7/30/2019 Sensibilitas Test Metode Kirby

1/3

Sensibilitas test metode Kirby-Bauer

Diposkan oleh eema di23.26

Label:bakteriologi

Metode disk-difusi (Kirby-Bauer) lebih cocok untuk pengujian rutin di laboratorium klinis di

mana sejumlah besar isolat yang diuji untuk kerentanan terhadap berbagai antibiotik. Sebuahplate agar secara seragam diinokulasi dengan organisme uji dan disk kertas diresapi dengan

konsentrasi tetap antibiotik ditempatkan pada permukaan agar-agar. Pertumbuhan organisme

dan difusi dimulai antibiotik secara bersamaan menghasilkan zona hambatan melingkar di

mana jumlah antibiotik melebihi konsentrasi penghambatan. Diameter zona hambat adalah

fungsi dari jumlah obat dalam disk dan kerentanan mikroorganisme.

Dari berbagai media yang tersedia, NCCLS merekomendasikan agar-agar Mueller-Hinton

karena: itu menghasilkan reproduktifitas batch-to-batch yang baik, melainkan rendah di

sulfonamida, trimetoprim, dan inhibitor tetrasiklin, itu menghasilkan pertumbuhan yang

memuaskan dari yang paling patogen bakteri, dan sejumlah besar data telah terkumpul

mengenai uji kepekaan dilakukan dengan media ini. Jika batch media tidak mendukung

pertumbuhan organisme yang memadai, ukuran zona akan lebih besar dan memberikan hasil

yang palsu.

The media agar harus memiliki pH 7,2-7,4 pada suhu kamar. Permukaan harus lembab

tetapi tanpa tetesan air. The antibiotic disks harus dijaga di 8 C atau lebih rendah atau freeze

pada -14 C atau di bawah sampai diperlukan, sesuai rekomendasi produsen. Biarkan disk

untuk hangat untuk suhu kamar sebelum digunakan. Jangan gunakan disk kadaluarsa.

Untuk standarisasi kepadatan inokulum, standar kekeruhan BaS04 digunakan (0,5 standar

McFarland, approx. 10s organisme per mL).

Langkah-langkah metode standar adalah sebagai berikut:

a. Pilih setidaknya 4 sampai 5 koloni baik terisolasi dari jenis morfologi yang sama dari

piring agar. Menyentuh bagian atas setiap koloni dengan loop kawat dan pertumbuhan

transfer ke tabung berisi 4 hingga 5 mL medium kaldu yang sesuai, seperti kaldu tryptic-

kedelai. Biarkan budaya kaldu untuk menetaskan pada 35 C sampai mencapai atau melebihi

0,5 standar kekeruhan McFarland. Untuk uji kepekaan rutin, bagaimanapun, inokulum juga

dapat dibuat dengan membuat salin langsung atau penangguhan kaldu dari koloni yang

dipilih dari piring agar-agar 18 sampai 24-jam (nutrisi, agar-agar non-selektif seperti agar-

agar piring darah harus digunakan).

Sesuaikan kekeruhan dengan garam steril atau kaldu. Gunakan cahaya yang cukup, dan,untuk membantu dalam perbandingan visual, membaca tabung terhadap latar belakang putih

dengan kontras hitam lines.

Dalam waktu 15 menit setelah menyesuaikan kekeruhan dari suspensi inokulum, celupkan

swab tidak beracun steril pada aplikator ke dalam suspensi disesuaikan. Memutar beberapa

kali swab, menekan tegas pada dinding bagian dalam tabung di atas tingkat inokulum cairan

untuk menghilangkan kelebihan dari swab.

Menyuntik permukaan kering dari piring Muller-Hintonagar oleh goresan yang swab atas

seluruh permukaan agar-agar steril. Ulangi prosedur ini dua kali lagi, dan memutar piring 60

setiap kali untuk menjamin pemerataan inokulum. Ganti bagian atas piring danmemungkinkan 3 sampai 5 menit, tetapi tidak lebih dari 15 menit, untuk setiap kelebihan air

http://eema-kharisma.blogspot.com/2011/05/sensibilitas-test-metode-kirby-bauer.htmlhttp://eema-kharisma.blogspot.com/2011/05/sensibilitas-test-metode-kirby-bauer.htmlhttp://eema-kharisma.blogspot.com/2011/05/sensibilitas-test-metode-kirby-bauer.htmlhttp://eema-kharisma.blogspot.com/2011/05/sensibilitas-test-metode-kirby-bauer.htmlhttp://eema-kharisma.blogspot.com/2011/05/sensibilitas-test-metode-kirby-bauer.htmlhttp://eema-kharisma.blogspot.com/search/label/bakteriologihttp://eema-kharisma.blogspot.com/search/label/bakteriologihttp://eema-kharisma.blogspot.com/search/label/bakteriologihttp://eema-kharisma.blogspot.com/search/label/bakteriologihttp://eema-kharisma.blogspot.com/2011/05/sensibilitas-test-metode-kirby-bauer.htmlhttp://eema-kharisma.blogspot.com/2011/05/sensibilitas-test-metode-kirby-bauer.html

7/30/2019 Sensibilitas Test Metode Kirby

2/3

permukaan untuk diserap sebelum menerapkan disk antibiotik. Harus ada rumput hampir

konfluen pertumbuhan bila dilakukan dengan benar. Jika hanya koloni tumbuh terisolasi,

inokulum itu terlalu ringan dan pengujian harus diulang. Untuk menghindari ekstrem di

kepadatan inokulum, tidak pernah menggunakan kultur murni kaldu semalam untuk melesat

plates.

Tempatkan disk yang sesuai merata (tidak lebih dekat dari 24 mm dari pusat ke pusat) pada

permukaan agar-agar pelat baik dengan menggunakan forsep steril atau aparat pengeluaran.

Tidak lebih dari 12 disk harus ditempatkan pada satu plat 150 mm atau lebih dari 5 disk di

piring 100 mm. Sebuah disk tidak akan dipindahkan setelah telah datang di kontak dengan

permukaan agar-agar karena beberapa senyawa berdifusi hampir instantaneously.

Invert piring dan menempatkannya di dalam inkubator bersuhu 35 C dalam waktu 15

menit setelah disk diterapkan. Pelat sebaiknya diinkubasi aerobik (C02 tidak). Setelah

inkubasi 16-18 hrs.of, memeriksa setiap piring dan mengukur diameter dari zona hambatan

yang lengkap, termasuk diameter disk. Ukur zona ke milimeter terdekat dengan

menggunakan penggaris. koloni tumbuh besar dalam zona yang jelas hambatan harusdisubkultur, reidentified dan retested.

Interpretasikan ukuran zona dengan mengacu pada produsen yang diberikan meja standar

dan melaporkan organisme yang akan baik rentan, menengah, atau resisten. Jangan

bandingkan ukuran zona dua antibiotik yang berbeda dan menilai efektivitas mereka sesuai.

PERBEDAAN SENSIBILITAS TEST METODE KIRBY BAUER DAN

METODE FLEMING

22.34|

KIRBY BAUWER

Untuk 1 jenis Kuman

Untuk biakan murni

Untuk kuman patogen

Jenis kumsn diketahui

Suspensi bacteria harus sama dengan standar bauwerPembacaan hasil dari diameter zona tambahan

Yang dimatikan kuman patogen

Pasien sebagai kelinci percobaan

Dapat menentukan sensitiv dan resisten

Zona radikal

FLEMING

Lebih dari 1 jenis kuman

Untuk biakan campuran

Untuk bakteri patogen dan non patogen

http://yuma-patarihan.blogspot.com/2012/05/perbedaan-sensibilitas-test-metode.htmlhttp://yuma-patarihan.blogspot.com/2012/05/perbedaan-sensibilitas-test-metode.htmlhttp://yuma-patarihan.blogspot.com/2012/05/perbedaan-sensibilitas-test-metode.htmlhttp://yuma-patarihan.blogspot.com/2012/05/perbedaan-sensibilitas-test-metode.htmlhttp://yuma-patarihan.blogspot.com/2012/05/perbedaan-sensibilitas-test-metode.htmlhttp://yuma-patarihan.blogspot.com/2012/05/perbedaan-sensibilitas-test-metode.htmlhttp://yuma-patarihan.blogspot.com/2012/05/perbedaan-sensibilitas-test-metode.htmlhttp://yuma-patarihan.blogspot.com/2012/05/perbedaan-sensibilitas-test-metode.html

7/30/2019 Sensibilitas Test Metode Kirby

3/3

Jenis kuman tidak diketahui

Suspensi bakteri tidak ditentukan

Pembacaan hasil dari tepi disk ke zona tambahan

Yang dimatikan kuman patogen dan non patogen

Pasien sembuh total

Tidak dapat menentukan resisten atau sensitiv karena tidak ada standarZona irradikal

http://yuma-patarihan.blogspot.com/2012/05/perbedaan-sensibilitas-test-metode.html