Praktikum Kimia Produk Alam Jalur Sikimat

8/17/2019 Praktikum Kimia Produk Alam Jalur Sikimat

1/24

LAPORAN PRAKTIKUM

KIMIA PRODUK ALAM

JALUR SIKIMAT

Disusun Oleh:

Nama : Fera Maharani (FA/09636)

Sausanzahra A. (FA/09637)

Shella Syafira W. (FA/09638)

Golongan/Kelompok : BII/5

Tanggal Praktikum : Senin, 20 April 2015

LABORATORIUM KIMIA PRODUK ALAM

FAKULTAS FARMASI

UNIVERSITAS GADJAH MADA

2015


2/24

PERCOBAAN IV

JALUR SIKIMAT

I.

TUJUAN1. Mahasiswa diharapkan mampu memahami prinsip pemisahan dan identifikasi

senyawa dengan metode Kromatografi Lapis Tipis.

2. Mahasiswa mampu mengidentifikasi dan memisahkan senyawa-senyawa yang

dihasilkan dari jalur Sikimat dari suatu produk alam menggunakan teknik

Kromatografi Lapis Tipis.

II. ALAT DAN BAHAN

1. ALAT

a. Lempeng KLT

b.

Kertas Toyo

c.

Bejana KLT

d.

Sinar UV 254nm dan 366nm

e.

Kompor listrik

f.

Pipa kapiler

g.

Alat penyemprot

h.

Pinset

2. BAHAN

a.

Larutan pembanding

Sinamaldehid

Kumarin

Kurkuminoid

Kuersetin , Rutin

b. Larutan uji

Cinnamomum

Mengkudu

Temulawak

Ketela pohon

c. Fase gerak

Toluene : etil asetat (93:7)

Eter : toluene : asam asetat 10% (55:45:0,8)

Kloroform : methanol (98:2 v/v)

Asam asetat 30%

d.

Fase diam : silica gel F254 dan kertas Toyo No.51e. Pereaksi Semprot


3/24

Vanillin – asam sulfat

KOH 5% etanolik

Sitroborat

III.

CARA KERJA

Disiapkan larutan uji dan larutan pembanding (oleh laboran)

Dijenuhkan bejana (oleh laboran)

Disiapkan 3 plat KLT dan 1 kertas Toyo

Prosedur KLT:

Ditotolkan sebanyak 2 kali penotolan larutan uji dan 1 kali penotolan larutan

pembanding dengan pipa kapiler pada lempeng KLT (jarakpenotolan 1.0 cm

dari tepi bawah lempeng)

Ditotolkan sebanyak 3 kali penotolan larutan uji ( ketela pohon ) dan 1 kali

penotolan larutan pembanding pada kertas toyo

Dibiarkan sampai kering

Ditetapkan jarak rambat 5 cm dari t itik penotolan dan ditandai dengan pensil

pada tepi atas

Dimasukkan lempeng KLT dan kertas toyo pada bejana yang sudah dijenuhi

fase gerak dengan hati-hati

Disandarkan lempeng KLT dan kertas toyo pada dinding bejana hingga bagian

bawah lempeng tercelup fase gerak

Ditutup bejana dengan rapat dan dipastikan bahwa totolan tidak tercelup fase

gerak dan fase gerak bergerak keatas secara bersama-sama (membentuk garis

horizontal lurus)


4/24

Dibiarkan fase gerak bergerak keatas pada permukaan lempeng KLT dan

kertas Toyo hingga mencapai batas jarak rambat yang sudah ditetapkan

Dikeluarkan lempeng dan kertas Toyo dan dikeringkan di udara

Diamati bercak pada sinar tampak, sinar UV gelombang pendek (254nm), dan

sinar UV gelombang panjang (366nm)

Didokumentasikan dan dihitung harga Rf dari bercak-bercak senyawa hasil

pemisahan dan disbanding kan dengan senyawa pembanding

Plat KLT disemprot dengan pereaksi vanillin - asam sulfat (untuk sampel

sinamaidehid), KOH 5% etanolik (untuk sampel kumarin), dan sitroborat (

untuk samel flavonoid )

Dipanaskan sebentar di atas kompor listrik hingga Nampak bercak pada plat

KLT (sampel kumarin)

Diamati bercak pada sinar tampak dan sinar UV gelombang panjang (366nm)

Didokumentasikan dan dihitung harga Rf dari bercak-bercak senyawa hasil

pemisahan dan dibandingkan dengan senyawa pembanding.

IV. HASIL PERCOBAAN

1. Sampel : Cinnamomum Cortex

Pembanding : Sinamaldehid

Fase diam : Silica gel F 254

Fase gerak : Toluen – Etil asetat ( 93:7 )

Penotolan sampel : 2 kali penotolan

Jarak elusi : 5 cm

Deteksi : Vanilin – Asam sulfat


5/24

a. Sebelum disemprot

1) Sinar tampak 2) UV 254 3) UV 366

b. Setelah disemprot

1) Sinar tampak 2) UV 366

PSPS PS

PS S P


6/24

c. Tabel Rf

No.

Sebelum disemprot Setelah disemprot

Tampak UV 254 UV 366 Tampak UV 366

S P S P S P S P S P

a 0,48 0,78 0,56 0,08 0,7 0,6

b 0,42 0,32 0,36 0,34

c 0,12 0,18

d 0,1

e

f

g

Analisis:

Untuk menganalisa senyawa pada suatu sampel, perlu diamati harga Rf danwarna bercak sampel dan pembanding. Sampel dikatakan mengandung senyawa

pembanding apabila harga Rf dan warna bercaknya sama.

Berdasarkan hasil percobaan, pada semua perlakuan tidak terdapat harga Rf

dan warna yang sama antara sampel dengan pembanding. Dapat disimpulkan

bahwa sampel Cinnamomum Cortex tidak mengandung senyawa pembanding

sinamaldehid.

2. Sampel : Mengkudu

Pembanding : Kumarin

Fase diam : Silica gel F 254

Fase gerak : Eter : Toluen : Asam asetat 10% ( 55 : 45 : 0,8 )

Penotolan sampel : 2 kali

Jarak elusi : 5 cm

Deteksi : KOH 5% etanolik


7/24

PS




1)

Sinar tampak 2) UV 366

PS

PS

PS

PS


8/24


9/24

Tabel Rf

No. Tampak UV 254 UV 366

S P S P S P

a 0,96 0,05 0,96 0,5 0,96 0,5

b 0,84 0,82 0,82

c 0,5 0,5 0,5

d 0,24 0,34 0,26

e 0,1

f

g

Analisis:

Berdasarkan hasil percobaan, sampel temulawak disimpulkan mengandung

senyawa pembanding kurkumin karena memiliki harga Rf yang sama yaitu 0,5

dengan warna bercak yang sama (kuning) yang terlihat di bawah sinar UV 254 serta

harga Rf yang sama yaitu 0,5 dengan warna bercak biru yang terlihat di bawah sinar

UV 366.

4. Sampel : Ketela Pohon

Pembanding : Rutin, Kuersetin

Fase diam : Kertas Toyo No.51

Fase gerak : Asam asetat 30%Penotolan sampel : 2 kali penotolan

Jarak elusi : 8 cm

Deteksi : Sitroborat



PS PS PS


10/24


1) Sinar tampak 2) UV 366

Foto Pengamatan Plat KLT

1. Cinnamomum Cortex


Tampak UV 254 UV 366

PS PS


11/24


Tampak UV 366

2.

Mengkudu

a.

Sebelum disemprot



12/24


Tampak UV 366

3.

Temulawak



13/24

4. Ketela Pohon




Tampak UV 366


14/24

V. PEMBAHASAN

Percobaan ini bertujuan agar mahasiswa mampu memahami prinsip pemisahan dan

identifikasi senyawa dengan metode Kromatografi Lapis Tipis serta mengidentifikasi dan

memisahkan senyawa-senyawa yang dihasilkan dari jalur Sikimat dari suatu produk alam

menggunakan teknik Kromatografi Lapis Tipis.

Kromatografi Lapis Tipis (KLT) adalah prosedur analisis yang cukup sederhana,

cepat, dan murah sehingga dapat digunakan untuk mengetahui komponen dalam suatu

campuran dengan waktu yang relatif singkat. KLT juga dapat digunakan untuk

mendukung identitas senyawa dalam campuran ketika Rf senyawa dibandingkan dengan

Rf senyawa yang dikenal. Sebuah plat KLT biasanya dibuat dari lembaran kaca, logam,

atau plastic dengan ukuran tertentu dan permukaan yang rata yang dilapisi dengan fase

diam berupa lapisan tipis adsorben padat (biasanya silica atau alumina).

Pada Kromatografi Lapis Tipis, sampel yang akan dianalisis dilarutkan pada pelarut

yang sesuai kemudian sampel dan pembanding ditotolkan dalam bentuk titik atau pita

pada permukaan fase diam. Setelah penotolan, sebaiknya plat diamati di bawah sinar UV

untuk mengetahui apakah sampel dan pembanding yang ditotolkan sudah dapat diamati.

Plat KLT kemudian dicelupkan pada fase gerak di dalam chamber tertutup. Perlu

diperhatikan agar totolan sampel tidak ikut tercelup dalam fase gerak karena hal ini akan

menyebabkan sampel dan pembanding dapat terlarut pada fase gerak dan tidak terjadi

pemisahan. Fase gerak atau eluen perlahan-lahan akan bergerak ke atas plat KLT

mengikuti gaya kapiler hingga batas elusi yang telah ditentukan. Prinsip pemisahan

komponen pada teknik KLT didasarkan atas perbedaan kekuatan interaksi masing-masingkomponen dengan fase gerak dan fase diam. Suatu komponen yang kepolarannya lebih

sama dengan fase diam akan berinteraksi lebih kuat dengan fase diam sehingga memiliki

kecepatan migrasi yang lebih lambat. Akibatnya, jarak migrasi senyawa tersebut lebih

pendek. Jika kepolaran komponen lebih sama dengan fase gerak, komponen tersebut akan

lebih kuat interaksinya dengan fase gerak sehingga lebih mudah terbawa dan

menghasilkan kecepatan migrasi yang lebih cepat serta jarak migrasi yang lebih panjang.

Ketika fase gerak telah mencapai batas yang ditentukan, plat diangkat dari ruang elusidasi

kemudian diangin-anginkan sebentar di udara. Senyawa hasil identifikasi divisualisasikan

dengan detector yang sesuai (UV, sinar tampak, pereaksi kimia). Jika senyawa merupakan

senyawa yang berwarna, visualisasi cukup dilakukan dengan sinar tampak. Namun

kebanyakan senyawa organik yang diidentifikasi merupakan senyawa tidak berwarna,

sehingga perlu dilakukan visualisasi lebih lanjut dengan menggunakan lampu UV baik

pada gelombang pendek maupun gelombang panjang.

Pada percobaan ini, senyawa yang digunakan sebagai sampel adalah golongan

senyawa jalur sikimat yaitu Cinnamomum Cortex, mengkudu, temulawak, dan ketela

pohon. Senyawa pembanding untuk sampel Cinnamomum Cortex yaitu sinamaldehid

(suatu fenilpropanoid), untuk sampel mengkudu yaitu kumarin (suatu fenilpropanoid),

untuk temulawak yaitu kurkumin (metabolit sekunder dari jalur kombinasi fenilpropandengan poliketida), dan untuk ketela pohon yaitu kuersetin dan rutin (suatu flavonoid)


15/24

Metode pemisahan yang dapat digunakan pada teknik KLT diantaranya adalah

metode pemisahan secara adsorpsi dan partisi. Pada metode pemisahan secara partisi

digunakan campuran fase gerak yang salah satunya adalah air. Air akan melapisi

permukaan fase diam, sehingga senyawa pada sampel akan terpartisi pada fase gerakmaupun fase diam. Sedangkan metode yang digunakan pada percobaan ini adalah metode

pemisahan secara adsorpsi di mana senyawa pada sampel akan teradsorpsi oleh fase diam

yaitu silica gel F 254.

Pada percobaan ini digunakan tiga buah plat silica gel F254 untuk ketiga sampel yaitu

Cinnamomum Cortex, mengkudu, dan temulawak. Sedangkan elusi sampel ketela pohon

menggunakan kertas Toyo No.51. Masing-masing plat dan kertas toyo ditandai

titik/tempat totolan serta batas akhir elusi. Untuk sampel Cinnamomum Cortex,

temulawak, dan mengkudu, jarak elusi yang digunakan yaitu 5 cm sedangkan untuk

ketela pohon digunakan jarak elusi 8 cm.

Setelah penyiapan plat, masing-masing sampel dan pembanding ditotolkan pada

masing-masing plat. Sampel ditotolkan sebanyak tiga kali penotolan sedangkan

pembanding satu kali penotolan. Tiap kali penotolan sampel, ditunggu hingga penotolan

sebelumnya kering terlebih dahulu, baru dilakukan penotolan selanjutnya. Penotolan yang

dilakukan sebaiknya menghasilkan titik yang sekecil mungkin agar bercak tidak melebar.

Pelebaran bercak dapat menyebabkan pelebaran puncak sehingga dapat mengurangi

derajat pemisahan. Selain itu, bercak yang melebar lebih memungkinkan terjadinya

overlap antarpuncak sehingga menghasilkan pemisahan dengan resolusi yang rendah.Setelah penotolan sampel, bercak pada plat diamati di bawah sinar UV 254 dan 366 nm

untuk mengetahui apakah bercak sudah dapat diamati. Pada percobaan ini pembanding

kumarin tidak terlihat bercaknya sehingga dilakukan penotolan pembanding kumarin

kembali pada plat.

Setelah semua sampel dan pembanding ditotolkan, plat dimasukkan ke dalam bejana

berisi fase gerak untuk dilakukan proses elusi. Pada percobaan ini fase gerak yang

digunakan untuk mengelusi sampel Cinnamomum Cortex yaitu campuran toluene:etil

asetat (93:7), untuk sampel mengkudu yaitu eter:toluene:etil asetat (55:45:0,8), untuk

sampel temulawak yaitu kloroform:methanol (98:2 v/v), serta untuk sampel ketela pohon

digunakan fase gerak asam asetat 30%. Campuran fase gerak yang digunakan pada

percobaan ini menggunakan dominasi fase gerak nonpolar karena pada teknik

kromatografi dengan KLT pada umumnya menggunakan metode normal phase yang

berarti digunakan fase diam polar dan fase gerak nonpolar. Adanya perbedaan kepolaran

kedua fase memungkinkan terjadinya pemisahan komponen-komponen yang terdapat

pada sampel yang dianalisis.

Sebelum digunakan untuk proses elusi, bejana KLT terlebih dahulu dijenuhkan

dengan uap fase gerak. Hal ini bertujuan untuk menyamakan tekanan uap pada masing-

masing bagian pada bejana sehingga fase gerak dapat mengelusi bercak sampel secara


16/24

bersama-sama. Hal ini dapat ditandai dengan melihat arah gerak eluen yang membentuk

garis horizontal pada plat KLT. Jika arah gerak eluen bergelombang maka kecepatan fase

gerak dalam mengelusi bercak tidak sama sehingga akan menghasilkan jarak migrasi fase

gerak yang berbeda pula. Penjenuhan dilakukan dengan cara meletakkan kertas saring

dengan posisi disandarkan pada dinding dalam bejana kemudian bejana ditutup rapat.Bejana dikatakan telah jenuh oleh uap fase gerak apabila kertas saring telah terbasahi

seluruhnya oleh fase gerak. Pada percobaan ini penjenuhan bejana dilakukan oleh

laboran.

Pemasukan plat KLT maupun kertas Toyo pada bejana harus dilakukan dengan

segera. Bejana yang terbuka terlalu lama dapat menjadi tidak lagi jenuh oleh uap eluen,

sehingga bejana harus segera ditutup kembali. Plat dimasukkan secara hati-hati dan

bercak tidak boleh tercelup ke dalam fase gerak karena akan menyebabkan terlarutnya

senyawa sampel dan pembanding pada fase gerak sehingga pemisahan tidak dapat terjadi

dengan baik. Setelah plat dimasukkan ke dalam bejana dan bejana telah ditutup, ditunggu

proses elusi hingga mencapai batas yang telah ditandai. Elusi yang terjadi adalah elusi

menaik. Eluen bergerak ke atas karena adanya gaya kapiler. Eluen bergerak pada plat dan

membentuk ikatan dengan senyawa pada bercak yang mulanya berikatan dengan fase

diam. Maka senyawa yang kepolarannya lebih mirip dengan fase gerak akan terlepas

ikatannya dengan fase diam sehingga lebih mudah terelusi oleh fase gerak. Dengan cara

inilah pemisahan antarsenyawa dapat terjadi.

Setelah fase gerak mencapai batas elusi, plat diambil dan dikeringkan di udara. Pada

proses menunggu plat kering ini ternyata elusi sampel ketela pohon pada plat masih berlanjut meskipun sudah dikeluarkan dari eluen, hal ini dikarenakan plat KLT yang

digunakan merupakan kertas sehingga eluen tidak langsung kering dan masih terjadi

elusi. Oleh karena itu jarak elusi menjadi lebih dari batas, yang mana menjadikan

perhitungan Rf mengikuti jarak elusi yang baru yaitu 8.5 cm.

Setelah plat kering, diamati bercak yang terjadi pada sinar tampak, sinar UV 254 dan

UV 366. Dari percobaan yang telah dilakukan, pengamatan dengan sinar tampak

didapatkan hasil yaitu tidak terlihat adanya bercak sampel maupun pembanding pada plat

yang mengandung sampel Cinnamomum Cortex. Namun bercak sampel terlihat jelas

pada sampel temulawak yang kebanyakan berwarna kuning. Pada sampel mengkudu,

hanya terlihat satu bercak sampel sedangkan bercak pembanding sama sekali tidak

terlihat. Sedangkan pada sampel ketela pohon hanya terlihat bercak memanjang yang

berwarna coklat pada sampel. Untuk meningkatkan kemampuan visualisasi serta

mendapatkan informasi tentang warna bercak, dilakukan juga pengamatan plat di bawah

sinar UV 366 dan 254 nm yang dimaksudkan agar dapat menampakan senyawa sebagai

bercak yang berwarna gelap (UV 254 nm) dan untuk menampakkan bercak yang

berfluorosensi sehingga pada pengamatan terlihat bercak berpendar (UV 366 nm).

Keuntungan menggunakan sinar UV untuk memvisualisasikan bercak adalah sinar UV

tidak merusak senyawa yang dideteksi. Dengan cara ini bercak-bercak sampel

Cinnamomum Cortex dan mengkudu yang semula tidak terlihat mulai nampak di bawah


17/24

sinar UV. Sedangkan pada ketela pohon yang terlihat hanya bercak memanjang pada

sampel berwarna biru. Bercak memanjang ini menandakan terjadinya tailing karena

konsentrasi senyawa sampel yang terlalu banyak. Dengan pengamatan di bawah sinar UV

254 dan 366, bercak sampel daapat terlihat lebih banyak namun pada plat Cinnamomum

Cortex, mengkudu, dan ketela pohon, bercak pembanding tidak muncul. Tidak terlihatnya bercak pembanding ini diindikasikan karena eluen yang digunakan kurang tepat sehingga

tidak dapat membuat bercak terlihat.

Setelah masing-masing plat diamati, dicatat jarak migrasi masing-masing bercak

untuk keperluan mencari nilai Rf. Kemudian visualisasi dilanjutkan dengan jalan

mereaksikan senyawa-senyawa pada plat dengan pereaksi semprot yang khas untuk

masing-masing senyawa. Pereaksi semprot untuk sampel Cinnamomum Cortex yaitu

vanillin-asam sulfat. Pereaksi penampak vanillin-asam sulfat LP akan membentuk bercak

biru, violet biru, atau kadang-kadang kekuningan bila diamati pada sinar biasa. (Anonim,

1987). Pereaksi semprot yang digunakan untuk sampel mengkudu yaitu KOH etanolik

5%. Bila kumarin dibuat alkalis dengan adanya KOH, maka cincin lakton akan terbuka

dan terbentuk anion asam kumarinat kemudian terjadi siklisasi menjadi lakton. Dengan

adanya sinar UV, maka anion asam kumarinat akan mengalami isomerisasi menjadi

bentuk trans yaitu asam-o-kumarat. Bercak dengan adanya asam-o-kumarat terlihat

berfluoresensi hijau, hijau biru, kuning, atau coklat di bawah sinar UV 366. (Machek,

1972). Sedangkan sampel temulawak tidak diberi perlakuan dengan pereaksi semprot

karena bercak sudah terlihat jelas tanpa perlakuan tambahan.

Pada sampel mengkudu setelah disemprot dengan pereaksi KOH etanolik 5%, platdipanaskan sebentar di atas kompor listrik. Hal ini bertujuan untuk mempercepat proses

reaksi antara senyawa pada sampel dengan senyawa pereaksi sehingga bercak lebih cepat

terbentuk dan menghasilkan warna yang lebih jelas. Namun plat tidak boleh kontak

langsung dengan sumber api karena akan menyebabkan rusaknya senyawa.

Sedangkan sampel ketela pohon pada kertas Toyo disemprot menggunakan sitroborat lalu

dipanaskan juga di atas kompor listrik.

Setelah diberi perlakuan dengan pereaksi semprot, masing-masing plat kembali

diamati pada sinar tampak serta di bawah sinar UV 366. Hasil percobaan yang diperoleh

yaitu bercak yang terjadi pada plat semakin banyak. Namun pada sampel ketela pohon,

pada pengamatan dengan sinar tampak yang terlihat masih sama, yaitu bercak memanjang

sampel namun dengan warna bercak berubah menjadi kuning. Sedangkan pada

pengamatan di bawah sinar UV 366 nm bercak sampel dan pembanding terlihat

semuanya. Pada pengamatan terlihat berkas pembanding quersetin berada di bawah,

sampel berada di tengah dan rutin berada di atas. Perbedaan letak pembanding ini

dikarenakan memiliki kepolaran yang berbeda antara satu senyawa dengan senyawa lain.

Pada flavonoid, terdapat bagian gula dan non gula yang merupakan dasar perbedaan

kepolaran. Senyawa gula ini merupakan quercetin yang memiliki kepolaran besar

sehingga elusinya tertahan leh fase diam sehingga hasilnya berada di bawah. Sedangkan


18/24

Rutin yang merupakan bagian non gula merupakan senyawa non polar sehingga elusinya

berjalan cepat dan berada di atas.

Setelah pengamatan, dilakukan perhitungan terhadap jarak migrasi masing-masing

bercak kemudian dibandingkan dengan jarak migrasi fase gerak, sehingga didapatkannilai Rf. Nilai Rf sampel yang diperoleh kemudian dibandingkan dengan nilai Rf

pembanding untuk mengetahui apakah sampel mengandung senyawa pembanding.

Apabila harga Rf sampel dan pembanding sama, dapat dikatakan bahwa kedua senyawa

tersebut memiliki kepolaran yang sama, sehingga memiliki kekuatan interaksi yang sama

dengan fase diam dan fase gerak, namun belum dapat disimpulkan bahwa sampel

mengandung senyawa pembanding. Sampel dikatakan mengandung senyawa pembanding

apabila warna bercak sampel dan pembanding sama pada harga Rf yang sama. Harga Rf

bukan merupakan konstanta fisik karena akan berubah sesuai kondisi percobaan. Hasil

percobaan yang diperoleh, sampel Cinnamomum Cortex dan mengkudu disimpulkan

tidak mengandung senyawa pembanding karena tidak terdapat harga Rf dan warna bercak

yang sama antara senyawa sampel dengan senyawa pembanding pada semua perlakuan.

Sedangkan sampel temulawak disimpulkan mengandung senyawa pembanding kurkumin

karena memiliki warna bercak yang sama dengan pembanding yaitu kuning pada harga Rf

yang sama yaitu 0,5 yang diamati di bawah sinar UV 254. Selain itu teramati juga warna

bercak yang sama antara sampel dengan pembanding yaitu warna biru pada harga Rf

yang sama yaitu 0,5 yang dilihat di bawah sinar UV 366. Sedangkan harga Rf pada ketela

pohon tidak dapat dicari karena terjadinya tailing pada proses elusi. Karena tidak dapat

dihitung nilai Rf, perbandingan antara sampel dan pembanding didasarkan pada warna

bercak yang sama dan letak bercak. Dimana di sini terlihat sampel memiliki kesamaanwarna bercak dan letak bercak bila dibandingkan dengan pembanding.

Hasil percobaan kemudian dibandingkan dengan literatur. Berdasarkan literatur,

sampel Cinnamomum Cortex seharusnya mengandung sinamaldehid. Cinnamomum

Cortex adalah simplisia kulit batang dari spesies tumbuhan Cinnamomum (family

Lauraceae) yang memiliki kandungan antara lain 2-hidroksil sinamaldehid, kumarin,

sinamaldehid, serta 2-metoksi sinamaldehid. (Zhongguo Z and Yao Za Zhi, 2012)

Struktur sinamaldehid:

Cinnamomum dalam bidang farmasi digunakan sebagai antibakteri, antidiabetik,

antifungi, antioksidan, antirematik, antitrombotik, serta memiliki aktivitas antitumor. (Al-

Dhubiab, 2012)


19/24

Sedangkan sampel mengkudu seharusnya mengandung kumarin. Senyawa yang

terkandung di dalam mengkudu atau Morinda citrifolia ( family Rubiaceae) antara lain

glikosida, polisakarida, alkaloid, lignin, ester asam lemak, antrakuinon, scopoletin (suatu

kumarin), morindin, vitamin, serta mineral. Mengkudu memiliki aktivitas antioksidan

dengan melawan radikal bebas, mencegah kerusakan oksidatif pada biomolekul mayorserta memiliki proteksi melawan kerusakan oksidatif. (Srinivasahan and Durairaj, 2014)

Struktur scopolamine:

Temulawak berdasarkan literatur mengandung kurkumin. Temulawak (Curcuma

xantorrhiza) termasuk ke dalam famili Zingiberaceae memiliki kandungan senyawa

antara lain kurkumin, demetoksikurkumin, serta bisdemetoksikurkumin yang berefek

sebagai antioksidan serta memiliki aktivitas inhibisi kuat terhadap copper-mediated

oxidation of LDL. (Jantan and Buang, 2012)

Struktur kurkumin:

Ketela pohon berdasarkan literatur mengandung senyawa rutin maupun kuersetin.

Rutin adalah flavonoid yang ditemukan di buah dan sayuran tertentu. Rutin digunakan

untuk mencegah efek samping dari pengobatan kanker yaitu mucositis. Sedangkan

quersetin adalah bioflavanoid yang dapat ditemukan di sayur dan buah. Seperti banyak

bioflavanoid, quercetin memiliki kandungan antioksidan, antiarterogenik dan

antikarsinogenik. Quercetin juga merupaan neuroctive, dengan kemampuan sama seperti

kafein namun lebih tidak poten. Quercetin dipercaya dapat melindungi tubuh dari

beberapa jenis peyakit degenerative dengan cara menjegah terjadinya proses peroksidasi

lemak. Quersetin uga memperlihatkan kemampuan mencegah oksidasi dari LDL (Low

Density Lipoproteins) dengan cara menangkap radikal bebas dan menghelat ion logam

transisi.

Dari percobaan yang telah dilakukan, hasil yang sesuai teori hanya sampel temulawak

serta ketela pohon sedangkan sampel Cinnamomum Cortex dan mengkudu tidak sesuai

teori. Hasil yang tidak sesuai teori kemungkinan besar disebabkan oleh kesalahan dalam


20/24

pengamatan bercak karena warna bercak tidak cukup tegas dan sulit diamati dengan teliti.

Penyebab lain kemungkinan karena penotolan sampel yang kurang tepat serta

penyemprotan pereaksi warna yang belum sempurna sehingga ikatan antara gugus pada

sampel dengan pereaksi warna belum terbentuk dengan sempurna dan menyebabkan

visualisasi tidak maksimal.

VI. KESIMPULAN

1.

Dari hasil percobaan, sampel Cinnamomum Cortex tidak mengandung senyawa

pembanding sinamaldehid dan sampel mengkudu tidak mengandung senyawa

pembanding kumarin. Hasil tidak sesuai teori.

2. Sampel temulawak mengandung senyawa pembanding kurkumin karena memiliki

warna bercak yang sama dengan senyawa pembanding yaitu kuning di bawah

sinar UV 254 serta warna biru di bawah sinar UV 366 pada harga Rf yang samayaitu 0,5. Hasil sesuai teori.

3. Sampel ketela pohon mengandung senyawa flavonoid yaitu quercetin dan rutin.

Hasil sesuai teori.

4.

Terjadinya tailing pada deteksi kertas Toyo yang berisi sampel ketela pohon

karena penotolan yang terlalu banyak sehingga konsentrasi sampel terlalu besar.

5. Metode pemisahan yang digunakan pada percobaan ini adalah pemisahan secara

adsorpsi.

VII.

DAFTAR PUSTAKA

Al-Dhubiab, B.E., 2012, Pharmaceutical Applications and Phytochemical Profile

of Cinnamomum burmanii,

http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC3459454/, diakses 25 April

2015.

Anonim, 2015, RUTIN, http://www.webmd.com, diakses 25 April 2015.

Anonym, 2015, Quercetine, http://www.examine.com, diakses 25 April 2015.

Jantan, I., Fhataheya Buang, 2012, Correlation Between Chemical Composition of

Curcuma domestica and Curcuma xantorrhiza and Their Antioxidant

Effect on Human Low-Density Lipoprotein Oxidation, Drug and Herbal

Research Center University Kebangsaan Malaysia, Kuala Lumpur.

Srinivasahan, V., Brindha Durairaj, 2014, Antioxidant and Free Radical

Scavenging and Effect of Morinda citrifolia Fruit Extract, Departemen of

Biochemistry PSG College of Arts Science, Tamil Nadu.

http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC3459454/http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC3459454/http://www.webmd.com/http://www.webmd.com/http://www.webmd.com/http://www.webmd.com/http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC3459454/


21/24

Zhongguo, Z., Yao Za Zhi, 2012, Study on Fingerprints of Chemical Constituents

of Cinnamomi Ramulus and Cinnamomi Cortex,

http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/23270234, diakses 25 April 2015.

Yogyakarta, 26 April 2015

Praktikan

Fera Maharani (09636)

Sausanzahra A. (09637)

Shella Syafira W. (09638)

http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/23270234http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/23270234http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/23270234


22/24

JAWABAN PERTANYAAN

1.

Gambarkan struktur kimia pembanding yang digunakan dalam praktikum ini

Jawab:

(Sinamaldehid)

(kurkumin)

(Rutin)


23/24

(quersetin)

(Kumarin)

2. Carilah masing-masing 2 contoh simplisia yang mengandung lignan dan fenilpropan

sederhana beserta struktur kimianya

a.

Fenilpropan sederhana

- Myristicae Semen (kandungan: miristisin)

(Miristisin)

- Apium graveolens Folium (kandungan: psoralen)

(Psoralen)


24/24

b. Lignan

-

Podophyllii Rhizoma (kandungan: Podophyllotoxin)

(Podophyllotoxin)

- Cucumidis Semen (kandungan: pinoresinol)

(Pinoresinol)

Praktikum Kimia Produk Alam Jalur Sikimat

Documents

Transcript of Praktikum Kimia Produk Alam Jalur Sikimat