Sensibilitas Test Metode Kirby

download Sensibilitas Test Metode Kirby

of 3

Transcript of Sensibilitas Test Metode Kirby

  • 7/30/2019 Sensibilitas Test Metode Kirby

    1/3

    Sensibilitas test metode Kirby-Bauer

    Diposkan oleh eema di23.26

    Label:bakteriologi

    Metode disk-difusi (Kirby-Bauer) lebih cocok untuk pengujian rutin di laboratorium klinis di

    mana sejumlah besar isolat yang diuji untuk kerentanan terhadap berbagai antibiotik. Sebuahplate agar secara seragam diinokulasi dengan organisme uji dan disk kertas diresapi dengan

    konsentrasi tetap antibiotik ditempatkan pada permukaan agar-agar. Pertumbuhan organisme

    dan difusi dimulai antibiotik secara bersamaan menghasilkan zona hambatan melingkar di

    mana jumlah antibiotik melebihi konsentrasi penghambatan. Diameter zona hambat adalah

    fungsi dari jumlah obat dalam disk dan kerentanan mikroorganisme.

    Dari berbagai media yang tersedia, NCCLS merekomendasikan agar-agar Mueller-Hinton

    karena: itu menghasilkan reproduktifitas batch-to-batch yang baik, melainkan rendah di

    sulfonamida, trimetoprim, dan inhibitor tetrasiklin, itu menghasilkan pertumbuhan yang

    memuaskan dari yang paling patogen bakteri, dan sejumlah besar data telah terkumpul

    mengenai uji kepekaan dilakukan dengan media ini. Jika batch media tidak mendukung

    pertumbuhan organisme yang memadai, ukuran zona akan lebih besar dan memberikan hasil

    yang palsu.

    The media agar harus memiliki pH 7,2-7,4 pada suhu kamar. Permukaan harus lembab

    tetapi tanpa tetesan air. The antibiotic disks harus dijaga di 8 C atau lebih rendah atau freeze

    pada -14 C atau di bawah sampai diperlukan, sesuai rekomendasi produsen. Biarkan disk

    untuk hangat untuk suhu kamar sebelum digunakan. Jangan gunakan disk kadaluarsa.

    Untuk standarisasi kepadatan inokulum, standar kekeruhan BaS04 digunakan (0,5 standar

    McFarland, approx. 10s organisme per mL).

    Langkah-langkah metode standar adalah sebagai berikut:

    a. Pilih setidaknya 4 sampai 5 koloni baik terisolasi dari jenis morfologi yang sama dari

    piring agar. Menyentuh bagian atas setiap koloni dengan loop kawat dan pertumbuhan

    transfer ke tabung berisi 4 hingga 5 mL medium kaldu yang sesuai, seperti kaldu tryptic-

    kedelai. Biarkan budaya kaldu untuk menetaskan pada 35 C sampai mencapai atau melebihi

    0,5 standar kekeruhan McFarland. Untuk uji kepekaan rutin, bagaimanapun, inokulum juga

    dapat dibuat dengan membuat salin langsung atau penangguhan kaldu dari koloni yang

    dipilih dari piring agar-agar 18 sampai 24-jam (nutrisi, agar-agar non-selektif seperti agar-

    agar piring darah harus digunakan).

    Sesuaikan kekeruhan dengan garam steril atau kaldu. Gunakan cahaya yang cukup, dan,untuk membantu dalam perbandingan visual, membaca tabung terhadap latar belakang putih

    dengan kontras hitam lines.

    Dalam waktu 15 menit setelah menyesuaikan kekeruhan dari suspensi inokulum, celupkan

    swab tidak beracun steril pada aplikator ke dalam suspensi disesuaikan. Memutar beberapa

    kali swab, menekan tegas pada dinding bagian dalam tabung di atas tingkat inokulum cairan

    untuk menghilangkan kelebihan dari swab.

    Menyuntik permukaan kering dari piring Muller-Hintonagar oleh goresan yang swab atas

    seluruh permukaan agar-agar steril. Ulangi prosedur ini dua kali lagi, dan memutar piring 60

    setiap kali untuk menjamin pemerataan inokulum. Ganti bagian atas piring danmemungkinkan 3 sampai 5 menit, tetapi tidak lebih dari 15 menit, untuk setiap kelebihan air

    http://eema-kharisma.blogspot.com/2011/05/sensibilitas-test-metode-kirby-bauer.htmlhttp://eema-kharisma.blogspot.com/2011/05/sensibilitas-test-metode-kirby-bauer.htmlhttp://eema-kharisma.blogspot.com/2011/05/sensibilitas-test-metode-kirby-bauer.htmlhttp://eema-kharisma.blogspot.com/2011/05/sensibilitas-test-metode-kirby-bauer.htmlhttp://eema-kharisma.blogspot.com/2011/05/sensibilitas-test-metode-kirby-bauer.htmlhttp://eema-kharisma.blogspot.com/search/label/bakteriologihttp://eema-kharisma.blogspot.com/search/label/bakteriologihttp://eema-kharisma.blogspot.com/search/label/bakteriologihttp://eema-kharisma.blogspot.com/search/label/bakteriologihttp://eema-kharisma.blogspot.com/2011/05/sensibilitas-test-metode-kirby-bauer.htmlhttp://eema-kharisma.blogspot.com/2011/05/sensibilitas-test-metode-kirby-bauer.html
  • 7/30/2019 Sensibilitas Test Metode Kirby

    2/3

    permukaan untuk diserap sebelum menerapkan disk antibiotik. Harus ada rumput hampir

    konfluen pertumbuhan bila dilakukan dengan benar. Jika hanya koloni tumbuh terisolasi,

    inokulum itu terlalu ringan dan pengujian harus diulang. Untuk menghindari ekstrem di

    kepadatan inokulum, tidak pernah menggunakan kultur murni kaldu semalam untuk melesat

    plates.

    Tempatkan disk yang sesuai merata (tidak lebih dekat dari 24 mm dari pusat ke pusat) pada

    permukaan agar-agar pelat baik dengan menggunakan forsep steril atau aparat pengeluaran.

    Tidak lebih dari 12 disk harus ditempatkan pada satu plat 150 mm atau lebih dari 5 disk di

    piring 100 mm. Sebuah disk tidak akan dipindahkan setelah telah datang di kontak dengan

    permukaan agar-agar karena beberapa senyawa berdifusi hampir instantaneously.

    Invert piring dan menempatkannya di dalam inkubator bersuhu 35 C dalam waktu 15

    menit setelah disk diterapkan. Pelat sebaiknya diinkubasi aerobik (C02 tidak). Setelah

    inkubasi 16-18 hrs.of, memeriksa setiap piring dan mengukur diameter dari zona hambatan

    yang lengkap, termasuk diameter disk. Ukur zona ke milimeter terdekat dengan

    menggunakan penggaris. koloni tumbuh besar dalam zona yang jelas hambatan harusdisubkultur, reidentified dan retested.

    Interpretasikan ukuran zona dengan mengacu pada produsen yang diberikan meja standar

    dan melaporkan organisme yang akan baik rentan, menengah, atau resisten. Jangan

    bandingkan ukuran zona dua antibiotik yang berbeda dan menilai efektivitas mereka sesuai.

    PERBEDAAN SENSIBILITAS TEST METODE KIRBY BAUER DAN

    METODE FLEMING

    22.34|

    KIRBY BAUWER

    Untuk 1 jenis Kuman

    Untuk biakan murni

    Untuk kuman patogen

    Jenis kumsn diketahui

    Suspensi bacteria harus sama dengan standar bauwerPembacaan hasil dari diameter zona tambahan

    Yang dimatikan kuman patogen

    Pasien sebagai kelinci percobaan

    Dapat menentukan sensitiv dan resisten

    Zona radikal

    FLEMING

    Lebih dari 1 jenis kuman

    Untuk biakan campuran

    Untuk bakteri patogen dan non patogen

    http://yuma-patarihan.blogspot.com/2012/05/perbedaan-sensibilitas-test-metode.htmlhttp://yuma-patarihan.blogspot.com/2012/05/perbedaan-sensibilitas-test-metode.htmlhttp://yuma-patarihan.blogspot.com/2012/05/perbedaan-sensibilitas-test-metode.htmlhttp://yuma-patarihan.blogspot.com/2012/05/perbedaan-sensibilitas-test-metode.htmlhttp://yuma-patarihan.blogspot.com/2012/05/perbedaan-sensibilitas-test-metode.htmlhttp://yuma-patarihan.blogspot.com/2012/05/perbedaan-sensibilitas-test-metode.htmlhttp://yuma-patarihan.blogspot.com/2012/05/perbedaan-sensibilitas-test-metode.htmlhttp://yuma-patarihan.blogspot.com/2012/05/perbedaan-sensibilitas-test-metode.html
  • 7/30/2019 Sensibilitas Test Metode Kirby

    3/3

    Jenis kuman tidak diketahui

    Suspensi bakteri tidak ditentukan

    Pembacaan hasil dari tepi disk ke zona tambahan

    Yang dimatikan kuman patogen dan non patogen

    Pasien sembuh total

    Tidak dapat menentukan resisten atau sensitiv karena tidak ada standarZona irradikal

    http://yuma-patarihan.blogspot.com/2012/05/perbedaan-sensibilitas-test-metode.html