Alat Dan Bahan : Alat Dan Bahan Di Loket :A. Alat :1. PulpenB. Bahan :1. Formulir Pendaftaran

Alat Dan Bahan Di Ruang Fnab :A. Alat :1. Jarum (Spuit ) Ukuran 22 Atau 25 G2. Objek Glass3. Mikroskop4. Pulpen5. Apd ( Alat Pelindung Diri )B. Bahan :1. Bahan Yang Akan Diambil ( Contoh : Tumor Pada Leher )2. Oil Imersi3. Formulir Pasien

Alat Dan Bahan Di Ruang Pap Smear :A. Alat :1. Spekulum Cocor Bebek2. Spatula Ayre3. Cyto Brush4. Object Glass5. Apd ( Alat Pelindung Diri )6. Kapas7. KasaB. Bahan :1. Sampel ( Introitus Vagina )

Alat Dan Bahan Di Ruang Makros:A. Alat :1. Pulpen2. Penggaris 3. Sepatu Khusus4. Cutter / Pisau5. Timbangan6. Apd ( Alat Pelindung Diri )7. Tataan Pemotongan8. Blok ParafinB. Bahan :1. Larutan Buffer 10 %2. Gross Jaringan

Alat Dan Bahan Di Ruang Histologi :A. Alat :1. Apd ( Alat Pelindung Diri )2. Label PemeriksaanB. Bahan :1. Larutan Xylol2. Larutan Alcohol (95%, 80%, 70%, 50%)3. Larutan Meyers Hematoxillin4. Larutan Hcl 0,4%5. Larutan Litium Karbonat 5%6. Larutan Eosin7. Larutan Harris Hematoxylin8. Air Amonia / Saturated Lithium Carbonat9. Larutan Ethyl Alcohol 80%

Cara Kerja : Teknik Pengambilan Papsmear :1. Isi Formulir Dengan Lengkap Dan Sesuaikan Dengan Nomor Urut Pengambilan.2. Minta Pasien Untuk Memposisikan Diri Secara Litotomi.3. Pasang Spekulum Cocor Bebek Untuk Menampilkan Serviks.4. Cytobrush Dimasukkan Ke Dalam Kanalis Servikalis Dan Diputar 360 Searah Jarum Jam.5. Cytobrush Diusapkan Pada Kaca Benda Yang Telah Diberi Label (Dengan Pensil Gelas). Penggeseran Meliputi Seluruh Panjang Gelas Sediaan Dan Hendaknya Digeserkan Sekali Saja.6. Kaca Benda Segera Dimasukkan Dalam Larutan Fiksasi Alkohol 96%. Sediaan Difiksasi Minimal Selama 30 Menit.7. Sediaan Kemudian Dikeringkan Dengan Menggunakan Pe-Ngering Udara. 8. Pewarnaan Sediaan Dikerjakan Di Laboratorium Sitologi. Pewarnaan Sediaan Sitologi Yang Dipakai Adalah Pewarnaan Papanicolaou Yang Terdiri Dari Pewarnaan Inti Dengan Hema-Toxylin Dan Sitoplasma Dengan Orange G Dan Ea. Prinsip Pewarnaan Papanicolaou Adalah Melakukan Pewarnaan, Hidrasi Dan Dehidrasi Sel.

Teknik Pengambilan Fnab :1. Tumor Dipegang Lembut2. Jarum Diinsersi Segera Ke Dalam Tumor3. Piston Di Dalam Tabung Suntik Ditarik Ke Arah Proksimal. Ditarik Secara Perlahan, Dengan Cara Demikian Sejumlah Sel Tumor Masuk Ke Dalam Lumen Jarum Suntik4. PistonDalamTabungDikembalikanPadaPosisiSemulaDenganCara Melepaskan Pegangan5. Aspirat Dikeluarkan Dan Dibuat Sediaan Hapus, Dikeringkan Di Udara Dan DikirimkanKeLaboratoriumPusatPemeriksaanKanker.

Pemotongan Jaringan :1. Gros Diukur Lalu Dipotong2. Di Rendam Dalam Larutan Buffer 10 % 24 Jam3. Diprosesing Dalam Autotecnition Selama 14 Jam4. Bahan Diblok Parafin, Dipotong Dengan Mikrotom, Kemudian Dicat5. Diagnosis Ditegakkan. Kecuali Sediaan Sulit Perlu Didiskusikan, Perlu Pub, Pug, Cat Khusus, Mundur 1 Sampai 2 Hari

Pewarnaan He Histologi :1. Deparafinisasi Dengan Xylol Sebanyak 4x (Xylol I, Xylol Ii, Xylol Iii Dan Xylol Iv) Masing-Masing Selama 3-5 Menit 2. Dilanjutkan Rehidrasi Dengan Alkohol Bertingkat Menurun (Alkohol 95%, 80%, 70%, 50%) Selama Masing-Masing 3-5menit3. Cuci Dengan Air Mengalir Selama 5-10menit4. Rendam Preparat Dalam Larutan Meyers Hematoxillin Selama 10-15menit5. Cuci Lagi Dengan Air Mengalir Selama 20menit6. Celupkan Dalam Hcl 0,4% Sebanyak 1-2 Celup 7. Cuci Dengan Air Mengalir Selama 5-10 Menit 8. Celupkan Dalam Litium Karbonat 5% Sebanyak 3 Celup 9. Cuci Lagi Dengan Air Mengalir Selama 5-10 Menit 10. Rendam Dalam Larutan Eosin Selama 15 Detik Atau 2 Menit 11. Dilanjutkan Dehidrasi Dengan Alkohol 50%, 70%, 80%, 95% Masing-Masing Selama 3-5 Menit 12. Lalu Rendam Dalam Xylol Sebanyak 4x, Masing-Masing Selama 3-5menit13. Mounting Menggunakan Entelan Dan Preparat Ditutup Dengan Kaca Penutup 14. Di Beri Label15. Preparat Dan Formulir Diserahkan Kepada Dokter

Pewarnaan Haris Sitologi :1. Deparafinisasi Slide , Dan Hidrasi Dalam Air Suling ,Dezenkerisasi Bila Perlu Sebelum Di Staining2. Staining Dengan Harris Hematoxylin 6 15 Mnt 3. Cuci Air Mengalir 2 5 Mnt 4. Masukkan Dalam Acid Alcohol 1-2 Dips5. Cuci Dengan Air Kran 6. Masukkan Ke Dalam Air Amonia / Saturated Lithium Carbonat Sampai Warna Biru Terang7. Cuci Dalam Air Mengalir 10 Mnt 8. Masukkan Dalam 80% Ethyl Alcohol 1-2 Mnt.9. Counterstain In Eosin Phloxine Sol 2mnt10. Dehidrasi 2x Dalam Ethyl Alkohol 95%, Absolut Ethyl Alkohol, Dan Clearing Dalam Xylol 2x ,Masing-Masing 2 Menit