bookmikroskopis

7/30/2019 bookmikroskopis

1/48

PEMERIKSAAN MIKROSKOPIS

TUBERKULOSIS

DEPARTEMEN KESEHATAN RI 2006

PANDUAN BAGI PETUGAS LABORATORIUM


2/48


PEMERIKSAAN MIKROSKOPIS TUBERKULOSIS


Diterbitkan oleh:Direktorat Jenderal Pengendalian Penyakit & Penyehatan Lingkungan

supported by Global Fund

AcKNOwLEDGMENT

Buku Pedoman Pemeriksaan Mikroskopis Tuberkulosis

disusun dengan reerensi utama:

Buku Pedoman Diagnosis Tuberkulosis seara Laboratorium dengan

Pemeriksaan Mikroskopis Dahak

Pengarang:

Rihard Lumb, Ivan Bastian, Gunaan Yamin

Diterbitkan oleh:

Institute o Medial & Veterinary Siene

From Road

Adelaide, South Australia 5000

.imvs.sa.gov.au

Tahun 2004

Ilustrasi oleh:Kerry Raid


3/48




Buku Panduan ini diterbitkan atas bantuan dan masukan serta dukungan:

SeluruhDireksidanstafRSUPPersahabatan-Jakarta

Terutama sta Instalasi Laboratorium Patologi Klinik dan Mikrobiologi RSUP

Persahabatan, Jakarta

Prof.dr.AgusSjahrurrachman,Sp.MK.Ph.D

GuruBesarFKUI-KetuaPOKJALabTB

Dr.SriWidyastuti Dit.BinaPelayananPenunjangMedik-KetuaTimManajemenPOKJALabTB

Dr.SriPrihatini,Sp.P

KonsultanTBNasional-WHO

Dr.HariniDjaniar,Sp.PK

Ka. Balai Pengembangan Laboratorium Kesehatan Provinsi Jaa Barat

Dr.dr.NiMadeMertaniasih,Sp.MK.MS KaInstalasiLaboratoriumMikrobiologiFKUNAIR/RS.Dr.Soetomo-Surabaya

IvanBastian,RichardLumb,GunawanYaminselakupengarangdanKerryRaid

selaku ilustrator dan artist pada Buku Pedoman Diagnosis Tuberkulosis seara

Laboratorium dengan Pemeriksaan Mikroskopis Dahak IMVS, Adelaide, South

Terima Kasih


4/48




Tim Penyusun

POKJA LAB TBc

1. Dr. Lia Gardenia Partakusuma, Sp.PK

Instalasi Laboratorium Patologi Klinik dan Mikrobiologi RS. Persahabatan

Ketua Tim Teknis POKJA Lab TB

2. Dr.TjahyaniMirawatiSudiro,Ph.D,Sp.MK

Departemen Mikrobiologi FK UI

3. Dr. Retno Kadarsih S., Sp. MK

Departemen Mikrobiologi FK UI

4. Dr. Elly Trisnaati

Dit.BinaPelayananPenunjangMedik,DitjenYanmedik,DepkesRI

5. w.D. Murheni, S.Si

Balai Laboratorium Kesehatan DKI Jakarta

6. Dr. Syahrial Harun

Puslitbang P2M, Badan Penelitian dan Pengembangan, Depkes RI

7. Ir. ParulianBalai Besar Teknologi Kesehatan Lingkungan DKI Jakarta, Depkes RI

SUBDIT P2TBc, DEPKES RI

1. Dr. carmelia Basri, M.Epid

2. Dr. Siti Nadia

3. Sudarman S., SKM, MM

4. Dr. Ratih Pahlesia

5. Mikyal Faralina, SKM


5/48




Datar Isi

Terima Kasih ................................................................................................................................................................................iTim Penyusun ............................................................................................................................................................................ii

Daftar Isi .................................................................................................................................................................................iii

Kata Pengantar .........................................................................................................................................................................iv

Sambutan ..................................................................................................................................................................................v

Bab 1 Pendahuluan........................................................................................................................................................1

Bab 2 Pengumpulan Dahak ........................................................................................................................................2

waktu Pengumpulan Dahak ..........................................................................................................................2Tempat Pengumpulan Dahak ........................................................................................................................2Pengumpulan Dahak ........................................................................................................................................3cara Pengumpulan Dahak ..............................................................................................................................4Kualitas Spesimen ..............................................................................................................................................5Registrasi Spesimen ..........................................................................................................................................6

Bab 3 Pembuatan Sediaan Apus ...............................................................................................................................8

Alat-alatyangdibutuhkan ..............................................................................................................................8

cara Membuat Sediaan Apus ........................................................................................................................9Bagaimana Membuat Sediaan Apus yang Baik ................................................................................... 10

Bab 4 Alat dan Bahan Pearnaan.......................................................................................................................... 12

Bab 5 PewarnaanMetodaZiehl-Neelsen............................................................................................................13

Bab 6 Pembaaan Sediaan Apus ........................................................................................................................... 16

Bab 7 Pelaporan ........................................................................................................................................................... 21

Bab 8 Penyimpanan.................................................................................................................................................... 23

Bab 9 KeamananKerja............................................................................................................................................... 24

Bab 10 Pemantapan Mutu .......................................................................................................................................... 26

Bab 11 Lampiran ............................................................................................................................................................ 27

Pot Dahak yang Ideal ..................................................................................................................................... 27Formulir Permohonan Laboratorium TB (TB 05) .................................................................................. 28Formulir Register Laboratorium TB (TB 04)............................................................................................ 29Daftar Tilik Pemantapan Mutu Internal ...................................................................................................30

Mikroskop .......................................................................................................................................................... 31cara Pengiriman Sediaan Apus .................................................................................................................. 40 Informasi Untuk Pasien ................................................................................................................................. 41

i


6/48



DEPARTEMEN KESEHATAN RI 2006ii

Sebagai negara yang sedang berkembang, penyakitineksi masih merupakan salah satu penyebab kematiandi Indonesia dan penyakit TB masih merupakan penyakitineksi yang utama penyebab kematian tersebut.

Untuk menurunkan angka kesakitan TB tersebut, salahsatu upaya yang perlu mendapat perhatian adalahpenegakan diagnosis dengan pemeriksaan labora-toriumsecaramikros-kopisdahakyangberkualitas.

Karena pemeriksaan mikroskopis BTA ini dilaksanakanpadaberbagaijenisdantingkatlaboratoriummakaperlu adanya standarisasi dalam prosedur pemeriksaanmikroskopis dahak.

DirektoratP2MLbersama-samadenganDirektoratBinaPelayananPenunjangMedikmelaluiPokjaLaboratoriumTB telah selesai menyusun Buku Pedoman PemeriksaanMikros-kopisTuberkulosis(TB)Paru.Untukitukepadase-

mua pihak yang telah berpartisipasi dalam penyusunanbuku pedoman ini kami menguapkan terima kasih.

Kami sangat mengharapkan agar semua tenaga labo-ratorium dalam melakukan pemeriksaan mikroskopisdahakTBmeng-acupadapedomaninisehinggadihara-pkan mutu pemeriksaan laboratorium dapat merata disemuajenisdantingkatlaboratorium,sertakemampuandapat terus ditingkatkan.

Kami menyadari buku ini belum sempurna, oleh karenaitu usul perbaikan sangat kami harapkan untuk penyem-purnaan buku ini di masa yang akan datang.

Jakarta, Januari 2006DIREKTUR BINA PELAYANAN PENUNJANG

MEDIK

Kata Pengantar





7/48




iii

Sambutan

Saat ini Tuberkulosis merupakan masalah kesehatan masyarakat di Indonesia. Jum-lah Pasien TB di Indonesia menempati urutan ketiga terbanyak di dunia. Kerugian

yang diakibatkannya sangat besar, baik dari aspek kesehatan maupun dari aspek

sosial dan ekonomi.

WHOsejakawaltahun1990-antelahmemperkenalkanstrategipenanggulangan

TB yang dikenal sebagai strategi DOTS (Diretly Observed Treatment Shortourse).

Strategi tersebut dinilai sebagai strategi intervensi yang sangat cost-eective dan

dianjurkanolehWHOdanBankDuniauntukditerapkansecaraterpadupadasetiap

unit pelayanan kesehatan. Target utama pengendalian TB ini adalah menemukanpasien TB menular (BTA positi ) sedikitnya 70 % pada akhir tahun 2005 dan menyem-

buhkan pasien TB yang diobati sedikitnya 85 %.

Dengan memprioritaskan pada penemuan pasien TB dengan BTA positi, maka labo-

ratorium merupakan kuni utama dalam mendiagnosa pasien TB. Hal ini ditegaskan

pada komponen kedua strategi DOTS, yaitu penegakan diagnosis menggunakan

pemeriksaan mikroskopis.

WalaupunstrategiDOTStelahdiadopsisejaktahun1995,dilapangantetapmasihdijumpaikendala-kendalaterutamadalamhalkualitaspemeriksaanlaboratorium.

Berdasarkan hal tersebut, maka dirasakan perlu adanya suatu standar pemeriksaan

mikroskopis TB di seluruh laboratorium.

Kami menyambut gembira dengan diterbitkannya Buku Pedoman Pemeriksaan

Mikroskopis Tuberkulosis ini, diharapkan buku ini dapat berguna bagi petugas di

lapangan sehingga pemeriksaan dahak mikroskopis TB dapat sesuai dengan standar

dan kualitas yang telah ditetapkan.

TaklupakamisampaikanterimakasihatasdukungandankerjasamaDirektoratBina

PelayananPenunjangMedik,DirektoratJenderalPelayananMedik,sertakepada

semua pihak yang tidak dapat kami sebutkan satu persatu, yang telah menyum-

bangkan tenaga dan pikiran demi tersusunnya buku ini.

Jakarta, Februari 2006





8/48




Tujuandaripanduaniniadalahuntukpenggunaanpraktispetugasteknislaborato-rium dalam melakukan pemeriksaan mikroskopis dahak langsung untuk menemukan

kuman Basil Tahan Asam (BTA) dalam upaya menegakkan diagnosis TB, serta sistem

penatatan dan pelaporan yang dibutuhkan.

Dalam program pengendalian TB, diagnosis ditegakkan melalui pemeriksaan dahak

secaramikroskopislangsungyangdiambil3kaliberturut-turut:Sewaktu-Pagi-

Seaktu (SPS).

Pemeriksaan3spesimen (SPS)dahaksecaramikroskopis langsungmenjadipili-

han, karena nilainya setara dengan pemeriksaan dahak seara kultur atau biakan.

Pemeriksaan kultur memerlukan aktu lebih lama (paling epat sekitar 6 minggu)

dan mahal.

Tujuanpemeriksaanmikroskopisdahakadalah:

Menegakkan diagnosis TB

Menentukan potensi penularan

Memantau hasil pengobatan pasien

PENDAHULUAN1


9/48




2

wAKTU PENGUMPULAN SPESIMEN

Dibutuhkan tiga spesimen dahak untuk menegakkan diagnosis TB seara mikrosko-

pis.Spesimendahakpalingbaikdiambilpadapagihariselama3hariberturut-turut

(pagi-pagi-pagi),tetapiuntukkenyamananpenderitapengumpulandahakdilakukan

:SewaktuPagiSewaktu(SPS)dalamjangkawaktu2hari.

Sewaktuhari-1 (dahak seaktu pertama = A)

KumpulkandahakspesimenpertamapadasaatpasienberkunjungkeUPK(UnitPelayanan Kesehatan)

Beri pot dahak pada saat pasien pulang untuk keperluan pengumpulan dahak

pada hari berikutnya.

Pagihari-2 (dahak pagi = B)

Pasien mengeluarkan dahak spesimen kedua pada pagi hari kedua setelah ban-

gun tidur dan membaa spesimen ke laboratorium.

Sewaktuhari-2 (dahak seaktu kedua = c)

Kumpulkan dahak spesimen ketiga di laboratorium pada saat pasien kembali ke

laboratorium pada hari kedua saat membaa dahak pagi (B).

TEMPAT PENGUMPULAN DAHAK

Pengumpulan dahak dilakukan di ruang terbuka dan mendapat sinar matahari lang-

sung atau di ruangan dengan ventilasi yang baik, untuk mengurangi kemungkinanpenularan akibat perikan dahak yang ineksius.

Jangan mengambil dahak di ruangan tertutup dengan ventilasi yang buruk, mis-

alnya:

Kamar keil / toilet Ruangkerja(ruangpendaftaran,ruang pengumpulansampel, laboratorium,

dsb)

PENGUMPULAN DAHAK2


10/48




Ruang tunggu, ruang umum lainnya.

PENGUMPULAN DAHAK

Petunjuksebelumpengumpulandahak

PENGUMPULAN DAHAK2

Periksa Formulir permo-

honan Laboratorium TB 05

Lengkapi isian formulir

Tandai () untuk DiagnosisatauFollow-up

Berilabelyangjelaspadadindingpotdahak

sesuai dengan nomor identitas sediaan dahak

(TB 06)

Labelditempelkanpadadindingpot,jangan

pada tutupnya

Pot dahak sekali pakai (tidak harus steril), di-

Formulir Permohonan Laboratorium TB untuk pemeriksaan dahak (TB 05)


11/48




4

cARA PENGUMPULAN DAHAK

Beripetunjukpadapasienuntuk:1. Kumur dengan air sebelum mengeluarkan dahak

2. Bila memakai gigi palsu, lepaskan sebelum berkumur

3. Tarik naas dalam 2 3 kali dan setiap kali hembuskan naas

dengan kuat

4. Letakkan pot yang sudah dibuka dekat dengan mulut dan keluarkan dahak ke

dalam pot

5. Batukkan dengan keras dari dalam dada

6. Tutup pot dengan rapat dengan ara memutar tutupnya7. Setelah mengeluarkan dahak, bersihkan mulut dengan tissue, kemudian buang

tissue di tempat sampah yang bertutup, kemudian ui tangan

Bila perlu hal di atas dapat diulang sampai mendapatkan dahak yang berkualitas

baikdanvolumeyangcukup(3-5ml)

Bila dahak sulit dikeluarkan, dapat dilakukan hal sebagai berikut:

1. Lakukan olah raga ringan kemudian menarik naas dalam beberapa kali. Bila

terasa akan batuk, naas ditahan selama mungkin lalu disuruh batuk.

2. Malam hari sebelum tidur, banyak minum air atau menelan 1 tablet gliseril

guayakolat 200 mg.

Bilaspesimenjelek,pemeriksaantetapdilakukandengan:

1. Mengambilbagianyangpalingmukopurulen/kentalkuningkehijauan

2. Diberi atatan baha spesimen tidak memenuhi syarat / air liur

Bila tidak ada spesimen dahak yang dapat dikeluarkan, pot dahak harus dibuang,tidak dapat digunakan untuk pasien lain.

Jangan berdiri di depan pasien saat pengumpulan

PENGUMPULAN DAHAK2


12/48




KUALITAS SPESIMEN

Pengumpulan spesimen diulang bila :

Spesimenjelasairliur Data pada pot dahak tidak sesuai dengan data dalam ormulir permo-

honan laboratorium TB (ormulir TB 05)

Dahak mukoid Dahak purulen

Bukan dahak, tetapi air liur (encer dan

seperti air, atau sebagian besar terdiri dari

gelembung-gelembung)

Dahak terampur darah

X

PENGUMPULAN DAHAK2


13/48




6

Spesimen dikumpulkan bukan dalam pot dahak

REGISTRASI SPESIMEN

Identitas spesimen harus diatat lebih dahulu pada ormulir TB 04 sebelum

PENGUMPULAN DAHAK2

Register Laboratorium (TB 04)

Formulir Permohonan Laboratorium TB (TB

1

02/05/757 A

3

4

2

5


14/48




diproses.

Keterangan bagan :

1. Periksa data pasien di pot dahak dan ookkan dengan yang ada di ormulir

permohonan laboratorium TB (Formulir TB 05)

2. Pindahkan data pasien dari ormulir permohon laboratorium TB (TB 05) ke register

laboratorium TB (Formulir TB 04)

3. Tulis nomor register laboratorium pada ormulir TB 04.

4. Tulis nomor register laboratorium pada ormulir permohonan laboratorium TB(TB 05)

5. Berilah tanda pada kolom yang sesuai di register laboratorium alasan pemeriksaan

dahak sesuai ormulir permohonan laboratorium TB.

Untuk setiap pasien, gunakan nomor identitas sediaan yang sama dan beri huru

A,B,c untuk identikasi spesimen :

Seaktu (A) Pagi (B) Seaktu (c)

PENGUMPULAN DAHAK2


15/48




8

Spesimen air liur harus dilaporkan pada ormulir permohonan laboratorium TB(TB 05)

ALAT-ALAT YANG DIBUTUHKAN

APLIKATOR dari bambu/kayu yang bersih lebih baik, sebab:

Dapat lebih epat memisahkan bagian yang purulen dari air liur Dapat mengangkat dahak lebih banyak daripada ose Lebih mudah didapat dan lebih aman karena dapat langsung dibuang

4

Kacasediaanyangbaru,bersih,janganmemakai ulang kaa sediaan yang telah

Botol berisi pasir dandisinektan (alkohol70% / lisol) untukmembersihkan ose

Aplikator dari bambu/lidi

lancip,bambu/lidiujung

tidak rata atau ose.

Lampu spiritus/bunsen

wadah pem-

buanganuntuk aplika-tor

wadah pem-buanganberisi disinek-tan (misalnyalisol 5%)

PEMBUATAN SEDIAAN APUS3


16/48




Pemakaian lebih epat

MEJA KERJAharus kokoh, kedap air, mudah dibersihkan dengan disinektan.

cARA MEMBUAT SEDIAAN APUS

Satu kaa sediaan digunakan hanya untuk satu spesimen dahak

Spesimen dahak dengan bagian

yang purulen (A) di dalam air liur (B)

Pilih danambil

bagian dari

dahak yang

purulen

meng-

gunakan

ose atau

lidi yang

Pola 2 m x 3 m

A

B

3 m

Tulis nomor identitas pasien pada

bagianujungkaca.Bilamenggu-

nakan kaa rosted tulis dengan

meng-gunakanpensil2Bpada

bagian yang buram/rosted. Bila

menggunakan kaa biasa, tulis

dengan spidol permanen pada

stiker yang dilekatkan di balik

Kode Kabupaten/ Kode UPK

Nomor sediaanwaktu pengumpulan

2 m



17/48




10

Jangan terlalu tipis untuk menghindari

apusanmenjadikeringsebelumdiratakan.

Untukmeratakansediaanbuatspiral-spiral

keil seaktu apusan setengah kering

dengan menggunakan lidi lanip sehingga

didapat sebaran lekosit lebih rata dan area

baa lebih homogen.

Janganmembuatspiral-spiralkecilpada

apusan yang sudah kering, karena dapat

terkelupasdanmenjadiaerosolyang

berbahaya.

BAGAIMANA MEMBUAT SEDIAAN APUS YANG BAIK

Ose yang telah digunakan dielupkan

dalam botol pasir disinektan, kemudian

bakar sampai ose membara

Bila menggunakan lidi, langsung dibuang

ke dalam botol berisi disinektan.

cara membuat sediaan apus



18/48




Sediaan apus yang baik ialah :

Berasaldaridahakmukopurulen,bukanairliur.

Berbentukspiral-spiralkecilberulang(oil type), yang tersebar merata, ukuran

2 x 3 m.

Tidakterlalutebalatautipis.

Setelahdikeringkansebelumdiwarnai,tulisanpadasuratkabar4-5cmdibawah

sediaan apus masih terbaa.

cara penanganan dahak yang berampur darah

1. Dahak dengan darah sedikit:

Pilih bagian dahak yang tidak mengandung darah, dan buat sediaan seperti

biasa

2. Dahak dengan darah sedang

Buatsediaan,kemudianksasi,genangidenganairbersih/aquadeslaludigoyang-

goyang sampai arna merah darah hilang. Lalu air dibuang dan bilas lagi dengan

airkemudianwarnaidenganZiehl-Neelsen.

cara penanganan dahak yang ener

Keringkan di udara.

Setelah kering lakukan ksasi

dengan pemanasan.

Pastikan apusan mengha-

dap ke atas Leatkan 3 x melalui api

dari lampu spiritus.

Gunakanpinsetataupenjepit

kayu untuk memegang kaaPemanasan yang berlebihan akan merusak hasil. cui tangansetelah selesai

membuat sediaan

apus.

Sediaan yang baik

dapat dinilai dengan

ara membaa tulisan

di baahnya

Keringkan

apusan di atas

rak sediaan,

hindari sinar

matahari lang-

sung.



19/48




12

5

UntukmewarnaisediaanapusdenganpewarnaanZiehl-Neelsendiperlukan:

ALAT DAN BAHAN PEwARNAAN4

Rak sediaan untuk meletakkan

sediaan. Rak diletakkan di atas

bak ui atau baskom.

Pinset atau

Penjepitkayu

Air mengal i r

atau botol sem-

Pengatur aktu

Methylene blue0,3%

carbol uhsin0,3%

Asam alkohol(3% Hcl dalam etanol)

Rak untuk mengeringkan sedi-

aan yang telah diarnai.Lampu spiritus

Sulut api


20/48




Letakkan sediaan dengan bagian

apusanmeng-hadapkeataspadarak

yang ditempatkan di atas bak cuci atau

baskom, antara satu sediaan dengan

sediaanlainnyamasing-masingberjarak

kuranglebih1jari.Jumlahmaksimum

Genangi seluruh permukaan sedi-aan dengan arbol uhsin.

Saring zat arna setiap kali akan

melakukan pearnaan sediaan

Panasi dari bawah dengan menggu-

nakan sulut api setiap sediaan sampai

keluar uap.

Diamkan selama minimal 5 menit.

Waktuyanglebihlamajugaboleh,tetapi

pewarna di atas sediaan tidak boleh

Bilassediaandenganhati-hatidengan Jangan ada percikan ke sediaan lain

12

3 4

5

PEWARNAANMETODAZIEHL-NEELSEN


21/48




14

PEWARNAANMETODAZIEHL-NEELSEN

Miringkan sediaan menggunakanpenjepitkayuataupinsetuntuk

membuang air

Genangi dengan asam alkohol sam-pai tidak tampak arna merah arbol

uhsin

Genangi permukaan sediaan

dengan methylene blue selama

Miringkan sediaan untuk mengalirkan

7

8 9

10 11

Bilas sediaan dengan air mengalir

Jangan ada perikan ke sediaan lain

Keringkan sediaan pada rak pengeringJangan keringkan dengan kertas tissue

6


22/48




Hasil pearnaan apusan dengan teknik pembuatan yang kurang baik

Sediaan apus yang telah diarnai dengan

Terlalu tebal Terlalu tipis

Kurang di tengah, terlalu tipis

dan kurang dekolorisasi

Pearnaan tidak merata, ukuran

terlalu besar

PEWARNAANMETODAZIEHL-NEELSEN5


23/48




16

PEMBAcAAN SEDIAAN APUS

Sediaan apus harus diperiksa seara sistematis untuk memastikan baha hasilyang dilaporkan telah meakili seluruh bagian sediaan. Jangan memeriksa sediaan

sebelum kering.

Langkah-langkahpembacaansediaanapus:

Gunakanlensaobjektif10xuntuk

menetap-kanfokusdanmenemukan

lapang pandang. Periksa sediaan untukmenentu-kankualitassediaan.Pada

sediaan dahak umumnya ditemukan

lebih banyak sel lekosit atau sel radang

Teteskan satu tetes minyak

emersi, aplikator minyak emersi

tidak boleh menyentuh kaa

objek.Tetesanharusjatuhbebaske permukaan sediaan apus

agar aplikator minyak emersi

tidak terkontaminasi dengan

Putarlahlensaobjektif100xdengan

hati-hatikeatassediaanapus.

Jangansekali-kalilensamenyentuhkaa sediaan.

1

Sesuaikanfokusdenganhati-hatisampaisel-selterlihatdengan

2

3 4


24/48




Sebelum melakukan pembaaan, lakukan penilaian sediaan apus yang telah di-

A. Kualitas dahak

Kualitas dahak yang baik

dinilai dengan melihat di

baah mikroskop, yaitu

terlihat lebih dari 25 leko-

sit (sel radang) per lapangpandang pada pembe-

saran 100 x (10 x pem-

besaranlensaobjektif/

10xpem-besaranlensa

okuler),jugadapatdilihat

sel debu (dust ells) atau

B. Ukuran sediaan apus

Ukuran sediaan apus yang baik

adalah 2 x 3 m, karena dengan

ukuran tersebut dapat dibaa

minimal 100 lapang pandang

sepanjanggaristengah.

c. Kerataan sediaan apus

Dahak tersebar merata, tidak

ter-lihatdaerahyangkosong

padakacaobjek.

D. Ketebalan sediaan apus

Diperiksa dengan ara me -

megangsediaanapus4-5cm

di atas surat kabar atau tulisan

etakan. Ketebalan sediaan

apusdianggapbaikbilahuruf-huru tulisannya masih dapat

A

}

PEMBAcAAN SEDIAAN APUS6

+ 150

lapang

pan-


25/48




18

E. Pearnaan sediaan apus

BTAterlihatjelasberwarnamerahterangdenganlatarbelakangbirutanpaada

sisa-sisazatwarnauhsin.

F. Kebersihan sediaan apus

Sediaanapusharusbebasdarisisa-sisazatwarnauhsin, kotoran serta kristal

yang dihasilkan dari pemanasan berlebih saat pearnaan.

Dekolorisasi yang tidak baik



26/48


27/48




20

Sediaan apus dahak dengan pearnaan

Zielh-Neelsen(banyakselradang)

Sediaan apus air liur dengan pearnaan

Zielh-Neelsen(banyakselepitel)

Lakukan pembaaan sediaan apus seara sistematis untuk memastikan hasil yang

dilaporkan meakili seluruh bagian sediaan.

Pembacaandimulaidariujungkirikeujungkanandandilakukanpadasediaan

yangsel-selnyaterlihat,bilasediaantampakkosong,geserpadalapangpandang

A B

Setelah selesai pembaaan, bersihkan minyak dari sediaan apus dengan meng-

gunakan pelarut organik.

Setelahkering,tempatkansediaanapustersebutdenganhati-hatidalamkotakpenyimpanangunapengontrolankualitasolehlaboratoriumrujukan/cross-check

.IniharusdikerjakanberdasarkanpetunjukyangditetapkanolehProgramTBNa-

Sebelummengujisediaanapus

selanjutnya,bersihkanlensa

dengan menggunakan tissue.



28/48




BTAyangditemukanmenegakkandiagnosisTBdanjumlahBTAyangditemukan

menunjukkanberatnyapenyakit.Olehkarenaitusangatpentinguntukmencatat

dengan benar apa yang terlihat. Skema pelaporan ini mengau pada skala Interna-

tional Union Against Tuberulosis and Lung Diseases (IUATLD).

PELAPORAN7

Apa yang terlihat

Tidak ditemukan BTA minimal dalam 100

lapang pandang

1 9 BTA dalam 100 lapang pandang

10 99 BTA dalam 100 lapang pandang

1 10 BTA dalam 1 lapang pandang,

periksa minimal 50 lapang pandang

Lebih dari 10 BTA dalam 1 lapang

pandang, periksa minimal 20 lapang

Apa yang dilaporkan

BTA negati

TuliskanjumlahBTAyangditemukan/100

lapang pandang

1+

2+

3+


29/48




22

1. Periksa Nomor Register Laboratorium, ookkan dengan ormulir Permohonan

Laboratorium (TB 05)

2. catat hasil pemeriksaan pada Formulir Permohonan Laboratorium (TB 05)3. Beri tanggal dan tandatangani Formulir Permohonan Laboratorium (TB 05)

4. catat hasil pemeriksaan pada Register Laboratorium (TB 04)

5. Kembalikan Formulir Permohonan Laboratorium TB 05 kepada dokter atau UPK

yang mengirimkan

Pelaporandisampaikansecepatnyapadadokterpengirim,petugasharusmenjaga

kerahasiaan hasil laboratorium.

Jangan menuliskan hasil pemeriksaan pada sediaan karena sediaan dibutuhkan

untukcrosscheck/ujisilangpemantapanmutu.

PELAPORAN7

1

4 2

3

5

Register Laboratorium (TB 04)

catat Hasil

Formulir Permohonan Laboratorium TB

Kembalikan ke dokter atau

Beri tanggal dan tandatan-


30/48




PENYIMPANAN8

Hapusdenganhati-hatimin-

yak imersi pada sediaan dengan

menggunakanujungkertastissue

yang bersih.

Untuk setiap sediaan digunakan

satu kertas tissue.

Jangan menggunakan 1 kertas tis-

Simpan sediaan dalam kotak

sediaan seara berurutan

menurut nomor register

laboratorium untuk keper-

luanpemantapanmutu/uji

silang (ross hek) minimal

Kertas tissue yang telah digunakan

dibuang ke tempat pembuangan

yang telah diberi disinektan.


31/48




24

KEAMANAN KERJA9

PenularanTBterjadikarenapercikandahakinfeksiusdiudaraterhiruporanglain.Pemeriksaan dahak yang dilakukan sesuai prosedur standar oleh petugas labora-

toriummenjamintidakakanberisikopenularanTB.

KeamananKerjaLaboratorium:

1. Selain petugas laboratorium tidak diperkenankan masuk ke dalam ruangan

pemeriksaan laboratorium. (Petugas kebersihan dan teknisi alat hanya diperk-

enankanmasuksetelahmempelajarikeamanankerjalaboratoriumdanmenda-

pat izin dari pimpinan unit laboratorium)

2. Setiappetugas laboratoriumhendaknyamenyadaribahwasedangbekerjadenganbahan-bahanyangberbahaya,karenaituharusmengenakanjaslab.

3. Dilarang makan, minum atau merokok di dalam ruangan laboratorium.

4. Dilarangmemakaiperhiasanpadatanganselamabekerjadandilarangmeny-

entuhwajahdengantanganatauperalatanlaboratorium.

5. Dilarang menggunakan pipet dengan mulut.

6. Setelahselesaibekerja,bersihkanmejakerja,peralatandanlantaidengandis-

inektan.

7. Bersihkan tangan setelah melakukan setiap kegiatan. Setelah menyelesaikan

semuapekerjaan,cucilahtangandengansabunsampaibersih.8. Tanggalkanjaslabsebelummeninggalkanruanganlaboratoriumdancucitangan

kembali

9. Pekerjaanadministratifsebaiknyadikerjakandiluarruanganlaboratorium.

10. Ruangan harus mempunyai ventilasi yang baik. Bila ruang memakai Ac, exhaust

fanharusdipasangsetiap6jamselama30menit.

11.Setiaporangyangbekerjadilaboratoriumdianjurkanmelakukanpemeriksaan

kesehatan seara berkala.

12.Penggunaanmaskertidakmenjaminkeamanankerjadantidakdiharuskan.

Pengelolaan limbah :

1. Buang aplikator bambu, lidi lanip bekas pakai, dan kaa sediaan yang sudah

tidak dipakai ke dalam ember yang telah dilapisi kantung plastik dan diisi disin-

ektan

2. Buka tutup pot dahak bekas, isi dengan desinektan sama banyak dengan sisa

dahak, tutup kembali lalu masukkan ke dalam ember yang telah dilapisi kantung

plastik yang telah diisi disinektan untuk dibuang

3. Untuk limbah air (bekas pearnaan) ditampung dulu dalam adah yang diberi

disinektan sebelum dibuang.

4. Semuabahanbekaspakaidirendamdalamdisinfektanselamaminimal12jam,


32/48




KEAMANAN KERJA9

Tuangkan disinektan ke

dalam adah dahak yang te-

lah selesai diperiksa sebelum

Buang adah dahak yang telah

diberi disinektan ke dalam tempat

pembuangan yang telah diberi

Seluruh limbah yang telah direndam

dalam disinektan dibakar atau dikubur

dalam lubang sedalam minimal 1,5


33/48




26

Untukmenjaminketepatanhasilpemeriksaandahakmikroskopis,harusdilakukankegiatan pemantapan mutu yang meliputi:

1. Pendidikan dan pelatihan

2. Pelaksanaan pemantapan mutu internal:

persiapan penderita,

pengumpulan dan penanganan spesimen,

pemeliharaan alat/mikroskop,

ujikualitasreagen/larutanpewarna,

penyusunan prosedur tetap, dan

penatatan serta pelaporan.

3. Pelaksanaan pemantapan mutu eksternal :

Melakukanujisilang/crosscheck.

Mengikutiujiprosiensi/ujipanel.

Supervisi.4. Melaksanakan praktek laboratorium yang benar.

5. Menindaklanjutipemantapanmutu internaldaneksternaldengankegiatan

peningkatan mutu.

PEMANTAPAN MUTU


34/48




LAMPIRAN

POT DAHAK YANG IDEAL

SYARAT :

Sekali pakai. Bahan kuat, tidak boor dan tidak

mudah peah. Tutup berulir, dapat menutup

rapat. Plastikjernih/tembuspandang. Mulut lebar, diameter 6 m. Dapat ditulisi dengan pena per-

Pot dahak yang tidak dian-

jurkan:

Tidak tembus pandang Terlalu keil Tutup tidak berulir

X

X

X

X


35/48




28

LAMPIRAN

FORMULIR PERMOHONAN LABORATORIUM TB (TB 05)


36/48




LAMPIRAN

FORMULIR REGISTER LABORATORIUM TB (TB 04)


37/48




30

LAMPIRAN

DAFTAR TILIK PEMANTAPAN MUTU INTERNAL

No. Kegiatan Ya* Tidak*

1. Mengikuti pelatihan pemeriksaan mikrosko-

pis dahak dalam 3 tahun terakhir.

2. Memberi instruksi yang benar tentang ara

mengeluarkan dahak pada pasien.

3. Menyediakan adah dahak yang sesuai den-

gan persyaratan.

4. Ada SOP mengenai ara pemeriksaan

mikroskopis dahak:

MembuatapusansesuaidenganSOP.

Mewarnaisediaanapusmenggunakan

pearnaan Ziehl Neelsen sesuai dengan

SOP.

Melakukanpembacaansediaanapus

sesuai SOP.

MelaporkanhasilpembacaansesuaiSOP.

5. Melakukanujikualitasreagenmenggunakan

kontrol positi (1+) dan negati.

6. Melakukan pemeliharaan berkala mikroskop

dan peralatan lain.

7. Tidak menggunakan reagensia kadaluarsa.

8. Pemeriksaan ulang oleh pengaas.

9. Menyimpanseluruhsediaansekurang-

kurangnya selama 3 bulan (untuk ross

check/ujisilang).

* Beri tanda ( ) pada kolom yang sesuai


38/48




BAGIAN-BAGIANMIKROSKOP

Bagianpentingdarimikroskopadalahlensaokuler,lensaobjektif,tabungmikroskop,

makrometer/pengatur okus kasar, mikrometer/pengatur okus halus, revolver/lem-

pengobjektif,lengan,mejasediaan,penjepitsediaan,skala,kondensor,pengatur

iris/diaragma, penggeser sediaan dan pengatur lampu.

A. BAGIAN MEKANIK

1) Kaki,bentuknyabermacam-macamtergantungpabrikpembuatnya,ada

yang berbentuk V, bulat, segi empat.

2) Lengan menghubungkan kaki dan tabung mikroskop (untuk dipegang

pada aktu mengangkat mikroskop).

3) Tabung mikroskop, menghubungkan antara lensa okuler dan lensa ob-

jektif,merupakanjalancahaya.Padamikroskopberprismaantaratabung

mikroskopdanlempengobjektifterdapatlensaprisma.4) Makrometer (Pengatur okus kasar).

Untukmenggerakkanmejasediaankeatasdankebawahsecaramakro.

5) Mikrometer (Pengatur halus).

Untukmenggerakkanmejasediaankeatasdankebawahsecaramikro

sehinggaobjekdapatterlihatdenganlebihjelas.

6) Pengatur kondensor, untuk menggerakkan kondensor ke atas dan ke

baah.

7) Pengatur iris/diaragma, untuk mengatur kekuatan ahaya.

8) Mejasediaan,untukmeletakkankacasediaan.

9) Penjepitsediaanuntukmenjepitkacasediaan.

10) Penggeser sediaan, berungsi menggeser kaa sediaan ke depan dan ke

belakang atau ke kiri dan ke kanan untuk mendapatkan lapangan pandang

yang baik.

LAMPIRAN

MIKROSKOP


39/48




32

LAMPIRAN

MIKROSKOP

11) Skala,terletakpadamejasediaanbergunauntukmenandailetakobjekyang terlihat.

12) Lempengobjektifdengan3atau4lubangtempatlensaobjektifmelekat,

dan dapat diputar.

B. BAGIAN OPTIK

1) Lensa okuler

Lensayangberhadapandenganmata,terletakdiujungtabungmikroskop,

dapat diangkat dengan menariknya ke atas. Ukuran pembesaran 5 x dan 10x. Untuk pemeriksaan dahak BTA, digunakan yang 10 x. Fungsi dari lensa

okulermemberikanperbesarankeduakalinyapadabenda/objek.

2) Lensaobjektif

Lensaobjektifberadatepatdibawahtabungmikroskop,melekatpada

lempengobjektif.Lensainiberfungsimemberipembesaranpertamapada

benda.Terdapatobjektifdenganperbesaran10x(pembesarankecil),40x

/45 x (pembesaran sedang) dan 100 x (pembesaran besar). Ukuran lensa

dapatdiaturdenganmemutarlempengobjektif,bilakedudukanlensa

sudah tepat akan terdengar bunyi klik. Untuk pembesaran 100 x sediaanharus ditetesi minyak emersi.

3) Kondensor

Fungsikondensoradalahmemfokuskancahayaagarmenjadikuatsehingga

jatuhsebagaititikcahayadiatassediaan.Kondensordapatdinaikturunkan

denganmemutar-mutarpengatur kondensor.Bila tidakmemerlukan

ahaya yang terlalu kuat maka kondensor diturunkan. Pada pemeriksaan

dahak kondensor dinaikkan sampai maksimal. Pada kondensor terdapat

jugatempatlteryangbersifatmenyaringcahaya,tetapipadapemeriksaanmikroskopik dahak, lter ini tidak digunakan.

4) Iris/Diaragma

Terletak pada kondensor, berungsi mengatur banyak sedikitnya ahaya


40/48




LAMPIRAN

MIKROSKOP


41/48




34

yang masuk ke dalam mikroskop. Untuk pemeriksaan BTA diaragma harusdibuka maksimal.

5) Sumber ahaya

Di baah kondensor terdapat sumber ahaya yang dapat berupa ermin

ataulampu.Untukcahayayangjauh,digunakancermindatar,sedangkan

untukcahayadekat(misalnyamenggunakanlampumeja)digunakan

ermin ekung.

Untukdapatmelihatbendaatauobjekdenganmikroskopmakaperludiketahui

prinsipkerjamikroskopdancarapenggunaannya.

A. PRINSIP KERJA MIKROSKOP

cahaya yang berasal dari sumber ahaya (ermin atau sinar lampu) diteruskan ke

diafragma,kondensordankacasediaanyangdiperiksa.Cahayadarilensaobjektif

diteruskanmelaluitabungmikroskopkelensaokulerdanselanjutnyaditerimaoleh

matasehinggaobjekterlihat.

B. cARA MENGGUNAKAN MIKROSKOP UNTUK PEMERIKSAAN DAHAK

1) Letakkanmikroskopdimejayangpermukaannyadatar, tidak licindan

dekat sumber ahaya.

2) Bila menggunakan sumber ahaya lampu :

a) Atur tegangan lampu ke minimum.

b) Nyalakan mikroskop memakai tombol ON.

c) Sesuaikandenganpelan-pelansampaiintensitascahayayangdi-

inginkan terapai.

3) Bila menggunakan ermin, arahkan er-min ke sumber ahaya.

4) Letakkan sediaan yang telah diarnai ke

atasmejasediaan.

5) Putarlempengobjektifkeobjektif10x.

6) Atur dengan tombol pengatur okus kasar

dan pengatur okus halus sampai sediaan

terlihatjelas.

Selalu gunakan tombol pengatur ousuntukmenurunkanmejasediaanmenjauhi

LAMPIRAN

MIKROSKOP


42/48




lensa

7) Sesuaikanjarakantarpupilsampaigambarkiridangambarkananmenyatu

dengancaramenggeser-geserkedualensaokulerkarenasetiaporang

mempunyaijarakantarpupilyangberbeda-beda).

8) Fokuskan gambar dengan mata kanan dengan ara melihat ke dalam

okuler kanan dan sesuaikan dengan tombol pengatur ous halus.

9) Fokuskan gambar dengan mata kiri dengan ara melihat ke dalam okuler

kiri dan putar. inin penyesuai diopter sampai didapatkan gambar yang

palingjelas,baikuntukmatakirimaupunmatakanan.

10) Buka iris/diaragma sampai 70 80%, hingga lapangan pandang terang

dengan merata.

11) Teteskanminyakimersidiatassediaan(aplikatorjanganmenyentuhsedi-

aan)danputarlensaobjektif100xketempatnyasampaiberbunyiklik.

12) Fokuskandenganmenggunakantombolpengatur fokushalus(jangan

menggunakan tombol pengatur okus kasar sebab dapat menyebabkan

pecahnyalensaobjektifmaupunkacasediaan)sampaididapatkangambaryangpalingjelas.

13) Gunakan pengatur tegangan lampu untuk mendapatkan ahaya yang

tepat.

LAMPIRAN

MIKROSKOP


43/48




36

14) Begitusediaanselesaidibaca,putarobjektif100xmenjauhikacasediaan,tempatkanobjektif10xdiatassediaan,lalusediaandiambil.

15) Bila telah selesai, atur kembali pengatur tegangan lampu ke minimum dan

matikan mikroskop dengan menekan tombol OFF.

16) Setiapselesaimenggunakanmikroskop,bersihkandenganhati-hatiminyak

emersidarilensaobjektif100xdenganmenggunakankertaslensa/kain

halus, masukkan dalam kotak mikroskop yang telah dikontrol kelembaban-

nya dengan menempatkan lampu 5 att yang menyala.

PERAwATAN MIKROSKOP

Jangansekali-kalimembongkarbagiandalammikroskop .

MEMBERSIHKAN LENSA

Untuk membersihkan lensa sebaiknya gunakan Ethyl ether atau pembersih

lensayangsesuaianjuranpabrik.Beberapabahanpembersihdapatmerusak

permukaan lensa atau melarutkan perekat lensa setelah digunakan beberapa

aktu.

Bahanpembersih Penggunaanjangkapanjang Pengunaansekali-sekali

Rekomendasi pabrik

Ethyl ether/ethanol

Alkohol X

Bensin X

Aseton/ keton X

Xylol X X

Gunakan sesedikit mungkin airan pembersih. Letakkan sedikit airan pada

kertas lensa untuk membersihkan.

Kertas lensa adalah yang terbaik untuk membersihkan lensa, dapat pula

digunakan kain halus (fannel).

Kertas tissue dapat menggores permukaan lensa.

LAMPIRAN

MIKROSKOP


44/48




Jangan menyentuh

bola lampu saat mema-

sang, gunakan tissue

SUMBER cAHAYA Jangansekali-sekalimenyentuhpermukaanbolalampudengantangantelan-

jang,karenalemakkulityangtertinggalakanmengurangiterangnyasinar.

Gunakankertastissue/kertaslensa/pembungkuslampuuntukmemegangbola

lampu saat memasangnya ke mikroskop.

Sebaiknyaselalutersediacadanganlampudansekering.Pastikanvoltaseyang

digunakan sesuai, 110V atau 220V, dan bilamana perlu gunakan stabilisator

voltase.

Harusadaventilasiyangcukupagarpanasyangdihasilkanlampudapatdiatasi.Sebelum menyalakan lampu, putarlah regulator voltase ke minimum. Setelah

Penghembus udara

LAMPIRAN

MIKROSKOP


45/48




38

Okulerharustetappadatempatnya,jamurataudebudapatmasukmelaluilubangkosongtempatobjektifbilalensatidakterpasang.Bilalensaadayang

hilang, tutup rapat dengan penutup yang tersedia.

Bila gambar terlihat buram atau ada bintik hitam, periksa adanya debu atau

kotoranpada lensaobjektif,okuler,kondensor,dankacasumbercahaya.

Bintik hitam bergerak bila okuler diputar, berarti debu pada okuler. Bintik

hitam bila sediaan digerakkan, berarti debu pada kaa sediaan.

Debu pada lensa dapat dihilangkan dengan menggunakan sikat halus atau

dengan meniupkan udara dengan penghembus udara di atas permukaan

lensa.

PEMELIHARAAN BAGIAN-BAGIAN MEKANIK DARI MIKROSKOP

SULIT DIGERAKKAN

Haliniterjadikarenaakumulasidebuataukarenasaluranpenggeser/rakdan/roda

gigitelahmenjadikasar.Atasidengancaramembersihkankotorandanmeminyak-

inya dengan minyak gemuk/ silione grease. Debu dibersihkan dengan penghembus

udara atau kuas, dapat pula dibersihkan dengan pelarut, misalnya bensin.Gangguaninidapatpulaterjadiakibatadabagianyangmelengkung.

LONGGAR

Haliniseringterjadikarenaulirkondensortelahaus.Laporkanpadateknisialat.

PERTUMBUHAN JAMUR

Jamuryangtumbuhdilensa,tabungokulerdanprismamenyebabkangambar

Jamur

tumbuh

di bagiandalam

kepala

Jamur

tumbuh

dibagian

dalam

tabung

LAMPIRAN

MIKROSKOP


46/48




Kotak penghangat untuk menyimpan mikroskop

Penempatan bahan pengering

LAMPIRAN

MIKROSKOP

Untuk pertukaran udara


47/48




40

LAMPIRAN

cARA PENGIRIMAN SEDIAAN APUS

1. Bungkus sediaan apus dengan kertas tissue satu persatu.

2. Ikat dengan karet agar gulungan tidak terlepas.

Masukkan gulungan kedalam kantong plastik yang tertutup rapat kemudian masu-kkankedalamamplopuntukdikirimkelaboratoriumrujukan

Kirimkansediaanapusdidalamkotaksediaan.

Bilatidaktersediakotaksediaanlakukanpengirimandengancaraberikut:

1. Periksamasing-masingpotdahakdengan menuliskan:

- NamaPasien

- Tanggal

- .............

2. Tutupmasing-masingpotdalam

Kantongbio-hazardsecarabersa-

maan

3. Periksa ulang spesimen dengan

ormulir pemeriksaan4. Letakkankantongbio-hazardyang

sudah disegel ke dalam kotak pen-

giriman

5. Letakkan ormulir dan datar asli ke

dalam kantong segel

6. Aturlah pengiriman agar tidak

bergerak

7. Kemudian masukk an kantong

1 2


48/48



LAMPIRAN

INFORMASI UNTUK PASIEN

1. Dokter/peraat mengirim anda ke laboratorium karena mereka menduga bahamungkinandamempunyaigejalaTB.

2. Untuk mendiagnosa TB dibutuhkan 3 spesimen dahak yang akan dikumpul-

kan:

- Pemeriksaanpertama

- Esokpaginyasebelumsarapan

- Ketikakembalikelaboratoriumkeesokanharinya

3. Contohkualitasdahakyangbaikadalahdariparu-paru,bukandariairliurataulendir hidung.

4. Berkumurdenganairjikaandabarusajamakan,ataujikaandamemakaigigi

palsu (abut terlebih dahulu).

5. Untuk menghasilkan ontoh dahak yang baik:

- Tariknafasdalam-dalam2sampai3kali,hembuskandengankuatsetiapkali

membuang naas.

- Batukkanyangdalammelaluidada.

- Letakkanpotdalamkeadaanterbukadantutupkanpadamulutuntukme-

nampung spesimen dahak.

- Tutupdenganrapatbilatelahselesai.

6. Anda mungkin diminta untuk mengulang pengumpulan dahak untuk mempe-

bookmikroskopis

Documents

Transcript of bookmikroskopis