i

MEMBRAN POLISTIRENA TERFLUORINASI UNTUKAPLIKASI PADA MICROBIAL FUEL CELL

MIRANTI DYAH PRAMESTI

DEPARTEMEN KIMIAFAKULTAS MATEMATIKA DAN ILMU PENGETAHUAN ALAM

INSTITUT PERTANIAN BOGORBOGOR

2012

iv

ABSTRAK

MIRANTI DYAH PRAMESTI. Membran Polistirena Terfluorinasi untukAplikasi pada Microbial Fuel Cell. Dibimbing oleh SRI MULIJANI dan MUHAMMAD KHOTIB.

Microbial fuel cell (MFC) merupakan suatu sel bahan bakar yang memanfaatkan aktivitas mikrob sebagai sumber energinya. Mikrob yang digunakan berasal dari air perasan rumen sapi. Semakin banyak jumlah mikrob, maka diasumsikan aktivitasnya juga semakin meningkat. Elektrolit yang digunakan dalam MFC adalah membran polistirena terfluorinasi (PSf). Sintesis membran PSf menggunakan trietilamina trihidroflorida dengan berbagai komposisi, yaitu 5, 10, dan 15%. Berdasarkan hasil uji fourier transform infrared spectroscopy (FTIR), diketahui bahwa gugus fluorin telah tersubtitusi ke dalam cincin aromatik polistirena. Uji scanning electron microscope (SEM) menyatakan bahwa membran PSf merupakan membran tidak berpori sehingga baik digunakan sebagai membran elektrolit pada sel bahan bakar. Pengujian konduktivitas proton membran menunjukkan membran PSf 5% memiliki konduktivitas proton paling tinggi. Membran PSf yang dihasilkan dapat diaplikasikan dengan baik dalam sistem MFC. Hal ini dapat diketahui berdasarkan nilai beda potensial yang dihasilkan oleh PSf 5, 10, dan 15% berturut-turut sebesar 8, 12, dan18 mV.

Kata kunci: polistirena terfluorinasi, microbial fuel cell, air perasan rumen sapi.

ABSTRACT

MIRANTI DYAH PRAMESTI. Fluorinated Polystyrene Membrane for Application in Microbial Fuel Cell. Supervised by SRI MULIJANI and MUHAMMAD KHOTIB.

Microbial fuel cell (MFC) is a fuel cell that utilizes microbial activity as a source of its energy. The microbe used was from cow’s rumen liquid. The higher numbers of microbe, the higher the microbial activity . The electrolyte used in the MFC system was a fluorinated polystyrene membrane (PSf). Synthesis of PSf was done by using triethylamine trihydrofluoride with various composition, namely 5, 10, and 15%. Based on Fourier transform infrared spectroscopy (FTIR) result, fluorine atoms has been substituted into the aromatic ring of the polystyrene. The results of scanning electron microscope (SEM) states that the PSf membrane is a nonporous membrane so that is good to be used as an electrolyte in fuel cell. Proton conductivity test shows that membrane of 5% PSf has the highest proton conductivity. The PSf membrane can be applied in MFC system well. It known according to the value of potential difference generated by PSf 5, 10, and 15%, which are 8, 12, and 15 mV, respectively.

Key words: fluorinated polystyrene membrane, microbial fuel cell, cow’s rumenliquid

v

MEMBRAN POLISTIRENA TERFLUORINASI UNTUKAPLIKASI PADA MICROBIAL FUEL CELL

MIRANTI DYAH PRAMESTI

Skripsisebagai salah satu syarat untuk memperoleh gelar

Sarjana Sains padaDepartemen Kimia

DEPARTEMEN KIMIAFAKULTAS MATEMATIKA DAN ILMU PENGETAHUAN ALAM

INSTITUT PERTANIAN BOGORBOGOR

2012

vi

Judul : Membran Polistirena Terfluorinasi untuk Aplikasi pada Microbial Fuel Cell

Nama : Miranti Dyah PramestiNIM : G44080056

Disetujui

Pembimbing I Pembimbing II

Dr. Sri Mulijani, MS Muhammad Khotib, SSi, MSi NIP 19630401 199103 2 001 NIP 19781018 20070 1 002

DiketahuiKetua Departemen

Prof. Dr. Ir. Tun Tedja Irawadi, MSNIP 19501227 197603 2 002

Tanggal lulus :

vii

PRAKATA

Puji dan syukur kehadirat Allah SWT berkat rahmat dan karunia-Nya sehingga penulis dapat menyelesaikan karya ilmiah ini. Penelitian ini dilaksanakan dari bulan Februari sampai Juni 2012 yang bertempat di Laboratorium Kimia Fisik, Departemen Kimia; Laboratorium Biofisika Membran, Departemen Fsika Fakultas Matematika dan Ilmu Pengetahuan Alam; Laboratorium Bakteriologi, Fakultas Kedokteran Hewan; dan Fakultas Peternakan, Institut Pertanian Bogor.

Penulis banyak mengucapkan terima kasih kepada yang terhormat Ibu Dr. Sri Mulijani, MS selaku pembimbing pertama dan Bapak Muhammad Khotib, SSi, MSi selaku pembimbing kedua yang telah memberikan bimbingan dan semangatkepada penulis selama penelitian dan penyusunan karya ilmiah ini. Terima kasihkepada Bapak Agus Sumatri, Bapak Jajang, Bapak Novri, dan Bapak Akhir yang telah membantu penulis dalam berdiskusi selama penyusunan karya ilmiah, pemakaian alat dan bahan di laboratorium, dan kepada Bapak Mail, Bapak Caca, Bapak Eman, Bapak Sobur, dan Bapak Adi yang telah membantu penulis selama penelitian dilaksanakan.

Ungkapan terima kasih kepada Bapak, Ibu, adik-adikku dan seluruh keluarga atas doa, dukungan dan semangatnya. Ucapan terima kasih kepada Fikri, Rido, Ade Nurbani, Suci, Hani, Sugma, Fadli, Vani, Nur Aida, Dumas, Evan, Ammar, Gita, Umar, Abo, Dwi Utami, Dian Novitasari, dan Retno yang telah membantu, memberikan semangat, motivasi dan dorongan dalam menyusun karyailmiah ini.

Semoga tulisan ini dapat bermanfaat dan menambah wawasan bagi penulis maupun bagi pembaca.

Bogor, Juli 2012

Miranti Dyah Pramesti

viii

RIWAYAT HIDUP

Penulis dilahirkan di Surabaya pada tanggal 24 Februari 1990 dari ayah Agus Eko Priyono dan ibu Suliestyawati. Penulis merupakan putri pertama dari tiga bersaudara.

Tahun 2002 penulis menyelesaikan sekolah di SD Negeri Kranggan 3 Mojokerto dan pada tahun 2005 penulis menyelesaikan sekolahnya di SMP Negeri 4 Mojokerto. Tahun 2008 penulis lulus dari SMA Negeri 1 Puri Mojokerto dan pada tahun yang sama lulus seleksi masuk IPB melalui jalur Undangan Seleksi Masuk IPB. Penulis memilih Program Studi Kimia, Departemen Kimia, Fakultas Matematika dan Ilmu Pengetahuan Alam.

Selama mengikuti perkuliahan, penulis aktif sebagai pengurus di Himpunan Profesi IMASIKA dan kegiatan kepanitiaan di luar Himpunan Profesi IMASIKA.Penulis pernah mengikuti kegiatan Praktik Lapangan di PT. Ajinomoto Indonesia pada bulan Mei hingga Agustus 2011.

ix

DAFTAR ISI

Halaman

DAFTAR ISI .................................................................................................... ixv

DAFTAR TABEL ............................................................................................... v

DAFTAR GAMBAR........................................................................................... v

DAFTAR LAMPIRAN........................................................................................ v

PENDAHULUAN ............................................................................................... 1

BAHAN DAN METODE .................................................................................... 2Alat dan Bahan ............................................................................................. 2Metode ......................................................................................................... 2

Pembuatan membran polistirena........................................................... 2Penentuan water uptake ....................................................................... 3Pencirian membran .............................................................................. 3Pengukuran konduktivitas membran..................................................... 3Pengukuran beda potensial sistem MFC............................................... 3Perhitungan total mikrob dalam air perasan rumen sapi........................ 3

HASIL DAN PEMBAHASAN ............................................................................ 4Pembuatan membran polistirena terfluorinasi ............................................... 4

Pembuatan trietilamina trihidroflorida.................................................. 4Sintesis polistirena terfluorinasi ........................................................... 4Pencetakan membran ........................................................................... 4Penentuan bobot molekul PS dan PSf................................................... 4

Penentuan water uptake ................................................................................ 5Pencirian membran ....................................................................................... 5

Analisis FTIR ...................................................................................... 5Analisis SEM....................................................................................... 7

Pengukuran konduktivitas membran ............................................................. 7Beda potensial sistem sel bahan bakar........................................................... 8Perhitungan total mikrob dalam air perasan rumen sapi ................................ 9

SIMPULAN DAN SARAN ................................................................................. 9Simpulan ...................................................................................................... 9Saran .......................................................................................................... 10

DAFTAR PUSTAKA ........................................................................................ 10

LAMPIRAN ...................................................................................................... 12

x

DAFTAR TABEL

Halaman

1 Hubungan water uptake dan konduktivitas proton membran ............................. 8

2 Total mikroba dalam air perasan rumen sapi .................................................... 9

DAFTAR GAMBAR

Halaman

1 Instrumen LCR meter....................................................................................... 3

2 Padatan PS dan PSf. ......................................................................................... 4

3 Hasil pencetakan membran, membran PSf, danmembran PS. ........................... 4

4 Hubungan antara konsentrasi PSf dan nilai water uptake.................................. 5

5 Spektrum PSf dan PS. ...................................................................................... 6

6 Reaksi antara HF dan TEA............................................................................... 6

7 Produk reaksi fluorinasi pada polistirena.......................................................... 6

8 Penampang melintang permukaan membran PS dan PSf, bagian muka membran

PS dan PSf. ..................................................................................................... 7

9 Kurva perbedaan konduktivitas proton sebelum dan setelah diaktivasi. ........... 7

10 Sistem microbial fuel cell (A) anolit dan (B) katolit. ....................................... 8

11 Kurva hubungan beda potensial dan konsentrasi PSf. ...................................... 8

DAFTAR LAMPIRAN

Halaman

1 Diagram alir penelitian.................................................................................... 13

2 Penentuan bobot molekul polistirena dan polistirena terfluorinasi ................... 14

3 Penentuan water uptake .................................................................................. 18

4 Penentuan konduktivitas proton dari membran................................................ 19

5 Penentuan beda potensial dan total mikrob sistem MFC.................................. 20

1

PENDAHULUAN

Perkembangan teknologi yang pesat mengakibatkan terjadinya peningkatan kebutuhan energi. Saat ini, Indonesia menghadapi persoalan pasokan energi, baik untuk kepentingan industri maupun rumah tangga (Hendrana 2007). Krisis energi ini dipicu dari pertumbuhan populasi manusia dan berkembangnya teknologi baru yang membutuhkan energi listrik dalam melakukan kinerjanya. Upaya pemenuhan energi yang telah dilakukan, sebagian besar berasal dari konversi bahan bakar fosil yang tidak dapat diperbaharui. Oleh karena itu, diperlukan suatu inovasi energi alternatif yang dapat diperbaharui dan ramah lingkungan (Dewi et al. 2008).

Fuel cell atau sel bahan bakar merupakan sebuah alat elektrokimia yang mengonversi energi kimia menjadi energi listrik melalui proses elektrokimia. Macam-macam sel bahan bakar, yaitu alkaline fuel cell (AFC), phosphoric acid fuel cell (PAFC), direct methanol fuel cell (DMFC), solid oxide fuel cell (SOFC), proton exchange membrane fuel cell (PEMFC), dan ada pula sel bahan bakar yang pengaplikasiannya menggunakan bantuan mikroorganisme, yang dikenal microbial fuel cell (MFC), sehingga energinya tidak berasal dari hidrogen murni (Dewi et al. 2008).

Penelitian kali ini bertujuan membuat membran dari polistirena terflorinasi (PSf) yang berperan sebagai membran elektrolit pada sistem microbial fuel cell (MFC). Sistem MFC yang digunakan pada penelitian kali ini memanfaatkan materi organik yang bersumber dari air perasan rumen sapi sebagai sumber energinya (Du et al. 2007). Berdasarkan penelitian Sidharta et al (2007) dengan menggunakan membran nafion, sebanyak 500 mL air perasan rumen sapi mampu menghasilkan beda potensial listrik sebesar 810 mV.

Bagian-bagian yang terdapat pada sel bahan bakar, yaitu anode berperan sebagai tempat terjadinya pemecahan hidrogen menjadi proton dan elektron. Katode sebagai tempat terjadinya reaksi penggabungan proton, elektron, dan oksigen. Elektrolit berupa membran polimer yang berperan sebagai proton exchange membrane (PEM) untuk mengalirkan proton dan memblokir elektron melewati membran (Hendrana et al. 2007).

Syarat-syarat polimer yang digunakandalam sel bahan bakar, yaitu tipis, memiliki

sifat mekanik yang baik, permeable bagi proton, impermeable bagi gas CO2 dan hidrogen, impermeable terhadap elektron, memiliki konduktivitas proton yang tinggi, memiliki kestabilan kimia, elektrokimia, dan suhu yang baik, serta tahan terhadap asam (Walsby 2001).

Nafion merupakan membran yang biasa digunakan sebagai elektrolit dalam sel bahan bakar, memiliki konduktivitas proton sebesar 0.1 S/cm (Hendrana et al. 2007). Namun, membran ini harganya sangat mahal dan konduktivitas proton dari membran dapat menurun secara signifikan (Oo & Win 2008).Oleh karena itu, saat ini banyak dikembangkan material baru yang dapat menggantikan nafion, misalnya campuran antara poli(aril eter keton), poliimida, poli (benzaimidazol), dan polistirena (Walsby 2001).

Polistirena atau styrofoam banyak digunakan masyarakat Indonesia. Maraknya penggunaan styrofoam dapat menyebabkan dampak buruk bagi kesehatan dan lingkungan.Dari segi kesehatan, bahaya residu PS dalam makanan dapat menyebabkan timbulnya penyakit dan gangguan reproduksi pada manusia. Sedangkan dari segi lingkungan, sifatnya yang tidak dapat di daur ulang dapat menyebabkan masalah terhadap lingkungan (Hendrana et al 2007). Berdasarkan data Deperindag (2007) menyatakan jumlahsampah PS yang dihasilkan per tahun dapat mencapai 1080 styrofoam. Oleh karena itu, perlu adanya penanganan untuk mengurangi limbah gabus PS tersebut dan dapat meningkatkan nilai mutunya.

Polistirena mengalami kendala pada struktrunya yang rapuh pada suhu 100-120 °C dan tingginya permeabilitas terhadap uap air dan oksigen, sehingga diperlukan suatu tehnik untuk memodifikasinya. Salah satu caranya yaitu dengan fluorinasi. Reagen fluorinasi yang digunakan adalah trietilamina trihidroflrida (HF-TEA). Produk dominannya dapat diidentifikasi melalui pengujian menggunakan menggunakan fourier transform infrared spectroscopy (FTIR). Selain itu, FTIR digunakan untuk mendeteksi perubahan gugus fungsi hasil fluorinasi pada membran(Handayani 2008).

Pengujian membran menggunakanscanning electrone microscope (SEM)dilakukan untuk mengetahui pori membran yang terbentuk (Indriyati et al. 2004).Penentuan total bakteri dilakukan untuk mengetahui jumlah mikrob yang terdapat dalam air perasan rumen. Metode yang

2

digunakan dalam penentuan total bakteri adalah metode total plate count (TPC).

Salah satu karakter membran yang baik untuk sel bahan bakar adalah memiliki konduktivitas proton yang tinggi. Besar kecilnya beda potensial yang dihasilkan air perasan rumen sapi dipengaruhi oleh mikrobyang hidup dan memanfaatkan nutrisi yang terkandung dalam cairan tersebut (Barua & Deka 2010). Penentuan water uptakedilakukan untuk mengetahui kemampuan swelling dari membran (Dhuhita & Arti 2010).Penentuan bobot molekul membran PS dan PSf dilakukan menggunakan metode viskositas (Malcolm 2011).

BAHAN DAN METODE

Alat dan BahanAlat-alat yang digunakan adalah peralatan

gelas, neraca analitik, oven, fourier transform infra red (FTIR), scanning electrone microscope (SEM), pHmeter, impedance analyzer (LCR meter), rotavapor, seperangkat alat untuk menghitung total bakteri dengan metode TPC (Total Plate Count), pH universal, viskometer Ostwald, mikrometer digital, dan corong pisah.

Bahan-bahan yang digunakan adalahpolistirena (PS), Hidrogen florida (HF) 40%,Trietilamina (TEA) 99.7% , diklrometana, kloroform, air perasan rumen sapi, es batu, air deionisasi, elektrode karbon, K3Fe(CN)6,

K2HPO4, buffered peptone water (BPW), dan plate count agar (PCA).

MetodeBagan alir penelitian dapat dilihat pada

Lampiran 1.

Pembuatan membran polistirenaterfluorinasi

Pembuatan trietilamina trihidroflorida. Larutan TEA 99.7% sebanyak 10 mL dicampurkan dengan 15 mL HF 40% ke dalam labu erlenmeyer. Proses pencampuran dilakukan sedikit demi sedikit dan bertahap sambil terus digoyang-goyangkan hingga homogen dan gas yang terbentuk tidak timbullagi. Saat pengocokkan, labu erlenmeyer ditutup rapat dengan sumbat karet agar gasyang ditimbulkan tidak menyebar. Pembuatan(CH3CH2)3N.3HF ini dilakukan di lemari asam.

Sintesis polistirena terfluorinasi. Tahap awal dalam sintesis polistirena adalah memotong polistirena menjadi ukuran yang

lebih kecil. Potongan polistirena ditimbang sebanyak 3 gram, kemudian dimasukkan ke dalam 60 mL kloroform dan diaduk hingga homogen. Larutan polistirena tersebut dicampurkan dengan 24 g (CH3CH2)3N.3HF. Campuran tersebut diaduk hingga homogen, dan direfluks selama 4 jam.

Larutan hasil refluks dinetralkan dengan pencucian menggunakan air deionisasi, kemudian larutan dipekatkan menggunakan rotavapor. Hasil pemekatan berupa padatan yang keras berwarna putih. Padatan yang merupakan polistirena terfluorinasi tersebutdikeluarkan dari labu rotavapor dan dikeringudarakan selama 24 jam. Langkah selanjutnya adalah pencetakkan membran dari polistirena terfluorinasi. Hal yang serupa juga dilakukan untuk blanko, tanpa penambahan (CH3CH2)3N.3HF.

Pencetakkan membran polistirena terfluorinasi (PSf). Padatan polistirena terfluorinasi yang telah dikeringudarakan, dilarutkan ke dalam diklorometana dengan berbagai variasi komposisi (%b/v), yaitu 5%, 10%, dan 15% Psf dalam 30 mL diklorometana. Campuran tersebut diaduk hingga homogen, kemudian dicetak di atas pelat kaca. Bagian pinggir pelat kaca diberiselotip dengan ketebalan tertentu. Larutan cetak polistirena terfluorinasi dituang di atas pelat kaca dan ditarik menggunakan batang pengaduk sehingga membentuk lapisan tipis.

Lapisan ini dibiarkan selama 10 hingga 25 menit untuk terjadinya penguapan parsial pelarutnya kemudian dimasukkan ke dalam bak koagulasi berisi air deionisasi pada suhu ruang dan dibiarkan selama satu malam untuk mendapatkan koagulasi sempurna. Membran tipis yang terbentuk dicuci dengan akuades untuk menghilangkan sisa pelarut kemudian dikeringkan di udara terbuka.

Membran yang telah diperoleh, baik membran polistirena dan polistirena terfluorinasi direbus selama 1 jam dalam air deionisasi, kemudian direbus dengan 3% H2O2

selama 1 jam, direbus dalam H2SO4 0.5 M selama 1 jam. Setelah perebusan, membran-membran tersebut dicuci dengan air deionisasi dan direndam dalam air deionisasi hingga akan digunakan untuk pengukuran.

Penentuan bobot molekul. Membran polistirena dan polistirena terfluorinasi dipotong kecil-kecil, kemudian dilarutkan ke dalam 25 mL kloroform dengan bobot PS dan PSf yang tercantum dalam Lampiran 2. Setiap larutan dengan konsentrasi yang berbeda

3

diambil kurang lebih 20 mL dan dimasukkan ke dalam viskometer Ostwald, kemudian diukur waktu alirnya. Masing-masing membran diukur waktu alirnya sebanyak tiga kali ulangan. Blanko yang digunakan adalah kloroform.

Penentuan water uptakeMembran PS, PSf 5%, 10%, dan 15%

dipotong dengan ukuran (1×1)cm2, masing-masing 3 kali ulangan pada lokasi yang acak. Membran-membran tersebut dimasukkan ke dalam oven pada suhu 120 °C selama 24 jam, kemudian ditimbang bobot keringnya. Selanjutnya, membran-mebran tersebut direndam dalam air deionisasi selama 48 jam, dan ditimbang bobot basahnya. Nilai water uptake diperoleh dari persamaan:

Pencirian membranAnalisis gugus fungsi. Pengujian struktur

sampel berupa membran polistirena dan polistirena terfluorinasi dilakukan di Laboratorium Biofarmaka, Bogor. Pengujian dilakukan dengan metode spektrofotometri FTIR menggunakan instrumen FTIR Bruker Tensor 27. Analisis ini dilakukan untuk mengetahui spektrum infra merah dari membran polistirena dan polistirena terfluorinasi.

Analisis SEM. Analisis morfologi membran dilakukan dengan menggunakan instrumen SEM Jeol JSM-836ola. Pengukuran dilakukan terhadap polistirena dan polistirena terfluorinasi (PSf) untuk mengetahui poriyang terjadi pada membran. Pemotretandilakukan pada bagian permukaan dan penampang melintang membran dengan perbesaran 1000 dan 5000 kali.

Pengukuran konduktivitas membranPengukuran konduktivitas dilakukan

menggunakan alat LCR meter, di Laboratorium Biofisika Membran, Departemen Fisika, Fakultas Matematika dan Ilmu Pengetahuan Alam, IPB. Langkah awal yang dilakukan adalah memotong membran dengan ukuran (6 × 1)cm2. Membran tersebut diapit di antara dua elektrode karbon, kemudian kedua elektrode tersebut dihubungkan dengan kutub positif dan negatif

pada alat, sehingga muncul nilai konduktivitas membrannya.

Gambar 1 Instrumen LCR meter.

Membran yang digunakan saat pengukurankonduktivitas, diukur pula ketebalannya menggunakan mikrometer digital karena tebal membran sebanding dengan jarak antara kedua elektrode karbon (l). Nilai konduktansi (G) yang diperoleh, dikonversi menjadi nilai konduktivitas per satuan jarak yang disebut dengan nilai konduktivitas proton (σ) melalui persamaan :

Keterangan :σ : konduktivitas proton (S/cm)A : luas permukaan (cm2)l : jarak antar kedua elektrodaG : nilai konduktivitas (S)

Pengukuran beda potensial sistem MFCPengukuran konduktivitas sistem sel bahan

bakar dilakukan dengan dua sistem bejana. Bejana pertama sebagai tempat anode, dan bejana kedua sebagai tempat katode. Bejana katode (katolit), diisi dengan larutan K3Fe(CN)6 yang dilarutkan dalam akuades hingga 50 mM dan dicampur dengan K2HPO4

yang dilarutkan dalam akuades hingga 100 mM. Bejana anode (anolit) diisi dengan cairan rumen sapi. Bejana anode dan katode masing-masing diisi larutan sebanyak 100 mL.

Kedua bejana tersebut dihubungkan oleh lima lubang yang berdiameter 1 cm. Membran direkatkan di bagian tengah bejana, dan menjadi pembatas antara katolit dan anolit.Elektrode dimasukkan ke dalam kedua larutan tersebut, kemudian dihubungkan dengan kutub positif dan negatif pada LCR meter, sehingga muncul nilai beda potensial yang dihasilkan sistem.

Perhitungan total mikroba dalam airperasan rumen sapi

Air perasan rumen sapi sebanyak 25 mL dimasukkan ke dalam wadah steril secara aseptik, kemudian ditambahkan 225 mLlarutan BPW dan diaduk hingga homogen. Ini

merupakan larutan dengan Sebanyak 1 mL suspensi dengan konsentrasi 10-1 diambil dan dicampurkan dengan 9 mL BPW, sehingga diperoleh suspensi dengan konsentrasi 10-2, dari suspensi konsentrasi 1dibuat suspensi konsentrasiDari masing-masing suspensi diambil 1 mL dan dipindahkan ke dalam cawan petri secara duplo.

Media PCA yang telah dicairkan bersuhu 45 ± 1 0C sebanyak 15 mLdalam cawan petri yang berisi suspensi pengenceran, kemudian dilakukan pemutaran membentuk angka delapan agar homogen dan didiamkan hingga menjadi padat. tersebut diinkubasi pada temperatur 34 °C selama 24 hingga 48 jam. Setelah itu, dihitung jumlah koloni pada setiap seri pengencerannya. Setelah itu, dihitung jumlah koloni pada setiap seri pengencerannya.

Semua koloni dalam cawan petri dihitung dengan menggunakan alat penghitung koloni. Rata-rata jumlah koloni dikalikan dengan faktor pengencerannya, dan hasilnya dinyatakan sebagai jumlah mikrob per mililiter. Jika jumlahnya lebih dari 300 maka dinyatakan tidak dapat untuk dihitung atau TBUD (ISO 2000).

HASIL DAN PEMBAHASAN

Pembuatan membran polistirena terfluorinasi

Pembuatan trietilamina trihidrofloridaWarna larutan (CH3CH2

putih dan jika dibiarkan dalam waktu yang cukup lama akan membentuk endapan putih seperti pasir. Reagen trietilamintrihidroflorida ini bersifat higroskopis 2008).

Sintesis polistirena terfluorinasiKloroform digunakan sebagai pelarut

karena PS mudah larut dalam hidrokarbonaromatik dan mengandung klorin. Polistirena larut sempurna dalam kloroform karena adanya kesamaan sifat nonpolar Pemanasan selama 4 jam pada suhu 7dilakukan agar campuran tersebut lebih homogen dan untuk mempercepat reaksi fluorinasi PS.

Larutan yang telah direfluks, dipekatkan menggunakan rotavapor untuk menghilangkan pelarut-pelarut yang masih tersisa dan larutan menjadi lebih pekat. Hasil pemekatan tersebut berupa gel berwarna

merupakan larutan dengan konsentrasi 10-1. dengan konsentrasi

dan dicampurkan dengan 9 mL BPW, sehingga diperoleh suspensi dengan

, dari suspensi konsentrasi 10-2

10-3 hingga 10-8. masing suspensi pengenceran,

diambil 1 mL dan dipindahkan ke dalam

yang telah dicairkan bersuhu 15 mL ditambahkan ke

dalam cawan petri yang berisi suspensi pengenceran, kemudian dilakukan pemutaran

lapan agar homogen dan didiamkan hingga menjadi padat. Padatan tersebut diinkubasi pada temperatur 34 °C selama 24 hingga 48 jam. Setelah itu, dihitung jumlah koloni pada setiap seri

Setelah itu, dihitung jumlah encerannya.

Semua koloni dalam cawan petri dihitung dengan menggunakan alat penghitung koloni.

rata jumlah koloni dikalikan dengan faktor pengencerannya, dan hasilnya inyatakan sebagai jumlah mikrob per

Jika jumlahnya lebih dari 300 koloni, maka dinyatakan tidak dapat untuk dihitung

ASIL DAN PEMBAHASAN

Pembuatan membran polistirena orinasi

trihidroflorida2)3N. 3HF adalah

putih dan jika dibiarkan dalam waktu yang cukup lama akan membentuk endapan putih

Reagen trietilaminaorida ini bersifat higroskopis (TCI

orinasiKloroform digunakan sebagai pelarut na PS mudah larut dalam hidrokarbon

aromatik dan mengandung klorin. Polistirena larut sempurna dalam kloroform karena adanya kesamaan sifat nonpolar (Cowd 1999).

manasan selama 4 jam pada suhu 70°C dilakukan agar campuran tersebut lebih

mempercepat reaksi

Larutan yang telah direfluks, dipekatkan menggunakan rotavapor untuk menghilangkan

pelarut yang masih tersisa dan agarlarutan menjadi lebih pekat. Hasil pemekatan

berwarna putih yang jika

dikeringudarakan, akan menjadi padatan putih yang keras.

Gambar 2 Padatan PS dan

Pencetakan membranPadatan PS dan PSf dilarutkan dengan

komposisi 5%, 10%, dan 15% dalam diklorometana. Padatan PSf mudah larut secara homogen dalam diklorometana karena adanya kesamaan sifat nonpolar (Cowd 1999)Membran yang telah dicetak, kemudian dikeringudarakan untuk menghilangkan pelarut-pelarut dan pengotor yang mudah menguap sehingga membran lebih cepat kering.

Pelepasan membran dari pelat kaca dilakukan dengan merendam membran bersama pelat kacanya ke dalam air deionisasi hingga membran terlepas dengan sendirinya. Hal ini dilakukan agar pelepasanndilakukan secara kasar, yang akan berakibat pada rusaknya membran.

(a) (b)Gambar 3 (a) Hasil pencetakan membran, (b)

membran PSf, dan (c) membran PS

Sebelum membran digunakan pada sel bahan bakar, dilakukan proses aktivasi terlebih dahulu dengan menggunakan oksidator kuat. Aktivasi dilakukan untuk mengaktifkan pori yang terdapat pada membran sehingga saat diaplikasikan untuk sel bahan bakar, membran dapat menghantarkan proton lebih banyak.

Penentuan bobot molekul PS dan PSfPenentuan bobot molekul dilakukan untuk

mengetahui perbedaan bobot molekul dari PS dan PSf dan untuk mengetahui pengaruh reaksi fluorinasi PS terhadap bobot molekul polimer. Penentuannya dilakukan dengan menentukan viskositasnya berdasarkan alir larutan PS dan PSf. Pelarut yang digunakan adalah kloroform karena kloroform merupakan pelarut yang baik bagi PS. Kloroform dapat berinteraksi dengan

4

, akan menjadi padatan putih

PS dan PSf.

PSf dilarutkan dengan omposisi 5%, 10%, dan 15% dalam

Padatan PSf mudah larut homogen dalam diklorometana karena

(Cowd 1999). yang telah dicetak, kemudian

menghilangkan an pengotor yang mudah

sehingga membran lebih cepat

dari pelat kaca dilakukan dengan merendam membran bersama pelat kacanya ke dalam air deionisasi hingga membran terlepas dengan sendirinya. Hal ini dilakukan agar pelepasannya tidak

yang akan berakibat

(c)(a) Hasil pencetakan membran, (b) membran PSf, dan (c) membran PS.

Sebelum membran digunakan pada sel ilakukan proses aktivasi

dengan menggunakan Aktivasi dilakukan untuk

ori yang terdapat pada sehingga saat diaplikasikan untuk

sel bahan bakar, membran dapat menghantarkan proton lebih banyak.

Penentuan bobot molekul PS dan PSfdilakukan untuk molekul dari PS

untuk mengetahui pengaruh orinasi PS terhadap bobot molekul Penentuannya dilakukan dengan

nya berdasarkan laju alir larutan PS dan PSf. Pelarut yang

orm karena kloroform pakan pelarut yang baik bagi PS.

dapat berinteraksi dengan PS,

5

dengan cara membuka rantai makromolekul polimer tersebut, sehingga PS mapun PSf mampu larut sempurna dalam kloroform (Azizah 2004).

Lampiran 2 menunjukkan laju alir PS dan PSf. Semakin pekat konsentrasi suatu larutan, maka laju alirnya akan semakin lama (Azizah 2004). Laju alir larutan PSf lebih besar dibandingkan larutan PS. Hal ini membuktikan bahwa larutan PSf lebih kental dan pekat dibandingkan larutan PS. Laju alir kloroform yang diperoleh sebesar 32.81 detik, sedangkan kedua sampel yang digunakan memiliki laju alir yang lebih besar dibandingkan laju alir pelarutnya.

Persamaan garis yang diperoleh untuk hubungan viskositas reduktif dan konsentrasi sampel berupa PS adalah, y = 38.10 + 2301x dan untuk PSf adalah, y = 87.77 – 1706x. Berdasarkan persamaan garis yang diperoleh, dapat diketahui nilai viskositas intrinsik ([η]) yang digunakan untuk dapat menentukan bobot molekul dari suatu polimer menurut persamaan Mark-Houwink (Azizah 2004). Bobot molekul PSf yang diperoleh sebesar 239634.7 g/mol dengan nilai linieritas sebesar 0.953, sedangkan bobot molekul PS diperoleh sebesar 79777.77 g/mol dengan nilai linieritasnya 0.893.

Bobot molekul membran PS mengalami peningkatan setelah mengalami proses fluorinasi. Hal ini menunjukkan bahwa proses fluorinasi PS telah berhasil. Adanya subtitusi gugus fluor ke dalam rantai PS, menyebabkan penambahan bobot molekul dari polistirena.

Penentuan water uptakePenentuan water uptake membran,

dilakukan untuk mengetahui kemampuan membran dalam melakukan proses swellingsaat pengaplikasiannya sebagai sel bahan bakar (Chia 2006). Proses swelling bertujuan untuk menghantarkan proton yang dihasilkan di bagian anode, yang terjerap dalam membran dan mengalirkannya menuju ke katode.

Gambar 4 Hubungan antara konsentrasi PSf dan nilai water uptake.

Berdasarkan Lampiran 2 diketahui bahwa terjadi peningkatan bobot membran setelah perendaman, yang dinyatakan sebagai bobot basah. Hal ini menunjukkan bahwa membran memiliki kemampuan mengikat air bebas, meskipun penambahan bobotnya tidak signifikan. Nilai water uptake membran PS dan PSf tergolong tinggi, artinya semua membran yang akan diaplikasikan sebagai elektrolit dalam sistem MFC memiliki kemampuan swelling yang cukup baik.

Gambar 5 menunjukkan bahwa membran PSf 5% memiliki persentase water uptakeyang paling besar, yaitu 11.07%. Membran PSf 5% memiliki kemampuan menyerap air lebih tinggi dibandingkan membran yang lain, sehingga proses swelling untuk menghantarkan proton yang dihasilkan juga akan semakin tinggi. Kemampuan membran dalam menghantarkan proton, sangat berpengaruh terhadap nilai konduktivitas protonnya.

Pencirian membranAnalisis FTIR

Pengujian FTIR dilakukan pada membran PS dan PSf untuk mengetahui adanya subtitusi gugus fluor pada polistirena dan produk dominan yang dihasilkan dari sintesis polistirena menggunakan reagen trietilaminatrihidroflorida, berdasarkan spektrum infra merahnya.

0.00

2.00

4.00

6.00

8.00

10.00

12.00

PS PSf 5% PSf 10% PSf 15%

wat

er u

pta

ke (

%)

konsentrasi PSf (%)

6

Gambar 5 Spektrum PSf ( ) dan PS ( ).

Spektrum berwarna merah menunjukkan spektrum PSf, sedangkan spektrum berwarna biru merupakan spektrum dari PS. Terdapat perbedaan pita serapan dari kedua spektrum membran. Spektrum senyawa aromatik, ditunjukkan dengan adanya serapan pada bilangan gelombang 1601.30 cm-1. Perbedaan antara kedua spektrum tersebut yaitu pita serapan pada bilangan gelombang 1069.14 hingga 1028.55 cm-1 yang diberi simbol huruf ‘a’, hanya terdapat pada spektrum PSf dan tidak terdapat pada spektrum PS. Serapan itu menunjukkan adanya gugus fluor yang terdapat dalam membran PSf (Pavia et al.2001).

Saat terjadi pencampuran antara HF dan TEA, atom N pada TEA akan terprotonasi sehingga tidak dapat bereaksi lagi.

Gambar 6 Reaksi antara HF dan TEA.

Ion F- yang terbentuk berperan sebagai nukleofilik yang akan menyerang cincin aromatik PS yang sifat elektronegatifitasnyalebih rendah dibandingkan F-. Subtitusi F- ke dalam cincin aromatik melalui tahap pembentukkan intermediet berupa benzuna. Struktur intermediet ini memiliki ikatan rangkap tiga pada salah satu ikatan rangkapnya. Ion F- akan menyerang atom H yang terdapat pada ikatan rangkap tiga pada cincin aromatik, sehingga menghasilkan produk berupa polistirena terfluorinasi pada posisi ‘orto’, ‘meta’, dan ‘para’.

Gambar 7 Produk reaksi fluorinasi pada polistirena

Serapan yang diberi simbol dengan huruf ‘b’, ‘c’, dan ‘d’ menunjukkan adanya trisubtitusi pada cincin aromatik dalam polistirena. Huruf ‘b’ pada pita serapan 842.02 cm-1 menunjukkan adanya subtitusi

gugus fluor pada posisi ‘para’ dalam cincin aromatik dengan intensitas sedang. Pita serapan 757.93-700.88 cm-1 yang disimbolkan dengan huruf ‘c’ menunjukkan adanya subtitusi pada posisi ‘orto’, namun spektrum

7

PS dan PSf pada 757.93-700.88 cm-1 tidak terdapat perbedaan intensitas. Artinya, subtitusi gugus fluor pada posisi ‘orto’ intensitasnya sangat rendah.

Subtitusi fluor pada posisi ‘meta’ ditunjukkan pada bilangan gelombang 650-700 cm-1, yang diberi simbol huruf ’d’. Intensitas pita serapan pada posisi ‘meta’ sangat besar dibandingkan dengan intensitas pada posisi ‘orto’ dan ‘para’, sehingga dapat diketahui bahwa produk polistirena terfluorinasi dengan subtitusi fluor pada posisi ‘meta’ merupakan produk PSf yang paling dominan.

Analisis SEM

(a) (b)

(c) (d)Gambar 8 Penampang melintang permukaan

membran (a) PS dan (b) PSf, bagian muka membran (c) PS dan (d) PSf.

Penampang melintang membran PS dan PSf ditunjukkan pada Gambar 9a dan 9b. Berdasarkan penampang melintang membran, diketahui bahwa lapisan atas membran, baik PS maupun PSf tidak memiliki pori atau nonporous. Membran yang dihasilkanmerupakan membran nonporous yang bersifat selektif, sehingga hanya dapat melewatkan proton (H+). Gas CO2 maupun gas dan material lain tidak dapat melewati membran tersebut, sehingga tidak terjadi difusi gas yang melewati membran.

Lapisan bawah dari membran memiliki pori yang berguna untuk membantu proses swelling sehingga proton yang tertangkap di lapisan atas membran dapat dialirkan menuju katode pada sel bahan bakar. Gambar 9c dan 9d merupakan gambar bagian muka dari membran PS dan PSf. Berdasarkan gambar

tersebut, diketahui bahwa baik membran PS dan PSf tidak memiliki pori.

Pengukuran konduktivitas membranNilai konduktivitas membran PS, PSf 5,

10, dan 15% diukur menggunakan LCR meter dengan elektroda karbon. Selain memiliki nilai water uptake yang tinggi dan membrannya tidak berpori, syarat lain membran dapat digunakan sebagai elektrolit pada sel bahan bakar adalah memiliki konduktivitas proton yang tinggi (Hendrana 2007). Konduktivitas proton diukur untuk mengetahui kemampuan membran dalam menghantarkan proton. Semakin besar konduktivitas proton yang dihasilkan, maka membran tersebut semakin baik digunakan dalam sistem sel bahan bakar.

Gambar 9 Kurva perbedaan konduktivitas proton sebelum dan setelah diaktivasi.

Berdasarkan Gambar 10, diketahui terjadi perbedaan antara konduktivitas membran sebelum dan setelah diaktivasi. Membran yang telah diaktivasi menggunakan H2O2 dan H2SO4, memiliki nilai konduktivitas proton yang lebih tinggi dibandingkan membran yang belum diaktivasi. Hal ini terjadi karena membran yang telah diaktivasi dengan berbagai oksidator kuat tersebut memiliki gugus penghantar proton yang lebih aktif sehingga konduktivitas protonnya pun akan semakin meningkat.

Membran yang belum diaktivasi menunjukkan penurunan nilai konduktivitas proton seiring dengan peningkatan konsentrasi PSf. Membran PS justru memiliki konduktivitas proton tertinggi yaitu 0.52 µS/cm dan PSf 15% memiliki konduktivitas proton terendah yaitu 0.30 μS/cm. Namun, setelah semua membran diaktivasi, terjadi perubahan nilai konduktivitas proton masing-masing membran yang cukup signifikan. Membran PSf 5% justru memiliki

0.2

0.4

0.6

0.8

1

0 5 10 15 20kon

du

ktiv

itas

pro

ton

( μ

S/c

m)

Konsentrasi PSf (%)

sebelum aktivasi

setelah aktivasi

8

konduktivitas proton tertinggi, yaitu sebesar 0.69 μS/cm (Lampiran 5).

Tabel 1 Hubungan water uptake dan konduktivitas proton membran

Membran Water uptake(%)

σ(µS/cm)

PS 2.87 0.54PSf 5% 11.07 0.69PSf 10% 6.70 0.67PSf 15% 2.64 0.63

Tingginya nilai konduktivitas proton PSf 5% sebanding dengan nilai water uptake yang dimiliki membran. Membran PSf 5% memiliki nilai water uptake yang paling tinggi, artinya proses swelling untuk menghantarkan proton juga semakin tinggi. Hal ini terbukti dari nilai konduktivitas proton yang dihasilkan dari membran tersebut. Namun, membran PS yang memiliki nilai water uptake lebih tinggi dibanding PSf 15%, justru memiliki konduktivitas proton yang lebih rendah. Hal ini dapat terjadi akibat proses aktivasi yang kurang optimum.

Beda potensial sistem sel bahan bakarPenelitian mengenai sistem MFC kali ini

menggunakan air perasan rumen sapi sebagai anolit dan larutan potasium ferisianida dalambuffer fosfat sebagai katolit. Sistem ini memanfaatkan aktivitas mikroba sebagai sumber energinya. Mikroba dalam air perasan rumen sapi melakukan metabolisme terhadap medium di anoda dengan mengatalisis penguraian glukosa menjadi energi listrik, dengan mentransfer elektron dari anoda melalui kabel dan menghasilkan arus ke katoda (Liu et al. 2010).

Elektroda yang digunakan adalah elektrode karbon. Larutan potasium ferisianida yang menjadi komponen katoda merupakan senyawa kimia dengan rumus molekul K3[Fe(CN)6], bersifat racun, dan dapat berfungsi sebagai agen pengoksidasi. Fe (III) yang terkandung di dalam molekul K3[Fe(CN)6] akan tereduksi menjadi Fe (II) oleh elektron yang dialirkan dari anoda sebagai hasil metabolisme mikroba. Reduksi Fe (III) menjadi Fe(II) ditunjukkan dengan terjadinya perubahan warna menjadi kuning kehijauan pada larutan katode (Sidharta et al. 2007).

Bagian anolit yang berisi air perasan rumen sapi merupakan tempat terjadinya proses oksidasi bahan-bahan organik. Substrat yang berasal dari pakan sapi, misalnya

selulosa, hemiselulosa, dan lignin akan mengalami respirasi anaerob secara fermentatif dengan bantuan mikroorganisme (Suwandi 1997). Hasil metabolisme mikroba tersebut akan mengalami oksidasi di anode.

Tahap awal dari respirasi anaerobik yaitu proses glikolisis menghasilkan piruvat. Piruvat akan mengalami fermentasi dengan bantuan enzim. Zat hasil metabolisme yang dapat digunakan sebagai sumber hidrogen untuk menghasilkan elektron yaitu alkohol, asetat, atau gas metana, dimana asam asetat merupakan hasil fermentasi yang paling dominan (Campbell et al. 1999).

Gambar 10 Sistem microbial fuel cell (A) anolit dan (B) katolit.

C6H12O6 + 2H2O 2CH3COOH + 4H2 + 2CO2

CH3COOH CH4 + CO2

Anode : CH3COO- + 4H2O 2HCO3- +

9H+ + 8e- (E°red = -0.279 V)Katode : 8Fe3+ + 8e- 8Fe2+ (E°red =

+0.770) (Liu et al 2010).

Proton yang dihasilkan dari proses oksidasi di anode akan melewati membran menuju ke katode, sedangkan elektron yang dihasilkan akan bergerak ke sirkuit luar dan menuju ke katode pula, untuk terjadinya proses reduksi (Koesnandar & Mahyudin 2006). Aliran elektron inilah yang menyebabkan adanya beda potensial antara kedua kutub (anode dan katode) yang besarnya diukur menggunakan LCR meter.

Gambar 11 Kurva hubungan beda potensial dan konsentrasi PSf.

05

101520

0 5 10 15Bed

a po

tens

ial

(mV

)

Konsentrasi PSf (%)

9

Besar kecilnya beda potensial yang dihasilkan oleh limbah cair organik dipengaruhi oleh konsorsium mikrob yang hidup dan memanfaatkan nutrisi yang terkandung di dalam limbah. Semakin aktif suatu konsorsium mikrob dalam melakukan metabolisme, maka semakin banyak pula elektron bebas yang dihasilkan (Sidharta et al. 2004). Sebanyak 100 mL cairan rumen sapi dapat menghasilkan beda potensial sebesar 18 mV dengan menggunakan membran elektrolit berupa PSf 15%. Semakin tinggi komposisi PSf yang digunakan sebagai membran, semakin besar pula beda potensial yang dihasilkan.

Membran PSf 5% hanya dapat menghasilkan beda potensial sebesar 8 mV. Hal ini dapat terjadi karena adanya penurunan aktivitas mikrob. Mikrob sedang beradaptasi untuk memecah substrat yang lebih kompleks menjadi sederhana. Selain itu, dapat juga disebabkan karena produk fermentasi dari satu jenis mikrob dapat menjadi substrat bagi jenis mikrob yang lain, sehingga produk fermentasi tersebut tidak dapat dioksidasi untuk menghasilkan elektron bebas. (Rabaey et al. 2004).

Faktor lain yang dapat menyebabkan rendahnya beda potensial pada membran PSf 5% stabilitas membrannya. Membran yang memiliki nilai water uptake terlalu tinggi juga kurang baik, karena stabilitas membrannya dapat berubah-ubah sehingga menyebabkan beda potensial yang dihasilkannya pun kurang optimum (Dhuhita & Arti 2010).

Perhitungan total mikrob dalam air perasan rumen sapi

Penentuan total mikrob dilakukan untuk mengetahui jumlah mikrob yang terdapat dalam 1 mL cairan rumen sapi yang digunakan pada sistem MFC. Metode ini dilakukan dengan metode TPC. Banyaknya mikrob dalam air perasan rumen sapi sangat berpengaruh terhadap besarnya beda potensial yang dihasilkan oleh sistem. Semakin banyak mikrob dalam air perasan rumen sapi diasumsikan bahwa aktivitas biologis yang terjadi juga semakin besar. Hal ini menyebabkan banyaknya elektron bebas yang lepas, sehingga dapat menghasilkan beda potensial besar pula (Liu et al. 2010).

Jenis-jenis mikrob yang terdapat dalam air perasan rumen sapi, misalnya bakteri selulolitik (Ruminococcus albus), bakteri proteolitik (Bacteroides ruminocola dan Selenomonas ruminantium), bakteri metanogenik (Methanobacterium formicium),

bakteri amilolitik (Clostridium lochheaddiidan Bacteroides amylophilus), bakteri yang memfermentasikan gula (Eurobacterium ruminantium), beberapa jenis bakteri hemiselulolitik, dan bakteri lipolitik (Suwandi 1997).

Perhitungan total mikrob dilakukan dengan pengenceran bertingkat hingga delapan kali pengenceran. Saat pengenceran pertama hingga ke tujuh, jumlah mikrobmelebihi 300, sehingga dinyatakan tidak bisa untuk dihitung (TBUD), hanya pengenceran ke delapan yang tidak TBUD (Lampiran 7).

Tabel 2 Total mikroba dalam air perasan rumen sapi

Perlakuan Total mikrob(cfu/mL)

Sebelum perlakuan 1.2×109

Membran PS 1.1×109

Membran PSf 109

Berdasarkan Tabel 2, diketahui bahwa total mikrob sebelum digunakan sebagai media dalam MFC sebesar 1.2×109 cfu/mL.Berdasarkan penelitian Ogimoto dan Imai pada 1980, menyatakan bahwa terdapatjumlah mikrob sekitar 109 – 1010 cfu/mL cairan rumen (Ogimoto & Imai 1980). Jumlah mikrob yang dihasilkan dalam penelitian kali ini tergolong cukup besar, artinya sebanyak 1.2×109 cfu/mL air perasan rumen sapi, beda potensial sistem yang dihasilkan yaitu sebesar 5, 8, 12, dan 18 mV bergantung pada membran yang digunakan. Semakin besar komposisi PSf yang digunakan pada membran, beda potensial terukur juga semakin meningkat.

Jumlah mikrob setelah digunakan sebagai media dalam MFC, terjadi penurunan jumlah yang tidak terlalu signifikan. Penurunan jumlah mikrob dapat dikarenakan adanya mikrob yang mati atau aktivitasnya menurun setelah perlakuan. Kematian mikrob dapat terjadi akibat suhu yang kurang cocok untuk hidup mikrob dan kondisi mikrob yang kurang anaerobik.

SIMPULAN DAN SARAN

SimpulanMembran yang dihasilkan dari florinasi

polistirena memiliki konduktivitas yang lebih besar daripada membran Psnya. Konduktivitas proton yang paling besar dihasilkan dari membran PSf 5%, yaitu sebesar 0.69 µS/cm.

10

Aplikasi PSf sebagai membran elektrolit dalam MFC dengan media air perasan rumen sapi menghasilkan beda potensial yang lebih besar dibandingkan membran PS biasa. Beda potensial terbesar yang dihasilkan dari sistem MFC yaitu sebesar 18 mV menggunakan membran PSf 15%.

SaranPerlu dilakukan pengujian tidak hanya

jumlah total mikrob saja, tetapi juga terhadap aktivitas mikroba yang terjadi pada setiap sampel air perasan rumen yang digunakan, karena aktivitas mikrob dapat berubah setiap saat dan tidak hanya dipengaruhi oleh jumlah mikrob saja. Penentuan jenis mikrob yang berperan paling aktif dalam menghasilkan listrik. Perlu dilakukan pula pengukuran beda potensial dengan variasi waktu, sehingga dapat diketahui hubungan antara aktivitas mikroba terhadap waktu. Penggunaan katalis dalam sistem sel bahan bakar dan penentuan TGA (Thermogravimetric Analysis) terhadap membran, juga sangat diperlukan.

DAFTAR PUSTAKA

Azizah U. 2004. Polimer. Sukarmin, editor. Jakarta: Direktorat Pendidikan Menengah Kejuruan.

Barua PK, Deka D. 2010. Electricity generation from biowaste based microbial fuel cell. International Journal of Energy, Information, and Communications 1(1): 77-92.

Bierley AW, Heat RJ, Scott MJ. 1988. Plastic Materials Properties and Applications. New York: Chapman and Hall Publishing.

Campbell, Neil A, Jane B, Reece, Lawrence GM. 1999. Biology, 5th Edition. MenloPark: Addison Wesley Longman Inc.

Chia Ee Sunn. 2006. A Chemical Reaction Engineering Perspective of Polymer Electrolyte Membrane Fuel Cells [Disertasi]. Faculty of Princeton University.

Cowd MA. 1999. Kimia Polimer. Firman H, penerjemah; Padmawinata K, editor. London: J Murray. Terjemahan dari: Cowd, Polymer Chemistry.

[DEPERINDAG] Departemen Perindustrian dan Perdagangan. 2007. Kemasan Flexible: 1-15.

Dewi EL. 2007. Mass Transfer Study on Polymer Electrolyte Fuel Cell. Di dalam: Seminar Nasional Teknologi 2007; Yogyakarta, 24 November 2007. Jakarta: BPPT. Hlm 1-8.

Dewi EL, Ismujanto T, Chandrasa GT. 2008. Pengembangan dan aplikasi fuel cell. Di dalam: Tjutjuk Ismujanto, editor. Prosiding Seminar Teknologi; 51-54.

Dhuhita A, Arti DK. 2010. Karakterisasi dan uji kinerja SPEEK, cSMM, dan nafion untuk aplikasi direct methanol fuel cell[Skripsi]. Semarang: Fakultas Teknik, Universitas Diponegoro.

Du, Zhuwei, H Li, T Gu. 2007. A state f the art review on microbial fuel cell; A promising technology for wastewater treatment and bioenergy. Journal of Biotechnology Advance 25: 464-482.

Handayani S. 2008. Membran elektrolit berbasis polieter-eter keton tersulfonasi untuk direct methanol fuel cell suhu tinggi [Disertasi]. Jakarta: Fakultas Teknik, Universitas Indonesia.

Hendrana S, Pujiastuti S, Sudirman, Rahayu I. 2007. Pengaruh suhu dan tekanan proses pembuatan terhadap konduktivitas ionic membran PEMFC berbasis polistirena tersufonasi. Jurnal Sains Materi Indonesia8(3): 187-191.

Hendrana S. 2007. Pengembangan membranpolimer untuk proton exchange membrane fuel cell (PEMFC). Pusat penelitian fisika-LIPI: Bandung.

Hoogers G. 2003. Fuel Cell Technology Handbook. Florida: CRC press LLC.

Indriyati, Hendrana S, Pujiastuti. 2004. Karakterisasi membran polistirena tersulfonasi. Prosiding Pertemuan Ilmiah Ilmu Pengetahuan dan Teknologi Bahan. Serpong,pp: 92-96.

[ISO] International Standard Operation. 2000. Microbiology of Food Animal Feeding Stuffs- Horizontal Method for The Detection and Enumeration of Enterobacteriaceae. 21528-1: 2000.

Koesnandar, Mahyudin AR. 2006. Biohydrogen production: prospects and limitations to practical application. Akta Kimindo 1: 73-78.

Lehninger AL. 1982. Dasar-dasar Biokimia Edisi ke-3.Maggy Thenawidjaja,

11

penerjemah. Jakarta: Erlangga. Terjemahan dari: Principles of Biochemistry.

Li YS, Zhao TS, Yang WW. 2010. Measurement of water uptake and transport properties in anion-exchange membranes. International Journal of Hydrogen Energy 35: 5656-5665.

Liu H, Chignell J, Fan Y, Hu H. 2010. Microbial electrolysis: novel technology for hydrogen production from biomass. Biofuels 1(1): 129 – 142.

Malcolm SP. 2001. Kimia Polimer. Sopyan I, penerjemah. Jakarta: PT Pradnya Paramita. Terjemahan dari: Polymer Chemistry: An Introduction.

Ogimoto K, Imai S. 1980. Atlas of Rumen Microbiology. Tokyo: Japan Scientific Societies Press.

Oo MM, Win N. 2008. Preparation of Membrane for Proton Exchange Membrane Fuel Cell. WorldAcademy of Science, Engineering, and Technology 48: 135-138.

Pavia DL, Lampman GM, Kriz GS. Introduction to Spectroscopy 2001., third Edition. Washington: Department of Chemistry Western Washington University.

Rabaey K, Lissens G,Verstraete W. 2004. Microbial Fuel Cell: Permormance and Perspective. Belgium: Ghent University.

Sidharta M L, Jamilah, Karamita D, Brianno W, Hamid A. 2007. Pemanfaatan limbah cair sebagai sumber energi listrik pada microbial fuel cell. [Karya Ilmiah]. Bandung: Institut Teknologi Bandung bekerjasama dengan PT. Rekayasa Industri.

Suwandi. 1997. Peranan mikroba rumen pada ternak ruminansia. Lokakarya Fungsional Non Peneliti. Bogor: 13-19.

[TCI] Tokyo Chemical Industry. 2008. Fluorinating reagents and building blocks for fluorinated biochemical compounds. Tokyo: Tokyo Chemical Industry Co.,Ltd.

Wagner H. 2005. It’s Electricity: Cows Show Promise as Powerplants. Columbus: Ohio State University.

Walsby N. 2001. Preparation and characterization of radiation-grafted membranes of fuel cells [skripsi]. Finlandia: Departement of Chemsitry, University of Helsinki.

12

LAMPIRAN

13

Lampiran 1 Diagram alir penelitian

Pembuatan membran polistirena terfluorinasi(Pembuatan HF-TEA, sintesis PSf, pencetakan membran, aktivasi membran, penentuan bobot molekul, dan penentuan water uptake)

Penentuan koduktivitas proton membran

Penentuan beda potensial sistem MFC

Pencirian membran- FTIR- SEM

Penentuan total mikrob menggunakan metode TPC

14

Lampiran 2 Penentuan bobot molekul polistirena dan polistirena terfluorinasi

Volume pelarut yang digunakan (Kloroform) = 25 mLData laju alir polistirena dan polistirena terfluorinasi

Sampel ke-

Bobot polistirena Konsentrasi

ulangan

waktu alir (s)

ηrelatif ηspesifik ηreduktif(g) (g/mL) ti trerata

PSf

1 0.1003 0.00401

1 43.71

43.61 1.329 0.329 82.01

2 43.46

3 43.66

2 0.1505 0.00602

1 47.64

47.77 14.557 0.4557 75.70

2 47.84

3 47.82

3 0.2507 0.01003

1 56.07

56.41 17.192 0.7192 71.72

2 56.96

3 56.21

4 0.3008 0.01203

1 59.43

59.22 18.049 0.8049 66.89

2 59.22

3 59.02

PS

1 0.1502 0.0060

1 43.50

43.43 13.234 0.3234 53.84

2 43.43

3 43.35

2 0.2008 0.0080

1 47.00

47.15 14.368 0.4368 54.38

2 47.31

3 47.13

3 0.2501 0.0100

1 52.83

52.41 15.971 0.5971 59.69

2 52.34

3 52.05

4 0.3026 0.0121

1 59.44

59.66 18.182 0.8182 67.59

2 59.68

3 59.86

kloroform1 32.52

32.812 33.32

3 32.60

Contoh perhitungan

- Penentuan konsentrasi polistirena terfluorinasi ke-1

Bobot PSf yang ditimbang = 0.1003 g

Volume pelarut (kloroform) yang digunakan = 25 mL

Konsentrasi (%b/v) polistirena terfluorinasi

( ) ( ) = .

= 0.00401 g/mL

15

Lanjutan lampiran 2

- Penentuan nilai ηrelatif PSf ke-1

Waktu alir rerata PSf-1 = 43.61 s

Waktu alir kloroform = 32.81 s

ηrelatif

=

.

. = 1.329

- Penentuan nilai ηspesifik PSf ke-1

ηrelatif = 1.329

ηspesifik

ηspesifik = ηrelatif - 1

ηspesifik = 1.329 – 1 = 0.329

- Penentuan nilai ηreduktif PSf ke-1

ηspesifik = 0.329

Konsentrasi polistirena = 0.00401 g/mL

ηreduktif

η × 100% =

.. / = 82.01 mL/g

- Penentuan persamaan garis dan nilai viskositas intrinsik

Persamaan garis ditentukan dengan cara memplotkan nilai ηreduktif sebagai ‘y’ dan

konsentrasi polistirena terfluorinasi sebagai ‘x’, sehingga diperoleh persamaan garis, yaitu

y = 87.77 – 1706x

Berdasarkan persamaan garis di atas dapat ditentukan nilai viskositas intrinsik dari polistirena

terfluorinasi ([η]). Persamaan garis di atas setara dengan persamaan berikut

ηspesifik =[η] + kintrinsik C

Sehingga, dapat diperoleh nilai [η] sebesar 87.77

- Penentuan bobot molekul PSf

Diketahui : a = 0.76

k = 0.00716

Ditanya : bobot molekul (BM)

Jawab : [η] = k (BM)a

log [η] = log k + a log BM

log 87.77 = log 0.00716 + 0.76 log BM

log BM = 5.37955

BM = 239634.7 g/mol

16

Lanjutan lampiran 2

Hubungan konsentrasi dan ηreduktif polistirena terfluorinasi.

- Penentuan konsentrasi polistirena sampel ke-1

Bobot polistirena yang ditimbang = 0.1502 g

Volume pelarut (kloroform) yang digunakan = 25 mL

Konsentrasi (%b/v) polistirena

( ) ( )=

. = 0.0060 g/mL

- Penentuan nilai ηrelatif PS ke-1

Waktu alir rerata PS-1 = 43.43 s

Waktu alir kloroform = 32.81 s

ηrelatif =

= . . = 1.3234

- Penentuan nilai ηspesifik PS ke-1

ηrelatif = 1.3234

ηspesifik

ηspesifik = ηrelatif - 1

ηspesifik = 1.3234 – 1 = 0.3234

- Penentuan nilai ηreduktif PSf ke-1

ηspesifik = 0.3234

Konsentrasi polistirena terflorinasi = 0.0060 g/mL

ηreduktif

× 100% = .

. / = 53.85 mL/g

y = -1706,x + 87.77R² = 0.953

0

10

20

30

40

50

60

70

80

90

0 0.002 0.004 0.006 0.008 0.01 0.012 0.014

ηre

dukt

if

konsentrasi PSf (%)

17

Lanjutan lampiran 2

- Penentuan persamaan garis dan nilai viskositas intrinsik

Persamaan garis ditentukan dengan cara memplotkan nilai ηreduktif sebagai ‘y’ dan

konsentrasi polistirena sebagai ‘x’ sehingga diperoleh persamaan garis, yaitu

y = 38.10 +2301x

Berdasarkan persamaan garis di atas dapat ditentukan nilai viskositas intrinsik dari polistirena

([η]). Persamaan garis di atas setara dengan persamaan berikut

ηreduktif =[η] + kintrinsik C

Sehingga, dapat diperoleh nilai [η] sebesar 38.10

- Penentuan bobot molekul polistirena

Diketahui : a = 0.76

k = 0.00716

Ditanya : bobot molekul (BM)

Jawab : [η] = k (BM)a

log [η] = log k + a log BM

log 38.049 = log 0.00716 + 0.76 log BM

log BM = 4.901882

BM = 79777.77 g/mol

Hubungan konsentrasi dan ηreduktif polistirena.

y = 2301,x + 38.10R² = 0.893

0

10

20

30

40

50

60

70

80

0 0.002 0.004 0.006 0.008 0.01 0.012 0.014

η red

ukti

f

konsentrasi PS (%)

18

Lampiran 3 Penentuan water uptake

Penentuan water uptake

Membran ulanganBobot membran (g) Water uptake

Rerata water uptake

kering Basah (%) (%)

PS 1 0.0033 0.0034 3.03

2.872 0.0140 0.0143 2.14

3 0.0029 0.0030 3.45

PSf 5% 1 0.0029 0.0030 3.45

11.072 0.0014 0.0017 21.43

3 0.0012 0.0013 8.33

PSf 10% 1 0.0033 0.0037 12.12

6.702 0.0056 0.0059 5.36

3 0.0038 0.0039 2.63

PSf 15% 1 0.0062 0.0064 3.23

2.642 0.0064 0.0067 4.69

3 0.0028 0.0028 0.00

Contoh Perhitungan

- Penentuan water uptake membran polistirena ulangan-1

( ) ( ) ( ) × 100%

. . . × 100% = 3.03 %

19

Lampiran 4 Penentuan konduktivitas proton dari membran

Konduktivitas membran sebelum aktivasi

Membran G L/A σ

(µ S) (cm-1) (μS/cm)

PS 627.13 0.0008 0.52

PSf 5% 553.83 0.0008 0.44

PSf 10% 446.30 0.0008 0.36

PSf 15% 376.16 0.0008 0.30

Konduktivitas membran setelah aktivasi

Membran G L/A σ

(µS) (cm-1) (μS/cm)

PS 654.49 0.0008 0.54

PSf 5% 865.88 0.0008 0.69

PSf 10% 814.66 0.0008 0.67

PSf 15% 793.60 0.0008 0.63

Contoh perhitungan

- Penentuan konduktivitas proton membran PS setelah aktivasi

Luas permukaan (A) = 6 cm2

Jarak antar dua elektroda (L) = 0.0050 cm

Konduktivitas membran (G) = 654.49 × 10-6 S

= σ = 654.49 × 10-6 S ×

. = 0.5238 × 10-6 S/cm = 0.52 µS/cm

- Penentuan rasio L/A

Ketebalan PS (L) = 0.0050 cm

Luas permukaan membran (A) = 6 cm2

Konstanta L/A = .

= 8×10-4 cm-1

- Penentuan konduktivitas proton membran PSf 5% setelah aktivasi (L/A dianggap konstan)

Rasio L/A = 8×10-4 cm-1

Konduktans (G) = 865.88 µS

Konduktivitas proton PSf 5% = 865.88 µS × 8×10-4 cm-1 = 0.54 µS/cm

20

Lampiran 5 Penentuan beda potensial dan total mikrob sistem microbial fuel cell (MFC)

Data beda potensial sistem MFC

Membran V

(mV)

PS 5

PSf 5% 8

PSf 10% 12

PSf 15% 18

Penentuan jumlah mikrob dalam air perasan rumen sapi

NoKonsentrasi

total

(cfu/mL)

10-1 10-2 10-3 10-4 10-5 10-6 10-710-8

1- - - - - - - 208

109

- - - - - - - 288

2- - - - - - - 288

1.2×109

- - - - - - - 296

3- - - - - - - 256

1.1×109

- - - - - - - 296

Keterangan : 1 = total mikrob rumen dengan menggunakan membranPSf 2 = total mikrob rumen sebelum digunakan (tanpa perlakuan terhadap sistem)3 = total mikrob rumen dengan menggunakan membran PS− = mikroba TBUD (tak dapat untuk dihitung)

Contoh perhitungan

- Penentuan total mikrob rumen (cfu/mL) pada cawan nomor 1

Jumlah = 208 mikrob

288 mikrob

Total mikrob (cfu/mL)

(2.08 × 1010) + (2.88 × 1010) = 4.96 × 1010

. ×= 2.48 × 1010

. × = 0.0992 × 1010 = 1 × 109 cfu/mL