Praktikum Kimia Produk Alam Jalur Asetat Malonat

8/17/2019 Praktikum Kimia Produk Alam Jalur Asetat Malonat

1/17

LAPORAN PRAKTIKUM KIMIA PRODUK ALAM

PERCOBAAN II

JALUR ASETAT-MALONAT

Disusun Oleh:

Golongan BII/Kelompok 5

Fera Maharani (FA/09636)

Sausanzahra Angganisaputri (FA/09637)

Shella Syafira Wijayanti (FA/09638)

Asisten Jaga : Mbak Asri

Mbak Prawita

LABORATORIUM KIMIA PRODUK ALAM

FAKULTAS FARMASI

UNIVERSITAS GADJAH MADA

2015


2/17

PERCOBAAN II

JALUR ASETAT-MALONAT

I.

Tujuan1.

Mahasiswa diharapkan mampu memahami prinsip pemisahan dan identifikasi

senyawa dengan metode Kromatografi Lapis Tipis.

2.

Mahasiswa diharapkan mampu memisahkan dan mengidentifikasi golongan

senyawa-senyawa metabolit sekunder yang dihasilkan dari jalur asetat-malonat

dengan teknik Kromatografi Lapis Tipis.

II.

Alat dan bahan

1.

Alat

a.

Lempeng KLT

b.

Bejana KLT

c.

Sinar UV 254nm dan 366nm

d.

Pipa kapiler

e.

Alat penyemprot

f.

Pinset

2.

Bahan

a.

Larutan pembanding:

-

Antron

-

Istizin b.

Larutan uji:

-

Getah Aloe vera

-

Rhei Radix

c.

Fase gerak:

-

Etil Asetat:Methanol:Aquadest (100:13.5:10)

-

Toluene:Etil Asetat:Methanol (5:1.5:3.5)

d. Fase diam: Silica gel F254

e. Uap amonia

f.

KOH etanolik 10%

III. CARA KERJA

1. Prosedur penyiapan larutan sampel

Dimasukkan masing-masing 0.3 gram serbuk Rhei Radix dan Getah Aloe vera

ke dalam dua tabung reaksi yang berbeda

Masing-masing simplisia diekstraksi dengan 2 mL methanol

Dipanaskan di waterbath selama 5 menit, disaring


3/17

Masing-masing filtrat yang terbentuk dibagi menjadi dua bagian (bagian I pada

tabung reaksi dan bagian II pada cawan porselen)

Filtrat bagian I dihidrolisis sedangkan filtrat bagian II ditotolkan pada plat

(ditandai sebagai sampel Non Hidrolisis)

2. Prosedur Hidrolisis

Filtrat Aloe vera dan Rhei Radix pada tabung reaksi diuapkan sisa pelarutnya

hingga tinggal ± 0,5 mL

Dimasukkan ke dalam tabung reaksi

Ditambahkan 3 mL HCl 1N

Diletakkan corong kaca pada lubang tabung dan lubang corong ditutup dengan

kapas basah

Dihidrolisis selama 20 menit pada waterbath

Ditambahkan 2 ml etil asetat, digojog

Dipindah fase etil asetat (fase atas) ke dalam cawan porselen

Ditambahkan 2 ml etil asetat pada fase bawah, digojog

Dipindah fase etil asetat ke dalam cawan porselen yang sama

Ditandai sebagai sampel Hidrolisis

3.

Prosedur KLT

Dilakukan penjenuhan bejana/chamber berisi fase gerak (oleh laboran)

Disiapkan dua plat KLT untuk sampel Hidrolisis dan Non Hidrolisis

Masing-masing plat ditotolkan larutan pembanding yaitu antron (dua totolan)

dan istizin (dua totolan) pada titik yang sama menggunakan pipa kapiler

Ditotolkan masing-masing larutan uji sebanyak 4 kali penotolan menggunakan

pipa kapiler (jarak penotolan 1.0 cm dari tepi bawah lempeng)

Dibiarkan sampai kering

Ditetapkan jarak rambat 5 cm dari titik penotolan dan ditandai dengan pensil

pada tepi atas


4/17

Dicek bercak di bawah sinar UV 254 nm

Dimasukkan kedua lempeng KLT pada bejana masing-masing yang sudah

dijenuhi fase gerak dengan hati-hati

Disandarkan lempeng KLT pada dinding bejana hingga bagian bawah lempeng

tercelup fase gerak

Ditutup bejana dengan rapat dan dipastikan bahwa totolan tidak tercelup fase

gerak dan fase gerak bergerak keatas secara bersama-sama (membentuk garis

horizontal lurus)

Dibiarkan fase gerak bergerak keatas pada permukaan lempeng hingga mencapai

batas jarak rambat yang sudah ditetapkan

Dikeluarkan lempeng dan dikeringkan di udara

Diamati bercak pada sinar tampak, sinar UV 254nm, dan sinar UV 366nm

Didokumentasikan dan dihitung harga Rf dari bercak-bercak senyawa hasil

pemisahan dan dibandingkan dengan senyawa pembanding

Kedua plat KLT diuapi dengan ammonia

Diamati bercak pada sinar tampak dan sinar UV 366 nm



Kedua plat KLT disemprot dengan pereaksi KOH etanolik 10%

Diamati bercak pada sinar tampak dan sinar UV 366 nm




5/17

IV. HASIL PERCOBAAN

1. Sampel Non Hidrolisis

a. Getah Aloe vera

b. Rhei Radix

Fase diam : Silica gel F 254

Fase gerak : Etil asetat:Methanol:Aquadest (100:13.5:10)

Penotolan sampel : 4 kali

Jarak elusi : 5 cm

Deteksi : Uap ammonia dan KOH etanolik 10%

a. Sebelum disemprot

1. Sinar tampak 2. UV 254nm 3. UV 366nm

b. Setelah disemprot

1. Uap Amonia

Sinar Tampak Sinar UV 366 nm

P RAA RP P RA

P RA P RA


6/17

2. KOH Etanolik 10%


2.

Sampel Hidrolisis

a.

Getah Aloe vera

b.

Rhei Radix

Fase diam : Silica gel F 254

Fase gerak : Toluen:Etil Asetat:Methanol (5:1.5:3.5)

Penotolan sampel : 4 kali

Jarak elusi : 5 cm

Deteksi : Uap ammonia dan KOH etanolik 10%

a.

Sebelum Disemprot

1. Sinar Tampak 2. Sinar UV 254 nm 3. Sinar UV 366 nm

P RA P RA

P RA P RA P RA


7/17

b. Setelah Disemprot

1. Uap Ammonia


2.

KOH Etanolik 10%


P RA P RA

P RA P RA


8/17

Tabel Rf

1. Non Hidrolisis

No Sebelum disemprot

Tampak UV 254 UV 366

P A R P A R P A R

A 0.96 0.96 0.96 0.18 0.96 0.96 0.96 0.96

B 0.6 0.6 0.5 0.8

C 0.4 0.5 0.7

D 0.18 0.4 0.6

E 0.3 0.5

F 0.18 0.18

No

Setelah diberi uap amonia

Tampak UV 366 nm

P A R P A R

A 0.96 0.96 0.96 0.96 0.96

B 0.6 0.76

C 0.46 0.7

D 0.18 0.6

E 0.4

F

No

Setelah disemprot KOH Etanolik 10%

Tampak UV 366 nm

P A R P A R

A 0.96 0.96 0.96 0.96 0.96 0.96

B 0.6 0.5 0.9

C 0.4 0.8

D 0.2 0.74

E 0.7

F 0.6

G 0.5

H 0.4

I 0.18


9/17

2. Hidrolisis

No Sebelum disemprot

Tampak UV 254 UV 366

P A R P A R P A R

A 0.96 0.96 0.96 0.96 0.96 0.96 0.96 0.96

B 0.6 0.92

No

Setelah diberi uap amonia

Tampak UV 366 nm

P A R P A R

A 0.96 0.96 0.96 0.96 0.96

B 0.72 0.92

C 0.72

No

Setelah disemprot KOH Etanolik 10%

Tampak UV 366 nm

P A R P A R

A 0.96 0.96 0.96 0.96 0.96

B 0.72 0.72 0.72

C 0.5

D 0.24

Analisis:

Untuk menganalisa senyawa pada suatu sampel, perlu diamati harga Rf dan

warna bercak sampel dan pembanding. Sampel dikatakan mengandung senyawa

pembanding apabila harga Rf dan warna bercaknya sama.

Berdasarkan praktikum yang telah dilakukan didapatkan hasil bahwa Rhei

Radix (Non Hidrolisis) diduga mengandung senyawa pembanding yaitu Antron

karena harga Rf sama (0.96) dan warna bercak sama (kuning) yang terlihat pada

sinar tampak, sinar UV 254 nm, dan UV 366 nm sebelum disemprot serta pada

sinar tampak dan sinar UV 366 nm setelah diberi perlakuan dengan uap ammonia.Getah Aloe vera (Hidrolisis) diduga mengandung senyawa pembanding yaitu

Antron karena memiliki harga Rf yang sama (0.96) serta warna bercak yang sama

(biru) yang dapat diamati pada sinar UV 254 nm sebelum disemprot.


10/17

Foto hasil pengamatan:

1. Sampel non hidrolisis


Sinar tampak UV 254 nm

UV 366 nm

b.

Setelah disemprot

i.

Uap ammonia



11/17

ii. KOH etanolik


2. Sampel hidrolisis



b.

Setelah disemprot

i.

Uap ammonia

UV 366 nm


12/17

ii. KOH etanolik


V. PEMBAHASAN

Percobaan ini bertujuan untuk mengidentifikasi senyawa – senyawa yang

dihasilkan dari jalur asetat-malonat dari suatu produk alam menggunakan teknik

Kromatografi Lapis Tipis. Kandungan senyawa yang akan diidentifikasi pada

praktikum ini adalah Aloin dan Emodin.

Kromatografi Lapis Tipis (KLT) adalah prosedur analisis yang teknik

pengerjaannya cukup sederhana, cepat, dan murah sehingga memberikan ahli

kimia jawaban yang cepat tentang berapa banyak komponen dalam suatu

campuran sampel yang dianalisis.

KLT juga dapat digunakan untuk mendukung identitas senyawa dalam

campuran ketika Rf senyawa dibandingkan dengan Rf senyawa yang dikenal.

Sebuah plat KLT biasanya dibuat dari lembaran kaca, logam, atau plastic dengan

ukuran tertentu dan permukaan yang rata yang dilapisi dengan fase diam berupa

lapisan tipis adsorben padat (biasanya silica atau alumina).

Pada Kromatografi Lapis Tipis, sampel yang akan dianalisis dilarutkan pada

pelarut yang sesuai kemudian sampel dan pembanding ditotolkan dalam bentuk

titik atau pita pada permukaan fase diam. Setelah penotolan, sebaiknya plat

diamati di bawah sinar UV untuk mengetahui apakah sampel dan pembanding

yang ditotolkan sudah dapat diampati. Plat KLT kemudian dicelupkan pada fase

gerak di dalam chamber tertutup. Perlu diperhatikan agar totolan sampel tidak ikut

tercelup dalam fase gerak karena hal ini akan menyebabkan sampel dan

pembanding dapat terlarut pada fase gerak dan tidak terjadi pemisahan. Fase gerak

atau eluen perlahan-lahan akan bergerak ke atas plat KLT mengikuti gaya kapiler

hingga batas elusi yang telah ditentukan. Prinsip pemisahan komponen pada

teknik KLT didasarkan atas perbedaan kekuatan interaksi masing-masing

komponen dengan fase gerak dan fase diam. Suatu komponen yang kepolarannya

lebih sama dengan fase diam akan berinteraksi lebih kuat dengan fase diam

sehingga memiliki kecepatan migrasi yang lebih lambat. Akibatnya, jarak migrasisenyawa tersebut lebih pendek. Jika kepolaran komponen lebih sama dengan fase


13/17

gerak, komponen tersebut akan lebih kuat interaksinya dengan fase gerak

sehingga lebih mudah terbawa dan menghasilkan kecepatan migrasi yang lebih

cepat serta jarak migrasi yang lebih panjang. Ketika fase gerak telah mencapai

batas yang ditentukan, plat diangkat dari ruang elusidasi kemudian diangin-

anginkan sebentar di udara. Senyawa hasil identifikasi divisualisasikan dengandetector yang sesuai (UV, sinar tampak, pereaksi kimia). Jika senyawa merupakan

senyawa yang berwarna, visualisasi cukup dilakukan dengan sinar tampak.

Namun kebanyakan senyawa organik yang diidentifikasi merupakan senyawa

tidak berwarna, sehingga perlu dilakukan visualisasi lebih lanjut dengan

menggunakan lampu UV baik pada gelombang pendek maupun gelombang

panjang.

Pengamatan di bawah sinar UV gelombang pendek (254 nm) dan gelombang

panjang (366 nm) dimaksudkan agar dapat menampakan senyawa sebagai bercak

yang berwarna gelap (UV 254 nm) dan untuk menampakkan bercak yang

berfluorosensi sehingga pada pengamatan terlihat bercak berpendar (UV 366 nm).

Keuntungan menggunakan sinar UV untuk memvisualisasikan bercak adalah sinar

UV tidak merusak senyawa yang dideteksi. Cara pemvisualisasian dengan

penyemprotan menggunakan asam sulfat dan pemanasan dilakukan untuk

mengoksidasi senyawa-senyawa organik yang tampak sebagai bercak hitam

kecoklatan. Adanya warna hitam kecoklatan menunjukkan adanya senyawa

organik pada sampel.

Dalam teknik KLT, perbandingan jarak rambat bercak senyawa sampel

terhadap jarak rambat fase gerak diukur dari titik penotolan dinyatakan sebagai

Rf. Identifikasi senyawa diamati dengan menghitung dan membandingkan hargaRf antara senyawa pembanding dan senyawa sampel. Jika harga Rf senyawa

sampel sama dengan harga Rf senyawa pembanding, artinya senyawa sampel dan

pembanding memiliki kepolaran yang mirip, namun bukan berarti bahwa sampel

mengandung senyawa pembanding. Sampel dikatakan mengandung senyawa

pembanding apabila baik harga Rf maupun warna bercaknya sama. Harga Rf

bukan merupakan konstanta fisik karena akan berubah sesuai dengan kondisi

percobaan.

Pada percobaan ini, senyawa yang digunakan sebagai sampel adalah golongan

senyawa jalur metabolit asam malonat yaitu getah Aloe vera dan Rhei radix

( Rheum officinalum). Untuk senyawa pembanding digunakan campuran antron-

istizin yang dilarutkan dalam etanol.

Aloe vera adalah anggota famili Aloaceae dengan kandungan utama asam

amino, antrakinon, enzim, mineral, vitamin, lignin, monosakarida, polisakarida,

saponin san sterol. Antrakinon penting yang terkandung dalam Aloe vera adalah

aloin dan emodin. Aloe vera memiliki aktivitas antifungi, antiinflamasi, antikanker

serta immunomodulator (Gupta and Maholtra, 2012)

Rhei radix adalah anggota family Polygonaceae dengan kandungan utama

glikosida antrakinon yaitu emodin, physcion, aloe-emodin, khrisofanol, rheinosida

A-D serta sennosida A-F. Rhei Radix memiliki sifat utama yaitu sebagai laxative


14/17

agent sehingga pada bidang farmasi sering digunakan untuk pengobatan

konstipasi jangka pendek. (Anonim, 2008)

Praktikan diberi dua buah plat KLT yang dilapisi silica gel F 254 sebagai fase

diam. Kedua plat telah diberi tanda 1 cm dari dasar plat sebagai titik awal

penotolan. Sebelum dilakukan penotolan larutan pembanding dan sampel, diberi

tanda pada titik yang berjarak 5 cm dari titik awal penotolan sebagai titik batas

elusi.

Selanjutnya itu dilakukan penyiapan sampel yang akan diidentifikasi. Larutan

sampel yang dibuat adalah getah Aloe vera dan serbuk Rhei Radix yang

diekstraksi dengan methanol dan dipanaskan di waterbath selama 5 menit.

Metanol digunakan sebagai pelarut karena metanol merupakan pelarut polar

sehingga glikosida antrakuinon akan tersari atau tertarik ke dalam methanol

karena glikosida antrakinon juga bersifat polar. Kemudian filtrat dibagi menjadi

dua, bagian pertama akan dilakukan proses hidrolisis asam sebelum ditotolkan pada plat KLT sedangkan bagian lainnya akan dijadikan sebagai sampel non

hidrolisis (langsung ditotolkan). Hidrolisis sampel dengan asam ini dilakukan

untuk memecah ikatan glikosidik sehingga aglikon dan glikon terpisah.

Proses hidrolisis sampel dilakukan dengan menguapkan pelarut kemudian

sampel yang telah diuapkan pelarutnya dimasukkan ke dalam tabung reaksi dan

ditambahkan 3 ml HCL 1 N kemudian ditutup dengan corong kaca dan kapas

basah untuk dilakukan proses hidrolisis dengan waterbath selama 20 menit.

Selanjutnya dilakukan partisi hasil dengan 2 ml etil asetat sebanyak 2 kali. Bagian

aglikon yang telah terpisah dari gula setelah dihidrolisis berada pada fase etil

asetat yang akan digunakan untuk proses kromatografi. Pada uji secara non

hidrolisis, ekstrak yang diperoleh langsung ditotolkan pada plat KLT.

Setelah semua sampel siap, masing-masing plat ditotolkan sampel. Satu plat

untuk sampel hidrolisis dan yang satu lagi untuk sampel non hidrolisis. Pada dua

plat ini pembanding yang digunakan sama yaitu antron dan istizin. Sampel

ditotolkan sebanyak empat kali. Untuk pembanding cara penotolannya adalah

antron ditotolkan dua kali, setelah itu istizin dua kali. Tiap kali penotolan harus

ditunggu kering sebelum dilakukan penotolan selanjutnya. Penotolan yang

dilakukan harus menghasilkan titik yang sekecil mungkin agar bercak yang terjadi

tidak melebar sehingga tidak mengurangi derajat pemisahan. Setelah penotolan

selesai dilakukan, plat KLT dimasukkan ke dalam bejana yang telah dijenuhi oleh

fase gerak. Bejana harus jenuh agar homogenitas tekanan uap di dalam bejana

sama sehingga kecepatan migrasi fase gerak pada saat elusi akan sama. Jika

kecepatan fase gerak sama, maka kecepatan senyawa ketika elusi pada masing –

masing plat akan sama. Memasukkan plat KLT ke dalam fase gerak harus

dilakukan dengan segera dan hati-hati agar fase gerak tidak menguap dan agar

bejana tetap jenuh oleh uap fase gerak. Setelah itu dibiarkan agar fase gerak

bergerak ke atas plat hingga batas yang ditentukan.

Setelah fase gerak mencapai batas elusi, plat KLT segera diambil dandikeringkan di udara. Plat KLT kemudian diamati dengan sinar tampak, sinar UV


15/17

254 nm dan UV 366 nm. Selanjutnya plat KLT diberi uap ammonia lalu diamati

lagi pada sinar tampak dan UV 366 nm. Kemudian visualisasi dilanjutkan dengan

penyemprotan KOH-Etanolik 10% dan kembali dilakukan pengamatan dibawah

sinar tampak serta UV 366 nm. Bercak yang tidak tervisualisasikan dapat lebih

jelas terlihat setelah diberi perlakuan dengan reagen penampak bercak. Dengan penyemprotan, distribusi pereaksi penampak bercak akan terbentuk secara lebih

homogen dan tidak terlalu tebal. Berikut adalah analisis praktikan setelah

dilakukan pengamatan terhadap sampel:

1. Sampel non hidrolisis

Pada pengamatan setelah penotolan sampel, teramati bahwa sampel

Rhei Radix dan pembanding memiliki warna dan harga Rf yang sama pada

pengamatan di bawah sinar tampak, UV 254 nm dan UV 366 nm. Warna

bercak kuning dengan harga Rf 0.96. Untuk sampel Aloe vera pada

pengamatan di bawah sinar UV 366 nm terlihat harga Rf sama denganharga Rf pembanding yaitu 0.96 namun memiliki warna bercak yang

berbeda.

Seteleh dilakukan visualisasi sampel dengan uap ammonia, hasil yang

teramati masih sama yaitu warna bercak kuning dengan Rf 0.96 sama

seperti pembanding untuk sampel Rhei radix dan harga Rf sama 0.96

namun berbeda warna bercak untuk sampel Aloe vera.

Selanjutnya dilakukan visusalisasi sampel dengan penyemprotan

KOH-Etanolik 10% dan terlihat bahwa sampel Rhei radix dan pembanding

memiliki harga Rf yang sama namun berbeda warna bercak pada

pengamatan di bawah sinar tampak. Pada pengamatan di bawah UV 366

nm kedua sampel, baik Aloe vera maupun Rhei radix memiliki harga Rf

sama seperti pembanding namun warna bercaknya berbeda.

Dari hasil ini dapat dilakukan analisis sementara bahwa Rhei radix

mengandung senyawa pembanding karena memiliki harga Rf yang sama

dan warna bercak yang sama pula. Senyawa pembanding yang diduga

terdapat dalam sampel Rhei Radix adalah antron. Pada percobaan ini,

bercak istizin tidak terlihat namun kepolaran istizin lebih besar

dibandingkan antron sehingga pada kromatografi normal antron memiliki

harga Rf yang lebih besar dibanding istizin. Atas dasar itu dapat

disimpulkan bahwa bercak senyawa pembanding yang terjadi adalah

bercak senyawa antron (Rf=0.96). Selain itu, ketika disamakan dengan

literatur, diketahui bahwa sampel Rhei Radix memang mengandung

senyawa antron. Hasil ini sesuai teori.

2. Sampel hidrolisis

Pada pengamatan setelah penotolan sampel, teramati bahwa sampel

Rhei Radix dan pembanding memiliki warna dan harga Rf yang sama pada

pengamatan di bawah sinar tampak, UV 254 nm dan UV 366 nm. Warna bercak kuning, biru dan merah dengan harga Rf 0.96. Untuk sampel Aloe


16/17

vera pada pengamatan di bawah sinar UV 254 nm terlihat harga Rf sama

dengan harga Rf pembanding yaitu 0.96 dan memiliki warna bercak yang

sama yaitu biru.

Seteleh dilakukan visualisasi sampel dengan uap ammonia, hasil yang

teramati hampir sama yaitu warna bercak kuning dengan Rf 0.96 samaseperti pembanding untuk sampel Rhei radix dan harga Rf sama 0.96

namun berbeda warna bercak untuk sampel Aloe vera.

Selanjutnya dilakukan visusalisasi sampel dengan penyemprotan

KOH-Etanolik 10% dan terlihat bahwa sampel Rhei radix dan pembanding

memiliki harga Rf yang sama yaitu 0.96. Aloe vera memiliki warna bercak

yang berbeda dengan pembanding namun harga Rfnya sama.

Dari hasil ini dapat diketahui analisis sementara bahwa Rhei radix dan

Aloe vera mengandung senyawa pembanding karena memiliki harga Rf

yang sama dan warna bercak yang sama pula. Senyawa pembanding yang

diduga terdapat dalam sampel Rhei Radix dan getah Aloe vera adalah

antron. Pada percobaan ini, bercak istizin juga tidak terlihat namun

kepolaran istizin lebih besar dibandingkan antron sehingga pada

kromatografi normal antron memiliki harga Rf yang lebih besar dibanding

istizin karena antron (yang lebih nonpolar) memiliki ikatan yang lemah

dengan silica gel yang polar, sehingga antron lebih mudah terbawa oleh

fase diam dibandingkan istizin yang lebih polar. Atas dasar itu

kemungkinan bercak senyawa pembanding yang terjadi adalah bercak

senyawa antron (Rf=0.96). Ketika disamakan dengan literatur, diketahui

bahwa sampel Rhei radix dan Aloe vera memang mengandung senyawaantron. Hasil percobaan yang didapatkan sesuai teori.

VI. KESIMPULAN

1. Getah Aloe vera menunjukkan warna bercak dan harga Rf yang sama dengan

pembanding pada identifikasi sampel hidrolisis. Hal ini menunjukkan bahwa

Aloe vera mengandung senyawa pembanding antron. Hasil ini sesuai teori.

2. Rhei Radix menunjukkan warna bercak dan harga Rf yang sama dengan

pembanding pada identifikasi sampel hidrolisis dan non hidrolisis. Hal ini

menunjukkan bahwa Rhei Radix mengandung senyawa pembanding antron.

Hasil ini sesuai teori.

VII.

DAFTAR PUSTAKA

Anonim, 2008, Assessment Report of Rhubarb (Rhei Radix),

http://www.ema.europa.eu/docs/en_GB/document_library/Herbal_-

_HMPC_assessment_report/2009/12/WC500018404.pdf, diakses 29

Maret 2015.

Anonim, 2015, Thin Layer Chromatography Information,

http://orgchem.colorado.edu/Technique/Procedures/TLC/TLC.html,

diakses 13 Maret 2015.

Baldwin, G., 2015, Aloe Vera,

http://localhost/var/www/apps/conversion/tmp/scratch_4/.ema.europa.eu/docs/en_GB/document_library/Herbal_-_HMPC_assehttp://localhost/var/www/apps/conversion/tmp/scratch_4/.ema.europa.eu/docs/en_GB/document_library/Herbal_-_HMPC_assehttp://localhost/var/www/apps/conversion/tmp/scratch_4/.ema.europa.eu/docs/en_GB/document_library/Herbal_-_HMPC_assehttp://orgchem.colorado.edu/Technique/Procedures/TLC/TLC.htmlhttp://orgchem.colorado.edu/Technique/Procedures/TLC/TLC.htmlhttp://localhost/var/www/apps/conversion/tmp/scratch_4/.ema.europa.eu/docs/en_GB/document_library/Herbal_-_HMPC_assehttp://localhost/var/www/apps/conversion/tmp/scratch_4/.ema.europa.eu/docs/en_GB/document_library/Herbal_-_HMPC_asse


17/17

http://www.herballegacy.com/Baldwin_Chemical.html, diakses 29 Maret

2015.

Vinay, K.G, Seema Malhotra, 2012, Pharmacological attribute of Aloe vera:

Revalidation through experimental and clinical studies,

http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC3611630/, diakses 29Maret 2015.

Yogyakarta, 29 Maret 2015

Praktikan,Fera Maharani (FA/09636)

Sausanzahra A. (FA/09637)

Shella Syafira W. (FA/09638)
http://www.herballegacy.com/Baldwin_Chemical.htmlhttp://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC3611630/http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC3611630/http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC3611630/http://www.herballegacy.com/Baldwin_Chemical.html

Praktikum Kimia Produk Alam Jalur Asetat Malonat

Documents

Transcript of Praktikum Kimia Produk Alam Jalur Asetat Malonat