kecil yang menghasilkan 20-30% emas dunia dengan 85-90 juta orang

lainnya secara tidak langsung bergantung pada kegiatan ini (UNEP, 2008).

2. Ikan dan Kerang

Konsumsi ikan dan kerang adalah sumber makanan utama dari paparan

merkuri. Merkuri anorganik dikonversi menjadi metilmerkuri organik yang lebih

beracun oleh bakteri melalui proses metilasi. Metil merkuri kemudian meningkat

dalam rantai makanan yang dimakan oleh organisme kecil yang kemudian

dikonsumsi oleh ikan dan kerang dan terakumulasi dalam jaringan makanan.

Spesies ikan dengan konsentrasi merkuri tertinggi adalah king mackerel, hiu dan

swordfish masing-masing sebesar 0,73, 0,97, dan 0,99 ppm (mg/kg). Ikan tuna

dikenal mengakumulasi merkuri tingkat tinggi (UNEP, 2008).

3. Bola Lampu Fluoresensi.

Penggunaan bola lampu berflouresensi telah meningkat secara dramatis

beberapa tahun terakhir. Daya tarik lampu bola lampu berflouresensi disebabkan

oleh peningkatan efisiensi energi yang signifikan (75%) dibandingkan dengan

lampu pijar biasa dan umur penggunaannya yang lebih besar. Bola lampu

berflouresensi dilaporkan memiliki 10 kali lipat umur pakai dibandingkan dengan

lampu pijar biasa. Dalam 4 hari, bola lampu fluoresensi 13-watt melepaskan

sekitar 30% merkuri dengan sisanya tinggal pada bola lampu tersebut.

Membersihkan pecahan kaca bola lampu berflouresensi setelah kerusakan

mengurangi pelepasan merkuri sekitar dua pertiga. Risiko dapat dikurangi dengan

mengingat bahwa pembangkit listrik menghasilkan 10 mg merkuri untuk

menghasilkan listrik yang dibutuhkan untuk menyalakan sebuah bola lampu pijar


25

biasa, sedangkan bola lampu berflouresensi mengandung 2,4 mg merkuri (Bose,

2010).

4. Tanah

Sumber endapan merkuri di permukaan tanah dan dalam tanah dapat

berupa endapan merkuri dari udara, produk limbah, seperti baterai, sakelar, dan

limbah obat, pembuangan bahan yang diinginkan atau tidak diinginkan dari

industri, penyebaran lumpur limbah yang mengandung kontaminan , tempat

pembuangan sampah, penggunaan produk padat dari pembakaran limbah,

pembakaran batu bara sebagai bahan konstruksi dan tambalan amalgam (UNEP,

2008).

5. Kesehatan.

Ada 3 sumber utama merkuri dalam perawatan kesehatan. Sumber pertama

adalah amalgam gigi, yang mengandung unsur merkuri hingga 50%. Kontribusi

kontaminasi paparan terjadi di udara ketika mayat dikremasi/dibakar. Di beberapa

Negara amalgam diganti karena prinsip kehati-hatian dengan bahan bebas

merkuri. Di negara lain amalgam gigi masih digunakan, terutama karena aspek

finansial (UNEP, 2008).

Sumber merkuri kedua dalam layanan kesehatan adalah vaksin yang

diaktifkan multidosis yang mengandung etil merkuri sebagai pengawet. Sumber

ketiga merkuri dalam perawatan kesehatan adalah penggunaan alat pengukur yang

mengandung merkuri, seperti termometer dan perangkat lainnya. Termometer

yang mengandung merkuri, sphygmomanometer, beberapa barometer,

manometer, sakelar dan pengukur yang digunakan dalam instrumen medis,

termostat, dan beberapa tabung medis menjadi perhatian di lingkungan rumah


26

sakit karena mereka dapat melepaskan uap merkuri unsur bila rusak. Produksi

termometer yang mengandung air raksa menurun tetapi masih diminati (Bose,

2010).

6. Praktek Tradisional.

Beberapa praktik tradisional menggunakan merkuri, tetapi tingkat

penggunaannya belum diketahui. Merkuri unsur dan anorganik digunakan dalam

beberapa terapi tradisional dan praktik keagamaan, misalnya, Santeria atau

Espritismo atau kedokteran Ayurvedia. Untuk alasan ritual, merkuri dapat dibakar

dalam lilin, tersebar di ruangan, dibawa sebagai jimat, atau digunakan dengan cara

lain. Ada banyak laporan keracunan logam berat dengan merkuri dari obat

Ayurvedia, yang digunakan untuk anak-anak dan orang dewasa. Penggunaan

merkuri yang mengandung krim dan sabun pencerah kulit, perawatan rambut, dan

produk kosmetik lainnya merupakan sumber penting dalam beberapa budaya,

meskipun tingkat paparannya sulit diperkirakan (Bose, 2010)

7. Ikan

Ikan dan makanan laut lainnya adalah sumber paparan metil merkuri

manusia yang paling umum. Merkuri dilepaskan ke lingkungan air melalui proses

alami dan sumber antropogenik. Di antara senyawa merkuri organik, metil

merkuri adalah bentuk paling beracun di lingkungan akuatik dan mengalami

metilasi oleh bakteri dalam sedimen dasar. Merkuri dan metil merkuri cenderung

terakumulasi secara biologis dalam organisme kecil dan biomagnetik dalam ikan

predator besar di bagian atas rantai makanan. Oleh karena itu, konsumsi ikan dan

makanan laut adalah rute paparan penting untuk merkuri yang berdampak buruk

pada manusia. Chouvelon, dkk., 2009 melaporkan bahwa Badan Pengawas Obat


27

dan Makanan (FDA) Amerika Serikat dan lembaga lainnya telah menyarankan

bahwa wanita usia subur, wanita hamil, ibu menyusui dan anak-anak benar-benar

menghindari ikan tertentu atau makanan laut lainnya yang memiliki tingkat

merkuri tinggi (Al-Mughairi, 2013).

2.1.5 Sumber Merkuri dalam Makanan

1. Merkuri dalam ikan

Kontaminasi merkuri terhadap lingkungan laut telah lama dikenal sebagai

masalah lingkungan yang serius. Diakui secara luas bahwa aktivitas manusia

secara antropogenik meningkatkan muatan merkuri di atmosfer pada tingkat lokal,

regional dan bahkan belahan bumi, yang mengarah pada kontaminasi lingkungan.

Pertumbuhan populasi dan urbanisasi telah berkontribusi terhadap peningkatan

kadar merkuri di atmosfer secara signifikan dan telah diperkirakan bahwa merkuri

yang berasal dari aktivitas antropogenik di atmosfer mencapai 70% dari total

merkuri di atmosfer. Deposisi atmosfer merkuri yang terjadi sering kali

merupakan sumber meruri yang dominan ke sistem air daa meningkatkan

konsentrasi merkuri pada ikan (Voegborlo dan Akagi, 2007).

Ikan adalah komponen penting dari makanan di seluruh dunia.

Diperkirakan 1 miliar orang mengandalkan ikan sebagai sumber utama protein

hewani. Semua ikan mengandung merkuri dalam dagingnya dan hampir semuanya

adalah metilmerkuri organik. Jumlah metilmerkuri dalam ikan sangat bervariasi

dan tergantung pada jenis makanan dan usia ikan. Ikan predator yang lebih besar

seperti hiu, marlin dan ikan todak umumnya mengandung kadar metilmerkuri

yang lebih tinggi, tetapi sebagian besar ikan memiliki kadar metil merkuri yang

lebih rendah dari 0,5 mg/kg.


28

Ada beberapa bukti bahwa konsentrasi metil merkuri yang ada pada ikan

laut tidak berubah selama 90 tahun terakhir meskipun terjadi peningkatan

pelepasan merkuri secara antropogenik ke lingkungan. Individu yang

mengkonsumsi ikan, terutama ikan predator besar secara teratur akan mencapai

kadar merkuri pada rambut 10 mg/kg (Myers, dkk., 2007).

Kadar merkuri dalam ikan di berbagai Negara dapat dilihat dalam Tabel 2.3

Tabel 2.3 Kadar Merkuri dalam Ikan di Beberapa Negara

Jenis Ikan Sumber

Metode/Teknik

Kadar

Merkuri

(mg/kg)

Referensi

Ikan Tuna

Samudera

Hindia CV-AAS 0,39

Handayani, dkk.,

2019

Samudera

Pasifik CV-AAS 0,21

Handayani, dkk.,

2019

Amerika - 0,386 FDA, 2014

Brazil

Mercury

Analyzer

CV-AAS

0,240 Cladis, 2014

Vietnam

Mercury

Analyzer

CV-AAS

0,108 Cladis, 2014

Pelabuhan

Ratu Jawa

Barat

CV-AAS 0,076 Widiastuti, 2010

Iran CVAAS-FIAS 0,010 –

0,401 Rahimi, 2010

Saudi

Arabia CVAAS-FIAS

0,18 –

0,86 Rahimi, 2010

Italia CV-AAS 0,048 Russo, 2013

Malaysia CV-AAS 0,004-

0,500 Ahmad, 2014

Ikan

Tongkol

Pasar Ikan

Sidoarjo

Surabaya

HVG-AAS 0,010-

0,235 Hikmawati, 2006

Pantai Utara

Jawa Kendal

CV-AAS

0,070

Hananingtyas, 2017 Pantai Utara

Jawa

Rembang

0,180


29

Pantai Utara

Jawa Tuban 0,120

Pantai Utara

Jawa Batang 0,080

Pantai Utara

Jawa Jepara 0,140

PPI

Kwandang

Sulawesi CV-AAS

0,18

Dai, 2013 PPI

Gentuma

Sulawesi

0,28

Ikan

Cakalang


Portugal Mercury

Analyzer

0,049-

0,219 Viera, 2016

Sri Lanka CV-AAS 0,12 Jinadasa, 2015

PPI

Kwandang

Sulawesi CV-AAS

0,15

Dai, 2013 PPI

Gentuma

Sulawesi

0,08

Hongkong Mercury

Analyzer 0,143 Chung, dkk., 2015

Ikan

Tenggiri

Pantai

Kenjeran

Surabaya

CV-AAS 0,019 Fithriyah, 2016


Malaysia CV-AAS 0,368 Ahmad, 2014

Taiwan Mercury

Analyzer 0,120

Chen dan Chen,

2006

Teluk

Meksiko

Amerika

Mercury

Analyzer

CV-AAS

0,318 Cladis, 2014

Bantul

Yogyakarta

Mercury

Analyzer 0,317 Suratno, 2017

Ikan

Kerapu

Gorontalo

Utara CV-AAS 0,3154 Mahmud, dkk.,2017

PTI Bilato

Gorontalo CV-AAS 0,25 Datuela, 2015


Hongkong Mercury


El Salvador Mercury

Analyzer

CV-AAS

0,074

Cladis, 2014 Mexico 0,365

Amerika 0,165

Ikan Gorontalo CV-AAS 0,6534 Mahmud, dkk.,2017


30

2. Merkuri dalam Beras

Beras adalah makanan sereal dengan produksi tertinggi kedua di dunia

dengan produksi tahunannya mencapai 410 juta ton. Negara Asia sejauh ini

merupakan produsen beras terbesar sekitar 90% dari produksi dunia dan konsumsi

beras. Beras adalah makanan pokok bagi lebih dari separuh populasi dunia,

berkontribusi tidak hanya hingga sekitar 80% dari asupan energi di beberapa

daerah tetapi dapat menjelaskan proporsi signifikan dari dosis harian protein dan

zat gizi mikro (Hels, dkk., 2003).

Penelitian terhadap jumlah total merkuri dan metil merkuri yang

terakumulasi dalam beras, tanah dan air dari empat sawah yang berbeda di

Palawan, Filipina. Dari hasil penelitian yang diperoleh total merkuri dengan

menggunakan alat Spektrofotometri Serapan Atom (AAS) adalah Tagburos 8,71

Kakap

Merah

Utara


PTI Bilato

Gorontalo CV-AAS 0,27 Datuela, 2015

Hongkong Mercury



Kanada

Mercury

Analyzer

CV-AAS

0,088 Cladis, 2014

Kosta Rika

Mercury

Analyzer

CV-AAS

0,017

Cladis, 2014

Ikan

Manyung - - - -

Ikan Pari

Teluk

Jakarta CV-AAS 0,39-0,633 Budiyanto, 2015


Ikan

Bawal - - - -

Ikan

Kembung



Ikan

Sardin Amerika - 0,13 FDA, 2014


31

ng/g ; Santa Lourdes 11,5 ng/g ; San Jose 3,98 ng/g ; Irawan ; 2,86 ng/g

sedangkan kadar metilmerkuri yang diukur menggunakan alat GC-CVAFS adalah

Tagburos 7,00 ng/g ; Santa Lourdes 6,8 ng/g ; San Jose 3,3 ng/g ; Irawan ; 2,6

ng/g (Elin, dkk., 2015).

3. Merkuri dalam Sayur-sayuran

Komposisi kimia tanah memainkan peran penting dalam komposisi bahan

tanaman. Ketersediaan logam beracun secara keseluruhan di rhizosfer tanah

berkontribusi terhadap kandungan logam dalam sayuran. Aktivitas antropogenik

seperti penambangan emas, industri yang menghasilkan limbah merkuri akan

mempengaruhi kandungan logam pada tanah dimana logam merkuri akan

mengendap dalam tanah yang begitu lama. Sayuran berdaun mengakumulasi lebih

banyak kandungan logam berat dibandingkan dengan sayuran lain karena sayuran

berdaun paling banyak terkena pencemaran lingkungan karena luas permukaan

yang besar (Muhammad, dkk., 2010).

4. Merkuri dalam Buah-buahan

Buah-buahan adalah salah satu sumber makanan manusia. Buah-buahan

mengandung berbagai komponen aktif yang memberikan efek menguntungkan

bagi kesehatan manusia, seperti antioksidan, antikarsinogenik, antimutagenik dan

agen antibakteri (Rohman dkk., 2010).

Logam-logam berat dapat terakumulasi dengan konsentrasi yang berbeda

tergantung pada lokasi panennya dalam buah-buahan. Salah satu logam berat

berbahaya yang dapat membahayakan kesehatan manusia adalah merkuri. Merkuri

telah diketahui menyebabkan efek buruk pada sistem ginjal dan saraf dan dapat


32

melewati penghalang plasenta, dengan efek toksik potensial pada janin (Tong

dkk., 2000).

5. Air minum

Diasumsikan pada tingkat lingkungan udara sekitar 10 ng/m3, asupan rata-rata

harian merkuri anorganik melalui inhalasi akan berjumlah sekitar 0,2 μg. Jika

level dalam air minum 0,5 μg /liter diasumsikan, maka asupan rata-rata harian

merkuri anorganik dari sumber ini akan berjumlah sekitar 1μg. Merkuri dalam air

minum dianggap sebagai sumber paparan merkuri yang kecil kecuali dalam

keadaan polusi yang signifikan (WHO, 2010).

2.1.6 Keracunan Metil Merkuri

Sejarah keracunan metil merkuri dan penelitian perkembangan merkuri

telah digunakan dalam kegiatan industri dan pertambangan selama bertahun-

tahun. Namun, toksisitas metil merkuri dan efeknya tidak diidentifikasi sampai

pertengahan abad ke-20. Dua peristiwa dahsyat yang berdampak parah pada orang

di Jepang dan Irak akhirnya diidentifikasi sebagai keracunan metil merkuri.

Penelitian lebih lanjut telah dilakukan dilakukan pada populasi dengan tingkat

konsumsi makanan laut yang tinggi. Dua penelitian longitudinal yang besar pada

populasi di Kepulauan Faroe dan Seychelles telah lebih jauh menjelaskan efek

paparan metilmerkuri dalam kejadian non-keracunan (Cladis, 2014).

Peristiwa Minamata yang terjadi ketika pabrik kimia lokal (Chisso Corp.

Ltd.) melepaskan air limbah terkontaminasi yang mengandung merkuri tinggi ke

Sungai Minamata. Air yang tercemar mengalir ke Teluk Minamata di mana

merkuri diserap dalam jumlah yang sangat tinggi oleh ikan. Nelayan dan warga

setempat terus mengkonsumsi ikan dalam jumlah besar dan mulai mengalami


33

gejala lemah yang tidak sesuai dengan patologi yang diketahui sebelumnya.

Pasien yang menderita Penyakit Minamata mengalami gejala dengan intensitas

yang bervariasi termasuk penyempitan bidang visual, gangguan sensorik, ataksia,

disartria, gangguan pendengaran, dan tremor. Banyak anak-anak selama peristiwa

ini dilahirkan dengan keterbelakangan mental, refleks primitif, gangguan dalam

perkembangan fisik dan nutrisi, disartria, anggota badan yang cacat, hiperkinesia,

dan hipersalivasi. Sebaliknya ibu mereka mengalami gejala lebih ringan dan

dalam beberapa kasus benar-benar tanpa gejala (Cladis, 2014).

Pada tahun 1972, wabah keracunan metil merkuri yang paling luas terjadi

dalam sejarah terjadi di Irak. Selama tahun itu, 6530 orang dirawat di rumah sakit

dan 459 meninggal karena keracunan metilmerkuri dan ini sangat berbahaya.

Penyebab terjadinya wabah tersebut disebabkan oleh gandum dan biji barley

yang disemprot dengan fungisida metil merkuri, meskipun selama bertahun-tahun

tidak teridentifikasi dan pada akhirnya menunjukkan bahwa metil merkuri

sebagai satu-satunya penyebab toksisitas (Cladis, 2014).

Penelitian terkait konsumsi makanan laut dan hasil kesehatan telah

dilakukan pada banyak populasi di seluruh dunia. Satu negara yang telah

dipelajari dengan baik adalah Kepulauan Faroe di Samudra Atlantik utara. Orang-

orang Faro melakukan penangkapan ikan yang sudah lama dan budaya tradisi

yang berpusat pada perburuan tahunan pada ikan paus. Ikan paus pilot ditangkap

dan diambil daging dan lemaknya yang merupakan unsur penting dari makanan

orang Faroe yang jumlahnya mencapai 9,5% dari semua jenis makan malam. Ikan

Paus pilot mengandung merkuri tingkat tinggi. Peningkatan kadar metil merkuri


34

ini telah menimbulkan kekhawatiran bahwa keracunan metil merkuri dapat terjadi

terutama pada janin dan bayi (Cladis, 2014).

Seychelles adalah negara pulau tropis di Samudera Hindia. Seperti orang-

orang Faroe, para pramusaji menganggap ikan sebagai makanan pokok dengan

konsumsi rata-rata dua belas jenis makanan ikan per minggu. Tetapi tidak seperti

orang-orang Faro, pramusaji tidak mengkonsumsi spesies merkuri yang tinggi.

Asupan ikan yang dikonsumsi mengandung metil merkuri 10 kali lipat lebih

rendah dari pada orang-orang Faroe. Akumulasi ikan yang dimakan oleh

penduduk Seychelles akan mengakibatkan toksifikasi dan dapat menimbulkan

gejala penyakit yang disebabkan keracunan metil merkuri (Cladis, 2014).

Keracunan metil merkuri pada manusia dapat dilihat pada Tabel 2.4.

Tabel. 2.4 Keracunan Metil Merkuri pada Manusia

Negara Sampel Penelitian Temuan Umum

Jepang > 2000 pasien Rambut pasien 4-5 tahun setelah

terpapar merkuri adalah 2,46 ppm-

705 ppm

Irak 81 pasangan ibu-

bayi

Paparan berasal dari biji-bijian

yang semprot dengan fungisida

yang mengandung metilmerkuri.

Merkuri dalam rambut ibu berkisar

antara 1 ppm - 674 ppm.

Kepulauan Faroe di

Samudra Atlantik

utara

> 900 pasangan

ibu-anak

merkuri rambut dan darah ibu

diukur adalah 4,27 ppm dengan

rentang 2,6 - 7,7 ppm.

Negara Seychelles

di Samudera

Hindia

> 700 pasangan

ibu-anak

Merkuri rata-rata pada rambut ibu

kisaran 0,5 – 27 ppm

Selandia Baru 38 anak umur 4

tahun dan 61 anak

umur 6 tahun

Umur 4 tahun. Merkuri pada

rambut ibu hamil tertinggi > 6 ppm,

terendah < 3 ppm

Umur 6 tahun

Merkuri pada rambut ibu hamil

tertinggi > 6 ppm, terendah < 6

ppm

Sumber : (FDA, 2014)


35

2.1.7 Paparan Merkuri pada Manusia

2.1.7.1 Paparan Merkuri pada Pralahir

Paparan anak-anak terhadap merkuri dimulai pada titik pembuahan karena

pemindahan merkuri dari ibu ke embrio dan janin. Karena pajanan pada ibu hamil

menyebabkan pajanan pada janin. Sumber pajanan merkuri pada orang dewasa

merupakan sumber pajanan pada janin. Ada beberapa sumber paparan merkuri

yang telah diakui memiliki arti khusus selama kehamilan, termasuk asupan

makanan ikan dan makanan lain yang mengandung kadar metilmerkuri yang

meningkat. Paparan merkuri selama masa kehamilan khususnya di kalangan

wanita yang tinggal di negara berkembang dapat terjadi pada di lingkungan kerja,

seperti di komunitas penambangan emas. Uap merkuri yang dilepaskan dari

amalgam gigi ibu juga menunjukkan jalur perhatian bagi wanita hamil (WHO,

2010).

2.1.7.2 Paparan Merkuri Selama Masa Bayi

Bayi dapat terpapar senyawa merkuri melalui konsumsi ASI dan produk

tertentu. Bayi juga dapat terpapar produk yang digunakan pada awal kehidupan,

seperti bubuk gigi, sabun, dan organo-merkuri yang digunakan dalam obat-obatan.

Menyusui adalah sumber nutrisi penting bagi bayi dan banyak manfaat kesehatan

dari menyusui telah didokumentasikan. Konsentrasi merkuri dalam ASI lebih

rendah daripada konsentrasi merkuri dalam darah ibu. Sebuah penelitian terhadap

wanita Swedia mendokumentasikan bahwa konsentrasi merkuri ASI adalah 30%

dari konsentrasi darah ibu. Konsentrasi merkuri ASI serta rasio konsentrasi

merkuri darah terhadap ASI bervariasi pada ibu berbeda dimana tergantung yang

terjadi pada ibu.


36

Merkuri organik dan anorganik dapat berkontribusi terhadap merkuri

dalam ASI, walaupun dibutuhkan lebih banyak informasi tentang distribusi

berbagai bentuk merkuri ke dalam ASI. Beberapa penelitian telah melaporkan

bahwa amalgam gigi ibu lebih erat berkorelasi dengan konsentrasi merkuri ASI

dibandingkan dengan metilmerkuri ikan yang dikonsumsi oleh ibu. Merkuri

anorganik pada amalgam gigi tampaknya lebih mudah ditransfer dari darah ibu ke

ASI daripada metil merkuri (WHO, 2010).

2.1.7.3 Paparan Merkuri pada Anak-anak

Anak-anak dapat terpapar merkuri dalam beberapa cara sehingga

paparannya melebihi kebanyakan orang dewasa. Misalnya, anak-anak

mengkonsumsi makanan dalam jumlah yang relatif lebih besar termasuk ikan.

Berdasarkan berat badan paparan metil merkuri melalui ikan akan menghasilkan

protein dan asupan kalori yang lebih besar untuk mendukung berat badan dan

pertumbuhan. Anak-anak dapat terpapar produk tertentu seperti persiapan medis

tertentu, campuran yang digunakan. dalam restorasi gigi, cat yang mengandung

merkuri, sakelar, bola lampu neon rusak dan termometer, kontaminasi lingkungan

dari sumber industri terdekat dan melalui transfer merkuri dari tempat kerja

melalui orang tua mereka (WHO, 2010).

2.1.8 Toksisitas dan Detoksifikasi Merkuri

2.1.8.1 Toksisitas Merkuri

Mekanisme toksisitas merkuri belum diketahui dengan pasti. Diperkirakan

ion merkuri bergerak dari jaringan lemak dan berikatan kuat dengan gugus thiol

(-SH) dari asam amino di dalam protein sehingga akan merusak struktur dan

fungsinya. Otak adalah target utama. Karena otak mengandung lemak tinggi,


37

jumlah sedikit saja merkuri terdapat dalam darh akan terjadi akumulasi di dalam

otak, berinteraksi dengan protein dan merusak fungsi otak. Orang dewasa akan

menderita rasa sakit yang tak menentu pada sekitar mulut, kaki dan tangan diikuti

dengan sudut pandang yang sempit dan koordinasi otot yang hilang. Otak bayi

yang belum lahir lebih rentan dibandingkan dengan otak orang dewasa terhadap

kerusakan akibat merkuri. Metil merkuri menghambat pembelahan dan migrasi

sel-sel saraf dan menganggu perkembangan otak.

Dari hasil beberapa penelitian diketahui bahwa merkuri berpengaruh

terhadap proses ateroskelrosis (penyimpitan dan penebalan pembuluh darah),

karena merkuri dapat memicu pembentukan radikal bebas yang merusak sel. Pria

dewasa dengan kandungan merkuri tinggi (>2,0 ppm) pada rambut berkorelasi

dengan resiko penyakit jantung coroner dan akut infarksi miokardinal 2-3 kali

lipat dibandingkan dengan mereka dengan kandungan merkuri rendah. Diduga

bahwa asupan selenium yang rendah akan menyebabkan pengaruh merkuri makin

dominan/besar untuk meningkatkan resiko melalui pembentukan suatu molekul

kompleks dengan selenium (merkuri selenida). Selenium akan terikat menjadi

bentuk yang tidak aktif. Dengan demikian menurunkan ketersediaan hayati

(bioavabilitas) selenium. Serat pangan dalam makanan juga menjadi faktor yang

berpengaruh, karena serat akan mengikat metil merkuri sehingga akan dibuang

bersama feses.

Merkuri akan merusak ginjal sesudah terpapar terhadap etil merkuri,

karena etil merkuri cepat diubah menjadi bentuk inorganik. Bentuk anorganik

baik sebagai garam merkuro maupun merkuri juga merupakan penyebab utama

dari akrodynia, suatu penyakit pada anak-anak yang sekarang secara historis


38

mendapat perhatian. Gejala akrodynia terdiri dari rasa sakit, merah, jari tangan

dan jari kaki yang membengkak, takut cahaya, sensitif, asthenia, serta hipertensi

diyakini karena reaksi hipersensitif. Kasus yang serius ditandai dengan gejala

adanya tremor, gingivitis dan erethism serentak. Erethism terdiri dari sifat aneh

seperti rasa malu yang berlebihan dan bahkan agresif (Silalahi, 2005).

2.1.8.2 Detoksifikasi Merkuri

Salah satu cara detoksifikasi merkuri adalah melalui siklus enterohepatik.

Metil merkuri yang diabsorpsi dari makanan diangkut ke hati. Pada tahap ini,

sebagian besar metil merkuri disekresikan kembali ke empedu dan dialirkan ke

saluran pencernaan. Hal ini mengakibatkan terjadinya penampung yang

terlokalisasi dan mikroflora memecahkan metilmerkuri menjadi merkuri

anorganik yang sedikit diabsorpsi. Akhirnya akan dikeluarkan bersama feses.

Dengan cara seperti ini, pengaliran merkuri dari hati ke otak yang berasal dari

makanan dapat dihindari. Tetapi jika terjadi paparan metil merkuri yang akut

maka sistem ini tidak mampu untuk menghindari perpindahan merkuri hati ke

otak. Akhirnya, kadar yang toksis akan sampai di otak dan gejala keracunan akan

muncul. Vitamin E dan antioksidan lainnya akan mengurangi toksisitas merkuri.

Efek antioksidan ini mengarah kepada hipotesis bahwa selenium yang juga

bersifat antioksidan diduga memiliki mekanisme yang sama. Selenium adalah

salah satu mineral mikro yang diperlukan tubuh dalam jumlah kecil. Walau

dibutuhkan dalam kadar yang sedikit, selenium menjalankan fungsi vital untuk

kinerja tubuh. Selenium sebagai antioksidan akan meredam radikal bebas yang

dipicu oleh merkuri sehingga sel terlindungi. Oleh karena itu, kandungan

selenium yang tinggi dalam ikan mengurangi toksisitas merkuri (Silalahi, 2005).


39

2.1.9 Manfaat Dan Resiko Konsumsi Ikan

2.1.9.1 Manfaat Konsumsi Ikan

Pentingnya konsumsi ikan untuk kesehatan dan gizi telah menjadikan ikan

sebagai sumber makanan penting pada manusia selama ribuan tahun. Ikan adalah

sumber protein yang tinggi dibandingakn daging sapi, babi, ayam, dan bahkan

protein susu karena karakter asam amino dan perannya untuk mendukung

pertumbuhan. Selanjutnya karakter asam lemak ikan berbeda secara signifikan

dari sumber-sumber alternatif protein lainnya. Ada sekitar 50% asam lemak pada

ikan tanpa lemak dan 25% pada ikan berlemak adalah asam lemak tak jenuh

jamak (PUFA). Sebagai perbandingan hanya 4-10% dari asam lemak tak jenuh

jamak dalam daging sapi sedangkan 40 - 45% asam lemak jenuh. Ikan juga

merupakan sumber banyak vitamin termasuk niasin dan vitamin B12, D dan A.

Ikan juga menyediakan sumber zat gizi mikro termasuk selenium, yodium, taurin,

fluorida, kalsium, tembaga, dan seng.

Asupan ikan pada ibu juga telah diamati untuk memenuhi kebutuhan janin.

Asam Dekosaheksanoat (DHA) adalah omega-3 rantai panjang asam lemak tak

jenuh , yang ditemukan dalam lemak ikan dan makanan laut lainnya. Asam lemak

omega-3 dapat melindungi terhadap beberapa efek kesehatan yang merugikan dan

berkontribusi untuk meningkatkan kesehatan jantung. Selanjutnya, DHA dan

asam arakidonat (AA), omega-6 PUFA sangat penting untuk pengembangan

sistem saraf pusat dalam janin manusia. Oleh karena itu selama trimester terakhir

kehamilan kebutuhan janin akan DHA dan AA sangat tinggi karena sintesis yang

cepat pada jaringan otak sehingga akan membantu perkembaangan otak pada

janin.


40

Sumber utama DHA dan AA yang menumpuk di otak diambil dan masuk

kedalam sirkulasi ibu selama masa kehamilan dan melalui ASI untuk bayi baru

lahir. Prematur atau kelahiran yang lebih pendek dengan berat bayi yang rendah

akibat defisiensi DHA telah dikaitkan dengan gangguan penglihatan dan

keterlambatan perkembangan kognitif dan juga ada beberapa bukti yang

menunjukkan peningkatan asupan ikan atau suplemen minyak ikan dapat

memperpanjang usia kehamilan pada populasi dengan periode kehamilan yang

lebih pendek (Chan, 2011).

2.1.9.2 Resiko Konsumsi Ikan

Terlepas dari manfaat konsumsi ikan, ada resiko terkait potensi paparan

beberapa kontaminan termasuk metil merkuri. Metil merkuri sebagai kontaminan

menargetkan sistem saraf pusat dan sistem kardiovaskular. Kontaminan ini

termasuk senyawa anorganik seperti logam dan polutan organik seperti metil

merkuri, dioksin dan poliklorinasi bifenil. Dari kontaminan utama yang menjadi

perhatian adalah metil merkuri telah menimbulkan kekhawatiran pada manusia

karena potensi resikonya terhadap perkembangan janin, gangguan sistem saraf

pusat dan sistem kardiovaskular (EPA, 2001).

Metil merkuri dapat meningkatkan risiko penyakit jantung koroner dengan

meningkatkan pembentukan radikal bebas dan secara bersamaan membahayakan

fungsi antioksidan yang bertindak sebagai agen penetralisir. Toksisitas terkait

dengan ikatan metil merkuri dengan kelompok sulfhidril enzim yang akan

berakibat pada penghambatan sistem antioksidan dan produksi radikal bebas.

Mengkonsumsi ikan dengan kadar merkuri rendah atau sedang dapat menjaga

manfaat kesehatan lebih besar jika dibandingkan dengan dampak negatif dari


41

kontaminan. Hal Ini kemungkinan terjadi karena adanya efek perlindungan dari

asam lemak minyak ikan (Sparks, 2010).

2.1.10 Penurunan Kadar Merkuri Melalui Metode Pengolahan

Dengan adanya potensi makanan dalam mengganggu kesehatan, maka

dalam bidang kesehatan masyarakat telah dikembangkan upaya mengurangi

dampak negatif dari makanan dan dikenal dengan sanitasi (food sanitation).

Sanitasi makanan tersebut meliputi berbagai bentuk upaya penanganan dan

perlindungan makanan terhadap kontaminasi selama proses pengadaan,

pengolahan hingga penyajian ke konsumen agar layak dimakan.

Dalam kaitan dengan konsumsi ikan yang diduga tercemar logam maka

cara pengolahan harus dilakukan sebelum ikan disajikan dan diharapkan dapat

menurunkan kadar logam yang terdapat pada ikan. Pada umumnya cara

pengolahan yang dilakukan oleh masyarakat antara lain perendaman, direbus,

dikukus, digoreng, dibakar dan pengasapan (Redjeki, 2004).

Upaya menurunkan kandungan logam berat pada makanan banyak

dilakukan dengan penambahan bahan sekuestran (Chelating agents). Sekuestran

adalah bahan tambahan pangan yang dapat mengikat ion logam polivalen yang

membentuk ikatan kompleks sehingga meningkatkan stabilitas dan kualitas

pangan serta dapat mengurangi dampak buruk logam tersebut. Sekuestran dapat

berupa senyawa organic seperti asam sitrat, EDTA, maupun senyawa anorganik

seperti polifosfat (Winarno, 2006).

Kemampuan larutan jeruk nipis untuk menurunkan kadar merkuri (Hg)

pada ikan tongkol disebabkan oleh adanya zat asam sitrat yang terkandung dalam

jeruk nipis. Asam sitrat adalah salah satu zat sekuestran (zat pengikat logam).


42

Asam sitrat memiliki rumus kimia CH2COOH−COHCOOH−CH2COOH

(C6H8O7). Gugus fungsional –OH dan COOH pada asam sitrat menyebabkan ion

sitrat dapat bereaksi dengan ion logam membentuk garam sitrat. Menurut Rusli

(2010), ion sitrat akan mengikat logam melalui proses pengkhelatan sehingga

dapat menghilangkan ion logam yang terakumulasi pada ikan tongkol sebagai

kompleks sitrat ( Indasah, 2015).

Banyak penelitiaan yang telah dilakukan untuk membuktikan bahwa

penambahan asam pada perendaman dan pengolahan ikan seperti direbus,

dikukus, digoreng dan dipanggang dapat menurunkan kadar logam yang terdapat

pada ikan. Berdasarkan penelitian Rejedki, (2004) menggunakan asam cuka dapur

25% yang ditambahkan pada metoda rebus, kukus, goreng dan bakar pada ikan

keting menunjukkan adanya penurunan kadar merkuri pada ikan keting. Metode

goreng dapat menurunkan kadar merkuri pada ikan keting rata-rata sebesar 94.66

%, metode kukus sebesar 88,87%, metode bakar sebesar 88,75% dan metode

rebus 76,52 %. Pengolahan dengan metode goreng, kukus, rebus dan bakar selama

20 menit memberikan penurunan kadar merkuri pada ikan keting sebesar 92,7%

dan lebih tinggi dari pada waktu 10 menit yaitu sebesar 81,6%.

Penelitian yang dilakukan oleh Hikmawati dan Sulistyorini, (2006) tentang

perubahan kadar merkuri pada ikan tongkol dengan perlakuan perendaman larutan

jeruk nipis dan pemasakan. Berdasarkan hasil pemeriksaan kadar Hg dalam ikan

tongkol sebelum diberi perlakuan berkisar antara 0,010–0,235 mg/kg dengan rata-

rata sebesar 0,15 mg/kg sedangkan dengan perlakuan perendaman dengan larutan

jeruk nipis 50% dengan metode pemasakan berkisar 0,035-0,402 mg/kg dengan

rata-rata 0,200 mg/kg.


43

Penelitian yang dilakukan oleh Herawati dan Soedaryo, (2017) tentang

pengaruh perendaman kerang darah dengan perasaan jeruk nipis terhadap kadar

merkuri dan cadmium. Penelitian ini menunjukkan adanya penurunan kadar

merkuri pada kerang darah dimana tanpa perlakuan kadar merkuri sebesar 0,0047

mg/kg dan dengan perendaman 10 menit jeruk nipis sebesar 0,0017 mg/kg,

perendaman 20 menit jeruk nipis sebesar 0,0015 mg/kg dan perendaman 30 menit

jeruk nipis sebesar 0,0012 mg/kg.

Berdasarkan penelitian yang dilakukan oleh Nasution, (2015) tentang

efektivitas larutan jeruk nipis terhadap penurunan kadar merkuri (Hg) pada ikan

tongkol (Euthynnus sp) menunjukkan adanya penurunan kadar merkuri pada ikan

tongkol menggunakan larutan jeruk nipis. Pada penelitian ini kadar merkuri pada

ikan tongkol adalah 0,0875 mg/kg. Penurunan kadar merkuri (Hg) pada ikan

tongkol pada konsentrasi larutan jeruk nipis 25 % dalam waktu 5 menit

menunjukkan 10,17 % dengan rata- rata kadar sebesar 0,0786 mg/kg sedangkan

penurunan kadar merkuri (Hg) pada ikan tongkol pada konsentrasi larutan jeruk

nipis 25 % dalam waktu 10 menit menunjukkan 28,68 % dengan rata-rata kadar

sebesar 0,0624 mg/kg. Penurunan kadar merkuri (Hg) pada ikan tongkol pada

konsentrasi larutan jeruk nipis 50 % dalam waktu 5 menit menunjukkan 17,14 %

dengan rata- rata kadar sebesar 0,0725 mg/kg sedangkan penurunan kadar merkuri

(Hg) pada ikan tongkol pada konsentrasi larutan jeruk nipis 50 % dalam waktu 10

menit menunjukkan 32,91 % dengan ratarata kadar sebesar 0,0587 mg/kg.

Penelitian yang dilakukan oleh Kurniawan, dkk., (2015) pengaruh konsentrasi

suspense nanas dan perebusan terhadap penurunan kadar merkuri (Hg) pada ikan

baung. Hasil persentase penurunan kadar merkuri (Hg) pada ikan baung pada


44

waktu perebusan 15 menit dengan konsentrasi nanas 100% merupakan penurunan

kadar merkuri (Hg) yang paling tinggi yaitu penurunan kadar merkuri dari 0,5191

ppb menjadi sebesar 0,39555 ppb atau sebesar 23,80% dari kadar sebelum

perlakuan. Pada waktu perebusan 30 menit dengan konsentrasi nanas 100%

merupakan penurunan kadar merkuri (Hg) yang paling tinggi yaitu penurunan

kadar merkuri dari 0,5191 ppb menjadi sebesar 0,3655 ppb atau sebesar 29,59%

dari kadar sebelum perlakuan. Pada waktu perebusan 45 menit dengan konsentrasi

nanas 100% merupakan penurunan kadar merkuri (Hg) yang paling tinggi yaitu

penurunan kadar merkuri dari 0,5191 ppb rnenjadi sebesar 0,28343 ppb atau

sebesar 45,40% dari kadar merkuri (Hg) dari sebelum perlakuan.

2.1.11 Analisis Resiko Merkuri

Keracunan merkuri disebabkan adanya konsumsi ikan yang mengandung

kadar merkuri yang tinggi. Peningkatan kadar merkuri dalam tubuh terjadi karena

adanya jumlah konsumsi ikan yang berlebihan melewati batas yang diharuskan.

Perhitungan jumlah kadar merkuri dalam tubuh dapat ditentukan dengan

Privisional Tolerable Weekly Intake (PTWI). Privisional Tolerabel Weekly Intake

adalah jumlah maksimum sementara suatu zat dalam milligram per kilogram berat

badan yang dapat dikonsumsi dalam seminggu tanpa menimbulkan efek

merugikan terhadap kesehatan.

Organisasi Pangan dan Pertanian PBB / WHO (FAO) / WHO Komite Ahli

Aditif Makanan (JECFA) telah menetapkan asupan mingguan yang dapat

ditoleransi sementara (PTWI) untuk total merkuri dengan berat 4 μg / kg berat

badan dan untuk metilmerkuri pada 1,6 μg / kg berat badan. Berbagai organisasi

juga telah menerbitkan tingkat referensi untuk metil merkuri pada manusia seperti


45

Badan Perlindungan Lingkungan Amerika Serikat (USEPA) sebesar 0,7 μg / kg

berat badan per minggu, Biro Keamanan Kimia Kanada sebesar 1,4 μg / kg berat

badan per minggu dan Komisi Keamanan Pangan Jepang (2,0 μg / kg berat badan

per minggu) (Annual, 2014).

Penentuan nilai PTWI dapat diperoleh dari perhitungan DI (Daily Intake)

dengan rumus :

DI = C(Hg) (μg/g) x I (g/orang/hari)

Body Weight (kg)

Keterangan:

DI = Daily Intake

C(Hg) = Concentration in fish (μg/g)

I =Mean Fish Consumption (g/orang/hari)

PTWI = 7 x DI

(Hananingtyas, 2017)

Risk Quotient (RQ) merupakan karakteristik resiko untuk menentukan efek non

karsiogenik pada risiko paparan yag terjadi. Risk Quotient (RQ) dapat dihitung

dengan membagi PTWI (Intake) dengan Rfd.

RQ = PTWI/RfD

pTWI = jumlah maksimum sementara suatu zat dalam milligram per kilogram

berat badan yang dapat dikonsumsi dalam seminggu tanpa menimbulkan efek

merugikan terhadap kesehatan.

Rfd = Dosis Hg yang diperkenakan masuk ke tubuh selama 1 minggu,

RfD (Reference Doses) untuk Hg adalah 2,1 µg/kg berat badan per minggu

RQ = PTWI/RfD


46

Syarat:

1, Jika RQ<1 maka ikan aman untuk dikonsumsi

2. Jika RQ>1 maka ikan tidak aman untuk dikonsumsi karena dapat menimbulkan

gangguan kesehatan (Edward, 2017; Rahmadhani, dkk.,2019).

2.1.12 Kadar Batas Maksimum Cemaran Merkuri

Konsentrasi merkuri (Hg) dalam pangan olahan di Indonesia diatur dalam

Peraturan Badan Pengawasan Obat dan Makanan RI Nomor 5 tahun 2018 tentang

ikan dan produk perikanan termasuk moluska, kurstase, dan ekinodermata serta

amfibi dan reptil. Kadar batas maksimum cemaran logam merkuri pada ikan

adalah 0.5 mg/kg. Pada Peraturan Kepala Badan pengawasan Obat dan Makanan

RI Nomor 21 tahun 2016 tentang Kategori Pangan menjelaskan bahwa ikan yang

dimaksud pada Peraturan Badan Pengawasan Obat dan Makanan RI Nomor 5

tahun 2018 adalah ikan segar yaitu ikan laut, ikan air tawar dan ikan air payau

yang telah mengalami pencucian dengan atau tanpa penyiangan, pendinginan dan

pengemasan serta secara fisik menunjukkan kesegaran. Kadar batas maksimum

cemaran merkuri dibeberapa negara dijelaskan pada Tabel 2.5.

Tabel 2.5 Kadar Batas Maksimum Cemaran Merkuri di Beberapa Negara

No Negara Kadar Batas Maksimum

Cemaran Merkuri

(mg/kg)

1 Australia 0,5 – 1,0

2 Canada 0,3

3 Croatia 0,5 – 1,0

4 Filipina 0,5 – 1,0

5 Georgia 0,3 – 0,5


47

6 India 0,5

7 Indonesia 0,5

8 Jepang 0,4

9 Korea 0,5

10 Thailand 0,5

11 United Eropa 0,5 – 1,0

12 United State 0,5 – 1,0

13 WHO/FAO 0,5 – 1,0

Sumber : (BPOM RI, 2018); (Zilloux, 2015)

2.2 Ikan

2.2.1 Jenis-jenis Ikan

Penyebaran jenis-jenis ikan berdasarkan tempat hidupnya dikenal dalam

tiga golongan, yaitu ikan air laut, ikan air darat dan ikan migrasi. Ikan laut

merupakan ikan yang hidup dan berkembang biak di air asin. Jenis ikan air laut

dibagi atas 2 kelompok, yaitu:

1. Ikan demersal

Ikan demersal adalah ikan yang hidup dan makan di dasar laut dan danau

(zona demersal). Lingkungan mereka pada umumnya berupa lumpur, pasir, dan

bebatuan, jarang sekali terdapat terumbu karang dan tersebar di perairan dasar

kontinen Sunda dan Arafura sampai kedalaman 200 meter. Ikan-ikan demersal

antara lain: ikan petek, ikan kurisi, ikan layur, ikan bambangan, ikan beloso, ikan

sebelah, ikan lidah, ikan manyung, ikan gulamah, dan ikan pari. Ikan-ikan

demersal yang menempati terumbu karang antara lain jenis ikan kakap, ikan

kerapu dan udang barong.


48

2. Ikan pelagis

Ikan pelagis adalah kelompok ikan yang berada pada lapisan permukaan

hingga kolom air dan mempunyai ciri khas utama, yaitu dalam beraktivitas selalu

membentuk gerombolan (schooling) dan melakukan migrasi untuk berbagai

kebutuhan hidupnya. Perbedaan ikan pelagis dengan ikan demersal adalah ikan-

ikan yang berada pada lapisan yang lebih dalam hingga dasar perairan dimana

umumnya hidup secara soliter dalam lingkungan spesiesnya. Pada umumnya ikan

pelagis berenang mendekati permukaan perairan hingga kedalaman 200 m. Ikan

pelagis umumnya berenang berkelompok dalam jumlah yang sangat besar. Ikan

pelagis berdasarkan ukurannya dapat dibagi menjadi dua bagian yaitu :

a. Ikan pelagis besar seperti kelompok Tuna (Thunidae), kelompok Marlin

(Makaira sp) dan Tenggiri (Scomberomorus spp).

b. Jenis ikan pelagis kecil seperti Cakalang (Katsuwonus pelamis), kelompok

Tongkol (Euthynnus spp), Ikan Bandeng (Chanos chanos), Ikan Teri (Thryssa

setirostris), Ikan Kembung lelaki (Rastrelliger kanagurta), Ikan Bawal hitam

(Parastromateus niger), Ikan Layang (Decapterus russelli), Ikan Lemuru

(Sardinella lemuru), dan Ikan Selanget (Anodontostoma chacunda).

(Anjarsari, 2010).

2.2.2 Jenis Ikan Yang ada di Kota Medan

1. Ikan Tuna Sirip Kuning

Kingdom : Animalia

Filum : Chordata

Sub-Filum : Vertebrata

Class : Teleostei


49

Sub-Class : Actinopterygii

Ordo : Perciformes

Sub-ordo : Scombridei

Famili : Scombridae

Genus : Thunnus

Spesies : Thunnus albacares

Hidup di perairan pantai, tetapi selalu menghindari muara-muara sungai

yang berkadar garam rendah, termasuk ikan buas, makanannya bermacam ikan

kecil, cumi-cumi, udang, dapat mencapai panjang 105 cm, umumnya 40-70 cm.

Tergolong ikan pelagis besar, penangkapan dengan pancing tonda, rawai, purse

seine, dipasarkan dalam bentuk segar, segar dibekukan. Daerah penyebaran;

seluruh daerah pantai, lepas pantai perairan Indonesia, Teluk Siam, sepanjang

pantai Laut Cina Selatan, Philipinna, perairan tropis Australia (Genisa, 1999).

2. Ikan Tongkol

Kingdom : Animalia

Filum : Chordata


Kelas : Pisces

Sub-kelas : Teleostei

Ordo : Percomorphi

Sub-ordo : Scombridei

Famili : Scombridae

Genus : Euthynnus

Spesies : Euthynnus affinis


50

Hidup diperairan pantai, lepas pantai, bergerombol besar, termasuk ikan

buas, predator, makanannya ikan-ikan kecil, cumi-cumi, dapat mencapai panjang

50 cm, umumnya 25- 40 cm. Tergolong ikan pelagis besar, penangkapan dengan

tonda, jabur, purse seine, pole and line, dipasarkan dalam bentuk segar, asin

kering, difufu, asin rebus (pindang). Daerah penyebaran; terdapat diseluruh daerah

pantai, lepas pantai perairan Indonesia, dan seluruh perairan Indo-Pasifik (Genisa,

1999).

3. Ikan Cakalang

Kingdom : Animalia

Filum : Chordata

Class : Pisces

Sub-Class : Teleostei

Ordo : Percomorphi

Sub-ordo : Scombroidea

Famili : Scombroidae

Sub-famili : Thunninae

Genus : Katsuwonus

Spesies : Katsuwonus pelmis

Hidup bergerombol, besar, ikan buas, predator, karnivor, dapat mencapai

panjang 100 cm, umumnya 40-60 cm. Tergolong ikan pelagis besar, penangkapan

dengan pole and line, pancing tonda, jaring insang hanyut, dipasarkan dalam

bentuk segar, difufu (panggang), asin-kering. Daerah penyebaran; daerah pantai

laut dalam, kadar garam tinggi, daerah tropis, Perairan Indonesia Timur, Selatan

Jawa, Barat Sumatera, Philipinna, Kep. Hawai, daerah perairan tropis Australia

(Genisa, 1999)


51

4. Ikan Tenggiri

Kingdom : Animalia

Filum : Chordata


Kelas : Pisces

Sub-Kelas : Teleostei

Ordo : Perciformes

Sub-ordo : Scombridea

Famili : Scombridae

Sub-famili : Scombrinae

Genus : Scomberemorus

Spesies : Scomberomorus commersonii

Hidup menyendiri (soliter), diperairan pantai, lepas pantai, termasuk ikan

buas, predator, karnivor, makanannya ikan-ikan kecil, cumi-cumi, dapat mencapai

panjang 200 cm, umumnya 60-90 cm. Tergolong ikan pelagis besar, penangkapan

dengan pancing tonda, jaring insang, purse seine, payang, dipasarkan dalam

bentuk segar, asin setengah kering (beka). Daerah penyebaran; seluruh perairan

Indonesia, perairan Indo-Pasifik, Teluk Benggala, Teluk Siam, Laut Cina selatan,

sampai perairan tropis Australia, ke barat sampai Afrika Timur dan ke utara

sampai Jepang (Genisa, 1999).

5. Ikan Kerapu

Kingdom : Animalia

Filum : Chordata



52

Kelas : Chondrichthyes

Sub-Kelas : Ellasmobranchii

Ordo : Percomorphi

Sub-ordo : Scombridea

Famili : Scombridae

Sub-famili : Scombrinae

Genus : Epinephelus

Spesies : Epinepheus fuscoguttatus

Hidup di perairan dangkal, karang, termasuk ikan buas, makanannya

ikanikan kecil dan in-vertebrata dasar, dapat mencapai panjang 70 cm, umumnya

30-45 cm. Tergolong ikan dasar, karang, penangkapan dengan pancing, bubu,

jaring insang karang, dipasarkan dalam bentuk segar, sebagai ikan aquarium

mempunyai nilai baik. Daerah penyebaran; perairan dangkal, karangkarang

seluruh Indonesia, dan seluruh perairan Indo-Pasifik lainnya, Teluk Benggala,

Teluk Siam, sepanjang pantai Laut Cina Selatan (Genisa, 1999).

6. Ikan Kakap Merah

Kingdom : Animalia

Filum : Chordata


Kelas : Pisces

Sub-Kelas : Teleostei

Ordo : Percomorphi

Sub-ordo : Percoidea

Famili : Lutjanidae


53

Sub-famili : Lutjaninae

Genus : Lutjanus

Spesies : Lutjanus campechanus

Hidup diperairan pantai, muara sungai teluk-teluk, air payau, ukuran

panjang ikan dapat mencapai 200 cm, umumnya 25-100 cm, termasuk ikan dasar,

ikan buas, makanannya ikan-ikan kecil, krustasea, penangkapan dengan pancing,

sodo, jaring insang, trawl. Daerah penyebaran; terutama pantai utara Jawa,

sepanjang pantai Sumatera bagian timur, Kalimantan, Sulsel, Arafuru. Ke utara

meliputi Teluk Benggala, pantai India, Teluk Siam, sepanjang pantai Laut Cina

Selatan, Philipinna, ke selatan sampai pantai utara Australia, dan ke barat sampai

Afrika Timur (Genisa, 1999).

7. Ikan Manyung

Kingdom : Animalia

Filum : Chordata

Kelas : Actinopterygii

Ordo : Siluriformes

Famili : Ariidae

Sub-famili : Ariodea

Genus : Arius

Spesies : Arius Thalassinus

Hidup didasar, muara sungai, daerah pantai sampai tempat-tempat dalam.

Termasuk ikan buas, makanannya adalah organisme dasar (kerang-kerangan,

udang, dan ikan). Ikan ini dapat mencapai panjang maksimum 150 cm, sedang

umum tertangkap 25 - 70 cm. Penangkapan dengan trawl, jaring insang dan


54

pancing. Daerah penyebaran; seluruh perairan pantai, lepas pantai Indonesia

terutama Jawa, Sumatera, Kalimantan, Sulsel, Arafura (Genisa, 1999).

8. Ikan Pari

Kingdom : Animalia

Filum : Chordata

Kelas : Chondrichthyes

Sub Kelas : Elasmobranchii

Ordo : Myliobatiformes

Famili : Dasyatidae

Sub-famili : Dasyatidea

Genus : Dasyatis

Spesies : Dasyatis sp

Hidup di dasar, termasuk ikan buas, makanannya organisme dasar (ikan-

ikan dasr, moluska, krustasea), dapat mencapai panjang 100 cm lebih. Tergolong

ikan dasar, penangkapan dengan trawl, cantrang dan sejenisnya, macam-macam

pukat tepi, pancing garit, dipasarkan dalam bentuk segar, asin- kering, harga

murah. Daerah penyebaran; seluruh perairan Indonesia, dan perairan tropis

lainnya.

9. Ikan Bawal Hitam

Kingdom : Animalia

Filum : Chordata


Ordo : Perciformes

Famili : Bramidae


55

Sub-famili : Bramidea

Genus : Parastromateus

Spesies : Parastromateus niger

Termasuk pemakan plankton, makanannya plankton kasar (in-vertebrata).

Hidup di perairan yang dasarnya lumpur sampai kedalaman 100 m, sering masuk

air payau, membentuk gerombolan besar. Tergolong ikan demersal, penangkapan

dengan trawl, cantrang dan sejenisnya, macam-macam pukat tepi, sero, jermal,

dipasarkan dalam bentuk segar. Daerah penyebaran, hampir terdapat di seluruh

perairan Indonesia terutama Laut Jawa, bagian timur Sumatera, Sulsel, Selat

Tiworo, Arafuru (Genisa, 1999).

10. Ikan Kembung

Kingdom : Animalia

Filum : Chordata




Ordo : Perciformes

Sub-ordo : Scombroidea

Famili : Scombridae

Genus : Restrelliger

Spesies : Rastreliger kanagurta

Hidup diperairan pantai, lepas pantai, bergerombol besar, pemakan

plankton kasar, dapat mencapai panjang 35 cm, umumnya 20-25 cm. Tergolong

ikan pelagis kecil, penangkapan dengan purse seine, jaring insang lingkar, jala


56

lompo dan sejenisnya, sero, dipasarkan dalam bentuk segar, asin setengah kering.

Daerah penyebaran; hampir terdapat diseluruh perairan Indonesia, Kalbar, Kalsel,

Laut Jawa, Selat Malaka, Sulsel, Arafuru, Teluk Siam, Philipinna (Genisa, 1999).

11. Ikan Sardin

Kingdom : Animalia

Filum : Chordata




Ordo : Clupeiformes

Sub-ordo : Clipeidea

Famili : Clupeidae

Genus : Sardinella

Spesies : Sardinella sp

Sardin merupakan ikan laut yang terdiri dari beberapa spesies dari famili

Clupeidae. Ikan ini mampu bertahan hingga kedalaman lebih dari 1.000 meter.

Hal ini menyebabkan mereka dapat hidup di air yang lebih dingin dan dapat

bertahan dalam kondisi yang beragam. Hidup diperairan pantai, lepas pantai

pemakan plankton, dapat mencapai panjang 23 cm, umumnya 17-18 cm,

tergolong ikan pelagis ukuran kecil. Penangkapan dengan purse seine, macam-

macam payang, jaring insang, pukat tepi, dipasarkan dalam bentuk segar, asin

kering, dikalengkan, asin rebus (pindang). Daerah penyebaran; terdapat diseluruh

perairan Indonesia, melebar ke utara sampai Okinawa dan ke selatan sampai ujung

utara Australia, ke barat sampai pantai Afrika Timur (Genisa, 1999).


57

2.3. Analisa Merkuri dalam Ikan

2.3.1 Digesti

Digesti pada berbagai sampel logam dengan penambahan larutan asam

telah banyak diteliti. Metode ini sederhana, cepat dan murah. Campuran HCl,

HNO3, HClO4, HF dan H2O2 umumnya digunakan. Rasio berat sampel dengan

volume asam dan ukuran sampel yang tepat adalah faktor penting, terutama dalam

analisis matriks. Penambahan larutan pada sampel yang tidak lengkap dapat

menghasilkan logam yang tidak bersifat kuantitatif (Maria, 2002).

Efisiensi digesti juga dapat dipengaruhi oleh faktor-faktor lain seperti suhu

dan waktu. Suhu proses digesti ditentukan oleh titik didih asam dan volatilitas

analit. Suhu meningkatkan energi kinetik rata-rata yang menghasilkan

peningkatan tabrakan antara asam dan matriks sampel biologis yang

meningkatkan peruraian logam. Waktu digesti adalah faktor penting dalam

mengontrol lamanya paparan sampel dengan asam pengoksidasi. Lamanya

paparan dapat meningkatkan proses eksotermik yang akan meningkatkan

solubilisasi logam dari sampel biologis serta hilangnya logam-logam ini melalui

volatilisasi. Oleh karena itu, penting untuk memastikan bahwa suhu dan waktu

digesti yang paling efisien dalam menghasilkan pemisahan matriks yang terbaik

(Xiao, 2004).

Asam nitrat mendigesti sebagian besar sampel yang mengandung logam

dengan baik. Asam nitrat adalah matriks yang sangat cocok untuk penyerapan

atom secara pembakaran dan elektrotermal. Beberapa sampel mungkin

memerlukan penambahan asam perklorat, hidroklorik, hidroflourat, atau asam

sulfat untuk digesti yang sempurna meskipun asam ini dapat mengganggu dalam


58

analisis beberapa logam. Secara umum hanya penambahan HNO3 cukup

memenuhi syarat untuk mendapatkan logam sampel yang diinginkan atau bahan

yang mudah teroksidasi. Digesti HNO3-H2SO4 atau HNO3-HCl sesuai untuk

bahan organik yang mudah teroksidasi. Digesti HNO3-HClO4 dan HNO3-HClO4-

HF sesuai untuk bahan organik yang sulit teroksidasi dan yang mengandung

mineral silikat (APHA, 2017).

Berdasarkan penelitian Ahmad, dkk., (2015) dalam menentukan kadar

merkuri 297 sampel ikan laut dalam prosedur digesti menggunakan 5 ml HNO3(p) :

2 ml H2O2(p). Rahimi, dkk., (2010) menentukan kadar merkuri, cadmium dan

Plumbum pada sampel ikan tuna pada prosedur digesti menggunakan 10 ml

HNO3(p) : 5 ml H2SO4(p). Voegborlo dan Akagi, (2007) dalam menentukan kadar

merkuri pada 56 sampel ikan di pantai atlantik Ghana pada prosedur digesti

menggunakan 2 ml HNO3:HClO3 (1:1) and 5 ml H2SO4. Edward, (2017)

menggunakan larutan 5 ml HNO3(p) dalam prosedur digesti dalam penentuan

kadar merkuri dalam ikan dan kerang di Teluk Kao, Pulau Halmahera. Rosana,

dkk., (2008) dalam menentukan kadar merkuri pada 5 sampel ikan pada prosedur

digesti menggunakan larutan HNO3 : HClO4. Ali dan Ismat, (2015) dalam

menentukan kadar merkuri pada 2 sampel ikan yang berasal dari pantai laut merah

sudan pada prosedur digesti menggunakan 10 ml H2SO4(p) dan 3 ml H2O2(p).

2.3.2 Metode Penetapan Kadar Merkuri

2.3.2.1 Metode Cold Vapour Atomic Absorption Spektrophotometry

Cold Vapour Atomic Absorption Spektrophotometry (CVAAS) bekerja

berdasarkan prinsip kerja dari Atomic Absorption Spektrophotometry (AAS)

dengan menggunakan metodologi pemisahan uap dingin untuk mencegah


59

kehilangan merkuri karena penguapan. Dalam teknik ini, merkuri direduksi

menjadi keadaan dasar (Hg0) dalam larutan SnCl2. Metode Vapour Generation

Hidride Analysis (VGHA-SSA) merupakan teknik Cold Vapour Atomic

Absorption Spektrophotometry (CVAAS) menggunakan larutan pereduksinya

adalah natrium borohidrid. Natrium borohidrid mereduksi ion merkuri (Hg2+)

menjadi gas merkuri (Hg0).

Berdasarkan penelitian yang dilakukan Silva, (2006) menggunakan Model

flow injection analysis system (FIAS-100) dan hydride generation Atomic

Absorption Spektrophotometry (HG-AAS) dalam menentukan kadar merkuri pada

ikan. Katup injeksi aliran sistem FIAS-100 tidak digunakan dalam penelitian ini.

Tube spiral atau Kumparan sebagai tempat reaksi dihubungkan ke pipa bercabang

tiga arah di mana aliran tersebut bercampur dengan gas pembawa argon (70

ml/menit) dan diarahkan ke pemisah gas-cairan dengan penyaring membran untuk

menghilangkan tetesan cairan. Pemisah gas-cair dan sel atom kuarsa dipanaskan

pada suhu 100 ,C, dihubungkan dengan tabung PTFE berdiameter 1,0 mm

dengan panjang 100 cm. Sebuah Saluran pompa tunggal dari FIAS-100

dijalankan secara kontinu untuk mengeluarkan limbah reaksi dari gas-cairan

pemisah. Pipa bercabang dikembangkan dengan tiga katub dimana katub V1

berisi larutan reduksi, katub V2 berisi larutan pembawa HCl dan katub V3 berisi

sampel atau larutan standar. Saat siklus analisa katup V2 dan V3 dihidupkan pada

waktu yang bersamaan. Volume larutan sampel atau larutan standar digabungkan

dengan volume yang sama untuk larutan pereduksi. Laju aliran dan program

waktu dari kedua katup ini menentukan volume pada tube bundar yang akan

dimasukkan dan jumlah total sampel atau larutan standar. Setelah pengambilan


60

sampel, campuran diangkut ke pemisah gas-cair dengan larutan pembawa yang

dikendalikan oleh operasi katup V1. Pada tabung reaksi koil (RC) larutan NaBH4

mereduksi merkuri (II) menjadi uap merkuri. Gas argon kemudian dialirkan ke

campuran reaksi sebelum masuk kepemisah gas-cair. Aliran gas ini memiliki

fungsi membawa uap merkuri ke sel kuarsa. Sel kuarsa dipanaskan hingga 100˚C

untuk menghindari kondensasi air. Uap merkuri pada sel kuarsa ditembakkan

dengan sinar dengan panjang gelombang 253,7 nm. di jalur cahaya spektrometer

serapan atom. Sel dipanaskan hingga 100˚C untuk menghindari kondensasi air.

Absorbansi dipantau pada 253,7

Berdasarkan penelitian Moraes, (2013) menggunakan graphite furnace

atomic absorption spectrometry (GFAAS). Teknik GF-AAS menggunakan

proses electrothermal heating karena menggunakan pemanasan sampel

terprogram dengan energi listrik. Proses atomisasi terjadi pada tabung grafit

pirolitik yang dialiri gas inert argon (Ar) dengan aliran konstan 1 L min-1

kemudian tabung grafir pirolitik disuntik dengan copper nitrate (Co(NO3)2) untuk

melakukan proses atomisasi pada suhu 1800oC dan terbentuk Hg2+. Gas Hg2+

terbentuk dibawa gas argon dan ditembak sinar dari Hollow Cathode Lamp

dengan panjang gelombang 253,5 nm.

Berdasarkan penelitian Rizea, (2007) penepatan kadar merkuri dengan

sampel ikan menggunakan Cold Vapour Atomic Absorption Spektrophotometry

(CVAAS) dengan detektor minianalyzer yaitu tube photomultiplier dengan

lampu katoda CsI yang merupakan sumber radiasi merkuri bertekanan rendah

dengan panjang gelombang dibawah 200 nm. Dalam analisis digunakan gas

argon. Pada instrument dipasang dua kartrid kalsium klorida (CaCl2) satu di jalur


61

sampel dan satu jalur aliran gas dengan merkuri "nol" untuk menahan uap air. Uap

air diserap sampai batas tertentu radiasi pada 184,9 nm, dan karena itu harus

dikeluarkan dari gas yang dianalisis. Uap merkuri yang dihasilkan dari sampel

yang dianalisis dibersihkan dengan fluks argon dan ditembak dengan sinar katoda.

Penelitian yang dilakukan Ahmad, dkk., (2015) dalam menentukan 297

sampel ikan menggunakan flow injection mercury system (FIMS 400)/ hydride

analyzer. Pompa peristaltik digunakan untuk menyalurkan gas pembawa, aliran

reduktor dan pembuangan limbah. Ketika katup Fl berada dalam posisi FILL, loop

sampel diisi dengan volume sampel yang tepat. Ketika katup dialihkan ke posisi

INJECT, sampel dimasukkan ke dalam aliran pembawa dan dipindahkan ke

bagian pencampuran untuk reaksi dengan NaBH4. Campuran reaksi yang

dihasilkan kemudian dibawa ke pemisah gas / cairan di mana unsur merkuri

dibebaskan dan, setelah melewati filter polytetrafluoroethylene (PTFE) diangkut

ke sel penyerapan oleh gas pembawa argon. Gas merkuri akan dibawa gas argon

dalan sel kuarsa dan sinar dengan lampu katoda.

2.3.2.4 Metode Mercury Analyzer

Mercury Analyzer adalah alat analisa merkuri langsung yang

menggunakan prinsip dekomposisi termal, proses amalgamasi dan penyerapan

atom. Mercury Analyzer dapat menganalisis matriks padat dan cair dengan presisi

yang sama. Analisis hanya membutuhkan 5 menit per sampel dan tidak

memerlukan persiapan sampel apa pun. Semua merkuri dilepaskan dari sampel

melalui dekomposisi termal.

Penelitian Bussan, (2015) menggunakan Direct Mercury Analyzer (DMA-

80) sebagai penetapan kadar merkuri. sampel ditempatkan dalam autosampler dan


62

secara berurutan masuk ke dalam tabung pembakaran DMA di mana sampel

dipanaskan hingga 6500C dialiri gas oksigen. Hasil pembakaran sebelumnya

masuk kembali ke dalam sel katalis untuk membakar kembali sampel tersebut

dengan suhu 8000C, di mana spesies Hg+, Hg2+ dikonversi menjadi uap merkuri

(Hg0) dan halogen atau spesies lain yang dapat mengganggu analisis

terperangkap. Uap merkuri dan produk penguraian lainnya dibawa terperangkap

dalam amalgamator emas di mana Hg0 secara selektif terperangkap. Pengukuran

dilakukan dengan spektrofotometri dimana gas merkuri dibawa gas argon dan

sinari dengan lampu katoda. Konsentrasi merkuri dihitung berdasarkan absorbansi

yang diukur pada panjang gelombang 253,7 nm.

Berdasarkan penelitian Panichev, (2013) dalam menentukan kadar merkuri

pada ikan menggunakan Direct Mercury Analyzer (DMA-80). Persiapan sampel

pada penelitian ini tidak dilakukan. Sampel ikan ditempatkan dalam 2 tabung

pirolisis dipanaskan dengan suhu 7500C dan 800oC yang dialiri gas oksigen.

Sampel yang sudah dipanaskan sebelumnya mengandung uap Hg dan asap

pembakaran kemudian masuk ke dalam sel analitik yang merupakan proses

atomisasi dan dipanaskan pada 800oC. Atomisasi merkuri Hg2+ akan terperangkat

pada amalgamator emas dan kemudian diangkut oleh gas argon dan melepaskan

gas HgO dan di sinari dengan lampu katoda. Konsentrasi diukur berdasarkan

absorbansi yang diukur pada panjang gelombang 253,7 nm.

Berdasarkan penelitian Houserova, dkk., (2006) Penentuan total merkuri

dan spesies merkuri dalam ikan di ekosistem air sungai Moravia menggunakan

Advanced Mercury Analyzer (AMA-254). Penentuan total merkuri dimana sampel

padat dihomogenisasi kemudian ditimbang (50-100 ± 0,1 mg) dan dimasukkan


63

kedalam wadah/kapal pembakaran yang telah dibersihkan sebelumnya dan secara

otomatis dimasukkan ke dalam alat AMA 254. Sampel dikeringkan pada suhu

120°C selama 90 detik dan didekomposisi secara termal/pemanasan pada suhu

550°C selama 180 detik di bawah aliran oksigen. Uap Merkuri (Hg2+) yang

terperangkap dalam amalgamator dan kemudian dilepaskan dengan pemanasan

singkat sebagai Hg0. Gas merkuri (HgO) diukur dengan teknik AAS uap dingin

pada panjang gelombang 253,65 nm. Berdasarkan penelitian Cizdziel, dkk.,

(2002) Penentuan Total Merkuri dalam Jaringan Ikan melalui pembakaran

menggunakan Spektrometri Serapan Atom dengan Amalgamasi Emas. Dalam

instrumen, oksigen mengalir di atas sampel dengan kecepatan sekitar 200

mL/menit sementara suhu dinaikkan hingga 120oC hingga sampel mengering

sesuai waktu yang ditentukan. Sampel kemudian dibakar pada suhu 7500C.

Hasil pembakaran dibawa melalui katalis dasar Mn3O4 / CaO sampai

oksidasi selesai dengan terbentuk merkuri (II) sementara sulfur oksida, nitrogen

oksida dan halogen terperangkap. Merkuri dan produk penguraian lainnya dibawa

ke ruang amalgamator. Dalam amalgator merkuri terperangkap secara selektif

sementara produk penguraian lain dikeluarkan dari sistem. Merkuri (II) yang

terperangkap dipanaskan dengan cepat hingga suhu 700OC dan melepaskan uap

merkuri (HgO) . Uap merkuri (HgO) yang terbawa masuk diukur dengan melalui

spektrofotometer pada panjang gelombang 253,7 nm.


64

2.4 Validasi Metode Analisis

Validasi metode analisis adalah suatu tindakan penilaian terhadap

parameter tertentu, berdasarkan percobaan laboratorium, untuk membuktikan

bahwa parameter tersebut memenuhi persyaratan untuk penggunaannya. Suatu

metode perlu divalidasi terlebih dahulu sebelum metode tersebut digunakan

sehingga dapat menjamin bahwa analisis yang dilakukan dapat dipercaya dan

sesuai dengan tujuan penggunaannya serta dapat diandalkan untuk mengambil

keputusan (Harmita, 2004). Beberapa parameter analisis dalam validasi metode

analisis adalah:

a. Akurasi atau kecermatan

Akurasi adalah ukuran yang menunjukkan derajat kedekatan hasil analisis

dengan kadar analit yang sebenarnya. Akurasi dinyatakan sebagai persen

perolehan kembali (recovery) analit yang ditambahkan. Akurasi dapat ditentukan

dengan tiga metode, yakni menggunakan bahan acuan bersertifikat (Standard

Reference Material), metode simulasi (spiked placebo recovery) dan metode

penambahan baku (standard addition method). Bahan acuan bersertifikat yaitu

bahan acuan yang satu atau lebih sifatnya disertifikasi dengan suatu prosedur

teknis yang baku, yang disertai dengan ketidakpastian dan ketertelusurannya.

Bahan acuan bersertifikat dapat digunakan untuk validasi metoda dengan

memperlakukannya sebagai sampel dan dihitung recovery nya. Metode simulasi

merupakan metode yang dilakukan dengan cara menambahkan sejumlah analit

bahan murni ke dalam suatu bahan murni ke dalam suatu bahan pembawa

(plasebo), lalu campuran tersebut dianalisis dan hasilnya dibandingkan dengan

kadar analit yang ditambahkan. Metode penambahan baku merupakan metode


65

yang dilakukan dengan cara menambahkan sejumlah larutan baku analit dengan

konsentrasi tertentu pada sampel yang diperiksa, lalu dianalisis dengan metode

yang akan divalidasi. Hasilnya dibandingkan dengan sampel yang dianalisis tanpa

penambahan sejumlah analit. Persen perolehan kembali ditentukan dengan

menentukan berapa persen analit yang ditambahkan dapat ditemukan kembali

(Rohman, 2016). Rentang keberterimaan recovery pada setiap konsentrasi analit

pada sampel dapat dilihat pada Tabel 2.6.

Tabel 2.6 Rentang Keberterimaan Recovery pada Setiap Konsentrasi Analit

pada Sampel

Konsentrasi analit pada sampel Rentang Keberterimaan Recovery (%)

1 µg/ml 80 – 110

100 ng/ml 80 – 110

10 ng/ml 60 – 115

1 ng/ml 40 – 120

Sumber: Harmita (2004)

b. Presisi atau keseksamaan

Presisi diekspresikan dengan standar deviasi atau standar deviasi relatif.

Presisi merupakan ukuran yang menunjukkan derajat kesesuaian antara hasil uji

individual ketika suatu metode dilakukan secara berulang untuk sampel yang

homogen. Keseksamaan dapat dinyatakan sebagai keterulangan (repeatability)

atau ketertiruan (reproducibility). Nilai simpangan baku relatif (RSD) untuk analit

dengan kadar part per million (µg/ml) adalah tidak lebih dari 16% dan untuk

analit dengan kadar part per billion (ng/ml) RSD-nya adalah tidak lebih dari 32%

(Harmita, 2004).


66

c. Selektivitas atau spesifisitas

Selektivitas atau spesifitas adalah kemampuan suatu metode analisis untuk

mengukur analit yang dituju secara tepat dan spesifik dengan adanya

komponenkomponen lain dalam matriks sampel seperti pengotor (impurities),

produk degradasi dan komponen matriks (Rohman, 2016).

d. Linearitas dan rentang

Linearitas adalah kemampuan metode analisis yang memberikan respon

baik secara langsung maupun dengan bantuan transformasi matematika,

menghasilkan suatu hubungan yang proporsional terhadap konsentrasi analit

dalam sampel (Harmita, 2004).

Linearitas suatu metode merupakan ukuran seberapa baik kurva kalibrasi

yang menghubungkan antara respon (y) dengan konsentrasi (x). Linearitas dapat

diukur dengan melakukan pengukuran tunggal pada konsentrasi yang berbeda-

beda. Data yang diperoleh selanjutnya diproses dengan metode kuadrat terkecil,

untuk selanjutnya dapat ditentukan nilai kemiringan (slope), intersep dan

koefisien relasinya. Rentang atau kisaran didefinisikan sebagai konsentrasi

terendah dan tertinggi suatu metode analisis menunjukkan akurasi, presisi dan

linearitas yang mencukupi (Rohman, 2016).

e. Batas deteksi (limit of detection) dan batas kuantitasi (limit of quatitation)

Batas deteksi dan batas kuantitasi merupakan suatu parameter yang

digunakan untuk menggambarkan sensitivitas suatu metode analisis. Batas deteksi

merupakan jumlah terkecil analit dalam sampel yang dapat dideteksi yang masih

memberikan respon signifikan, sedangkan batas kuantitasi merupakan kuantitas

terkecil analit dalam sampel yang masih dapat memenuhi kriteria cermat dan

seksama (Harmita, 2004).


67

BAB III

METODE PENELITIAN

Metode Penelitian yang dilakukan adalah metode deskriptif yaitu

mengetahui gambaran hasil analisis kandungan Merkuri ( Hg) pada berbagai jenis

ikan yang beredar di kota Medan.

3.1 Alat dan Bahan

3.1.1 Alat-alat

Alat- alat yang digunakan adalah Timbangan analitik ketelitian 0,0001 g,

Pipet Volumetrik 1 ml, 5 ml, 10 ml, 20 ml, 50 ml, Mikropipet, cawan, Kaca arloji,

Erlenmeyer 50 ml dan 100 ml, Hot Plate, Aluminium Foil, Gelas ukur 25 ml, 100

ml dan 250 ml, Oven, Labu takar kapasitas 50 ml, 100 ml, 1000 ml dan

Seperangkat instrumen Atomic Absorption Spectrophotometer 900H–MHS15

(Mercury Hidride System).

3.1.2 Bahan-bahan

Bahan-bahan yang digunakan untuk melakukan pengujian Hg adalah

bahan berkualitas pro analisa keluaran E. Merck (Jerman). Larutan standar

merkuri nitrat 1000 µg/mL, Air deionisasi, Asam Nitrat (HNO3) pekat, Asam

Nitrat (HNO3) 1,5 % (15 ml HNO3 pekat dilarutkan dalam 1 L air deionisasi)

Asam perklorat (HClO4) pekat. Natrium tetraborat (NaBH4) 3% (3 gram natrium

tetra borat dilarutkan dalam 100 ml NaOH 1%), NaOH 1% (0,4 gram NaOH

dilarutkan dalam labu takar 1 L dengan air deionisasi).

3.1.3 Sampel

Sampel yang digunakan dalam penelitian ini berjumlah 11 sampel ikan

yang diperoleh dari 7 Pasar Tradisional Ikan dan 1 Supermarket. Ikan Manyung


68

dan ikan sardin diperoleh dari Pasar Tradisional Ikan Simpang Selayang, ikan

tongkol diperoleh dari Pasar Tradisional Ikan Sei Sekambing, ikan cakalang dan

ikan tenggiri diperoleh dari Pasar Tradisional Ikan Petisah, ikan pari dan ikan

kakap merah diperoleh dari Pasar Tradisional Glugur, ikan kerapu diperoleh dari

Pasar Tradisional Sambu, ikan bawal hitam diperoleh dari Pasar Tradisional

Johor, ikan kembung diperoleh dari Pasar Tradisional Padang Bulan dan ikan

tuna diperoleh dari Supermarket Berastagi. Data Spesifikasi sampel dapat dilihat

pada lampiran 2 halaman 92.

3.2 Prosedur Penelitian

3.2. 1 Metode Pengambilan Sampel

Metode pengambilan sampel dilakukan secara purposif berdasarkan jenis

ikan yang paling sering dikonsumsi oleh masyarakat di Medan dan distribusi

populasi ikan berdasarkan wilayah. Setiap ikan mewakili satu sampel secara acak

yang dilakukan dengan undian.

3.2. 2 Penyiapan Sampel

Pembelian sampel ikan segar dilakukan pada pasar tradisional dan

supermarket yang berada di kota medan sekitar jam 06.00 wib karena merupakan

waktu yang tepat untuk mendapatkan ikan segar dipasar tradisional. Metode

pertama dan paling sederhana untuk mengawetkan dan memproses ikan adalah

membuatnya tetap dingin dan untuk pengawetan yang jangka pendek

menggunakan es adalah cukup efektif (Nwaigwe, 2017). Sampel ikan dikemas

dalam kotak polietilen yang berisi es dan diberi label. Sampel ikan dibawa melalui

pesawat terbang dengan kondisi pengemasan sudah memenuhi standar peraturan

pesawat udara. Di laboratorium, sampel dimasukkan dalam freezer. Untuk


69

persiapan sampel, sampel ikan dicairkan pada suhu kamar kemudian masing-

masing ikan dihilangkan sisiknya dan bagian ikan yang dapat dimakan dipotong

kecil-kecil dan dicuci dengan akuades. Setelah itu ikan (daging) dihomogenkan

dengan cara diblender. Sampel ditimbang lebih kurang 50 gram. Masing-masing

ditimbang sebanyak tiga kali pengulangan. Penyiapan sampel dan pengujian kadar

merkuri pada beberapa jenis ikan dilakukan di Laboratuorim ProLing,

Departemen Manajemen Sumber Daya Perikanan, Fakultas Perikanan Institut

Pertanian Bogor (IPB).

3.2. 3 Digesti

Prosedur digesti dilakukan sesuai yang diuraikan di dalam literatur (APHA,

2017).

1. Disiapkan + 50 gram sampel kemudian dimasukkan ke dalam cawan porselin

2. Dimasukkan ke dalam oven dengan suhu 103-105oC selama satu malam

sampai diperoleh berat yang stabil.

3. Ditimbang 1 gram sampel dam masukkan ke dalam labu erlenmeyer 100 ml.

Ditambah 5 ml HNO3(p) lalu dihomogenkan kemudian ditutup dengan kaca

arloji

5. Panaskan secara perlahan diatas hot plate dengan suhu 60oC sampai diperoleh

larutan tersisa 1-2 ml, labu erlenmeyer diangkat dan didinginkan.

6. Setelah dingin ditambahkan 10 ml HNO3(p) dan 10 ml HClO4(p) akan

menghasilkan cairan jernih dan bagian dasar tersisa serbuk kuning sampai

putih.

7. Larutan dihomogenkan dan kembali dipanaskan diatas hot plate dengan suhu

60oC sampai uap HClO4(p) hilang. Jika larutan tidak jernih pemanasan


70

dilanjutkan sampai jernih jika diperlukan ditambah 10 ml HNO3(p) sampai

digesti sempurna.

8. Larutan didinginkan kemudian ditambahkan 50 ml air deionisasi dan didihkan

untuk menghilangkan senyawa klorin dan oksida nitrogen. Setelah selesai

dinding labu Erlenmeyer dan kaca arloji dibilas dengan air deionisasi kemudian

ditutup.

9. Larutan disaring dengan kertas whatman 42 seraya dibilas dengan air deonisasi

sampai diperoleh volume filtrat 100 ml.

3.2. 4 Analisis Merkuri dalam Ikan

Menurut petunjuk penggunaan Atomic Absorption Spectrophotometer

900H – MHS 15 (Mercury Hidride System) terlebih dahulu dilakukan penyetelan

alat Spektrofotometri Serapan Atom dengan memilih tombol switch cold Vapour.

Kemudian dilakukan pengoptimalan alat. Kemudian disiapkan sampel analisis

sebanyak 50 ml dan ditambahkan sebanyak 2 ml larutan natrium tetraborat ke

dalam botol reduksi yang terhubung dengan alat. Ditunggu 5 detik untuk pre

reaction. Ditekan start pada software kemudian ditekan enter dan tombol reduktan

ditekan sampai muncul serapan (nilai absorbansi) pada layar monitor. Setelah

muncul nilai serapan penekanan tombol reduktan dihentikan. Ditunggu 10 detik

untuk memastikan uap telah dibawa oleh gas argon untuk dapat melanjutkan ke

analisis berikutnya.

3.3. Analisis Kuantitataif

3.3. 1 Pembuatan Kurva Kalibrasi Merkuri

Larutan standar primer merkuri nitrat 1000 mg/l dipipet sebanyak 10 ml,

kedalam labu tentukur 100 ml dan dicukupkan hingga garis tanda dengan larutan


71

HNO3 1,5% ditambah beberapa tetes KMnO4 (konsentrasi 100 mg/l). Larutan

tersebut dipipet kembali sebanyak 0,5 ml ke dalam labu tentukur 100 ml dan

dicukupkan hingga garis tanda dengan larutan HNO3 1,5% (konsentrasi 0,5 mg/l).

Larutan tersebut kembali dipipet sebanyak 1,0 ml; 2,0 ml; 4,0 ml; 10,0 ml ke

dalam labu tentukur 100 ml dan dicukupkan hingga garis tanda dengan larutan

HNO3 1,5% sehingga diperoleh konsentrasi larutan berturut-turut 5 µg/l, 10 µg/l,

20 µg/l, 50 µg/l dan di lakukan pengukuran dengan Atomic Absorption

Spectrophotometer 900H-MHS15 (Mercury Hidride System) pada panjang

gelombang 253,65 nm. Hasil pengukuran absorbansi dan konsentrasi diplot untuk

memperoleh kurva kalibrasi dan persamaan regresi; Y=aX + b.

3.4 Penentuan Kadar Merkuri dalam Ikan

Menurut Gandjar dan Rohman (2007), penentuan kadar dengan persamaan

regresi Y=aX+b dalam sampel dapat dihitung dengan cara:

Y = Absorbansi

X = Konsentrasi analit

a = intersep (intercept)

b = kemiringan (slope)

Kadar merkuri dalam sampel(μg/g) = )(

)()/g(

gW

xFpmlxVmlX

Keterangan :

X = Konsentrasi analit dalam larutan sampel yang diukur

V = Volume total larutan sampel yang diperiksa (ml)

Fp = Faktor pengenceran dari hasil digesti (1)

W = Berat sampel (g)


72

3.5 Analisis Data Secara Statistik

3.5.1. Membandingkan Rata-Rata Pengukuran dengan Hasil Sebenarnya

Uji ini digunakan untuk menguji apakah rata-rata hasil yang diperoleh

sama dengan hasil sebenarnya (true value) atau hasil yang diterima sebagai nilai

sebenarnya (accepted true value) karena pada dasarnya kita tidak tahu berapa nilai

sebenarnya dari suatu kadar analit. Pada uji ini dari satu seri penetapan kadar,

mula-mula dihitung rata-rata (mean) dan SD-nya kemudian dihitung harga t (t

hitung). Standar Deviasi (SD) adalah simpangan baku pengukuran sampel dengan

rumus sebagai berikut:

SD=√∑ ( Xi-X̅)

2

(n-1)

Keterangan :

SD = Simpangan Baku

Xi = Kadar sampel

X̅ = Kadar rata-rata sampel

n = Jumlah pengulangan pengukuran

thitung= |Xi- X̅|

SD

√n

Harga thitung selanjutnya dibandingkan dengan harga tkritik (ttabel) dengan derajat

kebebasan (degree of freedom, df = n-1). Jika harga thitung lebih besar dari tkritik,

maka rata-rata pengukuran berbeda signifikan dengan harga sebenarnya (true

value) sebaliknya jika harga thitung lebih kecil daripada tkritik, maka rata-rata dengan

nilai sebenarnya tidak berbeda signifikan atau dengan kata lain dalam statistika,

rata-rata hasil sama dengan nilai sebenarnya.


73

untuk menentukan rata-rata kadar merkuri sebenarnya dalam sampel ikan dengan

interval kepercayaan 95%, α = 0,01, dk = n-1, dapat digunakan rumus :

μ = X ̅̅ ̅± (t (α

2,dk) ×

SD

√n)

Keterangan :

X̅ = Kadar rata-rata sampel (µg/g)

α = Taraf kepercayaan

dk = Derajat kebebasan

SD = Standar deviasi

n = Jumlah pengulangan pengukuran

(Rohman, 2016).

3.5.2 Uji Perolehan Kembali (Recovery)

Metode simulasi (spiked placebo recovery) merupakan metode

yang dilakukan dengan cara menambahkan sejumlah analit bahan murni ke dalam

suatu bahan murni ke dalam suatu bahan pembawa (plasebo), lalu campuran

tersebut dianalisis dan hasilnya dibandingkan dengan kadar analit yang

ditambahkan (Rohman, 2016).

Metode simulasi (spiked placebo recovery) dapat ditentukan dengan rumus

berikut :

Recovery (%) = [𝑐] 𝑠𝑎𝑚𝑝𝑒𝑙+𝑠𝑝𝑖𝑘𝑒−[𝑐]𝑠𝑎𝑚𝑝𝑒𝑙

[𝑐]𝑠𝑝𝑖𝑘𝑒 x 100%

3.5.3 Simpangan Baku Relatif (RSD)

Menurut Harmita (2004), presisi merupakan ukuran keterulangan metode

analisis dan diekspresikan sebagai simpangan baku relatif yang dapat ditentukan

dengan rumus berikut :


74

RSD =SD

X̅ × 100 %

Keterangan :

RSD : Simpangan baku relatif

SD : Standar deviasi

X̅ : Kadar rata-rata sampel

3.5.4 Penentuan Batas Deteksi dan Batas Kuantitasi

Batas deteksi merupakan jumlah terkecil analit dalam sampel yang dapat

dideteksi yang masih memberikan respon signifikan. Sedangkan batas kuantitasi

merupakan kuantitas terkecil analit dalam sampel yang masih dapat memenuhi

kriteria cermat dan seksama.

Menurut Harmita (2004), batas deteksi dan batas kuantitasi dapat diten

tukan dengan rumus sebagai berikut :

Simpangan baku (SYX⁄ ) = √

∑ (Y- Yi)2

n-2

Batas deteksi (LOD) = 3 × SY

X⁄

Slope

Batas kuantitasi (LOQ) = 10 × SY

X⁄

Slope


75

y = 0.01241x + 0.00998R² = 0.999478

0

0.1

0.2

0.3

0.4

0.5

0.6

0.7

0.0000 10.0000 20.0000 30.0000 40.0000 50.0000 60.0000

Ab

sorb

ansi

Konsentrasi (ppb)

BAB IV

HASIL DAN PEMBAHASAN

4.1. Kurva Kalibrasi Merkuri

Kurva kalibrasi dibuat dengan memasukkan sejumlah tertentu konsentrasi

larutan baku merkuri dalam sistem dan dilanjutkan dengan pengukuran intensitas

yaitu jumlah ion yang dihitung oleh detektor setiap detik atau Counts per Second

(CPS) (Rohman, 2016).

Data hasil pengukuran dan contoh perhitungan untuk memperoleh kurva

kalibrasi dapat dilihat pada lampiran 6 halaman 102-103. Hasil pengukuran kurva

kalibrasi diperoleh persamaan regresi baku merkuri yaitu Y = 0,01241X +

0,00998. Kurva kalibrasi larutan baku merkuri dapat dilihat pada Gambar 4.1

Gambar 4.1 Kurva Kalibrasi Larutan Baku Merkuri

Berdasarkan kurva di atas diperoleh hubungan yang linear antara

konsentrasi dengan absorbani, dengan koefisien korelasi (r) sebesar 0,999478.


76

Linieritas dapat menggambarkan ketelitian pengerjaan analisis suatu metode yang

ditunjukkan oleh nilai koefisien relasi sebesar ≥ 0,997 (Riyanto, 2014). Kurva ini

menunjukkan korelasi positif antara konsentrasi (X) dan intensitas (Y) yang

artinya peningkatan konsentrasi sebanding dengan naiknya intensitas dimana

semakin tinggi intensitas menunjukkan banyaknya konsentrasi yang serap. Data

kalibrasi merkuri dan perhitungan persamaan garis regresi serta koefisien korelasi

dapat dilihat pada lampiran 6 halaman 102-103.

4.2 Kadar Merkuri dalam Ikan

Sampel ikan yang digunakan dalam analisis kadar merkuri adalah ikan tuna,

ikan tongkol, ikan cakalang, ikan tenggiri, ikan kerapu, ikan kakap merah, ikan

manyung, ikan pari, ikan bawal, ikan kembung dan ikan sardin. Analisis kadar

merkuri dalam ikan dilakukan dengan menggunakan metode CV-AAS (Cold

Vapour Atomic Absorption Spectrophotometry) dengan alat Atomic Absorption

Spectrophotometer 900H – MHS 15 (Mercury Hidride System). Konsentrasi

merkuri dalam sampel ikan ditentukan berdasarkan persamaan garis regresi kurva

kalibrasi larutan baku merkuri dan konsentrasi merkuri pada sampel ikan berada

pada rentang kurva kalibrasi. Hasil analisis kadar merkuri dalam ikan dan Contoh

perhitungan kadar merkuri dalam ikan dapat dilihat pada lampiran 7 halaman 104-

106 dan lampiran 8 halaman 107.

Analisis data dilanjutkan dengan melakukan perhitungan statistik terhadap

pengukuran tiga larutan uji dari masing-masing sampel. Contoh perhitungan

statistik kadar merkuri pada sampel ikan dapat dilihat pada lampiran 9 halaman

108-121 dan rekapitulasi kadar merkuri setelah perhitungan statistik pada

lampiran 10 halaman 122. Kadar merkuri dalam ikan dapat dilihat pada Tabel 4.1

dan Gambar 4.2.


77

Tabel 4.1 Kadar Merkuri pada Berbagai Jenis Ikan di Kota Medan

No Jenis Ikan

Sumber

Kode

Sampel

Kadar Merkuri

(µg/kg)

1 Ikan Tuna Berastagi

Supermarket

P.8721-1 27,3865 ± 0,3326

2 Ikan Tongkol Pasar Tradisional

Sei Sekambing

P.8721-2 17,8570 ± 0,0121

3 Ikan Cakalang Pasar Tradisional

Petisah

P.8721-3 17,4507 ± 1,5893

4 Ikan Tenggiri Pasar Tradisional

Petisah

P.8721-4 10,5767 ± 0,1862

5 Ikan Kerapu Pasar Tradisional

Sambu

P.8721-5 9,9736 ± 0,9115

6 Ikan Kakap Merah Pasar Tradisional

Glugur

P.8721-6 14,0966 ± 0,8555

7 Ikan Mayung Pasar Tradisional

Selayang

P.8721-7 13,2533 ± 0,7586

8 Ikan Pari Pasar Tradisional

Glugur

P.8721-8 61,3146 ± 0,8149

9 Ikan Bawal Hitam Pasar Tradisional

Johor

P.8721-9 10,7755 ± 0,4605

10 Ikan Kembung Pasar Tradisional

Padang Bulan

P.8721-10 6,5364 ± 0,1935

11 Ikan Sardin Pasar Tradisional

Selayang

P.8721-11 6.5464 ± 0,1036


78

Gambar 4.2 Grafik Kadar Merkuri pada berbagai Jenis Ikan di Kota Medan

Tabel 4.1 dan Gambar 4.2. menunjukkan bahwa terdapat perbedaan rata-

rata kadar merkuri pada sampel ikan. Hasil penelitian menunjukkan kadar merkuri

rerata dalam sampel ikan berkisar 6,5364 – 61,3146 µg/kg, kadar merkuri

tertinggi 61,3146 µg/kg terdapat pada ikan pari yang dijual di Pasar Tradisional

Glugur sedangkan kadar merkuri terendah 6,5364 µg/kg pada ikan kembung yang

dijual di Pasar Tradisional Padang Bulan. Tingginya kadar merkuri pada ikan pari

menunjukkan merkuri lebih banyak diserap. Data ini juga menunjukkan bahwa

ikan-ikan yang di jual di pasar tradisional kota medan telah mengalami

kontaminasi merkuri. Jumlah kandungan merkuri pada sampel ikan masih relatif

kecil jika dibandingkan dengan batas maksimum cemaran logam berat dalam

pangan olahan yang ditetapkan oleh Peraturan Kepala Balai POM RI No.5 Tahun

2018 sebesar 0,5 ppm (500 ppb).


79

Dari data Tabel 4.1 menunjukkan bahwa ikan seperti tuna sirip kuning,

tuna tenggiri, tuna cakalang, tenggiri Spanyol, kakap merah, ikan pari memiliki

ukuran dan bobot lebih besar dibandingkan dengan ikan lain dan menunjukkan

bahwa ikan–ikan tersebut memiliki kadar merkuri yang lebih tinggi. Perbedaan

kadar merkuri disebabkan adanya korelasi konsentrasi merkuri dengan usia/

ukuran ikan. Ikan dengan ukuran berbeda menunjukkan korelasi dengan

konsentrasi merkuri. Berdasarkan penelitian Lange, dkk., (1993); Storelly,dkk.,

(2006) dengan sampel ikan yang memiliki ukuran ikan yang berbeda

menunjukkan adanya korelasi konsentrasi merkuri dengan usia/ukuran ikan. Hal

ini dijelaskan melaui proses bioakumulasi dan biomagnifikasi bahwa konsentrasi

dari metil merkuri yang masuk dan terakumulasi dalam jaringan biota terus

meningkat seiring dengan sistem rantai makanan. Sehingga biota seperti ikan-ikan

besar yang telah memakan ikan-ikan yang lebih kecil yang telah terkontaminasi

oleh metil merkuri mempunyai kandungan merkuri yang lebih tinggi.

Data juga menunjukkan bahwa kadar merkuri tertinggi ditemukan pada

ikan pari (61,3146 μg/kg). Ikan pari bukanlah ikan pelagis predator tetapi

merupakan spesies ikan dumersal yang hidup di dasar laut. Tingginya kadar

merkuri dalam ikan pari bukan hanya ukuran dan berat tetapi dapat disebabkan

oleh faktor kebiasaan makan. Menurut Suratno, (2017) secara umum, kebiasaan

makan ikan dapat dibagi menjadi tiga, yaitu (1) bentivora dan planktivores, (2)

karnivora, dan (3) omnivora. Ikan pari diklasifikasikan sebagai ikan bentivora dan

planktivorous. Kebiasaan makan ikan pari ini sesuai dengan penelitian oleh

Ashraf, dkk., (2012) yang menyatakan bahwa ikan dengan kebiasaan makan

bentivora dan planktivorous mengakumulasi logam polutan lebih tinggi daripada


80

ikan karnivora dan omnivora. Akumulasi logam polutan dalam biota laut

dipengaruhi oleh faktor internal dan eksternal. Faktor internal adalah panjang,

berat, usia, dan kecepatan metabolisme dan kebiasaan makan merupakan faktor

eksternal.

Pola akumulasi logam berat dalam tubuh organisme laut tidak hanya

dipengaruhi oleh ukuran tubuh saja, faktor eksternal seperti pilihan makanan dan

faktor internal seperti kecepatan metabolisme juga mempengaruhi akumulasi

logam berat. Faktor makanan pada ikan laut sangat menentukan akumulasi logam

berat dalam daging, Oleh karena itu kemampuan ikan untuk mengakumulasi

logam berat berbeda menurut jenisnya (Edward, 2017).

Penelitian sebelumnya yang dilakukan oleh Ahmad, dkk., (2014) pada

ikan pari menghasilkan kadar merkuri sekitar 384- 548 (μg/kg). Hasil penelitian

ini memiliki kadar merkuri yang cukup tinggi jika dibandingkan dengan kadar

merkuri pada penelitian ini yaitu 61.3146 (μg/kg). Perbedaan tingkat merkuri

dalam ikan pari pada tempat yang berbeda menunjukkan perbedaan jumlah

merkuri yang terdapat di lingkungan perairan di mana habitat ikan berada. Faktor

pertama yang menyebabkan perbedaan kadar merkuri pada ikan adalah sumber

emisi dari kegiatan antropogenik di setiap negara berbeda. Kegiatan antropogenik

diperkirakan menyumbang sekitar 2.200 ton / tahun seperti pertambangan batu

bara, pertambangan emas, pembakaran minyak dan gas alam, Industri klor-alkali,

amalgam gigi dan limbah produk konsumen. Banyaknya kegiatan antropogenik

suatu wilayah akan menyebabkan terjadinya peningkatan merkuri yang berbeda

(UNEP, 2003). Kedua, kontrol kimia dan biologis dalam lingkungan air seperti zat

organik terlarut (DOM), reduksi sulfat, penghambatan sulfida, alkalinitas,


81

kalsium, klorofil ɑ, konduktansi, magnesium, pH, nitrogen total, dan total fosfor

merupakan faktor-faktor yang berpengaruh dalam pembentukan metil merkuri

oleh mikroorganisme (Zillioux, 2015). Ketiga, variasi kadar metil merkuri pada

ikan juga dapat dijelaskan oleh perbedaan dalam strategi pemberian makan,

mobilitas, lokasi mencari makan serta perilaku migrasi. Bioakumulasi berkorelasi

baik dengan meningkatnya ukuran tubuh dan usia. Biomagnifikasi di sisi lain

menunjukkan peningkatan konsentrasi merkuri antara tingkat konsumen berturut-

turut dalam rantai makanan. Predator tingkat tinggi biasanya memiliki konsentrasi

merkuri yang lebih tinggi bila dibandingkan dengan konsumen primer (Annual,

2014; Lange, dkk., 1993; Storelli, dkk., 200).

4.3 Validitas Metode Analisis

4.3.1 Perolehan Kembali (Recovery)

Hasil perhitungan uji perolehan kembali (recovery) setelah penambahan

larutan baku merkuri dalam sampel ikan sardin dapat dilihat pada Tabel 4.2.

Tabel 4.2 Hasil Perhitungan Perolehan Kembali (Recovery)

Sampel Konsentrasi

sampel (mg/kg)

Konsentrasi

spike (mg/kg)

Konsentrasi spike +

sampel (mg/kg)

Recovery

(%)

1 0,0067 0,072

0,0800 101,8055

2 0,0069 0,072

0,0838 106,8055

3 0,0069 0,072

0,0791 100,2777

Rata-rata 102,9629

Syarat rentang recovery 85 – 115

Berdasarkan Tabel 4.2 di atas, dapat dilihat bahwa rata-rata hasil uji perolehan

kembali (recovery) adalah 102,9629 %. Persen recovery tersebut menunjukkan


82

kecermatan kerja yang memuaskan pada saat pemeriksaan kadar merkuri dalam

sampel ikan. Hasil uji perolehan kembali (recovery) ini memenuhi persyaratan

akurasi yang telah ditetapkan, jika rata-rata hasil perolehan kembali (recovery)

berada pada rentang 85-115 % (Harmita, 2004). Contoh perhitungan uji perolehan

kembali (recovery) dan hasil perhitungan uji perolehan kembali (recovery)

merkuri dapat dilihat pada lampiran 11 halaman 123 dan lampiran 12 halaman

123.

4.3.2 Simpangan Baku Relatif (RSD)

Hasil perhitungan simpang baku relatif (RSD) pada sampel ikan dapat dilihat pada

Tabel 4.3

Tabel 4.3 Hasil Perhitungan Simpangan Baku Relatif (RSD)

Logam yang dianalisi Merkuri

Simpangan Baku Relatif (RSD) % 1,7911

Syarat RSD % 16

Berdasarkan Tabel 4.3 di atas, dapat dilihat nilai simpangan baku relative (RSD)

yang diperoleh sebesar 1,7911 %. Menurut Harmita (2004), nilai simpangan baku

relatif (RSD) untuk analit dengan kadar part per million (μg/ml) adalah tidak

lebih 16%. Dari hasil yang diperoleh menunjukkan bahwa metode yang dilakukan

memiliki presisi yang baik. Contoh perhitungan dapat dilihat pada lampiran 13

halaman 124.

4.3.3 Batas Deteksi dan Batas Kuantitasi

Hasil perhitungan batas deteksi dan batas kuantitasi pada sampel ikan dapat

dilihat pada Tabel 4.4 dan contoh perhitungan dapat dilihat pada lampiran 14

halaman 125.


83

Tabel 4.4 Batas Deteksi dan Batas Kuantitasi

Logam yang dianalisis Merkuri

Batas Deteksi (µg/kg) 1,6921

Batas Kuantitasi (µg/kg) 5,0406

Berdasarkan Tabel 4.4 di atas batas deteksi (LOD) diperoleh sebesar 1,6921 μg/kg

sedangkan batas kuantitasi (LOQ) diperoleh sebesar 5,0406 μg/kg. Hasil

pengukuran menunjukkan kadar merkuri berada diatas batas deteksi dan batas

kuantitas.

4.4. Analisa Resiko Merkuri

Nilai PTWI, RQ dan Status Keamanan dapat dijelaskan pada Tabel 4.5.

Tabel. 4.5 Hasil perhitunganNilai PTWI, RQ dan Status Keamanan

No Sampel Ikan Nilai PTWI

(µg/kg/BB/minggu)

Risk Quotient

(RQ)

Status

Keamanan

1 Ikan Tuna 0,1181 0,0562 Aman

2 Ikan Tongkol 0,0770 0,0366 Aman

3 Ikan Cakalang 0,0753 0,0358 Aman

4 Ikan Tenggiri 0,0456 0,0217 Aman

5 Ikan Kerapu 0,0418 0,0199 Aman

6 Ikan Kakap Merah 0,0604 0,0287 Aman

7 Ikan Manyung 0,0569 0,0270 Aman

8 Ikan Pari 0,2646 0,1260 Aman

9 Ikan Bawal Hitam 0,0461 0,0219 Aman

10 Ikan Kembung 0,0280 0,0133 Aman

11 Ikan Sardin 0,0282 0,0134 Aman


84

Risk Quotient (RQ) merupakan karakteristik resiko untuk menentukan efek

non karsiogenik pada risiko paparan yang terjadi. Risk Quotient (RQ) dapat

dihitung dengan membagi nilai PTWI (Intake) dengan RfD (Reference Doses)

untuk Hg adalah 2,1 µg/kg berat badan per minggu. Menurut Edward, (2017);

Rahmadhani, dkk., (2019) bahwa syarat penentuan Risk Quotient (RQ) adalah :

Jika RQ<1 maka ikan aman untuk dikonsumsi. Jika RQ>1 maka ikan tidak aman

untuk dikonsumsi karena dapat menimbulkan gangguan kesehatan. Berdasarkan

Tabel 4.5 nilai Risk Quotient (RQ) yang diperoleh dibawah 1 menunjukkan bahwa

ikan-ikan tersebut aman untuk dikonsumsi. Contoh perhitungan dapat dilihat pada

lampiran 15 halaman 126.


85

BAB V

KESIMPULAN DAN SARAN

5.1 Kesimpulan

a. Kadar merkuri Ikan Tuna 27,3865 µg/kg; Ikan Tongkol 17,8577 µg/kg;

Ikan Cakalang 17,4507 µg/kg; Ikan Tenggiri 10,5767 µg/kg; Ikan Kerapu

9,9736 µg/kg; Ikan Kakap Merah 14,0966 µg/kg; Ikan Manyung 13,2533

µg/kg; Ikan Pari 61,3146 µg/kg; Ikan Bawal 10,7755 µg/kg; Ikan

Kembung 6,5384 µg/kg; Ikan Sardin 6,5464 µg/kg. Semua kadar sampel

ikan yang dianalisa dibawah batas maksimum cemaran logam berat dalam

olahan pangan yang ditetapkan oleh Peraturan Kepala Balai POM RI

No.05 Tahun 2018 sebesar 0,5 ppm (500 ppb).

b. Hasil pengujian nilai kadar merkuri tertinggi terdapat pada ikan pari yaitu

61,3146 µg/kg dan nilai terendah terdapat pada ikan kembung yaitu 6,5384

µg/kg

c. Hasil perhitungan nilai RQ pada sampel ikan yang diteliti menunjukkan

bahwa semua ikan aman untuk dikonsumsi.

5.2 Saran

a. Disarankan kepada peneliti selanjutnya, pentingnya meneliti kadar merkuri

pada ikan yang berasal dari berbagai daerah/sumber.

b. Disarankan kepada peneliti selanjutnya untuk meneliti faktor-faktor seperti

pengolahan yang mempengaruhi kadar merkuri dalam ikan

c. Disarankan kepada pemerintah dan Balai POM untuk memberikan

informasi terkait peneletian tersebut untuk melindungi kesehatan

masyarakat medan.


86

d. Kepada masyarakat perlu dianjurkan untuk tidak mengkonsumsi ikan segar

langsung tetapi harus melakukan metode pengolahan. Berdasarkan

penelitian yang sudah dilakukan bahwa dengan penambahan asam pada

metoda pengolahan seperti perendaman, rebus, kukus, goreng dan bakar

dapat menurunkan kadar merkuri pada ikan.


87

DAFTAR PUSTAKA

Adlim, M. (2016). Pencemaran merkuri di perairan dan karakteristiknya: suatu

kajian kepustakaan ringkas. Jurnal ilmu-ilmu Perairan, Pesisir dan

Perikanan. 5(1): 33-40.

Ahmad, N.I., Noh, M.F., Mahiyuddin, W.R., Jaafar, H., Ishak, I., Azmi, W.N.,

dkk. (2014). Mercury levels of marine fish commonly consumed in

Peninsular Malaysia. Environmental Science and Pollutan International,

22(5): 3672-86

Ali A. Ateeg dan Ismat H. Ali. (2015). Determination of Mercury in Fish Flesh by

Cold Vapor Atomic Absorption Spectrometry. Chem Sci Rev Lett, 4(13):

390-394

Al-Mughairi, S., Yesudhason, P., Al-Busaidi, M., Al-Waili, A., Al-Rahbi,

WA., Al-Mazrooei, N., dkk. (2013). Concentration and exposure

assessment of mercury in commercial fish and other seafood marketed in

Oman.

American Public Health Association. Standard Method for the examination water

and wastewater. 23rd Edition. 2017; 3114-B, 3030-H.

Anjarsari B. (2010). Pangan Hewani (Fisiologi Pasca Mortem dan Teknologi).

Graha Ilmu, Yogyakarta.

Annual Z. F. (2014). Exposure assessment for mercury and other metals in

commonly consumed fish of west Peninsular Malaysia. PhD in Applied

Science. Faculty of Education, Science, Technology & Mathematics

University of Canberra.

Ashraf, M.A., Maah, J.M., dan Yusoff I. (2012). Bioaccumulation of Heavy

Metals in Fish Species Collected From Former Tin Mining Catchment.

International Journal of Environmental Research. 6(1): 209 - 218

Beckers, F., dan Rinklebe, J. (2017). Cycling of mercury in the environment:

Sources, fate, and human health implications: A review. Critical Reviews

in Environment Science and Technology. 47(9): 693-794.

Bose-O'Reilly, S., McCarty, K.M., Steckling, N., dan Lettmeier, B. (2010).

Mercury exposure and children's health. Current problems in pediatric and

adolescent health care, 40(8): 186-215.

BPOM RI. (2016). Peraturan Kepala Badan Pengawas Obat dan Makanan

Republik Indonesia No. 21 Tentang Kategori Pangan.


https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/?term=Al-Mughairi%20S%5BAuthor%5D&cauthor=true&cauthor_uid=23701530

https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/?term=Yesudhason%20P%5BAuthor%5D&cauthor=true&cauthor_uid=23701530

https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/?term=Al-Busaidi%20M%5BAuthor%5D&cauthor=true&cauthor_uid=23701530

https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/?term=Al-Waili%20A%5BAuthor%5D&cauthor=true&cauthor_uid=23701530

https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/?term=Al-Rahbi%20WA%5BAuthor%5D&cauthor=true&cauthor_uid=23701530

https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/?term=Al-Rahbi%20WA%5BAuthor%5D&cauthor=true&cauthor_uid=23701530

https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/?term=Al-Mazrooei%20N%5BAuthor%5D&cauthor=true&cauthor_uid=23701530

88

BPOM RI. (2018). Peraturan Kepala Badan Pengawas Obat dan Makanan

Republik Indonesia No. 5 Tentang Batas Maksimum Cemaran Logam

Berat dalam Pangan Olahan.

Bussan, D.D., Ryan F., Sessums dan James V. Cizdziel. (2015). Direct mercury

analysis in environmental solids by ICP-MS with on-line sample ashing

and mercury pre-concentration using a direct mercury analyzer. Royal

chemistry Journal. 43 (2): 74 – 78.

Cizdziel,J.V., Hinners, T., dan Heithmar, E.M. (2002). Determination of Total

Mercury in Fish Tissues using Combustion Atomic Absorption

Spectrometry with Gold Amalgamation. Water Air and Soil Pollution.

135; 355–370.

Chan, H.M. (2011). Mercury in Fish : Human health Risks. Journal of

Encyclopedia of Environmental Health. 17 : 697-704)

Chen, Y.C., dan Chen, M.H. (2006). Mercury Levels of Seafood Commonly

Consumed in Taiwan. Journal of Food and Drug Analysis. 14(4): 373-378.

Chen, Y., Dong, X., Dai, Y., Hu, Q., dan Yu, H. (2008). Determination of Trace

Mercury in Chinese Herbal Medicine by Cold Vapour Generation-Atomic

Fluorescence Spectrometry. Asian Journal of Chemistry. 20(6): 4639-

4646.

Choy, C.A., Popp, B.N., Kaneko, J.J., dan Drazen, J.C. (2009). The influence of

depth on mercury level in pelagic fisher and their prey. Departemen of

oceanography. University of Hawai. 106 ; 13865-13869.

Chung, S.W.C., Tong, S.K., Xiao, Y., dan Ho.Y.Y. (2015). Methylmercury and

Long-Chain n-3 Fatty Acids of 88 Fish Species Commonly Consumed in

Hongkong. Journal of Analytical Science and Technology. 6(5); 2-9.

Cladis, D.P. (2014). Fatty Acids and Mercury In Seventy Seven Species of

Commercially Available FinFish In The United State. Purdue University

West Lafayette, Indiana.

Clarkson, T.W., dan Magos, L. (2006). The Toxicology of Mercury and Its

Chemical Compounds. Critical Reviews in Toxicology. 36: 609–662.

Dai, R.R. (2013). “Uji Kadar Merkuri Pada Beberapa Jenis Ikan di Perairan Laut

Sulawesi”. Skripsi, Jurusan Kesehatan Masyarakat, Fakultas Ilmu

Kesehatan Dan Keolahragaan.

Datuela, F. (2015). Analisis Kandungan Merkuri (Hg) pada Jenis Ikan Demersal

di Pasar Tradisional Bilato Kabupaten Gorontalo. Jurnal Jurusan

Teknologi dan Perikanan Gorontalo. 5 ; 1-20


89

Edward, (2017). Kajian awal kadar merkuri (Hg) dalam ikan dan kerang di Teluk

Kao, Pulau Halmahera. Jurnal ilmu-ilmu Perairan, Pesisir dan perikanan.

6(3); 188-198.

Elin, A., dan Ekelund, M. (2015). Human Exposure from Mercury in Rice in the

Philippines. A Minor Field Study in Palawan, the Philippines. Uppsala

University.

Elliott, J.E., Kirk, D.A., Elliott, K.H., Dorzinsky, J., Lee, S., Inzunza, E.R.,

Cheng, K.M.T., dkk. (2015). Mercury in Forage Fish from Mexico and

Central America: Implications for Fish-Eating Birds. Arch Environ

Contam Toxicol. 69: 375–389.

Environmental Protection Agency United States (EPA). (2001). Human Health

Water Quality Criterion for Methylmercury.

Fithriyah, A., Rusmiati., dan Narwati. (2016). Perbedaan Kadar Logam Berat

Merkuri (Hg) Ikan Tenggiri yang dijual di Pantai Kenjeran Surabaya

Tahun 2015. Jurnal Gema Kesehatan Lingkungan. 14(1); 16-19

Food Drug Administration. (2014). A Quantitative Assessment of The Net

Effects On Fetal Neurodevelopment From Eating Commercial Fish (As

Measured by IQ and also by Early Age Verbal Development in Children)

Report and Advice.

Genisa, A.S. (1999). Pengenalan Jenis-jenis Ikan Laut Ekonomi Penting di

Indonesia. Jurnal Oseana. 24(1): 17 – 38.

Hajeb, P.,Jinaps., Fatimah, A.B., dan Jmailah, B. (2010). Methyl Mercury in

Marine Fish From Malaysian Water and its Relationship Total Mercury

Content. International Journal Environment Analysis Chemistry. 90(10);

812-820.

Hananingtyas, I. (2017). Bahaya Kontaminasi Logam Berat Merkuri (Hg) dalam

Ikan Laut dan Upaya Pencegahan Kontaminasi Pada Manusia. Jurnal

Teknik Lingkungan. 2(2) : 35-42.

Handayani, T., Maarif, M.S., Riani, E., dan Djazuli, N. (2019). Kandungan

Logam Berat Merkuri pada Ikan Tuna (Yellowfin dan Bigeye) dan Tuna-

Like (Swordfish) hasil tangkapan dari Samudera Hindia dan Samudera

Pasifik . Jurnal JBP Kelautan dan Perikanan. 14 : 35-44.

Harmita. (2004). Petunjuk Pelaksanaan Validasi Metode dan Cara

Perhitungannya. Majalah Ilmu Kefarmasian. 1(3): 117-122, 127-130.


90

Hels, O., Hassan, N., Tetens, I., dan Thilsted, S.H. (2003). Food consumption,

energy, and nutrient intake and nutritional status in rural Bangladesh:

Changes from 1981–82 to 1995–96. Eur. J. Clin. Nutr. 57: 586-594.

Herawati, D dan Soedaryo. (2017). Pengaruh Perendaman Kerang Darah

(Anadara granosa) dengan perasan Jeruk Nipis Terhadap Kadar Merkuri

(Hg) Dan Kadmium (Cd). Jurnal SainHealth. 1(1): 30-35.

Hikmawati, A., dan Sulistyorini, L. (2006). Perubahan Kadar Merkuri (Hg) pada

Ikan Tongkol dengan perlakuan perendaman Larutan Jeruk Nipis dan

Pemasakan. Jurnal Kesehatan Lingkungan. 3(1); 67-76.

Hong, Y.S., Kim, Y.M., dan Lee, K.E. (2012). Methylmercury Exposure and

Health Effects. Journal of Preventive Medicibe and Public Health. 45:

353-363.

Houserova, P., Kuban, V., dan Habarta, P. (2006). Determination of total mercury

and mercury species in fish and aquatic ecosystems of Moravian rivers.

Journal of Veterinarni Medicina. 51(3); 101–110.

Http://wiki.biodesign.cc/wiki/Mercury

Indasah, (2015). Dampak Penambahan Chelating Agent ( Asam Asetat, Asam

Sitrat, Dan Jeruk Nipis ) Terhadap Kadar Fe,Zn, Dan Protein Daging

Kupang Beras (Carbula faba). Http :// publikasi. Stikessstrada .ac.id

diakses pada tanggal 12 Maret 2015.

Jinadasa, B.K.K.K., Mahaliyana, A.S., Liyanage, N.P.P., dan Jayasinghe,

G.D.T.M. (2015). Trace Metals in the Musle Tissues of Skipjack Tuna in

Sri Lanka. Journal of Cogent Food and Agriculture. 1 : 1-8.

Kevin, M.R., Ernest M.W., Miaozong W., Chris G., dan Eric R.B. Environmental

Mercury and Its Toxic effects. Review. Journal Preventive Medicine and

Public Health. 2014; 47: 74-83.

Kurniawan, I., Mariadi, P.D., dan Febriyeni. (2015). Pengaruh Konsentrasi

Suspensi Nanas dan Perebusan Terhadap Penurunan Kadar Merkuri (Hg)

Pada Ikan Baung (Mystus nemerus) yang di Jual di Pasar Cinde Palembang

Tahun 2015. Jurnal Kinetika. 5: 1-5

Lange, T.R., Royal, H.E., dan Connor, L.L. (1993). Influence of Water Chemistry

on Mercury Concentration in Largemouth Bass from Florida Lakes.

Journal Transaction of the American fisheries Society.122(1); 74-84

Lobus, N.V., dan Komovb, V.T. (2016). Mercury in the Muscle Tissue of Fish in

the Central and South Vietnam. Inland Water Biology. 9(3): 319–328.


http://wiki.biodesign.cc/wiki/Mercury

91

Mahaffey, K. R., Sunderland, E. M., Chan, H. M., Choi, A. L., Grandjean, P.,

Mariën, K., dan Yasutake, A. (2011). Balancing the benefits of n-3

polyunsaturated fatty acids and the risks of methylmercury exposure from

fish consumption. Nutrition Reviews. 69(9): 493-508.

Mahmud, M., Lihawa, F., Banteng, D., Desei, F., dan Saleh,Y. (2017).

Konsentrasi Merkuri pada Ikan di Perairan Laut Sulawesi Akibat

Penambangan Emas Tradisional Buladu Kabupaten Gorontalo Utara.

Jurnal Pengelolahan Lingkungan Berkelanjutan. 1(3); 7-17.

Maria, B. (2002). Sample Digestion Methods for the Determination of Traces of

Precious Metals by Spectrometric Techniques. Analytical Science Review.

18: 734 – 749.

Moraes, P.M., Santos, F.A., Cavecci, B., Padilha, C.C.F.,Vieira, J, C, S., Roldan

P.S., dkk. (2013). GFAAS determination of mercury in muscle samples of

fish from Amazon, Brazil. Journal of Food Chemistry. 2614 – 2617.

Muhammad, A., Zahida, P., Muhammad, I., Riazuddin, Sajid, I., Mubarik, A., dan

Rashid, B. (2010). Monitoring of Toxic Metals (Cadmium, Lead, Arsenic

and Mercury) in Vegetables of Sindh, Pakistan. Kathamandu University

Journal of Science, Engineering and Technology. 6(2): 60-65.

Myers, G.J., Davidson, P.W., dan Strain, J.J. (2007). Nutrient and methyl mercury

exposure from consuming fish. The Journal of Nutrition. 137(12): 2805-

2815.

Nasution, A. I., (2015). Efektivitas Larutan Jeruk Nipis terhadap Penurunan Kadar

Merkuri (Hg) pada ikan Tongkol (Euthynnus sp). Skripsi. Fakultas

Kesehatan Masyarakat. Universitas Sumatera Utara.

Negrete, J.M., Verbel, J.O., Ceballos, E. L., dan Benitez, L.N. (2008). Total

mercury and methylmercury concentration in fish from the Mojana region

of Columbia. Environmental Geochemistry in Health. 30: 21–30.

Nwaigwe, U. (2017). Fish preservation and processing. Journal of Food. 17(8); 1-

32.

Oken, E., Wright, R. O., Kleinman, K. P.,Bellinger, D., Amarasiriwardena, C. J.,

Hu, H., dan Gillman, M. W. (2005). Maternal fish consumption, hair

mercury, and infant cognition in a U.S. Cohort. Environmental Health

Perspectives. 113(10), 1376-1380.

Pal, M., Ghosh, S., Mukhopadhyay, M., dan Ghosh M. (2012). Methyl mercury in

fish a case study on various samples collected from Ganges river at West

Bengal. Journal of Environment Monitoring Assesssment, 184(6):3407-14.


92

Panichev, N.A., dan Panicheva S.E. (2015). Determination of Total Mercury in

Fish and Sea Products by Direct Thermal Decomposition Atomic

Absorption Spectrometry. Journal of Food Chemistry. 15(4); 210-218.

Rahimi, E., Hajisalehi, M., Kazemeini, H.R., Chakeri, A., Khodabakhsh, A.,

Derakhshesh, M., Mirdamadi, M., dkk. (2010). Analysis and

Determination of Mercury, Cadmium and Lead in Canned Tuna Fish

Marketed in Iran. African Journal of Biotechnology. 9(31); 4938-4941.

Rahmadhani, T.V., Tualek A.R., Rahmawat, P., Russen, S.S., Wahy, A., Ahsa.,

Singga S., dkk. (2019). Determination of Mercury (Hg) Risk Level (RQ)

with Exposure through Fish and Drinking Water Consumption in Bulawa

Sub-district, Bone Bolango District, Gorontalo Province, Indonesia. Indian

Journal of Public Health Research & Development. 10(10); 27013-2708.

Redjeki, S, (2004). Pengaruh Pengolahan Terhadap Penurunan Kadar Merkuri

dalam Ikan Keting (Osteogeneiosus militaris). Thesis, Universitas

Airlangga

Rizea, M.C., Bratu, M.C., Danet, A.F., dan Bratu, A. (2007). Determination of

Mercury in Fish Tissue Using a Minianalyzer Based on Cold Vapor

Atomic Absorption Spectrometry at the 184.9 nm Line. Analytical Science

.23: 1121 – 1125.

Rohman, A. (2016). Validasi dan Penjaminan Mutu Metode Analisis Kimia.

Yogyakarta: UGM press. 87-109.

Rosmidah, S. (2005). Analisa Kandungan Merkuri pada ikan (Pisces) dan Kerang

(Mollusca) di TPI (Tempat Pelelangan Ikan ) Belawan. Skripsi. Fakultas

Kesehatan Masyarakat. Universitas Sumatera Utara.

Russo, R., Voi. A.L., De Simione, A., Serpe, F.P., Anastasio, A., Pepe, T., dkk.

(2012). Heavy Metals in Canned Tuna from Italian Markets. Journal of

Food Protection. 76(2); 355–359.

Silalahi J. (2005). Merkuri dan pencemaran Lingkungan. Review Article. Jurnal

Kedokteran dan Farmasi (Medika). 31 : 525 – 528

Silva, M.F., Toth, I.V., dan Rangel, A.O.S.S. (2006). Determination of Mercury in

Fish by Cold Vapor Atomic Absorption Spectrophotometry Using a

Multicommuted Flow Injection Analysis System. The Japan Society for

Analytical Chemistry. 22.

Sparks H. (2010). Benefits of Seafood Consumption Versus Risks of Methyl

Mercury : Does Consumption Warrant Concern? Thesis For Degree of

Master of Science in Earth and Environmental Resource Management

College of Arts and Sciences University of South Carolina.


93

Storelli, Maria. M., Roberto G.S., dan Giuseppe, O. M. (2006). Relationship

between Total Mercury Concentration and Fish Size in Two Pelagic Fish

Species:Implications for Consumer Health. Journal of Food Protection,

Vol. 69, No. 6, 2006, 1402–1405.

Suratno., Cordova, M.R., dan Arinda, S.(2017). Kandungan Merkuri dalam Ikan

Konsumsi di Wilayah Bantul dan Yogyakarta. Oseanologi dan Limonologi

di Indonesia. 2(1): 15–23.

Tong, S., Schirnding, Y.E., dan Prapamontol, T. (2000). Environmental lead

exposure: a public problem of global dimension. Bulletin of the World

Health Organization. 78: 1068–1077.

UNEP Chemicals Brands. (2008). The Global Atmosphere Mercury Assessment.

Sources, Emissions and Transport, United Nations Environment

Programme. UNEP-Chemicals, Geneva.

UNEP Chemicals Brands. (2013). The Global Atmosphere Mercury Assessment.

Sources, Emissions and Transport, United Nations Environment

Programme. UNEP-Chemicals, Geneva.

Vieira, H.C., Bordalo, M.D., Morgado, F., Soares, A.M.V.M., dan Abreu, S.N.

(2017). Mercury Content in the White and Dark Musle of Skipjack Tuna

along the canning process:implication to the consumers. Journal of Food

Composition and analysis. 25; 67-72.

Voegborlo, R.B., dan Akagi, H.(2007). Determination of mercury in fish by cold

vapour atomic absorption spectrometry using an automatic mercury

analyzer. Food Chemistry. 100(1): 853–858.

Wahyu, W., Astiana, S., dan Raymond, J. (2008). Efek Toksik Logam. Penerbit

Andi : Bandung.

Webb, J., Mainville, N., Mergler, D., Lucotte, M., Betancourt, O., Davidson, R.,

Cueva, E., dkk. (2004). Mercury in Fish-eating Communities of the

Andean Amazon,Napo River Valley, Ecuador. EcoHealth Journal

Consortium. 1(2) : 59 – 71.

WHO, (2003). Elemental mercury and Inorganic Mercury Compounds : Human

Health Aspects. Concise International Chemical Assessment Document

50.

WHO. (2010). Children’s Exposure to mrcury compounds. Printed by the WHO

Document Production Service, Geneva, Switzerland.

WHO. (2011). Evaluation of certain contaminants in food: seventy-second report

of the Joint FAO/WHO Expert Committee on Food Additives. WHO

Technical Report Series.


94

Widiastuti, I., dan Putro. S. (2010). Analisis Mutu Ikan Tuna Selama Lepas

Tangkap. Maspari Journal. 01 : 22-29.

Widowati, W., Sastiono, A., dan Rumampuk, R.J. 2008. Efek toksik logam

pencegahan dan penanggulangan pencemaran.Yogyakarta: Penerbit Andi.

Halaman 127 – 149.

Winarno, F.G. (2006). Kimia Pangan dan Gizi. Gramedia Pustaka Utama: Jakarta

Xiao, J. (2004). Sample Preparation and Heavy Metal Determination by Atomic

Spectrometry.

Zillioux, E. (2015). Mercury in Fish: History, Sources, Pathways, Effects, and

Indicator Usage. Journal Environmental Indicators. 3(2): 743-768.


95

Lampiran 1. Gambar Alat

Gambar 1. Timbangan Analitik

Gambar 2. Oven


96

Gambar 3. Lampu Katoda EDL

Gambar 4. Alat Mercury Hidride System (HMS)


97

Gambar 5. Atomic Absorption Spectrophotometer 900H -MHS-15 (Mercury

Hidride System).

Keterangan Gambar ;

a : Sampel larutan uji

b : MHS (Mercury Hidride system), proses atomisasi dengan larutan natrium

boro hidrid (NaHB4)

c : Saluran gas merkuri (Hg0) yang dibawa oleh gas argon

d : QTA (Quartz Tube Anayzer) Cold Vapour, ruang tempat gas merkuri yang

akan disinari oleh lampu katoda

e : Lampu katoda

f : Lubang sinar katoda menembak gas merkuri

g : Sinar masuk melalui lubang detektor dan dibaca.

b

a

c

d

e

f g


98

Lampiran 2. Data Spesifikasi Sampel

No Nama Sampel Pengambilan Sampel Panjang

Sampel

Berat

Sampel Tanggal Lokasi

1 Ikan Tuna 11 Desember

2019

Berastagi

Super

Market

55 cm 1,5 kg

2 Ikan Tongkol 11 Desember

2019

Pasar T. Sei

Sekambing 50 cm 1,38 kg

3 Ikan Cakalang 10 Desember

2019

Pasar.T

Petisah 44 cm 1,25 kg

4 Ikan Tenggiri 10 Desember

2019

Pasar.T

Petisah 76 cm 2,2 kg

5 Ikan Kerapu 12 Desember

2019

Pasar.T

Sambu 44 cm 820 g

6 Ikan Kakap Merah 12 Desember

2019

Pasar.T

Glugur 80 cm 8,2 kg

7 Ikan Manyung 10 Desember

2019

Pasar.T

Selayang 37 cm 770 gr

8 Ikan Pari 11 Desember

2019

Pasar.T

Glugur 64 cm 5,9 kg

9 Ikan Bawal Hitam 12 Desember

2019

Pasar.T

Johor 34 cm 840 g

10 Ikan kembung 11 Desember

2019

Pasar.T

P. Bulan 23 cm 150 g

11 Ikan Sardin 11 Desember

2019

Pasar.T

Selayang 17 cm 90 g


99

Dimasukkan ke dalam oven

dengan suhu 103 -105oC selama 1 malam

satu gram Ikan

Ditambah 5 ml HNO3 pekat

Dicuci dan ditiriskan

Dihaluskan

Ditimbang

Dipanaskan dengan suhu 60oC sampai

diperoleh larutan tersisa 1-2 ml,

Didinginkan

Ditambahkan 10 ml HNO3 pekat

dan 10 ml HClO4 pekat

Larutan sisa 1-2 ml

Dipanaskan dengan suhu 60oC

Didinginkan

Ditambah 50 ml air deionisasi

Dididihkan

Didinginkan

n

Larutan jernih hasil digesti

Disaring dengan kertas Whatman 42

Dimasukkan ke dalam labu tentukur 100 ml

Diukur dengan spektrofotometri serapan

atom pada λ 253.65

Hasil

Lampiran 3. Bagan Alir Pembuatan Larutan Uji

Lima puluh gram Ikan


100

Larutan Baku Induk Merkuri 1000 mg/l

Dipipet sebanyak 10 ml

Dimasukkan kedalam labu tentukur 100 ml

Diencerkan hingga garis tanda dengan HNO3 1,5%

dan beberapa tetes KMnO4

Larutan Baku Antara I

100 mg/l

Dipipet sebanyak 0,5 ml

Dimasukkan kedalam labu tentukur 100 ml

Larutan Baku Antara II

0,5 mg/l

Dipipet masing-masing sebanyak 1,0; 2,0; 4,0; 10 ml



Dimasukkan masing-masing kedalam

labu tentukur 100 ml



Diukur dengan spektrofotometri serapan

atom pada λ 253.65

Hasil Pengukuran

Lampiran 4. Bagan Alir Pembuatan Larutan Standar


101

Lampiran 5. Tabel Distribusi t


102

Lampiran 6. Data Kalibrasi Merkuri Dengan Spektrofotometer Serapan

Atom, Perhitungan Persamaan Garis Regresi dan Koefisien

Korelasi (r).

No Konsentrasi

(X)

Absorbansi

(Y)

1 0,0000 0

2 5,0000 0,0758

3 10,0000 0,1370

4 20,0000 0,2642

5 50,0000 0,6260

No Konsentrasi

(µg/L) (X)

Absorbansi

(Y) X.Y X² Y²

1 0,0000 0 0 0 0,0000

2 5,0000 0,0758 0,3925 25 0,0057

3 10,0000 0,1370 1,3700 100 0,0187

4 20,0000 0,2642 5,2840 400 0,0698

5 50,0000 0,6260 31,3000 2500 0,3918

Σ 85,0000 1,1033 38,3465 3025 0,4860

X 17 0,2206

a = ∑ XY-(∑X)(∑Y)/n

∑X2- (∑X)²/n

= 38,3465−(85)(1,1030)/5

3025 −(85)2/5

= 0,01241

b = Y – aX

= 0,22009 – 0,01241 (17)

= 0,00998


103

∑XY - ∑X ∑Y /n

{∑X2 – (∑X)2 /n} {∑Y2 – (∑Y)2/ n}

38.3465 – (85 x 1,1033)/ 5

{(3025) - (85)2/6}{(0,4860) - (1,1033)2/5}

Maka, persamaan garis regresinya :

y = ax +b

y = 0,01241x + 0.00998

r = 0,999478

r =

r =


104

Lampiran 7. Data Pengukuran Asorbansi Larutan Sampel

1. Ikan Tuna

Kode

Sampel

P.8721-1

Sampel Berat

Sampel (g)

Absorbansi

(y)

Konsentrasi

(µg/L)

Kadar

(mg/kg)

1 1,0147 0,0134 0,27558 0,0271587

2 1,0021 0,0134 0,27558 0,0275002

3 1,0204 0,0134 0,27558 0,0275007

Kadar rata-rata 0,0273865

2. Ikan Tongkol

Kode

Sampel

P.8721-2

Sampel Berat

Sampel (g)

Absorbansi

(y)

Konsentrasi

(µg/L)

Kadar

(mg/kg)

1 1,0013 0,0122 0,17888 0,0178647

2 1,0021 0,0122 0,17888 0,0178505

3 1,0018 0,0122 0,17888 0,0178558


3. Ikan Cakalang

Kode

Sampel

P.8721-3

Sampel Berat

Sampel (g)

Absorbansi

(y)

Konsentrasi

(µg/L)

Kadar

(mg/kg)

1 1,0745 0,0122 0,17888 0,0166477

2 1,0019 0,0122 0,17888 0,0178540

3 1,0021 0,0122 0,17888 0,0178505


4. Ikan Tenggiri

Kode

Sampel

P.8721-4

Sampel Berat

Sampel (g)

Absorbansi

(y)

Konsentrasi

(µg/L)

Kadar

(mg/kg)

1 1,0715 0,0114 0,11442 0,0106784

2 1,0041 0,0113 0,10636 0,0105925

3 1,0169 0,0113 0,10636 0,0104592



105

5. Ikan Kerapu

Kode

Sampel

P.8721-5

Sampel Berat

Sampel (g)

Absorbansi

(y)

Konsentrasi

(µg/L)

Kadar

(mg/kg)

1 1,0205 0,0112 0,09830 0,0096325

2 1,0007 0,0112 0,09830 0,0098231

3 1,0163 0,0113 0,10636 0,0104654


6. Ikan Kakap Merah

Kode

Sampel

P.8721-6

Sampel Berat

Sampel (g)

Absorbansi

(y)

Konsentrasi

(µg/L)

Kadar

(mg/kg)

1 1,0461 0,0118 0,14665 0,0140187

2 1,0018 0,0118 0,14665 0,0146386

3 1,0166 0,0117 0,13859 0,0136326


7. Ikan Mayung

Kode

Sampel

P.8721-7

Sampel Berat

Sampel (g)

Absorbansi

(y)

Konsentrasi

(µg/L)

Kadar

(mg/kg)

1 1,0063 0,0117 0,13859 0,0137722

2 1,0064 0,0116 0,13053 0,0129699

3 1,0027 0,0116 0,13053 0,0130178


8. Ikan Pari

Kode

Sampel

P.8721-8

Sampel Berat

Sampel (g)

Absorbansi

(y)

Konsentrasi

(µg/L)

Kadar

(mg/kg)

1 1,0171 0,0177 0,62207 0,0611611

2 1,0078 0,0176 0,61402 0,0609267

3 1,0187 0,0178 0,63013 0,0618562



106

9. Ikan Bawal Hitam

Kode

Sampel

P.8721-9

Sampel Berat

Sampel (g)

Absorbansi

(y)

Konsentrasi

(µg/L)

Kadar

(mg/kg)

1 1,0009 0,0113 0,10636 0,0106264

2 1,0046 0,0114 0,11142 0,0110909

3 1,0025 0,0113 0,10636 0,0106094


10. Ikan Kembung

Kode

Sampel

P.8721-10

Sampel

Berat

Sampel

(g)

Absorbansi

(y)

Konsentrasi

(µg/L)

Kadar

(mg/kg)

1 1,0317 0,0108 0,06607 0,0064039

2 1,0004 0,0108 0,06607 0,0066043

3 1,0009 0,0108 0,06607 0,0066010


11. Ikan Sardin

Kode

Sampel

P.8721-11

Sampel

Berat

Sampel

(g)

Absorbansi

(y)

Konsentrasi

(µg/L)

Kadar

(mg/kg)

1 1,0037 0,0108 0,06607 0,0065826

2 1,0039 0,0108 0,06607 0,0065813

3 1,0203 0,0108 0,06607 0,0064755



107

Lampiran 8. Contoh Perhitungan Kadar Merkuri pada Ikan

1. Contoh perhitungan kadar Merkuri pada Ikan Tuna

Berat sampel yang ditimbang = 1,0147 g

Absorbansi (Y) = 0,0134

Persamaan garis regresi: Y = 0,01241 X + 0,00998

X = 0,0134 - 0,00998

0,01241 = 0,27558 µg/L

Konsentrasi merkuri = 0,27558 µg/L

Kadar (µg/g) =Konsentrasi (µg/mL ) x Volume (mL) x Faktor pengenceran

Berat Sampel (g)

= 0,00027558 µg/mL x 100 mL x 1

1,0147 g

= 0,0271587 µg/g

= 0,0271587 mg/kg

2. Contoh Perhitungan Kadar Merkuri pada Ikan Tongkol

Berat sampel yang ditimbang = 1,0013 g

Absorbansi (Y) = 0,0122

Persamaan garis regresi: Y = 0,01241 X + 0,00998

X = 0,0122- 0,00998

0,01241 = 0,17888 µg/L

Konsentrasi merkuri = 0,17888 µg /L

Kadar (µg/g) =Konsentrasi (µg/mL) x Volume (mL) x Faktor pengenceran

Berat Sampel (g)

= 0,00017888 µg/mL x 100 mL x 1

1,0013 g

= 0,0178647 µg /g

= 0,0178647 mg/kg


108

Lampiran 9. Perhitungan Statistik Kadar Merkuri pada Ikan

1. Perhitungan Statistik Kadar Merkuri pada Ikan Tuna

Sampel Xi

Kadar (µg/kg)

Xi- X

(Xi-X)2

1 27,1587 -0,2278 0,051899284

2 27,5002 0,1137 0,01292769

3 27,5007 0,1142 0,01304164

∑X = 82,1596

∑(Xi-X)2 =

0,077868614

X = 27,3865

SD = √∑(Xi−X)²

𝑛−1

SD = √0,077868614

3−1

SD= 0,1973177818

SD= 0,1973

Pada interval kepercayaan 95% dengan nilai α= 0,01 dk=2 diperoleh nilai

t tabel = α/ 2, dk = 2,9199. Data diterima jika thitung ≤ ttabel

thitung =|𝑋𝑖−�̅�

𝑆𝐷/√𝑛|

thitung 1 =|−0,2278

0,1973/√3|= 2,0000

thitung 2 =|0,1137

0,1973/√3|= 0,9982

thitung 3 =|0,1142

0,1973/√3|= 1,0026


109

Dari hasil perhitungan diatas diperoleh semua thitung ≤ ttabel ,maka semua

data diterima.

Kadar Merkuri pada Ikan Tuna adalah :

µ = �̅� ± (t (α / 2, dk) x SD / √𝑛)

= 27,3865 ± (2,9199 x 0,1973/ √3 )

= (27,3865 ± 0,3326) µ/kg

Kadar Merkuri pada Ikan Tuna sebenarnya terletak antara:

(27,3865 ± 0,3326) µg/kg

2. Perhitungan Statistik Kadar Merkuri pada Ikan Tongkol

Sampel Xi

Kadar (µg/kg)

Xi- X

(Xi-X)2

1 17,8647 0,0077 0,00005929

2 17,8505 -0,0065 0,00004225

3 17,8558 -0,0012 0,00000144

∑X = 53,5710

∑(Xi-X)2=

0,00010298

X = 17,8570

SD = √∑(Xi−X)²

𝑛−1

SD = √0,00010298

3−1

SD= 0,0071756533

SD= 0,0072




110


𝑆𝐷/√𝑛|

thitung 1=|0,0077

0,0072/√3|= 1,8780

thitung 2 =|−0,0065

0,0072/√3|= 1,5853

thitung 3 =|−0,0012

0,0072/√3|= 0,2926


data diterima.

Kadar Merkuri pada Ikan Tongkol adalah :

µ = �̅� ± (t (α / 2, dk) x SD / √𝑛)

= 17,8570 ± (2,9199 x 0,0072/ √3 )

= (17,8570 ± 0,0121) µg/kg

Kadar Merkuri pada Ikan Tongkol sebenarnya terletak antara:

(17,8570 ± 0,0121) µ/kg

3. Perhitungan Statistik Kadar Merkuri pada Ikan Cakalang

Sampel Xi

Kadar (mg/kg)

Xi- X

(Xi-X)2

1 16,6477 -1,2063 1,45515969

2 17,8540 0,4033 0,16265089

3 17,8505 0,3998 0,15984004

∑X = 52,3522

∑(Xi-X)2=

1,77765062

X = 17,4507


111

SD = √∑(Xi−X)²

𝑛−1

SD = √1,77765062

3−1

SD= 0,9427753232

SD= 0,9428




𝑆𝐷/√𝑛|

thitung 1 =|−1,2063

0,9428/√3|= 2,2162

thitung 2 =|0,4033

0,9428/√3|= 0,7409

thitung 3 =|0,3988

0,9428/√3|= 0,7326


data diterima.

Kadar Merkuri pada Ikan Cakalang adalah :

µ = �̅� ± (t (α / 2, dk) x SD /√𝑛)

= 17,4507 ± (2,9199 x 0,9428/√3 )

= (17,4507 ± 1,5893) µg/kg

Kadar Merkuri pada Ikan Cakalang sebenarnya terletak antara:

(17,4507 ± 1,5893) µ/kg

4. Perhitungan Statistik Kadar Merkuri pada Ikan Tenggiri


112

Sampel Xi

Kadar (µg/kg)

Xi- X

(Xi-X)2

1 10,6784 0,1017 0,01034286

2 10,5925 0,0158 0,00024964

3 10,4592 -0,1175 0,01380625

∑X = 31,7301

∑(Xi-X)2=

0,02439875

X = 10,5767

SD = √∑(Xi−X)²

𝑛−1

SD = √0,02439875

3−1

SD= 0,1104507809

SD= 0,1105




𝑆𝐷/√𝑛|

thitung 1=|0,1017

0,1105/√3|= 1,5965

thitung 2 =|0,0158

0,1105/√3|= 0,0637

thitung 3 =|−0,1175

0,1105/√3|= 1,8445


data diterima.

Kadar Merkuri pada Ikan Tenggiri adalah :


113

µ = �̅� ± (t (α / 2, dk) x SD /√𝑛)

= 10,5767 ± (2,9199 x 0,1105/√3 )

= (10,5767 ± 0,1862) µg/kg

Kadar Merkuri pada Ikan Tenggiri sebenarnya terletak antara:

(10,5767 ± 0,1862) µ/kg

5. Perhitungan Statistik Kadar Merkuri pada Ikan Kerapu

Sampel Xi

Kadar (µg/kg)

Xi- X

(Xi-X)2

1 9,6325 -0,3411 0,11634921

2 9,8231 -0,1505 0,02265025

3 10,4654 0,4918 0,24186724

∑X = 29,9210

∑(Xi-X)2 =

0,58471895

X = 9,9736

SD = √∑(Xi−X)²

𝑛−1

SD = √0,58471895

3−1

SD= 0,5407027372

SD= 0,5407




𝑆𝐷/√𝑛|

thitung 1=|−0,3411

0,5407/√3|= 1,0929


114

thitung 2 =|−0,1505

0,5407/√3|= 0,4822

thitung 3 =|0,4918

0,5407/√3|= 1,5757


data diterima.

Kadar Merkuri pada Ikan Kerapu adalah :

µ = �̅� ± (t (α / 2, dk) x SD /√𝑛)

= 9,9736 ± (2,9199 x 0,5407/√3 )

= (9,9736 ± 0,9115) µg/kg

Kadar Merkuri pada Ikan Kerapu sebenarnya terletak antara:

(9,9736 ± 0,9115) µ/kg

6. Perhitungan Statistik Kadar Merkuri pada Ikan Kakap Merah

Sampel Xi

Kadar (µg/kg)

Xi- X

(Xi-X)2

1 14.0187 -0,0779 0,00606841

2 14,6386 0,5420 0,29376400

3 13,6326 -0,4640 0,21529600

∑X = 42,2899

∑(Xi-X)2 =

0,51512841

X = 14,0966

SD = √∑(Xi−X)²

𝑛−1

SD = √0,51512841

3−1

SD= 0,5075078374

SD= 0,5075


115



thitung = |𝑋𝑖−�̅�

𝑆𝐷/√𝑛|

thitung 1= |−0,0779

0,5075/√3|= 0,2658

thitung 2 =|0,5420

0,5075/√3|= 1,8498

thitung 3 =|−0,4640

0,5075/√3|= 1,5836


data diterima.

Kadar Merkuri pada Ikan Kakap Merah adalah :

µ = �̅� ± (t (α / 2, dk) x SD /√𝑛)

= 14,0966 ± (2,9199 x 0,5075/√3 )

= (14,0966 ± 0,8555) µg/kg

Kadar Merkuri dari Ikan Kakap Merah sebenarnya terletak antara:

(14,0966 ± 0,8555) µ/kg

7. Perhitungan Statistik Kadar Merkuri pada Ikan Manyung

Sampel Xi

Kadar (µg/kg)

Xi- X

(Xi-X)2

1 13.7722 0,5189 0,26925721

2 12,9699 -0,2834 0,08031556

3 13,0178 -0,2355 0,05546025

∑X = 39,7599

∑(Xi-X)2 =

0,40503302

X = 13,2533


116

SD = √∑(Xi−X)²

𝑛−1

SD = √0,40503302

3−1

SD= 0,4500183441

SD= 0,4500



thitung = |𝑋𝑖−�̅�

𝑆𝐷/√𝑛|

thitung 1= |0,5189

0,4500/√3|= 1,9973

thitung 2 =|−0,2834

0,4500/√3|= 1,0908

thitung 3 =|−0,2355

0,4500/√3|= 0,9064


data diterima.

Kadar Merkuri pada Ikan Manyung adalah :

µ = �̅� ± (t (α / 2, dk) x SD /√𝑛)

= 13,2533 ± (2,9199 x 0,4500/√3 )

= (13,2533 ± 0,7586) µg/kg

Kadar Merkuri pada Ikan Manyung sebenarnya terletak antara:

(13,2533 ± 0,7586) µ/kg


117

8. Perhitungan Statistik Kadar Merkuri pada Ikan Pari

Sampel Xi

Kadar (µg/kg)

Xi- X

(Xi-X)2

1 61,1611 -0,1535 0,02356225

2 60,9267 -0,3879 0,15046641

3 61,8562 0,5416 0,29333056

∑X = 183,9440

∑(Xi-X)2 =

0,46735922

X = 61,3146

SD = √∑(Xi−X)²

𝑛−1

SD = √0,46735922

3−1

SD= 0,4834041891

SD= 0,4834




𝑆𝐷/√𝑛|

thitung 1=|−0,1535

0,4834/√3|= 0,5501

thitung 2 =|−0,3879

0,4834/√3|= 1,3903

thitung 3 =|0,5416

0,4834/√3|= 1,9412


data diterima.


118

Kadar Merkuri pada Ikan Pari adalah :

µ = �̅� ± (t (α / 2, dk) x SD /√𝑛)

= 61,3146 ± (2,9199 x 0,4834/√3 )

= (61,3146 ± 0,8149) µg/kg

Kadar Merkuri dari Ikan Pari sebenarnya terletak antara:

(61,3146 ± 0,8149) µ/kg

9. Perhitungan Statistik Kadar Merkuri pada Ikan Bawal

Sampel Xi

Kadar (µg/kg)

Xi- X

(Xi-X)2

1 10,6264 -0,1491 0,02223081

2 11,0909 0,3154 0,09947716

3 10,6094 -0,1661 0,02758921

∑X = 32,3267

∑(Xi-X)2 =

0,14929718

X = 10,7755

SD = √∑(Xi−X)²

𝑛−1

SD = √0,14929718

3−1

SD= 0,2732189415

SD= 0,2732




𝑆𝐷/√𝑛|

thitung 1=|−0,1491

0,2732/√3|= 0,9454


119

thitung 2 =|0,3154

0,2732/√3|= 2,0000

thitung 3 =|−0,1661

0,2732/√3|= 1,0532


data diterima.

Kadar Merkuri pada Ikan Bawal hitam adalah :

µ = �̅� ± (t (α / 2, dk) x SD /√𝑛)

= 10,7755 ± (2,9199 x 0,2732/√3 )

= (10,7755 ± 0,4605) µg/kg

Kadar Merkuri pada Ikan Bawal hitam sebenarnya terletak antara:

(10,7755 ± 0,4605) µ/kg

10. Perhitungan Statistik Kadar Merkuri pada Ikan Kembung

Sampel Xi

Kadar (µg/kg)

Xi- X

(Xi-X)2

1 6,4039 -0,1325 0,01755625

2 6,6043 0,0679 0,00461041

3 6,6010 0,0646 0,00417316

∑X = 19,6092

∑(Xi-X)2 =

0,02633982

X = 6,5364

SD = √∑(Xi−X)²

𝑛−1

SD = √0,02633982

3−1

SD= 0,1147602283


120

SD= 0,1148




𝑆𝐷/√𝑛|

thitung 1=|−0,1325

0,1148/√3|= 2,0015

thitung 2 =|0,0679

0,1148/√3|= 1,0256

thitung 3 =|0,0646

0,1148/√3|= 0,9758


data diterima.

Kadar Merkuri pada Ikan Kembung adalah :

µ = �̅� ± (t (α / 2, dk) x SD /√𝑛)

= 6,5364 ± (2,9199 x 0,1148/√3 )

= (6,5364 ± 0,1935) µg/kg

Kadar Merkuri pada Ikan Kembung sebenarnya terletak antara:

(6,5364 ± 0,1935) µ/kg

11. Perhitungan Statistik Kadar Merkuri pada Ikan Sardin

Sampel Xi

Kadar (µg/kg)

Xi- X

(Xi-X)2

1 6,5826 0,0362 0,00131044

2 6,5813 0,0349 0,00121801

3 6,4755 -0,0709 0,00502681

∑X = 19,6394

∑(Xi-X)2 =

0,00755526

X = 6,5464


121

SD = √∑(Xi−X)²

𝑛−1

SD = √0,00755526

3−1

SD= 0,0614624275

SD= 0,0615




𝑆𝐷/√𝑛|

thitung 1=|0,0362

0,0615/√3|= 1,0197

thitung 2 =|0,0349

0,0615/√3|= 0,9830

thitung 3 =|−0,0709

0,0615/√3|= 1,9971


data diterima.

Kadar Merkuri pada Ikan Sardin adalah :

µ = �̅� ± (t (α / 2, dk) x SD /√𝑛)

= 6,5464 ± (2,9199 x 0,0615/√3 )

= (6,5464 ± 0,1036) µg/kg

Kadar Merkuri pada Ikan Sardin sebenarnya terletak antara:

(6,5464 ± 0,1036) µ/kg


122

Lampiran 10. Rekapitulasi Kadar Merkuri Setelah Perhitungan Statistik

No Jenis Ikan Kode Sampel Kadar Merkuri

(µg/kg)

1 Ikan Tuna P.8721-1 27,3865 ± 0,3326

2 Ikan Tongkol P.8721-2 17,8570 ± 0,0121

3 Ikan Cakalang P.8721-3 17,4507 ± 1,5893

4 Ikan Tenggiri P.8721-4 10,5767 ± 0,1862

5 Ikan Kerapu P.8721-5 9,9736 ± 0,9115

6 Ikan Kakap Merah P.8721-6 14,0966 ± 0,8555

7 Ikan Manyung P.8721-7 13,2533 ± 0,7586

8 Ikan Pari P.8721-8 61,3146 ± 0,8149

9 Ikan Bawal P.8721-9 10,7755 ± 0,4605

10 Ikan Kembung P.8721-10 6,5364 ± 0,1935

11 Ikan Sardin P.8721-11 6,5464 ± 0,1036


123

Lampiran 11. Contoh Perhitungan Uji Recovery Merkuri pada Ikan Sardin

Metode simulasi (spiked placebo recovery) dapat ditentukan dengan rumus

berikut :

Recovery (%) = [𝑐] 𝑠𝑎𝑚𝑝𝑒𝑙+𝑠𝑝𝑖𝑘𝑒−[𝑐]𝑠𝑎𝑚𝑝𝑒𝑙

[𝑐]𝑠𝑝𝑖𝑘𝑒 x 100%

Konsentrasi sampel = 0,0067 mg/kg

Konsentrasi spike = 0,072 mg/kg ( 7,2 mg/kg dalam 100 ml)

Konsentrasi sampel + spike = 0,0800

Recovery (%) = 0,0800 𝑚𝑔/𝑘𝑔 − 0,0067 𝑚𝑔/𝑘𝑔

0,072 𝑚𝑔/𝑘𝑔 x 100%

= 101,8055 %

Lampiran 12. Hasil Perhitungan Uji Perolehan Kembali (Recovery)

Sampel

Ikan

Sardin

Konsentrasi

sampel (mg/kg)

Konsentrasi

spike (mg/kg)

Konsentrasi

spike + sampel

(mg/kg)

% Recovery

1. 0,0067 0,072 0,0800 101,8055

2. 0,0069 0,072 0,0838 106,8055

3. 0,0069 0,072 0,0791 100,2777

∑

308,8887

X 102,9629


124

Lampiran 13. Perhitungan Simpangan Baku (SD) dan Simpangan Baku

Relatif (RSD) Merkuri pada Ikan Sardin

1. Perhitungan Simpangan Baku Relatif (RSD) Kadar Merkuri pada Ikan Sardin

No. % Perolehan Kembali (Xi) (Xi- X ) (Xi- X )2

1. 101,8055 -1,1574 1,3395

2. 106,8055 3,8426 14,7655

3. 100,2777 -2,0742 4,3023

∑ 308,8887

20,4073

X 102,9629 6,8024

SD = ( )

1-n

X -Xi2

= √6,8024

3−1

= 1,8442

RSD = X

SD x 100%

= 1,8442

102,9629 x 100%

= 1,7911 %


125

Lampiran 14. Perhitungan Batas Deteksi dan Batas Kuantitasi Merkuri

1. Perhitungan Batas Deteksi dan Batas Kuantitasi merkuri

Y = 0,01241 X + 0,00998

Slope = 0,01241

No Konsentrasi

(µg/L) (X)

Absorbansi

(Y) Yi Y-Yi (Y-Yi)²

1 0,0000 0 0,00998 -0,00998 0,00009

2 5,0000 0,0758 0,07203 0,00377 0,00001

3 10,0000 0,1370 0,13408 0,00347 0,00001

4 20,0000 0,2642 0,25818 0,00602 0,00003

5 50,0000 0,6260 0,63048 -0,00448 0,00002

∑(Y-Yi)2 0,00015

Simpangan Baku (SY/X) = √∑(Y−Yi)²

𝑛−2

= √0,00015

3

= 0,0070 µg/L

Batas Deteksi (LOD) = 3 X 𝑆𝑌

𝑋⁄

𝑠𝑙𝑜𝑝𝑒

=3 x 0,0070

0,01241

= 1,6921 µg/L

Batas Kuantitasi (LOQ) = 10 X 𝑆𝑌

𝑋⁄

𝑠𝑙𝑜𝑝𝑒

=10 x 0,0070

0,01241

= 5,0406 µg/L


126

Lampiran 15. Analisa Resiko Merkuri

Konsumsi ikan harian rerata di Indonesia adalah 37 g/orang/hari (Edward, 2017).

Kadar merkuri tertinggi dijumpai dalam daging ikan pari (Dasyatis sp) yakni

0,06131 mg/kg, dengan kata lain di dalam 1 kg daging ikan pari (Dasyatis sp)

terdapat 0,06131 mg Hg.

Penentuan nilai DI (Daily Intake) bila berat rata-rata orang Indonesia

dianggap 60 kg.


Body Weight (kg)

Keterangan:

DI = Daily Intake

C(Hg) = Concentration in fish (μg/g)

I =Mean Fish Consumption (g/orang/hari)

Maka dengan rumus diatas dapat dipeoleh nilai DI (Daily Intake) :


Body Weight (kg)

DI = 0,06131 (μg/g) x 37g/hari)

60 (kg)

DI = 0,037 μg/kg BB/Hari

Setelah diperoleh nilai Daily Intake-nya maka dapat diketahui nilai Weekly Intake-

nya dengan rumus :

PTWI = 7 x Daily Intake = 7 x 0,0378 μg/kg BB/Hari = 0,2646 μg/kg BB/minggu

RfD (Reference Doses) untuk Hg adalah 2,1 µg per kg BB/minggu

RQ = pTWI/RfD = 0.2646/2,1 = 0,126 (RQ<1 )

(Ikan Pari aman untuk dikonsumsi)


127

Lampiran 16. Data Baku Hasil Penelitian

1. Kurva Kalibrasi


128

2. Data Baku Analisis


129


130


131


132


133


134


135


136


137


138


139


140


141


142


143


144


145


146

Lampiran 17. Peraturan Kepala Badan Pengawas Obat dan Makanan RI


147


148


149


150


151


152

Lampiran 18. Gambar Sampel Ikan

1. Ikan Tuna

2. Ikan Tongkol

3. Ikan Cakalang


153

4. Ikan Kerapu

5. Ikan Tenggiri

6. Ikan Kakap Merah


154

7. Ikan Manyung

8. Ikan Pari

9. Ikan Bawal


155

10. Ikan Kembung

11. Ikan Sardin


TESIS ANALISIS MERKURI PADA BERBAGAI JENIS IKAN YANG ...

Documents

Transcript of TESIS ANALISIS MERKURI PADA BERBAGAI JENIS IKAN YANG ...