UJI KANDUNGAN TAURIN DARI EKSTRAK MAKROALGA HIJAU

(Halimeda opuntia L.), MAKROALGA COKELAT (Sargassum sp.), DAN

MAKROALGA MERAH (Eucheuma cottonii L.)

(Skripsi)

Oleh

ULFAH AZZIZAH

JURUSAN BIOLOGI

FAKULTAS MATEMATIKA DAN ILMU PENGETAHUAN ALAM

UNIVERSITAS LAMPUNG

BANDAR LAMPUNG

2019

http://www.kvisoft.com/pdf-merger/

1

ABSTRAK

UJI KANDUNGAN TAURIN DARI EKSTRAK MAKROALGA HIJAU

(Halimeda opuntia L.), MAKROALGA COKELAT (Sargassum sp.), DAN

MAKROALGA MERAH (Eucheuma cottonii L.)

Oleh

ULFA AZZIZAH

Makroalga merupakan salah satu potensi biota laut di perairan Indonesia.

Makroalga diduga memiliki kandungan taurin alami. Taurin berperan penting

dalam menjaga kelancaran berbagai proses tubuh. Makroalga yang berpotensi

memiliki kandungan taurin alami diantaranya adalah makroalga hijau (Halimeda

opuntia L.), makrolga cokelat (Sargassum sp.), dan makroalga merah (Eucheuma

cottonii L.). Tujuan dari penelitian ini adalah menguji kandungan taurin dari

ekstrak etanol makroalga hijau (Halimeda opuntia L.), makrolga cokelat

(Sargassum sp.), dan makroalga merah (Eucheuma cottonii L.). Senyawa taurin

dalam makroalga hijau (Halimeda opuntia L.), makrolga cokelat (Sargassum sp.),

dan makroalga merah (Eucheuma cottonii L.) diekstraksi menggunakan metode

maserasi dengan pelarut etanol 96%. Kandungan taurin alami dari sampel

makroalga diuji menggunakan metode spektrofotometri UV-Vis dengan standar

baku taurin siap pakai sebagai pembanding. Data dalam penelitian ini dianalisis

secara kuantitatif dan disajikan dalam bentuk tabulasi data. Berdasarkan hasil

iii

penelitian didapat panjang gelombang maksimum taurin yaitu 630 nm. Hasil

kurva standar taurin 0,1 M dan 1 M memiliki koefesien korelasi r = 1. Dan

diperoleh persamaan regresi y = 0,001x+0.033. Hasil analisis sampel ekstrak

makroalga menunjukkan bahwa semua sampel mengandung taurin. Sampel

pertama ekstrak makroalga hijau (Halimeda opuntia L.) mengandung taurin

sebesar 7,85 mg/100g, sampel kedua makroalga cokelat (Sargassum sp.)

mengandung taurin sebesar 1,21 mg/100g, dan sampel ketiga makroalga merah

(Eucheuma cottonii L.) mengandung taurin sebesar 4,61 mg/100g.

Kata kunci : makroalga, spektrofotometri UV-Vis, taurin

UJI KANDUNGAN TAURIN DARI EKSTRAK MAKROALGA HIJAU

(Halimeda opuntia L.), MAKROALGA COKELAT (Sargassum sp.), DAN

MAKROALGA MERAH (Eucheuma cottonii L.)

Oleh

ULFAH AZZIZAH

Skripsi

Sebagai salah satu syarat untuk mencapai gelar

SARJANA SAINS

pada

Jurusan Biologi

Fakultas Matematika dan Ilmu Pengetahuan Alam

JURUSAN BIOLOGI

FAKULTAS MATEMATIKA DAN ILMU PENGETAHUAN ALAM

UNIVERSITAS LAMPUNG

BANDAR LAMPUNG

2019

1

RIWAYAT HIDUP

Penulis dilahirkan di Kalirejo, Lampung Tengah

pada tanggal 08 Oktober 1997 sebagai anak pertama

dari empat bersaudara dari pasangan Bapak Widodo

dan Ibu Anisah. Penulis mulai menempuh

pendidikan pertama di Taman Kanak-Kanak (TK)

Aisiyah Kalirejo, Lampung Tengah pada tahun

2002. Pada tahun 2003 penulis melanjutkan

pendidikannya di Sekolah Dasar Negeri 1 Sukosari, Kecamatan Kalirejo,

Kabupaten Lampung Tengah. Kemudian melanjutkan pendidikan ke Madrasah

Tsanawiyah Al-Muhsin Metro pada tahun 2009. Setelah itu pada tahun 2012

penulis melanjutkan pendidikannya di Madrasah Aliyah Negeri 1 Pringsewu.

Kemudian pada tahun 2015 penulis terdaftar sebagai mahasiswa Jurusan Biologi

Fakultas Matematika dan Ilmu Pengetahuan Alam Universitas Lampung melalui

jalur Seleksi Bersama Masuk Perguruan Tinggi Negeri (SBMPTN). Selama

menjadi mahasiswa di Jurusan Biologi FMIPA Universitas Lampung, penulis

pernah menjadi anggota di Organisasi Himpunan Mahasiswa Biologi (HIMBIO)

FMIPA Universitas Lampung, Bidang Sains dan Teknologi tahun 2016-2017.

ix

Penulis melaksanakan Kerja Praktik (KP) pada bulan Januari-Februari 2018 di

PT. Great Giant Pineapple (GGP) Lampung Tengah dengan judul “Sebaran

Volume Akar Tanaman Nanas GP3 Asal Bibit Sucker Umur 3 Bulan di PT. Great

Giant Pineapple Lampung Tengah”. Pada bulan Juli-Agustus 2018 penulis

melaksanakan Kuliah Kerja Nyata (KKN) di Desa Marga Mulya, Kecamatan

Bumi Agung, Kabupaten Lampung Timur. Penulis melaksanakan penelitian pada

bulan Mei - Juni 2019 di Laboratorium Botani Jurusan Biologi Fakultas MIPA

Universitas Lampung.

Kupersembahkan sebuah karya kecilku ini untuk Ayahanda dan

Ibundaku tercinta, yang tiada henti mendoakan dan memberiku

dorongan

Terimakasih ku ucapkan teruntuk,

Ayahanda dan Ibunda

Untuk segala pengorbanan yang tak tergantikan…

Untuk setiap peluh keringat yang menetes…

Untuk berjuta kasih sayang yang tercurah…

dan

Untuk setiap lantunan doa yang terpanjatkan…

MOTTO

Barang siapa beriman kepada Allah dan hari akhir, maka hendaklah ia berkata baik atau diam

-Nabi Muhammad SAW-

Maka sesungguhnya bersama kesulitan itu ada kemudahan -QS. Al-Insyirah:5-

Sesuatu yang belum dikerjakan, sekalipun tampak mustahil, kita baru yakin kalau kita telah berhasil melakukannya dengan baik

-Evelyn Underhill-

Mereka tak mengerti bagaimana hidupmu, bagaimana kesulitanmu, apa saja yang telah kamu lewati, yang bisa

mereka lakukan hanya menilaimu -Anonim-

1

SANWACANA

Assalamu’alaikum Warahmatullah Wabarakatuh…

Alhamdulillahirabbil’alamin segala puji dan syukur penulis panjatkan kehadirat

Allah SWT atas limpahan rahmat dan pertolongan-Nya sehingga penulis dapat

menyelesaikan skripsi yang berjudul “Uji Kandungan Taurin dari Ekstrak

Makroalga Hijau (Halimeda opuntia L.), Makroalga Cokelat (Sargassum sp.),

dan Makroalga Merah (Eucheuma cottonii L.)” sebagai syarat untuk mencapai

gelar sarjana sains.

Penulis menyadari dalam penyusunan dan penulisan skripsi ini terdapat banyak

kekurangan. Akan tetapi berkat doa, bimbingan, dan dukungan dari berbagai

pihak baik secara moril maupun materil kepada penulis sehingga penulisan skripsi

ini dapat terselesaikan. Pada kesempatan ini penulis menyampaikan rasa hormat

dan ucapan terima kasih dengan ketulusan hati kepada :

1. Kedua Orang Tuaku, Ayahanda Widodo dan Ibunda Anisah serta adik-adikku

Alfiah Nurul Faizah, Muhammad Faiz Adlan, dan Ahmad Yusron Al-fatih

yang selalu memberikan doa, kasih sayang, dukungan moral, material, dan

selama ini menjadi inspirasi terbesar untuk maju.

xiii

2. Ibu Endang Linirin Widiastuti, Ph.D. selaku Pembimbing 1 yang dengan

sabarnya telah membimbing, mengarahkan, dan memberi saran dalam

penyelesaian skripsi ini. Terima kasih untuk waktu yang diluangkan serta

ilmu yang diberikan sehingga menjadi inspirasi dan pembelajaran untuk lebih

baik bagi penulis.

3. Ibu Henni Wijayanti Maharani, S.P., M.Si. selaku Pembimbing 2 atas

kesediaannya dan kesabarannya untuk membimbing, meluangkan waktu,

memberi masukan dan arahan kepada penulis.

4. Bapak Drs. Tugiyono, Ph.D. selaku Pembahas yang telah memberikan

arahan, kritik, saran dan masukan kepada penulis.

5. Bapak Prof. Dr. Ir. Hasriadi Mat Akin, M.P. selaku Rektor Universitas

Lampung.

6. Bapak Drs. Suratman, M.Sc. selaku Dekan Fakultas Matematika dan Ilmu

Pengetahuan Alam Universitas Lampung.

7. Bapak Drs. M. Kanedi, M.Si. selaku Ketua Jurusan Biologi Fakultas MIPA

Universitas Lampung.

8. Bapak Ir. Zulkifli, M.Sc. selaku Pembimbing Akademik atas arahan,

dukungan, dan bimbingan selama penulis menjadi mahasiswa.

9. Ibu Dra. Eti Ernawati, M.Si. selaku Kepala Laboratorium Botani dan Bapak

Hambali selaku Laboran yang telah mengizinkan dan membantu penulis

dalam melaksanakan penelitian di laboratorium tersebut.

10. Seluruh Dosen dan Karyawan di Jurusan Biologi FMIPA Universitas

Lampung yang telah banyak memeberikan ilmunya dan pengalaman yang

berharga serta membantu dalam sarana prasarana.

xiv

11. Hajar Rifa’i, yang selalu memberi dukungan, semangat dan motivasi,

menemani dengan sabar serta menjadi teman berbagi keluh kesah dalam

perjalanan ini.

12. Sahabat-sahabatku, Rina Maryani, Novita Herliani, Septika Nurhidayah dan

sahabat-sahabat terbaikku yang lainnya dimanapun kalian berada, yang selalu

memotivasi untuk tetap semangat dan selalu ada untuk berbagi cerita.

13. Teman-teman mahasiswa Biologi angkatan 2015.

14. Rekan-rekan KKN Desa Marga Mulya, Kecamatan Bumi Agung, Kabupaten

Lampung Timur, atas pengalaman selama 32 hari bersama.

15. Almamater tercinta dan semua pihak yang terlibat dan telah membantu dalam

penyelesaian skripsi ini.

Semoga Allah SWT mengganti semua kebaikan mereka dan mencatatnya sebagai

amal sholeh yang tak terbatas.

Bandar Lampung, 2 Agustus 2019

Penulis

Ulfa Azzizah

1

DAFTAR ISI

Halaman

SAMPUL DEPAN ......................................................................................... i

ABSTRAK ..................................................................................................... ii

SAMPUL DALAM ........................................................................................ iv

LEMBAR PERSETUJUAN ......................................................................... v

LEMBAR PENGESAHAN .......................................................................... vi

SURAT PERNYATAAN .............................................................................. vii

RIWAYAT HIDUP ....................................................................................... viii

HALAMAN PERSEMBAHAN .................................................................... x

MOTTO ......................................................................................................... xi

SANWACANA .............................................................................................. xii

DAFTAR ISI .................................................................................................. xv

DAFTAR TABEL .......................................................................................... xvii

DAFTAR GAMBAR ..................................................................................... xviii

DAFTAR LAMPIRAN .................................................................................. xx

I. PENDAHULUAN ................................................................................ 1

A. Latar Belakang ................................................................................... 1

B. Tujuan Penelitian ............................................................................... 3

xvi

C. Manfaat Penelitian ............................................................................. 4

D. Kerangka Pemikiran .......................................................................... 4

II. TINJAUAN PUSTAKA ...................................................................... 7

A. Halimeda opuntia L. .......................................................................... 7

B. Sargassum sp. .................................................................................... 9

C. Eucheuma cottonii L. ......................................................................... 11

D. Taurin ................................................................................................ 13

E. Spektrofotometri UV-Vis .................................................................. 21

III. METODE PENELITIAN ................................................................... 26

A. Waktu dan Tempat Penelitian ........................................................... 26

B. Alat dan Bahan Penelitian ................................................................. 26

C. Pelaksanaan Penelitian ...................................................................... 27

D. Diagram Alir Penelitian ..................................................................... 30

E. Parameter Penelitian .......................................................................... 31

F. Analisis Data Penelitian ..................................................................... 31

IV. HASIL DAN PEMBAHASAN ............................................................. 32

A. Hasil Penelitian .................................................................................. 32

B. Pembahasan ....................................................................................... 34

V. SIMPULAN DAN SARAN .................................................................. 44

DAFTAR PUSTAKA ....................................................................................... 45

LAMPIRAN ...................................................................................................... 52

........................................................................................ 44

B. Saran .................................................................................................. 44

A. Simpulan

DAFTAR TABEL

Halaman

Tabel 1. Hasil uji linearitas larutan standar taurin .......................................... 33

Tabel 2. Hasil penentuan kadar taurin ekstrak etanol makroalga ................... 34

xix

DAFTAR GAMBAR

Halaman

Gambar 1. Morfologi Halimeda opuntia L. .................................................... 8

Gambar 2. Morfologi Sargassum sp. .............................................................. 10

Gambar 3. Morfologi Eucheuma cottonii L. ................................................... 12

Gambar 4. Struktur kimia taurin ..................................................................... 14

Gambar 5. Diagram alir proses desulphydrasi sistin pada γ-sistationase ........ 15

Gambar 6. Diagram alir biosintesis sistein dari metionin dalam jaringan

tubuh mamalia .............................................................................. 16

Gambar 7. Diagram alir peranan sistationin pada metabolism sistein dan

metionin ........................................................................................ 17

Gambar 8. Diagram alir proses desulphydrasi sistin pada γ-sistationase ........ 17

Gambar 9. Diagram alir biosintesis taurin dari sistein .................................... 18

Gambar 10. Skema kerja spektrofotometri UV-Vis ........................................ 21

Gambar 11. Proses ekstraksi makroalga ......................................................... 27

Gambar 12. Proses pembuatan larutan standar taurin ..................................... 28

Gambar 13. Proses pembuatan larutan sampel ekstrak makroalga ................. 29

Gambar 14. Diagram alir penelitian ................................................................ 30

Gambar 15. Panjang gelombang maksimum larutan standar taurin ............... 32

Gambar 16. Kurva standar taurin .................................................................... 33

xix

Gambar 17. Penampang histologi jaringan makroalga ................................... 41

Gambar 18. Jalur sintesis taurin ...................................................................... 43

Gambar 19. Prosoes pencucian makroalga ..................................................... 58

Gambar 20. Proses penjemuran makroalga ..................................................... 58

Gambar 21. Proses pengeringan makroalga dengan oven .............................. 58

Gambar 22. Sampel makroalga kering ............................................................ 59

Gambar 23. Hasil penggilingan makroalga menjadi serbuk ........................... 59

Gambar 24. Proses penimbangan serbuk makroalga ...................................... 59

Gambar 25. Proses maserasi makroalga .......................................................... 60

Gambar 26. Proses penyaringan hasil maserasi makroalga ............................ 60

Gambar 27. Filtrat hasil penyaringan makroalga ............................................ 60

Gambar 28. Proses pemekatan larutan dengan rotatory evaporator ............... 61

Gambar 29. Ekstrak etanol makroalga dalam bentuk pasta ............................ 61

Gambar 30. Proses pengenceran ekstrak makroalga ....................................... 61

Gambar 31. Hasil pengenceran ekstrak makroalga ......................................... 62

Gambar 32. Proses pembuatan larutan standar taurin ..................................... 62

Gambar 33. Proses uji kandungan taurin dengan spektrofotometri ................ 62

DAFTAR LAMPIRAN

Halaman

Lampiran 1. Perhitungan konsentrasi awal larutan standar taurin .................. 53

Lampiran 2. Perhitungan konsentrasi larutan standar taurin ........................... 54

Lampiran 3. Perhitungan penentuan kadar taurin total ekstrak makroalga .... 55

1

I. PENDAHULUAN

A. Latar Belakang

Indonesia terkenal sebagai salah satu megacenter keanekaragaman hayati

dunia termasuk keanekaragaman hayati biota lautnya. Salah satu potensi

biota laut perairan Indonesia adalah makroalga. Secara taksonomi

makroalga dikelompokkan ke dalam divisi Thallophyta karena memiliki

akar, batang, dan daun semu yang disebut thallus (Waryono, 2008).

Menurut United Nation Convention on the Law of the Sea (UNCLOS)

makroalga merupakan salah satu sumber daya hayati yang sangat melimpah

di perairan Indonesia yaitu sekitar 8,6% dari total biota di laut (Suparmi,

2008). Indonesia juga memiliki jumlah makroalga tidak kurang dari 628

jenis dari 8000 jenis makroalga yang ditemukan di seluruh dunia. Sebagian

besar jenis makroalga di Indonesia bernilai ekonomis tinggi (Luning, 1990).

Dari segi produktivitas makroalga lebih menguntungkan karena tidak terjadi

variasi musiman, lebih mudah diekstraksi, dan bahan mentah yang

berlimpah (Oktarina, 2017).

2

Menurut Dawes (1981) makroalga dapat dibagi menjadi tiga divisi

berdasarkan pigmen mereka yaitu Chlorophyceae (alga hijau), Phaeophycae

(alga coklat), dan Rhadophyceae (alga merah) (Marianingsih et al., 2013).

Rumput laut yang menempati urutan terbanyak dari jumlah jenis yang

tumbuh di perairan laut Indonesia yaitu dari kelas alga merah

(Rhodophyceae) sekitar 452 jenis, setelah itu alga hijau (Chlorophyceae)

sekitar 196 jenis dan alga coklat (Phaeophyceae) sekitar 134 jenis (Suparmi,

2008).

Hasil penelitian Kawasaki et al., (2017) membuktikan bahwa terdapat

kandungan taurin pada beberapa spesies makroalga di Jepang. Diantara 29

jenis makroalga yang diteliti, makroalga merah memiliki kandungan taurin

yang relatif tinggi sedangkan makroalga hijau dan makroalga cokelat tidak

mengandung taurin.

Taurin merupakan salah satu zat stimulan yang dapat memicu stamina

tubuh, sehingga banyak digunakan dalam suplemen energi. Taurin juga

berperan penting dalam menjaga kelancaran berbagai proses tubuh

(Militante dan Lombardini, 2002).

Taurin ditemukan dalam beberapa organ tubuh manusia, mamalia dan

hewan laut (Yancey, 2005).

3

Hewan laut yang biasa dikonsumsi manusia seperti ikan, kerang, dan cumi-

cumi sangat kaya akan kandungan taurin (Kawasaki et al., 2017).

Sebaliknya, kandungan taurin jarang ditemukan pada tanaman terestrial.

Pengembangan taurin di Indonesia maupun dunia masih didominasi oleh

pembuatan taurin sintetis yang memiliki efek samping dapat membahayakan

kesehatan (Tafu and Matsuda, 2001). Taurin sintetis ini didistribusikan

secara internasional sebagai bahan dalam pembuatan suplemen makanan

dan minuman energi (Higgins et al., 2010), sehingga diperlukan produksi

taurin yang berasal dari bahan alami untuk meminimalisasi efek negatif

tersebut.

Hingga saat ini penelitian mengenai potensi makroalga yang mengandung

taurin di Indonesia masih sangat sedikit, untuk itu peneliti menguji

kandungan taurin dari ekstrak etanol makroalga hijau (Halimeda opuntia

L.), makrolga cokelat (Sargassum sp.), makroalga merah (Eucheuma

cottonii L.).

B. Tujuan Penelitian

Penelitian ini bertujuan untuk menguji kandungan taurin dari ekstrak etanol

makroalga hijau (Halimeda opuntia L.), makrolga cokelat (Sargassum sp.),

makroalga merah (Eucheuma cottonii L.).

https://translate.googleusercontent.com/translate_f#8

4

C. Manfaat Penelitian

Penelitian ini diharapkan dapat memberikan informasi kepada mahasiswa

dan masyarakat mengenai kandungan taurin alami yang dimiliki makroalga

hijau (Halimeda opuntia L.), makroalga cokelat (Sargassum sp.), dan

makroalga merah (Eucheuma cottonii L.).

D. Kerangka Pemikiran

Taurin merupakan jenis asam amino non esensial yang mengandung sulfur,

tetapi tidak digolongkan sebagai protein karena tidak memiliki gugus

karboksil untuk membentuk ikatan peptida.

Fungsi taurin yaitu untuk membantu penyerapan lemak dan vitamin yang

larut dalam lemak dan mengatur kadar kolesterol. Taurin menjadi faktor

penting untuk mengontrol berbagai perubahan biokimia yang terjadi selama

proses penuaan dan kerusakan sel oleh radikal bebas.

Peran taurin sangatlah penting dalam tubuh manusia. Kandungan taurin

selama ini banyak ditemukan pada mamalia dan hewan laut saja, sedangkan

pada tanaman kandungan taurin sangatlah terbatas.

Penelitian terbaru membuktikan bahwa makroalga mengandung taurin.

Kandungan taurin tertinggi ditemukan pada makroalga merah sedangkan

untuk makroalga hijau dan makroalga cokelat tidak ditemukan kandungan

taurin.

5

Halimeda opuntia L., Sargassum sp., dan Eucheuma cottonii L. merupakan

jenis makroalga yang berpotensi mengandung taurin. Jenis makroalga ini

selain mudah untuk diekstraksi juga mudah ditemukan di perairan

Indonesia.

Halimeda opuntia L. memiliki kandungan kalsium karbonat yang cukup

tinggi. Selain memiliki kandungan protein yang cukup tinggi Halimeda

opuntia L. juga kaya akan kandungan protein, lemak, senyawa fenolik, dan

lainnya. Habitat Halimeda opuntia L. berada pada daerah pasang surut

dengan tingkat salinitas berbeda-beda, menempel pada terumbu karang, dan

hidup berkoloni.

Sargassum sp. mengandung alginat dalam jumlah besar. Alginat merupakan

asam alginik. Asam alginik dalam bentuk derivat garam dinamakan garam

alginat. Sargassum sp. juga mengandung protein, abu (mineral), lemak,

vitamin A, dan vitamin C . Habitat Sargassum sp. berada didaerah intertidal,

subtidal sampai daerah tubir dengan ombak besar dan arus deras.

Makroalga merah (Eucheuma cottonii L.) mempunyai kandungan nutrisi

yang cukup lengkap. Secara kimia makroalga merah terdiri dari air, protein,

karbohidrat, lemak, serat, dan abu.

Habitat dari Eucheuma cottonii L. berada pada kedalaman sejauh sinar

matahari masih mampu mencapainya.

6

Pengambilan senyawa aktif dalam makroalga dapat dilakukan dengan

ekstraksi pelarut. Pemilihan jenis pelarut untuk ekstraksi disesuaikan dengan

kepolaran senyawa yang digunakan. Pelarut polar akan cenderung

melarutkan senyawa polar dan sebaliknya.

Taurin merupakan senyawa yang besifat polar. pelarut polar yang biasa

digunakan untuk ekstraksi salah satunya adalah etanol.

Ekstrak etanol dari makroalga hijau (Halimeda opuntia L.), makrolga

cokelat (Sargassum sp.), dan makroalga merah (Eucheuma cottonii L.)

diharapkan memiliki kandungan taurin alami.

II. TINJAUAN PUSTAKA

A. Halimeda opuntia L.

a. Klasifikasi Halimeda opuntia L.

Klasifikasi Halimeda opuntia L. adalah sebagai berikut (Guiry, 2007) :

Kerajaan : Plantae

Divisi : Chlorophyta

Kelas : Bryopsidophyceae

Bangsa : Bryopsidales

Suku : Halimedaceae

Marga : Halimeda

Jenis : Halimeda opuntia L.

b. Morfologi Halimeda opuntia L.

Memiliki thallus berbentuk bulat pipih (Kadi, 1966), bersegmen-segmen

dengan percabangan membentuk segitiga (trikotom), tinggi thallus

mencapai 4 cm. Halimeda opuntia L. memiliki alat perekat berupa

filamen yang keluar dari segmen bagian basal yang berfungsi untuk

mencengkram substrat. Setiap segmen tersusun secara tumpang tindih

dan tidak beraturan (Charles et al., 2018).

8

Gambar 1. Morfologi Halimeda opuntia L. (Nurhayati et al., 2017)

c. Habitat Halimeda opuntia L.

Halimeda opuntia L. banyak dijumpai pada daerah terumbu karang yang

kondisi pantainya tenang, agak terlindung, dan hidup berkoloni

(Romimohtarto and Juwana, 2001), dengan kedalaman 1 sampai 200 m

pada substrat pasir, lumpur, dan fragmen karang mati (Kadi, 1966).

d. Kandungan Halimeda opuntia L.

Berpotensi sebagai sumber kalsium alami yang dapat dimanfaatkan untuk

bahan fortifikasi. Peningkatan asupan kalsium dalam bahan makanan

lebih aman dari pada suplemen, karena dalam pencernaan konsentrasi

kalsium yang tinggi justru akan menekan remodeling tulang (Lee et al.,

1995). Memiliki pigmen hijau dan apabila kering akan berubah menjadi

hijau keputihan dan mudah hancur. Selain itu, kandungan protein, lemak,

senyawa fenolik, dan lainnya menjadikan biota ini memiliki bioaktivitas

antioksidan (Novoa et al., 2011).

9

B. Sargassum sp.

a. Klasifikasi Sargassum sp.

Klasifikasi Sargassum sp. sebagai berikut (Tjitrosoepomo, 2011) :

Kerajaan : Plantae

Divisi : Thallophyta

Kelas : Phaeophyceae

Bangsa : Fucales

Suku : Fucaceae

Marga : Sargassum

Jenis : Sargassum sp.

b. Morfologi Sargassum sp.

Sargassum sp. merupakan salah satu jenis rumput laut yang dapat

tumbuh dengan panjang mencapai 12 meter. Rumput laut ini berwarna

cokelat kuning kehijauan, dengan struktur tubuh terbagi atas sebuah

holdfast yang berfungsi sebagai struktur basal, sebuah stipe atau batang

semu, dan sebuah frond yang berbentuk seperti daun (Guiry, 2007).

Sargassum sp. memiliki percabangan yang mirip dengan pepohonan di

darat, thallus berbentuk gepeng, bangun daun melebar, tiap-tiap

percabangan terdapat gelembung udara berbentuk bulat yang disebut

“bladder”, berguna untuk menopang cabang-cabang thallus agar

terapung ke arah permukaan air untuk mendapatkan intensitas cahaya

10

matahari, gelembung udara yang umumnya soliter, memiliki batang

utama berbentuk bulat agak kasar, pinggir daun bergerigi jarang, ujung

daun melengkung atau meruncing, dan holdfast yang berbentuk cakram

(Anggadiredja et al., 2008).

Gambar 2. Morfologi Sargassum sp. (Aslan, 2003)

c. Habitat Sargassum sp.

Habitat dari Sargassum sp. berada di perairan jernih dengan substrat

dasar batu karang, karang mati, batuan vulkanik dan benda-benda yang

bersifat masif yang berada di dasar perairan. Kedalaman untuk

pertumbuhan Sargassum sp mulai dari 0,5 sampai 10 m. Sargassum sp.

tumbuh dari daerah intertidal, subtidal sampai daerah tubir dengan

ombak besar dan arus deras (Boney, 1965).

Sargassum sp. tersebar luas di Indonesia dan tumbuh di perairan yang

terlindung maupun yang berombak besar pada habitat bebatuan (Aslan,

1998). Sargassum sp. tumbuh subur pada daerah tropis. Kebutuhan

intensitas cahaya matahari lebih tinggi karena kandungan klorofil pada

11

Sargassum sp. lebih banyak dan klorofil tersebut berperan dalam

fotosintesis (Kadi, 2005).

d. Kandungan Sargassum sp.

Kandungan terbesar dari Sargassum sp. adalah alginat yang merupakan

asam alginik. Asam alginik dalam bentuk derivat garam dinamakan

garam alginat yang terdiri dari natrium alginat, sodium alginat dan

ammonium alginat. Sargassum sp. memiliki komponen kimia seperti

hidrokarbon atau karbonil yang terdiri dari absiric acid, 1,4

naphtoquinone, pigmen klorofil a dan c, polisakarida, dan laminarin

(Kadi, 2005).

C. Eucheuma cottonii L.

a. Klasifikasi Eucheuma cottonii L.

Klasifikasi Eucheuma cottonii L. sebagai berikut (Tjitrosoepomo, 2011) :

Kerajaan : Plantae

Divisi : Rhodophyta

Kelas : Rhodophyceae

Bangsa : Gigartinales

Suku : Solieriaceae

Marga : Eucheuma

Jenis : Eucheuma cottonii L.

12

b. Morfologi Eucheuma cottonii L.

Makroalga merah (Eucheuma cottonii L.) pada umumnya dapat

melakukan interaksi dengan makromolekul yang bermuatan seperti

protein sehingga mempengaruhi peningkatan viskositas, pengendapan,

dan pembentukan gel. Makroalga merah (Eucheuma cottonii L.)

memiliki percabangan thallus berujung runcing atau tumpul, ditumbuhi

nodulus (tonjolan-tonjolan), berwarna merah-cokelat, thallus berbentuk

silindris (gepeng), cartilageneus (menyerupai tulang rawan atau muda),

percabangan bersifat alternates (berseling), dichotomus (percabangan

dua-dua) atau dapat trichotomus (sistem percabangan tiga-tiga).

Eucheuma cottonii L. (Anggadiredja, 2006).

Gambar 3. Morfologi Eucheuma cottonii L. (Anggadiredja, 2011)

c. Habitat Eucheuma cottonii L.

Eucheuma cottonii L. umumnya tersebar luas di daerah pantai terumbu

yang memperoleh aliran air laut yang tetap, variasi suhu yang kecil, dan

substrat karang mati (Aslan, 1991).

13

Eucheuma cottonii L.umumnya tumbuh di daerah pasang surut atau yang

selalu terendam air. Melekat pada substrat di daerah perairan berupa

karang batu mati, karang batu hidup, batu gamping dan cangkang

molusca (Atmadja et at., 1996).

d. Kandungan Eucheuma cottonii L.

Mengandung zat-zat nutrisi penting yang diperlukan bagi tubuh manusia,

seperti protein, karbohidrat, lemak, dan vitamin C (BPPT, 2011).

Eucheuma cottonii L. juga mengandung keragian yang sangat tinggi.

Keragian merupakan suatu senyawa polisakarida yang didalamnya

terdapat kandungan serat yang sangat tinggi yang apabila berinteraksi

dengan air panas akan terbentuk gel (Anggadiredja, 2011).

D. Taurin

a. Pengertian Taurin

Taurin (2-aminoethanesulfonic acid) merupakan asam organik turunan

dari asam amino sistein yang mengandung sulfur (sulfihidril). Taurin

tidak digolongkan sebagai asam amino karena tidak memiliki gugus

karboksil. Namun, taurin memiliki gugus sulfonat sehingga disebut asam

sulfonat amino (Burhan, 2004).

Taurin atau asam 2-aminoethanesulfonik acid merupakan asam amino

semi esensial yang banyak ditemukan pada jaringan otot jantung dan otak

manusia. Kebutuhan taurin dalam konsentrasi tinggi dapat diperoleh

14

dari jaringan otot mamalia (daging kerbau), ikan laut, dan tiram (Arouma

et al., 1988).

Taurin membantu penyerapan lemak dan vitamin yang larut dalam

lemak. Taurin juga membantu mengatur detakan jantung, menstabilkan

membran sel, dan memelihara kelangsungan sel-sel otak (Arouma et al.,

1988).

Gambar 4. Struktur kimia taurin (Burhan, 2004)

b. Sumber Taurin

Taurin terdapat dalam daging, ikan, telur dan produk susu. Karena

manusia dewasa mampu memproduksi zat ini sendiri, asupan dari

makanan bisa dijadikan alternatif bila kadar produksi taurin dalam tubuh

mulai menurun.

Tubuh manusia dapat mensintesis taurin dari asam amino sistein dan

metionin. Sistein dapat ditemukan dalam bentuk sistein dan sistin. Sistin

merupakan 2 sistein yang terikat secara kovalen oleh jembatan disulfida

yang dibentuk oleh oksidasi gugus tiol (-SH). Skema pembentukan sistin

dari sistein dapat dilihat pada Gambar 5.

15

Gambar 5. Diagram alir proses desulphydrasi sistin pada

γ-sistationase (Martinez et al., 2004)

Enzim CSAD (Cysteine Sulfinic Acid Decarboxylase) dibantu oleh

pyridoxal-5’-phosphate (bentuk koenzim vitamin B6) berperan pada

pengubahan sistein menjadi taurin (Martinez et al., 2004). Aktivitas

enzim CSAD pada manusia lebih rendah dibandingkan pada hewan

sehingga kemampuan manusia untuk mensintesis taurin relatif rendah.

Oleh karena itu, manusia tidak dapat mengharapkan kebutuhan taurin

terpenuhi hanya dari hasil sintesis di dalam tubuh. Atas dasar inilah

beberapa ahli mengelompokkan taurin sebagai asam amino semi esensial

(Siagian, 2003). Taurin memiliki tahapan reaksi sintesis yang bervariasi

berdasarkan spesies dan tipe jaringan. Berikut skema pembentukan taurin

dalam metabolisme tubuh manusia dan mamalia.

16

Dapat dilihat pada Gambar 6 metionin S-adenosyl diubah oleh metil

transferase dengan aseptor metil membentuk homosistein S-adenosyl.

Ketika persediaan metionin rendah dalam tubuh menyebabkan

homosistein mengalami proses remetilasi membentuk metionin dengan

bantuan homosisteinmetil transferase. Selanjutnya metionin dikonversi

menjadi metionin S-adenosyl kembali oleh S-adenosyl transferase.

Ketika proses remetilasi dari homosistein ke metionin berkurang,

homosistein berikatan dengan serin membentuk sistationin.

Gambar 6. Diagram alir biosintesis sistein dari metionin dalam

jaringan tubuh mamalia (Bender, 1975)

17

Sama dengan pemutusan ikatan β sistationin pada bakteri yang

menghasilkan homosistein, reaksinya disebut sintesis-β-sistationin dan

enzim pengkatalisnya disebut sistationin-β-sintetase. Pada hewan, γ-

sistationase memecah sistationin menjadi sistein dan α-oxo-butirat.

Sistationin dapat dipecah menjadi 2 cara yaitu dengan pemutusan ikatan

γ menghasilkan sistein dan pemutusan ikatan β menghasilkan

homosistein yang dilibatkan dalam sintesis metionin (Gambar 7).

Gambar 7. Diagram alir peranan sistationin pada metabolisme sistein

dan metionin (Bender, 1975)

Enzim γ-sistationase pada mamalia dapat mengkatalis reaksi

desulphydration cystine yang ditunjukkan pada Gambar 8.

Gambar 8. Diagram alir proses desulphydrasi sistin pada

γ-sistationase (Bender, 1975)

18

Reaksinya adalah dengan eliminasi α-β membentuk tiosistein (persulfida

sistein), piruvat dan amonia. Tiosistein secara spontan kehilangan sulfur

untuk menghasilkan sistein. Ketika sistein ada dalam medium inkubasi

dalam jumlah yang layak, sulfur tereduksi membentuk hidrogen sulfida,

dan sistein dioksidasi menjadi sistin. Kehadiran awal beberapa sistein

dalam campuran reaksi menyebabkan hilangnya sisa sulfur sampai

konsentrasi sistein cukup sebagai produk untuk mengkatalis

penghilangan sulfur tersebut. Ketika sistein sebagai substrat

membutuhkan dalil yang cukup bahwa sistin diproduksi karena oksidasi

udara yang memperkenankan reaksi pertama kali terjadi (Bender, 1975).

Asam sistein sulfonat diproduksi oleh aktivitas sistein oksidase

menghasilkan sistein. Asam sistein sulfonat dapat mengalami

dekarboksilasi menjadi hipotaurin yang selanjutnya akan teroksidasi

menjadi taurin atau oksidasi asam sisteat yang mengalami dekarboksilasi

menjadi taurin. Hal ini dapat dilihat pada Gambar 9.

Gambar 9. Diagram alir biosintesis taurin dari sistein (Bender, 1975)

19

c. Fungsi Taurin

Taurin dibutuhkan untuk pertumbuhan otak dan susunan saraf juga

penting untuk pertumbuhan retina. Pada hewan percobaan dengan

defisiensi taurin akan berakibat kegagalan pertumbuhan, kegagalan

fungsi sistem saraf, kerja asam empedu dan terjadinya gangguan pada

retina mata (Fatimah, 2005).

Aktivitas taurin untuk meregulasi tekanan osmotik sel. Taurin digunakan

oleh hewan air dalam beradaptasi terhadap perbedaan salinitas

lingkungan. Untuk proses regulasi ini, tubuh lebih menggunakan asam

amino non esensial seperti taurin dibandingkan asam amino esensial

(Okuzumi and Fujii, 2000).

Taurin juga membantu pergerakan ion kalium, natrium, kalsium, dan

magnesium keluar masuk sel yang berperan dalam penghantaran impuls

sel saraf sehingga bila ada rangsangan dari Sistem Saraf Pusat (SSP)

maka rangsangan ini akan diteruskan dengan cepat ke sel-sel efektor

(Ismail et al., 2005).

Taurin dalam metabolisme manusia memiliki dua peran, yaitu sebagai

penghambat neurotransmiter dan sebagai pengemulsi asam empedu.

Konjugasi taurin dengan asam empedu memberikan efek yang signifikan

untuk melarutkan kolesterol dan juga meningkatkan ekskresinya. Secara

20

medis, taurin dipakai untuk menangani kasus gagal jantung, diabetes dan

epilepsi (Nurachman, 2004).

Taurin berfungsi sebagai perangsang (stimulan) pembentukan energi.

Taurin dan kafein menjadi senyawa primadona yang sering dikombinasi

dalam produk yang dikenal sebagai food suplemen dan energy drink.

Minuman suplemen energi atau energy drink berawal dari smart drink

(minuman pintar) di Amerika. Minuman ini dibuat dari senyawa asam

amino seperti phenilalanine, choline dan taurin (Hamzah, 2004).

Dalam minuman energi kombinasi taurin dan kafein akan merangsang

sistem saraf pusat untuk memicu reaksi katabolisme (reaksi untuk

menghasilkan energi) di otot (Nurachman, 2004).

Menurut Redmon et al., (1983), taurin memiliki fungsi sebagai berikut :

1. Taurin untuk meningkatkan performa mental. Tingkat taurin yang

tinggi dalam tubuh akan membuat memori dan fungsi mental menjadi

lebih baik.

2. Taurin berguna untuk mencegah penuaan dini. Misal dengan cara

mengontrol berbagai perubahan biokimia yang terjadi selama proses

penuaan dan membantu pembuangan radikal bebas.

3. Taurin berguna untuk mencegah gagal jantung.

4. Efektif untuk melawan obesitas.

21

E. Spektrofotometri UV-Vis

a. Pengertian Spektrofotometri UV-Vis

Spektrofotometer adalah alat yang terdiri dari spektrum dan fotometer.

Spektrum berfungsi untuk mengukur energi secara relatif jika energi

tersebut diemisikan, ditransmisikan, dan direfleksikan dengan panjang

gelombang tertentu. Sedangkan fotometer adalah alat pengukur intensitas

cahaya yang ditransmisikan atau yang di absorbs (Khopkar, 2008).

Spektroskopi UV-Vis melibatkan absorpsi radiasi elektromagnetik dari

kisaran 200-800 nm dan kemudian eksitasi elektron ke tingkat energi

lebih tinggi. Absorbsi cahaya ultraviolet (cahaya tampak) oleh molekul

organik terbatas hanya untuk beberapa gugus fungsi (kromofor) yang

mengandung elektron valensi dari energi eksitasi yang rendah (Hunger

and Weitkamp, 2001).

Gambar 10. Skema kerja spektrofotometri UV-Vis (Skoog et al., 1998)

22

Komponen spektrofotometri UV-Vis terdiri atas beberapa bagian sebai

berikut (Gholib and Abdul, 2007) :

1. Cahaya

Fungsi cahaya deuterium digunakan untuk daerah UV pada panjang

gelombang 190-380 nm, sementara cahaya halogen digunakan untuk

daerah visible pada panjang gelombang 380-780 nm.

2. Monokromator

Digunakan untuk mendispersikan sinar kedalam komponen-komponen

yang selanjutnya akan dipilih oleh celah. Monokromator berfungsi

untuk memisahkan radiasi cahaya putih menjadi cahaya

monokromatis.

3. Kuvet

Wadah untuk menempatkan suatu larutan.

4. Detektor

Berfungsi untuk mengubah energy radiasi yang mengenainya menjadi

suatu besaran yang dapat diukur.

5. Amplifer

Berfungsi untuk memperkuat sinyal listrik.

6. Rekorder

Berfungsi sebagai alat pencatat gambar atau angka.

Spektrofotometer UV-Vis dapat melakukan pengujian terhadap sampel

yang berupa larutan, gas, atau uap. Untuk sampel yang berupa larutan

23

perlu diperhatikan pelarut yang dipakai (Mulja and Suharman, 1995)

antara lain:

1. Pelarut yang dipakai tidak berwarna dan tidak mengandung sistem

ikatan rangkap terkonjugasi pada struktur molekulnya.

2. Tidak berinteraksi dengan molekul senyawa yang dianalisis.

3. Kemurniannya harus tinggi untuk analisis.

Persyaratan suatu sampel dapat dianalisa menggunakan spektrofotometri

UV-Vis adalah (Harmita, 2006) :

1. Bahan memiliki gugus kromofor.

2. Bahan tidak memiliki gugus kromofor tapi berwarna.

3. Bahan tidak memiiliki gugus kromofor dan tidak berwarna, maka

ditambahkan pereaksi warna.

4. Bahan tidak memiliki gugus kromofor dibuat turunannya yang

mempunyai gugus kromofor.

b. Keuntungan Spektrofotometri UV-Vis

Menurut Munsn (1991), keuntungan-keuntungan penggunaan

spektrfotometri adalah sebagai berikut :

1. Dapat digunakan untuk analisis zat dalam jumlah kecil.

2. Cukup sensitif dan selektif.

3. Cara kerja yang mudah dan sederhana.

4. Biaya yang relatif murah.

5. Kepekaan dalam analisis yang tinggi.

24

Pada umumnya dalam analisis senyawa organik menggunakan metode

spektrofotometri UV-Vis adalah untuk:

1. Menentukan jenis kromofor, ikatan rangkap yang terkonjugasi dan

auksokrom dari suatu senyawa organik.

2. Menjelaskan informasi dari struktur berdasarkan panjang gelombang

serapan maksimum suatu senyawa.

3. Mampu menganalisis senyawa organik secara kuantitatif dengan

menggunakan hukum Lambert-Beer (Dachriyanus, 2004).

Adapun hal–hal yang harus diperhatikan dalam analisis spektrofotometri

UV-Vis adalah sebagai berikut :

1. Pemilihan panjang gelombang maksimum

Panjang gelombang yang digunakan untuk analisis kuantitatif adalah

panjang gelombang dimana terjadi serapan maksimum. Untuk

memperoleh panjang gelombang serapan maksimum, dilakukan

dengan membuat kurva hubungan antara absorbansi dengan panjang

gelombang dari suatu larutan standar pada konsentrasi tertentu.

2. Pembuatan kurva kalibrasi

Dibuat seri larutan baku dari zat yang akan dianalisis dengan

berbagai konsentrasi. Masing–masing absorbansi larutan dengan

berbagai konsentrasi diukur, kemudian dibuat kurva yang merupakan

hubungan antara absorbansi dengan konsentrasi. Bila hukum

Lambert-Beer terpenuhi maka kurva kalibrasi berupa garis lurus.

25

3. Hukum Lambert Beer

Menurut Hukum Lambert, serapan berbanding lurus terhadap

konsentrasi, yang ditulis dalam persamaan A = a.b.C.

Dimana:

A = serapan (tanpa dimensi)

a = absorptivitas

b = ketebalan sel

C = konsentrasi.

1

III. METODE PENELITIAN

A. Waktu dan Tempat Penelitian

Penelitian ini telah dilaksanakan pada bulan Mei sampai Juni 2019.

Pembuatan ekstrak makroalga hijau (Halimeda opuntia L.), makrolga

cokelat (Sargassum sp.), dan makroalga merah (Eucheuma cottonii L.) dan

proses uji kandungan taurin menggunakan Spektrofotometri UV-Vis

dilakukan di Laboratorium Botani, Fakultas Matematika dan Ilmu

Pengetahuan Alam, Univeristas Lampung.

B. Alat dan Bahan Penelitian

Alat yang digunakan dalam penelitian ini adalah spektrofotometri UV-Vis,

oven, rotary evaporator, erlenmeyer, beaker glass, vortex, gelas ukur,

tabung reaksi, rak tabung reaksi, corong buchner, pipet volum, pipet tetes,

kertas saring, kertas karbon, alat pengaduk, blender, karet, kertas label, alat

tulis, dan kamera untuk dokumentasi.

Sedangkan bahan yang digunakan dalam penelitian ini adalah makroalga

hijau (Halimeda opuntia L.), makroalga cokelat (Sargassum sp.), makroalga

merah (Eucheuma cottonii L.), etanol 96%, taurin siap pakai , dan aquades.

27

C. Pelaksanaan Penelitian

a. Persiapan Ekstrak Makroalga

Bahan uji berupa makroalga hijau (Halimeda opuntia L.), makroalga

cokelat (Sargassum sp.), makroalga merah (Eucheuma cottonii L.) yang

diperoleh dari Pantai Ketapang Lampung. Tahapan ekstraksi makroalga

hijau (Halimeda opuntia L.), makroalga cokelat (Sargassum sp.),

makroalga merah (Eucheuma cottonii L.) sebagai berikut :

Makroalga hijau (Halimeda opuntia L.), makroalga cokelat (Sargassum sp.), makroalga merah (Eucheuma cottonii L.)

terbaik dicuci dengan air mengalir

Makroalga hijau (Halimeda opuntia L.), makroalga cokelat (Sargassum sp.), dan makroalga merah (Eucheuma cottonii

L.) dikeringkan dalam oven dengan suhu 40˚C

Makroalga yang telah dikeringkan dihaluskan menggunakan

blender

Makroalga yang telah halus di maserasi selama 48 jam

dengan pelarut etanol (1:10) hingga diperoleh maserat

Maserat disaring menggunakan kertas saring

Filtrat dari maserat dipekatkan dengan rotary evaporator

pada suhu 50˚C hingga di dapat ekstrak kental, kemudian

dimasukkan ke dalam oven hingga diperoleh ekstrak dalam

bentuk pasta

Gambar 11. Proses ekstraksi makroalga (Indriani, 2014)

28

b. Persiapan Uji Taurin dengan Spektrofotometri

Kandungan taurin ditentukan dengan menggunakan spektrofotometri

UV-Vis yang terdiri atas 5 tahap yaitu sebagai berikut :

1. Pembuatan larutan standar taurin

Pembuatan larutan standar taurin dilakukan dengan 2 konsentrasi

yang berbeda yaitu 0,1 M dan 1 M.

Gambar 12. Proses pembuatan larutan standar taurin (Warono, 2013)

2. Penentuan panjang gelombang maksimum

Panjang gelombang maksimum ditentukan dari deteksi nilai

absorbansi salah satu larutan standar taurin pada rentang panjang

gelombang 400-800 nm menggunakan spektrofotometri UV-Vis.

Sebanyak 12,5 g taurin siap pakai, dilarutkan dalam 10 ml

aquades dan dihomogenkan

Dilakukan pengenceran 10 kali dengan aquades untuk

mendapatkan konsentrasi 1 M dan dihomogenkan

Larutan diuji menggunakan spektrofotometri pada panjang

gelombang 630 nm dengan 3 kali replikasi

Dari larutan diatas dilakukan pengenceran kembali sebanyak

10 kali dengan aquades untuk mendapatkan konsentrasi

0,1 M dan dihomogenkan

Larutan diuji menggunakan spektrofotometri pada panjang

gelombang 630 nm dengan 3 kali replikasi

29

Larutan standar taurin 1 M diukur absorbansinya menggunakan

spektrofotometri UV-Vis pada panjang gelombang 400-800 nm

dengan blangko serapan aquades (Porra et al., 1989).

3. Pembuatan kurva standar taurin

Kurva standar taurin dibuat dengan menghubungkan nilai absorbansi

dengan konsentrasi masing-masing larutan standar taurin pada

panjang gelombang maksimum. Jika hukum Lambert-Beer terpenuhi

maka kurva standar taurin berupa garis lurus.

4. Pembuatan larutan sampel ekstrak etanol makroalga

Pembuatan larutan sampel ekstrak etanol makroalga :

`

Gambar 13. Proses pembuatan larutan sampel ekstrak makroalga

Ekstrak etanol makroalga hijau (Halimeda opuntia L.),

makroalga cokelat (Sargassum sp.), dan makroalga merah

(Eucheuma cottonii L.) masing-masing ditimbang sebanyak

1 g dan dilarutkan dalam 10 ml aquades hingga homogen

Dilakukan pengenceran 10 kali dengan aquades hingga

homogen

Larutan diuji menggunakan spektrofotometri pada panjang

gelombang 630 nm dengan blangko serapan aquades

Dari larutan diatas dilakukan pengenceran kembali sebanyak

10 kali dengan aquades hingga homogen

Larutan diuji menggunakan spektrofotometri pada panjang

gelombang 630 nm dengan blangko serapan aquades

30

5. Penentuan kadar taurin ekstrak etanol makroalga

Kadar taurin dari masing-masing larutan sampel ekstrak etanol

makroalga dapat dihitung menggunakan persamaan regresi y = ax+b

dari kurva standar taurin yang telah dibuat (Alwi, 2017).

D. Diagram Alir Penelitian

Keseluruhan tahapan penelitian ini dapat dilihat pada diagram alir penelitian

pada Gambar 14.

Persiapan sampel makroalga

Ekstraksi makroalga hijau (Halimeda opuntia L..), makroalga cokelat

(Sargassum sp.), dan makroalga merah (Eucheuma cottonii L.)

dengan pelarut etanol (1:10) hingga diperoleh dalam bentuk pasta

Pembuatan larutan standar taurin dengan konsentrasi 1 M, 0,1 M, dan diuji menggunakan spektrofotometri pada panjang gelombang 630 nm

dengan 3 kali replikasi

Pembuatan kurva standar taurin yang menghubungkan nilai absorbansi

dengan konsentrasi

Pembuatan larutan sampel taurin dari ekstrak etanol makroalga hijau

(Halimeda opuntia L.), makroalga cokelat (Sargassum sp.), dan

makroalga merah (Eucheuma cottonii L.) dengan menimbang

sebanyak 1 g ekstrak dalam 10 ml aquades

Penentuan kadar sampel taurin ekstrak etanol makroalga dengan

spektrofotometri pada panjang gelombang 630 nm menggunakan

blangko serapan aquades dengan 3 kali replikasi

Melakukan analisis data

Gambar 14. Diagram alir penelitian

31

E. Parameter Penelitian

Parameter yang diamati dalam penelitian ini adalah kadar taurin dari ekstrak

etanol makroalga hijau (Halimeda opuntia L.), makroalga cokelat

(Sargassum sp.), makroalga merah (Eucheuma cottonii L.).

F. Analisis Data Penelitian

Data yang diperoleh dianalisis secara kuantitatif dan disajikan dalam bentuk

tabulasi data. Data primer yang didapatkan dari nilai absorbansi larutan

pembanding taurin dibuat kurva standar sehingga diperoleh persamaan

regresi linear. Kadar total taurin dalam sampel ekstrak etanol makroalga

hijau (Halimeda opuntia L.), makroalga cokelat (Sargassum sp.), makroalga

merah (Eucheuma cottonii L.) dihitung dengan memasukkan nilai

absorbansi kedalam persamaan regresi linear (model interpolasi) y = ax+b,

yang diperoleh dari kurva standar taurin sebagai pembanding dan hasilnya

dinyatakan dalam satuan mg dalam gram.

V. SIMPULAN DAN SARAN

Berdasarkan hasil penelitian yang telah dilakukan diperoleh kesimpulan

makroalga hijau (Halimeda opuntia L.) mengandung taurin sebesar 7,85

mg/100g, makroalga cokelat (Sargassum sp.) mengandung taurin sebesar

1,21 mg/100g, dan makroalga merah (Eucheuma cottonii L.) mengandung

taurin sebesar 4,61 mg/100g.

B. Saran

Perlu dilakukan uji kandungan taurin dari ekstrak etanol makroalga hijau

(Halimeda opuntia L.), makroalga cokelat (Sargassum sp.), makroalga

merah (Eucheuma cottonii L.) dengan menggunakan metode lain dan

membandingkan hasilnya dengan metode spektrofotometri UV-Vis.

A. Simpulan

44

DAFTAR PUSTAKA

A. Melis, H.C. Chen. 2005. Chloroplast sulfate transport in green algae-genes,

protein and effects, photosynth. Res 86 299-307.

Adnan, M. 1997. Teknik Kromatografi untuk Analisis Bahan Makanan. Penerbit

Andi. Yogyakarta.

Alwi, Heriati. 2017. Validasi metode analisis flavonoid dari ekstrak etanol

kasumba terate secara spektrofotometri UV-Vis. Skripsi. Universitas

Islam Negeri Alauddin. Makassar.

Anggadiredja. 2006. Rumput Laut. Penebar Swadaya. Jakarta.

Anggadiredja, T.J., Zatnika, A., Purwanto, H., dan Istini, S. 2006. Rumput Laut.

Penebar Swadaya. Jakarta.

Anggadiredja, J.T., Zatnika, A., Purwanto, H., dan Istini, S. 2008. Rumput Laut,

pembudidayaan, pengolahan dan pemasaran komoditas perikanan

potensial. Penebar Swadaya. Jakarta.

Arisandi, Apri., Marsoedi., Nursyam, Happy, dan Sartimbul, Aida. 2011.

Pengaruh salinitas yang berbeda terhadap morfologi, ukuran dan jumlah

sel pertumbuhan serta rendemen keraginan Kappaphycus alvarezi. Jurnal

ilmu kelautan. 16 (3)143-150.

Arouma, O.I., B. Halliwell, B.M. Hoey dan J. Butler. 1988. The Antioxidant

Action Of Taurin, Hypotaurin And Their Metabolic Precursors. Biochem

J. 256:251-255.

Aslan, L.M. 2003. Budidaya Rumput Laut. Kanisius. Yogyakarta.

Association of Analytical Commubities. 2002. AOAC Guidelines for Single

Laboratory Validation of Chemical Methods for Dietary Suplement and

Botanicals.

46

Association of Analytical Commubities. 2002. AOAC Guidelines for Single

Laboratory Validation of Chemical Methods for Dietary Suplement and

Botanicals.

Ate, J.N.B., Junet, F.d.C., Theresia, P.E.S. 2017. Nutrition Content Analysis To

Gracilaria edule (S.G. Gmelin) P.C. Silva and Gracilaria coronopifolia J.

Agardh For Economic Development Of Coastal Communities. Jurnal

Ilmu Kesehatan Vol. 5 No. 2.

Bender, D.A., 1957. Amino Acid Metabolism. The Middlesex Hospital Medical

School, Courtauld Institute of Biochemistry. London.

Boney, A.D. 1965. Aspect of the biology of the seaweeds of economic

importance. Mar. Bot. 3: 2005-253.

Burhan, E. 2004. Angka Tahan Hidup Penderita Kanker Paru Jenis Karsinoma

Bukan Sel Kecil yang Layak Dibedah. (Tesis). Departemen Pulmonologi

dan Ilmu Kedokteran Respirasi FKUI. Jakarta.

Choi, T.S., E.J. Kang., J.H. Kim, dan K.Y. Kim. 2010. Effects of salinity on

growth and nutrient uptake of Ulva pertusa (Chlorophyta) from an

eelgrass bed. Algae, 25 (1): 17-25.

Darmawati. 2014. Analisa Histology Sel Euchema cottonii pada kedalaman

berbeda. Octopus jurnal ilmu perikanan, Vol.3 No.1.

Day, R.A., Underwood, A. 2002. Analisis Kimia Kuantitatif, Edisi Ke-6.

Erlangga. Jakarta.

Dhewani, N.M.S. 1990. Beberapa Catatan Mengenai Rumput Laut Gracilaria.

Oseana. Volume XV. Nomor 4 : 147 – 155.

Erich, S.K. and G. Pierre. 1999. Micro environmental control on

biomineralization: superficial processes of apatite and calcite

precipitation in Quaternary soil Reussillon, France. Sedimentology.

46(3).463-476.

Fatimah N. 2005. Mengenal senyawa lain yang diklaim sebagai nutrient Institut

Teknologi Bandung. http://www.percikaniman.com, diakses pada tanggal

10 Januari 2019 pukul 08.30 WIB.

Guiry. 2007. Algabase. National University of Ireland Galway. Irlandia.

H. Takahashi., S. Kopriva., M. Giordano., K. Saito., dan R. Hell. 2011. Sulfur

assimilation in photosynthetic organisms : molecular functions and

regulations of transporters and assimilatory enzymes, annu. Rev. Plant

biol. 62 157-184.

http://www.percikaniman.com/

47

Hamzah, A. 2004. Minuman suplemen, apa manfaatnya. Indonesian

Pharmaceutical Watch (IPhW). http://www.republika.co.id/koran. 10

Januari 2019.

Handayani, T., Sutarno, Ahmad, D.S. 2004. Analisis Komposisi Nutrisi Rumput

Laut Sargassum crassifolium J. Agardh. Biofarmasi 2 (2): 45-52,

Agustus 2004, ISSN: 1693-2242.

Hatta, A.M. 2002. Caulerpa Racemosa (Forsek) J. Agarh in Prud ‘homme`van

Reine, W.F and Trono Jr. G. C (editor) Plant Resources of South-East

Asia 15 (1) Cryptogams: Algae. Porsea Fondation, Bogor, Indonesia.

Helmenstine, Anne merie. 2019. Filtration definition and Processes (Chemistry).

Science, Tech, Math. Thoughtco.com.

Higgins, J.P., Tuttle, T.D., Higgins, C.L. 2010. Energy beverages: content and

safety. Mayo Clin Proc 85:1033-1041.

Indriani, M. 2014. Ekstraksi Rumput Laut Cokelat Sargassum sp. (cp 02) dan

Pengujian Ekstrak sebagai Inhibitor Tirosinase (Tesis). Institut pertanian

bogor. Bogor.

Ismail NE, Suheryanto R, Kustomo S, Harsono WJB. 2005. Efektivitas extrajoss

dalam memperbaiki kinerja ketahanan kerja. Badan Penelitian dan

Pengembangan Kesehatan Departemen Kesehatan Republik Indonesia.

Jakarta.

J.G. Jacobsen., L.H. Smith. 1968. Biochemistry and Physiology of taurine and

taurine derivates. Physiol. Rev. 48 424-511.

Jana, T. 2006. Rumput Laut. Penebar Swadaya. Jakarta.

Kadi, A. 1986. Beberapa catatan tentang algae berzat kapur. Balai Penelitian

Biologi Laut, Pusat Penelitian dan Pengembangan Oseanologi – LIPI.

Jakarta.

Kadi, A. 1987. Cara Mengenal Jenis-jenis dari Makroalga Halimeda. Oseana,

Volume XII, No.1:1-12.

Kadi, A. 2005. Beberapa Catatan Tentang Gelidium (Rhodophyta). Puslitbang

Oseanologi-LIPI. Jakarta.

Kadi, A. 2015. Karakteristik Makro Algae Berzat Kapur di Perairan Tanjung Sira

Lombok-Barat. Pusat Penelitian Oseanografi – LIPI. Jakarta.

Kevin, J. Flynn., Kenneth, J. Jones., Robin, Raine., Jacolyn, Richard., Krystyna,

Flynn. 1994. Use of intracellular amino acid analysis as an indicator of

http://www.republika.co.id/koran.%2010%20Januari%202019http://www.republika.co.id/koran.%2010%20Januari%202019

48

the physiological status of natural dinoflagellate populations, Mar. Ecol.

Prog. Ser. 103, 175-186.

Kawasaki, A., A. Ono., S. Mizuta., M. Kamiya., T. Takenaga., S. Murakami.

2017. The Taurine Content of Japanese Seaweed. Taurin 20, Advances in

Experimental Medicine and Biology 975.

Lau, Oi-Wah., Lukt, Shiu-Fai, dan Chiu, Teresa P.Y. 1990. Spectrophotometric

determination of taurine in food samples with phenol and sodium

hypochlorite as reagents and ion-exchanges clean-up. Department of

Chemistry, Chinese University of Hongkong, Shatin, N.T., Hong Kong.

115.

Lee, M. H., Hettiarachchy, N. S., Gnanasambandam, R. & McNew, R. W. 1995.

Physicochemical properties of calcium-fortified rice. Cereal Chemistry,

72, 352- 355.

Littler, D.S., Littler, M.M., Bucher, K.E., dan Norris, J.N. 1989. Marine Plants of

The Caribbean, A Field Guide from Florida to Brazil. Smithsonian

Institution Press. Washington D.C.

Luning. 1990. Seaweeds, Their Environment, Biogeography And Ecophysiology.

John Wiley and Sons. New York.

Machlin, L.J., P.B, Pearson., C.A, Denton. 1955. The utilization of sulfate sulfur

for the synthtesis of taurine in the developing chick embryo. Jurnal

biology chem.. 212 : 534-538.

Marianingsih, P., E. Amelia., T. Suroto. 2013. Inventarisasi dan Identifikasi

makroalga di Perairan Pulau Utung Jawa. Prosiding Semirata FMIPA

Universitas Lampung, 2013.

Martinez, J.B., Stavros, C., Pascal, D., Takeuchi, T. 2004. Effect of dietary taurine

supplementation on growth performance and feed selection of sea bass

Dicentrarchus labrax fry feed with demand feeders. Fish Sci 70 (1): 74-

79.

Marwita, R.S.P. 2013. Efek sinergis taurin lintah laut (Discodoris sp.) dan

temulawak (Curcuma xanthorriza Roxb.) dalam serbuk minuman

fungsional. Skripsi. Institut Pertanian Bogor. Bogor.

Matsuuara, K.. O. Sumadhiharga and K. Tsukamoto. 2006. Field Guide to

Lombok Island. 393-449.

Militante, J.D., Lombardini, J.B. 2002. Taurine: evidence of phsyological function

in the retina. J. Nutrition Neurosci. 5 (2):75-90.

49

Novoa, A. V., Andrade-Wartha, E. R., Linares, A. F., Genovese, M. I., González,

A. E. B., Vuorela, P., Costa A. & Mancini-Filho, J., (2011). Antioxidant

activity and possible bioactive components in hydrophilic and lipophilic

fractions from the seaweed Halimeda incrassata. Revista Brasileira de

Farmacognosia, 21(1), 53-57.

Nurachman, Z. 2004. Minuman energy. http://www.kompas.com, diakses pada

tanggal 10 Januari 2019 pukul 08.00 WIB.

Nur, M.A., Adijuwana, H. 1989. Teknik Pemisahan dalam Analisis Biologi.

Departemen Pendidikan dan Kebudayaan Bogor. Pusat Antar

Universitas Ilmu Hayati. Institut Pertanian Bogor. Bogor.

Nurhayati., Siti, N.K.A., Rodiah, N., Murdiah. 2017. Komposisi Nutrisi Rumput

Laut Calcareous Halimeda opuntia pada Lingkungan Perairan Indonesia.

JPB Kelautan dan Perikanan Vol. 12 No.1. 13-22.

Odum, H.T., and E.P. Odum. 1955. Trophic structure and productivity of

windward coral reef community on Eniwetoll Atoll. Ecol. Monogr.

25:281-320.

Okuzumi, M., Fuji, T. 2000. Nutritional and Functional Properties of Squid and

Cuttlefish. Tokyo University of Fisheries. Jepang.

R.J. Huxtable. 1992. Physiological actions of taurine. Physiol. Rev. 72 101-163.

Pamungkas, Widiya. 2016. Pemberian senyawa osmolit organik taurin pada pakan

buatan terhadap respon pertumbuhan cobia di BBPBL Lampung. Digital

Repository Unila.

Pramesti, R., Nirwani. 2007. Studi organ reproduksi Gracilaria gigas harvey pada

fase karposporofit. Ilmu Kelautan 12: 0853 – 7291.

Preisy, W.M.M., Rene, C.K., Lawrence, J.L.L. 2016. Inventarisasi Makroalga di

Perairan Pesisir Pulau Mantehage Kecamatan Wori, Kabupaten Minahasa

Utara, Provinsi Sulawesi Utara. Jurnalilmiahplatax Vol 4:(2), 2302-3589.

Redmon, H., P. Stapkleton, and David. 1983. Immunustrition. The role of Taurine

Nutrition 14. 559-604.

Romimohtarto, K., dan Juwana, S. 2001. Biologi Laut- Ilmu Pengetahuan Tentang

Biota Laut. Pusat Penelitian dan Pengembangan Oseanologi-LIPI.

Jakarta.

Siagian A. 2003. Taurin melindungi arteri dari radikal bebas rokok. Universitas

Sumatera Utara.

http://www.kompas.com/

50

Silva, M., Vieira, L., Almeida, A.P., Kijjoa, A. 2013. The marine macroalgae of

the genus ulva: chemistry, biological activities and potential applications.

Oceanography 1(1): 1-6.

Strange, K., dan P.S. Jackson. 1997. Swelling Activated Organic Osmolyte Effucks

: A New Role for Anion Channel. Kidney International Vol. 48. The

International Society of Nephrology. Massachussets. USA.

Sulastri, E., Cristadeolia, O., dan Yusriadi. 2015. Formulasi Mikroemulsi Ekstrak

Bawang Merah dan Uji Antioksidan. Jurnal Pharmascience. Vol.2(2).

Hal: 2:9.

Suparmi, Sahri A. 2008. Mengenal potensi rumput laut : kajian pemanfaatan

sumber daya rumput laut dari aspek industri dan kesehatan. Sultan

Agung. XLIV(118): 95-116.

Tafu, S., Matsuda, Y. 2001. High mineral oyster extract and process for

manufacturing the same. United States Patent Application Publication US

2001/0041212A1.

Tevatia, Rahul., Allen, James., Rudrappa, Deepak., White, Derrick., Clemente,

Thomas E., Cerutti, Heriberto., Demirel, Yasar., and Blum, Paul H. 2015.

The Taurine 2015. The Taurine Biosynthetic Pathway of Microalgae.

Faculty Publications from the Center for Plant Science Innovation.166,

pp. 21-26.

Tjitrosoepomo, G. 2011. Taksonomi Tumbuhan : Schizophyta, Thallophyta,

Bryophyta, Pterydophyta. Gadjah Mada University Press. Yogyakarta.

Triastinurmiatiningsih., Ismant., Ertina. 2011. Variasi Morfologi dan Anatomi

Sargassum sp. di Pantai Bayah Banten. Ekologia, Vol.11 No. 2: 1-10.

Warono, Dwi., Syamsudin. 2013. Unjuk Kerja Spektrofotometer untuk Analisa

Zat Aktif Ketoprofen. Konversi. Vol. 2 No. 2. 2252-7311.

Waryno, T. 2008. Biogeografi Alga Makro (Rumput) Laut di Kawasan Pesisir

Indonesia. Kumpulan Makalah Periode 1987-2008.

Winarno, F.G. 1992. Kimia Pangan dan Gizi. Gramedia Pustaka Utama. Jakarta.

Yaich, H., Garna, H., Besbes, S., Paquot, M., Blecker, C., Attia, H. 2011.

Chemical compositon and functional properties of Ulva lactuca seaweed

collected in Tunisia. Food Chemistry 128: 895-901.

Yancey, P.H. 2005. Organic osmolytes as compatible, metabolic and

counteracting cytoprotectants in high osmolarity and other stresses.

Experimental Biology 208 (10): 2819-2830.

51

Yang, Jiao., Zhou, Cai-Rong, dan Shi, Xiao-Hua. 2010. Determination and

Correlation of the Solubility for Taurine in Water and Organic Solvent

Systems. American Chemical Society. 55,7, 2620-2623.