Halaman Kosong - Jurnal Akademi Farmasi Surabaya

Halaman Kosong

Journal of Pharmacy and Science

Vol. 4, No. 2, (Juli 2019), P-ISSN : 2527-6328, E-ISSN : 2549-3558

iv

Journal of Pharmacy and Science Jurnal Ilmiah Ilmu Farmasi dan Sains (Kimia, Biologi, Fisika)

Volume 4, Nomor 2, Juli 2019

Journal of Pharmacy and Science yang diterbitkan sejak 2016 berisi kumpulan artikel

yang telah ditelaah dari hasil penelitian dan studi kepustakaan berbasis pengetahuan

dan terkait dengan bidang farmasi, biologi, kimia, dan kesehatan. Artikel berasal dari

penulis yang berafiliasi dengan perguruan tinggi, badan penelitian dan pengembangan,

lembaga penelitian non-departemen (LPND) atau lembaga lain yang memiliki aktifitas

dalam riset, ilmu pengetahuan dan teknologi. Setiap naskah yang diterima redaksi

Journal of Pharmacy and Science akan ditelaah oleh penelaah ahli dan anggota redaksi.

Journal of Pharmacy and Science terbit 2 kali dalam setahun, pada bulan Juli dan

Januari.

Alamat Redaksi:

AKADEMI FARMASI SURABAYA

Jl. Ketintang Madya 81 Surabaya Telp. (031) 828 0996

Email: [email protected]

Dicetak dan diterbitkan oleh PENERBIT GRANITI

Perum Kota Baru Driyorejo, Jl. Granit Kumala 1/12, Gresik, Jatim 61177

Telp : 081357827429, email : [email protected].

Kesalahan penulisan (isi) diluar tanggung jawab percetakan

mailto:[email protected]




v

DEWAN REDAKSI JURNAL PHARMASCI

Penanggung Jawab : Dr. Abd. Syakur, M. Pd.

Pimpinan Redaksi : Prasetyo Handrianto, S.Si., M.Si.

Ketua Penyunting : Ratih Kusuma Wardani, S.Si., M.Si.

Anggota Penyunting : Djamilah Arifiyana, S.Si., M.Si.

Vika Ayu Devianti, S.Si., M.Si.

Ilil Maidatuz Zulfa, S.Farm., M.Si., Apt.

Editor/Layout : Rizky Darmawan, M.Si.

Dewi Setiowati, S.Pd.

Kesekretariatan : Suci Reza Syafira, SE.I.

Penelaah Ahli : Qurrota A’yuni, M.Si.

(Universitas Airlangga Surabaya)

Rosita Dwi Chrisnandari, M.Si.

(Politeknik Negeri Malang)

Cicik Herlina Yulianti, S.T., M.Si.

(Akademi Farmasi Surabaya)

Vika Ayu Devianti, S.Si., M.Si.


Tri Puji Lestari, S.Si., M.Si.


Galuh Gondo Kusumo, S.Farm., M.Farm., Apt..


Floreta Fiska Yuliarni, M.Si.


Lailatus Sadiyah, S.Pd., M.Si.


Iin Ernawati, M.Farm-Klin., Apt.


Eziah Ika Lubada, M.Farm-Klin., Apt.




vi

Halaman Kosong



vii

DAFTAR ISI

Journal of Pharmacy and Science ..................................................................................................................... iv

DEWAN REDAKSI JURNAL PHARMASCI .................................................................................................. v

DAFTAR ISI .................................................................................................................................................. vii

Uji Aktivitas Kombucha Teh dan Kopi Sebagai Antibakteri Bakteri Gram Positif dan Bakteri Gram Negatif ....61

Surahmaida1*),

Kinanti Ayu Puji Lestari1 .............................................................................................61

Evaluasi Peresepan Terapi Bronkopneumonia Anak di Unit Rawat Jalan Rumah Sakit Umum Daerah Bangkalan,

Indonesia .........................................................................................................................................................67

Ilil Maidatuz Zulfa1*),

Fitria Dewi Yunitasari 1, Nisa Dwi Ratnadi

2 ....................................................67

Perbandingan Proses Fotodegradasi Pada Zat Warna Metil Jingga Menggunakan Zeolit, Katalis Fe2O3-Zeolit dan

Sinar UV .........................................................................................................................................................71

Pemta Tia Deka1*) ..................................................................................................................................71

Determinasi dan Analisa Proksimat Daun Benalu pada Pohon Mangga Arum Manis di Ketintang Madya

Surabaya .........................................................................................................................................................77

Silfiana Nisa Permatasari1*),

Umarudin1 ...............................................................................................77

Pengaruh Hormon Indole Butyric Acid (IBA) dan 6-Benzyl Amino Purin (BAP) terhadap Induksi Kalus..........85

Piper betle L. var Nigra ...................................................................................................................................85

Junairiah,1*)

Artifa Rachmah,1)

Yosephine Sri Wulan Manuhara1),

Ni’matuzahroh1)

Lilis Sulistyorini 2)

Surahmaida3) ......................................................................................................................................85

Efektivitas Pandan (Pandanus Amarilifolius Roxb) Sebagai Pereduksi Alami Kadar Formalin pada Cincau Hitam

.......................................................................................................................................................................91

Galuh Ratmana Hanum1*)

, Syahrul Ardiansyah1, Puspita Handayani

2 ...............................................91

Pengaruh Pemberian Pupuk Organik Cair Dari Limbah Cair Tahu dan Serbuk Tulang Ikan Bandeng Terhadap

Kandungan Flavonoid Daun Bayam Merah (Althernantera amoena Voss) ........................................................97

IAK Pramushinta1 .................................................................................................................................97

Uji Banding Ekstrak Bawang Hitam dan Ekstrak Bawang Putih (Allium sativum) Sebagai Antifungi Terhadap

Pertumbuhan Candida albicans ..................................................................................................................... 101

Purity Sabila A. 1*)

, Ngadiani 2, Fradina Fitri Budiarti

3 ..................................................................... 101

Pengaruh Perendaman Umbi dan Tepung Porang Dalam Sari Buah Belimbing Wuluh Terhadap Sifat Fisik dan

Kadar Kalsium Oksalat .................................................................................................................................. 105

Ratih Kusuma Wardani1*),

Prasetyo Handrianto1 .............................................................................. 105

Analisis Kandungan Logam Timbal pada Sediaan Kosmetik Bedak yang Beredar di Pasar Pengampon Surabaya

..................................................................................................................................................................... 111

Djamilah Arifiyana*1)

, Ermayulis1 ...................................................................................................... 111



viii

Halaman Kosong


Vol. 4, No.2, (Juli 2019), P-ISSN : 2527-6328, E-ISSN : 2549-3558

61

Artikel Penelitian

Surahmaida1*),

Kinanti Ayu Puji Lestari1

1Akademi Farmasi Surabaya, Surabaya. *) E-mail: [email protected]

ABSTRAK

Penelitian ini bertujuan untuk mengetahui kemampuan Kombucha dalam menghambat pertumbuhan bakteri

Gram positif dan Gram negatif. Metode yang digunakan dalam penelitian ini meliputi pembuatan Kombucha

dengan variasi bahan dasar (teh hitam, teh hijau dan kopi) dengan jenis gula yang berbeda (gula pasir dan gula

stevia); dan uji antibakteri menggunakan metode kertas cakram (difusi agar) terhadap bakteri Gram positif dan

Gram negatif. Hasil penelitian menunjukkan ke-6 varian Kombucha tidak berpengaruh atau tidak adanya zona

bening (zona hambat) yang terbentuk di sekitar kertas cakram uji pada semua bakteri uji.

Kata kunci: Kombucha teh dan kopi, bakteri Gram positif dan bakteri Gram negatif, zona hambat

Tea and Coffee Kombucha Activity Test as Antibacterial for Gram

Positive Bacteria and Gram Negative Bacteria

ABSTRACT

The aim of this tudy is to determine the ability of Kombucha to inhibit the growth of Gram positive and Gram

negative bacteria. The method used in this study included the making of Kombucha with a variety of basic

ingredients (black tea, green tea and coffee) with different types of sugar (sugar and stevia sugar); and antibacterial tests using the paper disc (agar diffusion) method against Gram positive and Gram negative

bacteria. The results showed that the 6 variants of Kombucha had no effect or absence of a clear zone

(inhibition zone) formed around the test disc paper in all test bacteria.

Keywords: Tea and coffee Kombucha, Gram positive bacteria and Gram negative bacteria, inhibitory zone

1. PENDAHULUAN

Kombucha atau yang sering disebut dengan

jamur teh merupakan minuman fermentasi teh atau

kopi menggunakan starter bakteri dan jamur (Scoby)

dengan waktu fermentasi selama 7-14 hari.

Kombucha banyak dikonsumsi masyarakat sebagai

minuman kesehatan karena banyak mengandung

asam organik, vitamin dan monosakarida [1]

.

Selama ini, manfaat kombucha hanya digunakan

untuk mengobati beberapa penyakit, namun masih

sedikit penelitian yang memanfaatkan kombucha

sebagai antibakteri. Penelitian yang dilakukan oleh [2], menunjukkan bahwa Kombucha teh hitam mampu

menghambat pertumbuhan bakteri Escherichia coli

(23 mm), Pseudomonas aeruginosa (26 mm), dan

Staphylococcus aureus (25 mm) pada fermentasi hari

ke-14 hari. [3] menyatakan bahwa Kombucha teh

hitam dan hijau yang difermentasi selama 12 hari

mampu menghambat bakteri E. coli (150 µg/ml), S.

typhi (336 µg/ml) dan P. aeruginosa (228 µg/ml);

untuk Kombucha teh hijau mampu menghambat

bakteri S. aureus (280 µg/ml). Minuman Kombucha

teh hitam juga mampu menghambat bakteri

Salmonella typhi dan Escherichia coli [4]. Penelitian

tentang aktivitas antibakteri juga telah lama

dilakukan oleh [4]

dan [5]

dimana Kombucha teh

mampu menghambat bakteri S. typhi, S. aureus, E.

coli dan B. cereus.

Pada penelitian ini, digunakan jenis bakteri

Gram positif dan bakteri Gram negatif. Contoh dari

bakteri Gram positif yaitu Staphylococcus aureus,

Bacillus subtilis dan Bacillus cereus; sedangkan

bakteri Gram negatif yang digunakan yaitu

Pseudomonas aeruginosa, Escherichia coli dan

Salmonella typhi. Keenam bakteri tersebut

merupakan bakteri penyebab penyakit infeksi pada

manusia.

Berdasarkan latar belakang tersebut, maka

penelitian ini bertujuan untuk mengetahui potensi

Kombucha teh hitam, teh hijau dan kopi terhadap

bakteri Gram positif dan bakteri Gram negatif.

Uji Aktivitas Kombucha Teh dan Kopi Sebagai Antibakteri Bakteri Gram Positif dan Bakteri Gram Negatif




62

diharapkan penelitian ini dapat menjadi informasi

tambahan/acuan bagi peneliti selanjutnya.

2. METODE PENELITIAN

Penelitian ini terdiri dari 6 varian Kombucha

yang akan diujikan sebagai antibakteri Gram positif

dan Gram negatif.

2.1. Alat

Alat-alat yang digunakan adalah toples kaca,

saringan, kompor listrik, cawan petri, beker glas,

gelas ukur, pengaduk, tabung reaksi, pipet, spatula,

pinset, gunting, autoklaf, termometer, pH meter

inkubator.

2.2. Bahan

Bahan yang digunakan dalam penelitian ini

adalah aquadest, gula pasir, gula Stevia (Tropicana),

teh hijau merek “Djenggot”, teh hitam merek “Tong

Tji”, kopi bubuk, starter Kombucha, bakteri Gram

postif (Staphylococcus aureus, Bacillus subtilis,

Bacillus cereus), bakteri Gram negatif (Pseudomonas

aeruginosa, Escherichia coli, Salmonella typhi),

kertas cakram, plastic wrap, aluminium foil, kapas

lemak, media Nutrient Agar dan media Nutrient

Broth.

2.3. Cara Kerja

2.3.1. Pembuatan Kombucha

A. Pembuatan Kombucha (jenis gula: gula pasir)

Sebanyak 2 kantong teh hitam (berat per 1

kantong teh yaitu 2 gr) dilarutkan ke dalam panci

yang berisi 1 Liter air panas dan ditambahkan dengan

gula pasir sebanyak 127 gr/Liter. Diaduk hingga

bercampur sempurna. Lalu teh disaring dan

dimasukkan ke dalam toples dan dibiarkan hingga

mencapai suhu ruang (37°C). Setelah suhu mencapai

37°C, ¼ starter kombucha yang berdiameter 10 cm +

2 sendok larutan starter Kombucha dimasukkan ke

dalam toples yang telah berisi larutan teh-gula.

Sebelum ditutup, terlebih dahulu dilakukan

pengukuran pH. Setelah itu, toples ditutup rapat dan

dibungkus dengan serbet. Difermentasi selama 10

hari dalam kondisi gelap dan pada suhu ruang. Tiap

tahapan dilakukan secara aseptis.

Untuk pembuatan Kombucha Teh Hijau, 2

kantong Teh Hijau cap “Djenggot” (1 kantong teh @

2,4 gr) dimasukkan ke dalam 1 Liter air panas.

Sedangkan Kombucha Kopi, membutuhkan 10

gram kopi bubuk untuk dilarutkan ke dalam 1 Liter

air panas.

B. Pembuatan Kombucha (jenis gula: gula Stevia)

Perlakuan yang sama juga digunakan untuk

membuat Kombucha teh hitam, teh hijau dan kopi

dengan gula Stevia (Tropicana). Namun, gula Stevia

yang ditambahkan ke dalam larutan teh hitam, teh

hijau dan kopi sebanyak 18,2 gram (7 bungkus). Tiap

tahapan dilakukan secara aseptis.

2.3.2. Pembuatan Media

Media yang digunakan untuk uji aktivitas

antibakteri adalah media Nutrient Agar (NA).

Sebanyak 2 gram NA dilarutkan ke dalam

Erlenmeyer yang berisi 100 ml akuades, diaduk

hingga larut dengan sempurna lalu dididihkan sampai

berwarna seperti minyak goreng. Kemudian larutan

NA disterilisasi dengan autoklaf pada suhu 121 0C

selama 15 menit. Setelah disterilisasi, larutan NA

dituang ke dalam cawan petri masing-masing

sebanyak 15 ml. Ditunggu sampai mengeras dan

diinkubasi selama 24 jam.

2.3.3. Pengukuran pH

Diambil sedikit larutan Kombucha, kemudian

diukur pH-nya dengan menggunakan kertas pH

universal. Perlakuan ini dilakukan sebelum dan

sesudah fermentasi.

2.3.4. Penentuan Konsentrasi Kombucha

Konsentrasi yang digunakan pada ke-6 varian

Kombucha adalah 100%.

2.3.5. Pembuatan Media NA

Sebanyak 2 gram NA dilarutkan ke dalam

erlenmeyer yang berisi 1 Liter aquadest, diaduk

hingga homogen. Lalu dipanaskan hingga mendidih

sampai berwarna kuning seperti minyak goreng.

Disterilkan ke dalam autoklaf selama 15 menit pada

suhu 121 0C (tekanan 1 atm). Kemudian media

dituangkan ke dalam cawan petri (@ 15 ml) dan

dibiarkan hingga memadat. Setelah media NA padat,

kemudian 0,1 ml suspensi bakteri uji diinokulasikan

di atas media NA dengan menggunakan spreader,

cawan petri dibungkus dengan plastic wrap sampai

rapat. Inkubasi selama 24 jam.

2.3.6. Uji Aktivitas Kombucha sebagai Antibakteri

Dilakukan pengujian aktivitas Kombucha

sebagai antibakteri pada masing-masing sampel

Kombucha terhadap masing-masing bakteri Gram

postif (Staphylococcus aureus, Bacillus subtilis,

Bacillus cereus) dan bakteri Gram negatif

(Pseudomonas aeruginosa, Escherichia coli,



63

Salmonella typhi), dengan menggunakan metode

kertas cakram. Konsentrasi ekstrak yang digunakan

antibakteri Kombucha adalah 100%, dimana kertas

cakram uji telah direndam ke dalam masing-masing

larutan Kombucha selama 5 menit. Sebagai kontrol,

digunakan pelarut aquades. Lalu diinkubasi 2x24 jam

untuk mengetahui sifat bakteriostatik atau

bakterisidal. Masing-masing perlakuan dilakukan

replikasi 3 kali. Kemudian diukur zona hambat yang

terbentuk dengan menggunakan jangka sorong.

3. HASIL DAN PEMBAHASAN

Kombucha atau yang dikenal dengan “jamur

dipo” oleh masyarakat, merupakan salah satu

minuman tradisional hasil fermentasi dari larutan

teh/kopi dengan menggunakan SCOBY (Symbiotic

Culture Of Bacteria and Yeast) yang difermentasi

selama 7-12 hari sehingga terbentuk rasa asam [6]

.

Bakteri (Acetobacter xylinum) dan yeast

(Saccharomyces cereviceae, Sachharomyces

bisporus, Zygosaccharomyces sp.) pada SCOBY

akan mengubah gula menjadi berbagai jenis zat

asam, vitamin dan alkohol yang berkhasiat bagi

tubuh [7]

seperti meningkatkan stamina dan imunitas

tubuh, rematik, peradangan sendi [8]

, antioksidan dan

antimikroba [7]

. Pada penelitian ini, fermentasi

Kombucha dilakukan selama 10 hari.

Untuk membuat Kombucha yang melibatkan

mikroorganisme, maka harus ditambahkan nutrisi

untuk pertumbuhan mikroorganisme tersebut. Nutrisi

tersebut adalah gula. Gula ini akan diubah menjadi

glukosa dan fruktosa untuk menghasilkan asam

asetat. Selain itu, gula juga digunakan sebagai media

pertumbuhan mikroorganisme sehingga

menghasilkan zat-zat hasil fermentasi secara optimal [9]

. Dalam penelitian ini, terdapat 2 jenis gula yang

digunakan yaitu gula pasir dan gula batu (gula stevia)

untuk masing-masing teh hitam, teh hijau dan kopi.

Selama proses fermentasi Kombucha, yeast

(khamir) akan merombak sukrosa menjadi glukosa

dan fruktosa, serta mengubah glukosa dan fruktosa

menjadi etanol dan karbondioksida [10]

. Etanol yang

dihasilkan oleh yeast (khamir) mempercepat

pertumbuhan bakteri asam asetat (Acetobacter

xylinum) [11]

. Sedangkan bakteri asam asetat akan

mengoksidasi glukosa menjadi asam glukonat dan

asam ketoglukonat, dan mengoksidasi fruktosa

menjadi asam asetat [12, 13]

. Selain itu, gula akan

merangsang pertumbuhan bakteri A. xylinum

sehingga selulosa (polisakarida) cepat terbentuk.

Semakin banyak jumlah selulosa yang terbentuk,

maka starter Kombucha (SCOBY) akan semakin

menebal. Hal ini ditandai dengan starter Kombucha

yang awalnya hanya berupa lapisan tipis, lama-

kelamaan starter Kombucha akan meluas dan

menebal secara berlapis [14]

.

3.1. Analisis pH

Pengukuran pH untuk ke-6 varian Kombucha

dilakukan sebelum dan setelah difermentasi selama

10 hari. Adapun hasil pengukuran pH pada ke-6

varian Kombucha dapat dilihat pada Tabel 1 sebagai

berikut:

Tabel 1. Hasil pengukuran pH Kombucha

No Varian Kombucha pH

Awal 10 hari

1 Teh Hijau Gula Pasir (TJP) 7 3 2 Teh Hijau Gula Stevia

(TJS) 7 2

3 Teh Hitam Gula Pasir (THP)

7 3

4 Teh Hitam Gula Stevia (THS)

7 2

5 Kopi Gula Pasir (KP) 7 2

6 Kopi Gula Stevia (KS) 7 2

Dari Tabel 1, diperoleh nilai pH yang

mengalami penurunan secara cepat pada fermentasi

10 hari (dari pH 7 menurun menjadi pH 2 - 3).

Penurunan pH pada ke-6 varian Kombucha

kemungkinan terjadi karena adanya asam asetat yang

meningkat. Asam asetat tersebut melepaskan ion-ion

H+ sehingga pH menjadi menurun [15]

. Hal ini sesuai

dengan pernyataan [16]

dan [17]

, dimana penurunan

pH yang cepat disebabkan karena adanya aktivitas

metabolisme bakteri Acetobacter xylinum selama

proses fermentasi berlangsung.

pH optimum yang dibutuhkan untuk

pertumbuhan bakteri Acetobacter spp. antara 5,4 –

6,3. Pertumbuhan bakteri mungkin juga terjadi pada

pH 4 - 4.5 dan pertumbuhan minimal mungkin terjadi

pada pH 7 – 8 [18]

. Namun hasil penelitian ini

menunjukkan nilai pH 2 – 3. Menurut [19]

bakteri

asam asetat mampu tumbuh dan menghasilkan

selulosa pada pH < 3. Hasil nilai pH inilah yang

mungkin disebabkan oleh variabilitas mikroflora

normal yang ditemukan pada varian Kombucha yang

berbeda.

Untuk konsumsi Kombucha, pH Kombucha

yang aman untuk dikonsumsi adalah pada kisaran pH

3. Namun, dikarenakan pH pada penelitian ini ada



64

yang bernilai pH 2, maka Kombucha tersebut harus

diencerkan terlebih dahulu sebelum dikonsumsi

untuk mengurangi dampak buruk pada dinding

saluran pencernaan akibat pH yang terlalu rendah

(asam) [20]

.

3.2. Analisis Antibakteri Kombucha

Pada saat fermentasi Kombucha telah

mencapai 10 hari, maka diambil sedikit larutan

Kombucha untuk dilakukan pengujian daya hambat

terhadap bakteri Gram positif (Staphylococcus

aureus, Bacillus subtilis, Bacillus cereus) dan bakteri

Gram negatif (Pseudomonas aeruginosa, Escherichia

coli, Salmonella typhi) dengan metode kertas cakram.

Dari hasil pengamatan pada keenam varian

Kombucha tidak menunjukkan adanya zona hambat

(zona bening). Hasil aktivitas keenam varian

Kombucha sebagai antibakteri bakteri Gram positif

dan bakteri Gram negatif ini dapat dilihat pada Tabel

2 di bawah ini:

Tabel 2. Hasil pengujian pada ke-6 varian Kombucha

sebagai antibakteri Gram positif dan Gram negatif

Pada Tabel 2. menunjukkan bahwa ke-6

varian Kombucha tidak memberikan pengaruh pada

pengujian antibakteri Gram positif dan Gram negatif.

Kombucha mampu bertindak sebagai

antibakteri karena adanya simbiosis antara bakteri

dan yeast di dalamnya [21, 22]

. Kandungan zat pada

Kombucha yang berperan sebagai antimikroba adalah

usnic acid pada kultur Kombucha [23]

, asam asetat

sebagai agen antimikroba yang utama [5]

dan

senyawa lain seperti bacteriocins, protein, enzim, teh

yang mengandung senyawa fenolik serta tannin [4]

.

Penelitian ini bertujuan untuk mengetahui aktivitas

Kombucha (teh hitam, teh hijau dan kopi) sebagai

antibakteri Gram positif dan Gram negatif. Namun

semuanya menunjukkan tidak terbentuk zona bening

(zona hambat) di sekitar kertas cakram uji (Gambar

1).

Tidak adanya zona hambat yang terbentuk

dari ke-6 varian Kombucha terhadap semua bakteri

yang diuji, diduga karena lama fermentasi yang

kurang lama. Lama fermentasi, asam asetat dan pH

sangat berkaitan erat, dimana semakin lama

fermentasi, maka asam asetat yang dihasilkan juga

semakin banyak dan mengakibatkan pH menjadi

menurun.

Gambar 1. Hasil uji Kombucha sebagai antibakteri

Kemungkinan lain disebabkan adanya

perbedaan takaran bahan dasar yang digunakan yaitu

jenis gula dan media Kombucha yang digunakan saat

pembuatan Kombucha.

Dari hasil penelitian ini, diharapkan ada

penelitian lanjutan tentang uji aktivitas Kombucha

teh hitam, teh hijau dan kopi sebagai antibakteri

namun dengan variabel uji yang berbeda sehingga

diharapkan dapat dijadikan acuan awal (referensi)

bagi peneliti yang lain.

4. KESIMPULAN

Keenam varian Kombucha mengalami

penurunan pH dari 7 menjadi sekitar 2-3. Namun

varian Kombucha tersebut tidak memiliki pengaruh

sebagai antibakteri terhadap bakteri Gram positif dan

bakteri Gram negatif (ditandai dengan tidak adanya

zona bening) yang terbentuk.

5. UCAPAN TERIMA KASIH

Penulis mengucapkan terima kasih kepada

Akademi Farmasi Surabaya dan semua pihak yang

telah memberikan dukungan dan fasilitas sehingga

penulis dapat menyelesaikan artikel ini.



65

6. KONFLIK KEPENTINGAN

Seluruh penulis menyatakan tidak terdapat

potensi konflik kepentingan dengan penelitian,

kepenulisan (authorship), dan atau publikasi artikel

ini.

DAFTAR PUSTAKA

1. Malbasa, R., Loncar, E., Djuric, M., Dosenovic, I.

Effect of sucrose concentration on the

products of Kombucha fermentation on

molases. Food Chemistry. 2008: 108(3):

926-932.

2. Alkhalifawi, I. Antimicrobial Activity of

Kombucha (KH) Tea Against Bacteria

Isolated From Diabetic Foot Ulcer. Journal of Biotechnology Research Center. 2014: 8(4): 27-33.

3. Dehrigue, M., Chriaa, J., Battikh, H., Abid, K.

and Bakhrouf, A. Antiproliferative and

antimicrobial activities of kombucha tea. African Journal of Microbiology Research,

2013: 7(27): 3466-3470.

4. Sreeramulu, G., Zhu, Y., Knol, W.

Characterization of antimicrobial activity

in Kombucha fermentation. Acta

Biotechnol. 2001: 21(1): 49-56.

5. Greenwalt, C.J., Steinkraus, K.H., Ledford, R.A.

Determination and characterization of

the antimicrobial activity of the

fermented tea kombucha. Lebensm Wiss

Technol. 1998: 13: 291-296.

6. Herwin, Kosman, R., Fitriani. Analisis Kadar

Alkohol Produk Kombucha Daun Permot

(Passiflora foetida L.) Asal Makassar

Sulawesi Selatan Secara Kromatografi

Gas. As-Syifa. 2013: 5(2): 112-118.

7. Naland, H. Kombucha Teh Ajaib: Pencegah

dan Penyembuh Aneka Penyakit. Jakarta:

PT. Agromedia Pustaka; 2004. 8. Napitupulu, M.O.W., Setyohadi, Lubis, L.M.

Pengaruh Variasi Konsentrasi Gula

Sukrosa Dan Lama Fermentasi Terhadap

Pembuatan Kopi Kombucha. Ilmu dan

Teknologi Pangan. 2015: 3(3): 316-322.

9. Aditiwati dan Kusnadi. Kultur Campuran dan

Faktor Lingkungan Mikroorganisme

yang Berperan Dalam Fermentasi Tea

Cider. Jurnal ITB Sains dan Teknologi.

2003: 35(2): 147-162.

10. Rezaie, A., Bayat, B.T., Abdollahi, M. Biologic

Management of Fistulizing Chron’s

Disease [diakses tanggal 10 Maret 2019].

http://docsdrive.com/pdfs/ansinet/ikp/2005/1

7-24.pdf

11. Loncar, E.S, Katarina, G.M., Radomir, V.M.,

Mirjana, S.D. and Spasenija, D.M. Kinetics

of Saccharose Fermentation By

Kombucha. Chemical Industry & Chemical

Engineering Quarterly. 2014: 20(3): 345-

352.

12. Loncar, E.S, Djuric, M., Malbasa, R., Kolarv,

L.J., Klasnja, M. Influence of working

conditions upon kombucha conducted

fermentation of black tea. Food Biop

Proc. 2006: 84: 186-192.

13. Ahmed, S.E. Biochemical and Microbial

Changes During Fermentation of Tea

Fungus (Kombucha) (Tesis). Sudan:

University of Khartoum; 2003. 14. Rinihapsari, E. dan Ariani, C. Fermentasi

Kombucha dan Potensinya Sebagai

Minuman Kesehatan. Media Farmasi

Indonesia. 2008 : 3(2): 241-246.

15. Goh, W.N., Rosma, A., Kaur, A.A., Karim, A.A.

dan Rajev, B. Fermentation of Black Tea

Broth (Kombucha): Effects of Sucrose

Concentration and Fermentation Time

On The Yield of Microbial Cellulose. International Food Research Journal. 2012:

19(9): 109-117. 16. Sievers, M., Lanini, C., Weber, A., Schuler-

Schmid, U. and Teuber, M. Microbiology

and Fermentation Balance In Kombucha

Beverage Obtained From A Tea Fungus

Fermentation. Systematic & Applied

Microbiology. 1995: 18: 590-594.

17. Blanc, P.J.. Characterization of the tea fungus

metabolites. Biotechnology Letters. 1996:

18: 139-142.

18. Bergey, D.H. and Holt, J.G. Bergey’s Manual of

Determinative Bacteriology. 9th Edition.

USA: Williams and Wilkins; 1994. 19. Chan, C. and Liu, B.Y. Changes in major

components of tea fungus metabolites

during prolonged fermentation. Journal of

Applied Microbiology. 2000: 89: 834-839.

20. Naland, H. Kombucha Teh Dengan Seribu

Khasiat. Jakarta: PT. Agromedia Pustaka;

2008.

21. Liu, C.H., Hsu, W.H., Lee, F.L. and Liao, C.C.

The isolation and identification of

microbes from a fermented tea beverage,

haipao, and their interactions during Haipao fermentation. Food Microbiology.

1996: 14: 407-415.

22. Balentine, D.A. Special Issue: Tea and Health.

Crit. Rev. Food Sci. Nutr. 1997: 8: 691-692.

23. Tietze, H.W. Kombucha: The Miracle Fungus. 6th

Edition. Australia: Phree Books; 1995.

http://docsdrive.com/pdfs/ansinet/ikp/2005/17-24.pdf

http://docsdrive.com/pdfs/ansinet/ikp/2005/17-24.pdf



66

Halaman Kosong



67

Artikel Penelitian

Ilil Maidatuz Zulfa1*),

Fitria Dewi Yunitasari 1, Nisa Dwi Ratnadi

2

1Bidang Ilmu Farmasi Klinik, Komunitas, dan Manajemen Akademi Farmasi Surabaya, Surabaya 2Program Diploma III Farmasi Akademi Farmasi Surabaya, Surabaya

*) E-mail: [email protected]

ABSTRAK

Bronkopneumonia adalah salah satu manifestasi klinik dari pneumonia yang paling sering muncul pada anak.

Obat yang diresepkan seringkali mengkombinasikan antibiotik dengan obat-obat simtomatis dan tidak sedikit

yang berupa polifarmasi. Peresepan polifarmasi berpotensi pada kurang efisiennya pengobatan. Peresepan yang

kurang efisien akan berakibat pada efektivitas dan keamanan terapi, eksaserbasi atau perpanjangan gejala dan

penyakit, serta tingkat keamanan pada pasien, serta peningkatan biaya terapi. Tujuan dari penelitian ini adalah

untuk mengevaluasi peresepan terapi bronkopneumonia pada anak. Studi observasional secara retrospektif dilakukan pada peresepan bronkopneumonia anak usia 0-14 tahun di Unit Rawat Jalan Rumah Sakit Umum

Daerah Syarifah Ambami Rato Ebu Bangkalan, Indonesia selama tahun 2016. Evaluasi peresepan mengacu pada

WHO prescribing indicator yang terdiri dari 5 poin. Hasil evaluasi pada penelitian ini menunjukkan bahwa rata-

rata jumlah obat yang diresepkan adalah 4,60 item per kunjungan, obat generik diresepkan sebanyak 53,88%,

antibiotik sebesar 69,31%, obat injeksi sebesar 0,99%, dan obat dalam Formularium Nasional tahun 2017

sebesar 48,28% dalam satu tahun periode peresepan. Sehingga, terdapat empat indikator yang belum sesuai

dengan yang ditentukan WHO. Walaupun pemberian antibiotik sangat disarankan pada terapi bronkopneumonia,

peresepan antibiotik masih memerlukan evaluasi lebih lanjut terkait rasionalitasnya. Selain itu, rendahnya

peresepan berdasarkan Formularium Nasional tahun 2017 menunjukkan masih relatif rendahnya optimasi

penggunaan obat yang cost-effective menurut kebijakan nasional.

Kata kunci: Bronkopneumonia, Peresepan, Rawat Jalan.

Prescribing Evaluation for Bronchopneumonia Treatment in Children

at Outpatient Departement of Primary Hospital in Bangkalan, Indonesia

ABSTRACT

Bronchopneumonia is one of pneumonia manifestations commonly occur in children.The treatments usually

combine antibiotics and symptomatic drugs in the form of polypharmacy.Polypharmacy can leads to inefficient

treatmentsthat can cause ineffective and unsafe treatment, exacerbation or prolongation of illness, distress,

harm to the patient and increasing the cost therapy.The aim of the study was to evaluate the prescribing for

bronchopneumonia treatment in children. A retrospective observational study was conducted on prescriptions

written for children with bronchopneumonia age 0-14 y.o in outpatient departement of Rumah Sakit Umum

Daerah Syarifah Ambami Rato Ebu Bangkalan, Indonesia during 2016.WHO prescribing indicators was used to

evaluate the prescribing. The result showed that the average number of medicine per encounter was 4.60 items,

including medicine prescribed by generic name was 53.88%, antibiotics prescribed was 69.31%, injection

prescribed was 0.99%, and medicines prescribed from National Formulary 2017 was 48.28%. Hence, there were four indicators found to be innapproppriate to WHO recomendation. Although antibiotics are highly

recommended in bronchopneumonia, the usage of antibiotics still need an assessment related to its rationality.

In addition, low percentage of medicines National Formulary showed low usage of cost-effective drugs based on

the goverments policy.

Keywords: Bronchopneumonia, Prescribing, Outpatients.

1. PENDAHULUAN

Bronkopneumonia adalah salah satu manifestasi

klinik dari pneumonia yang paling sering muncul

pada anak [1]. Pada tahun 2015, angka mortalitas

pneumonia pada anak dibawah 5 tahun mencapai

920.136 kematian [2]. Pneumonia sendiri merupakan

penyakit infeksi yang disebabkan bakteri, virus,

Evaluasi Peresepan Terapi Bronkopneumonia Anak di Unit Rawat Jalan Rumah Sakit Umum Daerah Bangkalan, Indonesia




68

maupun fungi yang ditularkan melalui pernafasan

Gejala yang muncul antara lain batuk, peningkatan

suhu tubuh, nyeri dada, dan muntah. Perbedaan

penyebab pneumonia sulit dibedakan dinilai dari

manifestasi yang muncul sehingga terapi antibiotik

sangat disarankan baik pada pasien rawat inap

maupun pasien rawat jalan. Manajemen terapi

disamping antibiotik yang direkomendasikan untuk

pneumonia anak antara lain penanganan demam

dengan antipiretik, pencegahan dehidrasi, serta

edukasi orang tua atau pengasuh tentang identifikasi

tanda atau gejala penurunan kondisi seperti demam

tinggi >38,5oC, pemendekan nafas, penurunan nafsu

makan, dan sebagainya [3]

Terkait dengan manajemen terapi

bronkopneumonia, peresepan yang diberikan

seringkali mengkombinasikan antibiotik dengan

obat-obat simtomatis dan tidak sedikit yang

polifarmasi. Peresepan polifarmasi berpotensi pada

kurang efisiennya pengobatan. Peresepan yang

kurang efisien akan berakibat pada efektivitas dan

keamanan terapi, eksaserbasi atau perpanjangan

gejala dan penyakit, kesulitan dan bahaya pada

pasien, serta peningkatan biaya terapi [4]. Untuk itu,

penelitian ini bertujuan untuk mengevaluasi

peresepan terapi bronkopneumonia pada anak.


Studi observasional secara retrospektif

dilakukan pada peresepan bronkopneumonia anak

usia 0-14 tahun di Unit Rawat Jalan Rumah Sakit

Umum Daerah Syarifah Ambami Rato Ebu

Bangkalan selama tahun 2016 dengan ijin penelitian

yang diperoleh dari pihak Rumah Sakit. Evaluasi

peresepan mengacu pada WHO prescribing indicator

yang terdiri dari 5 poin antara lain presentase

peresepan obat generik, presentase peresepan obat

antibiotik, presentase peresepan injeksi, presentase

peresepan obat dalam Formularium Nasional, serta

rata-rata jumlah obat yang diresepkan setiap kali

kunjungan. Formularium Nasional yang dijadikan

acuan adalah Formularium Nasional tahun 2017

beserta Adendum tahun 2018. Obat yang setara

dalam hal kandungan, kekuatan, restriksi penggunaan

serta diresepkan sebanyak yang ditetapkan dalam

daftar Formularium acuan dianggap sesuai.


Sebanyak 101 peresepan bronkopneumonia

untuk anak 0-14 tahun selama periode penelitian

telah dievaluasi dalam penelitian ini. Dari jumlah

tersebut sebanyak 55,45% peresepan diperuntukkan

untuk pasien laki-laki dan 44,55% untuk pasien

perempuan. Total terdapat 464 item obat yang

diresepkan. Profil obat yang diresepkan berdasarkan

golongan farmakologi terdapat pada Tabel 1.

Tabel 1. Profil Obat yang Diresepkan Berdasarkan

Golongan Farmakologi

Golongan Farmakologi Jumlah

n=464

Presentase (%)

Antialergi Setirizin

CTM Triprolidin

38 26

11 1

8,17 5,59

2,37 0,22

Antibiotik Sefiksime Sefadroksil Amoksisilin Spiramisin Eritromisin

69 47 12 7 2 1

14,84 10,11 2,58 1,51 0,43 0,22

Antifungi Nistatin

8 8

1,72 1,72

Antikonvulsi Fenitoin Fenobarbital Natrium Valproat

4 2 1 1

0,86 0,43 0,22 0,22

Analgesik/Antipiretik Parasetamol

44 44

9,46 9,46

Antiemetik

Domperidon 4

4 0,86

0,86

Antitusif Obat Batuk Hitam Kodein

6 4 2

1,29 0,86 0,43

Bronkodilator Salbutamol Ipatropium+Salbutamol Teofilin

75 49 23 3

16,13 10,54 4,95 0,65

Dekongestan Efedrin Pseudoefedrin

35 34 1

7,53 7,31 0,22

Mukolitik Ambroksol Gliseril Guaiakolat N-Asetil-Sistein

74 63 9 2

15,91 13,55 1,94 0,43

Imunomodulator

Herbal

29 6,24

Kortikosteroid Deksametason Metil Prednisolon Prednison Betametason

32 21 8 2 1

6,88 4,52 1,72 0,43 0,22

NSAID Ibuprofen

Asam Mefenamat

5 3

2

1,08 0,65

0,43

Suplemen Makanan 41 8,82

Larutan Elektrolit 1 0,22

Terdapat 15 golongan farmakologi obat yang

diresepkan dalam penelitian ini. Menurut British

Thoracic Society Guidelines, rekomendasi

penanganan bronkopneumonia disamping antibiotik

adalah pengendalian suhu tubuh dengan antipiretik

dan pencegahan dehidrasi dengan larutan elektrolit



69

[3]. Bervariasinya peresepan obat dalam penelitian ini

menunjukkan tingginya peresepan berdasarkan gejala

yang dialami terlebih peresepan obat kausatif

bronkopneumonia seperti antibiotik dan antifungi

yang hanya mencapai 14,84% dan 1,72%. Tabel 1

menunjukkan golongan bronkodilator, mukolitik, dan

antibiotik adalah yang paling banyak diresepkan.

Bronkodilator adalah agen yang dapat

melebarkan jalan pernafasan baik melalui agonis

reseptor -2 maupun penghambatan fosfodiesterase

di otot polos pernafasan[5]. Pemberian bronkodilator

pada bronkopneumonia berfungsi meringankan

gejala sesak nafas yang terkadang menyertai. Studi

observasional oleh Lochindarat (2008) menunjukkan

pemberian bronkodilator akan membantu

menghilangkan gejala pada 96% sampel anak dengan

pneumonia ringan dalam 3 hari tanpa antibiotik [6].

Pengunaan mukolitik dalam terapi

bronkopneumonia dimaksudkan untuk mengurangi

keparahan gejala batuk. Namun, pemberian mukolitik

maupun antitusif perlu dipertimbangkan terkait

efektivitasnya. Sistematik review oleh Chang dkk

(2014) menyebutkan masih kurangnya evidence

tentang penggunaan mukolitik maupun antitusif

dalam mengurangi gejala batuk pada pasien

pneumonia [7],

Tabel 2. Profil Obat yang Diresepkan Berdasarkan

Indikator Penggunaan Obat WHO

Indikator Presentase/Rata-rata

Rata-rata jumlah obat yang diresepkan tiap kali

kunjungan

4,60

Peresepan Obat Generik 53,88

Peresepan Antibiotik 69,31

Peresepan Obat Injeksi 0,99

Peresepan Obat menurut Formularium Nasional

48,28

Tabel 2 menunjukkan evaluasi peresepan

berdasarkan indikator penggunaan obat WHO. Hasil

menunjukkan rata-rata jumlah obat tiap kali

kunjungan adalah 4,60 item. Ideal rata-rata jumlah

obat yang diresepkan tiap kali kunjungan menurut

WHO adalah <2 sehingga dapat dikatakan rata-rata

jumlah obat yang diresepkan tiap kali kunjungan

pada penelitian ini berpotensi pada polifarmasi [8].

Polifarmasi hendaknya dihindari karena seringkali

dikaitkan dengan munculnya efek samping obat,

mortalitas, peningkatan lama hari rawat di rumah

sakit serta readmisi setelah keluar rumah sakit [9].

Obat generik dalam penelitian ini diresepkan

sebanyak 53,88%. Menurut WHO nilai optimal dari

indikator ini adalah 100,00% [8]. Presentase yang

tidak mencapai nilai optimal menunjukkan tendensi

penulis resep tehadap obat generik yang belum

optimal. Namun, nilai optimal peresepan obat

generik pada praktiknya susah terpenuhi mengingat

beberapa obat mungkin hanya tersedia dalam sediaan

bermerk dagang. Selain itu, beberapa pandangan

tentang kualitas obat generik yang substandar

mungkin mendasari ketidakoptimalan nilai

presentase indikator ini [8].

Antibiotik dalam penelitian ini diresepkan

sebanyak 69,31%. WHO menyebutkan nilai optimal

peresepan antibiotik adalah <30%[8]. Namun,

penanganan bronkopneumonia direkomendasikan

menggunakan antibiotik karena susahnya

membedakan agen infektor sehingga dapat dikatakan

nilai optimal penggunaan antibiotik untuk

bronkopneumonia adalah 100%. Berdasarkan

presentase tersebut, penggunaan antibiotik dalam

penelitian ini dapat dikatakan masih belum optimal

dari segi jumlah. Namun, penggunaan antibiotik tetap

perlu dilakukan evaluasi rasionalitas mengingat tidak

semua yang diresepkan sesuai guideline. Dari Tabel

1, antibiotik yang banyak diresepkan adalah

golongan sefalosporin sedangkan antibiotik yang

direkomendasikan untuk penanganan

bronkopneumonia anak adalah amoksisilin dan

sebagai alternatif adalah ko-amoksiklav, sefaklor,

eritromisin, azitromisin and klaritromisin [3].

Menurut hasil, obat injeksi diresepkan hanya

0,99%. Nilai peresepan obat injeksi pada pasien

rawat jalan memang relatif rendah karena kondisi

emergensi maupun ketidaksadaran relatif rendah

pada pasien rawat jalan. Penilaian presentase

peresepan obat injeksi sangat penting dilakukan

terkait potensi penularan penyakit melalui darah [10].

Presentase peresepan obat menurut

Formularium Nasional tahun 2017 dalam penelitian

ini adalah 48,28%. Persentase ketidaksesuaian

kemungkinan akan berbeda apabila dianalisis

menggunakan Formularium Nasional tahun yang

sama dengan periode peresepan yaitu tahun 2016,

namun dalam penelitian ini pertimbangan

penggunaan Formularium Nasional tahun 2017

adalah dari segi keterbaruan. Nilai persentase

ketidaksesuaian yang teramati ini masih relatif

rendah mengingat nilai optimal yang ditentukan

WHO adalah 100% karena nilai tersebut

mencerminkan optimalnya penggunaan obat yang



70

cost-effective [8]. Ketidaksesuaian peresepan dalam

penelitian ini dibandingkan dengan formularium

acuan disebabkan beberapa hal seperti peresepan

obat yang tidak ada di dalam formularium acuan

seperti ambroksol, efedrin, dan gliseril guaiakolat

maupun peresepan yang tidak sesuai restriksi dan

jumlah maksimum peresepan seperti penggunaan

sefiksim dan sefadroksil. Ketidaksesuaian ini

tentunya memerlukan kajian lebih lanjut mengenai

efektivitas obat yang digunakan mengingat obat

diluar formularium nasional dapat digunakan apabila

telah disetujui pimpinan instansi dengan

memperhatikan pertimbangan resiko dan manfaat

darti obat tersebut.

4. KESIMPULAN

Walaupun pemberian antibiotik sangat

disarankan pada terapi bronkopneumonia, tingginya

peresepan antibiotik masih memerlukan evaluasi

lebih lanjut terkait rasionalitasnya. Selain itu,

rendahnya peresepan berdasarkan Formularium

Nasional tahun 2017 menunjukkan masih relatif

rendahnya optimasi penggunaan obat yang cost-

effective menurut kebijakan nasional.

5. UCAPAN TERIMAKASIH

Seluruh penulis mengucapkan terimakasih

kepada seluruh staf Rumah Sakit Umum Daerah

Syarifah Ambami Rato Ebu Bangkalan yang telah

memberikan ijin dalam pengambilan data hingga

terselesaikannya penelitian ini.





ini.

DAFTAR PUSTAKA

1. Zec SL, Selmanovic K, Andrijic NL, Kadic A,

Zecevic L, Zunic L. Evaluation of Drug

Treatment of Bronchopneumonia at the

Pediatric Clinic in Sarajevo Med Arch. 2016;

70(3): 177-181. 2. World Health Organization. Pneumonia

[diakses 30 Juni 2019]. Tersedia dari:

https://www.who.int/news-room/fact-

sheets/detail/pneumonia.

3. Harris M, Clark J, Coote N, Fletcher P,

Harnden A, McKean M, et al. British

Thoracic Society guidelines for the

management of community acquired

pneumonia in children: update 2011. Thorax. 2011; 66:ii1–ii23.

4. Patel P, Patel SN, Bhave A. Evaluation of

prescribing pattern at dental outpatient

department at a hospital, Gujarat. National Journal of Physiology, Pharmacy

and Pharmacology. 2016; 7(1): 47-50.

5. Sweetman SC. Martindale: The Complete

Drug Reference. London-Chicago:

Pharmaceutical Press; 2009.

6. Lochindarat S, Qazi SA, Bunnag T, Nisar

YB, Jatanachai P. Are we adequately

managing children with wheeze using the

standard case management guidelines?. J

Med Assoc Thai. 2008; 91 (3):S60-8.

7. Chang CC, Cheng AC, Chang AB.

Over‐the‐counter (OTC) medications to

reduce cough as an adjunct to antibiotics

for acute pneumonia in children and

adults. Cochrane Database Syst Rev. 2014;

(3): CD006088.

8. Ofori-Asenso R. A closer look at the World

Health Organization's prescribing

indicators. J Pharmacol Pharmacother.

2016 ; 7(1): 51–54.

9. Masnoon N, Shakib S, Kalisch-Ellett

S, Caughey GE. What is polypharmacy?

A systematic review of definitions. BMC

Geriatr. 2017; 17: 230.

10. Atif M, Azeem M, Sarwar MR, Shahid S,

Javaid S, Ikram H. WHO/INRUD

prescribing indicators and prescribing

trends of antibiotics in the Accident and

Emergency Department of Bahawal Victoria Hospital, Pakistan. Springerplus.

2016; 5(1): 1928.

11. Menteri Kesehatan Republik Indonesia.

Keputusan Menteri Kesehatan Republik

Indonesia Nomor

HK.01.07/MENKES/659/2017 Tentang

Formularium Nasional. Jakarta:

Kementerian Kesehatan Republik

Indonesia.

12. Menteri Kesehatan Republik Indonesia.

Keputusan Menteri Kesehatan Republik

Indonesia Nomor


Perubahan atas Keputusan Menteri

Kesehatan Nomor


Formularium Nasional. Jakarta:

Kementerian Kesehatan Republik Indonesia

https://www.who.int/news-room/fact-sheets/detail/pneumonia

https://www.who.int/news-room/fact-sheets/detail/pneumonia

https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/?term=Lochindarat%20S%5BAuthor%5D&cauthor=true&cauthor_uid=19253498

https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/?term=Qazi%20SA%5BAuthor%5D&cauthor=true&cauthor_uid=19253498

https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/?term=Bunnag%20T%5BAuthor%5D&cauthor=true&cauthor_uid=19253498

https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/?term=Nisar%20YB%5BAuthor%5D&cauthor=true&cauthor_uid=19253498

https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/?term=Nisar%20YB%5BAuthor%5D&cauthor=true&cauthor_uid=19253498

https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/?term=Jatanachai%20P%5BAuthor%5D&cauthor=true&cauthor_uid=19253498

https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/19253498

https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/19253498

https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC4831494/

https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/?term=Masnoon%20N%5BAuthor%5D&cauthor=true&cauthor_uid=29017448

https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/?term=Shakib%20S%5BAuthor%5D&cauthor=true&cauthor_uid=29017448

https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/?term=Kalisch-Ellett%20L%5BAuthor%5D&cauthor=true&cauthor_uid=29017448

https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/?term=Caughey%20GE%5BAuthor%5D&cauthor=true&cauthor_uid=29017448



https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/?term=Atif%20M%5BAuthor%5D&cauthor=true&cauthor_uid=27933228

https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/?term=Azeem%20M%5BAuthor%5D&cauthor=true&cauthor_uid=27933228

https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/?term=Sarwar%20MR%5BAuthor%5D&cauthor=true&cauthor_uid=27933228

https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/?term=Shahid%20S%5BAuthor%5D&cauthor=true&cauthor_uid=27933228

https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/?term=Javaid%20S%5BAuthor%5D&cauthor=true&cauthor_uid=27933228

https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/?term=Ikram%20H%5BAuthor%5D&cauthor=true&cauthor_uid=27933228




71

Artikel Penelitian

Pemta Tia Deka1*)

1Sekolah Tinggi Ilmu Kesehatan Delima Persada Gresik, Gresik.

*)Email : [email protected]

ABSTRAK

Pencemaran zat warna di lingkungan perairan semakin meningkat. Pencemaran tersebut dapat berasal

berbagai sumber diantaranya limbah rumah tangga atau industri farmasi. Zat warna metil jingga merupakan salah

satu zat yang digunakan pada industri farmasi dan dapat membahayakan kesehatan manusia sehingga perlu

adanya pengolahan yang baik terhadap limbah tersebut. Tujuan dari penelitian ini adalah membandingkan proses

fotodegradasi dari zat warna metil jingga menggunakan katalis Fe2O3-zeolit, sinar-UV maupun hanya memakai

zeolit. Hasil Karakterisasi katalis Fe2O3-Zeolit dengan menggunakan metilen biru diperoleh luas permukaan

spesifik 236,80 m2/g, sedangkan uji menggunakan spektrofotometer FTIR didapatkan bilangan gelombang 520,74 cm-1 yang merupakan karakteristik dari Fe2O3-zeolit. Berdasarkan studi pendahuluan diperoleh kondisi

optimum yaitu konsentrasi metil jingga 25 ppm, katalis Fe2O3-zeolit 23,40 mmol/g zeolit serta lama penyinaran

80 menit. Uji fotokatalis dilakukan dengan cara mendispersikan 150 mg Fe2O3-zeolit, 50 mg zeolit teraktifasi ke

dalam 60 mL larutan metil jingga, kemudian dimasukkan ke reaktor uv-fotokatalitik. Hasil persen degradasi

terbesar diperoleh pada perlakuan penambahan katalis, sinar uv dan pengocokan yaitu 62,96%. Apabila hanya

digunakan logam Fe(III) maka didapatkan persen degradasi 36,8%. Kemudian, perlakuan gelap tanpa sinar uv

diperoleh persen degradasi paling kecil yaitu 14,82%.

Kata kunci: fotodegradasi, zeolit, sinar-Uv, Fe2O3-zeolit, metil jingga

The Comparison Of Methyl Orange Photodegradation Using Zeolite,

Fe2O3-Zeolite Catalyst and UV light

ABSTRACT

Water contamination in aquatic environment get increased. This contaminaton could happen from various

source like home waste or pharmacy industry waste. Methyl orange is one of materials that used in pharmacy

industry which could dangering human health so it must be take a good treatment for this waste. The aim of this research is to compare some photocatalytic activity for methyl orange using Fe2O3-zeolit catalyst, uv light and

just zeolite. Beside that, Characterization of this catalyst is done by infrared spectrofotometry and surface area

by metilen blue. The specific surface area characterization result is 236,80 m2/g then infrared spectrophotometer

showed wavennumber at 520,74 cm-1 that specific for Fe2O3-zeolit. Based on preliminary research showed

optimum condition at 25 ppm of methyl orange, Fe2O3-zeolit 23,40 mmol/g zeolite and uv radiaton time is 80

minutes.Photodegradation test is done by disper 150 g Fe2O3-zeolit in 60 ml methyl orange then placed in

photocatalitic reactor and give uv light. The highest percent degradation result is 62,96%. By adding zeolite,

catalyst and shaked. In other hand, the lowest result is 14,82% from dark condition means no uv light

Keywords: Photodegradation, zeolit, Fe2O3-zeolit, methyl orange

1. PENDAHULUAN

Zat warna metil jingga banyak digunakan sebagai

pewarna dalam skala industri maupun di

laboratorium sebagai indikator titrasi. Namun

demikian, metil jingga merupakan salah satu zat

pencemar organik yang memiliki sifat non-

biodegradable. Hal ini dikarenakan gugus benzen

pada senyawa tersebut adalah karsinogenik dan

membutuhkan waktu yang lama untuk didegradasi [12]. Pada dasarnya, pencemaran zat warna metil

jingga pada perairan di sekitar daerah industri dapat

direduksi secara biologi maupun konvensional,

namun demikian, hasilnya tidak efektif karena

menghasilkan limbah biomassa yang banyak. Metode

yang sudah pernah diterapkan dalam pengolahan

limbah zat warna adalah klorinasi, adsorbsi

biodegradasi dan ozonasi. Metode tersebut cukup

efektif namun memerlukan biaya operasional yang

tidak sedikit. Selain itu, hasil akhir metode dapat

menimbulkan permasalahan seperti dihasilkannya zat

Perbandingan Proses Fotodegradasi Pada Zat Warna Metil Jingga Menggunakan Zeolit, Katalis Fe2O3-Zeolit dan Sinar UV




72

baru yang bersifat polutan [3,4]. Sementara itu,

beberapa penelitian telah dilakukan untuk

mengurangi pencemaran sejumlah kontaminan

senyawa organik menggunakan logam besi [13]

.

Proses fotokatalitik merupakan salah satu metode

penanggulangan limbah perairan dan mampu

berperan dalam mengurangi sebagian besar polutan

zat pewarna. Fotokatalis yang mendapat perhatian

utama dan banyak dikembangkan para peneliti

adalah fotokatalis dengan bahan semikonduktor.

Contoh semikonduktor oksida logam yang sering

digunakan untuk katalis yaitu TiO2, ZnO, Fe2O3, dan

SrTiO3. Keunggulan penggunaan fotokatalis yaitu

biayanya cukup murah, prosesnya reaksi relatif cepat,

tidak beracun dan dapat digunakan dalam jangka

panjang [4]. Disamping itu, semikonduktor mampu

mendeaktvasi mikroorganisme [7].

Oksida Fe2O3 dapat digunakan sebagai fotokatalis

untuk mempercepat reaksi oksidasi dengan bantuan

cahaya. Semikonduktor tersebut memiliki band gap

yang cukup kecil sehingga memudahkan proses

eksitasi elektron dari pita valensi ke pita konduksi

dengan energi yang tidak terlalu besar. Kemampuan

fotokatalitik oksida logam akan meningkat jika

ukuran partikel sangat kecil, karena semakin kecil

ukuran partikel, maka nilai energi celah pita (Eg)

akan semakin besar. Partikel ini dapat dipreparasi di

dalam suatu pengemban, misalnya zeolit atau

montmorillonit [12]. Fe2O3 perlu diembankan ke

dalam mineral zeolit karena suatu pengemban dapat

menahan partikel oksida tersebut. Pemberian asam

telah berhasil melepaskan alumunium dari kerangka

zeolit dan mampu meningkatkan keasaman zeolit [6].

Peningkatan keasaman zeolit disebutkan mampu

memperbesar kemampuan penyerapan zeolit. Katalis

Fe2O3-zeolit perlu dilakukan karakterisasi

menggunakan spektrofotometer inframerah untuk

mengetahui keberadaan oksida Fe2O3 dalam zeolit.

Karakterisasi luas permukaan spesifik dari katalis

tersebut dilakukan menggunakan metilen biru

sehimgga dapat diketahui peranan luas permukaan

terhadap aktifitas fotokatalis tersebut.

Fotokatalis yang telah terimpregnasi suatu logam

dapat digunakan untuk mendegradasi zat warna

jingga metil. Faktor-faktor yang mempengaruhi

fotodegradasi suatu zat warna meliputi lama

penyinaran, konsentrasi jingga metil, dan konsentrasi

katalis. Oleh karena itu, pada penelitian ini akan

dilakukan perbandingan perlakuan pada aktifitas

fotokatalisis dari zeolite- Fe2O3 meliputi ada tidaknya

penyinaran sinar uv, logam Fe(III), media

pengemban zeolite, maupun penambahan

pengocokan untuk meningkatka energi kinetik dan

pemerataan sebaran katalis.

Berdasarkan uraian diatas, maka perlu dilakukan

pengkajian mengenai kemampuan zeolit sebagai

pengemban Fe2O3 dapat menghasilkan suatu katalis

heterogen yang bersifat semikonduktor. Fotokatalis

tersebut digunakan untuk mendegradasi zat warna

jingga metil melalui penyinaran sinar UV serta

dilakukan variasi perlakuan proses fotokatalisis untuk

mendapatkan kondisi optimum dari uji fotodegradasi

zat warna metil jingga oleh zeolite-Fe2O3


2.1. Bahan dan Alat

Bahan-bahan yang digunakan dalam penelitian

ini antara lain zeolit alam turen, metil jingga (merck

pa), FeCl3.6H2O (merck pa), HCl (37%,) (merck pa) ,

HNO3 pekat 65% (merck pa), NaOH (merck pa),

AgNO3 (merck pa), dan aquades.

Alat-alat yang digunakan dalam penelitian

ini adalah Alat yang digunakan pada penelitian ini

adalah peralatan gelas, penggerus porselin, ayakan

120 dan 150 mesh , oven, tanur, pengaduk magnetik,

penyaring vakum, kertas saring whatman no.41,

timbangan neraca analitik, shaker rotator dan

spektronik-20.

2.2. Cara Kerja

Dalam penelitian ini, digunakan sampel zeolit

dari turen yang dihaluskan hingga berukuran 150

mesh. Selanjutnya zaolit tersebut dicuci

menggunakan aquades sambil diaduk sekitar 3 jam.

Zeolit tersebut dikeringkan dalam oven dengan

temperatur 120oC 2 jam. Untuk proses aktifasi asam,

maka ditambahkan HCl 0,4 M 25 ml ke dalam zeolit

sambil diaduk pada kecepatan 100 rpm 4 jam. Proses

impregnasi atau pengembanan logam Fe ke dalam

media zeolit dilakukan dengan cara menimbang 4

gram zeolit kemudian ditambahkan sebanyak 400 ml.

larutan FeCl3.6H2O 0,1 M sambil diaduk 3 jam dan

disaring. Endapan hasil filtrasi kemudian dikeringkan

selama 1 jam 120oC. Endapan tersebut dihaluskan

lagi dan dikalsinasi dalam tanur pada temperatur

500oC 3 jam sehingga diperoleh Katalis Fe2O3-zeolit

23,40 mmol/g zeolit Tahapan akhir adalah dilakukan

penimbangan sampai berat konstan.

Pada penelitian ini, hasil katalis Fe2O3-zeolit

diuji fotodegradasi nya terhadap zat warna metil

jingga sebagai salah satu zat pencemar dalam

industri. Proses fotokalisis dilakukan dengan cara

menambahkan 150 mg katalis tersebut ke dalam labu



73

Erlenmeyer yang telah ditambahkan 60 ml larutan

metil jingga 25 ppm. Campuran tersebut kemudian

penyinaran menggunakan sinar uv selama 80 menit.

Selanjutnya, hasil fotodegradasi metil jingga tersebut

dibandingkan dengan hanya menggunakan katalis

zeolit dan sinar uv saja. Variasi perbandingan

fotokatalisis yang dilakukan pada penelitian ini yaitu:

a. Zeolit dan sinar uv

b. Logam Fe(III) dan sinar uv

c. Tanpa zeolit dan sinar uv

d. Katalis dan tanpa sinar uv

e. Katalis dan sinar uv

f. Katalis dan sinar uv ditambah pengocokan

Setelah dilakukan uji fotodegradasi metil jingga

dengan berbagai variasi perlakuan, maka persen

degradasi zat warba dapat dihitung dengan cara [9] :

100% x Co(awal)

Cs-Co(awal) asi terdegrad% ..................(1)

Keterangan : Co awal = konsentrasi jingga metil awal Cs = konsentrasi jingga metil sisa

2.3 Rancangan Penelitian

Penelitian ini dilakukan dengan tahapan seperti

yang disajikan pada Gambar 1.

Gambar 1. Rancangan penelitian

2.3.1 Penentuan luas permukaan spesifik dengan

metilen biru

Luas permukaan dari katalis ditentukan luas

permukaannya dengan prinsip adsopssi metilen blue.

Luas permukaan dari katalis Fe2O3-Zeolit dilakukan

dengan cara menentukan panjang gelombang

maksimum metilen biru terlebih dahulu. Selanjutnya

bilangan metilen biru ditentukan dengan cara

sebanyak 0,04 gram katalis Fe2O3-Zeolit

ditambahkan dengan 25 ml larutan metilen blue 2

ppm ke dalam Erlenmeyer kemudian dikocok pada

kecepatan 125 rpm selama 1 jam. Filtrat disaring dan

diukur menggunakan spektrofotometer uv-vis pada

panjang gelombang 625 nm bersama dengan larutan

blue sebelum sebelum proses adsorbsi [5].

Penentuan bilangan metilen biru dapat dihitung

menggunakan rumus:

.................................(2)

Dengan:

Cawal = konsentrasi metilen biru awal sebelum

proses adsorpsi (ppm)

Csisa = konsentrasi metilen biru akhir setelah

proses adsorpsi (ppm)

Csisa = X . fp

Dimana, fp = faktor pengenceran

X = konsentrasi metilen biru pengukuran

(ppm)

W = berat sampel Fe2O3-zeolit (g)

v = volume larutan pada saat proses

adsorpsi (L)

qe(MB) = bilangan metilen biru (mg/g)

Luas permukaan spesifik dihitung dengan

menggunakan rumus :

...............................................(3)

Keterangan: S : luas permukaan adsorben (m2/g)

N : Bilangan Avogadro (6,023 x 1023)

qe(MB) : Berat dari Adsorbat teradsorbsi (g/g)

Am : luas penutupan oleh 1 molekul metilen

biru (197,20x 10-20 m2)

Mr : Massa molekul relative dari metilen

biru (373,9 g/mol)

2.3.2 Karakterisasi katalis Fe2O3-Zeolit

menggunakan FTIR

Penentuan jenis gugus fungsi dilakukan

menggunakan alat spetrofotometer IR. Metodenya

Impregnasi larutan FeCl3.6H2O 0,1 M ke dalam

zeolit teraktivasi

Proses kalsinasi katalis zeolit-Fe2O3 di tanur pada

temperature 500oC

Uji fotodegradasi katalis zeolit-Fe2O3 ke dalam

larutan uji metil jingga 25 ppm 60 ml

Aktifasi asam zeolit alam

Perbandingan perlakuan fotodegradasi metil jingga

yaitu :

1. Zeolit dan sinar uv

2. Logam Fe(III) dan sinar uv

3. Tanpa katalis zeolit-Fe2O3 dan sinar uv

4. Katalis zeolit-Fe2O3 dan gelap (tanpa uv)

5. Katalis zeolit-Fe2O3 dan sinar uv

6. Katalis zeolit-Fe2O3 , sinar uv dan pengocokan

Uji fotodegradasi zat warna

Kondisi optimum Uji fotodegradasi katalis zeolit-

Fe2O3 ke metil jingga



74

adalah dengan mencampurkan Sampel padatan

dengan bubuk KBr, kemudian dibuat pelet tipis dan

diletakkan pada sel dan diukur pada bilangan

gelombang 300-4000 cm-1

[12]

.


Pada penelitian ini, aktivasi asam pada zeolit

bertujuan untuk dekationisasi zeolit yang dapat

mengakibatkan bertambahnya luas permukaan

sehingga mampu meningkatkan kapasitas penyerapan

kation zeolit. Pada awal impregnasi, terdapat proses substitusi ion H+ dengan kation Fe(III). Kalsinasi

bertujuan untuk memperoleh oksida logam dari

larutan besi FeCl3.6H2O dan meminimalisir larutan

prekursor. Pada proses kalsinasi dengan temperatur

500oC terjadi pembentukan FeCl3.6H2O menjadi

Fe2O3. Reaksi dekomposisi termal dari FeCl3.6H2O

adalah sebagai berikut:

Reaksi perombakan termal dari FeCl3.6H2O

adalah [2]:

2 FeCl3.6H2O 500°C Fe2O3 + 6HCl

Hasil analisa luas permukaan spesifik dari katalis menggunakan metilen blue diperoleh nilai

sebesar 263,8 m2/g. Dengan adanya luas permukaan

yang cukup besar mampu meningkatan sisi aktif dari

katalis sehingga proses fotodegradasi zat warna dapat

berlangsung lebih optimal. Suatu katalis logam

terembankan dengan luas permukaan spesifik yang

besar, maka dapat dapat mengakibatkan peningkatan

kemampuan adsorpsinya. Oksida logam Fe2O3 pada

penelitian ini memiliki sifat semikonduktor dengan

energi band gap yang tinggi seperti semikonduktor

dari oksida lainnya seperti TiO2, CdS, ZnS, SrTiO3,

MoS2. Jika suatu semikonduktor disinari dengan suatu cahaya pada panjang gelombang tertentu maka

elektron pada pita valensi akan mengalami eksitasi

dan menuju ke pita konduksi. Pada akhirnya dapat

menghasilkan Hole pada pita valensi. Proses ini

merupakan tahap awal fotokatalis [5]. Hole tersebut

mampu bereaksi dengan molekul air untuk

membentuk radikal OH. Di sisi lain,elektron pada

pita konduksi dapat mereduksi molekul oksigen,

hidrogen peroksida atau oksidator lainnya dalam

larutan. Reaksi fotokatalitik yang terjadi adalah

reaksi oksidasi-reduksi karena adanya energi foton

dari lampu UV, Sedangkan reaksi fotodegradasi

dapat terjadi karena adanya semionduktor Fe2O3 pada

katalis Fe2O3-zeolit. Eg dari katalis tersebut yaitu 3,8

eV yang cukup nesar untuk reaksi fotodegradasi

metil jingga [11].

Hasil karakterisasi katalis Fe2O3-zeolit

mengguakan spektrofotometer inframerah

menunjukkan adanya pembentukan oksida besi pada

katalis saat proses impregnasi. Hal ini ditandai dengan munculnya vibrasi OH, Vibrasi Bending Si-

O-Si (460,96 cm-1),Stretching H-O-H (3647,14cm-

1) , Stretching Si-O-Si (1052,06 cm-1) dan diikuti

bilangan gelombang 520,74 cm-1

yang

mengindikasikan pembentukan oksida besi sesuai

dengan penelitian yang dilakukan Majedova,2003.

Hasil karakterisasi katalis mengguankanFTIR

ditunjukkan oleh Gambar 2.

Gambar 2. Hasil karakterisasi katalis Fe2O3-Zeolit

menggunakan FTIR

Katalis Fe2O3-zeolit 23,40 mmol/g zeolit

digunakan untuk fotodegradasi zat warna jingga

metil 25 ppm. Proses tersebut dibandingkan dalam

beberapa kondisi yaitu Hasil peneitian menunjukkan

bahwa nilai k pada laju fotodegradasi sebesar 0,008

menit-1. Konsentrasi dari reaktan metil jingga akan

mempengaruhi efisiensi proses fotokalatitik. Makin

rendah konsentrasi metil jingga maka aktifitas

fotodegradasi akan lebih optimal karena sisi aktif dari

katalis banyak yang bereaksi dengan reaktan. Hasil

pengukuran persen metil jingga terdegradasi

ditunjukkan oleh Gambar 3.

Gambar 3. Hasil fotodegradasi zat warna metil jingga

dengan berbagai perbandingan perlakuan pada katalis

dan sinar uv

Berdasarkan hasil pengukuran. dapat dilihat

bahwa zeolit memiliki prosentase degradasi metil

jingga sebesar 29,62%, sedangkan katalis zeolit -



75

Fe2O3 yaitu 48,14%. Hal ini menunjukkan adanya

peningkatan fotodegradasi zat warna jingga metil

dari zeolit tanpa impregnasi logam dengan zeolit

yang telah diimpregnasi logam Fe. Hal ini

dikarenakan bertambahnya sisi aktif pada katalis

Fe2O3-zeolit. Pada dasarnya, ketika hanya zeolit saja

yang digunakan untuk uji fotodegradasi

menggunakan sinar uv maka mineral tersebut telah

memiliki sifat fotokatalitik karena adanya proses

adsorpsi zeolit dan fotodegradasi oleh semikonduktor dari oksida-oksida yang terdapat di dalam mineral

tersebut. Dengan adanya proses aktivasi pada zeolit

diharapkan mampu menambah luas permukaan zeolit

tersebut sehingga meningkatkan proses adsorpsinya

terhadap kation.

Pada variasi perlakuan fotodegradasi yang

berikutnya yaitu mereaksikan logam Fe(III) dari

padatan FeCl3.6H2O dengan metil jingga dan dibantu

oleh sinar uv. Hasil persen zat warna terdegradasi

sebesar 38,60%. Oksida Fe2O3 dapat bersifat sebagai

semikonduktor meskipun tanpa proses impregnasi

pada zeolit. Hal ini menyebabkan oksida tersebut memiliki daya fotokatalitik. Di sisi lain, pada saat

pengaturan pH untuk filtrat hasil degradasi, larutan

jingga metil berubah warna bening dan terdapat

endapan merah. Hal ini dimungkinkan karena logam

Fe(III) dengan jingga metil dapat membentuk

senyawa kompleks berwarna merah. Sisi aktif

permukaan suatu katalis heterogen merupakan bagian

penting untuk mengadsorpsi reaktan yang telah

berdifusi pada permukaan. Hal ini berhubungan

dengan karakteristik orbital terluar dari katalis logam

yang digunakan pada katalis tersebut. Katalis logam berpengemban sebagian besar melibatkan logam

transisi. Logam ini memanfaatkan kekosongan

orbital d untuk membentuk kompleks logam-ligan.

Disamping itu, logam transisi mempunyai beberapa

tingkat oksidasi. Orbital d elektron logam tersebut

mudah ditambahkan maupun dilepaskan [11].

Tahap variasi perlakuan pada fotodegradasi

selanjutnya yaitu dilakukan pada kondisi gelap yaitu

tanpa sinar uv namun tetap ditambahkan katalis

Fe2O3-zeolit. Persen metil jingga terdegradasinya

sebesar 14,82%, sedangkan pada perlakuan katalis

ditambah pengocokan diperoleh prosentase degradasi sebesar 62,96%. Dengan adanya pengocokan pada

proses fotodegradasi tersebut maka dapat

menyebabkan sinar uv yang terpapar pada larutan

metil jingga merata sehingga reaksi dapat

berlangsung lebih cepat. Di sisi lain, perlakuan

fotodegradasi dengan pemberian sinar uv secara

langsung pada larutan metil jingga mampu

menghasilkan persen degradasi sebesar 25,94%. Hal

ini menunjukkan bahwa sinar UV telah berperan

dalam proses degradasi tersebut meskipun tanpa

penambahan katalis maupun logan Fe(III). Berdasarkan hasil uji variasi perlakuan pada

proses fotodegradasi zat warna metil jingga, maka

dapat disebutkan faktor-faktor yang mempengaruhi

proses tersebut adalah adsorpsi, proses fotodegradasi,

fotolisis zat warna oleh sinar uv serta pembentukan

senyawa kompleks dari logam dengan zat warna.

Aktifitas fotokatalitik oksida logam akan meningkat

seiring berkurangnya ukuran partikel. Semakin kecil

ukuran partikel, maka nilai energi celah pita (Eg)

akan makin besar. Partikel ini dapat diimpregnasi

dalam suatu pengemban, misalnya zeolit atau

montmorillonit [12]. Fe2O3 perlu diimpregnasi ke

dalam mineral zeolit karena suatu pengemban dapat menahan partikel dari oksida logam tersebut.

Pemberian asam dapat membantu melepaskan

alumunium dari kerangka zeolit serta meningkatkan

keasaman zeolit. Disamping itu, penambahan tingkat

keasaman zeolit mampu memperbesar sifat adsorpsi

zeolit.

Penyinaran sinar uv yang dilakukan terhadap zat

warna jingga metil menyebabkan OH radikal dari

molekul H2O mampu membantu degradasi lebih

cepat. Selain itu, OH radikal dapat dihasilkan dari

oksigen terlarut yang bereaksi dengan elektron pada

pita konduksi semikonduktor Fe2O3. Disisi lain, konsentrasi yang pekat mengakibatkan jumlah foton

yang sampai pada permukaan zat warna makin

menurun.

Reaksi yang terjadi pada proses fotokatalis ini

adalah reaksi oksidasi-reduksi atau redoks yaitu

reaksi pelepasan dan penerimaan elektron karena

energi foton hυ dari lampu UV, sedangkan reaksi

fotodegradasi terjadi karena katalis Fe2O3-zeolit

mengandung oksida Fe2O3 yang bersifat

semikonduktor. Pita valensi pada semikonduktor

tersebut terisi sedangkan pita konduksinya kosong. Hal ini mengakibatkan proses eksitasi elektron dari

pita valensi ke pita konduksi. Harga Eg Fe2O3 yaitu

2,3 eV sedangkan Eg Fe2O3-Zeolit sebesar 3,8 eV,

hal ini menunjukkan bahwa energi yang dimiliki oleh

katalis cukup besar untuk meningkatkan aktifitas

fotokatalitik degradasi zat warna termasuk jingga

metil [12].

Tabel 1. Perbandingan Berbagai Uji Fotodegradasi Zat

Warna Metil Jingga Dengan Katalis menggunakan

sinar uv-vis

No Jenis katalis Kemampuan

degragadasi zat warna

1 TiO2-Kitosan [8] 36,99%

2 Reaktor fixed bed batu apung-semen [14]

40,64%

3 ZnO-TiO2 dengan

fotosonolisis [10]

96,25%

4 Fe2O3-Zeolit dengan pengocokan

62,96%

Berdasarkan hasil beberapa penelitian di

atas maka dapat disimpulkan bahwa daya

fotokatalisis terhadap zat warna metil jingga dari

oksida logam Fe yang diimpregnasi ke zeolit cukup



76

tinggi. Apabila dibandingkan dengan katalis lainnya

dapat dilihat bahwa aktifitas fotodegradasinya lebih

tinggi dari oksida logam TiO2 dan batu apumg-

semen. Namun demikian, daya degradasinya lebih

rendah daripada komposit ZnO-TiO2. Hal ini

diakibatkan energi band gap dari kedua logam

tersebut lebih besar daripada energi eksitasi logam

Fe. Disamping itu, salah satu kelemahan apabila

hanya menggunakan logam murni sebagai katalis

adalah adanya sintering (penggumpalan) karena

proses pemanasan [1]. Oleh karena itu, diharapkan

katalis logam atau oksida logam yang

diimpregnasikan ke suatu media maka dapat

mengurangi efek sintering tersebut.

4. KESIMPULAN

Berdasarkan hasil penelitian tentang variasi

perlakuan pada uji fotodegradasi zat warna metil

jingga, maka dapat disimpulkan bahwa persen zat

warna terdegradasi paling tinggi sebesar 62,96%

diperoleh dengan cara penambahan katalis Fe2O3-

zeolit yang dibantu dengan sinar uv dan pengocokan.

Di sisi lain, persen terdegradasi paling kecil berada

pada variasi perlakuan tanpa sinar uv namun terdapat

penambahan katalis Fe2O3-zeolit yaitu 14,82%.

Faktor-faktor yang dapat mempengaruhi uji

fotodegradasi katalis Fe2O3-zeolit terhadap zat wana

metil jingga adalah adsorpsi, proses fotodegradasi, fotolisis zat warna oleh sinar uv serta pembentukan

senyawa kompleks dari logam dengan zat warna.


Terimakasih disampaikan peneliti kepada

semua pihak yang telah membantu penyelesaian

penelitian ini. Ucapan terimakasih juga disampaikan

kepada laboratorium kimia anorganik Jurusan Kimia

Fakultas MIPA Unviveritas Brawijaya.





ini.”

DAFTAR PUSTAKA

1.Agustine, L.R., Heterogeneous Catalysis for

Synthetic Chemist, Marcel Dekker, Inc., ,

New York, pp 153-182, 1996.

2.Atkin,P.W, C.H. Langford, and D.F Shriver, Inorganic Chemistry, Oxford University

Press, Melbourne, 1990.

3.Fatimah,Is, Eko S., Karna W., Iqmal T.

dan

Kamalia, Titanium Oxide Dispersed on

Natural Zeolite ( TiO2/ Zeolite ) and It’s

Aplication For Congo Red

Fotodegradation, Department of

Chemistry, Faculty of Mathematics and

Natural Sciences, Gadjah Mada University

, Yogyakarta, Indonesia. 2006.

4.Fatimah, Is, Karna W., Pengaruh Metode

Preparasi Terhadap Fisiokimiawi

Montmorilonit Termodifikasi ZrO2,

Akta Kimindo Vol. 1, 2006, Jurusan

Kimia FMIPA Universitas Islam

Indonesia, Jogjakarta. 5. Heraldy, E, Hisyam SW, dan Sulistiyono. 2003.

Characterization and Activation of

Natural Zeolite from Ponorogo Indonesian J. Chem,Vol 3, no.2

6.Ismunandar, Padatan Oksida Logam, Intitut

Teknologi Bandung Press, Bandung, 2004.

7.Martinez, Torres, Leticia M., dkk, Bi2MTaO7 (M

= Al, Fe, Ga, In) Photocatalyst for

Organic Compound Degradation Under

UV and Visible light, ISSN: 1790-5079,

Issue 4, Volume 6. 2009.

8.Muniroh, Wiqoyatul, Studi Fotodegradasi-Adsorpsi Methyl Orange Menggunakan Komposit

TiO2-Kitosan,Skripsi Jurusan Kimia UIN

Sunan Kalijaga.2014.

9.Nyquist, R.A., and Kegel, R.O., Infrared Spectra

of Inorganic Compounds, Academic

Press Inc., London, 1971.

10.Sanjaya, H.,dkk., Degradasi Metil Violet

Menggunakan Katalis ZnO-TiO2

Secara Fotosonolisis. Jurnal EKSAKTA,

Universitas Negeri Padang, Vol.19

No.1.2018. 11.Setyawan, D., P. Handoko, Preparasi Katalis

Cr/Zeolit Melalui Modifikasi Zeolit

Alam. Jurnal Ilmu Dasar.3(1), Jurusan

Kimia, FMIPA, Universitas Jember,

Jember, 2001; hal 15-23.

12.Wijaya, K. Dhamayanti Y. ,. dan Iqmal T.,

Fotodegradasi Zat Warna Metyhl

Orange Menggunakan Fe2O3-

Montmorilonit dan Sinar Ultraviolet,

Laboratorium Kimia Fisika Jurusan Kimia

FMIPA Universitas Gadjah Mada,

Yogyakarta, 2005. 13.Yang-Hsin Shih , Chih-Ping Tso and Li-Yuan

Tung, Rapid Degradatiion of Methyl

orange With Nanoscale Zerovalent Iron

Particles,Department of Soil and

Environmental Sciences National Chung

Hsing University Taichung, Taiwan,

Journal of the University of Soil and

Environmental Sciences, 2010; 20,3, 137-

143

14.Yuningrat, N.W.,dkk.,Fotodegradasi Methyl

Orange Dalam Reaktor Fixed Bed Batu Apung-Semen, Jurnal Sains dan

teknologi,2016;Vol.5No.1.



77

Artikel Penelitian

Silfiana Nisa Permatasari1*),

Umarudin1

1Akademi Farmasi Surabaya, Surabaya *) E-mail: [email protected]

ABSTRAK

Tumbuhan benalu merupakan tumbuhan tingkat tinggi yang tergolong sebagai parasit. Penelitian ini bertujuan

untuk determinasi dan analisa proksimat pada daun benalu pada pohon mangga arumanis di ketintang Madya

Surabaya. Metode penelitian ini dilakukan secara true experimental. Penelitian ini meliputi determinasi tumbuhan benalu di LIPI Purwodadi dan analisa proksimat meliputi analisa kadar abu (Gravimetri), kadar air

(Thermovolumetri), dan kadar karbohidrat total (Iodimetri). Hasil penelitian menunjukkan bahwa hasil

determinasi adalah tanaman Dendrophthoe pentandra (L.) Miq dan Macrosolen tetragonus BI. Hasil analisa

proksimat daun benalu Dendrophthoe pentandra (L.) Miq diperoleh hasil rata-rata yaitu kadar abu 14,22%;

kadar air 7,50%; kadar karbohidrat total 16,20%.

Kata kunci: Determinasi, Analisa Proksimat, Benalu Mangga arum manis.

Determination and Proximate Analysis of Parasite Plants on Arum

Manis Mango Tree on Ketintang Madya Surabaya

ABSTRACT

Parasite plants are high-level plants classified as parasites. This research aims at determination and proximate

analysis of parasite leaves on arum manis mango tree at Ketintang Madya No. 81, Surabaya. This study is true

experimental research. It involves the determination of parasitic plants at LIPI Purwodadi and proximate

analysis including analysis of ash content (Gravimetry), water content (Thermovolumetry), and total carbohydrate levels (Iodimetry). The result of determination is Macrosolen tetragonus (BI.) Miq and

Dendrophthoe pentandra (L.) Miq. Meanwhile, the result of proximate analysis is Dendrophthoe pentandra (L.)

Miq. Also, the average yield was 14.22% ash content; 7.50% moisture content; 16.20% total carbohydrate

levels.

Keywords: Determination; Proximate analysis; Parasite plants

1. PENDAHULUAN

Tumbuhan benalu merupakan tumbuhan tingkat

tinggi yang tergolong sebagai parasit, masuk ke

dalam Ordo Santalales [1]. Menurut Downey [2],

sekitar 1.400 spesies yang tergolong parasit pada

tumbuhan berbunga ini termasuk dalam lima famili

yaitu Loranthaceae, Viscaceae, Misodendraceae,

Ermolepidaceae, dan Santalaceae. Famili

Loranthaceae memiliki ciri batang berkayu dan

tumbuh di dahan-dahan anggota Gymnospermae dan

Dicotyledonae yang berkayu, memiliki daun-daun

tunggal yang kaku seperti belulang, duduknya

bersilang berhadapan atau berkarang tanpa daun

penumpu. Terkadang tidak terdapat daun dalam hal

ini ruas pada cabang-cabangnya berwarna hijau yang

berfungsi sebagai proses asimilasi. Bunga pada

tumbuhan ini adalah berbunga banci atau berkelamin

tunggal, berumah 1 atau 2, aktinomorf dengan tenda

bunga yang sedikit terdeferensiasi dan bakal buah

tenggelam dalam sumbu bunga serta buah

menyerupai buah batu [1]. Pada umumnya tumbuhan

benalu menjadi lebih banyak tumbuh ketika menjadi

parasit pada populasi pohon yang sama [3]. Benalu

banyak menempel pada pepohonan, salah satunya

adalah pohon mangga. Benalu mangga merupakan

tumbuhan epifit semiparasit yang menggunakan

tumbuhan lain sebagai inangnya. Tumbuhan epifit

semiparasit adalah tumbuhan yang menempel pada

tumbuhan lain sebagai inang tempat penyerapan

sebagian makanan yang dibutuhkannya, sedangkan

sebagian makanan yang lain diperoleh dari hasil

fotosintesisnya sendiri [5].

Benalu mangga sudah banyak yang mengkaji

secara ilmiah seperti dimanfaatkan sebagai

antiradang, analgensik, antivirus, antikanker,

imunitas dan lain-lain. Kandungan senyawa yang

Determinasi dan Analisa Proksimat Daun Benalu pada Pohon Mangga

Arum Manis di Ketintang Madya Surabaya




78

terdapat pada ekstrak benalu mangga adalah

flavonoid, asamamino, karbohidrat, tanin, alkonoid

dan saponin [21], flavonoid dikenal sebagai senyawa

yang bersifat sebagai antioksidan utama pada benalu.

Antioksidan adalah senyawa yang dapat menetralkan

dan melawan bahan toksik (radikal bebas) dan

menghambat terjadinya oksidasi pada sel sehingga

menggurangi kerusakan sel [22, Pada penelitian

Artanti (2009) menyatakan bahwa, ektrak etanol

daun benalu menunjukkan adanya aktivitas

antioksidan bervariasi dengan IC50 = 6,4 s/d 38,7

µg/ml[23]. Melihat potensi yang ada pada pohon

benalu pada pohon mangga dan benalu mangga

menyebar secara luas baik pada negara Cina,

Kamboja, India, Indonesia, Laos, Malaysia,

Myanmar, Filipina, Thailand dan Vietnam [4, 6]. Akan

tetapi untuk mengatahui spesies benalu mangga perlu

dilakukan determinasi. Kunci determinasi merupakan

cara analitis buatan yang memungkinkan pengenalan

tumbuh-tumbuhan berdasarkan sifat-sifat yang

penting dengan jalan memilih diantara sifat-sifat

yang dipertentangkan, mana yang sesuai (digunakan)

dan mana yang tidak sesuai (tidak digunakan) [7].

Tujuan utama taksonomi tumbuhan adalah mengenal,

menjelaskan ciri, variasi suatu tumbuhan, baik yang

sekarang masih ada maupun yang dahulu pernah ada

dalam suatu sistem yang sesuai dengan kemajuan

ilmu pengetahuan. Oleh karena itu perlu adanya

kajian ilmiah untuk mendeterminasi benalu pada

pohon mangga arum manis di Jl. Ketintang Madya

Kota Surabaya dan juga kandungan proksimat pada

daun benalu tersebut yang akan menjadi topik dalam

penelitian ini. hal ini dikarenakan analisa proksimat

berperan penting dalam kehidupan baik manusia

maupun hewan.

Analisa proksimat dilakukan untuk mengetahui

komponen utama dari suatu bahan baik untuk

makanan. Komponen utama analisa proksimat pada

umumnya terdiri dari kadar air, kadar abu,

karbohidrat, protein serta lemak [8]. Analisa ini

menjadi perlu dilakukan karena menyediakan data

kandungan utama dari suatu bahan makanan. Selain

itu juga analisa proksimat yang terkandung pada

benalu berkenaan dengan kadar gizi. Kadar gizi perlu

diketahui karena berhubungan dengan kualitas bahan

tersebut. Selain itu juga, analisa proksimat pada

umumnya tidak mahal dan relatif mudah untuk

dilakukan [9]. Selama ini benalu mangga di jalan

Ketintang Madya Surabaya belum terdeteksi

jenisnya/spesiesnya sehingga dibutuhkan penelitian

yang lebih komprehensif untuk mempelajari

keanekaragaman jenis benalu dari pohon inangnya,

dan dilanjutkan analisa proksimat benalu pohon

mangga arum manis di Ketintang Madya, Surabaya.


Jenis penelitian ini secara true

experimental. Alat yang digunnakan pada

penelitian ini adalah cawan porselen,

desikator, hotplate, labu didih, seperangkat

alat destilasi dan aufhauser, erlenmeyer, beker

glass, tabung reaksi, gelas ukur. Bahan yang

digunakan pada penelitian ini adalah daun

benalu pada phon mangga arum manis,

toulene, HCl 3 %, lakmus, NaOH 30%, larutan

luff, KI 20% dan H2SO4 25%. Penelitian pertama dilakukannya determinasi

daun benalu pohon mangga arum manis yang berasal

di Jalan Ketintang Madya No. 81 Surabaya di

Lembaga Ilmu Pengetahuan Indonesia (LIPI).

Selanjutnya analisa proksimat [10] untuk analisa kadar

abu dengan Metode Gravimetri yaitu Cawan porselin

yang kosong dikeringkan dalam tanur selama 1 jam

pada suhu 5500C, kemudian didinginkan selama 1

jam di dalam desikator. Sejumlah 5 g sampel daun

dimasukkan ke dalam cawan yang sudah didinginkan

dan diarangkan di atas hotplate sampai menjadi

arang. Kemudian cawan yang berisi simplisia daun

benalu pohon manga arum manis dimasukkan ke

dalam tanur pada suhu 5500C selama 8 jam sampai

menjadi abu. Cawan dan abu didinginkan dalam

desikator dan ditimbang sampai diperoleh bobot yang

konstan. Berikut perhitungan % kadar abu yang

terlihat di bawah ini.

..................(1)

Analisa kadar air dengan metode

Thermovolumetri yaitu mengambil sampel daun

benalu sebanyak 5-10 gram dalam labu didih,

kemudian tambahkan toluen sebanyak 100 ml ke

dalam labu didih. Setelah itu alat aufhauser dirakit

bersama labu didih yang di dalamnya sudah terdapat

sampel. Jika sudah selesai heating mantel mulai

dinyalakan dan dibiarkan hingga mengeluarkan

destilat, lalu mulai didiamkan selama 2,5 jam.

Heating mantel dimatikan, dan biarkan terlebih

dahulu hingga terlihat sudah tidak ada destilat sama

sekali dan alat mulai dingin. Volume air yang



79

tertampung pada alat Aufhauser dibaca dan dihitung

dengan rumus :

..................................(2)

v disini merupakan volume air yang tertampung

pada alat aufhouser (ml) dan W sebagai berat sampel

di dalam labu didih (g).

Analisa kadar karbohidrat total dengan metode

Iodimetri yaitu menimbang sampel daun benalu

sebanyak ± 5 gram ke dalam erlenmeyer 500 ml.

Sampel daun benalu tambahkan 200 ml larutan HCL

3 %, didihkan selama 3 jam dengan pendingin tegak,

kemudian dinginkan dan netralkan dengan larutan

NaOH 30% (dengan lakmus atau fenolftalein), dan

ditambahkan sedikit CH3COOH 3% agar suasana

larutan sedikit asam. Larutan di pindahkan ke dalam

labu ukur 500 ml dan impitkan hingga tanda garis,

kemudian saring. Larutan yang akan di titrasi, di

encerkan sehingga volume titran sesuai dengan

kapasitas buret. Larutan di pipet 10 ml, kemudian

saring ke dalam erlenmeyer 500 ml, di tambahkan 25

ml larutan luff (dengan pipet) dan beberapa butir batu

didih serta 15 ml air suling. Campuran tersebut di

panaskan dengan nyala api yang tetap dan usahakan

agar larutan dapat mendidih dalam waktu 3 menit

(gunakan stop watch), didihkan terus selama tepat 10

menit (di hitung dari saat mulai mendidih dan

gunakan stop watch) kemudian dengan cepat

dinginkan dalam bak berisi es. Larutan yang telah

dingin, tambahkan 15 ml larutan KI 20% dan 25 ml

H2SO4 25% secara perlahan-lahan. Larutan tersebut

di titrasi dengan larutan thiosulfat 0,1N (gunakan

petunjuk larutan kanji 0,5%). Kerjakan juga titrasi

blanko. Hitung kadar sampel dengan cara : (Blanko

peniter) x N thio x 10, setara dengan titrasi yang

tereduksi, kemudian lihat dalam daftar Luff Schoorl

berapa mg gula yang terkandung untuk ml thio yang

dipergunakan.

.....................(3)

Dimana :

Kadar karbohidrat = 0,90 x Kadar glukosa

W1 = Bobot cuplikan mg

W = Glukosa yang

terkandung untuk ml

thio yang dipergunakan

dalam mg, dari daftar

Fp = Faktor pengenceran


3.1 Determinasi Daun Benalu Pohon Mangga

Hasil determinasi daun benalu pohon mangga

arum manis yang diambil dari Jalan Ketintang Madya

No. 81 Surabaya berdasarkan koleksi herbarium dan

koleksi kebun serta referensi ilmiah Lembaga Imiah

Pengetahuan Indonesia (LIPI), dengan hasil sebagai

berikut :

Kingdom : Plantae

Division : Magnoliophyta

Class : Magnoliopsida

Subclass : Rosidae

Ordo : Santalales

Hasil determinasi daun benalu pada pohon mangga

arum manis terdapat 2 spesies yang terlihat pada

Tabel 1 dan Gambar di bawah ini.

Tabel 1. Hasil Determinasi Daun Benalu Pohon

Mangga Arum Manis

Genus Spesies Family

Macrosolen Macrosolen tetragonus (BI.) Miq

Loranthaceae

Dendrophthoe Dendrophthoe pentandra (L.) Miq

Loranthaceae

Gambar 1. Macrosolen tetragonus BI.

Gambar 2. Dendrophthoe pentandra (L.)

Hasil dari determinasi daun benalu pohon

mangga arum manis didapatkan spesies Macrosolen

tetragonus (BI.) Miq dan Dendrophthoe pentandra

(L.) Miq. Selanjutnya dilakukan uji lanjut yaitu

analisa proksimat. Analisa proksimat pada penelitian

ini adalah spesies daun Dendrophthoe pentandra (L.)

Miq.



80

3.2 Analisa Proksimat daun Dendrophthoe

pentandra (L.) Miq.

a. Hasil Penetapan Kadar Abu daun

Dendrophthoe pentandra (L.) Miq. dengan

Metode Gravimetri

Hasil penetapan kadar abu daun daun


menggunakan metode gravimetri yang terlihat pada

Tabel 2 di bawah ini.

Tabel 2. Kadar Abu Daun Dendrophthoe pentandra (L.)

Sample Berat

Sample (g)

Berat abu

(g)

Kadar abu

(%)

S. 1 5,0007 0,712 14,24 % S. 2 5,0006 0,710 14,20 %

S. 3 5,0004 0,711 14.22 % Rata-rata 14,22 %

Pada Tabel di atas menunjukkan bahwa rata-

rata nilai kadar abu pada daun Dendrophthoe

pentandra (L.) Miq. adalah 14,22%. Kadar abu

ditentukan berdasarkan kehilangan berat setelah

pembakaran dengan syarat titik akhir pembakaran

dihentikan sebelum terjadi dekomposisi dari abu

tersebut. Kadar abu yang diukur pada Dendrophthoe

pentandra (L.) Miq. bermanfaat untuk mengetahui

besarnya kandungan mineral yang terkandung [ 11].

b. Hasil Penetapan Kadar Air daun


Metode Destilasi

Hasil penetapan kadar air Dendrophthoe

pentandra (L.) Miq. dengan metode destilasi yang

terlihat pada Tabel di bawah ini.

Tabel 3. Kadar Air daun Dendrophthoe pentandra (L.)

Sample Berat

Sample (g)

Volume air

(ml)

Kadar air

(%)

S. 1 5,0005 0,375 7,50 % S. 2 5,0012 0,390 7,80 % S. 3 5,0004 0,360 7,20 %

Rata-rata 7,50 %


rata nilai kadar air pada daun Dendrophthoe

pentandra (L.) Miq. Adalah 7,50%. Analisi kadar air

dilakukan dengan Metode Thermovolumetri .

Metode ini merupakan metode pemisahan campuran

yang digunakan untuk memisahkan zat-zat penyusun

suatu campuran yang berupa larutan. Proses destilasi

ini menggunakan alat Aufhauser.

Pelarut yang digunakan pada penelitian ini

adalah larutan toluen karena toluen yang memiliki

titik didih lebih tinggi dari air (110,6 ) dan

mempunyai berat jenis yang lebih kecil dari air

(0,886) sehingga toluen tidak bercampur dengan air [12]

. Selain itu juga toluen akan ikut menguap dan

membawa air dari sampel lalu uap air akan

membentuk tetesan air (destilat) yang ditampung di

dalam alat Aufhauser. Setelah didapatkan kadar air,

memperlihatkan hasil yang tidak berbeda jauh antara

perlakuan triplo yang dilakukan yang terlihat pada

Tabel 3. Saat proses destilasi sudah selesai

sebaiknya alat Aufhauser tidak dibuka langsung

tetapi menunggu benar-benar tidak ada tetesan air,

agar hasil yang didapatkan lebih akurat.

Nilai persen kadar air daun Dendrophthoe

pentandra (L.) memiliki nilai di bawah angka 10%

sehingga dapat dikatakan bahwa simplisia serbuk

daun Dendrophthoe pentandra (L.) memenuhi

kriteria yang dipersyaratkan oleh Peraturan Kepala

Badan Pengawas Obat dan Makanan Republik

Indonesia nomor 12 tahun 2014 tentang persyaratan

mutu obat tradisional yang menyatakan bahwa kadar

air simplisia yang diperbolehkan adalah sebesar ≤

10% [13]

.

Kadar air simplisia yang lebih besar dari 10 %

akan meningkatkan pertumbuhan mikroorganisme di

dalamnya [14]

, akibatnya simplisia akan membusuk

dan dapat menyebabkan perubahan pada beberapa

parameter organoleptis (cita, rasa, tekstur) serta

masa simpan bahan [15]

. Pengeringan juga

bermanfaat untuk menghilangkan aktivitas enzim

yang bisa menguraikan kandungan zat aktif,

memudahkan proses pengelolahan selanjutnya serta

memiliki daya simpan yang lama [16]

. Sehingga

dengan kata lain Dendrophthoe pentandra (L.) dapat

dijadikan sebagai simplisia untuk dilakukan sebagai

obat herbal terstandar dan manfaat uji klinis.

c. Hasil Penetapan Kadar Karbohidrat Total

dengan Metode Iodimetri

Hasil penetapan kadar karbohidrat total

Dendrophthoe pentandra (L.) Miq dengan

menggunakan metode Iodometri yang terlihat pada

Tabel di bawah ini.

Tabel 4. Kadar Karbohidrat Total daun Dendrophthoe

pentandra (L.)

Sample

Berat

Sample

(g)

Selisih

Vol.

thio

(ml)

Berat

gluko

sa

(mg)

Kadar

glukosa

(%)

Kadar

Karbohi

drat

(%)

S.1 1,0066 17,36 45,24 17,98 % 16,18 % S.2 1,0028 17,41 45,39 18,10 % 16,20 % S.3 1,0028 17,41 45,39 18,10 % 16,20 %

Rata-

rata

16,20 %



81


rata nilai kadar karbohidrat pada daun Dendrophthoe

pentandra (L.) Miq. adalah 16,20%. Analisa

karbohidrat dilakukan dengan 2 cara yaitu secara

kualitatif dan kuantitatif karena analisis kuantitatif

tidak dapat berjalan sendiri tanpa didahului dengan

analisis kualitatif yang memastikan apakah dalam

sampel mengandung karbohidrat atau tidak dengan

menggunakan pereaksi yaitu Reagen Luff Schoorl.

Pada penelitian ini sampel dihidrolisis dengan asam,

jika menghasilkan endapan merah bata maka proses

hidrolisis telah selesai dan karbohidrat terdeteksi

dalam dan sampel. Penentuan kadar karbohidrat

secara kuantitatif dilakukan melalui metode Luff-

Schoorl dengan prinsip dasar tereduksinya kupri

oksida (Cu2+) menjadi kupro oksida (Cu⁺ ) karena

adanya gula pereduksi.

Pada analisa kadar glukosa, langkah pertama

yang dilakukan adalah pembakuan larutan Na2S2O3.

Larutan Na2S2O3 merupakan larutan baku sekunder

atau larutan yang akan digunakan untuk mentitrasi

sampel. Larutan ini perlu dibakukan karena

konsentrasinya cepat berubah oleh pengaruh

lingkungan karena senyawa yang digunakan sebagai

larutan baku sekunder pada umumnya tidak stabil,

dikarenakan sifat yang dimiliki yaitu higroskopis,

sensitive terhadap cahaya atau mudah terdegradasi

oleh udara. Pengaruh ketidakstabilan ini tidak hanya

bersifat kimia tetapi juga dapat bersifat fisik seperti

misalnya saat penimbangan sering tidak tepat karena

senyawa ini memiliki berat molekul relative kecil dan

mudah menyerap uap air di udara. Selain itu juga

terdapat senyawa kalium dikromat merupakan

senyawa baku primer yang tidak perlu dibakukan lagi

terhadap senyawa lain. K2Cr2O7 dapat digunakan

sebagai standar primer yang baik karena memiliki

sifat : murni atau mudah dimurnikan, memiliki massa

molekul relative yang besar (2,676g/cm3), stabil,

kelarutan dalam air pada suhu 0 (4,9 g/100 ml)

dan 100 (102 g/100ml), mempunyai massa

ekivalen yang tinggi (294.185 g/mol) [18,19,20]

.

Pada pembakuan ini digunakan larutan baku

kalium iodida karena larutan ini cukup stabil dan

lebih mudah larut daripada iodium, serta dapat

menghasilkan iodium bila ditambahkan asam.

Larutan baku kalium iodida yang digunakan harus

selalu dibuat baru karena mudah teroksidasi oleh

udara sehingga jumlah yang lepas menjadi lebih

banyak dan diperlukan titran yang lebih banyak pula.

Akibatnya penetapan kadar menjadi tidak akurat lagi.

Oleh karena itu iodium mudah menguap dan iodida

dalam larutan asam mudah dioksidasi oleh udara,

maka labu harus selalu ditutup dan titrasinya tidak

boleh terlalu lama. Penambahan KI diharuskan

berlebih, apabila tidak maka Cr2O72-

masih bersisa

dan akan terjadi reaksi sampingan antara Cr2O72- dan

Na2S2O3 yang membuat titik akhir titrasi tidak

tercapai.

Pada pengujian karbohidrat dengan metode luff

schrool ini pH larutan harus diperhatikan dengan

baik, karena pH yang terlalu rendah (terlalu asam)

akan menyebabkan hasil titrasi menjadi lebih tinggi

dari sebenarnya, karena terjadi reaksi oksidasi ion

iodida menjadi I2. Sedangkan apabila pH terlalu

tinggi (terlalu basa), maka hasil titrasi akan menjadi

lebih rendah daripada sebenarnya, karena pada pH

tinggi akan terjadi resiko kesalahan, yaitu terjadinya

reaksi I2 yang terbentuk dengan air (hidrolisis).

Selisih titrasi blanko dengan titrasi sampel

ekuivalen dengan kupro oksida yang terbentuk.

Kupro oksida yang terbentuk juga ekuivalen dengan

jumlah gula reduksi yang terdapat dalam

bahan/larutan. Reaksi yang terjadi selama titrasi

adalah mula-mula kuprioksida yang ada dalam

reagen akan membebaskan iod dari garam K-iodida.

Banyaknya iod yang dibebaskan ekuivalen dengan

banyaknya kupri oksida. Banyaknya iod dapat

diketahui dengan titrasi menggunakan Na2S2O3 yakni

dari volume Na2S2O3 selama proses titrasi. Selain itu

juga perlu diperhatikan adalah titik akhir titrasi.

Untuk mengetahui bahwa titik akhir titrasi telah

tercapai maka diperlukan indikator larutan kanji

0,5% Ketika telah diketahui selisih banyaknya titrasi

blanko dan titrasi sampel, konversikan pula dengan

tabel yang menggambarkan hubungan antara

banyaknya Na2S2O3 dengan banyaknya gula

pereduksi sehingga diketahui jumlah gula pereduksi

yang ada dalam larutan.

Ketika proses hidrolisis selesai, beberapa

langkah dilakukan dalam penentuan kadar

karbohidrat secara kuantitatif diantaranya titrasi

blanko, titrasi standarisasi Na2S2O3, dan titrasi

sampel. Yang harus diperhatikan dalam penentuan

gula cara luff schoorl adalah yang ditentukan bukan

kupri oksida yang mengendap melainkan kupri

oksida dalam larutan sebelum direaksikan dengan

sampel gula reduksi (titrasi blanko) dan sesudah

direaksikan dengan sampel gula reduksi (titrasi

sampel). Kadar karbohidrat total dengan metode

iodimetri merupakan perkalian 0,90 dari kadar

glukosa sampel serbuk daun benalu mangga

(Dendrophthoe pentandra (L.).



82

4. KESIMPULAN

Berdasarkan hasil penelitian di atas dapat

disimpulkan bahwa hasil determinasi daun benalu

pohon mangga arum manis di Jalan Ketintang Madya

No. 81 Surabaya adalah Macrosolen tetragonus (BI.)

Miq dan Dendrophthoe pentandra (L.) Miq. Analisa

proksimat daun Dendrophthoe pentandra (L.) Miq

diperoleh hasil rata-rata yaitu kadar abu 14,22%;

kadar air 7,50%; dan kadar karbohidrat total 16,20%.


Penulis mengucapkan terimakasih kepada

bagian Lembaga Penelitian dan Pengabdian

Masyarakat Akademi Farmasi Surabaya dan Unit

Layanan Pengujian Universitas Airlangga atas

bantuan teknis meliputi alat, bahan serta sarana

prasarana penunjang selama penelitian berlangsung.





ini.

DAFTAR PUSTAKA

1. Tjitrosoepomo G. Taksonomi tumbuhan

(spermatophyta). Yogyakarta: Gadjah

Mada University Press; 2013.

2. Downey PO. An inventory of host species for

each aerial mistletoes species

(Loranthaceae and Viscaceae) in

Australia. Cunninghamia. 1998; 5(3):685-

720. 3. Norton DA, Hobbs RJ, and Atkins L.

Fragmentation, disturbance and plant

distribution: Mistletoes in Woodland

Remnants in the Westren Australia

Wheatbelt. Conservation Biology.

1995;9(2):426.

4. Heide-Jorgensen HS. Parasitic plants.

Barkeley and Los Angeles: University of

California Press; 2011.

5. Giesen W, Wulffraat S, Zieren M, and Scholten

L. Mangrove guidebook for Southeast

Asia. Bangkok : FAO and Wetlands

International; 2006.

6. Zainuddin NASN, Sul’ain MD.

Antiproliferative effect of D. Pentandra

extracts toward human breast

adenocarcinoma cell (MCF-7). Jurnal

Teknologi UTM. 2015;77(2):35-37.

7. Onrizal. Dendrologi [Diunduh 24 mei 2019].

Tersedia dari:

https://onrizal.wordpress.com/2008/09/30/d

endrologi/.

8. Hui YH. Handbook of food science,

technology, and engineering Volume 1. Boca Raton : Taylor & Francis Group; 2006.

9. Ensminger AH, Ensminger ME, Konlande JE,

Robson JRk. Foods and nutrition

encyclopedia Volume 1 Edisi ke-2. Boca

Raton : CRC Pres; 1994.

10. Horwitz W, Latimer GW. Official methods of

analysis: AOAC Edisi ke-18. Gaithersburg:

Association of Official Analytical Chemist (AOAC); 2005.

11. Sudarmadji, Slamet, Haryono B, Suhardi.

Analisis bahan makanan dan pertanian.

Yogyakarta: Pusat Antar Universitas

Pangan dan Gizi Universitas Gajah Mada.

Liberty; 2003.

12. Oxtoby DW, Gillis HP, Nachtrieb NH.

Principles of modern chemistry Fourth Edition. Diterjemahkan : Suminar Setiadi

A Ph.D. Jakarta : Erlangga; 2001.

13. [BPOM] Badan Pengawas Obat dan Makanan,

Peraturan Kepala Badan Pengawas Obat

dan Makanan Republik Indonesia nomor

12 tahun 2014 tentang persyaratan mutu

obat tradisional. Jakarta: BPOM; 2014.

14. Jesica, Chandra A, dan Suharto I. Pengaruh

variasi ukuran daun Stevia dan

perbandingan umpan pada karakterasi

produk gula cair Stevia. Prosiding

Seminar Nasional Teknik Kimia

“Kejuangan”; 2016 Maret 17; Yogyakarta,

Indonesia. Indonesia: UPN “Veteran”

Yogyakarta; 2016. 15. Chandra A. Studi awal ekstraksi batch daun

Stevia rebaudiana dengan variabel jenis

pelarut dan temperatur ekstraksi. Prosiding Seminar Nasional Masyarakat

Biodiversitas Indonesia; 2014 Desember 20:

Depok, Indonesia. Indonesia: Universitas

Indonesia; 2015.

16. Endharti AT, Wulandari A, Listyana A,

Permana S. Dendrophtoe petandra extract

effectively inhibit inflamation,

proliferation, and induces p53 expression

on Colits Associated Colon Cancer. Biomed Central (BMC), complementary

and alternative medicine. 2016;16(374):1-8.

17. Gunawan, Triatmo M, Rahayu A. Analisis

Pangan : Penentuan angka peroksida

dan asam lemak bebas pada minyak

kedelai dengan variasi menggoreng.

JKSA. 2003;6(3):13-16.

18. Iaremkevich OS, Bura MV, Mandzynets SM,

Kulachkovs'kyi OR, Lubenets VI. The

influence of potassium 4-

toluenethiosulfonate on membrane

potential and ATP ase activity of

https://onrizal.wordpress.com/2008/09/30/dendrologi/

https://onrizal.wordpress.com/2008/09/30/dendrologi/



83

plasmatic membranes of loach embryos. Ukrains'kyi biokhimichnyi zhurnal.

2010;82:42-51

19. Prabowo H. Penyelidikan kelayakan kimia

dan penyebaran cadangan pasir besi

daerah Tiku Kabupaten Agam untuk

bahan baku semen pada PT. Semen

Padang. Eksakta. 2018;19:39-42.

20. Bystrzejewska-Piotrowska G, Pianka D, Bazala

MA, Steborowski R, Manjon JL, Urban PL.

Pilot study of bioaccumulation and

distribution of cesium, potassium,

sodium and calcium in king oyster

mushroom (Pleurotus eryngii) grown

under controlled conditions. International

journal of phytoremediation. 2008;10:503-

14.

21. Katrin, Soemardji AA, Soeganda AG, Soediro

I.Toksisitas akut isolat fraksi n-hexana

dan etanol daun Dendrophthoe pentandra

(L.)Miq. yang mempunyai aktivitas

imunostimulan. Majalah Farmasi

Indonesia. 2005; 8(4): 227 – 231. 22. Simanjuntak P, Parwati T, Lenny LE, Tamat

SR, Maurwani R. Isolasi dan Isentifikasi

Antioksidan dari Ekstrak Benalu Teh

(Scurrula oortiana (Korth) Danser).

Journal Ilmu Kefarmasian Indonesia. 2004;

2(1):19-24

23. Artanti N, Firmansyah T, Darmawan A.

Bioactivities Evaluation of Indonesian

Mistletoes (Dendrophthoe pentandra (L.)

Miq.) Leaves Extracts. Journal of Applied

Pharmaceutical Science. 2012; 1:24-27.

Journal of Pharmacy and Science Vol. 4, No.2, (Juli 2019), P-ISSN : 2527-6328, E-ISSN : 2549-3558

84

Halaman Kosong

Journal of Pharmacy and Science Vol. 4, No.2, (Juli 2019), P-ISSN : 2527-6328, E-ISSN : 2549-3558

85

Artikel Penelitian

Junairiah,1*)

Artifa Rachmah,1)

Yosephine Sri Wulan Manuhara1),

Ni’matuzahroh1)

Lilis

Sulistyorini 2)

Surahmaida3)

1Departemen Biologi, Fakultas Sains dan Teknologi, Universitas Airlangga, Surabaya

2 Fakultas Kesehatan Masyrakat, Universitas Airlangga, Surabaya 3Akademi Farmasi Surabaya, Surabaya


ABSTRAK

Penelitian ini bertujuan untuk mengetahui pengaruh kombinasi konsentrasi zat pengatur tumbuh IBA

(Indole Butyric Acid) dan BAP (6-Benzyl Amino Purine) yang paling baik untuk induksi kalus sirih hitam (Piper

betle L.). Penelitian ini menggunakan rancangan acak lengkap dengan 25 perlakuan dan setiap perlakuan memiliki 6 ulangan sehingga terdapat 150 unit ekperimen. Pada tahap kultur kalus dilakukan dengan

menambahkan zat pengatur tumbuh IBA dan BAP ke dalam medium Murashige and Skoog (MS). Hasil uji

tersebut menunjukkan bahwa zat pengatur tumbuh IBA dan BAP dengan kombinasi konsentrasi berbeda

berpengaruh terhadap waktu induksi kalus, berat segar dan berat kering kalus sirih hitam. Hasil penelitian

menunjukkan waktu tercepat pembentukan kalus pada IBA 2,0 mg/L dan BAP 2,0 mg/L yaitu 10 hari. Berat

segar dan berat kering tertinggi pada IBA 2,0 mg/L dan 2,0 mg/L yaitu 0,8507 gram untuk berat segar dan

0,0769 untuk berat kering. Warna kalus adalah putih kehijauan dengan tekstur kompak dan remah.

Kata kunci: Induksi kalus, Piper betle L., Indole Butyric Acid, 6-Benzyl Amino Purine.

The Effect of Indole Butyric Acid Hormone (IBA) and 6-Benzyl Amino Purin (BAP) on The Induction of Piper betle L. var Nigra

Callus

ABSTRACT

The purpose of this research to determine the effect of the combination concentration of growth regulators

IBA (Indole Butyric Acid) and BAP (6-Benzyl Amino Purine) was best for callus induction black betel (Piper betle L.). This research used completely randomized design with 25 treatments and 6 replicates of each

treatment, hence there were 150 experimental units. At this stage of callus culture was done by adding the

growth regulators IBA and BAP into Murashige and Skoog (MS). The test results showed that plant growth

regulators IBA and BAP in combination with different concentrations of influence on callus induction time, fresh

weight and dry weight callus Piper betle L. The results showed the fastest time of callus formation at IBA 2,0

mg/L and BAP 2,0 mg/L at 10 days. Fresh weight and dry weight of the highest in the IBA 2,0 mg/L and BAP 2,0

mg/L were 0,8507 grams and 0,0769 grams fresh weight to dry weight. The color of callus was white greenish

with compact and friable texture.

Keywords: Callus induction, Piper betle L., Indole Butyric Acid, 6-Benzyl Amino Purine.

1. PENDAHULUAN

Salah satu tanaman yang berpotensi

dimanfaatkan sebagai obat yang ada di Indonesia

adalah sirih hitam. Sirih hitam secara empiris

memiliki banyak efek farmakologi, namun penelitian

ilmiah tanaman ini belum banyak dilakukan. Telah

dilakukan penelitian aktivitas antioksidan dengan

metoda peredaman radikal bebas 1,1-diphenyl-2-

picrylhydrazil (DPPH) dari daun sirih hitam, dengan

hasil penelitian ekstrak daun sirih hitam dengan tiga

kepolaran yang berbeda memiliki aktivitas

antioksidan terhadap radikal bebas DPPH [1].

Sirih hitam mengandung senyawa-senyawa

aktif antara lain flavonoid, alkaloid, polevenolad,

tannin, dan minyak atsiri [2]. Kandungan minyak

atsiri pada sirih memiliki daya antibakteri terhadap

Streptococcus mutans, Streptococcus sanguis,

Streptococcus viridans, Actinomyces viscosus, dan

Staphylococcus aureus [3] Sirih hitam juga

Pengaruh Hormon Indole Butyric Acid (IBA) dan 6-Benzyl Amino

Purin (BAP) terhadap Induksi Kalus Piper betle L. var Nigra




86

menghasilkan senyawa yaitu eugenol yang dapat

berkhasiat sebagai antiseptik [4].Saat ini pemanfaatan

tanaman sebagai bahan baku obat terus meningkat.

Peningkatan kebutuhan akan bahan baku tersebut

sejalan dengan kembalinya masyarakat

memanfaatkan tanaman sebagai bahan obat alami.

Pemanfaatan untuk memperoleh metabolit sekunder

sangat bergantung terhadap keterbatasan bahan baku

tanaman, sehingga diperlukan waktu yang cukup

lama untuk memperoleh metabolit sekunder [5].

Teknik kultur jaringan memberikan alternatif

terhadap usaha perbanyakan tanaman secara vegetatif

dalam skala yang lebih besar dalam upaya konservasi

dan pengembangan tanaman sirih di masa yang akan

datang. Ada beberapa kelebihan yang diperoleh dari

perbanyakan tanaman dengan teknik kultur jaringan

diantaranya adalah dapat menghasilkan tanaman

yang homogen, berkualitas tinggi, jumlah yang tidak

terbatas, bebas hama dan penyakit, menghasilkan

klon yang lebih unggul, dapat diperbanyak dalam

waktu yang relatif singkat, tidak dibatasi oleh waktu,

tetapi membutuhkan keahlian khusus. Keberhasilan

kultur in vitro ditentukan oleh media dan macam

tanaman [6,7].

Media Murashige dan Skoog (MS) digunakan

untuk hampir semua macam tanaman, terutama

tanaman herbasius. Media MS memiliki kandungan

garam-garam yang lebih tinggi dari pada media lain,

disamping kandungan nitratnya juga tinggi [8].

Komponen media MS terdiri dari berbagai

kandungan unsur-unsur makro dan mikro, sumber

karbon, vitamin, asam amino zat pengatur tumbuh

serta bahan organik komplek lainnya [9]. Kombinasi

penggunaan zat pengatur tumbuh (ZPT) auksin dan

sitokinin mempengaruhi pertumbuhan eksplan. Jika

rasio sitokinin dan auksin relatif seimbang maka

eksplan akan membentuk massa sel yang bersifat

meristematik dan terus melakukan pertumbuhan.

Peran utama fisiologis sitokinin (BAP) adalah

mendorong pembelahan sel, sedangkan auksin (IBA)

berperan terhadap pelonggaran dinding sel dengan

melepaskan ikatan hidrogen yang terdapat pada

dinding sel [10,11].

Berdasarkan permasalahan tersebut di atas,

maka dilakukan penelitian induksi kalus eksplan

daun sirih hitam (Piper betle L.) dengan pemberian

kombinasi zat pengatur tumbuh IBA dan BAP, untuk

mengetahui keberhasilan optimasi induksi kalus.


2.1.Alat penelitian

Alat yang digunakan dalam penelitian ini

adalah autoclave, Laminar Air Flow (LAF),

timbangan analitik, kertas payung, aluminium foil,

kertas pH, botol kultur, cawan petri, gelas ukur, gelas

beker, erlenmeyer, pipet, magnetic stirrer, pinset,

bunsen, gunting, kompor listrik, pengaduk, oven,

sprayer, dan kamera digital.

2.2.Bahan penelitian

Bahan yang digunakan dalam penelitian ini

merupakan daun sirih hitam (Piper betle L.) yang

masih muda, terdapat pada urutan daun kedua sampai

keempat dari bagian pucuk tanaman. Tanaman sirih

hitam ini diperoleh dari Pasar Bratang, Surabaya.

Bahan-bahan kimia yang digunakan meliputi bahan

penyusun media Murashige dan Skoog (MS)

(lampiran 1), zat pengatur tumbuh Indole Butyric

Acid (IBA) dan 6–Benzil Amino Purin (BAP),

spiritus, liquid detergent, aquades steril, clorox 20%

dan alkohol 70%.

2.3. Pembuatan media

Pembuatan media Murashige dan Skoog (MS)

dengan volume 1000 mL, dilakukan dengan cara

menimbang bahan makronutrien (1650 mg NH4NO3;

1900 mg KNO3; 440 mg CaCl2.2H2O; 370 mg

MgSO4.7H2O; 170 mg KH2PO4) dan dilarutkan satu

per satu dalam erlenmeyer 1000 mL yang berisi 500

mL aquades steril menggunakan magnetic stirrer.

Setelah seluruh bahan larut, ditambahkan 5 mL

larutan stok zat besi, 1 mL mikronutrien, 4 mL stok

vitamin, zat pengatur tumbuh auksin (IBA) dan

sitokinin (BAP) sesuai konsentrasi yang dikehendaki,

100 mg myo-inositol dan 30 gram sukrosa ditimbang

kemudian dilarutkan dalam aquades steril secara

berurutan.

Kemudian mengukur pH larutan 5,6-5,8

dengan universal indicator paper. Bila terlalu asam

maka ditambahkan beberapa tetes KOH 1N dan

apabila terlalu basa ditambahkan HCl 1N

menggunakan pipet. Selanjutnya ditambahkan

aquades steril hingga volume akhir menjadi 1000

mL. Media pertumbuhan MS yang dibuat merupakan

media padat, sehingga perlu ditambahkan 8 gram

agar-agar kemudian dipanaskan dengan kompor

listrik sambil diaduk hingga larut. Pada keadaan cair,

media dibagi dalam botol kultur ± 20 mL/botol.

Botol kultur yang telah berisi larutan media

selanjutnya ditutup dengan aluminium foil dan diberi

label sesuai dengan perlakuan. Setelah itu botol

kultur yang berisi medium disterilkan dengan



87

menggunakan autoclave pada suhu 1210C tekanan

1,2 atm selama 15 menit. Kemudian medium yang

sudah steril disimpan di ruang penyimpanan pada

suhu kamar.

2.4. Penanaman eksplan

Daun sirih hitam yang masih muda (daun

urutan kedua dan keempat dari bagian pucuk

tanaman) digunakan sebagai eksplan dicuci terlebih

dahulu menggunakan detergen sebelum digunakan,

dan dibilas menggunakan air yang mengalir. Eksplan

yang telah dicuci dimasukkan kedalam Laminar Air

Flow, kemudian eksplan direndam menggunakan

alkohol 70% selama enam menit dan dibilas

menggunakan aquades steril sebanyak tiga kali, lalu

direndam clorox 20% lalu kocok halus selama 10

menit.

Larutan clorox 20% dibuang dan eksplan

dibilas menggunakan aquades steril sebanyak tiga

kali. Eksplan yang telah dicuci diambil dengan

menggunakan pinset lalu diletakkan kedalam

petridish yang telah dialasi kertas saring. Eksplan

daun sirih dipotong dengan ukuran ± 1 cm2 kemudian

diletakkan kedalam botol kultur sesuai dengan

perlakuan. Setiap botol kultur diisi dengan tiga

eksplan. Setelah itu botol yang ditanami eksplan

ditutup menggunakan aluminium foil dan dilapisi

dengan plastic wrap yang rapat.

Kemudian botol tersebut diletakkan ke ruang

inkubasi dengan suhu 20-25 0C yang dilengkapi

dengan pencahayaan, intensitas cahaya yang

dibutuhkan berkisar 400-3000 lux. Cahaya yang

digunakan lampu neon putih 40 watt dengan jarak

lampu 1,5-2 meter dari rak tempat botol kultur.


3.1.Pengaruh pemberian kombinasi konsentrasi

IBA dan BAP terhadap lama waktu induksi dan

persentase eksplan membentuk kalus daun sirih

hitam (Piper betle L.)

Induksi kalus disebabkan oleh luka atau irisan

eksplan sebagai respon terhadap hormon baik secara

eksogen maupun endogen. Berdasarkan tabel 3.1

perlakuan IBA 2,0 mg/L dan BAP 2,0 mg/L mampu

menginduksi kalus lebih cepat dari perlakuan yang

lain dengan rerata lama waktu induksi kalus 9,67

0,82 hari. Sedangkan waktu induksi terlama

dihasilkan pada perlakuan IBA 0,5 mg/L dan BAP

0,0 mg/L dengan rerata lama waktu induksi kalus

23,67 1,86 hari. Hal ini bergantung dari respon

setiap eksplan, karena selain penambahan zat

pengatur tumbuh berupa auksin dan sitokinin pada

media, respon sel-sel eksplan juga dipengaruhi

hormon endogen dan sifat kompeten dari setiap

eksplan (12). Pada perlakuan IBA 2,0 mg/L dan BAP

2,0 mg/L mampu menginduksi kalus lebih cepat

dibandingkan dengan perlakuan lainnya dikarenakan

pada kombinasi konsentrasi zat pengatur tumbuh

IBA 2,0 mg/L dan BAP 2,0 mg/L mampu bekerja

optimal untuk mendorong terjadinya pembentukan

kalus pada eksplan daun sirih hitam.

Pengaruh penambahan IBA dan BAP terhadap

waktu induksi kalus sirih merah (Piper crocatum

Ruiz dan Pav.), menyatakan bahwa hasil terbaik

dalam penelitian tersebut adalah dengan penambahan

IBA 2,0 mg/L dan BAP 2,0 mg/L yaitu 28 hari.

Sedangkan dalam penelitian ini didapatkan hasil

terbaik waktu induksi kalus adalah 10 hari pada

penambahan IBA 2,0 mg/L dan BAP 2,0 mg/L(13).

Pada tabel 3.1 menunjukkan bahwa semua

eksplan pada setiap perlakuan dapat membentuk

kalus, dengan persentase 100%. bahwa pada

kombinasi IBA dan BAP (0,0; 0,5; 1,0; 2,0; 3,0)

eksplan dapat membentuk kalus dengan persentase

100% (14).

Tabel 1. Rerata lama waktu induksi kalus dan

persentase eksplan yang membentuk kalus daun

sirih hitam pada media MS dengan kombinasi

konsentrasi zat pengatur tumbuh IBA dan BAP

No.

Konsentrasi

ZPT (mg/L) Kode

Rerata lama

waktu

induksi kalus

(hari)

Persentase

eksplan

membentuk

kalus (%) IBA BAP

1 0,0 0,0 I0,0B0,0 29 5,62a 100

2 0,0 0,5 I0,0B0,5 17 1,09ab

100

3 0,0 1,0 I0,0B1,0 18 1,09abc

100

4 0,0 1,5 I0,0B1,5 15 1,55bcd

100

5 0,0 2,0 I0,0B2,0 14,67 1,97bcde

100

6 0,5 0,0 I0,5B0,0 23,67 1,86af 100

7 0,5 0,5 I0,5B0,5 18,17 1,33abcdeg

100

8 0,5 1,0 I0,5B1,0 14,5 1,64bcdegh

100

9 0,5 1,5 I0,5B1,5 13,5 0,55dehi

100

10 0,5 2,0 I0,5B2,0 16,5 1,64abcdeghij

100

11 1,0 0,0 I1,0B0,0 19,83 0,41acfgjk

100

12 1,0 0,5 I1,0B0,5 16,5 0,55abcdeghjl

100

13 1,0 1,0 I1,0B1,0 13,5 0,55dehijm

100

14 1,0 1,5 I1,0B1,5 17,5

0,55abcdeghjln

100

15 1,0 2,0 I1,0B2,0 13

2,19bcdeghijlmno

100

16 1,5 0,0 I1,5B0,0 20,5

1,64abcfgjknp

100

17 1,5 0,5 I1,5B0,5 11 1,09ehimoq

100

18 1,5 1,0 I1,5B1,0 13,5

0,84dehijmoqr

100



88

19 1,5 1,5 I1,5B1,5 11,5 0,55dehoqrs

100

20 1,5 2,0 I1,5B2,0 10,5 0,55eoqst

100

21 2,0 0,0 I2,0B0,0 20,5 0,55acfgkpu

100

22 2,0 0,5 I2,0B0,5 14,5

1,64bcdeghijlmnoqrstv

100

23 2,0 1,0 I2,0B1,0

12,5

2,95bcdeghijlmnoqrstv

w

100

24 2,0 1,5 I2,0B1,5 10,67 0,82

ehoqstv

wx

100

25 2,0 2,0 I2,0B2,0 9,67 0,82oqstwx

100


IBA dan BAP terhadap berat segar dan berat

kering kalus sirih hitam (Piper betle L.)

Pertumbuhan kalus dapat diketahui melalui

berat segar dan berat kering kalus. Berdasarkan hasil

pengamatan (Tabel .2) dapat diketahui bahwa pada

perlakuan konsentrasi IBA 2,0 mg/L dan BAP 2,0

mg/L memiliki nilai rerata berat segar dan berat

kering kalus terbaik, yaitu rerata berat segar 0,8507

gram dan rerata berat kering 0,0769 gram. Sedangkan

pada perlakuan konsentrasi zat pengatur tumbuh IBA

2,0 mg/L dan BAP 0,0 mg/L memiliki nilai rerata

berat segar dan berat kering kalus paling terendah,

dengan nilai rerata masing-masing 0,0554 gram dan

0,0057 gram. Hasil berat segar dan berat kering kalus

yang berbeda-beda tersebut dikarenakan tidak semua

sel memiliki respon yang sama terhadap suatu ZPT

yang diberikan.

Tabel 2 Rerata berat segar dan berat kering kalus

sirih hitam selama 8 minggu masa kultur

No.

Konsentrasi

ZPT (mg/L)

Kode

Rerata

berat segar

kalus

(gram)

Rerata berat

kering kalus

(gram) IBA BAP

1 0,0 0,0 I0,0B0,0 0,0125

0,0028a

0,0019

0,0005a

2 0,0 0,5 I0,0B0,5 0,3478

0,0918b

0,0325

0,0086b

3 0,0 1,0 I0,0B1,0 0,3626

0,0499bc

0,0376

0,004bc

4 0,0 1,5 I0,0B1,5 0,4953

0,0625bcd

0,0488

0,0042bcd

5 0,0 2,0 I0,0B2,0 0,3993

0,1228bcde

0,0376

0,0119bcde

6 0,5 0,0 I0,5B0,0 0,0649

0,0101f

0,0064

0,0013f

7 0,5 0,5 I0,5B0,5 0,4982

0,0175bdeg

0,0019

0,0031bdeg

8 0,5 1,0 I0,5B1,0 0,3822

0,0321bcdeh

0,0375

0,0058bcdegh

9 0,5 1,5 I0,5B1,5 0,3684

0,0946bcdeghi

0,0364

0,0099bcdeghi

10 0,5 2,0 I0,5B2,0 0,5862

0,0786degij

0,05478

0,0069deghij

11 1,0 0,0 I1,0B0,0 0,0743

0,0146fk

0,00702

0,0013fk

12 1,0 0,5 I1,0B0,5 0,1975

0,0,0124beil

0,0202

0,003beil

13 1,0 1,0 I1,0B1,0

0,3499

0,0452bcdehi

m

0,035

0,0037 bcehim

14 1,0 1,5 I1,0B1,5 0,6406

0,0418dejn

0,0543

0,0076bcdeghijn

15 1,0 2,0 I1,0B2,0 0,8127

0,0487o

0,0702

0,0056jno

16 1,5 0,0 I1,5B0,0 0,0692

0,0231afkp

0,0061

0,0017fkp

17 1,5 0,5 I1,5B0,5 0,2982

0,0185bceimq

0,0327

0,0043bcehimq

18 1,5 1,0 I1,5B1,0 0,2969

0,0181bceimqr

0,0305

0,0021bcehimqr

19 1,5 1,5 I1,5B1,5 0,7694

0,0773jnos

0,0647

0,0145bcdeghijmn

oqrs

20 1,5 2,0 I1,5B2,0 0,6567

0,0323enst

0,0557

0,0075defghijnost

21 2,0 0,0 I2,0B0,0 0,0554

0,0079fkpu

0,0057

0,0018akpu

22 2,0 0,5 I2,0B0,5 0,7372

0,0429jnostv

0,066

0,0081degnostv

23 2,0 1,0 I2,0B1,0 0,7599

0,1093gjnostv

w

0,0714

0,011dgjnostvw

24 2,0 1,5 I2,0B1,5

0,7985

0,0805jnostvw

x

0,0683

0,0107degjnostvw

x

25 2,0 2,0 I2,0B2,0 0,8507

0,0734ostvwx

0,0769

0,0108jnostvwx

Setiap sel mempunyai kepekaan sendiri

terhadap ZPT yang diberikan, selain itu waktu

pembelahan sel untuk memperbanyak diri tidaklah

sama karena siklus selnya akan selalu berbeda-beda.

Perbedaan laju pertumbuhan juga dipengaruhi oleh

kemampuan jaringan untuk menyerap zat-zat hara

yang tersedia, hal ini banyak dipengaruhi oleh aerasi

dan tekstur kalus. Kalus yang terlalu padat dan

kompak mempunyai kemampuan menyerap zat hara

lebih rendah daripada tekstur kalus yang tidak terlalu

padat (15).

Pengaruh penambahan IBA dan BAP terhadap

berat segar dan berat kering kalus sirih merah (Piper

crocatum Ruiz dan Pav.), menyatakan bahwa hasil

terbaik dalam penelitian tersebut adalah dengan

penambahan IBA 1,5 mg/L dan BAP 1,5 mg/L yaitu

0,2260 gram untuk rerata berat segar dan 0,0432

gram untuk rerata berat kering. Selain itu menurut

Akaneme dan Ene (2005) pada kombinasi

konsentrasi IBA 2,0 mg/L dan BAP 0,5 mg/L

diperoleh berat segar kalus Pinus caribaea Mor.

tertinggi yaitu 0,693 gram (13).



89


IBA dan BAP terhadap morfologi kalus daun sirih

hitam (Piper betle L.)

Tekstur kalus merupakan salah satu penanda

yang dipergunakan untuk menilai pertumbuhan suatu

kalus. Dari hasil pengamatan menunjukkan bahwa

tekstur kalus yang dihasilkan pada penelitian ini

bertipe remah, kompak dan remah. (Tabel .3). Kalus

hasil dari perlakuan terbaik dapat dilihat pada

Gambar 1.

Tekstur kalus kompak merupakan efek dari

sitokinin yang berperan dalam transport zat hara.

Sistem transport sitokinin dari bagian basal ke apeks

akan membawa air dan zat hara melalui pembuluh

pengangkut dan mempengaruhi potensial osmotik

dalam sel. Penambahan sukrosa dalam medium akan

mengalir melalui pembuluh floem dan menimbulkan

tekanan turgor. Tekanan tersebut muncul akibat

adanya perbedaan konsentrasi larutan, sehingga air

dan zat hara (sukrosa) dari medium akan masuk

kedalam sel melalui cara osmosis. Hal ini akan

membuat dinding-dinding sel semakin kaku,

sehingga sel kalus akan menjadi kompak [16].

Kalus yang baik untuk digunakan sebagai

bahan penghasil metabolit sekunder yaitu memiliki

tekstur kompak (non friable). Tekstur kalus yang

kompak dianggap baik karena dapat mengakumulasi

metabolit sekunder lebih banyak [17].

Dalam penelitiannya tentang pengaruh

penambahan IBA dan BAP terhadap morfologi kalus

eksplan lengkeng (Dimocarpus longan Lour),

menyatakan bahwa dalam penelitian tersebut dengan

penambahan kombinasi ZPT IBA dan BAP (0,0; 0,5;

1,0; 2,0; 3,0 mg/L) menghasilkan kalus berwarna

putih kecokelatan dengan tektur kompak dan remah [14]. Kalus yang terbentuk dari eksplan daun binahong

(Anredera cordifolia L.) pada media kombinasi IBA

0,5 ppm dan BAP 0,5 ppm berwarna hijau dengan

tekstur kompak [18].

Gambar 1. Morfologi kalus dari perlakuan IBA 2

mg/L dan BAP 2 mg/L umur 8 minggu

4. KESIMPULAN

Berdasarkan hasil penelitian, dapat disimpulkan

sebagai berikut:

1. Kombinasi konsentrasi IBA dan BAP

berpengaruh terhadap lama waktu induksi kalus

sirih hitam (Piper betle L.), pada konsentrasi

IBA 2,0 mg/L dan BAP 2,0 mg mg/L

menunjukkan hasil lama waktu paling cepat dari

ke-24 perlakuan yang lain dalam menginduksi

kalus sirih hitam, yaitu ±9,67 hari (10 hari).

Variasi konsentrasi IBA dan BAP berpengaruh

terhadap persentase eksplan yang membentuk

kalus sirih hitam.

2. Kombinasi konsentrasi zat pengatur tumbuh

IBA dan BAP berpengaruh terhadap berat segar

dan berat kering kalus sirih hitam. kombinasi

konsentrasi zat pengatur tumbuh yang optimal

untuk berat segar dan berat kering kalus sirih

hitam adalah IBA 2,0 mg/L dan BAP 2,0 mg/L,

yang menghasilkan rerata berat segar dan berat

kering kalus sirih hitam tertinggi, yaitu 0,8507

gram dan 0,0769 gram.

3. Kombinasi konsentrasi zat pengatur tumbuh

IBA dan BAP mempengaruhi morfologi kalus

eksplan daun sirih hitam. Morfologi kalus yang

terbentuk memiliki variasi warna dan tekstur.

Beberapa kalus yang dominan terbentuk

memiliki warna putih kecokelatan dan tekstur

kompak dan remah.

4. Perbandingan konsentrasi zat pengatur tumbuh

IBA dan BAP yang optimal untuk induksi kalus

sirih hitam adalah IBA 2,0 mg/L dan BAP 2,0

mg/L. Pada konsentrasi tersebut rerata berat

segar dan berat kering tertinggi yang dihasilkan

adalah 0,8507 gram dan 0,0769 gram kalus sirih

hitam.

Saran dari penelitian ini adalah penambahan

kombinasi konsentrasi IBA dan BAP mampu

mempercepat waktu induksi kalus dan meningkatkan

berat segar serta berat kering kalus, sehingga

pemberian kombinasi IBA dan BAP pada konsentrasi

yang lebih tinggi perlu dilakukan untuk lebih

mempercepat waktu induksi kalus dan meningkatkan

berat segar serta berat kering kalus.


Terimakasih kami ucapkan kepada DRPM

DIKTI yang telah mendanai penelitian ini dalam

skim PTUPT






90


ini.

DAFTAR PUSTAKA

1. Rashif HR, Syafnir L, dan Rismawati E. Uji

Aktivitas antioksidan akstrak bertingkat

daun sirih hitam (Piper acre Blume.)

dengan peredaman radikal bebas DPPH

(1,1-Difenil-2-Pikril Hidrazil). Bandung:

Prodi farmasi FMIPA, Universitas Islam

Bandung; 2015.

2. Rija’i AJ. Telaah fitokimia kandungan

metabolit sekunder dalam ekstrak daun

sirih hitam (Piper betle L.) dan uji

bioktivitasnya terhadap larva udang

(Artemia salina Leach.) (skripsi). Bandung: Universitas Islam Bandung; 2015.

3. Hermawan A, Eliyani H, dan Tyasningsih W.

Pengaruh ekstrak daun sirih (Piper betle

L.) terhadap pertumbuhan

Staphylococcus aureus dan Escherichia

coli dengan metode diffusi disk. Surabaya:

Universitas Airlangga; 2007. 4. Sastrohamidjojo, S. Obat asli Indonesia. Edisi

VI. Jakarta: Dian Rakyat; 2001.

5. Lestari EG. dan Mariska I. Kultur in vitro

sebagai metode pelestarian tumbuhan

Obat Langka. Buletin Plasma Nutfah.1997; II(1): 1-8.

6. Azwin IZS. dan Supriyanto. Penggunaan BAP

dan thidiazuron untuk perbanyakan

tanaman gaharu (Aquilaria malaccensis

Lamk.). Bogor: Media Konservasi. 2006;

XI(3): 98–104.

7. Elimasni I, Nurwahyuni, dan Sofyan MZ.

Inisiasi in vitro biji muda terong belanda

(Solanum betaceum Cav.) Berastagi

Sumatera Utara pada komposisi media

dan zat tumbuh yang berbeda. Jurnal Biologi Sumatera. 2006;1(1)

8. Siregar LH, Siregar LAM, dan Putri LAP.

Pengaruh benzil amino purin dan asam

asetat naftalena terhadap pertumbuhan

akar Boesenbergia flava secara in vitro.

Jurnal Online Agroekoteknologi. 2013; 1(3)

9. Zulkarnain. Kultur jaringan tanaman; solusi

perbanyakan tanaman budi daya. Jakarta:

Bumi Aksara; 2011.

10. Paramartha AI, Ermavitalini D, dan Nurfadilah

S. Pengaruh penambahan kombinasi

konsentrasi ZPT NAA dan BAP terhadap

pertumbuhan dan perkembangan biji

Dendrobium taurulinum J.J Smith secara

in vitro. Jurnal Sains dan Seni ITS. 2012;

1(1).

11. Taiz L dan Zeiger E. Plant physiology. 3rd

edition. Sunderland: Sinauer Associates,

Inc. Publishers; 2002.

12. Santoso U dan Nursandi F. Kultur jaringan

tanaman. Malang: UMM Press; 2002.

13. Ari NT. Pengaruh variasi konsentrasi zat

pengatur tumbuh indole butyric acid

(IBA) dan Benzyl amino purin (BAP)

terhadap induksi kalus dan kandungan

senyawa sirih merah (Piper crocatum

Ruiz dan Pav.) (skripsi). Tidak

dipublikasikan. Universitas Airlangga; 2015.

14. Widyarso M. Kajian penggunaan BAP dan

IBA untuk merangsang pembentukan

tunas lengkeng (Dimocarpus longan Lour)

varietas pingpong secara in vitro.

(skripsi). Surakarta: Fakultas Pertanian

Universitas Sebelas Maret; 2010.

15. Lakitan B. Fisiologi pertumbuhan dan

perkembangan tanaman. Jakarta: PT. Raja

Grafindo Persada; 1996.

16. Purwianingsih, Widi., Kusdianti R, dan Yuniarti

L. Anatomi kalus yang berasal dari

eksplan daun Catharanthus roseous (L).

G. Don (Tapak Dara). Jurnal Seminar

Nasional Bioteknologi; 2007. 17. Tsuro M. Comparative Effect of different

types of cytokinin for shoot formation

and plant regeneration in leaf-derived

callus of lavender (Lavandula vera DC). Japan: Laboratory of Plant Breeding

Science, Faculty of Agriculture, Kyoto

Prefectural University, Shimogamo-Hangi

Sakyoku, Kyoto; 1998:606-8522.

18. Sugiyarto L. dan Kuswandi PC. Induksi kalus

daun binahong (Anredera cordifolia L.)

dalam upaya pengembangan tanaman

obat tradisional. Yogyakarta: Jurdik Biologi, Universitas Negeri Yogyakarta

(UNY). Journal Sains Dasar; 2014: 3 (1): 56

– 60.



91

Artikel Penelitian

Galuh Ratmana Hanum1*), Syahrul Ardiansyah1, Puspita Handayani2

1Fakultas Ilmu Kesehatan, Universitas Muhammadiyah Sidoarjo 2Fakultas Ekonomi dan Bisnis, Universitas Muhammadiyah Sidoarjo


ABSTRAK

Cincau Hitam merupakan salah satu makanan yang memiliki daya simpan yang pendek, maka penambahan

formalin sering digunakan supaya daya simpan cincau hitam semakin lama. Formalin dapat menimbulkan efek

berbahaya bagi kesehatan. Salah satu cara untuk menurunkan kadar formalin pada makanan yaitu menggunakan

daun pandan (Pandanus amarillifolius Roxb.) yang memiliki kandungan saponin. Tujuan penelitian ini yaitu

untuk mengetahui konsentrasi dan lama perendaman terbaik sari daun pandan dalam menurunkan kadar

formalin. Sampel yang digunakan yaitu sampel cincau hitam yang selanjutnya direndam dengan variasi konsentrasi sari daun pandan 15%, 20% dan 25% selama 15, 30, 45 dan 60 menit. Parameter yang digunakan

yaitu uji formalin secara kualitatif, uji formalin secara kuantitatif, kadar air dengan metode gravimetri, kadar

karbohidrat dan uji kalsium, data diuji statistika menggunakan Two Way Anova. Hasil penelitian ini konsentrasi

dan lama perendaman terbaik sari daun pandan (Pandanus amaryllifolius Roxb.) pada cincau hitam terhadap

penurunan kadar formalin yaitu 25% dengan perendaman 60 menit.

Kata kunci: Cincau hitam, Sari daun pandan (Pandanus amarillifolius Roxb.), Formalin, Kadar Formalin.

The Effectiveness of Pandan (Pandanus Amarilifolius Roxb) Leaves

for A Natural Reducted Formalin Level of Black Grass

ABSTRACT

Black grass jelly is one of the foods that has a short shelf life, so formaldehyde is often used to save black grass

jelly power for longer time. Formalin can have harmful effects on health. One way to reduce formalin levels in

foods is to use pandan leaves (Pandanus amarillifolius Roxb.) Which has saponin content. The purpose of this

study was to study the concentration and soaking time of the best pandan leaf extract to reduce formalin levels.

The samples used were samples of black grass jelly which were then soaked with variations in pandan leaf extract concentration of 15%, 20% and 25% for 15, 30, 45 and 60 minutes. The parameters used were

qualitative formalin test, quantitative formalin test, air content, calcium level and calcium test, statistical data

collected using Two Way Anova. The results of this study were the best concentration and soaking time of

pandan leaf extract (Pandanus amaryllifolius Roxb.) In black grass against a decrease in formalin levels of

25% with 60 minutes soaking.

Keywords: Black grass jelly, pandan leaf extract (Pandanus amarillifolius Roxb.), Formalin, formalin levels.

1. PENDAHULUAN

Penggunaan bahan tambahan pangan (BTP)

adalah meningkatkan atau mempertahankan nilai

gizi, kualitas daya simpan dan membuat bahan

pangan lebih mudah diolah dan dihidangkan[1]. Salah

satu bahan tambahan pangan (BTP) yang sering

digunakan untuk makanan adalah bahan pengawet.

Bahan pengawet masih sering disalahgunakan

oleh para produsen karena harganya murah dan

mudah didapat. Selain itu, para produsen belum

mengerti efek yang ditimbulkan dari penggunaan

bahan pengawet. Bahan pengawet yang sering

disalahgunakan untuk makanan adalah formaldehyde

atau formalin. Formalin biasanya digunakan untuk

industri, medis, desinfektan, deterjen, kosmetik,

karet, kulit dan besi [2].

Formalin merupakan salah satu bahan beracun

dan berbahaya bagi kesehatan manusia. Jika kadar

formalin (formaldehyde) di dalam tubuh cukup

tinggi, maka akan membentuk reaksi kimia antara

formalin dengan zat yang ada di dalam sel sehingga

dapat menekan fungsi sel dan kematian sel akibat

adanya keracunan di dalam tubuh Hal tersebut juga

terjadi pada makanan yang diberi formalin juga dapat

menyebabkan beberapa gangguan kesehatan.

Efektivitas Pandan (Pandanus Amarilifolius Roxb) Sebagai Pereduksi Alami Kadar Formalin pada Cincau Hitam




92

seperti iritasi lambung, alergi, karsinogenik,

mutagen, diare atau kencing bercampur darah dan

kematian [1].

Daun pandan (Pandanus amaryllifolius

Roxb.) memiliki kandungan saponin, alkaloida,

flavonoid, tanin, polifenol dan zat warna [6].Saponin

terdiri dari aglycone (sapogenin bebas) dan

sapogenin yang dapat mengikat sakarida. Sapogenin

bersifat lipofilik sedangkan sakarida bersifat

hidrofilik. Sehingga saponin bersifat amfifilik

(amphiphilic atau surfactant properties) yang dapat

menurunkan kadar formalin.

Saponin dapat menurunkan kadar formalin

melalui reaksi saponifikasi atau reaksi pembentukan

sabun. Mekanisme adalah surfaktan mengikat

partikel formalin dengan menurunkan tegangan

permukaan sehingga surfaktan memiliki daya

pembersih yang lebih baik dibandingkan air. Setelah

saponin mengikat formalin, maka saponin akan larut

dan membentuk misel. Misel berbentuk bulat dan

lonjong merupakan bagian kepala yang mengarah

keluar dan berinteraksi dengan air dan formalin

sehingga bersifat polar dan menunjukkan formalin

terbungkus sehingga dapat larut bersama air [3].

Cincau dikenal di seluruh masyarakat, terlebih

sebagai hidangan penyegar yang disajikan dengan

cara memotong gel tersebut menjadi kubus atau

diserut dan dihidangkan dengan larutan sirup encer,

dengan atau tanpa penambahan buah-buahan

didalamnya. Cincau hitam mengandung komponen

pembentuk gel berupa hidrokoloid yang homogen

dengan sejumlah pati dan abu Qi yang mampu

membentuk gel yang kokoh dan kuat. Tujuan dari

penelitian ini adalah mengetahui konsentrasi dan

lama perendaman terbaik sari daun pandan dalam

menurunkan kadar formalin.


Sampel penelitian yang digunakan adalah

cincau hitam dan daun pandan yang digunakan

diperoleh di Pasar larangan dengan 3 kali

pengulangan. Tempat penelitian di Laboratorium

Kimia Terapan D-IV Teknologi Laboratorium Medis

Fakultas Ilmu Kesehatan Universitas

Muhammadiyah Sidoarjo.


adalah tabung reaksi, rak tabung reaksi, batang

pengaduk, sendok kecil, pipet tetes, pipet ukur, bulb,

beaker glass, corong, kertas saring, pisau, kaca arloji,

baskom, blender, krustang, wrap cling, tissu, lap,

cawan petri, desikator, oven, neraca analitik, statif,

klem, hotplate, buret, statif.

Bahan yang digunakan dalam penelitihan ini

antara lain Formalin (Formaldehyde) (p.a; Bio

analitika), Akuades (PT. Brataco), H2O2 (p.a; Merck),

NaOH (p.a; Merck), HCl (p.a; Merck), KmnO4 (p.a;

Merck), indikator fenolftalein (p.a; Merck), H2SO4

(p.a; Merck), asam glasial (p.a; Merck), CuSO4 (p.a;

Merck), Asam sitrat (p.a; Merck), NaCO3 (p.a;

Merck), KI (p.a; Merck), Na2S2O3 (p.a; Merck),

amilum (p.a; Merck), ammonium oksalat (p.a;

Merck), metil merah (p.a; Merck), ammonia (p.a;

Merck), eter (p.a; Merck) dan asam asetat (p.a;

Merck).

Pengujian formalin secara kualitatif dilakukan

dengan menggunakan metode KMnO4. Langkah

pertama yaitu menghaluskan cincau hitam hingga

halus, selanjutnya ditimbang sebanyak 2g.

Menambahkan 30ml akuades, selanjutnya menyaring

larutan sampel dan mengambil filtratnya lalu

memasukkan 2ml filtrat ke dalam tabung reaksi.

Menambahkan 1 tetes KMnO4 dan menggoyang-

goyang tabung. Hasil positif formalin ditunjukkan

dengan hilangnya warna pink [6].

Pengujian formalin secara kuantitatif

dilakukan dengan Menimbang 2,5g sampel cincau

hitam yang sudah dihaluskan kemudian

menambahkan 25ml akuades, mengambil filtrat

dengan menyaring. Selanjutnya ambil 10ml filtrat

yang ditambahkan 25ml H2O2 dan 50 mL NaOH

0,1N. Memanaskan sampel pada penangas sampai

buihnya hilang, kemudian menambahkan indikator

PP dan menitrasi dengan HCl 0,1N [6]

.

Uji kadar air dengan cara cawan kosong beserta

tutupnya dikeringkan dalam oven selama 15 menit

kemudian didinginkan dalam desikator selama 10-20

menit dan menimbang cawan kering. Menimbang

sampel sebanyak 5g dengan menggunakan cawan

kering. Kemudian cawan sampel di keringkan dalam

oven selama 2 jam dengan suhu 100oC – 105oC

dengan keadaan terbuka. Selanjutnya cawan yang

berisi sampel dipindahkan dalam desikator dengan

menutup cawan dan selanjutnya ditimbang. Cawan

kembali dimasukkan ke dalam oven sampai

mendapatkan berat konstan.

Proses pengujian karbohidrat dilakukan

dengan cara sampel ditimbang sebanyak 20g atau

0,5g sampel hasil pengeringan. Sampel dimasukkan

ke labu didih kemudian ditambahkan 40 mL larutan

HCl 3% dan didihkan selama 2 jam dengan

pendingin tegak. Larutan didinginkan, selanjutnya

dinetralkan dengan beberapa tetes NaOH 30%. Diuji

dengan lakmus merah dan ditambahkan sedikit asam



93

asetat glasial agar suasana sedikit asam. Larutan

dipindahkan di labu ukur 100ml dan disaring,

selanjutnnya filtrat dipipet 10ml dan dimasukkan

dalam erlenmeyer. Larutan ditambahkan 25ml

larutan Luff, 15ml aquades. Larutan dipanaskan pada

suhu konstan dengan diusahakan mendidih dalam

waktu 3 menit dan didihkan hingga 10 menit. Larutan

didinginkan pada penangas es, selanjutnya

ditambahkan larutan KI 20% dan H2SO4 25% dengan

perlahan. Larutan dititrasi dengan Na2S2O3 0,1N dan

amilum 1% sebagai indikator. Kemudian dilakukan

blanko sebagai koreksi dan volume penitran

terkoreksi kemudian dikonversi berdasarkan tabel

Luff schoorl.

Larutan hasil pengabuan dipipet 20 – 100ml

dan dimasukkan kedalam erlenmeyer. Tambahkan

25-50ml aquades, 10ml larutan ammonium oksalat

jenuh dan 2 tetes indikator metil merah. Tambahkan

ammonia encer untuk memberi suasana basa dan buat

larutan menjadi sedikit asam dengan beberapa tetes

asam asetat hingga warna larutan (pH 5,0). Panaskan

larutan hingga mendidih dan diamkan selama

minimum 4 jam atau semalam pada suhu kamar.

Saring larutan dengan kertas saring dan bilas dengan

akuades panas. Lubangi ujung kertas saring dan bilas

lalu pindahkan endapan dengan H2SO4 encer panas

ke dalam erlenmeyer bekas tempat mengendapkan

kalsium. Kemudian bilas satu kali mengunakan air

panas. Dalam keadaan panas (70-80°C) lakukan

titrasi dengan KMnO4 0,01 N sampai warna merah

jambu kemudian masukkan kertas saring dan

lanjutkan titrasi dengan KMnO4 0,01 N

Data yang didapatkan dari hasil pengukuran

akan dianalisis dengan menggunakan program SPSS

versi 16.0, kemudian dilihat distribusi dan

homogenitas dari data. Jika didapatkan data dengan

distribusi normal atau homogen (P>0,05) maka

dilakukan uji parametrik Two Way Anova karena

memenuhi syarat statistik parametrik


Tabel 1. Hasil Uji Formalin Secara Kualitatif

Sampel Keterangan Pedagang 1 + (positif) Pedagang 2 + (positif)

Gambar 1. Uji Formalin Secara Kualitatif

Tabel 2. Hasil Uji Kadar Formalin Secara Kuantitatif

(mg/g)

Waktu

Perendaman

Konsentrasi

15% 20% 25%

Kontrol 0,1055 0,1055 0,1055

Pre 0,3010 0,3010 0,3010 15 menit 0,1515 0,1249 0,1219

30 menit 0,1436 0,1106 0,1062

45 menit 0,1219 0,1062 0,1042

60 menit 0,1156 0,1076 0,0896

Tabel 3. Hasil Uji Kadar Air (%)

Waktu

Perendaman

Konsentrasi

15% 20% 25%

Kontrol 95,10 95,10 95,10

Pre 82,80 82,80 82,80

15 menit 95,60 96,80 97,80

30 menit 95,60 96,90 98,30

45 menit 96,50 97,40 98,20

60 menit 96,90 97,70 98,90

Tabel 4. Hasil Uji Kadar Karbohidrat (%)

Waktu

Perendaman

Konsentrasi

15% 20% 25%

Kontrol 5,420 5,420 5,420

Pre 4,870 4,870 4,870

15 menit 6,570 5,800 5,400

30 menit 6,550 6,310 6,620

45 menit 6,420 6,550 6,550

60 menit 5,150 6,020 7,050

Tabel 5. Hasil Uji Kadar Kalsium (%)

Waktu

Perendaman

Konsentrasi

15% 20% 25%

Kontrol 0,2848 0,2848 0,2848 Pre 0,1991 0,1991 0,1991

15 menit 0,3764 0,3633 0,2738

30 menit 0,2573 0,2487 0,2830

45 menit 0,3100 0,2590 0,3040

60 menit 0,2593 0,2930 0,4240

Uji kualitatif formalin merupakan uji

sederhana yang dilakukan untuk mengetahui ada atau



94

tidak formalin dalam bahan pangan. Pada penelitian

ini kadar formalin pada cincau hitam diuji secara

kualitatif menggunakan KMnO4 didapatkan hasil

pada tabel 1. Pada analisis kualitatif, perubahan

warna yang terjadi pada larutan KMnO4 disebabkan

karena aldehid mereduksi KMnO4 sehingga warna

larutan yang awalnya berwarna ungu berubah

menjadi tidak berwarna. Hasil positif mengandung

formalin ditandai dengan pudarnya warna ungu.

Berdasarkan tabel 2, kadar formalin sampel

yang telah diberi perlakuan variasi konsentrasi dan

perendaman kadar formalin pada cincau hitam dalam

sari daun pandan didapatkan hasil terbaik untuk

menurunkan kadar formalin yaitu pada konsetrasi

25% dalam waktu perendaman 60 menit dari kadar

formalin 0,3010 mg/g menjadi 0,0896 mg/g dengan

kata lain turun sebesar 0,2114 mg/g (70,24%). Hal ini

menunjukkan bahwa semakin besar dan lama

perendaman sampel pada sari daun pandan maka

semakin kecil kadar formalin dalam sampel. semakin

besar konsentrasi dan semakin lama perendaman sari

daun pandan terhadap sampel yang berformalin,

maka semakin banyak ikatan formalin terputus dari

struktur komponen sehingga kadar formalin semakin

rendah [4]

Berdasakan tabel 3, hasil penelitian uji kadar

air pada sampel cincau hitam menunjukkan sampel

yang memiliki kadar air tertinggi yaitu sampel cincau

hitam perendaman dengan sari daun pandan

konsentrasi 25% dengan lama perendaman 60 menit

sebesar 98,9% dan kadar rendah pada pre yaitu

82,80%. Sampel yang ditambah dengan formalin

memiliki kadar air yang sedikit daripada sampel yang

tidak ditambah formalin[5]. Formalin yang

berinteraksi dengan air akan mengisi ruang cincau

hitam sehingga kadar air semakin rendah. Sedangkan

cincau hitam yang memiliki kadar formalin yang

lebih rendah memiliki kadar air yang lebih tinggi

karena semua ruang pada cincau hitam diisi oleh

kandungan air yang tidak berinteraksi dengan

senyawa lainnya.

Pada tabel 4, hasil yang didapatkan sampel

dengan rendaman sari daun pandan 25% selama 60

menit memiliki karbohidrat sebesar 7,05%. adanya

senyawa saponin dari daun pandan dapat menambah

kadar karbohidrat pada sampel. Hal ini dikarenakan

saponin yang di hidrolisis dengan asam dapat

menghasilkan gula, aglikon (sapogenin) dan asam

uronat.

Berdasarkan tabel 5, hasil yang didapat,

kadar kalsium tertinggi didapatkan pada pada sampel

yaitu 0,4240 mg. Hasil kadar kalsium tersebut

memiliki kadar yang lebih rendah dibanding dengan

literatur yakni 91 mg. Hal tersebut sesuai dengan

pernyataan Rakhmina (2016), yang mengatakan

bahwa faktor yang mempengaruhi kadar kalsium

tersebut salah satunya yaitu pemanasan. KMnO4

berlebih akan mengoksidasi zat organik dengan

prosedur lamanya pendidihan yaitu 10 menit [7].

Sehingga pendidihan sampel kurang dari lama waktu

yang ditentukan ada kemungkinan zat organik pada

sampel masih belum dioksidasi secara sempurna oleh

KMnO4 berlebih yang dapat mengakibatkan kadar

lebih rendah dari kadar seharusnya.

4. KESIMPULAN

Konsentrasi dan lama perendaman terbaik sari

daun pandan (Pandanus amaryllifolius Roxb.) pada

cincau hitam terhadap penurunan kadar formalin

pada cincau hitam yaitu 25% dengan perendaman 60

menit dengan kadar formalin sebesar 0,0896.

5. UCAPAN TERIMA KASIH

Ucapan terima kasih dan penghargaan diberikan

kepada :

1. Direktur Penelitian dan Pengabdian

Masyarakat UMSIDA yang telah mendanai

peelitian ini.

2. Laboran dan Mahasiswa Prodi Teknologi

laboratorium yang telah membantu penelitan

ini.

3. Editor yang telah menelaah dan mereview

artikel ini.





ini.

DAFTAR PUSTAKA

1. Cahyadi, W. 2009. Analisis dan Aspek

Kesehatan Bahan Tambahan Pangan. Edisi

II cetakan III. Jakarta: PT. Bumi Aksara.

2. WHO. 2002. Concise International Chemocal

Assesment Document 40 Formaldehyde.

Geneva: World Health Organization.

3. Gusviputri, A., Njoo, M. P. S., Aylianawati, dan

Nani, I. 2013. Pembuatan Sabun dengan

Lidah Buaya (Aloe vera) sebagai Antiseptik

Alami. Widya Teknik. Jurnal Volume 12 (1),

Hal 11-21.

4. Daniela, C., Herla, R dan Hotnida, S. 2018.

Potensi Sari Lidah Buaya dan Sari Lemon



95

dalam Mereduksi Formalin pada Tahu.

Jurnal SainHealth Vol. 2 (1), 13-20.

5. Farid, M. 2014. Pengaruh Suhu dan Lama

perendaman dalam Pelarut Air terhadap

Kadar Formalin Ikan Asin Belanak (Mugil

cephalagus). Fakultas Sains dan Teknologi,

Malang

6. Mirna., La Karimuna dan Nur,. A. 2016. Analisis

Formalin pada Ikan Asin di Beberapa

Pasar Tradisional Kota Kendari. J. Sains

dan Teknologi Pangan. Volume 1 (1), 31-36.

7. SNI 06-6989.22-2004 Bagian 22 : Cara uji nilai

permanganat secara titrimetri.



96

Halaman Kosong



97

Artikel Penelitian

IAK Pramushinta1

1Program Studi Biologi Universitas PGRI Adi Buana, Surabaya *) E-mail: [email protected]

ABSTRAK

Penelitian ini bertujuan untuk mengidentifikasi kandungan flavonoid pada tanaman bayam merah dengan

pemberian POC dari limbah cair tahu dan serbuk tulang ikan bandeng. Rancangan penelitian menggunakan

Rancangan Acak Lengkap (RAL) dengan empat perlakuan enam ulangan. Perlakuan POC yang digunakan terdiri

dari konsentrasi 0%, 10%, 20% dan 40%. Peningkatan pertumbuhan tinggi tanaman, berat massa basah dan

kandungan senyawa flavonoid pada konsentrasi optimum 20% pada bayam merah. Pemberian POC pada

konsentrasi 40% mengalami penurunan disebabkan karena tingginya kandungan pupuk organik cair.

Kata kunci: Pupuk Organik cair, limbah cair tahu, flavonoid.

Effect og Giving Liquid Organic Fertilizer from Tofu Liquid Waste

and Milkfish Powder on the Flavonoid Content of Red Spinach Leaves (Althernantera amoena Voss)

ABSTRACT

This study aims to identify the flavonoid content of red spinach plants by giving POC from tofu liquid waste and

milkfish bone powder. The study design used a Completely Randomized Design (CRD) with four treatments of

six replications. The POC treatment used consisted of concentrations of 0%, 10%, 20% and 40%. Increased

growth in plant height, weight of wet mass and content of flavonoids at optimum concentration of 20% in red

spinach. Giving POC at a concentration of 40% has decreased due to the high content of liquid organic

fertilizer.

Keywords: Liquid organic fertilizer, tofu liquid waste, flavonoids.

1. PENDAHULUAN

Saat ini bumi sebagai tempat tinggal merupakan

lingkungan yang kaya akan radikal bebas. Radikal

bebas bersifat tidak stabil dan sangat reaktif serta

dapat merebut elektron dari molekul lain dalam

upaya mendapatkan pasangan orbitalnya. Dalam

tubuh manusia terdapat sistem pertahanan untuk

melawan radikal bebas dengan melakukan pola hidup

sehat dan mengkonsumsi buah dan sayur yang

mengandung antioksidan. Senyawa fenolik dan

flavonoid merupakan senyawa yang telah diketahui

mempunyai aktivitas antioksidan yang dapat

menangkal radikal bebas dari luar. Mekanisme cara

kerja antioksidan yang terkandung pada senyawa

flavonoid yaitu dengan menghambat suatu aktivitas

enzim yang terlibat dalam pembentukan radikal

bebas, menghambat peroksidasi lipid. Salah satu

senyawa flavonoid yang terdapat pada tanaman

adalah antosianin yang memberi warna merah sampai

dengan ungu pada tanaman. Antosianin pada tubuh

tanaman berfungsi sebagai pelindung sel tanaman

dari radiasi sinar ultraviolet. Tanaman yang

mengandung senyawa antosianin salah satunya yaitu

bayam merah. Menurut Amien (2006)[2] tanaman

bayam merah memiliki warna daun merah

dikarenakan adanya pigmen merah yang termasuk

senyawa fenolik yaitu antosianin. Berdasarkan

penelitian Ahmed et al (2010)[1], diketahui bayam

merah memiliki potensi antioksidan disebabkan

memiliki kandungan senyawa flavonoid Bayam

merah sebagai salah satu sumber antioksidan yang

perlu dikembangkan karena berpotensi sebagai

sayuran yang sangat bermanfaat karena tingginya

kandungan fenol dan flavonoid yang berfungsi

sebagai senyawa antioksidan, Untuk mendukung

Pengaruh Pemberian Pupuk Organik Cair Dari Limbah Cair Tahu dan

Serbuk Tulang Ikan Bandeng Terhadap Kandungan Flavonoid Daun Bayam Merah (Althernantera amoena Voss)



98

pertumbuhan bayam merah, diperlukan unsur hara

yang mencukupi sebagai penunjang kebutuhan bagi

tanaman tersebut. Pupuk organik cair dinilai dapat

mempercepat laju pertumbuhan dan perkembangan

tanaman bayam merah. Berkaitan dengan hal itu,

penelitian ini menggunakan pupuk organik cair

berbahan baku limbah cair tahu dan serbuk tulang

ikan.

Penelitian ini dilakukan agar mengetahui

kandungan flavonoid dengan pemberian pupuk

organik cair (POC) dari limbah cair tahu dan serbuk

tulang ikan bandeng.


2.1 Alat dan bahan

Alat yang diperlukan untuk pembuatan POC

adalah jerigen besar, spatula, botol air mineral

dengan tutup dilubangi dan selang transparan satu

meter. Untuk penanaman alat yang diperlukan yaitu

polybag, sekop dan gembor. Analisa flavonoid alat

yang diperlukan adalah beaker glass, labu ukur, pipet

ukur, vortec, magnetic stirrer.

Bahan yang digunakan untuk membuat pupuk

organik cair yaitu limbah cair tahu, tulang ikan, EM4,

gula pasir. Bahan yang digunakan untuk menanam

adalah bibit bayam merah dan media tanam. Untuk

analisa flavonoid, bahan yang digunakan adalah

etanol 96%, aquades, NaNO3 5%, kalium asetat, N-

butanol dan asam asetat.

2.2 Tempat dan waktu Penelitian

Penelitian dilaksanakan di Benowo kecamatan

Pakal Kota Surabaya untuk membuat pupuk organik

cair, tempat untuk menumbuhkan bayam merah.

Untuk penelitian analisa flavonoid dilakukan di

laboratorium Biologi dasar FMIPA Universitas PGRI

Adi Buana Surabaya.

2.3 Pembuatan Pupuk Organik Cair

Proses pembuatan serbuk tulang ikan bandeng

dimulai dari membersihkan tulang ikan dari sisa

daging dan kotoran yang menempel pada ikan

kemudian dimasukkan ke dalam panci presto selama

120 menit, kemudian dikeringkan dibawah sinar

matahari hingga menjadi serbuk halus. Serbuk tulang

bandeng dicampur dengan limbah cair tahu, EM4 dan

gula pasir. Campuran tersebut dimasukkan ke dalam

jerigen yang tertutup rapat. Pada tutup jerigen

dilubangi kemudian dimasukkan selang yang

terhubung pada botol air mineral yang sudah berisi

air. Hal ini dilakukan berkaitan dengan sistem

fermentasi anaerob pada pupuk organik cair.

Fermentasi pupuk organik cair dilakukan selama 2

minggu.

2.4 Penanaman Bayam Merah

Bibit tanaman bayam merah ditanam langsung

pada polybag dan disemai selama 2 minggu. Setelah

itu, diberi perlakuan dengan pemberian POC limbah

cair tahu dan serbuk tulang ikan bandeng dengan

empat perlakuan dilakukan tiap minggu. Perlakuan

tersebut memiliki konsentrasi 0% ; 10% ; 20% dan

40%. Tanaman ini dirawat hingga 5 minggu

kemudian dipanen. Hasil panen ditimbang untuk

mengetahui berat massa basah tanaman serta

dilakukan analisis flavonoid.

2.5 Analisa kandungan Flavonoid Pada Daun

bayam merah

Daun bayam merah hasil panen dikeringkan

kemudian dibuat menjadi serbuk. Serbuk daun bayam

merah dilakukan maserasi dengan menggunakan

pelarut etanol. Filtrat hasil maserasi diuapkan

kemudian dilakukan penambahan aquades, kalium

acetat kemudian inkubasi selama 30 menit. Sampel

analisis dengan menggunakan spektrofotometer UV-

Vis dengan panjang gelombang 415 nm. Kandungan

flavonoid total dapat ditentukan dengan serangkaian

kurva standart Quersetin (0-100 μg/mL) dan

flavonoid total dinyatakan sebagai mg quersetin

equivalent (QE)/100 g ekstrak [2].

2.6 Analisis Data

Pengolahan data yang diperoleh dari hasil

penelitian menggunakan SPSS dengan uji F

(ANOVA), dilanjutkan uji LSD/BNT dan untuk

mengetahui konsentrasi optimal dilakukan uji

DUNCAN.


Pertumbuhan tanaman bayam merah parameter

yang diamati berupa tinggi tanaman dan massa berat

basah tanaman. Untuk mengetahui adanya pengaruh

konsetrasi pemberian pupuk POC terhadap

pertumbuhan tanaman bayam merah dibuktikan

dengan analisis ANOVA dan uji BNT. Hasil

ANOVA menunjukkan adanya pertumbuhan tinggi

dan massa berat basah tanaman bayam merah dengan

penambahan POC dari limbah cair tahu dan serbuk

tulang ikan bandeng berbeda secara signifikan

(p<0,05).



99

Selanjutnya dilakukan uji BNT untuk

mengetahui konsentrasi yang sangat berpengaruh

terhadap pertambahan tinggi tanaman bayam.

Table 1. Hasil pengamatan pertumbuhan dan hasil

metabolisme tanaman bayam merah setelah

diberi perlakuan POC limbah cair tahu dan

serbuk tulang ikan bandeng.

No Parameter Uji Total nilai Rerata

1 Tinggi tanaman 78,99 cm 19,74 cm

2 Berat massa basah 17,83 gram 4.45 gram

3 Kadar flavonoid pada daun bayam merah

81,62 nm 20,40 nm

Gambar 1. Hasil Pengamatan pada perkembangan

pertumbuhan bayam merah (Althernantera amoena

Voss) setelah diberi perlakuan POC limbah cair tahu

dan serbuk tulang ikan bandeng (Chanos chanos)

Konsentrasi POC 30% memberi pengaruh yang

paling signifikan terhadap pertambahan tinggi

tanaman bayam merah dengan tinggi tanaman rerata

25,16 cm dibandingkan dengan kontrol yang

memiliki rerata tinggi tanaman 19,81 cm. Hal ini

dapat disebabkan karena POC dari limbah cair tahu

dan serbuk tulang ikan bandeng memiliki kandungan

NPK yang tinggi dan sesuai dengan standar baku

mutu pupuk organik. Kandungan nitrogen pada POC

memiliki manfaat untuk pertumbuhan disebabkan

adanya penyusun komponen sel seperti dalam

pembentukan membran sel diperlukan protein

(Pratiwi, 2017)[6].

Pada konsentrasi 20% juga mengalami kenaikan

yang signifikan untuk parameter berat massa basah

tanaman. Diperoleh rerata seberat 6,5 gram

dibandingkan dengan kontrol yang memiliki rrata

berat massa basah seberat 3,5 gram. Namun, pada

konsentrasi 40% mengalami penurunan yang

signifikan pada parameter berat massa basah dan

tinggi tanaman. Hal tersebut dikarenakan konsentrasi

pupuk yang terlalu pekat sehingga dapat

menyebabkan pertumbuhan tinggi tanaman menjadi

terhambat pada fase vegetative.

Berdasarkan gambar 1 nilai kandungan senyawa

flavonoid tertinggi dijumpai pada ekstrak metanol

daun bayam merah yang diberi POC dengan

konsentrasi 40% memiliki rerata 25,28 nm.

Pemberian POC pada konsentrasi 40% mengalami

penurunan disebabkan karena tingginya kandungan

pupuk. Unsur hara pada POC berupa natrium dan

fosfor yang terlalu pekat mengakibatkan tanaman

bayam merah menjadi terhambat akumulasi

flavonoid. Penghambatan tersebut bisa terjadi karena

adanya penekanan aktivitas enzim PAL yang

mengakibatkan terjadinya efek leher botol pada

sintesis flavonoid (Ghasemzadeh et al, 2012)[4].

Flavonoid pada tanaman biasanya berfungsi

sebagai pigmen, misalnya antosianin. Senyawa ini

berfungsi untuk melindungi klorofil dari paparan

ultraviolet. Flavonoid biasanya dijumpai pada

jaringan epidermis atas sehingga klorofil yang

terdapat pada jaringan parenkim dibawahnya aman

dari paparan ultraviolet. Radiasi ultraviolet dapat

merusak struktur klorofil, bila klorofil rusak maka

proses fotosintesis tanaman akan mengalami

hambatan dan pada akhirnya pertumbuhan tanaman

bisa terganggu (Firmaniar, 2017)[3].

4. KESIMPULAN

Berdasarkan penelitian yang telah dilakukan

dapat ditarik kesimpulan bahwa pemberian POC

berpengaruh secara signifikan (p<0,05) terhadap

pertumbuhan tanaman bayam merah pada tinggi dan

massa berat basah. Analisis kandungan flavonoid

pada daun bayam merah konsentrasi sebesar 40%

dapat meningkatkan pertumbuhan dan kandungan

flavonoid sebesar 1,5 kali pada daun bayam merah.


Terima kasih kepada Laboratorium Biologi

Dasar FMIPA Universitas PGRI Adi Buana

Surabaya, Benowo kecamatan Pakal Kota Surabaya.


“Seluruh penulis menyatakan tidak terdapat potensi

konflik kepentingan dengan penelitian, kepenulisan

(authorship), dan atau publikasi artikel ini.”

0

10

20

30

1 2 3 4

satu

an p

aram

eter

Konsentrasi

tinggi tanaman berat massa kadar flavonoid

10% 20% 30% 40%



100

DAFTAR PUSTAKA

1. Ahmed, S.A., Hanif, S., Iftikhar, T.

Phytochemical Profiling With

Antioxidant And Antimicrobial

Screening Of Amaranthus viridis L. Leaf

And Seed Extracts. Open Journal of

Medical Microbiology. 2010.

2. Amin, I., Norazadiah, Y., Emmi Haida.,

K.I. Antioxidant Activity and Phenolic

Content Raw and Blanched Amaranthus

Spesies. Food Chemistry. 2006; 94(1): 47-

52. 3. Firmaniar, Eviamanasye. Pengaruh

Pemberian Campuran EM4, Tetes tebu

dan Limbah Cair Tahu Sebagai Pupuk

Organik cair Terhadap pertumbuhan

bayam merah (Althernantera amoena

Voss). Yogyakarta. 2017.

4. Ghasemzadeh, A., Azarifar, M., Soroodi,

O., Jaafar, H.Z.E. Flavonoid Compounds

and Their Antioksidant Activity in

Extract of Some Tropical Plants. Journal

of Medicinal Plant Research. 2012; 6(13) : 2639-2643.

5. Nirmalayanti, Komang. Peningkatan

Produksi Dan Mutu Tanaman Bayam

Merah (Amaranthus Amoena Voss)

Melalui Beberapa Jenis Pupuk Pada

Tanah Inceptisols, Desa Pegok,

Denpasar. E-Jurnal agroteknologi tropika

2017; 6(1).

6. Pratiwi, Ambar. Peningkatan

pertumbuhan dan kadar flavonoid total

tanaman bayam merah (Amaranthus

gangeticus L.) dengan pemberian pupuk

nitrogen. 2017; 7(1).



101

Artikel Penelitian

Uji Banding Ekstrak Bawang Hitam dan Ekstrak Bawang Putih (Allium sativum) Sebagai Antifungi Terhadap Pertumbuhan Candida

albicans

Purity Sabila A. 1*)

, Ngadiani 2, Fradina Fitri Budiarti

3

1 Staf Pengajar Prodi Biologi FMIPA Universitas PGRI Adi Buana Surabaya 2 Dosen Prodi Biologi FMIPA Universitas PGRI Adi Buana Surabaya

3 Mahasiswa Prodi Biologi FMIPA Universitas PGRI Adi Buana Surabaya *) E-mail: [email protected]

ABSTRAK

Penyakit infeksi telah menjadi salah satu masalah kesehatan terbesar. Pemberian antibiotik dalam jangka waktu

yang lama dan dilakukan secara tidak rasional dapat menimbulkan masalah baru, yaitu munculnya patogen yang

bersifat resisten. Oleh karena itu, pengobatan alternatif dengan menggunakan bahan dan tanaman herbal saat ini

banyak digunakan. Bawang putih termasuk dalam familia Liliaceae merupakan tanaman herba parenial yang

membentuk umbi lapis. Bawang putih sudah dikenal memiliki potensi medis dan dipercaya dapat berperan

sebagai antifungi karena mengandung allicin didalamnya. Sedangkan bawang hitam merupakan bawang putih

yang telah dipanaskan pada suhu 65-80ºC dengan kelembaban relatif 70-80% selama 30-40 hari tanpa perlakuan

tambahan apapun. Bawang hitam memiliki sifat antibakteri lebih kuat, serta antioksidan dua kali lebih tinggi

dibandingkan dengan bawang putih biasa karena mengandung S-allycysteine. Peneliti tertarik mengangkat judul

penelitian ini dengan tujuan untuk menguji kemampuan ekstrak bawang putih dan bawang hitam pada

konsentrasi 25%, 50%, 75%, dan 100% terhadap pertumbuhan Candida albicans. Penelitian ini mengunakan Rancangan Acak Lengkap dan menggunakan uji lanjut BNT dan didapatkan hasil bahwa bawang hitam terbukti

lebih baik menghambat pertumbuhan Candida albicans.

Kata kunci : antifungi, ekstrak bawang hitam, ekstrak bawang putih, Candida albicans

Comparison Test Between Black Onion Extract and Garlic Extract (Allium sativum) As An Antifungi Against

Candida albicans Growth

ABSTRACT

Infectious diseases have become one of the biggest health problems. Giving antibiotics in the long term and done

irrationally can cause new problems, namely the emergence of resistant pathogens. Therefore, alternative

treatments using herbal materials and plants are now widely used. Garlic included in the familia Liliaceae is a

parenial herbaceous plant that forms tuber bulbs. Garlic is already known to have medical potential and is

believed to act as antifungal due to its allicin content. While the black onion is garlic that has been heated at a

temperature of 65-80 º C with a relative humidity of 70-80% for 30-40 days without any additional treatment. Black onions have stronger antibacterial properties, as well as antioxidants two times higher than regular garlic

as they contain S-allycysteine. Researchers are interested in raising the title of this study with the aim to test the

ability of both extracts at concentrations of 25%, 50%, 75%, and 100% on the growth of Candida albicans. This

study used Completely Randomized Design and using BNT advanced test showed that black onions proved to be

better inhibiting the growth of Candida albicans.

Key words ; antifungi, black garlic extract, garlic extract, Candida albicans

1. PENDAHULUAN

Kandidiasis adalah infeksi yang disebabkan

oleh Candida albicans dan spesies lain dalam genus

Candida. Prevalensi tinggi di negara berkembang

dapat ditemukan di seluruh dunia dan menyerang

seluruh populasi umum baik laki-laki maupun

perempuan dan diduga banyak terjadi di daerah tropis

dengan kelembaban udara yang tinggi [5]. Candida

adalah jamur yang hidup di dalam rongga mulut,

saluran pencernaan dan vagina, tetapi apabila

keseimbangan flora normal seseorang atau

pertahanan imun menurun, maka sifat komensal

Candida ini dapat berubah menjadi patogen. Hal ini




102

dapat terjadi karena Indonesia adalah negara tropis

dengan kelembaban udara yang tinggi, ditambah

kurangnya pengetahuan tentang kesehatan reproduksi

di masyarakat, sumber penularan penyakit seksual

yang belum teratasi dan penggunaan obat-obatan

jangka panjang akan membuat jamur berkembang

biak lebih cepat [7]

.

Produk alami baik komponen murni maupun

ekstrak tanaman yang terstandarisasi dapat menjadi

sumber obat-obatan baru karena adanya kandungan

senyawa kimia yang beraneka ragam. Kandungan zat

aktif tanaman yang memiliki kemampuan fungicidal

dapat menjadi alternatif sumber senyawa aktif pada

obat-obatan antifungi[2]

.

Bawang putih (Allium sativum) dipilih

sebagai antifungi karena ketersediaannya yang

melimpah, mudah didapatkan dan murah. Komponen

utama dalam bawang putih yang dipercaya

bertanggung jawab atas potensi antibakteri dan

potensi terapeutik lain pada bawang putih ialah

kandungan sulfur dalam bawang putih. Diantaranya

ialah Diallyl thiosulfinate (allicin) dan juga Diallyl

disulfide (ajoene). Allicin merupakan komponen

sulfur bioaktif utama yang terkandung dalam bawang

putih. Komponen ini hanya akan muncul apabila

bawang putih dipotong atau dihancurkan. Pada saat

bawang putih dihancurkan atau dipotong. Pada saat

bawang putih dihancurkan, kerusakan membran sel

bawang putih ini akan mengaktifkan enzim allinase,

yang akan membantu proses metabolisme allicin

yang tekandung dalam sel lain, menjadi allicin[6]

.

Bawang putih dapat diolah dengan cara

fermentasi dan menghasilkan bawang hitam. Bawang

hitam merupakan produk fermentasi dari bawang

putih yang dipanaskan pada suhu 65 – 80ºC dengan

kelembapan 70 – 80% dari suhu kamar selama satu

bulan[3]

. Bawang hitam memiliki warna hitam, ringan

karena kadar airnya berkurang dan mempunyai

aroma serta rasa yang tidak terlalu menyengat seperti

bawang putih dan terdapat kandungan S-allylcysteine

yang dapat membantu penyerapan allicin sehingga

metabolisme perlindungan terhadap infeksi bakteri

menjadi lebih mudah.

Hal tersebut mendorong dilakukannya

penelitian perbandingan antara bawang putih dan

bawang hitam sebagai antifungi menggunakan

ekstrak etanol 96% terhadap pertumbuhan Candida

albicans. Hasil penelitian ini diharapkan dapat

membuktikan secara ilmiah keefektifan dari kedua

antifungi yang diberikan perlakuan konsentrasi 0%,

25%, 50%, 75% dan 100% dan kemudian

dibandingkan dengan antifungi komersial

ketoconazole.


2.1. Tempat dan Waktu Penelitian

Penelitian ini dilakukan di laboratorium

mikrobiologi Jurusan Biologi Fakultas Matematika

dan Ilmu Pengetahuan Alam Universitas PGRI Adi

Buana Surabaya.

2.2. Alat dan Bahan Penelitian

Alat yang digunakan dalam penelitian ini antara

lain mikropipet, gelas ukur, kawat ose, rak tabung

reaksi, korek api, pembakar bunsen, laminair air

flow, kompor gas, autoklaf, panci infusa, timbangan

ohaus, cawan petri, penggaris, blender, pisau,

nampan, pengaduk, tabung erlenmeyer, oven dan

rotary evaporator. Bahan yang dibutuhkan dalam

penelitian ini antara lain bawang putih, bawang

hitam, Candida albicans, kertas saring, aquades

steril, kertas label, pelarut etanol 96%, media SDA

(Saboroud Detroxe Agar), NaCl steril, kertas

whatman no. 42 dan alumunium foil.

2.3. Rancangan Penelitian

Penelitian ini dilakukan secara eksperimental

menggunakan metode analisis data kuantitatif

menggunakan rancangan acak lengkap (RAL) yang

dilakukan pada 5 perlakuan konsentrasi ekstrak yaitu

0%, 25%, 50%, 75%, dan 100% dengan 5 kali

ulangan. Pengujian data menggunakan uji F dan

apabila signifikan (P<0,05) akan dilanjutkan dengan

uji BNT untuk mengetahui perbedaan antar

konsentrasi pada perlakuan yang diberikan.

2.4. Pengambilan Sampel

2.4.1. Pembuatan Ekstrak

Metode yang digunakan pada penelitian ini

untuk mengekstrak bawang putih (Allium sativum) dan

bawang hitam adalah metode maserasi. Pada metode

maserasi digunakan pelarut etanol 96%. Bahan

terlebih dahulu dikupas kulitnya kemudian dicuci

bersih, selanjutnya dikeringkan tanpa terkena sinar

matahari selama 3 hari pada suhu ruang. Kemudian

dihaluskan hingga menjadi serbuk kering. Serbuk

kering direndam dalam pelarut dengan perbandingan

1:4 dalam etanol 96 % selama 3x24 jam. Hasil ekstrak

dari kedua bahan dikeringkan dalam oven pada suhu

70ºC sampai mendapatkan ekstrak kering dalam



103

pengujian. Ekstrak kasar yang didapat kemudian

diencerkan sesuai konsentrasi.

2.4.2. Pembuatan Media SDA (Sabouraud

Dextrose Agar)

Sebanyak 6,5 gram bubuk SDA dan 100

ml aquades steril dicampur kedalam tabung

erlenmeyer, diaduk hingga homogen, kemudian

dipanaskan diatas hot plate hingga mendidih,

kemudian disterilkan di dalam autoclave selama 15

menit pada suhu 121ºC. Media SDA 100 ml dapat

dituangkan dalam 4 petridish.

2.4.3. Pengujian Pengaruh Ekstrak Terhadap

Pertumbuhan Candida albicans

Kertas cakram ukuran 6 mm dicelupkan ke

dalam larutan uji selama ± 10 menit, kemudian

diangin-anginkan sampai tidak ada larutan yang

menetes. Kertas cakram diletakkan diatas permukaan

medium agar yang sudah terisi Candida albicans dan

diinkubasi selama 4 hari pada suhu ruang. Aktifitas

antifungi diamati berdasarkan daerah hambat yang

ditunjukkan dengan daerah bening yang dibentuk di

sekeliling kertas cakram dan diukur menggunakan

penggaris atau jangka sorong.


Dari hasil penelitian mengenai pengaruh

pemberian ekstrak bawang hitam dengan konsentrasi

0%, 25 %, 50 %, 75%, dan 100% terhadap

pertumbuhan Candida albicans dengan 5 kali

ulangan didapatkan hasil rata-rata zona hambat

seperti yang ditunjukkan dalam Tabel 1.

Berdasarkan data yang diperoleh, diketahui

bahwa pemberian ekstrak bawang hitam terhadap

pertumbuhan jamur Candida albicans setelah

ditanam pada media Saboraud Dextrose Agar

(SDA) secara in vitro setelah inkubasi selama 24

jam pada perlakuan konsentrasi 25% rata rata besar

daya hambatnya adalah 0,88 mm, pada konsentrasi

50% rata-rata besar daya hambatnya adalah 2,12

mm, pada konsentrasi 75% rata-rata besar daya

hambatnya adalah 3,75 mm dan pada konsentrasi


mm. Hasil uji Anova menunjukkan bahwa ekstrak

bawang hitam berpengaruh signifikan (P<0,05)

terhadap diameter zona hambat pertumbuhan

Candida albicans.

Tabel 1. Luas zona hambat minimum ekstrak bawang

hitam terhadap pertumbuhan Candida albicans

D

ari

hasil

pene

litia

n

men

gena

i

pengaruh pemberian ekstrak bawang putih dengan

konsentrasi 0%, 25 %, 50 %, 75%, dan 100%

terhadap pertumbuhan Candida albicans dengan 5

kali ulangan didapatkan hasil rata-rata zona hambat

yang tersaji pada Tabel 2. Berdasarkan data pada

Tabel 2, dapat diketahui bahwa pemberian ekstrak

bawang putih terhadap pertumbuhan jamur Candida

albicans setelah ditanam pada media Saboraud

Dextrose Agar (SDA) secara in vitro setelah

inkubasi selama 24 jam pada perlakuan konsentrasi


mm, pada konsentrasi 50% rata-rata besar daya

hambatnya adalah 0,57 mm, pada konsentrasi 75%

rata-rata besar daya hambatnya adalah 2,33 mm, dan

pada konsentrasi 100% rata-rata besar daya

hambatnya adalah 3,04 mm. Hasil uji anova

menunjukkan bahwa ekstrak bawang putih

berpengaruh signifikan (P>0,05) terhadap diameter

zona hambat pertumbuhan Candida albicans.

Tabel 2. Luas zona hambat minimum ekstrak

bawang putih terhadap pertumbuhan Candida

albicans

Dari hasil penelitian ini telah ditunjukkan

bahwa ekstrak bawang hitam dan bawang putih dapat

memberikan pengaruh dalam menghambat

pertumbuhan Candida albicans. Pada pemberian

ekstrak bawang hitam dan bawang putih dengan

konsentrasi 25%, 50%, 75%, dan 100% memberikan

hasil yaitu semakin besar konsentrasi yang diberikan

maka semakin tinggi daya hambatnya terhadap

Candida albicans. Kedua ekstrak memberikan nilai

hambatan terbesar pada konsentrasi 100% tetapi

ekstrak bawang hitam memberikan respon lebih baik

dibandingkan ekstrak bawang putih dalam

menghambat pertumbuhan Candida albicans.

Replikasi

Konsentrasi Ekstrak Bawang Hitam (mm)

0% 25% 50% 75% 100% (+)

1 0,00 0,15 1,75 3,60 5,65 14,92 2 0,00 0,25 2,15 2,95 5,50 17,15 3 0,00 0,10 0,50 4,80 7,53 14,65

4 0,00 3,10 3,95 4,55 5,85 15,20

5 0,00 0,80 2,25 2,85 6,85 15,10

Jumlah 0,00 4,40 10,60 18,75 31,38 77,02

Rata-rata 0,00 0,88 2,12 3,75 6,27 15,40

Replikasi Konsentrasi Ekstrak Bawang Putih (mm)

0% 25% 50% 75% 100% (+)

1 0,00 0,10 1,55 2,80 3,05 14,92 2 0,00 0,15 0,30 3,15 3,30 17,15 3 0,00 0,20 0,40 2,75 3,95 14,65 4 0,00 0,10 0,25 0,60 1.60 15,20

5 0,00 0,25 0,35 2,35 3,30 15,10 Jumlah 0,00 0,80 2,85 11,65 15,20 77.02

Rata-rata 0,00 0,16 0,57 2.33 3,04 15,40



104

Pada saat umbi bawang putih diiris-iris dan

dihaluskan dalam proses pembuatan ekstrak atau

bumbu masakan, enzim allinase menjadi aktif dan

menghidrolisis allicin menghasilkan senyawa

intermediet asam allil sulfenat. Kondensasi asam

tersebut menghasilkan allicin[2], asam piruvat, dan

ion NH4+. Satu miligram allicin ekuivalen dengan

0,45 mg allicin. Pemanasan dapat menghambat

aktivitas enzim allinase.

Zat-zat yang terdapat didalam bawang putih

segar tidak akan rusak selama proses fermentasi

karena dibungkus dengan menggunakan allumunium

foil [8]

. Senyawa yang berperan sebagai antibakteri

adalah senyawa organosulfur antara lain allicin.

Allicin merupakan senyawa utama asam amino yang

mengandung sulfur yang tidak berbau dan

merupakan prekursor dari allicin, methiin, (+)-S-

(trans-1-propenyl)-L-cysteine sulfoxide dan

cycloalliin. Semua sulfoxides di atas, terkecuali

cycloalliin, dikonversi menjadi thiosulfinates,

misalnya allicin melalui reaksi enzimatik ketika

bawang putih dipotong atau dihancurkan[4]

. Oleh

karenanya tidak ada thiosulfinates (allicin) yang

ditemukan pada bawang putih yang masih utuh.

Bawang hitam memiliki sifat antibakteri lebih

kuat, serta antioksidan dua kali lebih tinggi

dibandingkan dengan bawang putih biasa karena

mengandung S-allycysteine[6]. Semakin lama waktu

fermentasi bawang hitam maka kandungan

Sallycysteine (SAC) semakin meningkat, dimana

SAC mengandung senyawa tiol yang berperan

responsif sebagai antioksidan dikarenakan nukleofil

didalamnya dapat dengan mudah menyerap proton

bakteri dan menjadikan spesies tertentu menjadi

inaktif. Dengan adanya senyawa antibakteri bawang

hitam yang lebih tinggi dari bawang putih diharapkan

dapat lebih efektif untuk mengatasi prokariotik

patogenik penyebab penyakit seperti kandidiasis

yang disebabkan oleh Candida albicans[1].

4. KESIMPULAN

Berdasarkan analisis data yang dilakukan dalam

penelitian ini maka dapat disimpulkan bahwa

terdapat perbedaan yang signifikan pada pemberian

ekstrak bawang hitam dan ekstrak bawang putih

sebagai antifungi pada pertumbuhan Candida

albicans secara in vitro Ekstrak bawang hitam

memiliki efek daya hambat lebih besar pada

konsentrasi 100% dengan besar daya hambat 6,27

mm sedangkan pada bawang putih (Allium sativum)

pada konsentrasi 100% memiliki daya hambat

sebesar 3,04 mm.


Terima kasih kepada rekan-rekan peneliti atas

masukan, saran dan telah bersedia membantu

penelitian dan penyusunan jurnal ini.


“Seluruh penulis menyatakan tidak terdapat



ini.”

DAFTAR PUSTAKA

1. Bae GS, Kim MS, Jung WS, Seo SW, Yun

SW, Kim SG, Park RK. Inhibition of

lipopolysaccharide induced

inflammatory responses by piperine.

Europe Journal of Pharmacology. 2010;

642: 154-162.

2. Dellavalle, RP, Garner, S. Acne vulgaris. The

Lancet. vol. 379 no. 9813: 361– 372; 2011.

3. Fu Y, Zu Y, Chen L, Shi X, Wang Z, Sun S and

T. Efferth. Antimicrobial Activity of

clove and rosemary essential oils alone and in combination. Phytother Res. 2007;

21(10):989-94.

4. Lawson, LD, Wood SG, Hughes BG. HPLC

Analysis Of Allicin And Other

Thiosulfinates In Garlic Clove

Homogenates. Planta Med. 1991;

57(3):263-70.

5. Ramali, A. Kamus Kedokteran. Jakarta: PT.

Djambata; 2013.

6. Shunsuke Y, Tamotsu K. Gender and Age

Related Differences of Dynamic

Balancing Ability Based on Various

Stepping Motions in The Health Elderly.

Journal Human Ergol. 2014;34(1-2):1- 11.

7. Siregar, CJP, Wikarsa, S. Teknologi Farmasi

Sediaan Tablet Dasar- Dasar Praktis.

Jakarta : Penerbit Buku Kedokteran EGC;

2012.

8. Zhang X, Li N, Lu X, Liu P, Qiao X. Effects of

temperature on the quality of black

garlic. J.Science Food Agriculture. 2016;

96:2366-2372.


Vol. 4, No. 2, (Juli2019), P-ISSN : 2527-6328, E-ISSN : 2549-3558

105

Artikel Penelitian

Ratih Kusuma Wardani1*),

Prasetyo Handrianto1

1Akademi Farmasi Surabaya *) E-mail: [email protected]

ABSTRAK

Umbi porang merupakan tanaman umbi-umbian yang banyak tumbuh di Indonesia khususnya di daerah Saradan

Madiun Jawa Timur. Dalam pengolahan pascapanen, umbi porang diolah menjadi keripik dan tepung untuk

memperpanjang waktu simpannya. Baik umbi maupun tepung porang masih mengandung kalsium oksalat

dengan kadar yang cukup tinngi. Kalsium oksalat dapat menyebabkan rasa gatal pada lidah saat dikonsumsi.

Penelitian ini bertujuan untuk mengetahui pengaruh perendaman umbi dan tepung porang dalam larutan sari

buah belimbing wuluh. Tepung porang yang direndam dalam larutan sari buah belimbing wuluh mengalami

gelatinasi. Konsentrasi larutan sari buah belimbing wuluh mempengaruhi kadar kalsium oksalat pada umbi dan

tepung porang. Penurunan kadar kalsium oksalat paling besar pada umbi dan tepung porang terjadi setelah

sampel direndam larutan sari buah belimbing wuluh 7% v/v.

Kata kunci: porang, kalsium oksalat, belimbing wuluh.

Effect of Soaking Porang Tuber And Porang Flour in Averrhoa

bilimbi Extract Against Physical Properties and Calcium Oxalate

Levels

ABSTRACT

Porang tubers are a plant that widely grown in Indonesia, especially in the Saradan Madiun East Java. After harvesting process, porang tubers are processed into chips and flour to increase storage time. Both tubers and

porang flour still contain high levels of calcium oxalate. Calcium oxalate can cause itching on the tongue when

consumed. This study aims to determine the effect of soaking tubers and porang flour in Averrhoa bilimbi juice

solution. Porang flour soaked in the Averrhoa bilimbi juice solution undergo gelatination. The concentration of

Averrhoa bilimbi juice solution affected the calcium oxalate level in porang tuber and flour. The biggest

decrease in calcium oxalate levels in porang tubers and porang flour occurred after the samples were soaked in

7% v/vAverrhoa bilimbijuice solution.

Keywords: porang, calcium oxalate, averrhoa bilimbi.

1. PENDAHULUAN

Umbi porang merupakan tanaman umbi-umbian

yang banyak tumbuh di wilayah Indonesia, salah

satunya di daerah Saradan kabupaten Madiun Jawa

Timur[4]. Umbi porang mengandung senyawa

glukomanan yang cukup tinggi, dimana senyawa

glukomanan banyak dimanfaatkan dalam bidang

industri pangan sebagai bahan aditif yang aman

untuk penstabil, pengembang dan agen pembentuk

gel pada makanan[2,10]. Glukomanan merupakan

sumber serat makanan yang larut air[15]. Diet tinggi

karbohidrat dengan serat dapat meningkatkan profil

lipid darah dan mengurangi konsentrasi glukosa

darah puasa penderita diabetes tipe 2[3,16]. Hingga

saat ini, pemanfaatan umbi porang sebagai makanan

yang dapat menurunkan gula darah dan kolesterol

dalam darah belum banyak diketahui oleh

masyarakat umum.

Umbi porang jarang dikonsumsi secara

langsung karena rasa gatal pada lidah dan mulut yang

timbul akibat kandungan kalsium oksalat di

dalamnya. Pascapanen, umbi porang banyak diolah

menjadi keripik atau tepung. Untuk membuat keripik

atau tepung porang dengan kualitas yang baik, perlu

dilakukan beberapa perlakuan awal. Perlakuan awal

tersebut bertujuan untuk mempertahankan atau

meningkatkan sifat fisik dan kimia keripik atau

tepung porang tersebut [5].

Pengaruh Perendaman Umbi dan Tepung Porang Dalam Sari Buah

Belimbing Wuluh Terhadap Sifat Fisik dan Kadar Kalsium Oksalat




106

Perlakuan awal yang umum dilakukan yakni

melakukan perendaman umbi porang namun hal

tersebut dapat menyebabkan warna kecoklatan pada

keripik porang dan hanya sedikit mengurangi

kandungan kalsium oksalat [5]. Perlakuan awal lain

yang dilakukan yakni melakukan perendaman umbi

porang dengan larutan NaCl. Larutan NaCl 0,05%,

dengan rasio perbandingan umbi dan larutan 1:6,

mampu menurunkan kadar kalsium oksalat pada

umbi senthe sebesar 79,53% [1]. Larutan NaCl selain

dimanfaatkan untuk menurunkan kadar kalsium

oksalat pada umbi juga berfungsi untuk

memperpanjang waktu penyimpanan keripik[5]. Asam

sitrat dapat menjadi solusi lain untuk memperpanjang

masa penyimpanan pada keripik porang. Hal tersebut

dikarenakan asam sitrat dapat mencegah

pertumbuhan mikroba pada makanan. Asam sitrat

pada buah belimbing wuluh mampu menurunkan

pertumbuhan bakteri pada ikan asin yang telah

direndam dalam larutan sari buah belimbing wuluh [9].

Selain untuk mengawetkan makanan, asam

sitrat juga dapat digunakan untuk menurunkan kadar

kalsium oksalat pada umbi. Larutan asam sitrat dan

larutan sari buah jeruk nipis dengan konsentrasi 5%

mampu menurunkan kadar kalsium oksalat pada

umbi talas berturut-turut sebesar 41% dan 47% [11].

Berdasarkan latar belakang tersebut, peneliti

ingin mengetahui pengaruh perendaman umbi dan

tepung porang dalam larutan sari buah belimbing

wuluh terhadap sifat fisik dan kandungan kalsium

oksalatnya.


2.1. Alat dan bahan

Alat-alat yang digunakan pada penelitian ini

adalah seperangkat alat gelas laboratorium, hot plate

dan seperangkat alat titrasi.

Bahan yang digunakan pada penelitian ini

adalah umbi porang dan keripik porang kering yang

didapatkan dari daerah Saradan Kabupaten Madiun

Jawa Timur, buah belimbing wuluh, akuades, asam

oksalat, kalium permanganat.

2.2. Preparasi umbi dan tepung porang

Umbi porang yang akan diberi perlakuan

perendaman, diiris terlebih dahulu menjadi keripik

basah dengan ukuran 2 × 2 cm dan tebal 0,5 cm.

Tepung porang yang digunakan pada penelitian ini

didapatkan dengan cara menghaluskan keripik

porang kering dengan cara menumbuknya sampai

halus dan diayak.

Keripik porang basah sebanyak 50 gram dan

tepung porang sebanyak 2 gram, masing-masing

direndam dalam 250 dan 200 mL larutan sari buah

belimbing wuluh dengan variasi konsentrasi 0, 3, 5

dan 7% v/v. Perendaman dilakukan sebanyak 3 × 15

menit dan dicuci dengan akuades. Setelah proses

perendaman, keripik porang basah dan tepung porang

dikeringkan pada suhu 60 ⁰C selama 24 jam. Keripik

dan tepung porang yang telah kering kemudian

ditumbuk hingga halus (Purwaningsih,2016[11].

2.3. Analisis kadar kalsium oksalat

Dua gram sampel (keripik dan tepung porang

yang telah ditumbuk pada tahap sebelumnya)

direaksikan dengan 10 mL larutan HCl 6M dan 190

mL akuades dan dipanaskan dalam penangas air

hingga mendidih selama 1 jam. Filtrat yang diperoleh

kemudian ditambahkan dengan akuades hingga

volume 250 Ml [7]. Filtrat tersebut kemudian

diencerkan sebanyak dua kali untuk selanjutnya

dilakukan analisis kadar kalsium oksalat dengan

metode titrasi permanganometri.


Pada penelitian ini dilakukan perendaman umbi

porang (dalam bentuk keripik basah) dan tepung

porang dalam larutan sari buah belimbing wuluh

dengan empat variasi kosentrasi yakni 0, 3, 5 dan

7%v/v. Pada proses perendaman keripik porang

basah, tidak ada perubahan warna dari keripik porang

basah tersebut. Warna keripik porang basah tetap

berwarna kekuningan. Hal yang berbeda terjadi pada

proses perendaman tepung porang. Tepung porang

yang direndam dalam larutan sari belimbing wuluh

mengalami gelatinasi dan tepung porang

mengembang hampir dua kali lipat. Hal tersebut

dikarenakan porang mengandung glukomanan

dengan kadar lebih dari 65%, dimana glukomanan

tersebut mempunyai sifat yang sangat mudah

berikatan dengan air dan membentuk gel [18]. Selain

itu, perendaman juga dilakukan pada suhu kamar.

Bila ingin mencegah proses gelatinasi, perendaman

sebaiknya dilakukan pada suhu antara 34-48 ⁰C[17].

Selain suhu, jenis larutan juga dapat mempengaruhi

proses perendaman. Perendaman yang dilakukan

dalam pelarut organik yang bersifat water miscible,

seperti etanol, dapat mencegah mengembangnya

tepung porang selama proses perendaman[6].



107

Setelah keripik basah dan tepung porang

direndam, kedua sampel tersebut dikeringkan pada

suhu 60 ⁰C selama 24 jam. Ketebalan dari keripik

porang berperan dalam proses pengeringan. Keripik

dengan tebal antara 0,5-1 cm merupakan ketebalan

yang baik. Bila keripik porang diiris dengan tebal

lebih dari 1 cm, maka proses pengeringan akan

berjalan lebih lama dan memicu tumbuhnya jamur

pada keripik porang [2,5]. Suhu optimal untuk proses

pengeringan yakni 60-65 °C karena bila pengeringan

dilakukan pada suhu 70 °C dapat terjadi penempelan

antara umbi satu dengan yang lainnya yang

disebabkan melelehnya umbi pada suhu tersebut[2].

Selain itu, pengeringan pada suhu tinggi dapat

merusak senyawa protein, karbohidrat, mineral dan

vitamin yang terkandung dalam umbi dan tepung

porang.

Setelah proses pengeringan selesai, terjadi

perubahan secara fisik pada keripik dan tepung

porang. Keripik porang yang telah kering terlihat

dilapisi oleh membran tipis seperti film sedangkan

tepung porang yang telah kering menggumpal dan

juga dilapisi oleh membran tipis seperti film. Hal

tersebut juga disebabkan oleh kandungan

glukomanan dengan kadar yang cukup tinggi pada

umbi porang. Glukomanan dapat membentuk lapisan

tipis yang kedap air sehingga dapat dimanfaatkan

sebagai bahan dalam pembuatan edible film[12,17].

Pada penelitian ini, tidak ada perubahan warna yang

terjadi pada keripik dan tepung porang yang telah

dikeringkan. Dengan adanya hal tersebut, tepung

porang yang telah kering harus ditumbuk lagi untuk

memudahkan proses analisis.

Gambar 1. Morfologi kristal jarum kalsium oksalat

pada umbi porang setelah direndam dengan larutan

sari buah belimbing wuluh dengan konsentrasi (a) 0%,

(b) 3, (c) 5%, (d) 7%.

Pengamatan morfologi kristal dari kalsium

oksalat pada umbi porang juga dilakukan pada

penelitian ini. Kristal kalsium oksalat berbentuk

jarum[5]. Pengamatan morfologi kristal jarum

dilakukan dengan metode Scanning Electron

Microscope (SEM) yang ditunjukkan pada Gambar 1.

Dari hasil SEM, tampak bahwa sebaran kristal jarum

kalsium oksalat pada umbi porang berkurang seiring

dengan meningkatnya konsentrasi larutan sari buah

belimbing wuluh. Sebaran kristal jarum kalsium

oksalat paling sedikit terdapat pada umbi porang

yang telah direndam dalam larutan sari buah

belimbing wuluh 7%.

Kadar kalsium oksalat pada umbi porang

dianalisis dengan metode titrasi permanganometri.

Sebelum dilakukan analisis, baik sampel keripik

maupun tepung porang yang telah kering, ditumbuk

terlebih dahulu untuk memudahkan proses preparasi

sampel. Data hasil pengamatan pada penelitian ini

ditunjukkan pada Tabel 1.

Tabel 1. Hasil analisis kadar kalsium oksalat

Konsentrasi

Larutan Sari

Buah

Belimbing

Wuluh (%)

%b/b Ca-

oksalat pada

Umbi

Porang

%b/b Ca-

oksalat pada

Tepung

Porang

0 4.9254 3.9470

3 4.2037 2.1092

5 3.3503 1.7101

7 3.0843 1.4701

Kadar kalsium oksalat pada umbi porang lebih

tinggi daripada tepung porang. Hal tersebut

dikarenakan, tepung porang mengalami proses

penumbukkan pada perlakuan awal sebelum

perendaman. Penumbukan dapat membantu

menurunkan kadar kalsium oksalat pada tepung

porang [8,13].

Gambar 2. Kurva penurunan kadar kalsium oksalat

Setelah perlakuan perendaman, baik umbi

maupun tepung porang, kadar kalsium oksalat

menurun seiring dengan meningkatnya konsentrasi

larutan sari buah belimbing wuluh. Hal tersebut

dikarenakan semakin tinggi konsentrasi larutan sari

4,9254

4,2037 3,3503

3,0843

3,9470

2,1092 1,7101

1,4701

0,00

1,00

2,00

3,00

4,00

5,00

6,00

0 2 4 6 8

Kad

ar K

alsi

um

Ok

sala

t (%

b/b

)

Konsentrasi Larutan Sari Buah Belimbing Wuluh (%v/v)

Umbi Porang Tepung Porang



108

buah belimbing wuluh, semakin tinggi pula

konsentrasi asam organik yang terkandung di

dalamnya. Asam organik dan/atau asam encer dapat

bereaksi dengan kalsium oksalat menjadi larutan

asam oksalat yang larut air[14]. Gambar 2.

Menunjukkan kurva penurunan kadar kalsium oksalat

pada umbi dan tepung porang. Penurunan kadar

kalsium oksalat paling besar terjadi pada umbi dan

tepung porang setelah direndam dengan larutan sari

buah belimbing wuluh 7%v/v.

4. KESIMPULAN

Perendaman umbi dan tepung porang dalam

larutan sari buah belimbing wuluh dengan berbagai

konsentrasi mempengaruhi sifat fisik umbi dan

tepung porang. Terdapat lapisan tipis dan transparan

pada umbi dan tepung porang setelah direndam

dengan larutan sari buah belimbing wuluh. Kadar

kalsium oksalat baik pada umbi maupun tepung

porang mengalami penurunan seiring dengan

meningkatnya konsentrasi larutan sari buah.


Artikel ini merupakan hasil dari penelitian

dosen pemula (PDP) tahun 2019 yang didanai oleh

Direktorat Riset dan Pengabdian Kepada Masyarakat,

Direktorat Jenderal Penguatan Riset dan

Pengembangan, Kementerian Riset, Teknologi dan

Pendidikan Tinggi (Kemenristekdikti).





ini.

DAFTAR PUSTAKA

1. Amalia R, Yuliana R.Studi Pengaruh Proses

Perendaman dan Perebusan Terhadap

Kandungan Kalsium Oksalat Pada Umbi

Senthe (Alocasia macrorrhiza (L) Schott). Jurnal Teknologi Kimia dan Industri. 2013:

2(3): 17-23.

2. Arifin, MA.Pengeringan Keripik Umbi Iles-

iles secara Mekanaik untuk Meningkatkan Mutu Keripik Iles(tesis).

Bogor: Institut Pertanian Bogor; 2001.

3. Chen HL, Sheu WH, Tai TS, Liaw YP, dan

Chen YC. Konjac Supplement Alleviated

Hypercholesterolemia and Hypeglycemia

in Type 2 Diabetic Subjects- A

Randomized Double-blind Trial. Journal

of The American College of Nutrition. 2003:

22: 36-42.

4. Dwiyono K, Sunarti TC, Suparno O,

Haditjaroko L. Penanganan Pascapanen

Umbi Iles-iles (Amorphophallus muelleri

Blume) Studi Kasus Di Madiun Jawa

Timur. Jurnal Teknologi Industri

Pertanian. 2014: 24(3): 179-188.

5. Koswara S. Modul: Teknologi Pengolahan

Umbi-umbian Bagian 2: Pengolahan

Umbi Porang. Bogor: Southest Asian

Food and Agricultural Science and

Technology (SEAFAST) Center. Bogor

Agricultural University; 2013.

6. Kurniawati AD, Widjanarko, SB. Pengaruh

Tingkat Pencucian dan Lama Kontak

Dengan Etanol Terhdap Sifat Fisik dan

Kimia Tepung Porang (Amorphophallus

oncophyllus) (tesis). Malang: Universitas

Brawijaya; 2010.

7. Maulina FDA, Lestari IM, Retnowati DS.

Pengurangan Kadar Kalsium Oksalat

Pada Umbi Talas Menggunakan

NaHCO3: Sebagai Bahan Dasar Tepung.

Jurnal Teknologi Kimia dan Industri. 2012:

1(1): 277-283.

8. Mawarni RT, Widjanarko SB. Penggilingan

Metode Ball Mill Dengan Pemurnian

Kimia Terhadap Penurunan Oksalat

Tepung Porang. Jurnal Pangan dan

Agroindustri. 2015: 3(2): 571-581.

9. Pakaya YT, Olii AH, Nursinar S. Pemanfaatan

Belimbing Wuluh sebagai Pengawet

Alami pada Ikan Teri Asin Kering. Jurnal

Ilmiah Perikanan dan Kelautan. 2014: 2(2):

93-96.

10. Parry MJ. Konjac Glucomannan. In: Imeson,

A. (Ed.) Food Stabilisers, thickeners and

gelling agents. London: Wiley-Blackwell; 2010.

11. Purwaningsih I, Kuswiyanto. Perbandingan

Perendaman Asam Sitrat dan Jeruk Nipis

Terhadap Penurunan Kadar Kalsium

Oksalat Pada Talas. Jurnal Vokasi

Kesehatan. 2016: 2(1): 89-93.

12. Saputro EA, Lefiyanti O, Mastuti E.

Pemurnian Tepung Glukomanan Dari

Umbi Porang (Amorphophallus muelleri

Blume) Menggunakan Proses

Ekstrksi/Leaching Dengan Larutan

Etanol. Simposium Nasional RAPI XIII; Surakarta: Universitas Sebelas Maret; 2014.

13. Sutrisno A. Proses Penurunan Kadar

Kalsium Oksalat Menggunakan

Penepung ‘Stamp Mill’ untuk

Pengembangan Industri Kecil Tepung

Iles-iles (Amorphophallus muelleri

Blume). Pangan. 2011: 20(4): 331-340.

14. Svehla G. Vogel Buku Teks Analisis

Anorganik Kualitatif Makro dan



109

Semimikro, Edisi Kelima, Bagian 2.

Terjemahan oleh L. Setiono dan A. H.

Pudjaatmaka. Jakarta: PT. Kalman Media

Pustaka; 1990.

15. Tester R, Al-Ghazzewi F. Glucomannans and

Nutrition. Food Hydrocolloids. 2017: 68:

246-254.

16. Vuksan V, Sievenpiper JL, Xu Z, Wong EY,

Jenkins AL, Beljan-Zdravkovic U, dkk.

Konjac-mannan and American Ginsing:

Emerging Alternative Therapies for Type

2 Diabetes Mellitus. Journal of The

American College of Nutrition. 2001: 20:

370-383.

17. Widari NS, Rasmito A. Penurunan Kadar

Kalsium Oksalat Pada Umbi Porang

(Amorphopallus Oncophillus) Dengan

Proses Pemanasan Di Dalam Larutan

NaCl. Jurnal Teknik Kimia. 2018:13(1):1-4.

18. Zhu F. Modifications of Konjac

Glucomannan for Diverse Applications.

Food Chemsitry. 2018: 256: 419-426.



110

Halaman Kosong



111

Artikel Penelitian

Analisis Kandungan Logam Timbal pada Sediaan Kosmetik Bedak

yang Beredar di Pasar Pengampon Surabaya

Djamilah Arifiyana

*1), Ermayulis

1

1Bidang Ilmu Kimia, Akademi Farmasi Surabaya

*)Email: [email protected]

ABSTRAK

Bedak merupakan salah satu sediaan kosmetik yang banyak dimiliki masyarakat dan merupakan kosmetik

dasaratau lumrah dimiliki oleh wanita. Penelitian ini bertujuan untuk menganalisis kandungan logam berat

timbal dalam produk kosmetik bedak yang beredar di pasar Pengampon Surabaya. Sampel yang digunakan

dipreparasi dengan destruksi basah menggunakan aqua regia. Dari kelima sampel bedak, secara keseluruhan

sampel mengandung logam timbal, dan tiga diantara melebihi batas yang telah ditetapkan oleh BPOM RI (20

mg/kg). Sampel dengan kode BD1, BD2 dan BD5 dengan nilai cemaran timbal masing-masing sebesar 27,2746

mg/kg; 21,0297 mg/kg; dan 24,2015 mg/kg.

Kata kunci: Logam berat, Timbal, Bedak, Aqua Regia, Spektrofotometer Serapan Atom (SSA)

Analysis Of Lead Metal Content In Pressed Powder At Pengampon

Market Surabaya

ABSTRACT

Powder is one of the many cosmetic preparations and cosmetic standard or commonly owned by women. This

study aims to analyze the content of lead heavy metals in powder cosmetic products circulating in Pengampon

market Surabaya. The sample used was prepared by wet destruction using aqua regia. From five powder

samples, the overall sample contained lead metal, of which three outweighed the limits set by the BPOM RI (20

mg/kg). Samples coded BD1, BD2 and BD5 had lead contamination values of 27,2746 mg/kg; 21,0297 mg/kg;

and 24,2015 mg/kg, respectively.

Key Words: Trace metal, Lead, Powder, Aqua Regia, Atomic Absorption Spectrophotometer (AAS)

1. PENDAHULUAN

Keberadaan logam di lingkungan sekitar kita

yang secara alami terbentuk di bebatuan, tanah dan

air menyebabkan logam hadir sebagai sumber

pembuatan pigmen dan bahan baku lainnya yang

digunakan dalam industri kosmetik. Melalui proses

ini masyarakat dapat dengan mudah terpapar logam

sebagai kontaminan dalam produk kosmetik yang

mereka gunakan sehari-hari. Kosmetik dapat saja

memiliki variasi bentuk, cara penggunaan dan cara

paparan, namun logam yang terkandung didalamnya

secara pasti dapat menyebabkan masalah kulit, baik

hanya berdampak pada daerah tempat aplikasi

kosmetik itu sendiri(lokal)maupun efek sistemik

setelah penyerapan melalui kulit atau konsumsi[3].

Bedak merupakan salah satu jenis kosmetik

yang perkembangannya cukup pesat. Saat ini terdapat

banyak bentuk kemasan kosmetik bedak untuk

menarik minat konsumen. Warnanya pun bervariasi,

yakni menyesuaikan tone kulit manusia. Bedak

merupakan salah satu jenis kosmetik yang

penggunaannya bertujuan untuk menutupi noda dan

bintik-bintik pada wajah serta membuat wajah

terlihat bersih dan segar, namun seiring dengan

perkembangan dunia kosmetik, bedak dapat

berfungsi sebagai menghapus kilau minyak yang ada

pada wajah sarta dapat memberikan kesan halus pada

kulit dan dapat digunakan sebagai perwarna pipi[13

Bedak bukan merupakan pengecualian terhadap

kosmetik yang pada prosesnya dilakukan

penambahan logam berat sebagai pigmen

warna.WHO memperkirakan asupan timbal harian

pada kisaran 14,4–28 μg/hari pada orang dewasa

yang bersumber dari udara, debu makanan, dan

air[19].

Sumber utama asupan timbal pada orang

dewasa adalah melalui makanan dan minuman

misalnya total asupan timbal yang bersumber dari

makanan oleh orang dewasa berada pada kisaran 26-



112

282 μg/hari, angka tersebut merupakan perkiraan

yang berasal dari WHO dari berbagai negara.

O'Rourke et al. meneliti paparan timbal dari jalur

yang luas (udara, tanah,debu rumah, makanan,

minuman, dan air) pada populasi orang dewasa di

ASdan menemukan paparan harian timbal sebesar 36

μg/hari (kisaran: 11-107 μg/hari)[15].

Timbal dalam kosmetik merupakan sumber

paparan timbal yang sangat kecildibandingkan

sumber lain, karena jumlah kosmetik dalam satu kali

aplikasi sebenarnya sangat kecil dibandingkan

dengan jumlah konsumsi atau paparan air, makanan

atau udara yang dibutuhkan seseorang. Meskipun

demikian, fakta bahwa timbal terakumulasi dalam

tubuh seiring waktu dan aplikasi kosmetik yang

mengandung timbal secara berulang-ulang dapat

menyebabkan paparan yang signifikan. Namun,

konsekuensi dari produk ini hanya bisa diverifikasi

dengan benar dengan melakukan penelitian penilaian

risiko populasi terhadap paparan logam berat[1].

Larese Filon et al. menyatakan bahwa Pb oksida

dapat terabsorpsi pada kulit manusia dan menemukan

rata-rata penetrasi logam Pb yang terjadi adalah

sebesar 2,9 ng/cm2 [11].

Timbal masuk ke dalam tubuh melalui

konsumsi oral atau inhalasi, namun penelitian juga

telah membuktikan bahwa timbal dapat masuk

kedalam tubuh melalui penyerapan melalui kulit.

Berdasarkan pengukuran Pb urin yang dilakukan

pada tikus yang terpapar garam Pb anorganik, urutan

peringkat penetrasi kulit adalah sebagai berikut: Pb-

naftalena > Pb-nitrat> Pb-stearat > Pb-sulfat> Pb-

oksida > Serbuk logam Pb[5]. Bentuk persenyawaan

lain Pb sebagai zat warna atau pigmen pada kosmetik

adalah Pb karbonat dan Pb sulfat [12,20], kontaminasi

lain dapat berasal dari raw material yang digunakan,

percemaran selama proses produksi berlangsung serta

dapat berasal dari peralatan yang digunakan selama

proses produksi [17].

Jalan pengampon Surabaya merupakan daerah

dimana terdapat beberapa toko kosmetik berdiri,

toko-toko kosmetik yang ada di daerah ini

merupakan tempat rujukan bagi banyak konsumen,

terutama bagi perias-perias maupun pemilik salon.

Produk kosmetik yang dijual tidak hanya terbatas

kosmetik wajah, tetapi juga kebutuhan perawatan

salon. Terdapat berbagai jenis kosmetik yang

ditawarkan, mulai dari produk lokal Indonesia,

hingga import.

Berdasarkan latar belakang tersebut, pada

penelitian ini akan dilakukan analisis kandungan

cemaran logam berat Pb pada sampel bedak yang

beredar di Pasar Pengampon Surabaya.


Penelitian ini terdiri dari tiga tahap. Tahap

pertama dilakukan pengambilan sampel dengan

metode purposive sampling yaitu pengambilan

sampel sesuai kriteria bedak yang diinginkan yaitu

memiliki kisaran harga Rp.50.000, bentuk bedak

padat dan warna bedak coklat. Jumlah sampel yang

diteliti berjumlah 5 sampel bedak. Tahap kedua

adalah preparasi sampel dengan metode destruksi

basah melalui penambahan aqua regia. Tahap ketiga

adalah penentuan kadar timbal menggunakan metode

Spektrofotometri Serapan Atom (SSA).

Preparasi sampel dilakukan di Laboratorium

Kimia Farmasi - Akademi Farmasi Surabaya,

sedangkan analisis kuantitatif logam berat dilakukan

di Laboratorium Energi ITS Surabaya.

2.1 Alat dan Bahan


meliputi neraca analitik Ohaus, hotplate Maspion,

kaca arloji, beakerglass, labu ukur, pipet volume,

gelas ukur, pipet tetes, spatula, dan kertas saring,

serta AAS Hitachi Z2000. Bahan penelitian terdiri

dari 5 jenis sampel bedak yang berbeda, HCl 37%

Merck, HNO365% Merck, aquadest, dan

Pb(NO3)2Riedel–de haen. Masing-masing sampel

diberi kode BD1, BD2, BD3, BD4 dan BD5.

2.2 Preparasi Sampel

Sampel bedak masing-masing ditimbang

sebanyak 2 gram, dimasukkan kedalam gelas beaker

kemudian ditambahkan aqua regia sebanyak 15 mL

dan diaduk dengan spatula, campuran selanjutnya

dipanaskan diatas hotplate dan ditutup dengan kaca

arloji. Larutan dipanaskan hingga mendidih selama

±10-15 menit diatas hotplatepada suhu 80°C, hingga

asap coklat menghilang, warna sampel berubah

menjadi lebih jernih dari larutan semula. Campuran

selanjutnya didinginkan dan disaring dengan kertas

saring. Setelah itu, filtrat yang diperoleh dipipet

sebanyak 2 mL lalu diencerkan dengan aquadest

dalam labu ukur 100 mL.

2.3 Analisis Kuantitatif

Pada penelitian ini, analisis kuantitatif

dilakukan dengan larutan standar timbal 5 mg/kg dan

sampel kosmetik bedak yang telah dipreparasi.

Dibuat larutan baku induk 1000 mg/kg, kemudian



113

diencerkan hingga diperoleh larutan baku 100 mg/kg

sebanyak 100 mL. Dari larutan baku 100 mg/kg ini

kemudian dipipet sejumlah 5 mL dimasukkan dalam

labu ukur 100 mL, lalu ditambahkan 2 mL larutan

sampel hasil destruksi dan ditambahkan aquadest

hingga tanda batas. Perlakuan ini diulangi pada

sampel bedak yang lain. Larutan yang diperoleh

selanjutnya dilakukan pengukuran dengan SSA.

Teknik pengolahan data hasil analisis SSA

selanjutnya diolah menggunakan rumus pada

penelitian yang telah dilakukan oleh Fernanda, dkk

(Fernanda, 2019)[8].

Keterangan:

C = Konsentrasi timbal dalam sampel hasil AAS

P = Faktor pengenceran sampel

B = Bobot sampel dari larutan uji


Tabel 1. Hasil Analisis dan Perhitungan Kadar Pb

Kode

Konsentrasi

Pb + Adisi

(mg/kg)

Konsentrasi

Pb

(mg/kg)

Kadar Pb

dalam sampel

(mg/kg)

Adisi 2,510 - -

BD1 4,003 1,493 27,2746

BD2 3,353 0,843 21,0297

BD3 3,017 0,507 12,6623

BD4 3,017 0,507 12,6213

BD5 3,480 0,970 24,2015

Sampel bedak yang digunakan pada

penelitian ini telah sesuai dengan kriteria

pengambilan sampel, yaitu memiliki kisaran harga

Rp.50.000, berbentuk bedak padat dan warna bedak

coklat. Sampel selanjutnya dipreparasi sedemikian

rupa sehingga sesuai dengan syarat sampel yang

mampu dianalisis dengan Spektrofotometer Serapan

Atom. Preparasi sampel dilakukan dengan destruksi

basah. Destruksi basah merupakan perombakan

sampel organik dengan larutan asam kuat baik

tunggal maupun campuran. Dalam metode destruksi basah yang digunakan yaitu asam-asam kuat

diantaranya HCl, HNO3, H2SO4, dan HClO4[12].

Penggunaan metode destruksi basah telah banyak

dilakukan sebagai metode preparasi untuk analisis

cemaran logam berat. Baik sampel yang berasal dari

alam seperti air[7,16], makanan[6], maupun kosmetik [10].

Metode destruksi lain yang dapat dilakukan

yaitu destruksi kering, dimana metode ini lebih aman,

sederhana, pada umumnya tidak memerlukan

pereaksi, merupakan metode yang paling umum

digunakan untuk menentukan total mineral. Namun

metode destruksi kering memiliki kekurangan,

meliputi waktu penggunaan yang cukup lama,

penggunaan muffle furnace memakan banyak biaya

karena harus dinyalakan terus menerus. Sedangkan

pada metode destruksi basah, suhu yang digunakan

relatif lebih rendah dibandingkan dengan destruksi

kering sehingga hilangnya unsur-unsur sangat kecil,

suhu yang digunakan tidak melebihi titik didih

larutan. Di samping itu peralatannya lebih sederhana,

proses oksidasi lebih cepat, dan waktu yang

dibutuhkan relatif lebih cepat dari destruksi kering [2,9]. Sehingga dalam penelitian ini menggunakan

metode destruksi basah dengan aqua regia sebagai

larutan pendestruksinya.

Hasil destruksi basah dengan aqua regia pada

kelima sampel bedak selanjutnya dianalisis dengan

SSA. Konsentrasi yang didapat dari sampel BD1-

BD5 secara berturut-turut diperoleh data kadar Pb

yaitu 27,2746 mg/kg; 21,0297 mg/kg; 12,6623

mg/kg; 12,6213 mg/kg; dan 24,2015 mg/kg. Diantara

kelima sampel yang sudah dianalisis dengan SSA,

sebanyak 3 sampel memiliki kadar timbal lebih dari

20 mg/kg seperti yang tertera dalam peraturan

BPOMBPOM Nomor HK.03.1.23.08.11.07517

tentang persyaratan teknis bahan kosmetika[19] yaitu

sampel BD1, BD2, dan BD5. Sedangkan sampel

BD3 dan BD4 merupakan kosmetik bedak yang

masih tergolong aman untuk digunakan, dimana

kadar cemaran timbal yang diperoleh masing-masing

sebesar 12,6623 mg/kg dan 12,6213 mg/kg.

Adanya kandungan cemaran logam berat jenis

timbal yang tinggi ini dapat disebabkan oleh

beberapa faktor. Salah satu faktornya adalah pewarna

yang digunakan dalam proses produksi, dimana salah

satu senyawa pigmen penghasil warna kuning dapat

bersumber dari PbCrO4 [13], sehingga dalam industri

kosmetik dapat dengan sengaja menambahkan

senyawa PbCrO4 untuk pewarna dalam bedak. Meski

demikian penambahan senyawa ini dalam kosmetik

sebenarnya masih diperbolehkan selama berada

dalam batas aman. Selain itu, kadar Pb yang melebihi

kadar yang diperbolehkan BPOM dapat juga

disebabkan oleh adanya sisa atau kontaminasi alat

selama proses produksi berlangsung[18].

4. KESIMPULAN

Data hasil penelitian yang telah dilakukan dapat

diambil kesimpulan, bahwa kosmetik bedak yang

beredar di daerah Pengampon mengandung timbal.

Kadar timbal pada sampel BD1, BD2, dan BD5 tidak

memenuhi peraturan BPOM, yaitu dengan kadar Pb

berturut-turut sebesar 27,2746 mg/kg; 21,0297 mg/kg

dan 24,2015 mg/kg. Sedangkan sampel BD3 dan

BD4 masih memenuhi peraturan BPOM yaitu

sebesar 12,6623 mg/kg dan 12,6213 mg/kg.



114

DAFTAR PUSTAKA

1. Al-Saleh, I., Al-Enazi, S., Shinwari, N.

Assessment of Lead in Cosmetic Products.

Regulatory Toxicology and Pharmacology.

2009; 54: 105–113.

2. Apriyanto, A. Analisis Pangan. Bogor: IPB

Press; 1989.

3. Bocca B., Pino A., Alimonti A., Forte G. Toxic

Metals Contained in Cosmetics: A Status

Report. Regulatory Toxicology and

Pharmacology. 2014; 68: 447–467.

4. BPOM.Peraturan Kepala Badan Pengawas

Obat dan Makanan Republik Indonesia

Nomor 17 Tahun 2014 tentang Perubahan

Atas Peraturan Kepala Badan Pengawas

Obat dan Makanan Nomor

HK.03.1.23.07.11.6662 Tahun 2011 tentang

Persyaratan Cemaran Mikroba dan Logam

Berat dalam Kosmetika. Jakarta: BPOM;

2014.

5. Bress, W.C., Bidanset, J.H. Percutaneous in vivo

and in vitro Absorption of Lead. Vet. Hum.

Toxicol. 1991; 33: 212–214.

6. Dewi, D.C. Determinasi Kadar Logam Timbal

(Pb) dalam Makanan Kaleng

Menggunakan Destruksi Basah dan

Destruksi Kering. ALCHEMY. 2012; 2(1):

12-25.

7. Fatmawinir, Suyani, H., dan Alif, A. Analisis

Sebaran Logam Berat pada Aliran Air dari

Tempat Pembuangan Akhir (TPA) Sampah

Air Dingin. J. Ris. Kim. 2015; 8(2): 101-107.

8. Fernanda, M.A.H.F., Elidya, D., Manaheda, N.A.,

Qomaryah, N., Umam, M.K. Amalia, A.R.,

Arifiyana, D. Analisa Kadar Timbal (Pb)

pada Lipstik di Wilayah Kota Surabaya

yang Teregistrasi dan Tidak Teregistrasi

Menggunakan Spektofotometri Serapan

Atom (SSA). Journal of Pharmacy and

Science. 2019; 4(1): 41-44.

9. Kristianingrum, Susila. Kajian Berbagai Proses

Destruksi Sampel dan Efeknya. Prosiding

Seminar Nasional Penelitian, Pendidikan

dan Penerapan MIPA, Universitas Negeri

Yogyakarta. Halaman 195-201; 2012;

Yogyakarta, Indonesia. Yogyakarta:

Universitas Negeri Yogyakarta; 2012.

10. Kumalawati, O.R. Analisis Kadar Logam

Timbal (Pb) pada Bedak Tabur dengan

Variasi Zat Pengoksidasi dan Metode

Destruksi Basah Menggunakan

Spektroskopi Serapan Atom (SSA)

(Skripsi). Malang: Universitas Islam Negeri

Maulana Malik Ibrahim; 2016.

11. Larese Filon, F., Boeniger, M., Maina, G.,

Adami, G., Spinelli, P., Damian, A. Skin

Absorption of Inorganic Lead (PbO) and

the Effect of Skin Cleansers. J. Occup.

Environ. Med. 2006; 48: 692–699.

12. Mamoto, L.V. dan Citraningtyas, F.G. Analisis

Rhodamin B pada Lipstik yang Beredar di

Pasar Kota Manado. Jurnal Ilmiah Farmasi.

2013; 2(2): 61-66.

13. Mitsui, T. New Cosmetic Science. Edisi Kesatu.

Amsterdam: Elsevier Science; 1997.

14. Mulyani, O. Studi Perbandingan Cara

Destruksi Basah pada Beberapa Contoh

Tanah Asal Aliran Sungai Citarum dengan

Metode Konvensional dan Bomb Teflon

(Tesis). Bandung: Institut Teknologi

Bandung; 2007.

15. O’Rourke, M.K., Van de Water, P.K., Jin S.

Rogan, S.P., Weiss, A.D., Gordon, S.M.

Moschandreas, D.M., Lebowitz, M.D.

Evaluations of Primary Metals from

NHEXAS Arizona: distributions and

preliminary exposures. National Human

Exposure Assessment Survey. J. Exp. Anal.

Environ. Epidemiol. 1999; 9: 435–445.

16. Rangkuti, A.M. Analisis Kandungan Logam

Berat Hg, Cd, dan Pb pada Air dan

Sedimen di Perairan Pulau Panggang-

Pramuka Kepulauan Seribu, Jakarta.

(Skripsi) Bogor: Institut Pertanian Bogor;

2009.

17. Soares, A.R., dan Nascentes, C.C. Development

of a Simple Method for The Determination

of Lead in Lipstik. Talanta. 2013; 105: 272-

277.

18. Supriyadi. Analis Logam Timbal dan Krom

pada Bedak Tabur secara Spektrofotometri

Serapan Atom. Biomedika. 2009; 2(2).

19. WHO, World Health Organization.

Environmental Health Criteria 165:

Inorganic Lead, Geneva: International

Programme on Chemical Safety. World

Health Organization, Geneva; 1995.

20. Yatimah, Y.D. Analisa Cemaran Logam Berat

Kadmium dan Timbal pada Beberapa

Merek Lipstik yang Beredar di Daerah

Ciputat dengan Menggunakan

Spektrofotometer Serapan Atom (SSA).

(Skripsi). UIN Syarif Hidayatullah, Jakarta;

2014.

Halaman Kosong - Jurnal Akademi Farmasi Surabaya

Documents

Transcript of Halaman Kosong - Jurnal Akademi Farmasi Surabaya