2 TINJAUAN PUSTAKA

2.1 Deskripsi dan Klasifikasi Ikan Nila (Oreochromis niloticus) Ikan nila berasal dari Afrika bagian timur. Ikan nila memiliki bentuk tubuh

yang pipih ke arah vertikal (compress). Posisi mulutnya terletak di ujung hidung

(terminal) dan dapat disembulkan (Suyanto 2003). Morfologi ikan nila dapat

dilihat pada Gambar 1.

Gambar 1 Ikan nila (Oreochromis niloticus)

(Lim dan Webster 2006)

Menurut Saanin (1984), ikan nila (Oreochromis niloticus) mempunyai

klasifikasi sebagai berikut:

Filum : Chordata

Subfilum : Vertebrata

Kelas : Osteichtyes

Subkelas : Acanthopterygii

Ordo : Percomorphi

Subordo : Percoidea

Famili : Cichlidae

Genus : Oreochromis

Spesies : Oreochromis niloticus

Ikan nila memiliki ciri morfologis yaitu berjari-jari keras, sirip perut torasik,

letak mulut subterminal dan berbentuk meruncing. Selain itu, tanda lainnya yang

dapat dilihat dari ikan nila adalah warna tubuhnya hitam dan agak keputihan.

5

Bagian tutup insang berwarna putih, sedangkan pada nila lokal putih agak

kehitaman bahkan kuning. Sisik ikan nila berukuran besar, kasar dan tersusun

rapi. Sepertiga sisik belakang menutupi sisi bagian depan. Tubuhnya memiliki

garis linea lateralis yang terputus antara bagian atas dan bawahnya. Linea lateralis

bagian atas memanjang mulai dari tutup insang hingga belakang sirip punggung

sampai pangkal sirip ekor. Ukuran kepala relatif kecil dengan mulut berada

di ujung kepala serta mempunyai mata yang besar (Kottelat et al. 1993). Ikan nila

memiliki kemampuan menyesuaikan diri yang baik dengan lingkungan sekitarnya.

Ikan ini memiliki toleransi yang tinggi terhadap lingkungan hidupnya, sehingga

bisa dipelihara di dataran rendah yang berair payau maupun dataran yang tinggi

dengan suhu yang rendah (Trewavas 1982). Ikan nila mampu hidup pada suhu

14-38 oC dengan suhu terbaik adalah 25-30 oC dan dengan nilai pH air antara

6-8,5 (Suyanto 2003).

Perbedaan antara ikan jantan dan betina dapat dilihat pada lubang genitalnya

dan juga ciri-ciri kelamin sekundernya. Pada ikan jantan, di samping lubang anus

terdapat lubang genital yang berupa tonjolan kecil meruncing sebagai saluran

pengeluaran kencing dan sperma. Tubuh ikan jantan juga berwarna lebih gelap,

dengan tulang rahang melebar ke belakang yang memberi kesan kokoh.sedangkan

yang betina biasanya pada bagian perutnya besar (Suyanto 2003). Perbedaan ciri

morfologis antara ikan nila jantan dengan ikan nila betina dapat dilihat pada

Gambar 2.

Gambar 2 Ikan nila jantan dan ikan nila betina

(Suyanto 2003)

6

2.2 Anestesi Anestesi berarti pembiusan, berasal dari bahasa Yunani, yaitu an-" yang

berarti tidak, dan aesthtos " yang berarti kemampuan untuk merasa. Secara

umum berarti suatu tindakan menghilangkan rasa sakit ketika melakukan

pembedahan dan berbagai prosedur lainnya yang menimbulkan rasa sakit pada

tubuh. Penggunaan istilah anestesi pertama kali digunakan oleh Oliver Wendel

Holmes Sr pada tahun 1846. Obat untuk menghilangkan nyeri terbagi dalam

2 kelompok, yaitu analgetik dan anestesi. Analgetik adalah obat pereda nyeri

tanpa disertai hilangnya perasaan secara total. Seseorang yang mengkonsumsi

analgetik tetap berada dalam keadaan sadar. Analgetik tidak selalu menghilangkan

seluruh rasa nyeri, tetapi selalu meringankan rasa nyeri. Beberapa jenis anestesi

menyebabkan hilangnya kesadaran, sedangkan jenis yang lainnya hanya

menghilangkan nyeri dari bagian tubuh tertentu dan pemakainya tetap sadar

(Suryanto 1998).

Anestesi menurut Mckelvey dan Hollingshead (2003) ada 4 tahapan, tahap

pertama atau sering disebut stadium analgesia, hewan masih sadar tetapi

disorientasi dan menunjukkan sensitivitas terhadap rasa sakit berkurang, respirasi

dan denyut jantung normal atau meningkat, semua reflek masih ada, hewan masih

bangun dan dapat juga urinasi, defekasi. Tahap kedua yaitu kesadaran mulai

hilang namun refleks masih ada, pupil membesar (dilatasi) tetapi akan menyempit

(konstriksi) ketika ada cahaya masuk. Tahap kedua atau stadium eksitasi berakhir

ketika hewan menunjukkan tanda-tanda otot relaksasi, respirasi menurun dan

refleks juga menurun. Tahap ketiga atau stadium anestesi, pada stadium ini

biasanya dilakukan operasi. Hewan kehilangan kesadaran, pupil mengalami

konstriksi dan tidak merespon cahaya yang masuk, refleks hilang (refleks

palpebrae). Tahapan keempat adalah pernafasan dan jantung terhenti, dan hewan

mati. Indikator tahapan anestesi antara lain aktivitas refleks (refleks palpebrae,

pedal refleks, cornea refleks, refleks laring, refleks menelan), relaksasi otot, posisi

mata dan ukuran pupil, sekresi saliva dan air mata, respirasi dan denyut jantung.

Stadium anestesi dan gejalanya pada ikan menurut Scott et al. (2009) yaitu

stadium eksitasi ditandai dengan peningkatan gerakan opercular atau aktivitas.

Setelah beberapa menit gerakan ikan melambat, menjadi ataksia, berenang tidak

7

seimbang dan mulai memutar ke samping. Kadang-kadang posisi ikan menjadi

dorsal recumbency, depresi, ikan menjadi berada di dasar kolam dan respirasi

meningkat. Tahapan anestesi pada ikan (Bowser 2001) dapat dilihat pada Tabel 1.

Tabel 1 Tahapan anestesi ikan (Bowser 2001)

Tahapan Deskripsi Gejala 0 Normal Kesadaran ada; opercular rate dan otot normal

1 Awal Sedasi Mulai kehilangan kesadaran; opercular rate sedikit menurun; keseimbangan normal

2 Sedasi total Kehilangan kesadaran total; penurunan opercular rate; keseimbangan menurun

3 Kehilangan sebagian keseimbangan

Sebagian Otot mulai relaksasi; berenang tidak teratur; peningkatan opercular rate; bereaksi hanya ketika ada tactile yang kuat dan rangsangan getaran

4 Kehilangan keseimbangan total

Kehilangan keseimbangan dan otot secara total; lambat tetapi teratur opercular rate; kehilangan refleks spinal

5 Kehilangan refleks Kehilangan kesadaran total; opercular lambat dan tidak teratur; denyut jantung sangat lambat; kehilangan refleks

6 Medulla kolaps (stadium asphyxia) Opercular berhenti bergerak; jantung menahan biasanya diikuti dengan gerakan cepat.

Menurut Harms (1998), anestesi pada ikan dilakukan untuk pemeriksaan,

transportasi, diagnostik dan operasi. Prosedurnya yaitu menyiapkan air,

memeriksa kondisi ikan, mengistirahatkan ikan. Penggunaan anestesi yang

berlebihan atau overdosis digunakan untuk euthanasia. Anestesi untuk ikan

biasanya penggunaannya melalui air (perendaman), dan bisa juga dengan cara

anestesi inhalasi (seperti anestesi gas pada mamalia). Anestesi melalui injeksi

efektif digunakan pada mamalia dan tidak efektif pada ikan.

Faktor-faktor yang mempengaruhi respon penggunaan anestetikum antara

lain spesies, kualitas air dan status kesehatan ikan. Berbeda spesies berbeda juga

responnya, spesies dengan berat badan yang berbeda akan menimbulkan respon

yang berbeda pula. Ikan dengan berat badan yang lebih besar akan menimbulkan

respon yang lebih efektif. Ikan dengan lapisan lemak yang tinggi, ikan yang

berumur tua, dan ikan betina gravid (berproduksi) akan memperpanjang durasi

dan recovery akan semakin lama apabila menggunakan anestetikum yang mudah

8

larut seperti MS-222 atau benzocaine. Kualitas air seperti temperatur sangat

mempengaruhi tetapi polanya tidak dapat dipercaya, misalnya MS-222 dan

benzocaine memerlukan suhu tinggi untuk dosis yang tinggi. Keasaman juga

mempunyai efek terhadap respon anestetikum, contohnya sebagian besar

anestetikum bekerja pada air laut tetapi barbiturat bersifat antagonis terhadap ion

Ca2+. Nilai pH juga mempengaruhi ionisasi obat sehingga efek obat menjadi

meningkat. Ikan yang sakit akan menjadi subjek yang jelek pada proses anestesi

(Ferguson 1988).

Ferguson (1988) menyatakan bahwa tipe anestesi dan anestetikum yang

biasa digunakan antara lain anestesi irigasi atau perendaman, jenis anestetikumnya

yaitu MS-222, 2-phenoxyethanol dan benzocaine. Anestesi parenteral contoh

sediaan anestetikumnya adalah alphaxolone (saffan), propanidid (epontol),

sodium pentobarbitone (Nembutal), ketamin hydrochloride (ketalar). Tipe

anestesi yang lainnya yaitu dengan elektrik anestesi.

Anestetikum yang digunakan pada ikan banyak jenisnya, misalnya ethanol,

diethyl ether, halothane, lidocaine, tricaine methanesulfonate (MS-222), eugenol,

ketamin, metomidate, propofol, and carbon dioxide. Dua diantaranya yang sering

digunakan sekarang adalah tricaine methanesulfonate (MS-222) dan eugenol.

Isofluran digunakan sebagai anestesi inhalasi pada mamalia dan burung, dapat

juga untuk ikan dengan cara dicampurkan ke dalam air meskipun ada juga efek

sampingnya (Harms 1998).

Tricaine nama kimianya yaitu 3-aminobenzoic acid ethyl ester

methanesulfonate, ethyl m-aminobenzoate methadesulfonate, methadesulfonate

salt of alkyl aminobenzoate, and methandesulfonate salt of ethyl meta-

aminobenzoate. Nama dagangnya adalah tricaine methanesulfonate (MS-222),

Tricaine-Stm and Meta-caine. Finqueltm and Tricaine-Stm yang biasa digunakan

pada ikan. Ikan yang telah diberi anestesikum Finqueltm and Tricaine-Stm tidak

boleh dimakan sebelum 21 hari setelah pemberian. Komposisinya larut air dan

juga larut dalam lemak. Konsentrasi tricaine 15-330 mg/L. Dosis yang digunakan

disesuaikan dengan jenis anestesi, ukuran, spesies, temperatur air dan tekanan air.

Tricaine lebih baik digunakan dalam air hangat dan tekanan air yang rendah

9

(Bowser 2001). Cara kerja tricaine menurut Lewbart (2001) adalah dengan cara

memblokir saluran sodium dan penggunaanya melalui pakan ikan.

Sediaan sedatif tertentu dalam dosis tinggi akan mendepresi sistem saraf

pusat hingga tingkat tertentu yang dikenal sebagai tahap III dari anestesi umum.

Akan tetapi kecocokan suatu senyawa tertentu sebagai senyawa pembantu dalam

anestesi sangat bergantung pada sifat fisikokimia yang menentukan kecepatan

mulai kerja dan lama kerja dari efek obat. Redistribusi dalam jaringan yang sangat

cepat menentukan lama kerja yang singkat dari obat-obat tersebut, yang sangat

berguna di dalam praktik anestesi (Katzung 2001).

2.3 Kegunaan Anestesi dalam Menanggulangi Stres pada Ikan Stres adalah suatu keadaan yang ditimbulkan oleh faktor-faktor lingkungan

atau faktor-faktor lainnya yang mempengaruhi daya penyesuaian diri dari seekor

hewan melebihi batas-batas daya normalnya, atau mengganggu fungsi-fungsi

normal hewan hingga ke batas harapan untuk dapat bertahan secara jelas-jelas

berkurang. Lingkungan perairan dan ketidakmampuan ikan sebagai hewan

poikilotermik (yang suhunya bergantung pada suhu lingkungan, ini sedikit di atas

atau di bawah) untuk mengatur suhu badannya, telah merubah dan menyesuaikan

anatomi dan fisiologi dari ikan. Rantai kejadian sebagai akibat dari setiap

perubahan patologis, seperti infeksi oleh mikroba, kerusakan-kerusakan oleh

trauma atau defisiensi nutrisipun sangat dipengaruhi oleh kedua faktor di atas.

Pengaruh faktor-faktor stres lebih jelas terlihat pada penyakit ikan dari pada

penyakit-penyakit pada spesies hewan lainnya (Nabib dan Pasaribu 1989).

Tanda-tanda penyesuaian umum (General Adaptation Syndrome = GAS)

yang terjadi tidaklah spesifik secara fisiologik dan biokemik, serta umumnya

berjalan dalam tiga fase yaitu reaksi permulaan (alarm reaction), masa bertahan

(stage of resistance), dimana hewan berusaha menyesuaikan diri untuk tetap

mempertahankan keseimbangan fisiologis (homeostatis) di dalam keadaan-

keadaan lingkungan yang berubah, dan masa kehabisan daya (exhaution), dimana

usaha-usaha adaptasi terhenti dan homeostatispun tidak tercapai (Nabib dan

Pasaribu 1989).

Kejadian-kejadian yang timbul pada GAS dikendalikan oleh sistem

hormonal dan syaraf. Pengeluaran dari hormon-hormon adenocorticotropic

10

(ACTH) dan corticostreroid menyebabkan retensi ion Na+ dan Cl sedang ion K+

dikeluarkan, maka ada penambahan dalam kadar glukosa darah dan metabolisme

nitrogen, sedang kelenjar thyroid distimulasi dan pengeluaran thyroxinnya

bertambah, dalam darah terjadi lymphocitemia dan neurophilia. Kemudian sistem

syaraf simpatik bereaksi secara berlebihan, yang menyebabkan kontraksi limpa,

meningkatkan pernafasan dan kenaikan tekanan darah. Sebagian besar dari efek-

efek ini telah dilaporkan juga pada ikan, meskipun mekanisme pengaturannya

belum diketahui benar (Nabib dan Pasaribu 1989).

Stres yang terjadi pada ikan berkaitan dengan timbulnya penyakit pada ikan

tersebut. Biasanya stres pada ikan diakibatkan perubahan lingkungan akibat

beberapa hal atau perlakuan misalnya akibat pengangkutan atau transportasi ikan-

ikan yang dimasukkan ke dalam jaring apung di laut dari tempat pengangkutan

biasanya akan mengalami shock, berhenti makan dan mengalami perlemahan daya

tahan terhadap penyakit. Kepadatan ikan yang melibihi daya dukung perairan

(carrying capacity) akan menimbulkan persaingan antar ikan tinggi, oksigen

terlarut menjadi rendah dan sisa metabolisme seperti amonia akan meningkat

sehingga dapat menimbulkan stres dan merupakan penyebab timbulnya serangan

penyakit (Nabib dan Pasaribu 1989).

Tingkat stres yang terjadi pada ikan juga berbeda-beda. Kajian yang lebih

mendalam menunjukkan tingkatan stres yang terjadi pada ikan dapat ditelusuri

dengan kandungan kortisol. Banyak hal berkenaan dengan kortisol selama proses

metabolisme, misalnya saat starvasi (puasa), osmoregulasi, pengerahan simpanan

energi untuk migrasi, proses pematangan gonad, pemijahan dan selama stress

yang dialami oleh ikan itu sendiri (Van Ginneken et al. 1997).

Pada saat ditransportasikan, ikan harus dikondisikan dalam keadaan

aktivitas biologis rendah sehingga konsumsi energi dan oksigen juga rendah

sehingga kemungkinan terjadinya stress pada ikan dapat dicegah. Penggunaan

transportasi sistem kering merupakan salah satu cara yang efektif untuk untuk

mengkondisikan ikan dalam keadaan aktivitas biologis yang rendah. Untuk

menurunkan aktivitas biologis ikan dapat dilakukan dengan menggunakan suhu

rendah dan menggunakan bahan metabolik atau anestetikum (Wibowo 2001).

11

Anestesi diperlukan untuk ikan dalam sistem transportasi, kegiatan

penelitian, diagnosa penyakit, penandaan ikan pada bagian kulit atau insang,

pengambilan sampel darah dan proses pembedahan. Pada kegiatan penelitian,

anestesi bertujuan untuk menurunkan seluruh aktivitas ikan untuk menghindari

stress. Ikan dapat menyerap bahan anestesi melalui jaringan otot, saluran

pencernaan dengan cara injeksi atau melalui insang. Anestesi melalui insang

adalah cara yang ideal karena konsentrasi bahan anestesi yang digunakan dapat

dikontrol dan stress dapat diminimalkan. Salinitas, suhu, pH, dan oksigen harus

diperhitungkan dalam penggunaan bahan anestesi karena faktor-faktor ini dapat

mempengaruhi aktivitas bahan anestesi, kecepatan metabolisme ikan, dan

kemampuan ikan untuk menyerap bahan anestesi (Gunn 2000).

2.4 Acepromazine Acepromazine tergolong phenothiazine yang berwarna kuning, tidak berbau,

rasanya pahit dan berbentuk bubuk dan cair (Plumb 2008). Menurut Mckelvey

dan Wayne (2003) ada tiga macam kelas sedasi (tranquilizer) yang umum

digunakan dalam kedokteran hewan yaitu phenothiazine, benzodiazepine dan

alpha-2 agonist. Golongan ini bekerja pada susunan syaraf pusat dan

menghasilkan efek penenang pada hewan. Obat-obat ini dapat juga menyebabkan

ataksia, dan prolapsus membran niktitan. Hanya alpha-2 agonist yang mempunyai

efek analgesik, sedangkan yang lainnya tidak punya. Efektif pada berbagai spesies

hewan dan dapat dikombinasikan dengan obat lainnya, misalnya atropin, opoid

dan ketamin. Pemberian phenothiazine dapat melalui oral, intra muscular, intra

vena dan sub kutan. Efek yang ditimbulkan golongan phenothiazine antara lain

sedasi, antiemetik, antiaritmia, antihistamin, vasodilatasi pembuluh darah,

perubahan perilaku dan prolapsus penis pada kuda. Efek samping acepromazine

yaitu hipotensi, anemia dan dehidrasi. Pada kuda dan anjing ras boxer penggunaan

acepromazine sebaiknya dihindari.

Acepromazine digunakan sebagai tranquilizer pada anjing, kucing dan kuda.

Acepromazine bersifat anti-kholinergik, anti-emetik, antispasmodik, antihistamin,

dan memblok alpha-adrenergik. Acepromazine menyebabkan hipotensi dan

menurunkan vasomotorik. Dapat juga berpengaruh terhadap respirasi, denyut

jantung dan suhu tubuh (Forney 2004).

12

Acepromazine adalah golongan phenothiazine neuroleptik yang mempunyai

potensi untuk memblok post-sinapsis reseptor. Acepromazine mendepresi susunan

syaraf pusat (CNS) sehingga menghasilkan efek sedasi, relaksasi otot, dan

menurunkan aktifitas refleks. Selain itu efek lainnya adalah anti kholinergik,

antihistamin dan memblok alpha-adrenergik. Acepromazine seperti golongan

phenothiazine lainnya dimetabolisme di hati dan ekresinya melalui urin.

Acepromazine digunakan sebagai agen preanestesi, sebagai pengontrol satwa liar,

antiemetik pada anjing dan kucing dan sebagai tranquilizer pada kuda.

Acepromazine akan lebih efektif apabila dikombinasikan dengan tranquilizer

lainnya dan dengan senyawa yang mempunyai potensi sebagai anestesi general.

Tranquilizer harus diberikan dalam dosis yang kecil selama anestesi general dan

hewan yang lemah, hewan dengan penyakit jantung, hypovolemik atau shock.

Acepromazine jangan digunakan pada hewan yang lemah, betina bunting, breed

giant, greyhound, dan boxer. Hasil penelitian menyatakan pada hewan pengerat

acepromazine menyebabkan embryotoxycity. Phenothiazine tidak boleh

digunakan pada hewan yang mempunyai depresi tulang belakang (Crowell-Davis

dan Murray 2005).

Crowell-Davis dan Murray (2005) menyatakan bahwa phenothiazine

mendepresi sistem reticular aktif dan bagian otak yang mengontrol pergerakan

tonus otot, tingkat metabolisme basal, dan keseimbangan hormonal. Efek samping

pada cardiovascular adalah hipotensi, bradicardia, pembuluh darah kolaps, dan

tachicardya. Acepromazine memiliki waktu onset 15 sampai dengan 60 menit

setelah pemberian dan durasinya antara 3 sampai dengan 7 jam pada anjing dan

kucing.