MANAJEMEN PERTUMBUHAN KULTUR MIKROALGA LAUT ... … · laporan praktek kerja magang program studi...
66
MANAJEMEN PERTUMBUHAN KULTUR MIKROALGA LAUT Nannochloropsis oculata SKALA LABORATORIUM, DAN INTERMEDIATE DI BALAI PERIKANAN BUDIDAYA AIR PAYAU (BPBAP) SITUBONDO LAPORAN PRAKTEK KERJA MAGANG PROGRAM STUDI MANAJEMEN SUMBERDAYA PERAIRAN JURUSAN MANAJEMEN SUMBERDAYA PERAIRAN Oleh : NICO RAHMAN CAESAR NIM. 125080101111030 FAKULTAS PERIKANAN DAN ILMU KELAUTAN UNIVERSITAS BRAWIJAYA MALANG 2015
Transcript of MANAJEMEN PERTUMBUHAN KULTUR MIKROALGA LAUT ... … · laporan praktek kerja magang program studi...
MANAJEMEN PERTUMBUHAN KULTUR MIKROALGA LAUT Nannochloropsis oculata SKALA LABORATORIUM, DAN INTERMEDIATE DI
BALAI PERIKANAN BUDIDAYA AIR PAYAU (BPBAP) SITUBONDO
LAPORAN PRAKTEK KERJA MAGANG PROGRAM STUDI MANAJEMEN SUMBERDAYA PERAIRAN
JURUSAN MANAJEMEN SUMBERDAYA PERAIRAN
Oleh :
NICO RAHMAN CAESAR NIM. 125080101111030
FAKULTAS PERIKANAN DAN ILMU KELAUTAN UNIVERSITAS BRAWIJAYA
MALANG 2015
ii
PRAKTEK KERJA MAGANG
MANAJEMEN PERTUMBUHAN KULTUR MIKROALGA LAUT Nannochloropsis oculata SKALA LABORATORIUM DAN INTERMEDIATE DI
BALAI PERIKANAN BUDIDAYA AIR PAYAU (BPBAP) SITUBONDO
Oleh :
NICO RAHMAN CAESAR 125080101111030
telah dipertahankan didepan penguji pada tanggal 22 Oktober 2015
dan dinyatakan telah memenuhi syarat
SK Dekan No. :
Tanggal :
Menyetujui,
Dosen Pembimbing, Dosen Penguji,
(Dr. Uun Yanuhar, S.Pi, M,Si) (Prof. Dr. Ir. Diana Arfiati, MS) NIP. 19730404 200212 2 001 NIP. 19591230 198503 2 002
Tanggal : Tanggal :
Menyetujui,
Ketua Jurusan
(Dr. Ir. Arning Wilujeng Ekawati, MS) NIP. 19620805 198603 2 001
Tanggal :
iii
RINGKASAN
NICO RAHMAN CAESAR. Praktek Kerja Magang tentang Manajemen Pertumbuhan Kulur Mikroalga Laut Nannochloropsis oculata Skala Laboratorium dan Intermediate di Balai Perikanan Budidaya Air Payau (BPBAP) Situbondo, Jawa Timur ( dibawah bimbingan Dr. Uun Yanuhar, S.Pi., M.Si).
Mikroalga merupakan komponen penting dalam akuakultur, karena mikroalga sebagai produsen primer berfungsi sebagai awal aliran energi dalam rantai makanan di perairan. Pemanfaatan mikroalga sebagai pakan alami belum dapat digantikan oleh pakan buatan pada beberapa ikan laut atau udang yang baru menetas. Mikroalga mengandung enzim pencernaan yang sangat dibutuhkan untuk stadia larva ikan dikarenakan pada saluran pencernaannya belum sempurna (masih berbentuk tabung) dan belum dilengkapi atau kandungan enzim pencernaan masih sangat sedikit, enzim ini tidak dipunyai oleh makanan buatan. Nannochloropsis oculata merupakan salah satu jenis dari mikroalga yang telah banyak dibudidayakan dan digunakan sebagai pakan alami dalam usaha budidaya.
Tujuan yang ingin dicapai dari Praktek Kerja Magang (PKM) ini adalah untuk meningkatkan pengetahuan, ketrampilan dan pengalaman kerja magang dalam bidang perikanan serta mengetahui pertumbuhan dan kultur N. occulata di Balai Perikanan Budidaya Air Payau (BPBAP) Situbondo serta faktor – faktor yang mendukung. Praktek Kerja Magang (PKM) ini dilaksanakan pada tanggal 22 Juli – 4 September 2015. Metode yang digunakan dalam PKM ini adalah metode deskriptif. Metode deskriptif yaitu metode yang digunkan untuk mencari unsur-unsur, ciri-ciri, sifat-sifat suatu fenomena. Metode ini dimulai dengan teknik pengumpulan data meliputi, data primer dan data sekunder. Pengumpulan data dilakukan dengan cara observasi lapangan, wawancara, partisipasi langsung serta dari studi literatur. Proses kultur mikroalga yang dilakukan melalui tiga tahap meliputi kultur laboratorium, semi-masal (intermediate), dan kultur massal. Kultur laboratorium ialah kultur mikroalga mulai dari agar, test tube, Erlenmeyer, dan carboy. Tahapan selanjutnya adalah kultur semi massal atau intermediate yaitu kultur pada bak 100 liter dan Kultur conicel 500 liter – 1 ton. Hasi pengukuran kualitas air pada kultur skala laboratorium diperoleh nilai suhu sebesar 22ºC, pH 8 dan salinitas 33 ppt, sedangkan pada kultur skala intermediet diperoleh nilai suhu sebesar 26-29ºC, pH 8-8,5 dan salinitas 34-35 ppt. Kualitas air yang digunakan selama kultur tersebut, berada pada kisaran optimal untuk pertumbuhan N. oculata. Hasil perhitungan kepadatan sel N. oculata tertinggi pada kultur Erlenmeyer menggunakan aerasi adalah 728 x 104 sel/ml. Kepadatan tertinggi pada kultur Carboy adalah 772 x 104 sel/ml. Dan kepadatan tertinggi pada kultur Bak Fiber adalah 260 x 104 sel/ml. Kesimpulan dari Praktek Kerja Magang ini adalah kultur Nannochloropsis oculata di bagi menjadi 2 proses yaitu kultur skala laboratorium dan intermediate. Serta parameter pendukung pertumbuhan Nannochloropsis oculata meliputi suhu, pH, dan salinitas. Saran yang dapat diberikan yaitu perlunya inovasi dalam pemanfaatan ruang kultur agar ruang yang ada dapat dimanfaatkan secara efektif dan efisien.
iv
PERNYATAAN TELAH MELAKUKAN PKM
v
KATA PENGANTAR
Segala puji kehadiran Allah SWT, atas segala limpahan rahmat dan karunia-
Nya serta salam tetap tercurahkan kepada junjungan Nabi Muhammad SAW,
sehingga penulis dapat menyelesaikan laporan Praktek Kerja Magang tentang
Manajemen Pertumbuhan Kultur Mikroalga Laut Nannochloropsis oculata
Skala Laboratorium, Dan Intermediate Di Balai Perikanan Budidaya Air Payau
(BPBAP) Situbondo, sebagai salah satu syarat untuk meraih gelar sarjana
perikanan di Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan, Universitas Brawijaya.
Penulis mengucapkan terimakasih kepada semua pihak yang telah
membantu proses penyusunan laporan Praktek Kerja Magang ini. Penulis menyadari
bahwa laporan Praktek Kerja Magang ini terdapat kekurangan dan kesalahan yang
disebabkan oleh keterbatasan penulis. Maka dari itu kritik, saran dan masukan dari
semua pihak sangat penulis harapkan untuk menyempurnakan laporan Praktek
Kerja Magang ini.
Malang, 22 Oktober 2015
penulis
vi
DAFTAR ISI
HALAMAN PENGESAHAN ..................................................................................... ii
RINGKASAN ........................................................................................................... iii
PERNYATAAN TELAH MELAKUKAN PKM .......................................................... iv
KATA PENGANTAR ................................................................................................ v
DAFTAR ISI ............................................................................................................ vi
DAFTAR TABEL ................................................................................................... viii
DAFTAR GAMBAR ................................................................................................. ix
DAFTAR LAMPIRAN ............................................................................................... x
1. PENDAHULUAN ............................................................................................... 1 1.1 Latar Belakang ............................................................................................... 1 1.2 Maksud dan Tujuan ........................................................................................ 2 1.3 Manfaat ........................................................................................................... 3 1.4 Waktu dan Tempat .......................................................................................... 3
2. MATERI DAN METODE PRAKTEK KERJA MAGANG .................................... 4 2.1 Materi Praktek Kerja Magang .......................................................................... 4 2.2 Alat dan Bahan ................................................................................................ 4
2.2.1 Alat ........................................................................................................... 4 2.2.2 Bahan ....................................................................................................... 4
2.3 Metode Praktek Kerja Magang ........................................................................ 5 2.3.1 Sumber Data ............................................................................................. 5 2.3.2 Teknik Pengambilan Data ......................................................................... 6
2.4 Prosedur Praktek Kerja Magang ...................................................................... 7 2.4.1 Kultur Laboratorium .................................................................................. 7 2.4.2 Kultur Intermediate.................................................................................... 9 2.4.3 Perhitungan Kelimpahan Sel ..................................................................... 9 2.4.4 Pengukuran Kualitas Air ......................................................................... 10
3. KEADAAN UMUM LOKASI PKM ................................................................... 12 3.1 Keadaan Umum Lokasi Praktek Kerja Magang ............................................ 12
3.1.1 Sejarah Berdirinya BPBAP Situbondo .................................................... 12 3.1.2 Letak Geografis dan Topografi ............................................................... 13 3.1.3 Strukur Organisasi dan Tenaga Kerja .................................................... 14
3.2 Sarana dan Prasarana Budidaya Pakan Alami ............................................. 17 3.2.1 Sarana ................................................................................................... 17 3.2.2 Prasarana .............................................................................................. 20
3.3 Kegiatan Kultur di Laboraturium Pakan Alami BPBAP Situbondo ................. 21
vii
4. HASIL DAN PEMBAHASAN ........................................................................... 23 4.1 Biologi Nannochloropsis oculata .................................................................... 23
4.1.1 Klasifikasi dan Morfologi Nannochloropsis oculata .................................. 23 4.1.2 Pertumbuhan Nannochloropsis oculata .................................................. 24
4.2 Teknik Kultur Nannochloropsis oculata .......................................................... 26 4.2.1 Kultur Nannochloropsis oculata Skala Laboratorium .............................. 26 4.2.2 Kultur Nannochloropsis oculata Skala Intermediate ............................... 34 4.2.3 Pemanenan ........................................................................................... 38
4.3 Analisis Kualitas Air ...................................................................................... 39 4.3.1 Suhu ...................................................................................................... 39 4.3.2 Derajat Keasaman (pH) ........................................................................ 39 4.3.3 Salinitas ................................................................................................. 40
4.4 Kepadatan Nannochloropsis oculata ............................................................ 40 4.5 Permasalahan yang Dihadapi....................................................................... 46
5. KESIMPULAN DAN SARAN ............................................................................. 48 5.1 Kesimpulan .................................................................................................. 48 5.2 Saran ........................................................................................................... 48
DAFTAR PUSTAKA ............................................................................................... 49
LAMPIRAN ............................................................................................................. 52
viii
DAFTAR TABEL
Tabel Halaman
1. Tenaga Kerja BPBAP Situbondo Tahun 2014 ..................................................... 16
2. Bahan Pupuk Walne untuk Skala Laboratorium. ................................................. 34
3. Bahan pupuk Walne untuk Skala Intermediate.................................................... 37
4. Tabel Kepadatan Nannochloropsis oculata yang dikultur .................................... 43
ix
DAFTAR GAMBAR
Gambar Halaman
1. Papan BPBAP Situbondo sesuai Kepmen tahun 2001 ........................................ 13
2. Tandon Air Laut .................................................................................................. 18
3. Blower mini untuk Lab. ........................................................................................ 20
4. Nannochloropsis oculata (Sumber : Baharuddin, 2011) ...................................... 24
5. Kurva Pertumbuhan Mikroalga (Sumber: Prabowo, 2009) .................................. 25
6. Alat – Alat yang sudah di sterilisasi ..................................................................... 27
7. Autoclave ............................................................................................................ 28
8. Kultur Nannochloropsis oculata dalam Erlenmeyer menggunakan aerasi ...... 30
9. Kultur pada Carboy. ............................................................................................ 32
10. Kultur Nannochloropsis oculata skala Intermediate ........................................... 36
11. Proses Penganginan Endapan Nannochloropsis oculata: (a) Pengolesan pada
Plastik, (b) serpihan Nannochloropsis oculata kering. ...................................... 39
12. Grafik Pertumbuhan Nannochloropsis oculata skala Erlenmeyer. ..................... 44
13. Grafik Pertumbuhan Nannochloropsis oculata skala Carboy. ............................ 45
14. Grafik Pertumbuhan Nannochloropsis oculata skala Intermediate. ................... 46
x
DAFTAR LAMPIRAN
Lampiran Halaman
1. Struktur Organisasi BPBAP Situbondo ............................................................... 52
2. Dokumentasi Kegiatan ........................................................................................ 53
3. Alat dan Fungsi ................................................................................................... 55
4. Bahan dan Fungsi ............................................................................................... 57
1. PENDAHULUAN
1.1 Latar Belakang
Mikroalga merupakan komponen penting dalam akuakultur, karena
mikroalga sebagai produsen primer berfungsi sebagai awal aliran energi dalam
rantai makanan di perairan. Hal ini menjadikan semua bentuk kehidupan hayati
sangat bergantung kepada mikroalga. Pemanfaatan mikroalga sebagai pakan
alami belum dapat digantikan oleh pakan buatan pada beberapa ikan laut atau
udang yang baru menetas. Mikroalga mengandung enzim pencernaan yang
sangat dibutuhkan untuk stadia larva ikan dikarenakan pada saluran
pencernaannya belum sempurna (masih berbentuk tabung) dan belum dilengkapi
atau kandungan enzim pencernaan masih sangat sedikit, enzim ini tidak dipunyai
oleh makanan buatan (Cahyaningsih dan Subyakto,2009).
Nannochloropsis oculata merupakan salah satu jenis dari mikroalga yang
telah banyak dibudidayakan dan digunakan sebagai pakan alami dalam usaha
budidaya. N. oculata merupakan sel berwarna kehijauan, tidak motil, dan tidak
berflagela. Selnya berbentuk bola berukuran sedang dengan diameter 2-4 μm,
tergantung spesiesnya, dengan khloroplas berbentuk cangkir. N. oculata
melimpah di sepanjang pantai dan estuari di atas zona fotik dengan konsentrasi
102-104 sel/cm3 (Hu and Gao, 2003). Fitoplankton ini dapat tumbuh baik pada
kisaran pH 7-9 tetapi tumbuh rendah pada pH 10,08 (Elzenga et al.,2000).
N. occulata sendiri mengandung karbohidrat, protein, beta karoten, lipid
dan klorofil. Kandungan klorofil dan lipid dapat menjadi parameter pertumbuhan
dalam menentukan biomassa mikroalga. Salah satu faktor yang dapat
mempengaruhi biomassa mikroalga adalah komposisi media kultur. Menurut
Sriharti dan Carolina (1995), konsentrasi nitrogen dan fosfat yang terdapat dalam
media dapat mempengaruhi kandungan lipid pada mikroalga, sedangkan
2
konsentrasi besi (Fe) dan magnesium (Mg) dapat mempengaruhi pembentukan
klorofil mikroalga. Kandungan nutrien yang berbeda pada media dapat
memberikan pengaruh yang berbeda terhadap kandungan sel mikroalga tertentu.
Proses kultur mikroalga dapat dilakukan melalui tiga tahap meliputi kultur
laboratorium, semi-masal (intermediate), dan kultur massal. Kultur laboratorium
ialah kulutr mikroalga mulai dari agar, test tube, Erlenmeyer, dan carboy.
Tahapan selanjutnya adalah kultur semi massal atau intermediate yaitu kultur
pada bak 100 liter dan Kultur conicel 500 liter – 1 ton. Kultur massal merupakan
kultur didapatkan dari kultur bertingkat sejak dari agar, test tube, Erlenmeyer,
carboy dan intermediate. Kultur massal dilakukan pada bak atau kolam ukuran 4-
5 ton (BPBAP Situbondo, 2014).
Untuk menyediakan makanan alami dalam jumlah yang cukup, tepat
waktu dan berkesinambungan, pengetahuan tentang manajemen kultur
fitoplankton yang baik mutlak diketahui oleh mereka yang bergerak di bidang
usaha perikanan baik dalam skala besar maupun kecil. Mengingat pentingnya
pakan alami tersebut sebagai salah satu faktor penentu keberhasilan usaha
pembenihan ikan dan udang, maka penulis berpendapat perlu dilakukan
pengamatan kultur fitoplankton N. oculata secara intensif untuk memperkaya
pengetahuan dalam rangka sumbangsih ilmu pengetahuan di bidang perikanan.
1.2 Maksud dan Tujuan
Maksud dari pelaksanaan Praktik Kerja Magang ini adalah untuk
mengetahui secara langsung teknik kultur mikroalga N. oculata pada skala
laboratorium, intermediate dan massal di BPBAP Situbondo., serta memadukan
teori yang didapat pada perkuliahan dengan fakta yang ada di lapang.
Tujuan yang ingin dicapai dari Praktik Kerja Magang (PKM) ini adalah
untuk meningkatkan pengetahuan, ketrampilan dan pengalaman kerja magang
3
dalam bidang perikanan serta mengetahui pertumbuhan dan kultur N. occulata di
Balai Perikanan Budidaya Air Payau (BPBAP) Situbondo serta faktor – faktor
yang mendukung.
1.3 Manfaat
Manfaat yang diharapkan saat melaksanakan Praktik Kerja Magang
tentang Pertumbuhan Kultur Mikroalga Laut N. oculata Skala Laboratorium,
Intermediate Dan Massal Di Balai Perikanan Budidaya Air Payau (BPBAP)
Situbondo ini antara lain:
1. Menambah pengetahuan, wawasan dan pengalaman secara
langsung tentang pertumbuhan dan kultur N. occulata.
2. Mengaplikasikan mata kuliah terkait yang diperoleh selama
perkuliahan tentang pertumbuhan dan kultur N. occulata.
3. Sebagai bahan informasi dan pengetahuan yang dapat
menunjang penelitian lebih lanjut tentang kultur N. occulata.
1.4 Waktu dan Tempat
Kegiatan Praktek Kerja Magang ini dilaksanakan pada tanggal 22 Juli
sampai 4 September tahun 2015 yang berlokasi di Balai Perikanan Budidaya Air
Payau (BPBAP) Situbondo, Jawa Timur.
2. MATERI DAN METODE PRAKTEK KERJA MAGANG
2.1 Materi Praktek Kerja Magang
Materi Praktek Kerja Magang tentang Pertumbuhan Kultur Mikroalga Laut
Nannochloropsis oculata Skala Laboratorium, dan Intermediate di Balai
Perikanan Budidaya Air Payau (BPBAP) Situbondo diantaranya yang dipelajari
meliputi persiapan media, kultur mikroalga, pemupukan dan pemeliharaan,
pemanenan, dan pengukuran kualitas air, meliputi parameter fisika, kima dan
parameter biologi sebagai factor pendukung.
2.2 Alat dan Bahan
Alat dan Bahan yang digunakan pada Praktek Kerja Magang di Balai
Perikanan Budidaya Air Payau dapat dilihat di bawah ini.
2.2.1 Alat
Alat-alat yang digunakan dalam Praktik Kerja Magang adalah karet
penghisap, pipet kapiler, erlenmeyer, toples kaca, carboy, bak fiber, oven,
autoclave, timbangan, selang aerasi, batu aerasi, haemocytometer, mikroskop,
blender, pipa, filter bag, kompor gas, keranjang, panic, gayung, jerigen, kain,
saringan, alumunium foil, plastic, sikat, schoring bag, nampan, gelas ukur, drum,
lampu, dan AC.
2.2.2 Bahan
Bahan-bahan yang digunakan dalam Praktik Kerja Magang adalah air laut, air
tawar, Phytoplankton, pupuk walne, soda api, aquades, vitamin, Na-thiosulfat,
chlorin test, detergen, kaporit, alcohol, dan HCL.
5
2.3 Metode Praktek Kerja Magang
Metode yang digunakan dalam Praktek Kerja Magang ini adalah metode
deskriptif, yang bermaksud untuk membuat gambaran (deskriptif) mengenai
situasi kejadian - kejadian. Metode deskriptif yaitu metode yang digunkan untuk
mencari unsur-unsur, ciri-ciri, sifat-sifat suatu fenomena. Metode ini dimulai
dengan mengumpulkan data, menganalisis data dan menginterprestasikannya.
Metode deskriptif dalam pelaksanaannya dilakukan melalui: teknik survey, studi
kasus (bedakan dengan suatu kasus), studi komparatif, studi tentang waktu dan
gerak, analisis tingkah laku, dan analisis dokumenter (Suryana, 2010).
2.3.1 Sumber Data
Data yang dikumpulkan dalam Praktek Kerja Magang ini ialah terdiri dari
data primer dan data sekunder. Data primer dan data sekunder merupakan
pengelompokan data berdasarkan sumber data.
2.3.1.1 Data Primer
Data primer adalah data yang diperoleh atau dikumpulkan oleh peneliti
secara langsung dari sumber data utama. Data primer disebut juga sebagai data
asli atau data baru yang memiliki sifat up to date. Untuk mendapatkan data
primer, peneliti harus mengumpulkannya secara langsung. Teknik yang dapat
digunakan peneliti untuk mengumpulkan data primer antara lain observasi,
wawancara, dan penyebaran kuesioner (Aedi, 2010). Data primer pada Praktek
Kerja Magang ini didapat melalui observasi, wawancara, partisipasi aktif dan
dokumentasi.
2.3.1.2 Data Sekunder
Data sekunder adalah data yang telah lebih dulu dikumpulkan dan
dilaporkan oleh orang diluar dari penyidik sendiri, walaupun yang dikumpulkan itu
6
sesungguhnya adalah data yang asli (Surakhmad, 2004). Data sekunder dalam
Praktek Kerja Magang ini didapatkan dari laporan, jurnal, majalah, Laporan PKL
dan PKM/Skripsi, situs internet serta kepustakaan yang menunjang dari Praktek
Kerja Magang ini.
2.3.2 Teknik Pengambilan Data
Teknik pengambilan data pada Praktik Kerja Magang ini adalah dengan
cara observasi, wawancara, partisipasi aktif dan dokumentasi. Kegiatan Praktik
Kerja Magang ini lebih ditekankan pada partisipasi aktfif, pemahaman dan
pengusaan tentang pertumbuhan dan kultur N. oculata.
2.3.2.1 Observasi
Observasi yakni teknik pengumpulan data dimana penyelidik
mengadakan pengamatan secara langsung (tanpa alat) terhadap gejala - gejala
subyek yang diselidiki, baik pengamatan itu dilakukan dalam situasi sebenarnya
maupun dilakukan di dalam situasi buatan yang khusus diadakan (Surakhmad,
2004). Observasi yang dilakukan pada Praktek Kerja Magang ini meliputi
persiapan media kultur, kegiatan kultur, pemupukan, pemanenan dan
pengukuran kualitas air.
2.3.2.2 Wawancara
Wawancara merupakan cara mengumpulkan data dengan cara tanya
jawab sepihak yang dikerjakan secara sistematis dan berlandaskan pada tujuan
penelitian. Wawancara memerlukan komunikasi yang baik dan lancar antara
peneliti dengan subjek sehingga pada akhirnya bisa didapatkan data yang dapat
dipertanggung jawabkan secara keseluruhan (Nazir, 1988). Pada praktik kerja
magang, wawancara dilakukan secara langsung dengan mengajukan pertanyaan
kepada teknisi lapang maupun masyarakat untuk mendapatkan informasi
7
mengenai pertumbuhan dan kultur N. occulata dan kegiatan operasional
Laboratorium pakan alami di Balai Perikanan Budidaya Air Payau (BPBAP)
Situbondo.
2.3.2.3 Partisipasi Aktif
Partisipasi aktif adalah keterlibatan dalam suatu kegiatan yang dilakukan
secara langsung di lapangan (Nazir, 1988). Pada Praktek Kerja Magang ini,
kegiatan partisipasi aktif yang diikuti secara langsung adalah pertumbuhan dan
kultur N. occulata mulai dari persiapan media budidaya, kegiatan kultur,
pemupukan, pemeliharaan, pemanenan dan pengukuran kualitas air serta
kegiatan lainnya yang berkaitan.
2.3.2.4 Dokumentasi
Dokumentasi merupakan cara mengumpulkan data melalui mempelajari,
mencatat, menyalin dokumen atau catatan yang bersumber dari peninggalan
tertulis seperti arsip, termasuk juga buku tentang teori, pendapat, dalil dan hukum
(Widiastuti, 2014). Pada Praktik Kerja Magang ini, dokumentasi dilakukan
dengan cara mengambil gambar atau foto dengan menggunakan kamera dan
mencatat data dari Laboratorium pakan alami di Balai Perikanan Budidaya Air
Payau (BPBAP) Situbondo.
2.4 Prosedur Praktek Kerja Magang
2.4.1 Kultur Laboratorium
Kultur laboratorium merupakan kultur dalam skala kecil yaitu kultur pada
botol 5 liter dan toples 10 liter yang terdiri dari kultur agar, test tube, Erlenmeyer
dan carboy.
8
2.4.1.1 Kultur Agar (tanpa aerasi)
Kultur agar diawali dengan sterilisasi alat dan pembuatan media agar
yang sudah diberi pupuk PA (Pro Analis) kemudian disterilisasi menggunakan
Autoclave kemudian dituang ke petridish steril ¾ bagian. Setelah media agar
membeku dilakukan inokulasi menggunakan metode gores, atau metode pipet).
Phytoplankton yang ditanam biasanya akan tumbuh setelah dua minggu
(tergantung species yang ditanam).
2.4.1.2 Kultur Test Tube (tanpa aerasi)
Kulturan agar yang sudah tumbuh dapat dipindahkan kekulturan testube,
dengan cara media steril dipupuk dengan dosis 1m/liter. pupuk yang digunakan
adalah pupuk PA . Untuk species diatom menggunakan pupuk diatom dan untuk
species Chlorophyceae menggunakan pupuk Walne. Sebelum melakukan kultur
terlebih dahulu diambil satu coloni dari media agar dan diberi air laut steril
kemudian dicek dibawah mikroskop, apabila steril tidak ada kontaminasi maka
dikultur ditest tuber. Untuk sebuah test tube diberi media air laut steril yang
sudah dipupuk ¾ bagian kemudian diberi bibit satu koloni. Mikroalga akan
tumbuh minimal 7 hari (seminggu).
2.4.1.3 Kultur Erlenmeyer (tanpa aerasi)
Hasil kulturan test tube selanjutnya dapat dijadikan bibit (starter) pada
kulturan erlenmeyer tanpa aerasi, disiapkan media air laut yang sudah dipupuk
dengan dosis 1 ml/liter kemudian diberi bibit. Lama kulturan 6-7 hari untuk
species Nannochloropsis sp dan 3-4 hari untuk species diatom.
2.4.1.4 Kultur Erlenmeyer/ Toples 1-2 liter (aerasi)
Sterilisasi media dengan cara direbus hingga mendidih kemudian dituang
ke dalam wadah dan ditutup rapat. Setelah dingin dilengkapi peralatan aerasi,
9
dipupuk dengan dosis 1ml/liter (PA), perbandingan bibit dan media adalah 3 : 7,
dipertahankan pada suhu 25 0C dan penyinaran menggunakan lampu TL 40
watt 2 buah dan inkubasi 5-7 hari.
2.4.1.5 Kultur Carboy/ Toples 10 liter (aerasi)
Sterilisasi media menggunakan kaporit 10 ppm dan dinetralkan dengan
thiosulfat ≤ 5 ppm Setelah netral dipupuk dengan dosis 1ml/liter (PA),
perbandingan bibit dan media adalah 3 : 7, dipertahankan pada suhu 25 C
danpenyinaran menggunakan lampu TL 40 watt 2 buah dan inkubasi 5-7 hari.
2.4.2 Kultur Intermediate
Kultur aquarium 100 liter dan Kultur conicel 500 liter – 1 ton. Air laut
disterilisi menggunakan kaporit 10 ppm dan dinetralkan dengan thiosufat 5 ppm,
lama sterilisasi min 24 jam. Sebelum dilakukan pemberian bibit terlebih dahulu
diberi pupuk TG (Tehnical Growth) dengan dosis 1 ml/l. Untuk species diatom
menggunakan pupuk diatao (TG) kalau untuk species Chlorophyceae
menggunakan pupuk Walne (TG). Perbandingan penggunaan bibit dan media
adalah 3 :7. Kultur dilakukan pada ruangan semi outdoor dengan atap fiber
tembus cahaya matahari Dan lama inkubasi 5-7 hari.
2.4.3 Perhitungan Kelimpahan Sel
Perhitungan kelimpahan sel fitoplankton digunakan sebagai salah satu
ukuran mengetahui pertumbuhan fitoplankton, mengetahui kelimpahan bibit,
kelimpahan pada awal kultur dan kelimpahan pada saat panen. Untuk
menghitung jumlah fitoplankton yang dihasilkan dalam skala waktu dapat
menggunakan alat haemocytometer.
Menurut Chalid et at. (2006), cara Perhitungan jumlah plankton dengan
haemocytometer ini yaitu dengan cara meneteskan kultur sel mikroalga yang
10
akan dianalisa kepadatan selnya sebanyak satu tetes ke masing-masing dua
bagian haemocytometer. Tutup dengan menggunakan slide. Haemocytometer ini
dilengkapi dengan mikroskop. Haemocytometer yang telah diberikan kultur sel
mikroalga diletakkan di bawah lensa objektif dan difokuskan hingga terlihat kisi-
kisi tempat perhitungan sel yang terdiri dari lima kisi perhitungan. Selanjutnya
jumlah sel plankton dihitung menggunakan rumus berikut:
2.4.4 Pengukuran Kualitas Air
Pada Praktek Kerja Magang, dilakukan pengukuran kualitas air pada
kultur mikroalga yang bertujuan untuk mengontrol kualitas air dan mengetahui
parameter fisika, kimia maupun biologi yang sesuai untuk pertumbuhan
mikroalga. Parameter kualitas air yang diukur meliputi parameter fisika yaitu
suhu; parameter kimia yaitu oksigen terlarut (DO), pH, salinitas. Cara
pengukuran kualitas air adalah sebagai berikut:
2.4.4.1 Suhu (Departemen Pekerjaan Umum, 1990)
Parameter kualitas air tentang suhu diukur dengan thermometer Hg.
Bagian ujung thermometer dimasukkan ke dalam perairan hingga seluruh
bagiannya masuk dalam air dan ditunggu beberapa saat sampai air raksa dalam
thermometer berhenti pada skala tertentu. Kemudian dicatat angka yang tertera
di skala tersebut dalam satuan derajat Celcius (0C). Pembacaan thermometer
dilakukan pada saat thermometer masih dalam air dan pada bagian air raksa
tidak sampai tersentuh oleh tangan secara langsung.
11
2.4.4.2 pH (Departemen Pekerjaan Umum, 1990)
pH suatu perairan dapat diukur dengan menggunakan pH paper atau pH
pen. Untuk pengukuran dengan pH paper dilakukan dengan cara memasukkan
pH paper ke dalam air sekitar 0,5 menit, dikibaskan sampai setengah kering dan
kemudian dicocokkan perubahan warna pada pH paper dengan kotak standar
pH. Sedangkan pengukuran pH dengan menggunakan pH pen yaitu pH pen di
standarisasi terlebih dahulu, kemudian pH pen dimasukkan kedalam air yang
diukur kadar pH-nya kemudian dilihat angka pada layar dan setelah digunakan
segera di standarisasi kembali.
2.4.4.3 Salinitas (Departemen Pekerjaan Umum, 1990)
Kadar garam perairan dapat diukur dengan menggunakan refraktometer
atau salinometer. Pengukuran salinitas dengan refraktometer yaitu dibuka
penutup kaca prisma, dikalibrasi dengan aquades, dibersihkan dengan tissue
secara searah, diteteskan 1-2 tetes air yang akan diukur salinitasnya, ditutup
kembali dengan hati-hati agar tidak terjadi gelembung udara dipermukaan kaca
prisma, diarahkan ke sumber cahaya, dan dilihat nilai salinitasya yang diukur
melaui kaca pengintai.
3. KEADAAN UMUM LOKASI PKM
3.1 Keadaan Umum Lokasi Praktek Kerja Magang
Keadaan umum lokasi Praktek Kerja Magang di Balai Perikanan
Budidaya Air Payau (BPBAP) Situbondo meliputi sejarah berdirinya BPBAP
Situbondo, letak geografis, struktur organisasi, sarana dan prasarana serta
kegiatan kultur fitoplankton yang ada di BPBAP Situbondo.
3.1.1 Sejarah Berdirinya BPBAP Situbondo
Balai Perikanan Budidaya Air Payau (BPBAP) Pecaron Situbondo
didirikan pada tahun 1986. Pada awal berdirinya BPBAP Situbondo bernama
proyek Sub Senter Udang Windu Jawa Timur dibawah naungan Dierktorat
Jendral Perikanan, Departemen Pertanian dan merupakan cabang dari BBAP
Jepara, Jawa Tengah. Sub Senter Udang Windu Jawa Timur terletak di Desa
Blitok, Kecamatan Mlandingan, Kabupaten Situbondo. BPBAP ini didirikan
berdasarkan kebutuhan dari masyarakat, dengan berbagai kegiatan pelatihan
yang disesuaikan berdasarkan rencana yang telah disusun setahun sebelumnya.
Sifat balai ini diprogram (diplot supaya tepat sasaran dan komunikasi dengan
dinas/swasta) dan dipercayakan untuk proyek dari pusat. Komoditas yang
dibudidayakan meliputi kerapu macan, kerapu tikus, bandeng, udang vaname,
dan udang windu.
Seiring berjalannya waktu Sub Senter Udang Windu Jawa Timur
melepaskan diri dari BBAP Jepara. Pada tanggal 18 April 1994 Sub Senter
Udang Windu Jawa Timur resmi melepaskan diri dari BBAP Jepara dan
berganti nama menjadi Loka Balai Budidaya Air Payau berdasarkan surat
keputusan Menteri Pertanian nomor : 246/Kpts/OT.210/4/94. Loka Balai
Budidaya Air Payau terdiri dari tiga divisi yaitu divisi ikan, divisi udang dan divisi
13
budidaya. Loka Balai Budidaya Air Payau Situbondo merupakan Unit Pelaksana
Teknis (UPT) Direktorat Jenderal Perikanan bidang pengembangan produksi
budidaya perikanan air payau yang bertanggung jawab kepada Direktorat Jendral
Perikanan. Beban tugas dan tanggung jawab Loka Balai Budidaya Air Payau
Situbondo yang semakin berat maka pada tanggal 1 Mei 2001 Status Loka Balai
Budidaya Air Payau dinaikkan menjadi Balai Budidaya Air Payau Situbondo
berdasarkan surat Keputusan Menteri Perikanan dan Kelautan No.
KEP.26D/MEN/2001 (Gambar 1.). Kini berdasarkan Peraturan Menteri Kelautan
dan Perikanan Nomor6/PERMEN-KP/2014 BBAP berganti nama menjadi Balai
Perikanan Budidaya Air Payau (BPBAP).
Gambar 1. Papan BPBAP Situbondo sesuai Kepmen tahun 2001
3.1.2 Letak Geografis dan Topografi
BPBAP Situbondo terletak di propinsi Jawa Timur dengan alamat Jl. Raya
Pecaron 5 Panarukan, Situbondo 68352, berada diatas tanah seluas 3,5 ha.
Lokasi BPBAP Situbondo berada pada daerah pengembangan industri perikanan
yang dapat dilihat dari banyaknya hatchery swasta baik skala rumah tangga
maupun skala besar. Pantai disekitar BPBAP Situbondo terhindar dari ombak
14
maupun arus yang besar, persediaan air tawar mudah serta dekat dengan
transportasi darat. Lokasi BPBAP Situbondo berjarak 5 meter dari garis pantai
dengan ketinggian 0,5 – 1 meter dari permukaan air laut. Suhu udara di sekitar
BPBAP Situbondo pada siang hari berkisar antara 29-31o C dan pada malam
hari berkisar 28-29o C. Lokasi BPBAP Situbondo beriklim tropis dengan angin
laut yang bertiup dari Selat Madura.
Balai Perikanan Budidaya Air Payau (BPBAP) Situbondo terdiri dari lima
divisi yaitu, divisi ikan, divisi udang, divisi budidaya, instalasi udang Gelung dan
instalasi pembenihan udang Tuban. Secara geografis BPBAP Situbondo terletak
pada posisi 113055’56’’ BT – 114000’00” BT dan 07040’32” LS – 07042’35” LS.
Divisi ikan sekaligus sebagai kantor utama BPBAP Situbondo terletak di Dusun
Pecaron, Desa Klatakan, Kecamatan Panarukan Kabupaten Situbondo. Divisi
udang dan ikan terletak di Desa Blitok, Kecamatan Mlandingan Kabupaten
Situbondo. Divisi budidaya berlokasi di Desa Pulokerto, Kecamatan Kraton
Kabupaten Pasuruan sedangkan instalasi pembenihan Gelung terletak di Desa
Gelung, Kecamatan Panarukan Kabupaten Situbondo. Batas-batas lokasi
BPBAP Situbondo yakni sebelah utara berbatasan dengan selat Madura, sebelah
Timur berbatasan dengan PT. Central Pertiwi Bahari (CPB), sebelah selatan
berbatasan dengan rumah penduduk Desa Klatakan, dan sebelah barat
berbatasan dengan Usaha Pembenihan Kelola Benih Unggul dan pemukiman
penduduk.
3.1.3 Strukur Organisasi dan Tenaga Kerja
Berdasarkan Peraturan Menteri Kelautan dan Perikanan
Nomor6/PERMEN-KP/2014 Balai perikanan Budidaya Air Payau Situbondo
dipimpin oleh seorang kepala dengan dibantu oleh Subbagian tatausaha, Seksi
uji terap teknik dan kerja sama, Seksi pengujian dan dukungan teknis, juga
15
dibantu oleh kelompok jabatan fungsional. Adapun tugas dari masing-masing
bagian sebagai berikut :
Kepala Balai, bertugas bertanggungjawab memimpin dan mengatur
seluruh kegiatan yang ada di BPBAP Situbondo
Subbagian Tata Usaha sebagaimana dimaksud dalam Pasal 58 ayat
(1) huruf c mempunyai tugas melakukan penyiapan bahan
perencanaan, pelaksanaan, pemantauan dan evaluasi pelaporan
keuangan, kegiatan teknis, anggaran, pengelolaan kepegawaian, tata
laksana, barang milik Negara, rumah tangga, dan ketatausahaan.
Seksi Uji Terap Teknis dan Kerja Sama sebagaimana yang dimaksud
dalam Pasal 58 ayat (1) huruf a mempunyai tugas melakukan
penyiapan bahan pelaksanaan uji terap teknis, standarisasi,
sertifikasi, kerja sama teknis, pengelolaan dan pelayanan system
informasi, serta publikasi perikanan budidaya air payau.
Seksi Pengujian dan Dukungan teknsi sebagaimana dimaksud dalam
Pasal 58 ayat (1) huruf b mempunyai tugas melakukan penyiapan
bahan pelaksanaan layanan pengujian laboratorium persyaratan
kelayakan teknis, kesehatan ikan dan lingkungan, produksi induk
unggul, benih bermutu, dan sarana produksi serta bimbingan teknis
perikanan budidaya air payau
Kelompok jabatan fungsional, bertugas melakukan kegiatan
fungsional BPBAP
Laboratorium penguji di BPBAP Situbondo terbagi menjadi tiga yang
terdiri dari Laboratorium KESLING (Kesehatan dan Lingkungan), Laboratorium
Pakan dan Nutrisi, dan Laboratorium Pakan Alami. Ketiga laboratorium ini
dipimpin oleh manajer teknis dan masing-masing manajer teknis dipimpin oleh
16
satu manajer puncak. Manajer puncak bertugas untuk mengendalikan kegiatan
laboratorium uji. Pengendalian kualitas uji dikendalikan oleh manajer mutu.
Tenaga kerja yang ada di BPBAP Situbondo dilihat pada Tabel 1.
Tabel 1. Tenaga Kerja BPBAP Situbondo Tahun 2014
Tingkat Pendidikan Pegawai Negeri Sipil Tenaga
Kontrak Jumlah SDM Gol I Gol II Gol III Gol IV
DOKTOR S-3 - Akuakultur - - - 1 - 1 MAGISTER S-2
- Biologi - - 2 1 - 3
-Manajemen - - - 2 - 2
-Akuakultur - - 4 2 - 6
-Pertanian - - - 1 - 1
SARJANA S-1
-Perikanan - - 24 3 4 31
- Biologi - - - 1 - 1
- Pertanian - - 3 - - 3
- Ekonomi - - 3 - 1 4
- Kedokteran Hewan - - 1 - - 1
- Hukum - - 3 - 1 4
- Teknik Kimia - - 1 - - 1
-Administrasi Negara - - 1 - 1 2
DIPLOMA 4 (D4)
-Budidaya Perikanan - - 5 - - 5
DIPLOMA 3 (D3)
- Perikanan - 6 2 - 3 11
- Kimia - - 1 - - 1
- Peralatan Mesin - 1 - - 1 2
- Akuntansi - 1 - - - 1
- Informatika - - - - 1 1
SEKOLAH LANJUTAN
- SMA - 2 3 - 9 14
- SUPM - 5 1 - 1 7
- SPMA - - 1 - - 1
- SFMA - - 1 - - 1
- STM – Bangunan - - 1 - 3 4
- STM – Mesin - 1 1 - 6 8
- STM – Listrik - - - - 3 3
- SMEA - - 1 - 1 2
- SMK - 1 - - 6 7
- SLTP 1 - - - 9 10
SEKOLAH DASAR
- SD 1 - - - 9 10
JUMLAH 2 17 59 11 59 148
Sumber: BPBAP Situbondo
17
3.2 Sarana dan Prasarana Budidaya Pakan Alami
BPBAP Situbondo mempunyai beberapa sarana dan prasarana yang
digunakan dalam kegiatan budidaya pakan alami. Beberapa prasarana dan
sarana tersebut diantaranya fasilitas utama, sistem tata air dan sistem aerasi.
3.2.1 Sarana
Sarana merupakan perlengkap dalam kegiatan budidaya pakan alami di
Balai Perikanan Budidaya Air Payau (BPBAP) Situbondo. Sarana tersebut
meliputi :
3.2.1.1 Sumber Air
Air merupakan kebutuhan dalam usaha budidaya. Dalam hal ini yang
perlu diperhatikan adalah kualitas dan kuantitas air yang akan digunakan selama
proses budidaya. Sumber air yang digunakan ada 2 macam, yaitu sumber air laut
dan air tawar.
Air Laut
Sumber air laut berasal dari laut sejauh 300 meter dari garis pantai yang
diambil menggunakan pompa. Sedangkan untuk mengalirkan air dari laut
digunakan pipa penyedot air laut yang berukuran 20 inci atau 50.8 cm (1 inci =
2.54 cm) menuju ke bak penampungan. Air laut yang masuk dalam tandon
penampungan air sebelumnya melalui beberapa tahap penyaringan. Tangki
saringan terbuat dari beton yang berukuran 6m x 2m x 2m dan susunan dari
saringan tersebut berturut-turut adalah pasir, ijuk dan kerikil. Air saringan
dialirkan dengan menggunakan pompa ke bak tandon terbuat dari beton
berbentuk persegi dengan dimesi 4,2x4,2 m dengan kedalaman 35 m. Air yang
berada di tandon diendapkan pada bak tandon yang berada di dekat lokasi
budidaya pakan alami dan disaring, Setelah diendapkan selama satu hari, air dari
bak pengendapan dialirkan ke dalam bak sterilisasi dengan perlakuan
18
pencampuran calcium hypochlorite atau kaporit 20 ppt atau sebanyak 5 % dari
volume total air yang berfungsi sebagai desinfektan. Kemudian air dibiarkan
selama satu hari untuk menetralisirkan chlorin. Untuk mempercepat
penetralisiran air dari chlorine dapat digunakan Natrium Thiosulfat. Setelah itu air
dapat digunakan untuk kultur pakan alami N. oculata. Air yang berasal dari
tandon air juga dapat langsung dialirkan ke keran – keran yang digunakan untuk
kultur skala intermediate. Selain itu pengukuran salinitas air laut yang berada
didalam tandon dilakukan setiap sebulan sekali sehingga didapat salinitas 33 ppt.
Tandon air laut dapat dilihat pada Gambar 2.
Gambar 2. Tandon Air Laut (Sumber : Dokumentasi Pribadi, 2015)
Air Tawar
Selain sumber air laut BPBAP Situbondo juga menggunakan air tawar
yang diperoleh dari air sumur yang diambil dengan menggunakan pompa air
kemudian ditampung dalam tandon setinggi 25 m sehingga air mengalir ke
berbagai unit bak dengan sistem gravitasi. BPBAP Situbondo memiliki jaringan
air tawar dalam komplek pembenihan, perkantoran dan perumahan dinas
sepanjang 1.000 m yang dilengkapi dengan tandon air dan pompa.
Pada skala laboratorium, air tawar ditampung dalam bak-bak fiber
berbentuk bulat yang bervolume antara 0,5-1 ton. Air tawar ini dapat langsung
19
digunakan untuk kultur pakan alami. Pada skala intermediate, air tawar yang
berasal dari tandon air langsung dialirkan ke keran dan langsung dapat
digunakan sebagai media kultur pakan alami N. oculata.
3.2.1.2 Sumber Listrik
Listrik merupakan sarana vital dan salah satu pendukung utama kegiatan
di balai secara umum. Pembangkit listrik yang digunakan bersumber dari jaringan
Pembangkit Listrik Negara (PLN), dimana daya yang terpasang adalah 197 KVA
dengan panjang jaringan 5.000 m, dan genset dengan daya 180 KVA dan 50
KVA yang digunakan untuk menanggulangi apabila sewaktu-waktu aliran listrik
PLN mengalami gangguan atau padam. Tenaga listrik di BPBAP Situbondo
dipakai terutama untuk penerangan jalan, kantor, bagian pembenihan, bagian
pembesaran, laboratorium, perumahan dinas, asrama dan mushola. Pada kultur
N. oculata, penggunaan listrik memiliki pengaruh yang besar. Sumber listrik ini
digunakan untuk aerasi, selain itu juga digunakan untuk penerangan pada kultur
skala laboratorium. Sumber listrik juga membantu untuk menghidupkan AC agar
suhu ruangan tetap stabil pada kultur skala laboratorium.
3.2.1.3 Sistem Aerasi
Oksigen terlarut (DO) merupakan faktor pembatas bagi sebagian besar
organisme akuatik. Kandungan oksigen terlarut dalam lingkungan budidaya di
bak secara terkontrol sangat berperan penting dan harus disuplai secara teratur
ke dalam bak pemeliharaan. Penggunaan aerator adalah cara yang paling umum
digunakan dalam suatu usaha budidaya. Di Balai Perikanan Budidaya Air Payau
Situbondo, sistem aerasi menggunakan blower berkekuatan 2 KVA (kilovolt
ampere) dan 7 KVA yang dialirkan melalui pipa paralon ke bak kultur pakan alami
N. oculata. Namun, pada skala laboratorium menggunakan blower mini yang
lebih praktis, ekonomis dan mempunyai daya kecil yaitu 40-200 watt tetapi
20
mempunyai tekanan yang cukup kuat yaitu 60 HP. Blower mini yang digunakan
dapat dilihat pada Gambar 3.
Gambar 3. Blower mini untuk Lab. (Sumber : Dokumentasi Pribadi, 2015)
3.2.2 Prasarana
Prasarana merupakan pendukung sarana utama yang ada dalam BPBAP
Situbondo. Hal yang termasuk dalam prasarana dapat berupa akses ke dalam
maupun keluar balai, dan fasilitas yang bekaitan dalam segala kegiatan BPBAP
Situbondo
3.2.2.1 Jalan dan Transportasi
Balai Perikanan Budidaya Air Payau Situbondo terletak di jalur pantai
utara sehingga sarana pendukung untuk kelancaran budidaya seperti jalan raya
sudah tersedia. Selain itu jarak BPBAP Situbondo dengan jalan raya hanya
sekitar satu kilometer, dimananuntuk menuju jalan tersebut dihubungkan oleh
jalan desa yang beraspal dengan kondisi baik. Dengan adanya jalanan yang baik
tersebut, maka dapat menunjang kelancaran usaha dan pendistribusian hasil
produksi.
21
Kelancaran transportasi sangat diperlukan untuk menuju lokasi balai, karena
transportasi diperlukan untuk pengangkutan hasil produksi yang akan
dipasarkan. Untuk menjangkau BPBAP Situbondo dapat digunakan dengan
semua jenis kendaraan karena BPBAP mudah dijangkau dan jalan menuju ke
lokasi khususnya lokasi pakan alami bisa dilalui berbagai macam kendaraan
termasuk truk.
3.2.2.2 Fasilitas Pendukung
Fasilitas pendukung BPBAP Situbondo berfungsi untuk menunjang
keberlangsungan proses produksi. Fasilitas penunjang yang terdapat di BPBAP
Situbondo berupa bangunan produksi, bangunan umum, dan alat transportasi.
Beberapa diantaranya adalah kantor utama, kantor tata usaha, perumahan
karyawan , perpustakaan, Laboratorium Pakan Alami, Laboratorium Kesehatan
dan Lingkungan, Laboratorium Nutrisi dan Pakan Ikan, Mushallah, Shrimp
Broodstock Center, Pembenihan Ikan, Ruang Rapat / Pertemuan, Ruang Kuliah,
Asrama, Guest House, Kantin, Ruang Makan, Lapangan Parkir dan rumah
genset. Sedangkan untuk menunjang mobilitas transportasi, kendaraan yang
dimiliki adalah pick up
3.3 Kegiatan Kultur di Laboraturium Pakan Alami BPBAP Situbondo
Kegiatan kultur N. oculata di Laboratorium Pakan Alami BPBAP Situbondo
terbagi menjadi 2 kegiatan utama yaitu kultur skala laboratorium dan kultur skala
intermediet atau semi-massal, dimana pada kultur skala laboratorium masih
terbagi lagi menjadi kultur murni I dan kultur murni II. Pada kegiatan kultur murni I
teknik kultur yang digunakan yaitu kultur monospesies atau monospesifik. Teknik
isolasi merupakan langkah awal dalam kultur pakan alami. Tujuan dari isolasi itu
sendiri adalah untuk memperoleh monospesifik spesies dengan cara mengambil
sampel air laut di alam dengan menggunakan plankton net. Kultur yang
22
digunakan di BPBAP Situbondo adalah kultur secara bertingkat, dimulai dari
kegiatan isolasi kemudian dikembangkan sedikit demi sedikit secara bertingkat.
Sedangkan jenis plankton yang dibudayakan dalam Laboratorium Pakan Alami di
BPBAP Situbondo hanya fitoplankton dari divisi Chlorophyta dan kelas Diatom
dari divisi Chrysophyta.
4. HASIL DAN PEMBAHASAN
4.1 Biologi Nannochloropsis oculata
Biologi Nannochloropsis oculata yang dibahas meliputi klasifikasi dan
morfologi, dan pertumbuhan. Adanya pertumbuhan dalam kultur fitoplankton
ditandai dengan bertambahnya ukuran sel fitoplankton dan bertambah besarnya
ukuran sel. Genus Nannochloropsis meliputi laut dan spesies air tawar, meskipun
bioteknologi dari alga ini pada saat ini terbatas pada spesies laut (Bold and
Wynne, 1985).
4.1.1 Klasifikasi dan Morfologi Nannochloropsis oculata
Mikroalga diartikan berbeda dengan tumbuhan yang biasa dikenal
walaupun secara struktur tubuh keduanya memiliki klorofil sehingga dapat
melakukan fotosintesis (Bold and Wynne, 1985). Menurut Hibberd (1981),
klasifikasi Nannochloropsis oculata (Gambar 4.) ialah sebagai berikut :
Kingdom : Protista
Sub Kingdom : Eukaryotes
Phylum : Chromophyta
Class : Eustigmatophyceae
Ordo : Eustigmatales
Family : Monodopsidaceae
Genus : Nannochloropsis
Spesies : Nannochloropsis oculata
N. oculata lebih sering dikenal dengan nama Chlorella laut. Fitoplankton
ini berbentuk bulat menyerupai bola berukuran 2-4 mikron, berwarna hijau dan
memiliki dua flagella (heterokontous) (Tjahjo, 2002).
24
Gambar 4. Nannochloropsis oculata (Sumber : Baharuddin, 2011)
Watanabe (1979) menyatakan, N. oculata memiliki kloroplas dan nucleus
yang dilapisi membran. Kloroplas memiliki stigma (bintik mata) yang bersifat
sensitive terhadap cahaya. N. oculata dapat berfotosintesis karena memiliki
klorofil. Ciri khas N. oculata adalah memiliki dinding sel yang terbuat dari
komponen selulosa.
N. oculata bersifat kosmopolit dengan salinitas optimum untuk
pertumbuhannya adalah 25-35 ppt, suhu 25-30oC merupakan kisaran suhu yang
optimal (Isnansetyo dan Kurniastuti, 1995). Fitoplankton ini dapat tumbuh baik
pada kisaran pH 8-9,5 dan intensitas cahaya 100-10000 lux (Hirata et al, 1981).
4.1.2 Pertumbuhan Nannochloropsis oculata
Menurut Isnansetyo dan Kurniastuty, (1995) dalam Prabowo (2009)
Selama pertumbuhannya mikroalga dapat mengalami beberapa fase
pertumbuhan, yaitu:
(1) Fase Lag (istirahat)
Pada fase ini peningkatan paling signifikan terlihat pada ukuran sel
karena secara fisiologis mikroalga menjadi sangat aktif. Proses sintesis protein
baru juga terjadi dalam fase ini. Metabolisme berjalan tetapi pembelahan sel
belum terjadi sehingga kepadatan sel belum meningkat karena mikroalga masih
beradaptasi dengan lingkungan barunya.
25
(2) Fase Logaritmik (log) atau Eksponensial
Fase ini dimulai dengan pembelahan sel dengan laju pertumbuhan yang
meningkat secara intensif. Pada fase ini merupakan fase terbaik untuk memanen
mikroalga untuk keperluan pakan ikan atau industri. Chlorella sp. dapat mencapai
fase ini dalam waktu 4-6 hari.
(3) Fase Penurunan Laju Pertumbuhan
Pembelahan sel tetap terjadi pada fase ini, namun tidak seintensif fase
sebelumnya, sehingga laju pertumbuhan juga mengalami penurunan
dibandingkan fase sebelumnya.
(4) Fase Stasioner
Pada fase ini laju reproduksi dan laju kematian relatif sama. Penambahan
dan pengurangan jumlah mikroalga seimbang sehingga kepadatannya relatif
tetap (stasioner).
(5) Fase Kematian
Fase ini ditandai dengan laju kematian yang lebih besar daripada laju
reproduksi sehingga jumlah sel mengalami penurunan secara geometrik. Secara
skematis pola pertumbuhan mikroalga dapat dilihat pada Gambar 5.
Gambar 5. Kurva Pertumbuhan Mikroalga (Sumber: Prabowo, 2009)
26
Menurut Hermanto (2011), komponen vitamin yang ditambahkan
bersamaan dengan pupuk Walne dapat mempercepat pertumbuhan sel. Selain
itu, kondisi lingkungan juga berpengaruh terhadap perkembangan sel N. oculata
yang dikultur, yang antara lain suhu, iluminasi cahaya, pH, dan konsentrasi
nutrient dalam media. Pada media kultur, yang berkembang bukan hanya sel N.
oculata, melainkan juga berbagai sel mikroalga lainnya. Meski begitu,
pengamatan hanya dibatasi satu sel, yaitu N. oculata. Selain mikroalga yang
merupakan plankton, zooplankton juga banyak tumbuh di dalam media kultur.
4.2 Teknik Kultur Nannochloropsis oculata
Kultur mikroalga yang ada di BPBAP Situbondo adalah kultur bertingkat.
Kultur di mulai dari kultur skala laboratorium, kemudian skala intermediate.
4.2.1 Kultur Nannochloropsis oculata Skala Laboratorium
Dalam kegiatan kultur N. oculata skala Laboratorium terbagi menjadi 2
bagian yaitu Kultur Murni I dan Kultur Murni II. Kegiatan pada Kultur Murni I
meliputi penyediaan bibit starter melalui kultur dengan media isolate agar dan
kultur tabung reaksi. Sedangkan untuk Kultur Murni II meliputi kegiatan kultur
pada Erlenmeyer menggunakan aerasi dan kultur pada Carboy.
4.2.1.1 Kultur Murni I (Monospesies)
1. Sterilisasi Alat dan bahan
Pada dasarnya persiapan untuk kultur berbagai jenis fitoplankton adalah
sama, yaitu sterilisasi alat dan bahan yang bertujuan untuk membunuh
mikroorganisme yang tidak diinginkan (Cahyaningsih et al, 2009). Pada Skala
Laboratorium di BPBAP Situbondo keadaan steril sangat diutamakan karena
hasil akhir yang diharapkan adalah monospesies, sehingga perlu dilakukan
sterilisasi. Sesuatu yang akan disterilisasi dibersihkan terlebih dahulu atau dicuci.
27
Peralatan seperti petri disk, test tube, erlemeyer, gelas ukur, pipet tetes,
dan yang lainnya dicuci terlebih dahulu menggunakan sabun dan dibilas dengan
air tawar. Tujuannya adalah agar sisa-sisa kotoran yang ada sebelumnya dapat
hilang. Peralatan yang sudah bersih diletakkan di rak-rak, dibiarkan sampai
mengering. Kemudian alat – alat tersebut dibilas lagi menggunakan HCL dan
dibilas air tawar lagi. Setelah alat-alat tersebut kering kemudian ditutup
menggunakan aluminium foil sebagai persiapan untuk di autoclave. Alat-alat
yang sudah disterilkan dapat dilihat pada Gambar 6.
Gambar 6. Alat – Alat yang sudah di sterilisasi (Sumber : Dokumentasi Pribadi,
2015)
Sterilisasi yang selama ini dilakukan pada kultur murni I untuk sterilisasi
bahan yang akan digunakan yaitu dengan menggunakan autoclave. Bahan yaitu
media dan pupuk dimasukan dalam erlenmeyer/beakerglass kemudian ditutup
dengan alumunium foil dan plastik, lalu diikat dengan karet gelang. Setelah itu
dilanjutkan dengan sterilisasi alat secara fisika dengan meggunakan autoclave
(Gambar 7.) dengan suhu 1210C dan tekanan 1 atm selama 30 menit. Hal ini
sesuai dengan pernyataan Isnansetyo dan Kurniastuti (1995), sterilisasi dengan
autoclave pada dasarnya menggunakan uap air bertekanan.
28
Gambar 7. Autoclave (Sumber : Dokumentasi Pribadi, 2015)
2. Kultur Nannochloropsis oculata
a) Teknik Isolasi Menggunakan Media Agar
Starter murni di BPBAP Situbondo diperoleh dari alam dan dari lembaga-
lembaga penelitian di dalam maupun luar negeri. Selanjutnya diperbanyak
dengan membuat kultur pada media agar.
Tahapan teknik isolasi dengan media agar adalah sebagai berikut :
Agar bacto sebanyak 1,5 gram dilarutkan ke dalam air laut yang telah
dipupuk dengan salinitas 33 ppt yang sudah steril sebanyak 100 ml.
Kemudian dipanaskan dan diaduk sampai larutan agar mendidih, diangkat
dan ditutup dengan aluminium foil. Selanjutnya disterilisasi menggunakan
autoclave.
Media agar yang sudah didisterilisasi dibiarkan sebentar kemudian ditunag
ke petridish ¾ bagian. Setelah beku dapat diinokulasi dengan bibit alga
menggunakan jarum ose yang sebelumnya disterilisasi dengan dibakar
lampu Bunsen sampai merah.
Media agar yang sudah digores dengan bibit, ditutup dan diberi isolasi lalu
disimpan di rak dalam ruangan yang dilengkapi pendingin dan lampu.
Inokulasi akan berkembang setelah 3-4 minggu.
29
b) Kultur pada Tabung Reaksi
Setelah diperbanyak dengan menggunakan kultur murni pada media agar
selanjutnya diperbanyak pada tabung reaksi lainnya. Tahapan dalam kultur
tabung reaksi adalah sebagai berikut :
Menyiapkan air yang sudah steril yang sudah dipupuk (pupuk walne dosis
1 ml/L) , tiap tabung reaksi diisi media ¾ bagian sebanyak 25 ml
Air yang sudah steril diberi pupuk dituang hingga setengah bagian tabung
reaksi. Pupuk yang digunakan yaitu pupuk walne. Dosis pupuk yang
digunakan adalah 1:1 dengan media kultur, maka pupuk yng digunakan
sebanyak 25 ml.
Starter diambil dari kultur media agar yang sudah mencapai puncak
pertumbuhannya, starter diambil dengan jarum ose yang sudah dipanaskan
diatas bunsen untuk sterilisasi dan diinokulasi ke media secukupnya.
Kultur pada tabung reaksi baru dapat dipindahkan ke kultur toples tanpa
aerasi setelah berumur satu hingga dua minggu. Untuk kultur fitoplankton
dalam ruang kultur murni I (monospesies) semua dilakukan tanpa aerasi.
Hal ini bertujuan untuk mendapatkan pertumbuhan yang natural dari
fitoplankton yang dikultur.
4.2.1.2 Kultur Murni II
1. Sterilisasi Alat dan Bahan
Sterilisasi alat dan bahan adalah perlakuan untuk menjadikan suatu alat
atau bahan bebas dari mikroorganisme yang tidak diinginkan (Isnansetyo dan
Kurniastuti, 1995). Sterilisasi yang dilakukan pada ruang kultur murni II untuk
peralatan seperti wadah toples, carboy, selang aerasi, batu aerasi, dan lain-lain
dilakukan dengan pencucian dengan sabun sampai bersih. Kemudian untuk
30
carboit, selang dan batu aerasi setelah dicuci dilakukan perendaman dengan
kaporit yang bertujuan membunuh sisa plankton setelah kegiatan kultur.
Sterilisasi media kultur murni II terbagi menjadi dua untuk kultur pada
Erlenmeyer menggunakan aerasi dan untuk carboy. Untuk media Erlenmeyer
menggunakan aerasi sterilisasi dilkukan dengan perebusan air laut hingga
mendidih. Lalu air yang sudah mendidih langsung dimasukan dalam erlenmeyer
yang akan dikultur. Sedang sterilisasi media untuk carboy dilakukan dengan
pemberian kaporit dengan dosis 10 ppm pada tandon air laut dalam ruang kultur
murni II. Pemberian kaporit bertujuan untuk mensterilkan air dari mikroorganisme
yang merugikan sehingga diharapkan tidak terjadi kontaminasi. Selanjutnya air
diberi Na-Thiosulfat sebagai penetralisir kandungan kaporit dengan dosis 5 ppm.
2. Kultur Nannochloropsis oculata
a) Kultur Erlenmeyer menggunakan aerasi
Wadah kultur yang telah berisi air laut steril diberi aerasi dan dipupuk
(Walne dosisi 1 ml/L) kemudian diberi stater sebanyak 20-30 %. Inkubasi
dilakukan pada suhu 200C dengan lampu TL 40 watt. . Pupuk yang digunakan
adalah pupuk walne. Kultur N. oculata dapat dilihat pada Gambar 8.
Gambar 8. Kultur Nannochloropsis oculata dalam Erlenmeyer menggunakan
aerasi (Sumber : Dokumentasi Pribadi, 2015)
31
Tahapan yang dilakukan dalam kultur Erlenmeyer 5 L adalah sebagai berikut:
Rak yang akan digunakan untuk erlenmeyer dibersihkan dahulu dengan
menggunakan alkohol untuk menghindari kontaminasi.
Erlenmeyer diisi air media sebanyak 3-4 L dengan salinitas 33 ppt.
Kemudian dilakukan penetralan dengan Na-Thiosulfat 5 ppm, untuk
mengecek apakan netral atau belum, gunakan Chlorine tes untuk
memastikan bahwa air sudah netral.
Kemudian diberi pupuk walne dan vitamin B12 dengan dosis 1ml/L air
media.
Starter atau bibit N. oculata didapatkan dari ruang kultur murni I
dimasukkan ke dalam Erlenmeyer menggunakan aerasi sebesar 20-30%
dari wadah.
Kemudian Erlenmeyer menggunakan aerasi ditutup dengan plastik untuk
menjaga agar tidak terjadi kontaminasi.
Untuk kultur yang didapat langsung dari kultur murni I di beri label dengan
tanda bintang, yang menandai bibit yang digunakan masih F1. Sedang
bibit yang diperoleh biakan dalam toples (F2), hanya ditulis nama spesies
dan tanggal.
Setelah 6-7 hari N. oculata dapat dipindahkan ke kultur carboy.
Hal ini sesuai dengan penelitian Bambang (2009), yang menyebutkan
bahwa pada hari kultur ke 7 kultur mengalami perubahan warna dari hijau bening
menjadi hijau pekat. Setelah sampai 7 hari dipecah lagi ke volume yang lebih
besar.
b) Kultur pada Carboy
Pada tahap ini tempat kultur berupa carboit 10 L. Inkubasi dilakukan pada
suhu 200C dengan lampu TL 40 watt. Untuk kultur N. oculata menggunakan air
32
laut yang sudah steril dengan kaporit 10 ppm. Pupuk yang digunakan adalah
pupuk walne. Kultur N. oculata dapat dilihat pada Gambar 10.
Tahapan kegiatan kultur pada carboy 10 L adalah sebagai berikut:
Langkah awal yaitu menyiapkan carboy dan selang aerasi yang akan
digunakan.
Kemudian masukkan air yang telah netral dari tandon air ke dalam
carboy sebanyak 7-8 L dan letakan carboy pada rak kultur yang
tersedia dalam ruang kultur murni II.
Selanjutnya tambahkan pupuk walne dan vitamin B12 dengan dosis
1ml/L.
Starter atau bibit N. oculata didapat dari Erlenmeyer menggunakan
aerasi ruang kultur murni II dimasukkan ke carboy sebanyak 20-30%.
Kemudian carboy ditutup untuk menjaga agar tidak terjadi kontaminasi.
Setelah 6-7 hari N. oculata dapat dipindahkan ke kultur skala
Intermediate.
Gambar 9. Kultur pada Carboy (Sumber : Dokumentasi Pribadi, 2015)
33
Kegiatan kultur skala laboraturium yang dijalankan pada Lab. Pakan
Alami BPBAP Situbondo telah sesuai dengan pendapat Isnansetyo dan
Kusniastuty (1995), yang menyatakan bahwa kultur skala laboratorium dimulai
dari volume 0,5 sampai 3 dan 5 liter. Air laut dengan salinitas tertentu
dimasukkan ke dalam wadah. Air laut yang dimasukkan terlebih dahulu
disterilkan sebelum inokulum dimasukkan sebanyak 1/3 bagian, media kultur
dipupuk terlebih dahulu. Setelah diberi aerasi dan kultur diletakkan pada rak
kultur dengan pencahayaan lampu TL.
4.2.1.3 Pupuk Kultur Skala Laboratorium
Pupuk diberikan untuk memenuhi kebutuhan unsur hara bagi
pertumbuhan plankton. Jenis pupuk yang digunakan adalah pupuk media walne.
Pada skala laboratorium pupuk yang digunakan adalah tingkat “Pro Analyse”
atau yang biasa disebut dengan PA. Pupuk dengan tingkat “Pro Analyse” ini
sangat baik bagi pertumbuhan fitoplankton karena pupuk ini tidak terdapat
campuran – campuran bahan lain. Komposisi nutrien yang lengkap dan
konsentrasi nutrien yang tepat menentukan produksi biomassa dan kandungan
gizi mikroalga. Jenis pupuk yang banyak dipilih masyarakat dalam kultur
mikroalga adalah jenis PA (Pro Analisis) yang sudah distandarkan seperti pupuk
Walne, Guillard, dll (Amanatin, et al., 2014)
Proses pembuatan pupuk walne untuk skala laboraturium dilakukan
dengan cara merebus air tawar hingga mendidih menggunakan kompor listrik,
kemudian setelah mendidih bahan diatas dimasukan satu-persatu kecuali FeCl3.
Untuk memasukan FeCl3 dalam panci perubusan dilakukan penngenceran
terlebih dahulu dengan cara mengabil sebagian air yang sedang direbus dalam
beakerglas lalu masukan FeCl3 dalam beakerglas tersebut dan aduk merata.
34
Setelah itu barulah larutan FeCl3 dalam beakerglas dimasukan dalam panci
perebusan dan diaduk hingga merata.
Komposisi pupuk Walne untuk skala laboratorium dapat dilihat pada
Tabel 2. sebagai berikut :
Tabel 2. Bahan Pupuk Walne untuk Skala Laboratorium.
Bahan Dosis
Aquades 1 ltr
EDTA 45 gr
NaNO3 100 gr
H3BO3 33,6 gr
NaH2PO4 20 gr
MnCl 0,36 gr
FeCl3 1,3 gr
4.2.2 Kultur Nannochloropsis oculata Skala Intermediate
Kultur skala intermediate (semi-masal) dilakukan di ruangan semi
terbuka. Atap dalam ruangan tersebut menggunakan atap fiber, sehingga cahaya
matahari dapat masuk secara tidak langsung. Kultur skala intermediate dilakukan
pada bak fiber ukuran 500L-1000L.
4.2.2.1 Sterilisasi Alat dan Bahan
Sterilisasi peralatan yang ada pada kultur skala intermediet dilakukan
dengan memberikan kaporit. Pertama-tama bak fiber setelah kegiatan kultur
dicuci dengan cara disikat dan disabun. Bak yang sudah sudah bersih langsung
dikaporit baknya dengan dosis 10 ppm. Dimana kaporit diberikan dengan cara
diencerkan dengan air dalam gayung lalu diaduk merata. Setelah larutan kaporit
jadi disiramkan ke seluruh permukaan bagian dalam bak fiber. Sterilisasi untuk
selang aerasi dan batu aerasi sama dengan sterlisasi pada lab kultur murni II.
35
Sterilisasi air untuk dilakukan dengan penyaringan menggunakan filter
bag dan pemberian larutan kaporit. Penyaringan dilakukan agar pasir atau
berbagai kotoran yang terdapat dalam air dapat tersangkut pada saringan
sehingga nantinya tidak mengganggu proses budidaya. Air yang telah disaring
diberi larutan kaporit. Larutan kaporit dibuat dengan melarutkan kaporit dengan
dosis 10 ppm. Homogenisasi dilakukan dengan pengadukan tanpa proses
pemanasan. Dosis yang digunakan untuk kaporit air adalah 10 ppm. Penetralan
air media dilakukan dengan memberikan Na-Thiosulfat dengan dosis 5 ppm.
Kemudian menyalakan aerasi sehingga kadar chlorine dapat berkurang dan
menjadi netral. Pengecekan kenetralan dilakukan setelah 15-20 menit aerasi
dinyalakan. Pengecekan kadar chlorine dilakukan dengan cara mengambil
sampel air media menggunakan tabung reaksi kedian ditambahkan 1 tetes
Chlorine/Bromine test. Sampel yang berubah warna menjadi kuning berarti belum
netral dan sampel yang tetap berwarna bening berarti telah netral dan siap
digunakan untuk kultur fitoplankton.
4.2.2.2 Kultur pada Bak Fiber/Conicel
Pada tahap ini kultur dilakukan dengan menggunakan bak fiber 500 L
atau 1000 L. Bibit yang digunakan berasal dari ruan kultur murni II dari kultur di
carboy. Untuk kultur bak 500 L bibit yang digunakan 1 carboy atau 5 L bibit N.
oculata. Dosis bibit yang digunakan adalah 20-30 % dari wadah kultur
Tahapan kegiatan kultur pada bak fiber 500 L adalah sebagai berikut:
Langkah awal yaitu menyiapkan bak fiber dan selang aerasi yang
akan digunakan.
Kemudian mengisi bak fiber dengan air laut yang disaring dengan
menggunakan filter bag, setelah penuh air diberi kaporit sebanyak 10
ppm.
36
Selanjutnya tambahkan pupuk walne dengan dosis 1ml/L atau 500
ml.
Starter N. oculata didapat dari carboy ruang kultur murni II
dimasukkan ke bak fiber sebanyak 20-30%.
Kemudian diamati perkembangannya (perubahan warna,adanya
gelembung/berbusa) selama kultur, karena ruangan yang digunakan
semi terbuka sehingga lebih rentan terjadi kontaminasi .
Setelah usia kultur 6-7 hari N. oculata dapat dipanen, namun apabila
sebelum waktunya terjadi perubahan warna atau berbusa maka
segera dilakukan pemanenan.
Bibit starter yang digunakan untuk kegiatan kultur skala Intermediet
sesuai telah sesuai dengan pendapat Isnansetyo dan Kusniastuty (1995), yang
menyatakan kegiatan kultur skala intermediet menggunakan air laut dengan
salinitas tertentu dimasukkan ke dalam bak-bak kultur. Selanjutnya dilakukan
pemupukan dan diberi aerasi. Inokulen dimasukkan sebanyak 1/10 bagian
sebagai bibit.
Gambar 10. Kultur Nannochloropsis oculata skala Intermediate (Sumber :
Dokumentasi Pribadi, 2015)
37
4.2.2.3 Pupuk Kultur Skala Intermediate
Pupuk TG yang digunakan pada kultur skala intermediate tidak berbeda
jauh dengan yang digunakan pada skala laboratorium. Hanya terdapat
perbedaan pada komposisi bahan yang digunakan. Pertumbuhan mikroalga
dengan kultur dapat mencapai optimum dengan mencampurkan air laut dengan
nutrien yang tidak terkandung dalam air laut tersebut. Nutrien tersebut terdiri dari
makro nutrien (natrium dan fosfat) dan mikronutrien yang berasal dari pupuk
dasar, yang umumnya berupa pupuk Walne yang mempengaruhi pertumbuhan
mikroalga. Faktor lainnya adalah Intensitas cahaya (Matakupan, 2009). Dimana
bahan untuk pembuatan pupuk pada kultur skala intermediate dapat dilihat pada
Tabel 3.
Tabel 3. Bahan pupuk Walne untuk Skala Intermediate.
Bahan Dosis
Air 1 Ltr
KNO3 1000 gr
NaH2PO4 100 gr
FeCl3 13 gr
EDTA 100 gr
Proses pembuatan pupuk walne (TG) untuk skala intermediate dilakukan
dengan cara merebus air tawar hingga mendidih dalam panci, kemudian setelah
mendidih bahan diatas dimasukan satu-persatu kecuali FeCl3. Untuk
memasukan FeCl3 dalam panci perubusan dilakukan penngenceran terlebih
dahulu dengan cara mengabil sebagian air yang sedang direbus dalam
beakerglas lalu masukan FeCl3 dalam beakerglas tersebut dan aduk merata.
Setelah itu barulah larutan FeCl3 dalam beakerglas dimasukan dalam panci
perebusan dan diaduk hingga merata.
38
4.2.3 Pemanenan
Pemanenan pada kultur skala laboratorium dilakukan dengan
memindahkan kultur yang sudah memasuki usia siap panen yaitu pada fase
logaritmik atau setelah pemeliharaan selama 6 – 7 hari kedalam media kultur
selanjutnya seperti tabung rekasi, toples/Erlenmeyer menggunakan aerasi,
carboy, dan bak fiber sebagai bibit starter. Tujuan dari kegiatan ini adalah untuk
menjalankan kultur secara bertingkat.
Sedang pada bak fiber pemanenan dapat dilakukan menjadi dua produk
yaitu berupa produk langsung dengan media menggunakan pompa celup atau
cair ataupun bubuk (powder). Tahapan pemanenan N. oculata diawali dengan
penambahan soda api 75-100 ppm agar N. oculata mengendap. Setelah diberi
soda api aerasi dimatikan setelah 2 jam, kemudian dibiarkan agar N. oculata
mengendap selam 24 jam. Setelah N. oculata mengendap, air yang berada
diatas permukaan endapan dibuang seperti melakukan siphon hanya saja selang
air tidak dibiarkan menyentuh/mendekati endapan yang akan di panen.
Jika panen yang dilakukan adalah panen endapan, maka endapan dalam
bak langsung dipacking dengan plastik atau dimasukkan dalam botol mineral.
Jika panen yang dilakukan adalah panen bubuk maka dilanjutkan dengan
menyaring endapan yang tersisa dengan kain yang diletakkan dalam keranjang
kotak. Setelah itu dibiarkan 24 jam agar menggumpal. Kemudian setelah
menggumpal N. oculata dioleskan pada plastik dalam nampan atau meja untuk
penganginan akhir atau dengan oven ( suhu berkisar 60ºC (Gambar 11.)).
Setelah kering serpihan dari N. oculata diblender untuk dijadikan bubuk N.
oculata. Kemudian bubuk N. oculata dimasukan dalam kantong-kantong plastik
untuk ditimbang dengan timbangan digital. Setelah itu bubuk N. oculata disimpan
dalam rak penyimpanan.
39
(a) (b)
Gambar 11. Proses Penganginan Endapan Nannochloropsis oculata: (a)
Pengolesan pada Plastik, (b) serpihan Nannochloropsis oculata kering (Sumber :
Dokumentasi Pribadi, 2015)
4.3 Analisis Kualitas Air
Seperti halnya organisme lainnya, N. oculata membutuhkan beberapa
syarat agar dalam pertumbuhan dan perkembangannya. Salah satu syarat
tersebut adalah kualitas air. Parameter yang digunakan untuk mengukur kualitas
air antara lain suhu, derajat keasaman, dan salinitas.
4.3.1 Suhu
Suhu merupakan salah satu faktor penting yang mempengaruhi
pertumbuhan mikroalga. Setiap mikrolga mempunyai suhu ideal yang berbeda-
beda untuk bisa tumbuh dan berkembang dengan baik. N. oculata dapat tumbuh
baik pada kisaran suhu yang optimal 25-30 ºC (Isnansetyo dan Kurniastuty,
1995). Sehingga kegiatan kultur N. oculata yang ada di BPBAP Situbondo,
dengan suhu berkisar antara 220C pada skala laboratorium, dan suhu pada
skala intermediate berkisar antara 260 – 290C telah sesuai untuk kebutuhan
partumbuhan N. oculata.
4.3.2 Derajat Keasaman (pH)
Seperti halnya suhu, mikroalga memiliki kisaran toleransi pH yang
berbeda-beda untuk pertumbuhan yang optimal. Dalam budidaya N. oculata yang
40
ada di BPBAP Situbondo, pH yang ada pada skala laboratorium yaitu 8,
sedangkan pada skala intermediate sebesar 8 – 8,5. Menurut Tjahjo (2002) dan
Cahyaningsih (2009), pH optimal bagi N. oculata berkisar 8-8,5. Berdasarkan
data tersebut terutama untuk kultur murni sudah sangat memenuhi syarat untuk
dapat tumbuh.
4.3.3 Salinitas
Salinitas merupakan salah satu sifat kimia air yang secara langsung
maupun tidak langsung mempengaruhi pertumbuhan dan perkembangan
mikroorganisme termasuk N. oculata. Pada saat kultur, biasanya terjadi kenaikan
salinitas akibat dari adanya hasil metabolisme dan adanya pengendapan. Dalam
kultur N. oculata yang ada pada BPBAP Situbondo, salinitas yang dipakai pada
skala laboratorium berkisar 33 ppt, sedangkan pada skala intermediate sebesar
34 ppt. Hal ini sesuai dengan pendapat Tjahjo (2002), N. oculata dapat tumbuh
pada salinitas 30-35 ppt. Dari data tersebut dapat disimpulkan bahwa air laut
yang digunakan dalam kultur N. oculata di BPBAP Situbondo sudah memenuhi
syarat untuk dapat mendukung pertumbuhannya.
4.4 Kepadatan Nannochloropsis oculata
Untuk mengetahui pertumbuhan N. oculata dalam budidaya maka perlu
dilakukan pengamatan. Pengamatan pertumbuhan dapat dilakukan dengan
melihat perubahan warna yang terjadi dari awal penebaran bibit. Namun
pengamatan paling baik adalah dengan melakukan perhitungan kepadatan
dengan menggunakan haemocytometer yang diamati dibawah mikroskop. Pada
perhitungan N. oculata alat yang digunakan untuk perhitungan adalah
Haemocytometer.
Haemocytometer adalah sebuah gelas preparat dari mikroskop. Akan
tetapi bila dilihat dari samping, pada bagian tengah permukaannya ada bagian
41
yang agak rendah dibandingkan dengan bagian di sebelah kanan dan kirinya.
Perbedaan jarak antara bagian yang rendah dengan permukaan gelasnya
disebut kedalaman yang tingginya 0,1 mm. Pada permukaan yang rendah itu
terdapat garis-garis yang bersilangan, sehingga terlihat berupa kotak-kotak bujur
sangkar. Ukuran kotak tersebut masing-masing terbagi-bagi lagi menjadi
kotakan-kotakan yang lebih kecil. Luas kotakan yang bergaris-garis tadi adalah 1
mm2, sedangkan ketinggian airnya sama dengan kedalaman dari
haemocytometer yaitu 0,1 mm. Hal ini sesuai dengan pernyataan Ekawati (2005),
bahwa volume dari air di dalam kotakan yang bersangkutan adalah 0,1 mm3 atau
0,0001 cm3 atau 0,0001 ml. Sehingga jumlah sel yang terdapat di dalam sebuah
kotakan tadi setelah dihitung misalnya N buah sel, ini berarti dalam 0,1 mm3
terdapat N sel. Jadi dalm 1 cm3 atau 1 ml, jumlah selnya adalah 10.000 x N sel.
Tahapan yang dilakukan untuk mengetahui dan menghitung kepadatan
kepadatan N. oculata adalah sebagai berikut :
Menyiapkan alat dan bahan yang digunakan untuk pengamatan, antara
lain: mikroskop, haemocytometer, hand tally counter, cover glass, pipet
tetes, beaker glass 50 ml, botol film, tissue, aquades dan sampel N.
oculata.
Sampel N. oculata diambil dengan menggunakan botol film secukupnya.
Sampel pada botol film diambil sebanyak 1 tetes diletakkan pada
haemocytometer. Apabila sampel terlalu padat dapat dilakukan
pengenceran dengan cara mengambil sampel dari botol film sebanyak 1
ml, diletakkan pada beaker glass 50 ml. Kemudian di tambahkan aquades
sebanyak 10- 50 ml tergantung pada kepadatan atau warna sampel.
Selanjutnya di homogenkan dan diteteskan sebanyak 1 tetes pada
42
haemocytometer, kemudian ditutup dengan cover glass tanpa ada
gelembung udara.
Sampel pada haemocytometer diamati di bawah mikroskop dengan
perbesaran 100 x sebanyak 3 kali pengamatan dan dihitung dengan
bantuan hand tally counter.
Untuk mengetahui kepadatan N. oculata. jumlah sel (N) dalam kotak-
kotak haemocytometer dihitung ke dalam rumus :
Kepadatan : x 16 x 104.
Kepadatan plankton biasanya dinyatakan dengan satuan sel/ml dan
penghitungannya dengan menggunakan alat yang dinamakan hemasitometer.
Kepadatan plankton dihitung dengan cara mengambil setetes air plankton
menggunakan pipet dan meletakkannya di atas gelas obyek ditutup dengan
cover glas dan diamati di bawah mikroskop. Luas kotakan yang bergaris – garis
tadi adalah 1 mm2 , sedangkan tinggi airnya sama dengan kedalaman
hemasitometer, yaitu 0,1 mm. Volume air di dalam kotakan adalah 0,1 mm3
terdapat N plankton. Dengan demikian, 1cm3 atau 1 ml air jumlah planktonnya
adalah 10.000 x N sel (Mudjiman, 2004).
Dari hasil perhitungan kepadatan N. oculata yang dikultur dapat diketahui
bahwa pada awal pertumbuhannya peningkatan kepadatan sel berjalan
bertahap, hal ini sesuai dengan pendapat Fogg (1987) dalam Bahua (2015), sel
fitoplankton membutuhkan waktu untuk menyesuaikan diri dengan kondisi
lingkungan yang baru. Setelah mengalami fase lag, pada hari ke- 4 sampai hari
ke-6 diperkirakan memasuki fase eksponensial (periode puncak) dimana
perkembangan sel N. oculata mengalami pertumbuhan puncak. Selanjutnya
pada hari ke- 7 merupakan fase kematian dimana terjadi penurunan jumlah
43
populasi mikroalga. Pertumbuhan N. oculata yang dibudidayakan dapat dilihat
hasil perhitungan kepadatan yang tersaji pada Tabel 4.
Tabel 4. Tabel Kepadatan Nannochloropsis oculata yang dikultur
Usia (Hari)
Kepadatan (104 Sel/ml)
Erlenmeyer Carboy Bak Fiber
1 260 264 80
2 332 324 104
3 396 472 188
4 416 520 260
5 552 644 216
6 628 684 -
7 696 756 -
8 728 772 -
9 644 - -
10 532 - -
Berdasarkan Pola pertumbuhan fitoplankton dapat diketahui usia yang
baik untuk panen. Panen ini dilakukan untuk dijadikan bibit dan pakan. Bibit dan
pakan umumnya dilakukan pada hari ke 5- 7. Menurut Sari (2012) pemanenan
harus dilakukan saat fitoplankton mencapai puncak populasi atau fase akhir
eksponensial. Hal ini sesuai dengan pertumbuhan fitoplankton yang didapat.
Pada kultur N. oculata skala laboratorium kepadatan awal adalah 260 x
104 dan mencapai puncaknya pada hari ke-8 728 x 104 sel/ml. Kepadatan N.
oculata meningkat pesat pada saat memasuki fase eksponensial. N. oculata
yang di kultur mengalami fase puncak pada hari ke 8 yaitu dengan kepadatan
728 x 104 sel/ml. Hal ini didukung oleh Kabinawa (2006), yang menyatakan sel
inokulum pada fase eksponensial sudah memanfaatkan nutrien dalam media
tumbuh dan telah terjadi proses biosintesis sel sehingga sel mampu tumbuh dan
bereproduksi lebih banyak. Pada fase eksponensial sel inokulum mengalami
pembelahan maksimal yaitu menjadi dua kali lipat dari sebelumnya. Di bawah ini
44
merupakan grafik pertumbuhan kultur N. oculata pada skala Laboratorium yaitu
menggunakan Erlenmeyer dengan aerasi.
Gambar 12. Grafik Pertumbuhan Nannochloropsis oculata skala Erlenmeyer.
Kepadatan awal kultur N. oculata skala carboy adalah 264 x 104 sel/ml.
dan mengalami puncaknya atau fase eksponensial pada hari ke 8 yaitu 756 x
104 sel/ml. pada hari ke-9 kultur N. oculata pada carboy dilakukan subkultur
pada Bak Fiber 500 Liter. Hal ini didukung oleh Fachrullah (2011) dan Sari (2012)
juga memperlihatkan fase eksponensial pada jenis N. oculata berkisar antara hari
ke 6 sampai hari ke 8. Fase ini ditandai dengan naiknya laju pertumbuhan hingga
kepadatan populasi meningkat beberapa kali lipat. Pada fase ini juga sel alga
sedang aktif berkembang biak melalui pembelahan.
Selama fase eksponensial sel N. oculata membelah dengan cepat, selain
itu sel-sel berada dalam keadaan stabil dengan jumlah sel yang bertambah
dengan kecepatan konstan, bahan sel baru terbentuk dengan laju tetap akan
tetapi bahan-bahan tersebut bersifat katalitik massa bertambah secara
eksponensial (Anggraeni, 2009), hal ini dipengaruhi oleh ketersediaan nutrisi
45
dalam media. Di bawah ini merupakan grafik pertumbuhan kultur N. oculata pada
skala Laboratorium yaitu menggunakan wadah Carboy.
Gambar 13. Grafik Pertumbuhan Nannochloropsis oculata skala Carboy.
Kepadatan awal kultur N. oculata skala intermediate adalah 80 x 104
sel/ml. Dan fase puncak pertumbuhan adalah pada hari ke 4 260 x 104 sel/ml.
Hal ini didukung oleh Isnansetyo dan Kurniastuty (1995), Pertumbuhan mikroalga
dalam kultur dapat ditandai dengan bertambah besarnya ukuran sel atau
bertambah banyaknya jumlah sel. Sampai saat ini kepadatan sel digunakan
secara luas untuk mengetahui pertumbuhan mikroalga.
Kepadatan sel N. oculata mengalami penurunan pada hari ke 5 kultur di,
hal tersebut dikarenakan tempat kultur intermediate tidak dikontrol sepenuhnya
dan juga ketersediaan nutrient mempengaruhi keberlangsungan hidup N.
oculata. Ketersediaan nutrien yang terlalu sedikit akan mengakibatkan
pertumbuhan lambat dan melemahkan kondisi sel sehingga jumlah kepadatan
sel menurun (Rizky, 2010). Kadar nutrisi yang rendah dalam media akan
menurunkan produktivitas sel alga. Sel yang telah mati akan terurai dan pecah
dengan sendirinya, karena tidak dapat mengatur tekanan osmosis. Di bawah ini
46
merupakan grafik pertumbuhan kultur N. oculata pada skala Intermediate yaitu
menggunakan Bak Fiber/Concel 500 L.
Gambar 14. Grafik Pertumbuhan Nannochloropsis oculata skala Intermediate.
4.5 Permasalahan yang Dihadapi
Permasalahan yang dihadapi pada kegiatan Praktek Kerja Magang
tentang Teknik Budidaya Pakan Alami N. oculata di Laboratorium Budidaya
Pakan Alami BPBAP Situbondo adalah keterbatasan ruang untuk menjemur
endapan dari hasil kultur yang akan dijadikan bubuk/powder, sehingga
mengakibatkan waktu yang diperlukan untuk menghasilkan powder akan lebih
lama.
Selain itu, terbatasnya tempat kultur skala Intermediate dimana
perpindahan kultur dari ruang kultur murni II (skala laboratorium) masih harus
bergantian atau bergilir. Hal ini berdampak pada pembibitan untuk kultur skala
Intermediate yang terkadang dari ruang kultur murni II telah melewati fase
eksponensial atau bahkan telah mati, sehingga tidak jadi dikultur.
5. KESIMPULAN DAN SARAN
5.1 Kesimpulan
Setelah mengikuti kegiatan Praktek Kerja Magang di BPBAP Situbondo dapat
disimpulkan kegiatan kultur Nannochloropsis oculata meliputi : Sterilisasi alat dan
bahan, isolasi, kontrol kualitas air, pemupukan, pemeliharaan, perhitungan
kepadatan dan pemanenan. Kultur N. oculata di Lab. Pakan Alami terbagi
menjadi 2 skala yaitu pada skala laboratorium dan skala intermediate. Skala
laboraturium masih terbagi lagi menjadi kultur murni I dan kultur murni II.
Untuk menunjang pertumbuhan N. oculata, pada kultur Skala Laboratorium
nilai suhu yang optimal untuk kultur N. oculata skala Laboratorium berkisar
antara 220C, Salinitas berkisar antara 30-34 ppt, dan nilai pH berkisar antara 8 –
8.5, serta untuk suplai cahaya pada skala laboratorium menggunakan lampu TL
40 watt. Kepadatan tertinggi pada kultur skala Laboratorium N. oculata terjadi
pada hari ke 8 yaitu pada kultur Erlenmeyer menggunakan aerasi sebesar 728 x
104 sel/ml, dan pada hari ke 7 kultur carboy sebesar 756 x x 104 sel/ml. Pada
skala intermediate nilai suhu berkisar 260 – 290C. Nilai derajat keasaman berkisar
7 – 8 sedangkan salinitas yang digunakan sebesar 32 – 35 ppt, dan
pencahayaan langsung dari cahaya matahari. Kepadatan tertinggi N. oculata
terjadi pada hari ke 4 yaitu sebesar 260 x 104 sel/ml.
5.2 Saran
Saran yang dapat diberikan pada kegiatan kultur N. oculata di Lab. Pakan
Alami yaitu perlunya inovasi pada pemanfaatan ruang kultur skala intermediate
dan tempat pengeringan yang lebih intensif sehingga ruang yang ada saat ini
dapat dimanfaatkan secara efektif dan efisien.
49
DAFTAR PUSTAKA
Aedi, Nur. 2010. Pengolahan dan Analisis Data Hasil Penelitian. Bahan Belajar Mandiri Metode Penelitian Pendidikan. Fakultas Ilmu Pendidikan. Universitas Pendidikan Indonesia. Jakarta.
Amanatin, D. R., Rofidah, E dan Rosady, S. D. N. 2014. Produksi Protein Sel
Tunggal (PST) Spirulina sp. sebagai Super Food dalm Upaya Penanggulangan Gizi Buruk dan Kerawanan Pangan di Indonesia. Jurusan Biologi. Institut Teknologi Sepuluh Nopember. Surabaya.
Anggraeni, N. 2009. Penentuan Parameter Pertumbuhan Chlorella vulgaris. Disertasi. Fakultas Teknik. ITB.
Baharuddin, Maswati. 2011. Analisis Perbedaan Kandungan Lipida
Mikroalga (Tetraselmis chuii dan Nannochloropsis oculata) Pada Air Laut dan Air Payau. Teknosains. 5(1): 26-32.
Bahua, H., Y. Hendrawan dan R. Yulianingsih. 2015. Pengaruh Pemberian Auksin Sintetik Asam Naftalena Asetat Terhadap Pertumbuhan Mikroalga (Nannochloropsis oculata). Jurnal Keteknikan Pertanian Tropis dan Biosistem. 3(2) : 179-186
Bold, H.C. and Michael J.W. 1985. Introduction to The Algae, Prentice Hall.,
Inc.,New Jersey, USA, 720 pp.
Cahyaningsih, S dan Subyakto, S. 2009. Kultur massal Scenedesmus sp. sebagai upaya penyedia pakan rotifera dalam bentuk alami maupun konsentrat. Jurnal Ilmiah Perikanan dan Kelautan. 1(2) : 143-147.
Cahyaningsih, S., A.N.M. Muchtar, S.J. Purnomo, I. Kusumaningrum, Pujiati, A.
Haryono, Slamet dan Asniar. 2009. Juknis Produksi Pakan Alami.
Departemen Kelautan dan Perikanan Direktorat Jendral Perikanan
Budidaya Balai Budidaya Air Payau Situbondo.
Chalid, S. Y., S. Amini dan S. D. Lestari. Kultivasi Chlorella sp. pada Media Tumbuh yang diperkaya dengan Pupuk Anorganik dan Soil Ekstrak. Laporan Penelitian. Fakultas Sains dan Teknologi. UIN Syarif Hidayatullah. Jakarta.
Departemen Pekerjaan Umum. 1990. Kumpulan SNI Bidang Pekerjaan Umum
Mengenai Kualitas Air.Badan Penelitian dan Pengembangan Pekerjaan Umum.
Ekawati, A, W. 2005. Budidaya Makan Alami. Fakultas Perikanan Universitas
Brawijaya. Malang.
Elzenga JTM, Prins HBA, and Stefels J. 2000. The role of extracellular carbonic anhydrase activity in inorganic carbon utilization of Phaeocystis globosa (Prymnesiophyceae): a comparison with other marine algae using the
50
isotopic disequilibrium technique. Limnology and Oceanography 45(2):372-380
Fachrullah MR. 2011. Laju Pertumbuhan Mikroalga Penghasil Biofuel Jenis
Chlorella sp. dan Nannochloropsis sp. yang Dikultivasi Menggunakan Air Limbah Hasil Penambangan Timah di Pulau Bangka.[Skripsi] Institut Pertanian Bogor. Bogor.
Hermanto, M. B., Sumardi, La Choviya Hawa dan Siti Masithah F. 2011.
Perancangan Bioreaktor untuk Pembudidayaan Mikroalga. Jurnal Teknologi Pertanian. 12(3) : 153-162
Hirata, H., A. Ishak, dan S. Yamashaki. 1981. Effect of Salinity and Temperature
on The Growth of The Marine Phytoplankton Chlorella saccharophilla.
Journal of the Kagoshima Univ of Fisheries. Japan. 30(2) : 257-262.
Hibberd, B. 2000. Systema Nature Classification. http://taxonomicon.taxonomy. nl/TaxonTree.aspx
Hu H and Gao K. 2003. Optimization of growth and fatty acid composition of a
unicellular marine picoplankton, Nannochloropsis sp. with enriched carbon sources. Biotechnology Letters. 25(5):421-425
Irawan, B. 2009. Kultur Murni Alga Laut Nannoclhoropsis oculata sebagai Pakan
Alami di Laboratorium Ilmu-Ilmu Perairan, Fakultas Perikanan dan Ilmu
Kelautan. FPIK UB : Malang.
Isnansetyo, A. dan Kusniastuty. 1995. Teknik Kultur Phytoplanton dan
Zooplankton. Penerbit Kanisius. Yogyakarta
Kabinawa, IN.K., D.Susilaningsih, dan N.W.S.Agustini. 1994. Produksi biomasa
mikroalga Chlorella pyrenoidosa dalam skala rumah kaca. (online).
(http//katalog.pdii.lipi.go.id diakses 11 Mei 2010)
Matakupan, J. 2009. Study Kepadatan Tetraselmis chuii yang Dikultur Pada
Intensitas Cahaya yang Berbeda. Jurusan Manajemen Fakultas
Perikanan dan Ilmu Kelautan Universitas Patimura Ambon. Jurnal
TRITON volume 5, Nomor 2, Oktober 2009, hal 31- 35.
Mudjiman, A. 2004. Makanan Ikan. Penebar Swadaya. Jakarta.
Nazir, M. 1998. Metodologi Penelitian. Ghalia Indonesia. Jakarta. Prabowo, Dadang. 2009. Optimalisasi Pengembangan Media Untuk
Pertumbuhan Chlorella sp pada Skala Laboratorium. SKRIPSI. Institut
Pertanian Bogor : Bogor. 95 hal.
Rizky NM. 2010. Optimasi Kultivasi Mikroalga Laut Nannochloropsis oculata
dengan Perlakuan Pupuk Urea untuk Produksi Lemat Nabati. Fakultas
Perikanan, Universitas Brawijaya, Malang
51
Sari IP, Abdul M. 2012. Pola pertumbuhan Nannochloropsis oculata pada skala
laboratorium, intermediet dan masal. Ilmiah Perikanan dan Kelautan.
4(2) : 123-127.
Sriharti & Carolina, 1995, Kualitas Algae Bersel Tunggal Chlorella sp. pada Berbagai Media, Balai Pengembangan Teknologi Tepat Guna, Puslitbang Fisika Terapan-LIPI, Subang, Seminar Ilmiah Hasil Penelitian dan Pengembangan Bidang Fisika Terapan
Surakhmad, W. 2004. Pengantar Penelitian Ilmiah Dasar, Metode dan Teknik
(Edisi Revisi). Penerbit Tarsito : Bandung Suryana. 2010. Metodologi Penelitian: Model Praktis Penelitian Kuantitatif dan
Kualitatif. Buku Ajar Perkuliahan. Universitas Pendidikan Indonesia. Jakarta.
Tjahjo, W. L. Erawati dan Hanung, S. 2002. Biologi Fitoplankton dalam Budidaya
Fitoplankton dan Zooplankton. Balai Budidaya Laut, Direktorat Jendral
Perikanan Budidaya Departemen Kelautan dan Perikanan. Bandar
Lampung.
Utami NF, Yuniarti MS, Kiki H. 2012. Pertumbuhan Chlorella sp. Yang dikultur pada perioditas cahaya yang berbeda. Perikanan dan Kelautan. 3 (3):237-244.
Watanabe, T. 1979. Nutritional Quality of Living Feeds Used in Seed Production
of Fish. Proc. Japan-Soviet Joint. Symp Agriculture 7.
Widiastuti, A. 2014. Data, Teknik Pengumpulan Data dan Instrumen Penelitian. Bahan Ajar Metode Penelitian. Universitas Negeri Yogyakarta. Yogyakarta.
52
LAMPIRAN
Lampiran 1. Struktur Organisasi BPBAP Situbondo
53
Lampiran 2. Dokumentasi Kegiatan
No. Foto Kegiatan Keterangan
1.
Pembuatan Pupuk
Walne
2.
Penuangan Bibit
Nannochloropsis oculata
pada Bak Conicel 500 L
3.
Pengambilan sampel
untuk penghitungan
kepadatan
4.
Pengamatan dan
perhitungan kepadatan
54
5.
Proses pemanenan
endapan
6.
Proses penganginan
endapan
7.
Endapan
Nannchloropsis oculata
yang sudah mengering
8.
Produk Powder
Nannochloropsis oculata
55
Lampiran 3. Alat dan Fungsi
No Nama alat Fungsi
1 Karet pengisap masuk ke dalam pipet kapiler
2 Pipet kapiler Untuk menampung air sampel
3 Erlenmeyer Sebagai media budidaya skala laboratorium
4 Toples kaca Sebagai media budidaya skala laboratorium
5 Karboy Sebagai media budidaya skala laboratorium
6 Bak fiber Sebagai media budidaya skala intermediet
7 Oven Untuk proses pengeringan phytoplankton
8 Autoclave Untuk mensterilisasi
9 Timbangan Untuk menimbang bahan
10 Selang aerasi Sebagai saluran masuknya oksigen
11 Batu aerasi Sebagai sumber oksigen
12 Haemocytometer Untuk menghitung kepadatan phytoplankton
13 Mikroskop Untuk melihat phytoplankton
14 Sedgewich rafter Untuk menghitung kepadatan phytoplankton
15 Blender Sebagai alat untuk menghaluskan phytoplankton
16 Pipa Untuk sebagai saluran air dan oksigen
17 Filter bag Sebagai penyaring air ke filter bag
18 Kompor gas Sebagai sumber api
19 Keranjang Sebagai wadah untuk menyimpan erlenmeyer
20 Panci Untuk menampung air yang akan direbus
21 Gayung Untuk mengambil air dari drum/panci ke toples
22 Jerigen Untuk menampung pupuk dan silikat
23 Kain Untuk menyaring phytoplankton yang dipanen
24 Saringan Untuk menyaring bahan
56
25 Alumunium foil Sebagai penutup erlenmeyer
26 Plastik Sebagai penutup erlenmeyer dan toples kaca
27 Sikat Untuk menyikat bak fiber
28 Schoring beag Untuk membersihkan alat
29 Nampan Untuk menampung phytoplankton
30 Gelas ukur Untuk mengukur bahan
31 Drum Untuk menampung air pada skala laboratorium
32 Lampu Sebagai penerang skala laboratorium
33 AC Sebagai pendingin ruangan
57
Lampiran 4. Bahan dan Fungsi
NO BAHAN Fungsi
1 Air laut Sebagai media pemeliharaan
2 Air tawar Sebagai sterilisasi air
3 Phytoplankton Sebagai boita yang di kiltur
4 Pupuk walne Sebagai pupuk phytoplankton berwarna hijau
5 Soda api Untuk mengendapkan phytoplankton
6 Aquades Sebagai sterilisasi air
7 Vitamin Sebagai vitamin phytoplankton pada skala laboratorium
8 Thiosulfat Untuk menetralkan air
9 Chlorin test Untuk mengecek kenetralan air media
10 Detergen Untuk mencuci bak
11 Kaporit Untuk sterilisasi air laut dan wadah kultur
12 Alkohol Untuk membersihkan rak-rak kaca skala laboratorium
13 HCL Untuk membersihkan erlenmeyer
