PERCOBAAN IPENENTUAN BILANGAN PEROKSIDAA. TUJUAN Menghitung bilangan peroksida pada sampel yang digunakan yaitu minyak goreng baru dan minyak goreng bekas. Untuk menentukan degradasi/ derajat kerusakan pada minyak goreng.B. PERINCIAN KERJA Menyiapkan sampel Mendiamkan di ruangan gelap Proses titrasiC. ALAT DAN BAHANAlat yang digunakan: Erlenmeyer 250 mL Gelas Ukur 100 mL Buret Pipet tetes Labu SemprotBahan yang digunakan: Minyak Goreng Baru Minyak Goreng Bekas/Jelantah Asam Asetat Glacial Kloroform KI Natrium Tiosulfat 0,1 N Indikator Kanji AquadestD. DASAR TEORIBilangan peroksida adalah indeks jumlah lemak atau minyak yang telah mengalami oksidasiAngka peroksida sangat penting untuk identifikasi tingkat oksidasi minyak. Minyakyang mengandung asam- asam lemak tidak jenuh dapat teroksidasi oleh oksigen yangmenghasilkan suatu senyawa peroksida. Cara yang sering digunakan untuk menentukanangka peroksida adalah dengan metoda titrasi iodometri. Penentuan besarnya angka peroksida dilakukan dengan titrasi iodometriSalah satu parameter penurunan mutu minyak goreng adalah bilangan peroksida Pengukuran angka peroksida pada dasarnya adalah mengukur kadar peroksida dan hidroperoksida yang terbentuk pada tahap awal reaksi oksidasi lemak. Bilangan peroksida yang tinggi mengindikasikan lemak atau minyak sudah mengalami oksidasi, namun pada angka yang lebih rendah bukan selalu berarti menunjukkan kondisi oksidasi yang masih dini. Angka peroksida rendah bisa disebabkan laju pembentukan peroksida baru lebih kecil dibandingkan dengan laju degradasinya menjadi senyawa lain, mengingat kadar peroksida cepat mengalami degradasi dan bereaksi dengan zat lain Oksidasi lemak oleh oksigen terjadi secara spontan jika bahan berlemak dibiarkan kontak dengan udara, sedangkan kecepatan proses oksidasinya tergantung pada tipe lemak dan kondisi penyimpanan. Minyak curah terdistribusi tanpa kemasan, paparan oksigen dan cahaya pada minyak curah lebih besar dibanding dengan minyak kemasan. Paparan oksigen, cahaya, dan suhu tinggi merupakan beberapa faktor yang mempengaruhi oksidasi. Penggunaan suhu tinggi selama penggorengan memacu terjadinya oksidasi minyak. Kecepatan oksidasi lemak akan bertambah dengan kenaikan suhu dan berkurang pada suhu rendah.Peroksida terbentuk pada tahap inisiasi oksidasi, pada tahap ini hidrogen diambil dari senyawa oleofin menghasikan radikal bebas. Keberadaan cahaya dan logam berperan dalam proses pengambilan hidrogen tersebut. Radikal bebas yangterbentuk bereaksi dengan oksigen membentuk radikal peroksi, selanjutnya dapat mengambil hidrogen dari molekul tak jenuh lain menghasilkan peroksida dan radikal bebas yang baruPeroksida dapat mempercepat proses timbulnya bau tengik dan flavor yang tidak dikehendaki dalam bahan pangan. Jika jumlah peroksida lebih dari 100 meq peroksid/kg minyak akan bersifat sangat beracun dan mempunyai bau yang tidak enak. Kenaikan bilangan peroksida merupakan indikator bahwa minyak akan berbau tengik.Selain itu, peroksida dapat menyebabkan destruksi beberapa macam vitamin dalam bahan pangan berlemak (misalnya vitamin A, C, D, E, K dan sejumlah kecil vitamin B). Bergabungnya peroksida dalam sistem peredaran darah, mengakibatkan kebutuhan vitamin E meningkat lebih besar. Padahal vitamin E dibutuhkan untuk menangkal radikal bebas yang ada dalam tubuh.E. PROSEDUR KERJA5 gram contoh dilarutkan dalam 30 ml campuran larutan dari asam asetat glasial dan kloroform (2 : 3). Tambahkan larutan KI jenuh sebanyak 0,5 ml sambil dikocok dan 30 ml aquades. Selanjutnya titrasi dengan larutan standar natrium tiosulfat 0,1 N dengan larutan kanji/pati sebagai indikator hingga warna kuning hilang. Blanko dibuat dengan cara yang sama. Bilangan peroksida dihitung dengan rumus :Bilangan peroksida (mekv/1000 g)Keterangan : V1= Volume larutan natrium tiosulfat untuk minyak (ml)V0= Volume larutan natrium tiosulfat untuk blanko (ml)N = Normalitas larutan standar natrium tiosulfatm = Berat minyak (gram)F. DATA PENGAMATAN Berat sampelMinyak baru : 5,02 gMinyak bekas : 5,07 g Volume titrasiMinyak baru : 0,8 mlMinyak bekas : 1,5 mlG. PERHITUNGAN Minyak Bekas ==0.024 mekv/O2mg Minyak Baru=0.013 mekv/O2mgH. HASIL DAN PEMBAHASANDari hasil perobaan kami, diperoleh nilai bilangn peroksida pada minyak goreng baru yaitu 0,013 mekv/O2mg sedangkan untuk minyak goreng bekas 0.024 mekv/O2mg.Bilangan peroksida adalah nilai terpenting untuk menentukan derajat kerusakan pada minyak atau lemak. Asam lemak tidak jenuh dapat meningkatkan oksigen pada ikatan rangkapnya sehingga membentuk peroksida. Peroksida terbentuk akibat pemanasan yang mengakibatkan kerusakan pada minyak atau lemak. Pada minyak goreng, angka peroksida menunjukkan ketengikan minyak goreng akibat proses oksidasi serta hidrolisis.Kerusakan lemak atau minyak akibat pemanasan pada suhu tinggi (200-250 C) akan mengakibatkan keracunan dalam tubuh dan berbagai macam penyakit misalnya diarhea, pengendapan lemak dalam pembuluh darah (artero sclerosis), kanker dan menurunkan nilai cerna lemak.Minyak goreng yang memiliki kadar peroksida tinggi memiliki ciri-ciri yang khas, diantaranya. Jika dilihat secara kasat mata minyak goreng tersebut cenderung berwarna coklat tua sampai kehitaman, jika dibandingkan dengan minyak goreng yang kadar peroksidanya sesuai standar masih berwarna kuning sampai coklat muda. Warna gelap pada minyak goreng disebabkan oleh proses oksidasi terhadap tekoferol (vitamin E).Minyak goreng dengan kadar peroksida yang sudah melebihi standar memiliki endapan yang relatif tebal, keruh, berbuih sehingga membuat minyak goreng lebih kental dari pada minyak goreng yang kadar peroksidanya masih sesuai standar. Standar mutu menurut SNI menyebutkan kriteria minyak goreng yang baik digunakan adalah yang berwarna muda dan jernih, serta baunya normal dan tidak tengik. Bau minyak goreng yang memiliki kadar peroksida melebihi standar, baunya terasa tengik, jika dicium, tingkat ketengikan minyak goreng berbanding lurus dengan jumlah kadar peroksida.I. KESIMPULANDari hasil percobaan yang kami lakukan dapat disimpulkan bahwa nilai bilangan peroksida pada sampel minyak goreng yang telah digunakan (bekas) cukup tinggi dibandingkan dengan minyak goring baru, ini dapat dilihat dari hasil perhitungan yang kami peroleh yaitu : Minyak goreng baru : 0.013 mekv/O2mg Minyak goreng bekas : 0.024 mekv/O2mg.Percobaan IIHidrosianida (HCN)A. TUJUAN Mengetahui apa yang dimaksud dengan asam sianida. Mengetahui produk-produk pertanian yang mengandung asam sianida. Mengetahui bahaya asam sianida bagi tubuh.B. PERINCIAN KERJA Proses maserasi/perendaman sampel Proses destilasi Proses titrasiC. ALAT DAN BAHANAlat yang digunakan : Lumpang Erlenmeyer Gelas ukur Gelas kimia Pipet ukurBahan yang digunakan : Kacang panjang dan Buncis AgNO3 Asam Nitrat pekat Indikator ferri Aquadest Natrium tio sulfatD. DASAR TEORIAsam sianida seperti halida hidrogen, adalah zat molekular yang kovalen, namun mampu terdisosiasi dalam larutan air, merupakan gas yang sangat beracun (meskipun kurang beracun dari H2S), tidak bewarna dan terbentuk bila sianida direaksikan dengan sianida. Dalam larutan air, HCN adalah asam yang sangat lemah, pK25= 9,21 dan larutan sianida yang larut terhidrolisis tidak terbatas namun cairan murninya adalah asam yang kuat.Asam bebas HCN mudah menguap dan sangat berbahaya, sehingga semua eksperimen, dimana kemungkinan asam sianida akan dilepas atau dipanaskan, harus dilakukan didalam lemari asam (Vogel, 1990).Asam sianida cepat terserap oleh alat pencernaan dan masuk kedalam aliran darah lalu bergabung dengan hemoglobin di dalam sel darah merah. Keadaan ini menyebabkan oksigen tidak dapat diedarkan dalam sistem badan. Sehingga dapat menyebabkan sakit atau kematian dengan dosis mematikan 0,5-3,5 mg HCN/kg berat badan.Glikosida sianogenetik merupakan senyawa yang terdapat dalam bahan makanan nabati dan secara potensial sangat beracun karena dapat terurai dan mengeluarkan hidrogen sianida. Asam sianida dikeluarkan dari glikosida sianogenetik pada saat komoditi dihaluskan, mengalami pengirisan atau mengalami kerusakan.Senyawa glikosida sianogenetik terdapat pada berbagai jenis tanaman dengan nama senyawa berbeda-beda, seperti amigladin pada biji almond, apricot, dan apel, dhurin pada biji shorgun dan linimarin pada kara dan singkong. Nama kimia amigladin adalah glukosida benzaldehida sianohidrin, dhurin adalah glukosidap-hidroksi-benzaldehida sianohidrin dan linamarin glikosida aseton sianohidrin (Winarno, 2002).E. PROSEDUR KERJA Potong-potong kecil sampel ( kacang panjang dan buncis), kemudian digerus hingga halus, lalu ditimbang 10 12 gram Masukkan kedalam Erlenmeyer dan menambahkan 100 ml aquades Maserasi selama 2 jam sesekali dikocok, dan penyimpanannya diruang yang gelap atau tertutup Setelah meserasi, pindahkan sampel kedalam labu destilasi dan bilas dengan 100 ml aquadest Destiasli dengan uap, destilasi ditampung dalam erlemeyer yang sudah diisi dengan 20 ml AgNo3dan 1 ml HNO3 Setelah destilat mencapai 150 ml, destilasi dihentikan Kelebihan AgNo3dalam destilat dititrasi dengan K-thiosianat memakai indikator ferri.F. DATA PENGAMATANSampelVolume Titrasi (ml)

Blangko1.4

Kacang Panjang 11.3

Kacang Panjang 21.4

Buncis 11.4

Buncis 21.35

G. PERHITUNGAN1 ml AgNO3= 0,54 mg HCN.Kacang Panjang=0.0077 mgBuncis= 0.0038 mgH. PEMBAHASANAsam Sianida dapat pula disebut dengan nama Hidrogen sianida. Hidrogen sianida merupakan salah satu senyawa dari berbagai contoh senyawa sianida lainnya. Sianida dihasilkan oleh beberapa bakteri, jamur dan ganggang. Contoh dari senyawa sianida lainnya adalah Sodium sianida (NaCN) dan Potasium Sianida (KCN). Sianida juga dapat ditemukan di sejumlah makanan dan secara alami terdapat di berbagai tumbuhan.Dari hasil percobaan yang kami lakukan, diperoleh kadar asam sianida dari kacang panjang yaitu 0,0077 mg sedangkan dari buncis yaitu 0,0038 mg. Dari data ini dapat dilihat bahwa kadar asam sianida pada kedua sampel tersebut rendah dan aman untuk dikomsumsi.Asam sianida bersifat cair, tidak berwarna dan larut dalam air. Didalam air, asam sianida akan terurai menjadi ammonium formiat dan zat- zat amorf yang tak larut dalam air. Oleh karenanya, salah satu cara untuk mengurangi kadar asam sianida dalam bahan pangan perlu dilakukan perendaman atau pencucian.Kandungan asam sianida dalam satu komoditi dapat berbeda satu sama lain. Kadar asam sianida dipengaruhi oleh cara pemanenan serta waktu pemanenan.I. KESIMPULANDari percobaan yang dilakukan dapat disimpulkan bahwa kadar sianida dalam sampel bahan pangan yaitu kacang panjang dan buncis tergolong rendah, hal ini dapat dilihat dari hasil perhitungan kadar sianida yaitu : Kacang Panjang : 0.0077 mg Buncis : 0.0038 mgPercobaan IIIANALISA KADAR GULA PEREDUKSIA. TUJUAN untuk dapat mengetahui cara analisa kadar gula pereduksi dari teh gelas dan kopi gelas. Dapat mengatahui kadar gulapereduksi dari teh gelas dan kopi gelasB. RINCIAN KERJA: Proses refluks Proses titrasiC. ALAT DAN BAHANAlat yang digunakan: Erlenmeyer asah Buret asam 50 mL Gelas kimia 100, 400 mL Pipet volume 25 mL Pipet ukur 25 mL Bulb Labu ukur 250 mLBahan yang digunakan: Teh gelas Kopi gelas Indicator amilum H2SO425% Na2S2O30.1 N Larutan KI 20% Aquadest Larutan Luff SchoorlD. DASAR TEORIGula adalah suatu istilah umum yang sering diartikan bagi setiap karbohidrat yang digunakan sebagai pemanis, tetapi dalam industri pangan biasanya digunakan untuk menyatakan sukrosa (gula pasir), gula yang diperoleh dari bit atau tebu.Karbohidrat telah menjadi sumber energi utama untuk metabolisme pada manusia dan sarana untuk memelihara kesehatan saluran pencernaaan manusia. Karbohidrat adalah penyumbang utama dari komponen yang membentuk produk pangan baik sebagai komponen alami maupun bahan yang ditambahkan. Karbohidrat meliputi lebih dari 90% dari berat kering tanaman. Karbohidrat banyak tersedia dan murah. Penggunaannya sangat luas dan jumlah penggunaannya cukup besar (Fennema 1996) baik untuk pemanis, pengental, penstabil,gelling agentsdanfatreplacer(Christian dan Vaclavik 2003). Karbohidrat dapat dimodifikasi baik secara kimia dan biokimia dan modifikasi itu digunakan untuk memperbaiki sifat dan memperluas penggunaannya.Menurut strukturnya karbohidrat dapat dibagi menjadi kelompok sakarida: monosakarida, oligosakarida dan polisakarida. Monosakarida adalah gula sederhana yang tidak dapat dipecah lagi menjadi molekul yang lebih kecil dan monosakarida inilah yang menjadi unit penyusun dari oligosakarida dan polisakarida. Oligosakarida dan polisakarida tersusun dari monosakarida yang dihubungkan dengan ikatan glikosidik.a.MonosakaridaMonosakarida terdiri dari tiga sampai delapan karbon atom, tetapi umumnya hanya lima atau enam yang biasa ditemukan. Biasanya monosakarida digolongkan berdasarkan jumlah atom karbonnya, misalnya triosa (C3H6O3), tetrosa (C4H8O3), pentosa (C5H10O5) dan heksosa (C6H12O6).Dari golongan tersebut dapat dibagi lagi berdasarkan gugus fungsional yang ada, misalnya dari golongan heksosa ada aminoheksosa (C6H13O5N), deoksiheksosa (C6H12O5) dan asam heksuronat (C6H10O7). Contoh monosakarida adalah glukosa dan fruktosa.b.OligosakaridaOligosakarida terdiri dari beberapa monosakarida (2-10) yang saling terikat oleh ikatan glikosidik. Tetapi ada juga yang mengklasifikasikan sendiri karbohidrat dengan dua gugus gula sebagai disakarida. Menurut Christian dan Vaclavik (2003) disakarida terdiri dari dua molekul monosakarida yang bergabung dengan ikatan glikosidik. Contoh disakarida di pangan adalah maltosa, selubiosa, dan sukrosa. Oligosakarida yang memiliki lebih dari tiga gugus gula contohnya adalah rafinosa dan stakiosa.c.PolisakaridaPolisakarida merupakan polimer dari gula sederhana yang tersusun atas lebih dari sepuluh monomer gula sederhana. Contoh polisakarida di makanan adalah pati, pektin dan gum. Ketiganya adalah polimer karbohidrat kompleks dengan sifat yang berbeda, tergantung unit gula penyusunnya, tipe ikatan glikosidik dan derajat percabangan molekul.Metode yang telah dikembangkan untuk analisis karbohidrat sangat banyak, dan tergantungjuga oleh jenis analisis (kuantitatif atau kualitatif) dan tipe karbohidrat yang dianalisis. Sehingga metode pengukuran karbohidrat sangat beragam mulai dari metode kromatografi dan elektroforesis (Kromatografi Lapis Tipis, Kromatografi Likuid Kinerja Tinggi dan Kromatografi Gas); metode kimia (metode titrasi Lane Eynon, metode gravimetri Munson Walker, metode Luff Schoorl, metode kolorimetri seperti anthrone sulfat dan fenol sulfat); metode enzimatis; metode fisik (polarimetri, indeks refraktif, densitas dan infra merah) serta metodeimmunoassay. Uji karbohidrat yang resmi ditetapkan oleh BSN dalam SNI 01-2891-1992 yaitu analisis total karbohidrat dengan menggunakan metode Luff Schoorl. Pada tahun 1936 International Commission for Uniform Methods of Sugar Analysis mempertimbangkan Metode Luff-Schoorl sebagai salah satu metode yang digunakan untuk menstandarkan analisis gula pereduksi karena metode Luff Schoorl saat itu menjadi metode yang resmi dipakai di pulau Jawa, di samping nominator lainnya yaitu metode Lane-Eynon. Tetapi pada saat itu metode kolorimetri belum banyak berkembang dan dalam catatan komisi itu terdapat agenda untuk melakukan penyeragaman analisis gula dengan metode kolorimetri.Berikut ini adalah beberapa jenis analisis total karbohidrat langsung:1. Analisis total karbohidrat dalam SNI 01-2891-1992Seluruh senyawa karbohidrat yang ada dipecah menjadi gula-gula sederhana (monosakarida) dengan bantuan asam yaitu HCl dan panas. Monosakarida yang terbentuk kemudian dianalisis dengan Metode Luff-Schoorl. Prinsip analisis dengan Metode Luff-Schoorl yaitu reduksi Cu2+ menjadi Cu 1+ oleh monosakarida. Monosakarida bebas akan mereduksi larutan basa dari garam logam menjadi bentuk oksida atau bentuk bebasnya. Kelebihan Cu2+ yang tidak tereduksi kemudian dikuantifikasi dengan titrasi iodometri (SNI 01-2891-1992).Osborne dan Voogt (1978) mengatakan bahwa Metode Luff-Schoorl dapat diaplikasikan untuk produk pangan yang mengandung gula dengan bobot molekuler yang rendah dan pati alami atau modifikasi.Kemampuan mereduksi dari gugus aldehid dan keton digunakan sebagai landasan dalam mengkuantitasi gula sederhana yang terbentuk. Tetapi reaksi reduksi antara gula dan tembaga sulfat sepertinya tidak stoikiometris dan sangat tergantung pada kondisi reaksi. Faktor utama yang mempengaruhi reaksi adalah waktu pemanasan dan kekuatan reagen. Penggunaan luas dari metode ini dalam analisis gula adalah berkat kesabaran para ahli kimia yang memeriksa sifat empiris dari reaksi dan oleh karena itu dapat menghasilkan reaksi yang reprodusibel dan akurat (Southgate 1976).Pada metode Luff Schoorl terdapat dua cara pengukuran yaitu1. Penentuan Cu tereduksi dengan I22.Menggunakan prosedur Lae EynonMetode LuffSchoorl mempunyai kelemahan yang terutama disebabkan oleh komposisi yang konstan. Hal ini diketahui dari penelitian A.M Maiden yang menjelaskan bahwa hasil pengukuran yang diperoleh dibedakan oleh pebuatan reagen yang berbeda.Monosakarida akan mereduksikan CuO dalam larutan Luff menjadi Cu2O. Kelebihan CuO akan direduksikan dengan KI berlebih, sehingga dilepaskan I2. I2 yang dibebaskan tersebut dititrasi denganarutan Na2S2O3. Pada dasarnya prinsip metode analisa yang digunakan adalah Iodometri karena kita akan menganalisa I2 yang bebas untuk dijadikan dasar penetapan kadar. Dimana prosesodometri adalah proses titrasi terhadap iodium (I2) bebas dalam larutan. Apabila terdapat zat oksidator kuat (missal H2SO4) dalam larutannya yang bersifat netral atau sedikit asam penambahan ion iodide berlebih akan membuat zat oksidator tersebut tereduksi dan membebaskan I2 yang setara jumlahnya dengan dengan banyaknya oksidator. I2 bebas ini selanjutnya akan dititrasi dengan larutan standar Na2S2O3 sehinga I2 akan membentuk kompleks iod-amilum yang tidak larut dalam air. Oleh karena itu, jika dalam suatu titrasi membutuhkan indicator amilum, maka penambahan amilum sebelum titik ekivalen.Metode Luff Schoorl ini baik digunakan untuk menentukan kadar karbohidrat yang berukuran sedang. Dalam penelitian M.Verhaart dinyatakan bahwa metode Luff Schoorl merupakan metode tebaik untuk mengukur kadar karbohidrat dengan tingkat kesalahan sebesar 10%.Dalam proses pengujian ini yang menjadi indikator proses analisa berhasil atau tidak yaitu saat penambahan larutan sampel dengan amilum. Bila terbentuk warna biru tua maka prosesnya benar, namun bila tidak terbentuk warna biru tua berarti larutan KI yang telah ditambahkan telah menguap dan proses dikatakan salah. Pada sampel yang kelompok kami uji, yaitu larutan pisang, setelah melalui serangkaian tahap dan pada saat penambahan KI 20% mengalami perubahan warna menjadi biru tua hampir hitam. Hal ini menandakan proses analisa yang kami lakukan benar dan sesuai dengan teori. Untuk mengetahui kadar I2 yang bebas dilakukan titrasi dengan Natrium Thiosulfat karena banyaknya volume Na.Thiosulfat yang digunakan sebanding dengan banyaknya I2 bebas yang dianggap sebagai kadar gula. Titrasi ini dihentikan hingga warna biru tua hilang dan larutan berubah warna menjadi putih..E. PROSEDUR KERJA Memipet 25 mL sampel kedalam gelas ukur 250 mL. Memipet 25 mL sampel, 25 mL lufff School, dan 25 mL aquadest kedalam Erlenmeyer Refluks selama 10 menit , kemudian dinginkan dengan cepat Menambahkan 25 mL H2SO425%, 15 mL KI 20%, dan indicator kanji. Menitar dengan larutan Na2S2O30.1 N hingga berubah warna putih susu. Lakukan titrasi blankoF. DATA PENGAMATAN Volume blanko = 24. 6 mL Volume teh gelas = 15.4 mL Volume kopi gelas = 24.2 mL Berat sampel = 25 mL = 25000 mgG. PERHITUNGAN Teh gelas Volume Titrasi glukosa = 22.4 mg + (0.2 x 2.6) mg4 mg + 0.52 mg92 mg Kadar gula pereduksi (glukosa) == 0.92 % Kopi gelas Volume Titrasi glukosa = (0.4 x 2.5) mgmg Kadar gula pereduksi (glukosa) == 0.04%H. PEMBAHASANPenentuan kadar gula pereduksi digunakan metode luff school, dimana monosakarida akan mereduksi CuO dalam luff menjadi Cu2O. Kelebihan CuO akan direduksikan dengan KI berlebih, sehingga dilepaskan I2, I2yang dibebaskan tersebut dititar dengan larutan Na2S2O3. Reaksi yang terjadi adalah reaksi oksidasi reduksi sehingga dilakukan titrasi iodometri dengan memngunakan indicator amilum (kanji).Kadar gula pereduksi yang diperoleh dari sampel teh gelas adalah 0.92 % dan kadaar gula pereduksi pada kopi gelas adalah 0.04%. Berdasarkan SNI 01-3743-1995 kadar gula pereduksi maksimal 10%, jadi gula pereduksi pada teh gelas dan kopi masih aman untuk dikonsumsi karena tidak mengandung terlalu banyak gula, dimana gula dapat menyebabkan diabetes jika terlalu banyak mengkonsumsinya.I. KESIMPULANDari hasil percobaan diperoleh kadar gula pereduksi pada teh gelas yaitu 0,92% dan kope gelas yaitu 0,04%.DAFTAR PUSTAKAApriyantono, Anton., dkk 1988.Analisis Pangan.PAU Pangan dan Gizi IPB,Bogor.Sudarmadji, Slamet, H.Bambang, Suhardi.2003. Analisa Bahan Makanan dan Pertanian.Liberty. Yogyakarta.Winarno, F.G. 2008. Kimia pangan dan gizi. Jakarta : Gramedia.Azhari, ikhsan. 2013.Penetapan Bilangan Peroksida (Lemak).Tersedia online : anonim.2012.olahan pangan.Agustini dkk. 2013. penuntun Pratikum kima pangan.Shelvia. 2012.gula reduksi metode luff school. (online)www.shelashelvia.blogspot.com. Diakses 10 Desember 2013.Sitti Nurrahma. 2013. Penentuan angka peroksida pada minyak.(online), www. sistinurrahmah.blogspot.com. Diakses 5 November 2013