Laporan praktikum Tri Ade

LAPORAN RESMI

PRAKTIKUM TOKSIKOLOGI LINGKUNGAN

Disusun oleh :

TRI ADE SULARSO

121.11.1015

LABORATURIUM TEKNIK LINGKUNGAN I

JURUSAN TEKNIK LINGKUNGAN

FAKULTAS SAINS TERAPAN

INSTITUT SAINS & TEKNOLOGI AKPRIND

YOGYAKARTA

2015

i

LEMBAR PENGESAHAN

Laporan ini kami selesaikan untuk memenuhi persyaratan dan menyelesaikan

Praktikum Toksikologi Lingkungan

di Laboratorium Teknik Lingkungan Institut Sains & Teknologi AKPRIND

Yogyakarta

Disusun Oleh :

Nama : Tri Ade Sularso

NIM : 121.11.1015

Jurusan : Teknik Lingkungan

Yogyakarta, Desember 2015

Menyetujui,

Kepala Laboratorium Teknik Lingkungan I

Purnawan, ST., M.Eng

NIK. 83106290E

ii

PRAKATA

Puji dan syukur kami panjatkan ke hadirat Allah SWT yang telah

melimpahkan rahmat dan karunia-Nya sehingga Laporan Resmi Toksikologi

Lingkungan ini dapat terselesaikan dengan baik.

Dalam penyusunan laporan ini tidak lepas dari bantuan berbagai pihak, maka

dari itu penyusun mengucapkan terima kasih kepada :

1. Bapak Purnawan,ST., M.Eng, selaku Kepala Laboratorium Teknik

Lingkungan 1 IST AKPRIND Yogyakarta.

2. Bapak Muhammad Nur Rohman, S.T, selaku Pembimbing Praktikum

Toksikologi Lingkungan.

3. Fika Hidayati, selaku Laboran Laboraturium Teknik Lingkungan 1.

4. Semua pihak yang telah membantu dalam penyusunan laporan ini.

Saya menyadari bahwa laporan ini masih sangat jauh dari sempurna, kritik dan

saran yang membangun, saya terima dengan terbuka. Besar harapan saya dari

penyusunan laporan ini untuk dapat diterima dengan baik serta dapat memberi

wawasan yang bermanfaat bagi saya dan pembaca pada umumnya.

Penyusun

iii

DAFTAR ISI

LEMBAR PENGESAHAN................................................................................................ii

PRAKATA........................................................................................................................ iii

DAFTAR ISI..................................................................................................................... iv

MATA ACARA I..............................................................................................................1

I.1. Tujuan.....................................................................................................................1

I.2. Dasar Teori..............................................................................................................1

I.3. Alat dan Bahan........................................................................................................2

I.4. Cara Kerja................................................................................................................3

I.5. Hasil.........................................................................................................................4

I.6. Pembahasan.............................................................................................................5

I.7. Kesimpulan..............................................................................................................6

MATA ACARA II.............................................................................................................7

II.1. Tujuan....................................................................................................................7

II.2. Dasar Teori.............................................................................................................7

II.3. Alat dan Bahan.......................................................................................................8

II.4. Cara Kerja..............................................................................................................8

II.5. Hasil.......................................................................................................................9

II.6. Pembahasan..........................................................................................................25

II.7. Kesimpulan...........................................................................................................25

MATA ACARA III..........................................................................................................26

III.1. Tujuan.................................................................................................................26

III.2. Dasar Teori..........................................................................................................26

III.3. Alat dan Bahan....................................................................................................27

III.4. Cara Kerja...........................................................................................................27

III.5. Hasil....................................................................................................................28

III.6. Pembahasan.........................................................................................................30

III.7. Kesimpulan.........................................................................................................31

MATA ACARA IV..........................................................................................................32

iv

IV.1. Tujuan.................................................................................................................32

IV.2. Dasar Teori.........................................................................................................32

IV.3. Alat dan Bahan....................................................................................................33

IV.4. Cara Kerja...........................................................................................................33

IV.5. Hasil....................................................................................................................36

IV.6. Pembahasan........................................................................................................51

IV.7. Kesimpulan.........................................................................................................52

v

MATA ACARA IPENGOLAHAN LIMBAH CAIR LABORATORIUM UNTUK

PENGUJIAN PENDAHULUAN UNTUK UJI JAR TEST

SERTA KOAGULASI-FLOKULASI

I.1. Tujuan1. Agar mahasiswa mengerti dan mampu melakukan pengolahan

limbah cair laboraturium dengan menggunakan metode Jar Test

sesuai dengan tahapan yang baik dan benar.

2. Agar mahasiswa mengetahui dosis optimum koagulan Al2SO4,

NaOH, dan Superflok yang optimal untuk digunakan pada proses

pengolahan lanjut limbah cair laboraturium dengan metode

Koagulasi Flokulasi.

3. Untuk mengetahui hasil pengolahan air limbah laboraturium

dengan metode koagulasi dan flokulasi.

I.2. Dasar TeoriBanyak cara atau teknologi pengolahan pengolahan air limbah

(waste water treatment) baik dengan pengolahan secara biologis, chemis,

maupun hanya secara fisik. Ketiga cara pengolahan tersebut masing –

masing memiliki kelebihan dan kekurangan. Untuk itu dalam penentuan

proses atau teknik pengolahan, ada beberapa faktor yang

mempengaruhinya,diantaranya :

1. Karakteristik air limbah ( air baku )

2. Kualitas effluent atau hasil pengolahan yang diinginkan

3. Luas lahan yang tersedia

4. Biaya yang tersedia

Keempat faktor tersebut sangat mempengaruhi dalam pemilihan

teknologi pengolahan air limbah. Sebelum melakukan pengolahan limbah

secara koagulasi dan flokulasi kita perlu melakukan jar test. Jar test

1

merupakan metode untuk mengetahui kinerja dan proses koagulasi floklasi

secara simulasi dengan skkala laboratorium, selain itu jar test berfungsi

menentukan dosis optimal dari koagulan Al2SO4, NaOH, dan Sperflok yang

akan digunakan dalam proses pengolahan.

Kemudian setelah kita mengetahui dosis optimum dari masing-

masing bahan, kita bisa menghitung volume dari instalasi pengolahan dan

menentukan debit yang akan digunakan sesuai dengan waktu tinggal.

I.3. Alat dan Bahan1. Alat yang digunakan :

a. Beacker glass

b. Jerigen

c. Magnetic stirrer

d. Penangas

e. Pengaduk Rpm

f. Timbangan

g. Erlenmeyer

h. Stopwatch

i. Kertas pH

j. Tachometer

k. Gayung

l. Gelas ukur

m. Turbidimeter

n. Unit IPAL

2. Bahan yang digunakan :

a. Limbah laboraturium

b. NaOH 1%

c. Al2SO4 4%

d. Superflok 0,2%

2

I.4. Cara Kerjaa. Pengolahan limbah dengan metode Jar Tes

1. Sample limbah cair laboraturium yang belum diolah diambil dari

IPAL Laboraturium sebanyak 5 liter

2. Air limbah disiapkan sebanyak 1000 ml

3. pH limbah diukur, apabila limbah masih normal, limbah

ditambahkan dengan larutan NaOH hingga pH 10, dan dicatat

penambahan NaoH optimum.

4. Selanjutnya diaduk dengan pengaduk rpm dengan kecepatan 500

rpm selama 2 menit dan ditambahkan Al2SO4, dengan variasi 1ml,

2ml, 3ml, 4ml, 5ml.

5. Kemudian dilakukan pengadukan lambat pengadukan lambat

selama 5 menit sebesar 250 rpm, dan ditambahkan superflok 0,2%

1ml.

6. Setelahnya, masing-masing beacker glass di diamkan hingga

limbah mengendap, dan setelah mengendap diukur kekeruhannya.

7. Dari sini di dapatkan hasil, limbah diendapkan dengan banyaknya

NaoH, Superflok, dan Al2SO4, yang paling optimal.

b. Pengolahan limbah dengan metode koagulasi-flokulasi

1. Masing-masing kebutuhan bahan (Al2SO4, NaOH, Superflok)

dihitung , disesuaikan dengan dosis optimum dan volume limbah.

2. Volume limbah dapat dihitung dengan dihitung dimensi dari unit

pengolahan.

3. Setelah itu Al2SO4, NaOH, dan Superflok dimasukan kedalam unit

koagulasi-flokulasi yang sudah diisi air limbah pada unti IPAL.

4. Kecepatan pengadukan diukur dengan tachometer.

5. Debit yang keluar diatur disesuaikan dengan waktu tinggal.

6. Setelah itu, mengambil air sampel dan digunakan sebagai uji

pendahuluan.

3

I.5. Hasila. Uji jar tes

Tabel I.1 hasil pengukuran kekeruhan pada penambahan Al2SO4

No Tawas (ml) pH Kekeruhan(NTU)1 1 7 5,92 2 7 1,953 3 7 14 4 6 1,65 5 6 0,9

Dosis optimum :

1. NaOH 1% = 2 ml

2. Superflok 0,2% = 1 ml

3. Al2SO4 = 3 ml

b. Perhitungan kebutuhan media untuk proses koagulasi-flokulasi pada

unit IPAL

1. Volume limbah yang masuk ke bak koagulasi

V = V1 (tabung) + V2 (kerucut)

= (π r2.t1) + {1/3. 3,14. (0.27m)2. 0,3m}

V = {3,14 (0,69m)2 1 m} + {1/3. 3,14. (0,27m)2 0,3m}

= 1,495 m3 + 0,022 m3

= 1,517 m3

= 1517 liter

2. Kebutuhan NaOH 1% = Dosis optimum (ml) X Vol. Limbah

200 ml sampel

¿ 2ml200 ml

x 1575liter

= 15,17 liter

3. Kebutuhan Al2SO4 4% = Dosis optimum (ml) X Vol. Limbah

200 ml sampel

¿ 3ml200 ml

x 1575liter

4

= 22,755 liter

4. Kebutuhan Superflok 0,2% = Dosis optimum (ml) X Vol. Limbah

200 ml sampel

¿ 1ml200 ml

x 1575liter

= 7,585 liter

5. Debit yang digunakan

Vol. Limbah = 1517 liter

Waktu tinggal yang digunakan = 6 jam

Ket :

Proses dilaksanakan pukul 12.00 – 18.00, dan pengambilan

efluent dilakukan pukul 15.00

Q¿ Volumewaktu tinggal

= 1517l6 jam x 1000 ml / liter x 1 jam/60 menit x 1 menit/ 60 detik

= 70,2 ml/det.

I.6. PembahasanPada uji jartest pendahuluan di dapatkan hasil yang optimal,

penambahan tawas 4% dengan variasi 1-6 ml, maka setelah dilakukannya

proses pengukuran kekeruhan pada masing-masing variasi yang ditentukan

yaitu 3ml sedangkan untuk NaOH 2 ml dan untuk superflok 0,2 % 1 ml.

Setelah hasil perhitungan dosis optimum yang akan digunakan akan

digunakan pada proses koagulasi flokulasi maka volume limbah yang ada

pada unit IPAL laboratorium dihitung dan dihasilkan volume limbah

sebesar 1517 liter dan kemudian diperhitungkan kebutuhan koagulan yang

akan digunakan dan setelah dilakukan perhitungan kebutuhan koagulan,

5

dan dihasilkan kebutuhan koagulan untuk mengolah limbah sebesar 1517

liter yaitu :

NaOH 1% =15,17 liter, Tawas = 3 ml, Superflok= 1 ml

Kemudian masing-masing koagulan dimasukan pada unit

koagulasi-flokulasi IPAL, dan debit yang digunakan adalah sebesar 70,2

ml/det. Pada proses sedimentasi, aerasi dan bioremediasi tidak

berpengaruh pada proses penjernihan air, saat diambil air pada output

akhir masih banyak flok-flok yang tidak mengendap. Namun saat air

sampel yang diambil langsung pada output bak koagulasi-flokulasi airnya

lebih bersih. Hal ini disebabkan pada masing-masing bak kotor dan tidak

dibersihkan.

I.7. KesimpulanDari percobaan yang telah dilakukan maka didapat dosis optimum

dari masing-masing bahan yang digunakan dari hasil jar test adalah :

Al2SO4 4% = 3 ml

NaOH 1% = 2 ml

Superflok 0,2% = 1 ml

Pada jar test didapatkan dosis optimum dalam pengolahan limbah

laboratorium sebanyak 1517 liter adalah :

Al2SO4 4% = 22,755 liter

NaOH 1% = 15,17 liter

Superflok 0,2% = 7,585 liter

Dan dengan debit yang digunakan adalah sebesar 70,2 ml/ det.

6

MATA ACARA IIUJI TOKSISITAS PENDAHULUAN

II.1. TujuanUntuk mengetahui LC50 yang digunakan sebagai dasar interval

konsentrasi pada uji toksisitas sesungguhnya.

II.2. Dasar TeoriPenelitian pengujian tingkat toksik suatu bahan biasanya dinyatakan

dengan Lethal Dosage (LD50) untuk bahan yang bersifat padat sedangkan uji

toksisitas dengan menggunakan bahan toksik cair yang mengukur besarnya dosis

atau konsentrasi sehingga dapat membunuh 50% hewan uji Lethal Concentration-

50 (LC50). Bila suatu zat mempunyai waktu paruh biologi yang sangat tinggi

diberikan pada organisme dalam jangka waktu yang lama dengan sendirinya dapat

terjadi akumulasi dalam organisme dalam konsentrasi yang rendah, ini terjadi

terutama pada zat lipofil dan sulit dibiotransformasi seperti DTT, aldrin, dieldrin

atau turunan difenil terklorinasi.

Pelaksanaan uji toksisitas suatu bahan uji dapat dilakukan dengan

menggunakan salah satu dari empat cara berikut:

1. Teknik statik: larutan atau media uji ditempatkan pada suatu bejana uji

dan digunakan selama waktu uji tanpa diganti.

2. Teknik resirkulasi: larutan atau media uji tidak diganti selama waktu

uji namun diresirkulasi dari suatu bejana uji ke bejana lain kembali ke

bejana uji dengan maksud memberi aerasi, filtrasi dan atau sterilisasi.

3. Teknik diperbaharui: setiap 24 jam hewan uji dipindahkan ke larutan

uji yang baru dan sama serta tetap konsentrasinya dengan larutan

sebelumnya.

4. Teknik mengalir; larutan uji dialirkan masuk maupun keluar dari

bejana uji selama masa uji.

Untuk meneliti berbagai efek yang berhubungan dengan masa pejanan,

penelitian toksikologi menurut Frank C. Lu (1995) dibagi dalam:

7

1. Uji toksisitas akut, dilakukan dengan memberikan zat toksik yang

sedang diuji sebanyak 1 kali atau beberapa kali dalam jangka waktu 24

jam.

2. Uji toksisitas jangka pendek (penelitian sub akut atau sub kronik),

dilakukan dengan memberikan bahan toksik berulang-ulang biasanya

setiap hari atau 5 kali seminggu, selama jangka waktu kurang lebih

10% dari masa hidup hewan.

3. Uji toksisitas jangka panjang, dilakukan dengan memberikan zat kimia

berulang-ulang selama masa hidup hewan percobaan atau sekurang-

kurangnya sebagian dari masa hidupnya.

II.3. Alat dan Bahan1. Aquarium

2. Aerator

3. Jerigen

4. Jaring ikan

5. Air sumur

6. Air limbah

7. Beaker glass

8. Gayung

9. Ember

10. Ikan uji

11. Limbah sebelum diolah (pra)

12. Limbah setelah diolah (post)

II.4. Cara Kerja1. air sumur diambil dengan jerigen

2. air limbah diambil menggunakan jerigen.

8

3. Air sumur dan air limbah dimasukan kedalam aquarium, sesuai dengan

konsentrasi:0 %, 10 %, 20 %, 30 %, 40 %, 50 %, 60 %, 70 %, 80 %, 90

%,1 00%.

4. Ikan 10 ekor dimasukan setiap bak aquarium.

5. Diamati selama 4 hari kaitannya dengan: warna ikan,air keruh,air

jernih,morfologi(mata merah),mata normal,mata normal,jumlah ikan mati.

6. Kemudian ikan yang mati dikonversi ke probit dan dihitung LC50 nya.

II.5. Hasil

9

Data Biologis pra pengolahan pada uji pendahuluan

Tabel II.1. Data pengamatan uji pendahuluan hari ke 1 pada limbah sebelum pengolahan

No ParameterVariasi Konsentrasi (%)

kontrol 10 20 30 40 50 60 70 80 90 1001. Warna ikan cerah √ √ √ √ √ √ √ √ √ √

2. Air tidak bau

√ amis amis Amis amis amis amis amis amis amis amis

3. Air jernih Jernih jernih jernih Keruh keruh keruh keruh keruh keruh keruh keruh

4. Mata merah √ √5 ekor

√5 ekor

√7 ekor

√5 ekor

√9 ekor

√1 ekor

√1 ekor

√1 ekor

√1 ekor

√4 ekor

5. Pernafasan normal

normal √ √ √ √ √ √ √ √ √ √

6. Pola renang normal √ √ √ √ √ √ √ √ √ √

7. Mortalitas 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0

10



kontrol 10 20 30 40 50 60 70 80 90 1001. Warna ikan Cerah √ √ √ √ √ √ √ √ √ √

2. Air tidak bau


3. Air jernih Jernih jernih jernih Keruh keruh keruh keruh

keruh keruh keruh keruh


√5 ekor

√7 ekor

√5 ekor

√9 ekor

√2

ekor

√3 ekor

√2 ekor

√3 ekor

√6 ekor


normal √ √ √ √ √ √ √ √ √ √


7. Mortalitas 2 0 0 0 0 0 0 1 0 1 1

11




2. Air tidak bau


3. Air jernih Jernih keruh keruh Keruh keruh keruh keruh



√4 ekor

√8 ekor

√6 ekor

√7 ekor

√3

ekor

√4 ekor

√3 ekor

√4 ekor

√6 ekor


normal √ √ 2 tidak

√ 1 tidak

√ √ √ √ √

6. Pola renang normal √ √ √ 2 tidak

√ √ √ √ √ √

7. Mortalitas 3 1 2 1 0 1 0 3 1 2 2

12



2. Air tidak bau




4. Mata merah √ X √5 ekor

√1 ekor

√3 ekor

√1 ekorbuta

√4

ekor

√5 ekor

√5 ekor

√6 ekor

√7 ekor


normal √ √ √ √ √ √ √ √ √ √


7. Mortalitas 3 2 4 1 1 2 2 5 2 2 2


13




2. Air tidak bau





√5 ekor

√7 ekor

√5 ekor

√6 ekor1 buta

√4

ekor

√5 ekor

√5 ekor

√6 ekor

√7 ekor


normal √ √ √ √ √ √ √ √ √ √


7. Mortalitas 3 2 4 2 1 2 3 5 3 2 2

14

Tabel II.6. Data pengamatan uji pendahuluan pada limbah setelah pengolahan

Hari ke - 1

Limbah Pemeriksaan Fisik (Air)Pemeriksaan Biologis

Mata Sirip Warna sisik pola renang Bernafas Respon Mortalitas

10% Air jernih , tidak berbau, tidak berbuih 5 merah normal normal normal normal responsive hidup semua

20% Air jernih , tidak berbau, tidak berbuih 4 merah normal 1 pucat normal normal responsive hidup semua




Kontrol Air jernih , tidak berbau, tidak berbuih 2 merah normal 3 pucat normal normal responsive hidup semua

Hari ke - 2 normal

10% air jernih, agak bau amis , ada buih 5 merah normal normal normal normal responsive 2 mati

20% air jernih, agak bau amis , ada buih 4 merah normal 1 pucat normal normal responsive hidup semua

30% air jernih, agak bau amis , ada buih 8 merah normal 3 pucat normal normal responsive 1 mati

40% air jernih, agak bau amis , ada buih 2 merah normal 1 pucat normal normal responsive hidup semua

15

50% air jernih, agak bau amis , ada buih 8 merah normal 2 pucat 1 agak aktif normal responsive hidup semua

kontrol air jernih, agak bau amis , ada buih 2 merah normal 3 pucat normal normal responsive2 mati (1 mati diluar aquarium)

Hari ke - 3

10% air jernih , berbau amis, ada sedikit buih 7 bening normal sedikit pucat normal normal responsive 1 mati

20% air jernih , berbau amis, ada sedikit buih 2 merah normal sedikit pucat normal normal responsive hidup semua

30% air jernih , berbau amis, ada sedikit buih 1 merah normal sedikit pucat normal normal responsive 1 mati

40% air agak keruh,berbau amis,sedikit buih tdk ada normal sedikit pucat normal normal responsive 2 mati

50% air agak keruh,berbau amis,sedikit buih 6 merah normal sedikit pucat tdak agresif normal responsive 1 mati

kontrol air agak keruh,berbau amis,sedikit buih 2 merah normal sedikit pucat tdak agresif normal responsive 1 matiHari ke - 4

10% air agak keruh,berbau amis,sedikit buih 1 merah normal sedikit pudar normal normal responsive hidup semua

20% air agak keruh,berbau amis,sedikit buih 4 merah normal sedikit pudar normal normal responsive 1 mati

30% air agak keruh,berbau amis,sedikit buih 1 merah normal sedikit pudar normal normal responsive hidup semua

40% air agak keruh,berbau amis,sedikit buih 2 merah normal sedikit pucat normal normal responsive hidup semua

50% air agak keruh,berbau amis,sedikit buih 6 merah normal sedikit pucat normal normal responsive 1 mati

16

kontrol air agak keruh,berbau amis,sedikit buih 2 merah normal sedikit pucat 2 lemah normal responsive hidup semuaHari ke - 5






Hari ke - 1


Mata Sirip Warna sisik pola renang Bernafas Respon Mortalitas

60%Air jernih , tidak berbau, tidak berbuih 5 merah normal normal normal normal responsive hidup semua

70%Air jernih , tidak berbau, tidak berbuih 4 merah normal 1 pucat normal normal responsive hidup semua




Kontrol Air jernih , tidak berbau, tidak 2 merah normal 3 pucat normal normal responsive hidup semua

17

berbuihHari ke - 2 normal

60% air jernih, agak bau amis , ada buih 5 merah normal normal normal normal responsive 2 mati70% air jernih, agak bau amis , ada buih 4 merah normal 1 pucat normal normal responsive hidup semua80% air jernih, agak bau amis , ada buih 8 merah normal 3 pucat normal normal responsive 1 mati90% air jernih, agak bau amis , ada buih 2 merah normal 1 pucat normal normal responsive hidup semua

100% air jernih, agak bau amis , ada buih 8 merah normal 2 pucat 1 agak aktif normal responsive hidup semua

kontrol air jernih, agak bau amis , ada buih 2 merah normal 3 pucat normal normal responsive2 mati (1 mati diluar aquarium)

Hari ke - 3

60%air jernih , berbau amis, ada sedikit buih 7 bening normal sedikit pucat normal normal responsive 1 mati

70%air jernih , berbau amis, ada sedikit buih 2 merah normal sedikit pucat normal normal responsive hidup semua

80%air jernih , berbau amis, ada sedikit buih 1 merah normal sedikit pucat normal normal responsive 1 mati

90%air agak keruh,berbau amis,sedikit buih tdk ada normal sedikit pucat normal normal responsive 2 mati

100%air agak keruh,berbau amis,sedikit buih 6 merah normal sedikit pucat tdak agresif normal responsive 1 mati

kontrolair agak keruh,berbau amis,sedikit buih 2 merah normal sedikit pucat tdak agresif normal responsive 1 mati

Hari ke - 4

60%air agak keruh,berbau amis,sedikit buih 1 merah normal sedikit pudar normal normal responsive hidup semua

70%air agak keruh,berbau amis,sedikit buih 4 merah normal sedikit pudar normal normal responsive 1 mati

80% air agak keruh,berbau amis,sedikit 1 merah normal sedikit pudar normal normal responsive hidup semua

18

buih

90%air agak keruh,berbau amis,sedikit buih 2 merah normal sedikit pucat normal normal responsive hidup semua

100%air agak keruh,berbau amis,sedikit buih 6 merah normal sedikit pucat normal normal responsive 1 mati

kontrolair agak keruh,berbau amis,sedikit buih 2 merah normal sedikit pucat 2 lemah normal responsive hidup semua

Hari ke - 5






19

1. Perhitungan LC50 pada limbah sebelum pengolahan

Tabel II.7. Mortalitas ikan pada limbah sebelum pengolahan

No Konsentrasi

(%)

Mortalitas (%)

0 jam 24 jam 48 jam 72 jam 96 jam

1 0 0 20 30 30 30

2 10 0 0 10 20 20

3 20 0 0 10 10 20

4 30 0 0 0 10 10

5 40 0 0 10 10 10

6 50 0 0 20 30 30

7 60 0 10 30 50 50

8 70 0 0 10 20 30

9 80 0 0 10 20 30

10 90 0 0 20 20 20

11 100 0 10 20 20 20

a. Perhitungan dengan log x

Tabel II.8. Perhitungan LC50 Pra pengolahan untuk uji pendahuluan

No.

Konsentrasi limbah (%)

Konsentrasi mortalitas (%)

Log X ProbitSbg X Sbg Y

1 10 20 1.30103000 4.16

2 20 40 1.60205999 4.76

3 30 20 1.30103 4.16

4 40 10 1 3.72

5 50 10 1 3.72

6 60 30 1.47712125 4.48

7 70 50 1.69897 5

8 80 30 1.47712125 4.48

9 90 20 1.30103 4.16

10 100 20 1.30103 4.16

19

Y = 1,7765x + 1,889

Maka

5 = 1,7765x + 1,889

X = (5−1,7765)

1,889

X = 1,754694

LC50 = anti log x

= anti log 1,754694

= 56,38923%

b. Perhitungan dengan regresi linier

Tabel II.9 Data perhitungan persamaan regresi linear limbah sebelum pengolahan

No Konsentrasi (%) (X) 96 jam Probit (Y) X2 X.Y

1 0 30 4,48 0 0

2 10 20 4,16 100 41,6

3 20 40 4,76 400 95,2

4 30 20 4,16 900 124,8

5 40 10 3,72 1600 148,8

6 50 10 3,72 2500 186

20

7 60 30 4,48 3600 268,8

8 70 50 5 4900 350

9 80 30 4,48 6400 358,4

10 90 20 4,16 8100 374,4

11 100 20 4,16 10000 416

Jumlah 550 250 42,8 38500 2364

a. Mencari persamaan

y= a + bx

b=n∑ x . y−(∑ x .∑ y)

n ∑ x2−(∑ x )2

b=10. 2364−(550.42,8)

10 .38500−(550 )2

= 0,0012

a=∑ y−b ∑ xn

a=42,8− (0,0012 ) .550

10

= 4,214

a. LC50

Untuk mencari LC50 maka nilai probit harus 5 atau nilai y = 5

Y= a + b x

5 = 4,214-0,0012x

x=−0,7860,0012

X = 655%

Jadi, LC50 pada konsentrasi 655%

2. Perhitungan LC50 pada limbah setelah pengolahan

21

Tabel II.10. Mortalitas ikan pada limbah setelah pengolahan

NoKonsentrasi

(%)

Mortalitas (%)


1 0 0 20 30 30 30

2 10 0 20 40 40 50

3 20 0 0 0 10 10

4 30 0 10 20 20 20

5 40 0 0 20 20 30

6 50 0 0 10 20 20

7 60 0 0 0 10 10

8 70 0 10 20 40 50

9 80 0 0 0 10 10

10 90 0 0 0 20 30

11 100 0 10 10 30 30


Tabel II.11. Perhitungan LC50 Post pengolahan untuk uji pendahuluan

No. Konsentrasi limbah (%)



1 10 50 1.69897 5

2 20 10 1 3.72

3 30 20 1.30103 4.16

4 40 30 1.47712125 4.48

5 50 20 1.30103 4.16

6 60 10 1 3.72

7 70 50 1.69897 5

8 80 10 1 3.72

9 90 30 1.47712125 4.49

10 100 30 1.477125 4.48

22

Y = 1,7765x + 1,9059

Maka

5 = 1,7765x + 1,9059

X = (5−1,7765)

1,9059

X = 1,741683

LC50 = anti log x

= anti log 1,741683

= 55,16747%

Tabel II.12. Data perhitungan persamaan regresi linear limbah setelah pengolahan

No Konsentrasi (%) (X) 96 jam Probit (Y) X2 XY

1 0 30 4,48 0 0

2 10 50 5 100 50

3 20 10 3,72 400 74,4

4 30 20 4,66 900 124,8

5 40 30 4,48 1600 179,2

23

6 50 20 4,16 2500 208

7 60 10 3,72 3600 223,2

8 70 50 5 4900 350

9 80 10 3,72 6400 297,6

10 90 30 4,48 8100 403,2

11 100 30 4,48 10000 448

Jumlah 550 260 42,92 38500 2358,4


y= a + bx

b=n∑ x . y−(∑ x .∑ y)

n ∑ x2−(∑ x )2

b=10. 2358,4−(550.42,92)

10 .38500−(550 )2

= -0,00027

a=∑ y−b ∑ xn

a=42,92−(−0,00027 ) .550

10

= 4,306

b. LC50


Y= a + b x

5 = 4,306-(-0,00027)x

x= −0,694−0,00027

X = 2570%


24

II.6. PembahasanDalam percobaan pendahuluan mendapatkan hasil pada

perhitungan log x pada pra pengolahan LC50 56,38923%, dan post

pengolahan sebesar 5,16747%. Sedangkan perhitungan regresi linear

LC50 -655% pada pra pengolahan dan 2570% pada post, dengan

demikian percobaan sesungguhnya dapat dicari dengan range ±5 dari hasil

percobaan pendahuluan, percobaan sesungguhnya ini dilakukan untuk

mencari nilai LC50 yang benar atau mendekati benar.

Namun dalam percobaan pendahuluan mendapatkan kendala

dimana hasil atau mortalitas ikan tidak seimbang sehingga menyebabkan

terjadinya rancu dalam analisa. Misalnya jumlah kematian ikan pada

kontrol mencapai 30%, sedangkan pada 10% limbah hanya mendapatkan

20% kematian. Dengan terjadinya hasil seperti ini banyak faktor

kemungkinan yang menyebabkan salah satunya belum dilakukan

aklimatisasi ikan, akan tetapi kita sebagai praktikan dapat belajar dan

memahami bagaimana mencari nilai LC50, dan faktor apa saja yang perlu

diperhatikan agar mendapat hasil yang lebih valid.

II.7. KesimpulanDalam percobaan yang telah dilakukan maka didapatkan nilai

range percobaan pendahuluan 56,38923%, atau -655% untuk pra

pengolahan, dan 5,16747% atau 2570% untuk post, dengan demikian

dapat dilakukan untuk percobaan selanjutnya yaitu uji sesungguhnya.

25

MATA ACARA IIIPENGOLAHAN LIMBAH CAIR LABORATORIUM UNTUK

PENGUJIAN SESUNGGUHNYA UNTUK UJI JAR TEST

SERTA KOAGULASI-FLOKULASI

III.1. Tujuan1. Agar mahasiswa dapat melakukan uji jar test sebelum melakukan

pengolahan limbah cair dengan metode koagulasi flokulasi.

2. Agar mahasiswa mengetahui cara menentukan dosis yang akan

digunakan pada suatu limbah untuk diperlakukan dengan koagulasi

flokulasi.

III.2. Dasar TeoriBanyak cara atau teknologi pengolahan pengolahan air limbah

(waste water treatment) baik dengan pengolahan secara biologis, chemis,

maupun hanya secara fisik. Ketiga cara pengolahan tersebut masing –

masing memiliki kelebihan dan kekurangan. Untuk itu dalam penentuan

proses atau teknik pengolahan, ada beberapa faktor yang

mempengaruhinya,diantaranya :

1. Karakteristik air limbah ( air baku )

2. Kualitas effluent atau hasil pengolahan yang diinginkan

3. Luas lahan yang tersedia

4. Biaya yang tersedia

Keempat faktor tersebut sangat mempengaruhi dalam pemilihan

teknologi pengolahan air limbah. Sebelum melakukan pengolahan limbah

secara koagulasi dan flokulasi kita perlu melakukan jar test. Jar test

merupakan metode untuk mengetahui kinerja dan proses koagulasi floklasi

secara simulasi dengan skkala laboratorium, selain itu jar test berfungsi

menentukan dosis optimal dari koagulan Al2SO4, NaOH, dan Sperflok yang

akan digunakan dalam proses pengolahan.

26

Kemudian setelah kita mengetahui dosis optimum dari masing-

masing bahan, kita bisa menghitung volume dari instalasi pengolahan dan

menentukan debit yang akan digunakan sesuai dengan waktu tinggal.

III.3. Alat dan Bahan1. Turbidimeter

2. Spectrofotometer

3. Erlenmeyer

4. Beakerglass

5. Pengaduk rpm

6. Magnetic stirrer

7. Kertas pH

8. Limbah cair industri

9. Al2SO4 4%

10. NaOH 1%

11. Superflok 0,2%

12. Aquadest

III.4. Cara Kerjaa. Pengolahan limbah dengan metode Jar test

1. Sample limbah cair laboraturium yang belum diolah dari IPAL

Laboraturium diambil sebanyak 5 liter

2. Air limbah disiapkan sebanyak 1000 ml.

3. pH limbah diukur, apabila limbah masih normal, limbah

ditambahkan dengan larutan NaOH hingga pH 10, dan dicatat

penambahan NaoH optimum.

4. Selanjutnya diaduk dengan pengaduk rpm dengan kecepatan 500

rpm selama 2 menit dan ditambahkan Al2SO4, dengan variasi 1ml,

2ml, 3ml, 4ml, 5ml.

27

5. Kemudian dilakukan pengadukan lambat selama 5 menit sebesar

250 rpm, dan ditambahkan superflok 0,2% 1ml.

6. Setelahnya, masing-masing beacker glass di diamkan hingga

limbah mengendap, dan setelah mengendap diukur kekeruhannya.

7. Dari sini di dapatkan hasil, banyaknya NaoH, Superflok, dan

Al2SO4, yang paling optimal mengendapkan limbah.

8. Selanjutnya dilakukan pemeriksaaan pH, suhu, TDS, kekeruhan,

BOD, COD, SS, dan phospat.

b. Pengolahan limbah dengan metode koagulasi-flokulasi

1. Masing-masing kebutuhan bahan (Al2SO4, NaOH, Superflok)

dihitung ,disesuaikan dengan dosis optimum dan volume limbah.

2. Volume limbah dapat dihitung dengan dimensi yang dihitung dari

unit pengolahan.

3. Setelah itu Al2SO4, NaOH, dan Superflok dimasukan kedalam unit

koagulasi-flokulasi yang sudah diisi air limbah pada unti IPAL.

4. Kecepatan pengadukan diukur dengan tachometer.

5. Debit yang keluar diatur disesuaikan dengan waktu tinggal.

6. Setelah itu, air sampel diambil dan digunakan sebagai uji

pendahuluan.

III.5. Hasila. Uji jar tes

Tabel III.1 hasil pengukuran kekeruhan pada penambahan Al2SO4

No Tawas (ml) pH Kekeruhan(NTU)

1 1 7 -2 2 7 -3 3 7 1,84 4 7 3,85 5 7 1,66 6 7 0,9

28

Dosis optimum :

1. NaOH 1% = 1 ml

2. Superflok 0,2% = 1 ml

3. Al2SO4 1% = 6 ml

b. Perhitungan kebutuhan media untuk proses koagulasi-flokulasi

pada unit IPAL

1. Volume limbah

V = V1 (tabung) + V2 (kerucut)

= (π r2.t1) + {1/3. 3,14. (0.27m)2. 0,3m}

V = {3,14 (0,69m)2 1 m} + {1/3. 3,14. (0,27m)2 0,3m}

= 1,495 m3 + 0,022 m3

= 1,517 m3

= 1517 liter

2. Kebutuhan NaOH 1% = Dosis optimum (ml) X Vol. Limbah

200 ml sampel

¿ 1ml200 ml

x 1575liter

= 7,585 liter

3. Kebutuhan Al2SO4 1% = Dosis optimum (ml) X Vol. Limbah

200 ml sampel

¿ 6ml200 ml

x 1575liter

= 45,51 liter

4. Kebutuhan Superflok 0,2% = Dosis optimum (ml) X Vol. Limbah

200 ml sampel

¿ 1ml200 ml

x 1575liter

= 7,585 liter

29

5. Debit yang digunakan

Vol. Limbah = 1517 liter

Waktu tinggal yang digunakan = 68 jam

Ket :

Proses dilaksanakan pada hari jumat pukul 14.00 dan

pengambilan efluent dilakukan pada hari senin pukul 09:00.

Q¿ Volumewaktu tinggal

= 1517 l68 jam x 1000 ml / liter x 1 jam/60 menit x 1 menit/ 60 detik

= 4,9 ml/det.

III.6. PembahasanPada uji jartest untuk uji sesungguhnya di dapatkan hasil yang

optimal, penambahan tawas 1% dengan variasi 1-6 ml, maka setelah

dilakukannya proses pengukuran kekeruhan pada masing-masing variasi

yang ditentukan yaitu 6 ml sedangkan untuk NaOH 1 ml dan untuk

superflok 0,2 % 1 ml. Setelah hasil perhitungan dosis optimum yang akan

digunakan akan digunakan pada proses koagulasi flokulasi maka volume

limbah yang ada pada unit IPAL laboratorium dihitung dan dihasilkan

volume limbah sebesar 1517 liter dan kemudian diperhitungkan kebutuhan

koagulan yang akan digunakan dan setelah dilakukan perhitungan

kebutuhan koagulan, dan dihasilkan kebutuhan koagulan untuk mengolah

limbah sebesar 1517 liter yaitu :

NaOH 1% =7,585 liter, Tawas = 45,51 liter, Superflok= 7,585 liter.

Kemudian masing-masing koagulan dimasukan pada unit

koagulasi-flokulasi IPAL, dan debit yang digunakan adalah sebesar 70,2

ml/det. Pada proses sedimentasi, aerasi dan bioremediasi tidak

berpengaruh pada proses penjernihan air, saat diambil air pada output

akhir masih banyak flok-flok yang tidak mengendap. Namun saat air

sampel yang diambil langsung pada output bak koagulasi-flokulasi airnya

30

lebih bersih. Hal ini disebabkan pada masing-masing bak kotor dan tidak

dibersihkan.

III.7. KesimpulanDari percobaan yang telah dilakukan maka didapat dosis optimum

dari masing-masing bahan yang digunakan dari hasil jar test adalah :

Al2SO4 1% = 6 ml

NaOH 1% = 1 ml

Superflok 0,2% = 1 ml

Pada jar test didapatkan dosis optimum dalam pengolahan limbah

laboratorium sebanyak 1517 liter adalah :

Al2SO4 1% = 45,51 liter

NaOH 1% = 7,585 liter

Superflok 0,2% = 7,585 liter

Dan dengan debit yang digunakan adalah sebesar 4,9 ml/ det.

31

MATA ACARA IVUJI TOKSISITAS SESUNGGUHNYA

IV.1. TujuanUntuk mengetahui LC50 pada uji toksisitas sesungguhnya.

IV.2. Dasar TeoriPenelitian pengujian tingkat toksik suatu bahan biasanya dinyatakan

dengan Lethal Dosage (LD50) untuk bahan yang bersifat padat sedangkan uji

toksisitas dengan menggunakan bahan toksik cair yang mengukur besarnya dosis

atau konsentrasi sehingga dapat membunuh 50% hewan uji Lethal Concentration-

50 (LC50). Bila suatu zat mempunyai waktu paruh biologi yang sangat tinggi

diberikan pada organisme dalam jangka waktu yang lama dengan sendirinya dapat

terjadi akumulasi dalam organisme dalam konsentrasi yang rendah, ini terjadi

terutama pada zat lipofil dan sulit dibiotransformasi seperti DTT, aldrin, dieldrin

atau turunan difenil terklorinasi.

Pelaksanaan uji toksisitas suatu bahan uji dapat dilakukan dengan

menggunakan salah satu dari empat cara berikut:

1. Teknik statik: larutan atau media uji ditempatkan pada suatu bejana uji

dan digunakan selama waktu uji tanpa diganti.

2. Teknik resirkulasi: larutan atau media uji tidak diganti selama waktu uji

namun diresirkulasi dari suatu bejana uji ke bejana lain kembali ke bejana

uji dengan maksud memberi aerasi, filtrasi dan atau sterilisasi.

3. Teknik diperbaharui: setiap 24 jam hewan uji dipindahkan ke larutan uji

yang baru dan sama serta tetap konsentrasinya dengan larutan sebelumnya.

4. Teknik mengalir; larutan uji dialirkan masuk maupun keluar dari bejana

uji selama masa uji.

Untuk meneliti berbagai efek yang berhubungan dengan masa pejanan,

penelitian toksikologi menurut Frank C. Lu (1995) dibagi dalam:

1. Uji toksisitas akut, dilakukan dengan memberikan zat toksik yang sedang

diuji sebanyak 1 kali atau beberapa kali dalam jangka waktu 24 jam.

32

2. Uji toksisitas jangka pendek (penelitian sub akut atau sub kronik),

dilakukan dengan memberikan bahan toksik berulang-ulang biasanya

setiap hari atau 5 kali seminggu, selama jangka waktu kurang lebih 10%

dari masa hidup hewan.

3. Uji toksisitas jangka panjang, dilakukan dengan memberikan zat kimia

berulang-ulang selama masa hidup hewan percobaan atau sekurang-

kurangnya sebagian dari masa hidupnya.

IV.3. Alat dan Bahan1. Aquarium

2. Aerator

3. Jerigen

4. Jaring ikan

5. Air sumur

6. Air limbah

7. Beaker glass

8. Gayung

9. Ember

10. Limbah sebelum diolah (pra)

11. Limbah setelah diolah (post)

12. Ikan uji (ikan nila)

IV.4. Cara Kerja1. air sumur diambil dengan jerigen.

2. air limbah diambil menggunakan jerigen.

3. Air sumur dan air limbah dimasukan kedalam aquarium, sesuai dengan

konsentrasi: 51%, 52%, 53%, 54%, 55%, 56%, 57%, 58%, 59%, 60% dan

66%, 67%, 68%, 69%, 70%, 71%, 72%, 73%, 74%, 75%.

4. Ikan 10 ekor dimasukan setiap bak aquarium.

33

5. Diamati selama 4 hari kaitannya dengan: warna ikan,air keruh,air

jernih,morfologi(mata merah),mata normal,mata normal,jumlah ikan mati.

6. Kemudian ikan yang mati dikonversi ke probit dan dihitung LC50 nya.

a) Pemeriksaan COD

a. Vial disiapkan ke dalam tabung reaksi yang tersusun atas 1 mL

K2Cr2O7 0,25 N, sepucuk sendok (+ 1 mg) dan 3 mL H2SO4 pro

COD.

b. 2 mL sampel limbah cair dimasukkan ke dalam vial yang telah

tersedia.

c. Campuran digojog sampai homogen kemudian dipanaskan

menggunakan COD reaktor pada suhu 150oC selama 2 jam.

d. Didinginkan sampai suhu kamar.

e. Sampel diperiksa menggunakan spektrofotometer.

b) Pemeriksaan BOD

a. Persiapan contoh uji

1) Sampel yang telah diambil disediakan.

2) 1000 mL sampel diukur secara duplo dan dimasukkan ke dalam

gelas piala 2000 mL.

3) Apabila sampel bersifat asam atau basa maka dinetralkan

terlebih dahulu menggunakan NaOH 0,1 N atau H2SO4 0,1 N

sampai pH-nya antara 6,5 – 7,5.

4) Apabila sampel mengandung sisa klor (Cl2) maka Na2SO3 0,0025

N ditambahkan sampai semua Cl2 hilang.

5) Apabila sampel tidak mengandung mikroorganisme pengurai

maka 1000 mL larutan pengencer ditambahkan sehingga

pengenceran dilakukan 2 kali.

34

6) Apabila sampel diperkirakan mempunyai kadar BOD lebih dari 6

mg/L maka sampel diencerkan dengan larutan pengencer

sehingga kadar BOD mnejadi antara 3-6 mg/L.

7) Sampel dan pengencer diaerasi dengan menggunakan aerator

selama 10 menit sampai oksigen terlarutnya 7-8 mg/L.

8) Sampel dan pengencer dimasukkan ke dalam botol BOD 300 mL

sampai meluap kemudian ditutup.

b. Pengujian kadar BOD

1) Sampel yang telah disiapkan diambil.

2) 1 mL MnSO4 dan 1 mL iodide azida dengan ujung pipet tepat

diatas permukaan larutan ditambahkan ke dalam sampel.

3) Botol BOD ditutup segera dan dihomogenkan hingga gumpalan

sempurna terbentuk.

4) Gumpalan dibiarkan mengendap 5-10 menit.

5) 1 mL H2SO4 pekat ditambahkan kemudian tutup kembali botol

BOD hingga endapan larut sempurna.

6) 50 mL sampel dipipet dan dimasukkan ke dalam erlenmeyer 150

mL.

7) Sampel yang telah diambil tersebut dititrasi dengan Na2S203

dengan indikator amilum sampai warna biru tepat hilang.

8) Perlakuan yang sama juga dilakukan terhadap sampel yang telah

diinkubasi dalam inkubator BOD setelah 5 hari.

9) Hasilnya dicatat lalu dilakukan perhitungan.

c. Pemeriksaan fosfat

1) Spektrofotometer dilakukan pemrograman untuk mengukur

kadar fosfat.

2) Cuvet diisi dengan 10 mL sampel.

3) Ampul Phos ver 3 Phosphat powder pillow ditambahkan dan

digojog sampai homogen selama 15 detik.

35

4) Sampel dibiarkan selama 2 menit agar dapat bereaksi sempurna

memunculkan komplemen warna.

5) Sampel cell kedua diisi dengan 10 mL sampel.

6) Spektrofotometer dilakukan pengaturan menggunakan botol

blangko, kemudian botol blangko dikeluarkan dan dilakukan

pengukuran terhadap sampel sebenarnya yang ingin diketahui

nilai kadar fosfatnya.

IV.5. Hasil

36

Data Biologis pra pengolahan pada uji pendahuluan

Tabel IV.1. Data pengamatan uji sesungguhnya hari ke 1 pada limbah sebelum pengolahan



2. Air tidak bau

√ amis amis amis amis amis amis amis amis amis amis

3. Air jernih Jernih jernih jernih jernih jernih jernih keruh



√8 ekor

√6 ekor

√5 ekor

√8 ekor

√5

ekor

√9 ekor

√7 ekor

√6 ekor

√6 ekor


normal √ √ √ √ √ √ √ √ √ √


7. Mortalitas 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0

37




2. Air tidak bau


3. Air jernih Jernih jernih jernih jernih jernih Jernih keruh



√8 ekor

√6 ekor

√5 ekor

√9 ekor

√8

ekor

√9 ekor

√8 ekor

√8 ekor

√9 ekor


normal √ √ √ √ √ √ √ √ √ √

6. Pola renang normal √ √ √ √ √ √ √ x2 ekor

x5 ekor

x 7ekor

7. Mortalitas 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0

38



kontrol 10 20 30 40 50 60 70 80 90 1001. Warna ikan cerah √ √ √ √ √ puca

tpucat pucat pucat pucat

2. Air tidak bau


3. Air jernih Jernih jernih jernih jernih jernih Jernih berbuih

berbuih berbuih

berbuih berbuih


√8 ekor

√6 ekor

√5 ekor

√9 ekor

√10

ekor

√9 ekor

√9 ekor

√8 ekor

√9 ekor


normal √ √ √ √ √ √ √ √ √ √


x5 ekor

x7 ekor

7. Mortalitas 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1

39



kontrol 10 20 30 40 50 60 70 80 90 1001. Warna ikan cerah √ √ √ √ √ puca

tpucat pucat pucat pucat

2. Air tidak bau


3. Air jernih Jernih jernih jernih jernih jernih Jernih berbuih

berbuih berbuih

berbuih berbuih


√8 ekor

√6 ekor

√5 ekor

√9 ekor

√10

ekor

√9 ekor

√9 ekor

√8 ekor

√9 ekor


normal √ √ √ √ √ √ √ √ √ √


x5 ekor

x7 ekor

7. Mortalitas 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1

40

Tabel IV.5. Data pengamatan uji sesungguhnya limbah setelah pengolahan

Hari ke - 1


Mata Sirip Warna sisik pola renang Bernafas Respon Mortalitas50% Air jernih , tidak berbau, tidak berbuih 5 merah normal normal normal normal responsive hidup semua51% Air jernih , tidak berbau, tidak berbuih 5 merah normal normal normal normal responsive hidup semua52% Air jernih , tidak berbau, tidak berbuih 5 merah normal normal normal normal responsive hidup semua53% Air jernih , tidak berbau, tidak berbuih 9 merah normal normal normal normal responsive hidup semua54% Air jernih , tidak berbau, tidak berbuih 8 merah normal normal normal normal responsive hidup semua

kontrol Air jernih , tidak berbau, tidak berbuih normal normal normal normal responsive hidup semuaHari ke - 2 normal

50% air jernih, agak bau amis , ada buih 6 merah normal normal normal normal responsive hidup semua51% air jernih, agak bau amis , ada buih 8 merah normal normal normal normal responsive hidup semua52% air jernih, agak bau amis , ada buih 9 merah normal normal normal normal responsive hidup semua53% air jernih, agak bau amis , ada buih 7 merah normal normal normal normal responsive hidup semua54% air jernih, agak bau amis , ada buih 6 merah normal normal normal normal responsive hidup semua

kontrol air jernih, agak bau amis , ada buih normal normal normal normal responsive hidup semuaHari ke - 3

50% air jernih , berbau amis, ada sedikit buih 5 merah normal sedikit pucat normal normal responsive 3 mati51% air jernih , berbau amis, ada sedikit buih 5 merah normal pucat normal normal responsive 1 mati52% air jernih , berbau amis, ada sedikit buih 9 merah normal sedikit pucat normal normal responsive hidup semua53% air agak keruh,berbau amis,sedikit buih 9 merah normal sedikit pucat normal normal responsive hidup semua54% air agak keruh,berbau amis,sedikit buih 6 merah normal sedikit pucat normal normal responsive hidup semua55% air agak keruh,berbau amis,sedikit buih normal sedikit pucat normal normal responsive

Hari ke -

41

450% air agak keruh,berbau amis,sedikit buih 5 merah normal sedikit pudar normal normal responsive hidup semua51% air agak keruh,berbau amis,sedikit buih 5 merah normal sedikit pudar normal normal responsive hidup semua52% air agak keruh,berbau amis,sedikit buih 9 merah normal sedikit pudar normal normal responsive hidup semua53% air agak keruh,berbau amis,sedikit buih 9 merah normal sedikit pucat normal normal responsive hidup semua54% air agak keruh,berbau amis,sedikit buih 6 merah normal sedikit pucat normal normal responsive hidup semua

kontrol air agak keruh,berbau amis,sedikit buih normal sedikit pucat normal normal responsive hidup semuaHari ke - 5

50% air agak keruh,berbau amis,sedikit buih 5 merah normal sedikit pucat normal normal responsive hidup semua51% air agak keruh,berbau amis,sedikit buih 5 merah normal sedikit pucat normal normal responsive 1 mati52% air agak keruh,berbau amis,sedikit buih 9 merah normal sedikit pucat normal normal responsive hidup semua53% air agak keruh,berbau amis,sedikit buih 9 merah normal sedikit pucat normal normal responsive hidup semua54% air agak keruh,berbau amis,sedikit buih 6 merah normal sedikit pucat normal normal responsive hidup semua55% air agak keruh,berbau amis,sedikit buih normal sedikit pucat normal normal responsive hidup semua

Hari ke – 1


Mata Sirip Warna sisik pola renang Bernafas Respon Mortalitas50% Air jernih , tidak berbau, tidak berbuih 5 merah normal normal normal normal responsive hidup semua51% Air jernih , tidak berbau, tidak berbuih 5 merah normal normal normal normal responsive hidup semua52% Air jernih , tidak berbau, tidak berbuih 5 merah normal normal normal normal responsive hidup semua53% Air jernih , tidak berbau, tidak berbuih 9 merah normal normal normal normal responsive hidup semua

42

54% Air jernih , tidak berbau, tidak berbuih 8 merah normal normal normal normal responsive hidup semuakontrol Air jernih , tidak berbau, tidak berbuih normal normal normal normal responsive hidup semuaHari ke - 2 normal

50% air jernih, agak bau amis , ada buih 6 merah normal normal normal normal responsive hidup semua51% air jernih, agak bau amis , ada buih 8 merah normal normal normal normal responsive hidup semua52% air jernih, agak bau amis , ada buih 9 merah normal normal normal normal responsive hidup semua53% air jernih, agak bau amis , ada buih 7 merah normal normal normal normal responsive hidup semua54% air jernih, agak bau amis , ada buih 6 merah normal normal normal normal responsive hidup semua

kontrol air jernih, agak bau amis , ada buih normal normal normal normal responsive hidup semuaHari ke - 3

50% air jernih , berbau amis, ada sedikit buih 5 merah normal sedikit pucat normal normal responsive 3 mati51% air jernih , berbau amis, ada sedikit buih 5 merah normal pucat normal normal responsive 1 mati52% air jernih , berbau amis, ada sedikit buih 9 merah normal sedikit pucat normal normal responsive hidup semua53% air agak keruh,berbau amis,sedikit buih 9 merah normal sedikit pucat normal normal responsive hidup semua54% air agak keruh,berbau amis,sedikit buih 6 merah normal sedikit pucat normal normal responsive hidup semua55% air agak keruh,berbau amis,sedikit buih normal sedikit pucat normal normal responsive

Hari ke - 4

50% air agak keruh,berbau amis,sedikit buih 5 merah normal sedikit pudar normal normal responsive hidup semua51% air agak keruh,berbau amis,sedikit buih 5 merah normal sedikit pudar normal normal responsive hidup semua52% air agak keruh,berbau amis,sedikit buih 9 merah normal sedikit pudar normal normal responsive hidup semua53% air agak keruh,berbau amis,sedikit buih 9 merah normal sedikit pucat normal normal responsive hidup semua54% air agak keruh,berbau amis,sedikit buih 6 merah normal sedikit pucat normal normal responsive hidup semua

kontrol air agak keruh,berbau amis,sedikit buih normal sedikit pucat normal normal responsive hidup semuaHari ke - 5

43

50% air agak keruh,berbau amis,sedikit buih 5 merah normal sedikit pucat normal normal responsive hidup semua51% air agak keruh,berbau amis,sedikit buih 5 merah normal sedikit pucat normal normal responsive 1 mati52% air agak keruh,berbau amis,sedikit buih 9 merah normal sedikit pucat normal normal responsive hidup semua53% air agak keruh,berbau amis,sedikit buih 9 merah normal sedikit pucat normal normal responsive hidup semua54% air agak keruh,berbau amis,sedikit buih 6 merah normal sedikit pucat normal normal responsive hidup semua55% air agak keruh,berbau amis,sedikit buih normal sedikit pucat normal normal responsive hidup semua

44

1. Perhitungan LC50 pada limbah sebelum pengolahan

Tabel IV.1. Mortalitas ikan pada limbah sebelum pengolahan

No Konsentrasi

(%)

Mortalitas (%)


1 0 0 0 0 0 50

2 51 0 0 0 0 0

3 52 0 0 0 0 0

4 53 0 0 0 0 10

5 54 0 0 0 0 10

6 55 0 0 0 0 10

7 56 0 0 0 0 10

8 57 0 0 0 0 10

9 58 0 0 0 0 0

10 59 0 0 0 0 20

11 60 0 0 0 0 0


Tabel IV.2. Perhitungan LC50 Pra pengolahan untuk uji sesungguhnya




1 51 0 #NUM! 0

2 52 0 #NUM! 0

3 53 10 1 3.72

4 54 10 1 3.72

5 55 10 1 3.72

6 56 10 1 3.72

45

7 57 10 1 3.72

8 58 0 #NUM! 0

9 59 20 1.30103 4.16

10 60 0 #NUM! 0

Y = 3,5409x + 0,00498

Maka

5 = 3,5409x + 0,00498

X = (5−0,00498)

3,5409

X = 1,398006

LC50 = anti log x

= anti log 1,398006

= 25,00381%

Tabel IV.3. Data perhitungan persamaan regresi linear limbah sebelum pengolahan

No Konsentrasi (%) (X) 96 jam Probit (y) X2 XY1 0 50 0 0 02 51 0 0 2601 0

46

3 52 0 0 2704 04 53 10 3,72 2809 197,165 54 10 3,72 2916 200,886 55 10 3,72 3025 204,67 56 10 3,72 3136 208,328 57 10 3,72 3249 212,049 58 0 0 3364 010 59 20 4,16 3481 245,4411 60 0 0 3600 0

Jumlah 555 70 22,76 30885 1268,44a. Mencari persamaan

y= a + bx

b=n∑ xy−(∑ x . ∑ y)n ∑ x2−(∑ x )2

b=10. 1268,44−(555.22,76)10 .30885−(555 )2

= 0,064

a=∑ y−b ∑ xn

a=22,76−(0,064 ) .55510

= -1,276

b. LC50


Y= a + b x

5 = (-1,276)-0,064x

x=−6,2760,064

X = 98,06%

Jadi, LC50 pada konsentrasi 98,06%

2. Perhitungan LC50 pada limbah setelah pengolahan

Tabel IV.5. Mortalitas ikan pada limbah setelah pengolahan

47

NoKonsentrasi

(%)

Mortalitas (%)


1 0 0 0 0 0 50

2 50 0 0 0 0 30

3 51 0 0 0 0 10

4 52 0 0 0 0 10

5 53 0 0 0 0 0

6 54 0 0 0 0 0

7 55 0 0 0 0 10

8 56 0 0 0 0 10

9 57 0 0 0 0 0

10 58 0 0 0 0 20

11 59 0 0 0 0 0


Tabel IV.6. Perhitungan LC50 Post pengolahan untuk uji sesungguhnya




1 50 30 1.47712125 4.48

2 51 10 1 3.72

3 52 10 1 3.72

4 53 0 #NUM! 0

5 54 0 #NUM! 0

6 55 10 1 3.72

7 56 10 1 3.72

8 57 0 #NUM! 0

9 58 20 1.30103 4.16

10 59 0 #NUM! 0

48

Y = 3,51317x + 0,0354

Maka

5 = 3,51317x + 0,0354

X = (5−0,0354)

3,51317

X = 1,746153

LC50 = anti log x

= anti log 1,746153

= 25,4522%

Tabel IV.7. Data perhitungan persamaan regresi linear limbah setelah pengolahan

No Konsentrasi (%) (x) 96 jam Probit (y) x2 X.y

1 0 50 0 0 0

2 50 30 4,48 2500 224

3 51 10 3,72 2601 189,72

49

4 52 10 3,72 2704 193,44

5 53 0 0 2809 0

6 54 0 0 2916 0

7 55 10 3,72 3025 204.6

8 56 10 3,72 3136 208,32

9 57 0 0 3249 0

10 58 20 4,16 3364 241,28

11 59 0 0 3481 0

Jumla

h545 90 23,52 29785 1056,76


y= a + bx

b=n∑ xy−(∑ x . ∑ y)n ∑ x2−(∑ x )2

b=10.1056,76−(545.23,56)10 .29785−(545 )2

= -2,728

a=∑ y−b ∑ xn

a=23,52−(−2,728 ) .545

10

= -349,68

b. LC50


Y= a + b x

5 = (-349,68)-(-2,728)x

50

x=−354,68−2,728

X = 130%


Tabel V.5. Data pengujian Disolved Oxygen

DO (mg/L)

DO segera

Sebelum pengolahan 0,4

Setelah Pengolahan 0,4

DO 5hari

Sebelum pengolahan 0,5


PengencerSebelum pengolahan 0,5


2. Perhitungan BOD

a. Pengenceran 50 x (sebelum pengolahan)

BOD = (DO segera – DO 5 hari) x pengenceran

BOD = (0,4 – 0,5) x 50 = -5 mg/Liter

b. Pengenceran 10 x (setelah pengolahan)

BOD = (DO segera – DO 5 hari) x pengenceran

BOD = (0,4 – 0,4) x 10 = 0 mg/liter

IV.6. PembahasanDalam percobaan sesungguhnya mendapatkan LC50 98,06% pada

pra pengolahan dan 130% pada post, dengan demikian percobaan

sesungguhnya dapat dicari dengan range ±5 dari hasil percobaan

pendahuluan, percobaan sesungguhnya ini dilakukan untuk mencari nilai

LC50 yang benar atau mendekati benar.

Namun dalam percobaan sesungguhnya mendapatkan kendala

dimana hasil atau mortalitas ikan tidak seimbang sehingga menyebabkan

51

terjadinya rancu dalam analisa. Misalnya jumlah kematian ikan pada

kontrol mencapai 50%, sedangkan pada 50% limbah hanya mendapatkan

30% kematian. Dengan terjadinya hasil seperti ini banyak faktor

kemungkinan yang menyebabkan salah satunya belum dilakukan

aklimatisasi ikan, akan tetapi kita sebagai praktikan dapat belajar dan

memahami bagaimana mencari nilai LC50, dan faktor apa saja yang perlu

diperhatikan agar mendapat hasil yang lebih valid.

IV.7. KesimpulanDalam percobaan yang telah dilakukan maka didapatkan nilai

range percobaan pendahuluan 98,06% untuk pra pengolahan, dan 130%

untuk post.

52

DAFTAR PUSTAKA

Anonim.2014.Diktat Petunjuk Praktikum Toksikologi Lingkungan.Yogyakarta: IST AKPRIND Yogyakarta

http://cindyrahmah2.blogspot.com/2013/03/uji-toksisitas-limbah-deterjen-terhadap_25.html

53



Laporan praktikum Tri Ade

Documents

Transcript of Laporan praktikum Tri Ade