Uaa Terong Belanda

Irma l. H. Sinaga : Skrining Fitokimia Dan Uji Aktivitas Antioksidan Dari Ekstrak Etanol Buah Terong Belanda (Solanum betaceum Cav.), 2009.

SKRINING FITOKIMIA DAN UJI AKTIVITAS ANTIOKSIDAN DARI EKSTRAK ETANOL BUAH TERONG BELANDA (Solanum betaceum

Cav.)

SKRIPSI

OLEH: IRMA L. H. SINAGA

040804062

FAKULTAS FARMASI UNIVERSITAS SUMATERA UTARA

MEDAN 2009


SKRINING FITOKIMIA DAN UJI AKTIVITAS ANTIOKSIDAN DARI EKSTRAK ETANOL BUAH TERONG BELANDA (Solanum betaceum

Cav.)

SKRIPSI Diajukan untuk Melengkapi Salah Satu Syarat untuk Mencapai

Gelar Sarjana Farmasi pada Fakultas Farmasi Universitas Sumatera Utara

Oleh:

IRMA L. H. SINAGA NIM 040804062

FAKULTAS FARMASI UNIVERSITAS SUMATERA UTARA

MEDAN 2009


KATA PENGANTAR

Segala puji, hormat serta syukur penulis persembahkan kepada Allah yang

hidup di dalam nama Yesus Kristus, Tuhan dan Juru Selamat Yang Mulia atas

segala kemurahan-Nya penulis dapat menyelesaikan penelitian dan penulisan

skripsi ini yang dibuat untuk memenuhi salah satu syarat mencapai gelar Sarjana

Farmasi di Fakultas Farmasi USU Medan.

Ucapan terima kasih tak terhingga buat seorang wanita yang luar biasa

tangguh yang terus berjuang memberi yang terbaik kepada penulis, my lovely

mom Jenny Dermi Gultom. Pernyataan maaf penuh penyesalan juga penulis

sampaikan untuk ayahanda tercinta Alm. Kaman Sinaga, karena tak mampu

penuhi segala mimpi dan harapan yang telah dipercayakan kepada penulis. Juga

ucapan terima kasih buat abang Renhard ( my king dragon), adik Ani (my sweet

honey), adik Beatrich (my sweet princess) dan adik Fransiskus (my youngest

dragon) atas segala doa, dukungan dan kasih sayang kepada penulis sehingga

penulis tetap semangat dan termotivasi dalam menyelesaikan penelitian hingga

penyelesaian skripsi ini.

Penulis mengucapkan terima kasih yang sebesar-besarnya kepada Ibu Dra.

Herawaty Ginting, M.Si., Apt. sebagai Dosen Pembimbing I yang telah sabar

membimbing dan menghadapi penulis terkhusus selama penelitian juga untuk

waktu yang telah diberikan kepada penulis, dan kepada Bapak Drs. Fathur

Rahman Harun, M.Si., Apt. sebagai Dosen Pembimbing II atas semua waktu dan

bimbingan kepada penulis dan secara khusus penulis berterimakasih karena Anda

telah menggantikan posisi Ayahanda tercinta menjadi inspirasi penulis untuk

menyelesaikan penelitian dan bahkan untuk berprestasi kembali.


Penulis juga mengucapkan terima kasih yang sebesar-besarnya kepada:

1. Bapak Prof. Dr. Sumadio Hadisahputra, Apt. sebagai Dekan Fakultas

Farmasi, Ibu Dra. Siti Aman, M.Si., Apt. sebagai Dosen Wali beserta

seluruh staf pengajar Fakultas Farmasi USU Medan yang telah mendidik

penulis.

2. Bapak dan Ibu Dosen Penguji atas kritik dan saran kepada penulis.

3. Teman-teman Farmasi 2004 khususnya anak-anak CaBe LoTiSS, kalian

adalah hadiah terindah dari Tuhan bagiku selama di Farmasi yang terus

mendukung aku di dalam tangis dan juga tawaku, Jose & Dika, Eka Yana

dan seluruh anak-anak KMKS serta semua pihak yang selalu setia

memberikan dukungan kepada penulis.

Akhir kata penulis memohon maaf atas segala keterbatasan dan

kekurangan penulis dalam penulisan skripsi ini. Semoga skripsi ini dapat menjadi

sumbangan yang berarti bagi ilmu pengetahuan.

Medan, Maret 2009

Penulis,

(Irma Lastiur Hilmasari Sinaga)


ABSTRAK

Dalam rangka meningkatkan pemanfaatan antioksidan alami dari

makanan, telah dilakukan penelitian uji aktivitas antioksidan dari ekstrak etanol

buah segar terong belanda (Solanum betaceum Cav.) yang diekstraksi secara

maserasi. Selanjutnya ekstrak dipekatkan dengan alat rotary evaporator dan

dikeringkan dengan freeze dryer.

Ekstrak diuji terhadap DPPH (2,2-Diphenyl-1-picrilhydrazil) sebagai

radikal bebas dengan mengukur absorbansi DPPH pada panjang gelombang 494

nm, 514 nm dan 534 nm pada menit ke-18 dan menit ke-36 sesuai hasil

pengukuran operating time, menggunakan spektrofotometer uv-visibel.

Kemampuan antioksidan diukur sebagai penurunan absorbansi larutan DPPH

setelah penambahan ekstrak.

Hasil pengujian ini menunjukkan bahwa ekstrak etanol buah segar terong

belanda (Solanum betaceum Cav.) memiliki kemampuan antioksidan yang sangat

lemah dalam meredam radikal bebas DPPH. Dalam penelitian ini juga digunakan

vitamin C sebagai pembanding (kontrol positif). Dari hasil pengujian juga

menunjukkan bahwa ekstrak etanol buah segar terong belanda (Solanum betaceum

Cav.) memiliki IC50 sebesar 606.228 ppm pada menit ke-18 dan sebesar 536.132

ppm pada menit ke-36. Sementara vitamin C memiliki IC50 sebesar 28.489 ppm

pada menit ke-18 dan sebesar 24.103 ppm pada menit ke-36.


ABSTRACT

In order to increase the usage of natural antioxidant from food, it had been

tested the antioxidant activity from ethanol extracts of the fresh fruit of tree

tomato (Solanum betaceum Cav.) which extracted by maceration. The extract was

concentrated using rotary evaporator and then dried by freeze dryer.

Extracs were tested by DPPH (2,2-Diphenyl-1-picrilhydrazil) as free

radical where the. absorbance of DPPH was measured at 494 nm, 514 nm and 534

nm in 18th and 36th minutes by used uv-visible spectrophotometer. Antioxidant

ability was measured as the decrease in absorbance of DPPH solutions after the

additions of the extract.

The result show that the ethanol extracts of the fresh fruit of terong

belanda (Solanum betaceum Cav.) were found to have a very weak antioxidant

activities, as evaluated by DPPH free radical scavenging. In this research also

used ascorbic acid such as references (control positive). And showed that IC50

ethanol extract of tree tomato (Solanum betaceum Cav.) was 606.228 ppm in 18th

minutes and was 536.132 ppm in 36th minutes.While that of ascorbic acid was

28.489 ppm in 18th minutes and was 24.103 ppm in 36th minutes.


DAFTAR ISI

Halaman JUDUL ......................................................................................................... .......i

LEMBAR PENGESAHAN ...................................................................................ii

KATA PENGANTAR ..........................................................................................iii

ABSTRAK . .............................................................................................................v

ABSTRACT ...........................................................................................................vi

DAFTAR ISI .........................................................................................................vii

DAFTAR TABEL ...................................................................................... .......xi

DAFTAR GAMBAR ............................................................................................xii

DAFTAR LAMPIRAN .......................................................................................xiii

BAB I. PENDAHULUAN .....................................................................................1

1.1 Latar Belakang .......................................................................................1

1.2 Perumusan Masalah ...............................................................................3

1.3 Hipotesis ................................................................................................4

1.4 Tujuan ....................................................................................................4

1.5 Manfaat ..................................................................................................4

BAB II. TINJAUAN PUSTAKA ..........................................................................5

2.1 Uraian Tumbuhan ..................................................................................5

2.1.1 Daerah Tumbuh . ...........................................................................5

2.1.2 Nama Daerah ................................................................................6

2.1.3 Nama Asing ..................................................................................6

2.1.4 Sistematika Tumbuhan. .................................................................6

2.1.5 Sinonim Tumbuhan . ......................................................................7


2.1.6 Morfologi Tumbuhan ....................................................................7

2.1.7 Kandungan Kimia ............................................................... .......8

2.1.8 Kegunaan ............................................................................ .......9

2.2 Ekstraksi ...................................................................................... .....10

2.3 Radikal Bebas .............................................................................. .....12

2.4 Antioksidan ................................................................................. .....13

2.4.1 Antioksidan Alami .............................................................. .....14

2.4.2 Vitamin C ........................................................................... .....14

2.5 Penentuan Aktivitas Antioksidan ................................................. .....15

2.6 Spektrofotometri UV-Visibel ....................................................... .....17

BAB III. METODOLOGI PENELITIAN ................................................. .....18

3.1 Alat-Alat .................................................................................... ......18

3.2 Bahan-Bahan ............................................................................... .....18

3.3 Pembuatan Larutan Pereaksi ........................................................ .....19

3.3.1 Larutan Pereaksi Bouchardat ............................................... .....19

3.3.2 Larutan Pereaksi Mayer ...................................................... .....19

3.3.3 Larutan Pereaksi Dragendorff ............................................. .....19

3.3.4 Larutan Pereaksi Molish ..................................................... .....19

3.3.5 Larutan Pereaksi Asam Klorida 2 N ...........................................20

3.3.6 Larutan Pereaksi Asam Sulfat 2 N ..............................................20

3.3.7 Larutan Pereaksi Asam Nitrat 0,5 N .................................... .....20

3.3.8 Larutan Pereaksi Timbal(II) Asetat 0,4 M ..................................20

3.3.9 Larutan Pereaksi Besi (III) Klorida 1 % .....................................20

3.3.10 Larutan Pereaksi DPPH 0,5 mM ..............................................20


3.4 Pengambilan dan Pengolahan Sampel .................................................20

3.4.1 Pengambilan Sampel. ..................................................................20

3.4.2 Identifikasi Tumbuhan . ...............................................................21

3.4.3 Pengolahan Sampel . ....................................................................21

3.5 Skrining Fitokimia ...............................................................................21

3.5.1 Pemeriksaan Alkaloida ...............................................................22

3.5.2 Pemeriksaan Glikosida . ...............................................................22 3.5.3 Pemeriksaan Steroida/Triterpenoida ...........................................23 3.5.4 Pemeriksaan Flavonoida .............................................................23

3.5.5 Pemeriksaan Tanin ......................................................................23

3.5.6 Pemeriksaan Saponin ..................................................................24

3.5.7 Pemeriksaan Antrakinon .............................................................24

3.6 Pembuatan Ekstrak Etanol Buah Terong Belanda ...............................24

3.7 Pengujian Kemampuan Antioksidan Sampel Uji Dengan Spektrofotometrei Visibe ............................................................. ......25

3.7.1 Prinsip Metode DPPH ......................................................... ......25 3.7.2 Pembuatan Larutan Blanko ................................................. ......25 3.7.3 Penentuan Panjang Gelombang Serapan Maksimum dan Operating time Larutan DPPH dalam Metanol .................... ......25 3.7.4 Pembuatan Larutan Induk ................................................... ......26 3.7.5 Pembuatan Larutan Uji ....................................................... .....26 3.7.6 Penentuan Persen Peredaman .............................................. ......26 3.7.7 Penentuan Nilai IC50 ........................................................... ......27

BAB IV. HASIL DAN PEMBAHASAN .............................................................28

4.1 Hasil Identifikasi Tumbuhan . ...............................................................28


4.2 Hasil Skrining Fitokimia ......................................................................28 4.3 Hasil Penentuan Serapan Maksimum ..................................................29

4.4 Hasil Penentuan Operating Time Larutan DPPH Dalam Metanol ......30

4.5 Hasil Analisis Aktivitas Antioksidan Sampel Uji ...............................30 4.6 Hasil Analisis Peredaman Radikal Bebas DPPH Oleh Sampel Uji ....33

4.7 Analisis Nilai IC50 (Inhibitory Concentration) Sampel Uji .................36

BAB V. KESIMPULAN DAN SARAN ..............................................................38

5.1 Kesimpulan ..........................................................................................38

5.2 Saran ....................................................................................................38

DAFTAR PUSTAKA ...........................................................................................39

LAMPIRAN .........................................................................................................41


DAFTAR TABEL

Halaman

Tabel 1. Kandungan Nutrisi Dalam 100 g Terong Belanda ................................ 9 Tabel 2. Hasil Skrining Fitokimia Buah Terong Belanda (Solanum betaceumCav.) .................................................................... 28 Tabel 3. Hasil Analisis Peredaman Radikal Bebas Oleh Ekstrak Etanol Terong Belanda (Solanum betaceum Cav.) ......................................... 33 Tabel 4. Hasil Analisis Peredaman Radikal Bebas Oleh Vitamin C .................. 34 Tabel 5. Nilai IC50 ekstrak etanol terong belanda dan vitamin C ....................... 36


DAFTAR GAMBAR

Halaman

Gambar 1. Kurva Serapan Maksimum Larutan DPPH 40 ppm Dalam Metanol Secara Spektrofotometri Visibel ...........................................29 Gambar 2. Kurva Absorbansi Operating Time Larutan DPPH Dalam Metanol ............................................................................ ......30 Gambar 3. Hasil Analisis Aktivitas Antioksidan Sampel Ekstrak Etanol Buah Terong Belanda (Solanum betaceum Cav.) Pada Menit ke-18 ............31 Gambar 4. Hasil Analisis Aktivitas Antioksidan Sampel Ekstrak Etanol Buah Terong Belanda (Solanum betaceum Cav.) pada menit ke-36 . ............31 Gambar 5. Hasil Analisis Aktivitas Antioksidan Vitamin C Pada Menit ke-18 .................................................................................32 Gambar 6. Hasil Analisis Aktivitas Antioksidan Vitamin C Pada Menit ke-36 .................................................................................32 Gambar 7. Hubungan Konsentrasi Ekstrak Etanol Buah Terong Belanda (Solanum betaceum Cav.) dengan persen peredaman pada menit ke-18 dan menit ke-36 .........................................................................35 Gambar 8. Hubungan konsentrasi vitamin C (ppm) dengan persen Peredaman Pada Menit ke-18 dan menit ke-36 . ...................................35 Gambar 9. Tumbuhan Terong Belanda (Solanum betaceum Cav.) ......................42 Gambar 10. Bunga Terong Belanda (Betacei flos.) ...............................................42

Gambar 11. Buah Terong Belanda (Betacei fructus) .............................................43 Gambar 12. Buah Terong Belanda yang dibelah dua ............................................43 Gambar 13. Spektrofotometer UV-Visibel (Shimadzu mini 1240) .......................44


DAFTAR LAMPIRAN

Halaman

Lampiran 1. Surat Hasil Identifikasi Tumbuhan ............................................... 41

Lampiran 2. Tumbuhan Terong Belanda (Solanum betaceum Cav.) ................. 42

Lampiran 3. Gambar Alat................................................................................. 44 Lampiran 4. Bagan Ekstraksi Bahan Segar Secara Maserasi ............................. 45 Lampiran 5. Data Absorbansi Operating Time Larutan DPPH Dalam Metanol . 46 Lampiran 6. Perhitungan .................................................................................. 47


BAB I

PENDAHULUAN

1.1 Latar Belakang

Kondisi lingkungan yang semakin memburuk dan berlubangnya lapisan

ozon menyebabkan makin mudahnya terbentuk zat-zat radikal baik dalam bentuk

logam dan nonlogam, yang mau tidak mau akan mencemari pangan yang kita

konsumsi (Kumalaningsih, 2001).

Radikal bebas adalah molekul yang kehilangan elektron, sehingga molekul

tersebut menjadi tidak stabil dan selalu berusaha mengambil elektron dari molekul

atau sel lain. Radikal bebas diproduksi secara alami oleh tubuh dalam jumlah

kecil, tetapi akan timbul masalah bila diproduksi terlalu banyak (Kramer P.,

2004).

Buah-buahan memegang peranan penting dalam menunjang kesehatan dan

kebugaran tubuh. Sebab dalam buah-buahan terkandung berbagai macam vitamin,

mineral, serat pangan dan komponen antioksidan (Anonim, 2008).

Antioksidan adalah zat yang dapat menetralisir radikal bebas sehingga

atom dengan elektron yang tidak berpasangan mendapat pasangan elektron

sehingga tidak liar lagi (Kosasih, 2004).

Antioksidan merupakan suatu sistem pertahanan dalam tubuh yang

berguna untuk menangkal kerusakan sel tubuh yang disebabkan oleh radikal

bebas, yaitu jika jumlah radikal bebas lebih tinggi dari antioksidan alamiah, saat

itulah tubuh memerlukan tambahan antioksidan dari luar yaitu dari bahan

makanan tertentu (Anonim, 2008 ).


Banyak sekali ragam antioksidan alami, tetapi jarang yang memiliki

komponen kimia yang lengkap. Terong belanda termasuk keluarga Solanaceae

yang berasal dari Peru dan masuk ke Indonesia dikembangkan antara lain di Bali,

Jawa Barat dan Tanah Karo Sumatera Utara. Terong belanda mempunyai macam-

macam antioksidan yang lengkap baik dalam bentuk vitamin dan yang bukan,

seperti vitamin A, vitamin C, vitamin B6, senyawa karotenoid, anthosianin dan

serat. Lengkapnya antioksidan alami dalam buah terong belanda memungkinkan

pemanfaatannya sebagai bahan baku pembuatan antioksidan (Kumalaningsih,

2001).

Terong belanda selain kaya akan air juga mengandung provitamin A yang

bagus untuk kesehatan mata dan vitamin C untuk mengobati sariawan dan

meningkatkan daya tahan tubuh. Serat yang tinggi di dalam terong belanda

bermanfaat untuk mencegah kanker dan sembelit/konstipasi. Mineral penting

seperti potasium, fosfor dan magnesium mampu menjaga dan memelihara

kesehatan tubuh (Anonim, 2008).

Vitamin C (L-Asam askorbat) merupakan suatu antioksidan penting yang

larut dalam air. Vitamin C menangkap secara efektif radikal-radikal O2-, OH-,

peroksil dan oksigen singlet (Duthie dan Brown, 1994).

Vitamin C dapat juga bekerja sebagai suatu koantioksidan dengan

membentuk kembali (regenerasi) -tokoferol dari bentuk radikal -tokoferol.

Fungsi ini sangat penting karena pada percobaan in-vitro diketahui bahwa -

tokoferol dapat bekerja sebagai prooksidan jika tidak ada koantioksidan seperti

vitamin C (Carr dan Frei, 1999).


Vitamin C termasuk golongan antioksidan karena sangat mudah

teroksidasi oleh panas, cahaya dan logam. Oleh karena itu penggunaan vitamin C

sebagai antioksidan semakin sering dijumpai (Anonim, 2008).

Menurut Santosa et al. (1998) dan Okawa et al. (2001), metode aktivitas

antiradikal bebas DPPH (1,1-diphenyl-2-picrylhydrazyl) merupakan metode

terpilih untuk menapis aktivitas antioksidan bahan alam (Amrun dan Ummayah,

2007).

Metode analisa ini telah digunakan luas untuk menguji kemampuan dari

suatu senyawa atau komponen untuk bereaksi sebagai penangkap radikal bebas

atau donor hidrogen. Metode ini mengukur aktivitas dari antioksidan dalam

melawan radikal bebas 1,1-diphenyl-2-picrylhydrazyl (DPPH) dan untuk

mengevaluasi aktivitas antioksidan dari makanan (Anonim, 2001).

Pengungkapan potensi terong belanda (Solanum betaceum Cav.) sebagai

sumber antioksidan berkaitan dengan senyawa kimia yang terdapat di dalamnya.

Oleh sebab itu dalam penelitian ini dilakukan skrining fitokimia terlebih dahulu,

dan uji aktivitas antioksidannya menggunakan metode DPPH dengan vitamin C

sebagai kontrol positif.

1.2 Perumusan Masalah

a. Senyawa kimia golongan apa saja yang terkandung dalam buah terong

belanda (Solanum betaceum Cav.)

b. Apakah ekstrak etanol dari buah segar terong belanda (Solanum betaceum

Cav.) memiliki aktivitas sebagai antioksidan untuk meredam radikal bebas


c. Berapakah kekuatan antioksidan dari ekstrak etanol buah segar terong

belanda (Solanum betaceum Cav.) dibandingkan dengan vitamin C sebagai

kontrol positif.

1.3 Hipotesis

a. Buah terong belanda (Solanum betaceum Cav.) mengandung golongan

senyawa kimia flavonoid yang memiliki aktivitas sebagai antioksidan.

b. Ekstrak etanol buah segar terong belanda (Solanum betaceum Cav.)

mempunyai aktivitas antioksidan.

c. Ekstrak etanol buah segar terong belanda (Solanum betaceum Cav.)

memiliki aktivitas antioksidan yang kuat.

1.4 Tujuan

a. Untuk mengetahui golongan senyawa kimia yang terdapat dalam buah

terong belanda (Solanum betaceum Cav.).

b. Untuk mengetahui aktivitas antioksidan dari ekstrak etanol buah segar

terong belanda (Solanum betaceum Cav.).

c. Untuk mengetahui besar kekuatan antioksidan ekstrak etanol buah segar

terong belanda (Solanum betaceum Cav.) dibandingkan dengan vitamin C

sebagai kontrol positif.

1.5 Manfaat

a. Sebagai informasi golongan senyawa-senyawa kimia yang terkandung

dalam buah terong belanda (Solanum betaceum Cav.).

b. Sebagai informasi tentang aktivitas antioksidan dari ekstrak etanol buah

segar terong belanda (Solanum betaceum Cav.)


BAB II

TINJAUAN PUSTAKA

2.1 Uraian Tumbuhan

Uraian tumbuhan meliputi daerah tumbuh (habitat), nama daerah, nama

asing, morfologi tumbuhan, sistematika tumbuhan, kandungan kimia dan

kegunaan dari tumbuhan.

2.1.1 Daerah Tumbuh

Terong belanda dapat bertahan hidup pada ketinggian 1000 m dpl atau

lebih dan masih dapat hidup di atas 2000 m dpl, jika suhu bulanan rata-ratanya

tetap di atas 10 C. Di dataran rendah, pohon terong belanda tidak mampu

berbunga, sedangkan udara sejuk (khususnya malam yang sejuk) dapat

mendorong pembungaan. Oleh karena itu, tanaman ini berbuah matang pada

musim dingin di daerah subtropik, dan jika ditanam di daerah tropik buah matang

sesudah terjadi udara dingin. Rasa buah akan menjadi lebih baik pada hari-hari

cerah yang panas dan malam-malam yang dingin pada musim kemarau di daerah

tropik daripada selama musim dingin di dataran tinggi. Terong belanda tumbuh

baik di tanah yang baik drainasenya dengan bahan organik dan kelembapan

sedang, namun tidak tahan terhadap genangan, walaupun hanya untuk 1-2 hari.

Tanaman ini berakar dangkal, karenanya mudah roboh, juga cabang-cabangnya

yang rapuh itu mudah sekali patah jika sedang berbuah lebat. Jadi, lokasi yang

ternaung hendaknya dipilih atau diadakan pohon penahan angin (Anonim, 2005).


2.1.2 Nama Daerah

Batak : tiung (Toba), trung jepan (Karo)

Jawa Tengah : terong mandras

Melayu : terong belanda

Sunda : terong menen

(Departemen Kesehatan dan Kesehatan Sosial, 2001).

2.1.3 Nama Asing

Inggris : tree tomato

Brazil : tomate de arvore

Ekuador : tomate dulce

Guatemala : tomate, tomate extranjero, tomate de arbol, tomate

granadilla, granadilla, pix, caxlan pix

Kolombia : pepino de arbol

Kostarika : tomate cimarron

New Zealand : tamarillo

Venezuella : tomate frances (Anonim, 2005).

2.1.4 Sistematika Tumbuhan

Kingdom : Plantae

Divisi : Spermatophyta

Sub divisi : Angiospermae

Klass : Dicotyledoneae

Ordo : Solanales

Famili : Solanaceae

Genus : Solanum


Spesies : Solanum betaceum Cav.

(Departemen Kesehatan dan Kesehatan Sosial, 2001).

2.1.5 Sinonim Tunbuhan

Sinonim : Cyphomandra botacea Sendt.

Cyphomandra crassicaulis (Ortega.)Kuntze

Cyphomandra hartwegi Sendt. (Anonim, 2001).

2.1.6 Morfologi Tumbuhan

Tanaman ini memiliki daun yang berbulu berbentuk hati besar dan

berwarna hijau. Daun yang hijau ini akan mudah sekali dirusak oleh terpaan angin

yang kencang (Kumalaningsih, 2006).

Bunga tamarillo akan muncul pada akhir musim gugur sampai pada awal

musim semi. Warnanya pink dan terletak pada ujung cabang batang serta biasanya

berkelompok. Tanaman ini memiliki benang sari dan putik serta kelopak bunga

yang berwarna ungu hijau. Tanaman ini melakukan penyerbukan sendiri tetapi

terkadang juga dibantu lebah dan angin meskipun sangat kecil kemungkinannya

(Kumalaningsih, 2006).

Tanaman ini memiliki tangkai panjang, satu dengan lainnya tumbuh

sendirian atau ada yang berkelompok sebanyak 3-12. Buahnya berbentuk seperti

telur dengan ukuran panjang antara 5-6 cm dan lebarnya di atas 5 cm. Warna

kulitnya ada yang ungu gelap, merah darah, oranye atau kuning dan ada yang

masih memiliki garis memanjang yang tidak jelas. Terong belanda yang masih

mentah berwarna hijau agak abu-abu. Warna ini akan berubah menjadi merah

kecoklatan apabila buah sudah matang. Di dalam buah ini terdapat daging buah

yang tebal brwarna kekuningan dibungkus oleh selaput tipis yang mudah


dikelupas. Rasa buah ini seperti tomat dan teksturnya seperti buah plum dengan

kandungan gizi yang relatif tinggi karena banyak mengandung vitamin A, C dan

serat. Lapisan luar dari daging buah banyak mengandung air, sedikit kasar dan

sedikit mengandung rasa manis (Kumalaningsih, 2006).

Biji buah ini keras, berwarna coklat muda sampai hitam. Bentuk biji agak

tumpul, bulat dan kecil, tetapi lebih besar daripada biji tomat yang sebenarnya


2.1.7 Kandungan Kimia

Terong belanda adalah buah yang mempunyai kandungan nutrisi yang

sangat baik, berisi beberapa kandungan vitamin yang sangat penting serta kaya

akan besi dan potasium, kandungan sodium yang rendah dan berisi kurang dari 40

kalori (kurang lebih 160 kJ). Oleh karena kelengkapan dari kandungan gizi pada

tamarillo, maka di Amerika Serikat buah terong belanda terkenal sebagai buah

yang mengandung rendah kalori, sumber serat, bebas lemak (jenis reds) atau

rendah lemak (jenis golden), bebas kolesterol dan sodium dan sumber vitamin C

dan E yang sempurna (Kumalaningsih, 2006).

Buah terong belanda juga mengandung senyawa-senyawa seperti beta

karoten, antosianin dan serat. Di antara senyawa antioksidan yang dikandungnya,

beta karoten mempunyai peranan yang sangat penting karena paling tahan

terhadap serangan radikal bebas. Di dalam buah terong belanda terdapat 50 mg

tiap 100 g bahan. Beta karoten merupakan salah satu jenis karotenoid yang banyak

terdapat pada buah-buahan. Senyawa ini akan dikonversikan menjadi vitamin A

(retinol) di dalam tubuh sehingga sering juga disebut sebagai provitamin A



Menurut Kumalaningsih (2006), hasil analisis lengkap kandungan gizi

buah terong belanda dapat dilihat pada tabel 1 berikut ini:

Tabel 1. Kandungan Nutrisi Dalam 100 g Terong Belanda Kandungan

Nutrisi Terong Belanda (tiap 100g)

Vitamin A 540-5600 g

Vitamin B1 0.03-0.14 mg



Vitamin C 15-42 mg

Vitamin E 2 mg

Niasin 0.3-1.4 mg

Potasium

(Kalium) 0.28-0.38 g

Kalsium 6-18 mg

Fosfor 22-65 mg

Magnesium 16-25 mg

Besi 0.3-0.9 mg

Seng 0.1-0.2 mg

Protein 1.4-2 g

Lemak 0.1-0.6 g

Serat 1.4-4.7 g

Kadar air 80-90 g

2.1.8 Kegunaan


Buah terong belanda berkhasiat sebagai obat tekanan darah tinggi dan

penyegar badan. Untuk obat tekanan darah tinggi dipakai 3 buah terong belanda

yang sudah masak, dikupas untuk sekali makan (Departemen Kesehatan dan

Kesehatan Sosial, 2001).

Kandungan antosianin, vitamin-vitamin serta zat-zat gizi lainnya di dalam

buah terong belanda bekerja sinergis untuk:

1. Mencegah kerusakan sel-sel jaringan tubuh penyebab berbagai penyakit

(kanker, tumor dan lain-lain).

2. Melancarkan penyumbatan pembuluh darah (arterisklorosis) sehingga

mencegah penyakit jantung & stroke serta menormalkan tekanan darah..

3. Menurunkan kadar kolesterol dan mengikat zat-zat racun dalam tubuh.

4. Meningkatkan stamina, daya tahan tubuh dan vitalitas.

5. Membantu mempercepat proses penyembuhan (Anonim, 2009).

2.2 Ekstraksi

Ekstraksi adalah suatu proses pemisahan kandungan senyawa kimia dari

jaringan tumbuhan maupun hewan. Sebelum ekstraksi dilakukan biasanya bahan

bahan dikeringkan terlebih dahulu kemudian dihaluskan pada derajat kehalusan

tertentu (Harborne, 1987).

Menurut Departemen Kesehatan RI (2000), beberapa metode ekstraksi

dengan menggunakan pelarut yaitu:

A.Cara dingin

1. Maserasi

Maserasi adalah proses penyarian simplisia dengan cara perendaman

menggunakan pelarut dengan sesekali pengadukan pada temperatur kamar.


Maserasi yang dilakukan pengadukan secara terus menerus disebut maserasi

kinetik sedangkan yang dilakukan pengulangan penambahan pelarut setelah

dilakukan penyaringan terhadap maserat pertama dan seterusnya disebut

remaserasi.

2. Perkolasi

Perkolasi adalah proses penyarian simpilisia dengan pelarut yang selalu baru

sampai terjadi penyarian sempurna yang umumnya dilakukan pada temperatur

kamar. Proses perkolasi terdiri dari tahap pelembaban bahan, tahap perendaman

antara, tahap perkolasi sebenarnya (penetesan/penampungan ekstrak) terus

menerus sampai diperoleh perkolat yang jumlahnya 1-5 kali bahan.

B. Cara panas

1. Refluks

Refluks adalah proses penyarian simpilisia dengan menggunakan alat pada

temperatur titik didihnya, selama waktu tertentu dan jumlah pelarut terbatas

yang relatif konstan dengan adanya pendingin balik.

2. Digesti

Digesti adalah proses penyarian dengan pengadukan kontinu pada temperatur

lebih tinggi dari temperatur ruangan, yaitu secara umum dilakukan pada

temperatur 40 500 C.

3. Sokletasi

Sokletasi adalah proses penyarian dengan menggunakan pelarut yang selalu

baru, dilakukan menggunakan alat soklet sehingga terjadi ekstraksi kontinu

dengan pelarut relatife konstan dengan adanya pendingin balik.

4. Infundasi


Infundasi adalah proses penyarian dengan menggunakan pelarut air pada

temperature 900 C selama 15 menit.

5. Dekoktasi

Dekoktasi adalah proses penyarian dengan menggunakan pelarut air pada

temperature 900 C selama 30 menit.

2.3 Radikal Bebas

Radikal bebas adalah molekul yang kehilangan elektron, sehingga molekul

tersebut menjadi tidak stabil dan selalu berusaha mengambil elektron dari molekul

atau sel lain. Zat ini dapat dihasilkan dari hasil metabolisme tubuh dan faktor

eksternal seperti asap rokok, hasil penyinaran ultra violet, zat kimiawi dalam

makanan dan polutan lain (Anomin, 2007).

Radikal bebas sangat reaktif dan dengan mudah menjurus ke reaksi yang

tidak terkontrol, menghasilkan ikatan silang (cross-link) pada DNA, protein,

lipida, atau kerusakan oksidatif pada gugus fungsional yang penting pada

biomolekul ini. Perubahan ini akan menyebabkan proses penuaan. Radikal bebas

juga terlibat dan berperan dalam patologi dari berbagai penyakit degeneratif,

yakni kanker, aterosklerosis, rematik, jantung koroner, katarak (Silalahi, 2006).

Radikal bebas yang sangat berbahaya dalam makhluk hidup antara lain

adalah golongan hidroksil (OH-), seperoksida (O-2), nitrogen monooksida (NO),

dan peroksidal (RO-2), peroksinitrit (ONOO-), asam hipoklorit (HOCL), hydrogen

peroksida (H2O2) (Silalahi, 2006).

Sebenarnya radikal bebas penting artinya bagi kesehatan dan fungsi tubuh

yang normal yaitu mengurangi peradangan, membunuh bakteri dan

mengendalikan tonus otot polos pembuluh darah dan organ organ dalam tubuh.


Namun bila dihasilkan melebihi batas kemampuan proteksi antioksidan selular,

maka dia akan menyerang sel itu sendiri. Struktur sel yang berubah turut merubah

fungsinya, yang akan mengarah pada proses munculnya penyakit (Suariasari,

2006).

2.4 Antioksidan

Antioksidan adalah senyawa yang mempunyai struktur molekul yang

dapat memberikan elektron dengan cuma cuma kepada molekul radikal bebas

tanpa terganggu sama sekali dan dapat memutuskan reaksi berantai dari radikal

bebas (Kumalaningsih, 2006).

Antioksidan yang ada di alam ini dibagi atas tiga macam yaitu : (1)

Antioksidan yang dibuat oleh tubuh kita sendiri yang berupa enzim antara lain

superoksidadismutase, glutathinoneperoxidase, peroxidase dan katalase (2)

Antioksidan alami yang dapat diperoleh dari tanaman atau hewan, yaitu tokoferol,

vitamin C, betakaroten, flavonoid dan senyawa fenolik (3) Antioksidan sintetik

dibuat dari bahan-bahan kimia yaitu Butylated hidroxy-anisole (BHA), Butylated

Hydroxy-toluene (BHT), Propylgallate (PG), yang ditambah dalam makanan

untuk mencegah kerusakan lemak (Kumalaningsih, 2006).

Antioksidan di dalam tubuh dibedakan atas tiga kelompok, yaitu (1)

Antioksidan primer yang bekerja dengan cara mencegah terbentuknya radikal

bebas yang baru dan mengubah radikal bebas menjadi molekul yang tidak

merugikan, misalnya glutationperoksidase. (2) Antioksidan sekunder yang

berfungsi untuk menangkap radikal bebas dan menghalangi terjadinya reaksi

berantai, misalnya vitamin C, vitamin E, dan -karoten. (3) Antioksidan tertier


yang bermanfaat untuk memperbaiki kerusakan biomolekular yang disebabkan

oleh radikal bebas, misalnya DNA repair enzyme ( Silalahi, 2006).

2.4.1 Antioksidan Alami

Hasil penelitian menunjukkan bahwa buah-buahan, sayuran dan biji-bijian

adalah sumber antioksidan yang baik dan bisa meredam reaksi berantai radikal

bebas dalam tubuh, yang pada akhirnya dapat menekan proses penuaan dini

(Kosasih, 2004).

Khasiat antioksidan untuk mencegah berbagai penyakit dan akan lebih

efektif jika kita mengkonsumsi sayur-sayuran dan buah-buahan yang kaya akan

antioksidan dari berbagai jenis daripada menggunakan antioksidan tunggal. Efek

antioksidan dari sayur-sayuran dan buah-buahan lebih efektif daripada suplemen

antioksidan yang diisolasi (Silalahi, 2006).

2.4.2 Vitamin C

Vitamin adalah senyawa organik kompleks yang essensial untuk

pertumbuhan dan fungsi biologis yang lain bagi mahluk hidup. Berhubung

vitamin tidak disintesa dalam tubuh kecuali vitamin K, maka vitamin harus ada

dalam makanan yang dikonsumsi. Vitamin tidak dapat disimpan dalam tubuh,

oleh karenanya harus selalu ada dalam bahan makanan yang dikonsumsi. Bahan

makanan yang kaya akan vitamin adalah sayur-sayuran dan buah-buahan

(Sudarmadji, 1989).

Vitamin C (asam askorbat) adalah suatu turunan heksosa dan

diklasifikasikan sebagai karbohidrat yang merupakan monosakarida. Vitamin C

dapat disintesis dari glukosa dan galaktosa dalam tumbuh- tumbuhan dan sebagian


besar hewan yang dapat mensintesis vitamin C. Di alam vitamin C terdapat dalam

dua bentuk, yaitu L- asam askorbat ( bentuk tereduksi) dan L- dehidroasam

askorbat ( bentuk teroksidasi).

2.5 Penentuan Aktivitas Antioksidan

Bermacam-macam metode pengukuran aktivitas antioksidan telah

digunakan untuk memantau dan membandingkan aktivitas antioksidan pada

makanan memberikan hasil yang beragam tergantung pada spesifitas dari radikal

bebas yang digunakan sebagai reaktan (Anonim, 2001).

Sebuah metode yang cepat, sederhana dan murah untuk mengukur

aktivitas antioksidan dari makanan yaitu dengan melibatkan penggunaan radikal

bebas 1,1-diphenyl-2-picrylhydrazyl (DPPH). DPPH digunakan luas untuk

menguji kemampuan dari suatu senyawa atau komponen untuk bereaksi sebagai

penangkap radikal bebas atau donor hidrogen dan untuk mengevaluasi aktivitas

antioksidan dari makanan. DPPH juga digunakan untuk menentukan antioksidan

dalam kompleks biologi dalam beberapa tahun terakhir. Metode DPPH dapat

digunakan untuk sampel padat ataupun cair dan telah digunakan untuk mengukur

kadar antioksidan pada sampel (Anonim, 2001).


Gambar 1 : Rumus bangun DPPH (1,1-diphenyl-2-picrylhydrazyl)


N

N

NN

N

o

o -

oo

-

o

o

-

N

N

NN

N

o

o -

oo

-

o

o

-

N

N

NN

N

o

o -

oo

-

o

o

-

N

NH

NN

N

o

o -

oo

-

o

o

-

Gambar Resonansi dari DPPH ( 1.1-diphenyl-2- picrylhydrazyl)

Gambar reaksi antara DPPH dengan atom H netral yang berasal dari antioksidan

oHO

OH

OH

OH

OH-2H .

+

oHO

OH

OH

O

O+


2.6 Spektrofotometri UV-Visibel

Ahli kimia telah lama menggunakan warna sebagai bantuan dalam

mengenali zat-zat kimia. Spektrofotometri dapat dianggap sebagai perluasan suatu

pemeriksaan visual, yaitu dengan menggunakan alat untuk mengukur absorpsi

energi radiasi macam-macam zat kimia dan memungkinkan dilakukannya

pengukuran kualitatif dan kuantitatif dari suatu zat dengan ketelitian yang lebih

besar (Day, 1994).

Spektrofotometri serapan adalah pengukuran serapan radiasi elektromagnit

panjang gelombang tertentu yang sempit, mendekati monokromatik, yang diserap

zat. Pengukuran serapan dapat dilakukan pada daerah ultraviolet (panjang

gelombang 190380 nm) atau pada daerah cahaya tampak (panjang gelombang

380780 nm) (Depkes, 1979).

Spektrofotometer pada dasarnya terdiri atas sumber sinar monokromotor,

tempat sel untuk zat yang diperiksa, detektor, penguat arus dan alat ukur atau

pencatat (Departemen Kesehatan RI, 1979).

Spektrofotometri yang sering digunakan dalam dunia industri farmasi

salah satu adalah spektofotometri ultraviolet dan visibel (cahaya tampak).

Spektrum UV-Visibel mempunyai spektrum yang lebar dan hanya sedikit

informasi tentang struktur yang bisa didapatkan dari spektrum ini. Tetapi

spektrum ini sangat berguna untuk pengukuran secara kuantitatif (Dachriyanus,

2004).


BAB III

METODOLOGI PENELITIAN

Penelitian ini dilakukan di Laboratorium Farmakognosi dan Laboratorium

Kimia Farmasi Kwantitatif, Fakulatas Farmasi, Universitas Sumatera Utara.

Metodologi penelitian meliputi pengumpulan dan pengolahan sampel, skrining

fitokimia, pembuatan ekstrak dan pengujian kemampuan antioksidan secara

spektrofotometri visibel.

3.1 Alat-alat

Alat-alat yang digunakan dalam penelitian ini adalah uv mini 1240-

spektrofotometer uv-visibel (Shimadzu), penguap vakum putar (Heidolph VV

2000), frezee dryer (Modulyo/Edwards), neraca kasar (Ohaus), neraca analitik

(Vibra), pisau dan sendok stainless steel, water bath, eksikator, krus porselin dan

alat-alat gelas laboratorium.

3.2 Bahan-bahan

Bahan yang digunakan dalam penelitian ini adalah buah segar terong

belanda (Solanum betaceum Cav.) yang sudah matang berwarna merah tua sampai

merah keunguan, kertas saring. Semua bahan-bahan kimia yang digunakan,

kecuali dinyatakan lain adalah berkualitas pro analisis produksi Sigma: 1,1-

diphenyl-2-picrylhydrazyl (DPPH); produksi E. Merck: etanol, metanol,

kloroform, isopropanol (2-propanol), eter, benzena, asam asetat anhidrat, natrium

hidroksida, alfa naftol, asam nitrat pekat, asam sulfat pekat, asam klorida pekat,


toluena, kloralhidrat, iodium, raksa (II) klorida, timbal (II) asetat, kalium iodida,

bismut (III) nitrat, besi (III) klorida dan amil alkohol.

3.3 Pembuatan Larutan Pereaksi

Pembuatan larutan pereaksi dilakukan menurut Departemen Kesehatan RI

tahun 1978 dan tahun 1979.

3.3.1 Larutan Pereaksi Bouchardat

Sebanyak 4 g kalium iodida ditimbang, kemudian dilarutkan dalam air

suling, ditambahkan iodium sebanyak 2 g dan dicukupkan dengan air suling

hingga 100 ml (Departemen Kesehatan RI, 1978).

3.3.2 Larutan Pereaksi Mayer

Sebanyak 1,4 g raksa (II) klorida, kemudian dilarutkan dalam air suling

hingga 60 ml. Pada wadah lain ditimbang sebanyak 5 g kalium iodida lalu

dilarutkan dalam 10 ml air suling. Kedua larutan dicampurkan dan ditambahkan

air suling hingga diperoleh larutan 100 ml (Departemen Kesehatan RI, 1978).

3.3.3 Larutan Pereaksi Dragendorff

Sebanyak 8 g bismut (III) nitrat ditimbang, kemudian dilarutkan dalam 20

ml asam nitrat pekat. Pada wadah lain ditimbang sebanyak 27,2 g kalium iodida

lalu dilarutkan dalam 50 ml air suling. Kemudian kedua larutan dicampurkan dan

didiamkan sampai memisah sempurna. Larutan yang jernih diambil dan

diencerkan dengan air suling hingga 100 ml (Departemen Kesehatan RI, 1978).

3.3.4 Larutan Pereaksi Molish

Sebanyak 3 g alfa-naftol ditimbang, kemudian dilarutkan dalam asam

nitrat 0,5 N hingga volume 100 ml (Departemen Kesehatan RI, 1978).


3.3.5 Larutan Pereaksi Asam Klorida 2 N

Sebanyak 17 ml asam klorida pekat dilarutkan dalam air suling hingga

volume 100 ml (Departemen Kesehatan RI, 1979).

3.3.6 Larutan Pereaksi Asam Sulfat 2 N

Sebanyak 5,5 ml asam sulfat pekat diencerkan dengan air suling hingga


3.3.7 Larutan Pereaksi Asam Nitrat 0,5 N

Sebanyak 3,4 ml asam nitrat pekat diencerkan dengan air suling hingga


3.3.8 Larutan Pereaksi Timbal (II) Asetat 0,4 M

Sebanyak 15,17 g timbal asetat ditimbang, kemudian dilarutkan dalam air

suling bebas karbondioksida hingga volume 100 ml (Departemen Kesehatan RI,

1979).

3.3.9 Larutan Pereaksi Besi (III) Klorida 1% b/v

Sebanyak 1 g besi (III) klorida ditimbang, kemudian dilarutkan dalam air

suling hingga volume 100 ml (Departemen Kesehatan RI, 1979).

3.3.10 Larutan Pereaksi DPPH 0,5 mM

Sebanyak 19,7 mg DPPH ditimbang, kemudian dilarutkan dalam metanol

hingga volume 100 ml (Departemen Kesehatan RI, 1979).

3.4 Pengambilan Dan Pengolahan Sampel

3.4.1 Pengambilan Sampel

Sampel yang digunakan diperoleh dari Pasar Sore, Padang Bulan, Medan,

Propinsi Sumatera Utara. Metode pengambilan sampel dilakukan secara acak,

yaitu dengan teknik probability sampling (Simple Random Sampling). Proses


pengambilan sampel dilakukan dengan memberi kesempatan yang sama pada

setiap anggota populasi untuk menjadi anggota sampel (Anonim, 2003).

3.4.2 Identifikasi Tumbuhan

Identifikasi tumbuhan dilakukan di Laboratorium Taksonomi Tumbuhan,

Departemen Biologi, Fakultas Matematika dan Ilmu Pengetahuan Alam,

Universitas Sumatera Utara.

3.4.3 Pengolahan Sampel

Pengolahan buah terong belanda (Solanum betaceum Cav.) dilakukan

terhadap sampel segar, berwarna merah tua sampai merah keunguan sebanyak 500

g. Proses pencucian dilakukan untuk menghilangkan kotoran yang menempel

pada saat pemanenan atau pada saat penyimpanan. Pada tahap ini dilakukan juga

pemisahan tangkai buah dari buahnya.

Buah yang sudah dicuci bersih kemudian dilap menggunakan tisu bersih,

lalu dilakukan pembelahan secara melintang menggunakan pisau stainless steel,

dengan tujuan agar memudahkan dalam proses pemisahan antara kulit buah

dengan bagian dalam buah (daging dan biji). Proses selanjutnya adalah pemisahan

daging buah serta bijinya dengan kulit buahnya menggunakan bantuan sendok.

Kemudian daging buah dan biji dihaluskan dengan cara menekan (kneading),

diperoleh bubur buah sebanyak 350 g, dimasukkan ke dalam wadah lalu ditutup.

3.5 Skrining Fitokimia

Skrining fitokimia dilakukan untuk mengetahui komponen senyawa kimia

dalam buah segar terong belanda (Solanum betaceum Cav.) secara kualitatif.

Skrining ini dilakukan terhadap sampel segar yang telah dihaluskan dan selalu

dibuat baru yang digunakan dalam penelitian meliputi pemeriksaan senyawa


kimia golongan alkaloida, glikosida, steroida/triterpenoida, flavonoida, saponin,

tanin dan antrakinon.

3.5.1 Pemeriksaan Alkaloida

Sebanyak 0,5 g buah segar yang telah dihaluskan, ditambahkan 1 ml asam

klorida 2 N dan 9 ml air suling, dipanaskan di atas penangas air selama 2 menit,

didinginkan dan disaring. Filtrat dipakai untuk uji alkaloida sebagai berikut :

a. Filtrat sebanyak 3 tetes ditambah dengan 2 tetes larutan pereaksi Mayer,

akan terbentuk endapan menggumpal berwarna putih atau kuning

b. Filtrat sebanyak 3 tetes ditambah dengan 2 tetes larutan pereaksi

Bouchardat, akan terbentuk endapan berwarna coklat sampai kehitaman

c. Filtrat sebanyak 3 tetes ditambah dengan 2 tetes larutan pereaksi

Dragendorff, akan terbentuk endapan merah atau jingga

Alkaloida positif jika terjadi endapan atau kekeruhan paling sedikit dua dari tiga

percobaan diatas (Departemen Kesehatan RI, 1978).

3.5.2 Pemeriksaan Glikosida

Sebanyak 3 g buah segar yang telah dihaluskan, disari dengan cara refluks

menggunakan 30 ml campuran etanol 95% dengan air suling (7:3) selama 10

menit, didinginkan dan disaring. Pada 20 ml filtrat ditambahkan 25 ml air suling

dan 25 ml timbal (II) asetat 0,4 M, dikocok, didiamkan 5 menit lalu disaring.

Filtrat disari dengan 20 ml campuran isopropanol dan kloroform (2:3), dilakukan

berulang sebanyak 3 kali. Kumpulan sari air tambahkan natrium sulfat anhidrat,

saring dan diuapkan pada temperatur tidak lebih dari 50 oC, sisanya dilarutkan

dalam 2 ml metanol. Larutan sari air dalam metanol dimasukkan ke dalam tabung

reaksi selanjutnya diuapkan di atas penangas air. Pada sisa ditambahkan 2 ml air


dan 5 tetes larutan pereaksi Molish. Tambahkan hati-hati 2 ml asam sulfat pekat

melalui dinding tabung, terbentuknya cincin ungu pada batas kedua cairan

menunjukkan adanya glikosida (Departemen Kesehatan RI, 1978).

3.5.3 Pemeriksaan Steroida/Triterpenoida

Sebanyak 1 g buah segar yang telah dihaluskan, dimaserasi dengan 20 ml

eter selama 2 jam, disaring, filtrat diuapkan dalam cawan penguap dan pada

sisanya ditambahkan 20 tetes asam asetat anhidrat dan 1 tetes asam sulfat pekat

(pereaksi Liebermann-Burchard). Apabila terbentuk warna ungu atau merah yang

berubah menjadi biru hijau menunjukkan adanya steroida/triterpenoida (Harborne,

1987).

3.5.4 Pemeriksaan Flavonoida

Sebanyak 10 g buah segar yang telah dihaluskan, ditambahkan 10 ml air

panas, dididihkan selama 5 menit dan disaring dalam keadaan panas, ke dalam 5

ml filtrat ditambahkan 0,1 g serbuk magnesium dan 1 ml asam klorida pekat dan 2

ml amil alkohol, dikocok dan dibiarkan memisah. Flavonoida positif jika terjadi

warna merah atau kuning atau jingga pada lapisan amil alkohol (Fransworth,

1996).

3.5.5 Pemeriksaan Tanin

Sebanyak 0,5 g buah segar yang telah dihaluskan, disari dengan 10 ml air

suling lalu disaring, filtratnya diencerkan dengan air sampai tidak berwarna.

Larutan diambil sebanyak 2 ml dan ditambahkan 1 sampai 2 tetes pereaksi besi

(III) klorida 1%. Jika terjadi warna biru atau kehitaman menunjukkan adanya

tanin (Departemen Kesehatan RI, 1978).


3.5.6 Pemeriksaan Saponin

Sebanyak 0,5 g buah segar yang telah dihaluskan, dimasukkan dalam

tabung reaksi, ditambahkan 10 ml air panas, didinginkan kemudian dikocok kuat-

kuat selama 10 detik, jika terbentuk buih yang mantap setinggi 1 sampai 10 cm

yang stabil tidak kurang dari 10 menit dan tidak hilang dengan penambahan 1

tetes asam klorida 2 N menunjukkan adanya saponin (Departemen Kesehatan RI,

1978).

3.5.7 Pemeriksaan Antrakinon

Sebanyak 0,2 g buah segar yang telah dihaluskan, ditambah 5 ml asam

sulfat 2 N, dipanaskan sebentar, setelah dingin ditambahkan 10 ml benzena,

dikocok dan didiamkan. Lapisan benzena dipisahkan dan disaring. Lapisan

benzena dikocok dengan 2 ml natrium hidroksida 2 N, didiamkan. Lapisan air

berwarna merah dan lapisan benzena tidak berwarna menunjukkan adanya

antrakinon (Departemen Kesehatan RI, 1978).

3.6 Pembuatan Ekstrak Etanol Buah Terong Belanda

Pembuatan ekstrak dilakukan secara maserasi menggunakan pelarut etanol

(Departemen Kesehatan RI, 1979).

Caranya :

Sebanyak 200 g (10 bagian terhadap pelarut) simplisia (bahan segar yang

telah dihaluskan) dimasukkan ke dalam sebuah wadah, dituangi dengan 1500 ml

(75 bagian) etanol 96%, ditutup, dibiarkan selama 3 hari terlindung dari cahaya

sambil sesekali diaduk, diserkai. Ampas dicuci dengan etanol 96% secukupnya

hingga diperoleh 2000 ml (100 bagian). Pindahkan ke dalam wadah tertutup,

dibiarkan di tempat sejuk terlindung dari cahaya, selama 2 hari. Enap tuangkan


atau disaring. Filtrat yang diperoleh digabung dengan filtrat yang telah diperoleh

sebelumnya. Pemekatan ekstrak dilakukan dengan alat rotary evaporator

kemudian ekstrak dikeringkan dengan teknik freeze dryer.

3.7 Pengujian Kemampuan Antioksidan Sampel Uji Dengan

Spektrofotometri Visibel

3.7.1 Prinsip Metode DPPH

DPPH (1,1-diphenyl-2-picryl-hydrazyl) sebagai radikal bebas dalam

larutan etanol/metanol digunakan untuk menentukan aktivitas antioksidan sampel

uji, yaitu kemampuan sampel uji dalam meredam proses oksidasi DPPH

(peredaman warna ungu DPPH) dengan IC50 (konsentrasi sampel uji yang mampu

meredam radikal bebas sebesar 50%) sebagai parameternya.

3.7.2 Pembuatan Larutan Blanko

Larutan DPPH 0,5 mM dipipet sebanyak 5 ml, kemudian dimasukkan ke

dalam labu tentukur 25 ml, dicukupkan volumenya dengan metanol sampai garis

tanda (konsentrasi 40 ppm).

3.7.3 Penentuan Panjang Gelombang Serapan Maksimum dan Operating

Time Larutan DPPH dalam Metanol

Larutan blanko dihomogenkan dan diukur serapannya pada panjang

gelombang 400-800 nm dan diperoleh maks= 514 nm. Pengukuran dilanjutkan

untuk menentukan operating time larutan DPPH dalam metanol sampai menit ke-

60 (selama 1 jam).


3.7.4 Pembuatan Larutan Induk

Sebanyak 25 mg sampel uji ditimbang kemudian dilarutkan dalam labu

tentukur 25 ml dengan metanol lalu volumenya dicukupkan dengan metanol

sampai garis tanda (konsentrasi 1000 ppm).

3.7.5 Pembuatan Larutan Uji

Larutan induk dipipet sebanyak 1 ml; 2 ml; 3 ml dan 4 ml kemudian

dimasukkan ke dalam labu tentukur 25 ml (untuk mendapatkan konsentrasi 40

ppm, 80 ppm, 120 ppm dan 160 ppm), kemudian ke dalam masing-masing labu

tentukur ditambahkan 5 ml larutan DPPH 0,5 mM (C = 40 ppm) lalu volume

dicukupkan dengan metanol sampai garis tanda.

3.7.6 Penentuan Persen Peredaman

Menurut Santosa et al (1998) dalam Amrun dan Umayah (2007),

absorbansi DPPH diukur pada panjang gelombang 494 nm, 514 nm dan 534 nm

pada menit ke-18 dan sekali lagi pada menit ke-36. Kemampuan antioksidan

diukur sebagai penurunan serapan larutan DPPH (peredaman warna ungu DPPH)

akibat adanya penambahan sampel uji. Nilai serapan larutan DPPH sebelum dan

sesudah penambahan sampel uji tersebut dihitung sebagai persen peredaman.

Perhitungan kapasitas antiradikal bebas DPPH sebagai persen peredaman

absorban pada puncak 514 nm menggunakan perhitungan sebagai berikut:

( ) %1001% xA

Aperedaman

DPPHHitung

ujibahanHitung=

Dimana, absorban hitung 514 nm:

( ) %100

2534494

514 xAAAAHitung

+=


3.7.7 Penentuan Nilai IC50

Nilai IC50 merupakan bilangan yang menunjukkan konsentrasi sampel uji

(g/ml) yang memberikan peredaman DPPH sebesar 50% (mampu

menghambat/meredam proses oksidasi sebesar 50 %). Nilai 0% berarti tidak

mempunyai aktivitas antiradikal bebas atau antioksidan, sedangkan nilai 100%

berarti peredaman total dan pengujian perlu dilanjutkan dengan pengenceran

larutan uji untuk melihat batas konsentrasi aktivitasnya. Selanjutnya dibuat kurva

linear antara konsentrasi larutan uji dengan % peredaman dan ditentukan harga

IC50 , yaitu dengan memasukkan nilai dari konsentrasi larutan uji (g/ml) sebagai

absis (sumbu X) dan nilai persen peredaman (%) sebagai ordinat (sumbu Y) ke

dalam persamaan garis linier.

Secara spesifik, suatu senyawa dikatakan sebagai antioksidan sangat kuat

jika nilai IC50 kurang dari 50 g/ml, kuat untuk IC50 bernilai 50-100 g/ml,

sedang jika IC50 bernilai 100-150 g/ml, dan lemah jika IC50 bernilai 151-200

g/ml (Anonim, 2005).


BAB IV

HASIL DAN PEMBAHASAN

4.1 Hasil Identifikasi Tumbuhan

Hasil identifikasi tumbuhan yang dilakukan di Laboratorium Taksonomi

Tumbuhan, Departemen Biologi, Fakultas Matematika dan Ilmu Pengetahuan

Alam, Universitas Sumatera Utara menunjukkan bahwa sampel termasuk suku

Solanaceae, jenis Solanum betaceum Cav.

4.2 Hasil Skrining Fitokimia

Dari 200 g sampel segar buah terong belanda (Solanum betaceum Cav.)

yang diekstraksi secara maserasi menggunakan pelarut etanol diperoleh ekstrak

kental sebanyak 19,047 g (9,52 % b/b) yang berwarna ungu tua.

Hasil skrining fitokimia yang dilakukan selama 2 hari terhadap buah segar

terong belanda (Solanum betaceum Cav.) mengandung senyawa-senyawa kimia

seperti yang terlihat pada tabel 1 berikut ini:

Tabel 2. Hasil Skrining Fitokimia Buah Terong Belanda (Solanum betaceum Cav.)

No. PEMERIKSAAN Hasil

1 Alkaloida +

2 Flavonoida +

3 Tanin +

4 Saponin +

5 Glikosida +

6 Antrakuinon __

7 Steroida/Triterpenoida +


Hasil di atas menunjukkan bahwa buah terong belanda (Solanum betaceum

Cav.) memiliki aktivitas sebagai antioksidan, yaitu dengan adanya senyawa kimia

golongan flavonoida. Senyawa flavonoida secara umum bertindak sebagai

antioksidan yaitu sebagai penangkap radikal bebas karena mengandung gugus

hidroksil. Flavonoida bersifat sebagai reduktor sehingga dapat bertindak sebagai

donor hidrogen terhadap radikal bebas (Silalahi, J. 2006).

4.3 Hasil Penentuan Serapan Maksimum

Dari hasil pengukuran serapan maksimum larutan DPPH 40 ppm dalam

metanol dengan menggunakan spektrofotometer UV-Vis diperoleh serapan

maksimum pada panjang gelombang 514 nm. Hasil pengukuran serapan

maksimum ini tidak jauh berbeda dari hasil pengukuran yang diperoleh oleh

peneliti-peneliti sebelumnya. Data hasil pengukuran dapat dilihat pada gambar 1

berikut ini:

Gambar 1. Kurva serapan maksimum larutan DPPH 40 ppm dalam metanol

secara spektrofotometri visibel


4.4 Hasil Penentuan Operating Time Larutan DPPH dalam Metanol

Penentuan operating time larutan DPPH 40 ppm dalam metanol dilakukan

dengan waktu preparasi selama 6 menit dan dari hasil pengukuran diperoleh

waktu kerja yang terbaik (stabil) selama 18 menit yaitu pada menit ke-18 sampai

menit ke-36 setelah penambahan pelarut metanol. Kurva serapan untuk operating

time larutan DPPH dalam metanol dapat dilihat pada gambar 2 berikut ini (data

terlampir):

0.315

0.32

0.325

0.33

0.335

0.34

0.345

0.35

0.355

0 10 20 30 40 50 60 70

t (menit)

Abso

rban

si

Gambar 2. Kurva Absorbansi Operating Time Larutan DPPH dalam Metanol

4.5 Hasil Analisis Aktivitas Antioksidan Sampel Uji

Berdasarkan data hasil pengukuran absorbansi DPPH pada menit ke-18

dan menit ke-36 dengan adanya penambahan larutan uji ekstrak etanol buah

terong belanda (Solanum betaceum Cav.) dan vitamin C dengan konsentrasi 40

ppm, 80 ppm, 120 ppm dan 160 ppm yang dibandingkan terhadap kontrol DPPH

(tanpa penambahan sampel/larutan uji) dapat dianalisis aktivitas antioksidan

sampel uji. Untuk melihat hubungan absorbansi DPPH terhadap penambahan


konsentrasi sampel uji dalam menganalisis aktivitas antioksidannya dapat dilihat

dari kurva pada gambar 3 dan 4 untuk ekstrak etanol buah terong belanda

(Solanum betaceum Cav.) dan gambar 5 dan 6 untuk vitamin C berikut ini:

0.8

0.9

1

1.1

1.2

1.3

0 50 100 150 200Konsentrasi (ppm)

Ab

sorb

ansi A 514

A 534

A 494

Gambar 3. Hasil analisis aktivitas antioksidan sampel ekstrak etanol buah terong belanda (Solanum betaceum Cav.) pada menit ke-18

0.8

0.9

1

1.1

1.2

1.3

0 50 100 150 200Konsentrasi (ppm)

Abs

orba

nsi

A 514

A 534

A 494

Gambar 4. Hasil analisis aktivitas antioksidan sampel ekstrak etanol buah terong belanda (Solanum betaceum Cav.) pada menit ke-36


-0.2

0

0.2

0.4

0.6

0.8

1

0 50 100 150 200

Konsentrasi (ppm)

Abso

rban

si

A 494A 514A 534

Gambar 5. Hasil analisis aktivitas antioksidan vitamin C pada menit ke-18

-0.2

0

0.2

0.4

0.6

0.8

1

1.2

0 50 100 150 200

Konsentrasi (ppm)

Abso

rban

si

A 494A 514A 534

Gambar 6. Hasil analisis aktivitas antioksidan vitamin C pada menit ke-36

Dari gambar 3 dan 4 (ekstrak etanol terong belanda) serta gambar 5 dan 6

(vitamin C) dapat dilihat adanya penurunan nilai absorbansi DPPH yang diberi

sampel uji terhadap kontrol pada setiap kenaikan konsentrasi. Penurunan nilai

absorbansi DPPH ini mempunyai arti bahwa telah terjadi

penangkapan/peredamam radikal bebas DPPH oleh sampel uji. Dan penurunan

nilai absorbansi DPPH ini menunjukkan adanya aktivitas antioksidan dari ekstrak

etanol buah segar terong belanda (Solanum betaceum Cav.) dan vitamin C.


4.6 Hasil Analisis Peredaman Radikal Bebas DPPH Oleh Sampel Uji

Analisis peredaman radikal bebas DPPH oleh sampel uji dapat diperoleh

dengan terlebih dahulu menghitung nilai AHitung (absorbansi hitung) dari data hasil

pengukuran absorbansi pada panjang gelombang 494 nm, 514 nm dan 534 nm

pada menit ke-18 dan menit ke-36. Dari analisis yang telah dilakukan, diperoleh

nilai persen peredaman pada setiap kenaikan konsentrasi sampel uji seperti yang

terlihat pada tabel berikut ini (perhitungan terlampir):

Tabel 3. Hasil Analisis Peredaman Radikal Bebas Oleh Ekstrak Etanol Terong Belanda (Solanum betaceum Cav.) Menit ke- Sampel A494 A514 A534 AHitung %peredaman

18

DPPH 1.0644 1.2604 1.1223 0.1671 __

40 0.9859 1.1769 1.0394 0.1643 1.68

80 0.9636 1.1464 1.0153 0.1570 6.04

120 0.9066 1.0785 0.9498 0.1503 10.05

160 0.8693 1.0365 0.9113 0.1462 12.51

36

DPPH 1.0668 1.2601 1.1212 0.1661 __

40 0.9734 1.1572 1.0236 0.1587 4.45

80 0.9509 1.1306 0.9988 0.1558 6.26

120 0.8986 1.0728 0.9473 0.1499 9.75

160 0.8536 1.0122 0.8920 0.1394 16.07

Keterangan: Data merupakan hasil dari 3 kali pengukuran


Tabel 4. Hasil Analisis Peredaman Radikal Bebas Oleh Vitamin C Menit

ke-

Sampel

(ppm) A494 A514 A534 AHitung % peredaman

18

DPPH 0.8436 1.0129 0.8843 0.1490 __

40 0.0879 0.0408 0.0246 0.0155 89.60

80 0.0694 0.0390 0.0201 0.0058 96.10

120 0.0681 0.0373 0.0190 0.0063 95.77

160 0.0642 0.0333 0.0158 0.0067 95.50

36

DPPH 0.8582 1.0840 0.9002 0.2048 __

40 0.0935 0.0511 0.0262 0.0088 95.70

80 0.0696 0.0379 0.0198 0.0068 96.68

120 0.0684 0.0367 0.0184 0.0067 96.73

160 0.0646 0.0332 0.0157 0.0070 96.58


Dari tabel 1 (ekstrak terong belanda) dan tabel 2 (vitamin C) di atas dapat

dilihat bahwa setiap kenaikan konsentrasi dan dengan bertambahnya waktu

menunjukkan peningkatan peredaman radikal bebas DPPH oleh sampel uji. Untuk

melihat kurva hubungan konsentrasi sampel uji (ppm) dengan persen peredaman

radikal bebas DPPH dapat diperoleh dengan memplot nilai dari persen peredaman

dan konsentrasi sampel uji yang dapat dilihat pada gambar 7 untuk ekstrak etanol

terong belanda (Solanum betaceum Cav.) dan gambar 8 untuk vitamin C berikut

ini:


0

2

4

6

8

10

12

14

16

18

0 20 40 60 80 100 120 140 160 180

konsentrasi (ppm)

% p

ered

aman

t = 36't = 18'

Gambar 7. Hubungan konsentrasi ekstrak etanol buah terong belanda (Solanum betaceum Cav.) dengan persen peredaman pada menit ke-18 dan menit ke-36

0

20

40

60

80

100

120

0 20 40 60 80 100 120 140 160 180

konsentrasi (ppm)

% p

ered

aman

t = 36't = 18'

Gambar 8. Hubungan konsentrasi vitamin C (ppm) dengan persen peredaman pada menit ke-18 dan menit ke-36


4.7 Analisis Nilai IC50 (inhibitory concentration) Sampel uji

Analisis nilai IC50 dihitung berdasarkan persamaan regresi linier yang

didapatkan dengan cara memplot konsentrasi larutan uji dan persen peredaman

DPPH sebagai parameter aktivitas antioksidan, dimana konsentrasi larutan uji

(ppm) sebagai absis dan nilai persen peredaman sebagai ordinat. Hasil persamaan

regresi linier yang diperoleh untuk ekstrak etanol terong belanda (Solanum

betaceum Cav.) adalah y = 0,0835X 0,62 pada menit ke-18 dan y = 0,0936X

0,182 pada menit ke-36 dan untuk vitamin C adalah y = 0,4929X + 35,958 pada

menit ke-18 dan y = 0,4855X + 38,298 pada menit ke-36. Hasil analisis nilai IC50

yang diperoleh berdasarkan perhitungan persamaan regresi yang telah dilakukan

dapat dilihat pada tabel berikut ini:

Tabel 5. Nilai IC50 ekstrak etanol terong belanda dan vitamin C Menit

ke- SAMPEL

IC 50

(ppm)

18 Ekstrak etanol terong belanda

Vitamin C

606.228

28.489

36 Ekstrak etanol terong belanda

Vitamin C

536.132

24.103

Dari tabel di atas menunjukkan bahwa ekstrak etanol buah segar terong

belanda (Solanum betaceum Cav.) memiliki aktivitas antioksidan yang sangat

lemah dibandingkan dengan vitamin C sebagai kontrol positif yang memiliki

aktivitas antioksidan yang sangat kuat. Hal ini dikarenakan aktivitas antioksidan

pada ekstrak etanol buah segar terong belanda (Solanum betaceum Cav.) hanya

ditentukan oleh senyawa-senyawa antioksidan yang dapat larut (terekstraksi)_


dalam etanol (pelarut polar) seperti senyawa golongan polifenol (senyawa

flavonoida, antosianin), vitamin A dan sebagian vitamin C. Seperti diketahui

bahwa vitamin C mudah larut di dalam air namun agak sukar larut dalam etanol.

Vitamin ini sangat peka, mudah rusak kalau kena cahaya, panas, udara dan

oksigen Sedangkan senyawa-senyawa lain yang memiliki aktivitas antioksidan

yang terdapat dalam buah terong belanda (Solanum betaceum Cav.) seperti beta

karoten dan vitamin E kemungkinan tidak ikut terekstraksi dalam ekstrak etanol.

Senyawa-senyawa ini memiliki sifat larut dalam lemak atau pelarut organik

(nonpolar) dan tidak larut dalam pelarut polar seperti etanol. (Kumalaningsih,

2006).


BAB V

KESIMPULAN DAN SARAN

5.1 KESIMPULAN

Buah terong belanda (Solanum betaceum Cav.) mengandung senyawa

kimia golongan alkaloida, tanin, saponin, glikosida, steroida/triterpenoida

dan flavonoida yang memiliki aktivitas sebagai antioksidan.

Hasil pemeriksaan aktivitas antioksidan yang dilakukan terhadap ekstrak

etanol buah segar terong belanda (Solanum betaceum Cav.) menggunakan

spektrofotometer UV-visibel pada panjang gelombang 494 nm, 514 nm

dan 534 nm pada menit ke-18 dan menit ke-36 menunjukkan adanya

aktivitas antioksidan dengan nilai IC 50 sebesar 609,073 ppm pada menit

ke-18 dan 534,989 ppm pada menit ke-36. Perlakuan yang sama juga

dilakukan terhadap vitamin C sebagai kontrol positif dan diperoleh nilai

IC50 sebesar 28,991 ppm pada menit ke-18 dan 24,077 ppm pada menit ke-

36. Dengan demikian hal ini menunjukkan bahwa ekstrak etanol dari buah

segar terong belanda (Solanum betaceum Cav.) memiliki aktivitas

antioksidan yang sangat lemah dibandingkan dengan vitamin C sebagai

kontrol positif.

5.2 SARAN

Disarankan kepada peneliti selanjutnya agar melakukan uji aktivitas

antioksidan buah terong belanda menggunakan ekstrak hasil penyarian

dengan pelarut lain seperti air atau pelarut nonpolar.


DAFTAR PUSTAKA

Amrun dan Umiyah. (2007). Uji Aktivitas Ekstrak Air dan Ekstrak Metanol Beberapa Varian Buah Kenitu (Chrysphyllum cainito L.) Dari Daerah Jember. Bagian Biologi Farmasi, Program Studi Farmasi Universitas Jember. Hal. 45-50

Anonim. Online 2001. Uji Aktivitas Antioksidan.

http://karieeen.wordpress.com/2001/uji aktivitas antioksidan

/

Anonim. Online 2003.Metode Sampling.USU digital Library. Anonim. Online 2004. Antioksidan, Resep Sehat dan Umur Panjang

http://www.Gizi.Net/pengumuman/index,shtml/

Anonim. Online 2005,Tanaman Obat Indonesia.

http://www.iptek.go.id

Anonim.Online 2008.Panjang Umur dengan Antioksidan.

http://www . hersmagz.com/hers_magazine/view_catagory.

Anonim. Online 2008.Rujak Makanan Masa Depan.

http://www.keluarga sehat.com

Anonim. Online 2009. Sari Buah Tamarillo.

http://www.kotadaengnet.infokotamakassar_herbalif_saribuahtamarillo.com

Cahyana, A.H. dan Taufik, M. (2005). Isolasi Senyawa Antioksidan Kulit Batang Kayu Manis (Cinnamomum burmanii Nees ex Blume). Prosiding Simposium Nasional Kimia Bahan Alam XV. Departemen Kimia FMIPA. IPB. Bogor. Hal. 95-100

Coronel.R.E. and Verheij.E.W.M. (1992). Prosea Foundation Plant

Resources of South-East Asia no 12.Vegetable.Bogor-Indonesia. Dachriyanus. (2004). Analisis Struktur Senyawa Organik Secara Spektroskopi.

Padang: Andalas University Press. Hal. 1-7. Day, R.A. dan Underwood, A.L. (1986). Analisis Kimia Kuatitatif. Edisi Ke-6.

Terjemahan Iis Sopyan. Jakarta: Erlangga. Hal. 382. Departemen Kesehatan RI. (1978). Materia Medika Indonesia. Jilid II.

Jakarta: Depkes RI. Hal.150-156, 165-167.


Departemen Kesehatan RI. (1979). Farmakope Indonesia. Edisi III. Jakarta: Depkes RI. Hal. 29-31 33, 649, 748.

Departemen Kesehatan dan Kesehatan Sosial RI. (2001). Inventaris Tanaman

Obat Indonesia. Cetakan pertama. Jilid kedua, Jakarta: Badan Penelitian dan Pengembangan Kesehatan. Hal. 17-18

Fransworth, N.R. (1996). Biological And Phytochemical Screening of Plants.

Journal of Pharmaceutical Science. Volume 55 No. 3. Chicago: Reheis Chemical Company. Pages: 257-259, 263.

Harborne, J.B. (1987). Metode Fitokimia, Penuntun Cara Modern

Menganalisa Tumbuhan. terjemahan K. Padmawinata. Edisi II. Bandung: ITB Press. Hal. 6, 71, 76, 84-85, 94-97.

Kosasih, dkk. (2004). Peranan Antioksidan Pada Lanjut Usia. Jakarta: Pusat

Kajian Nasional Masalah Lanjut Usia. Hal. 48-49, 56-69. Kumalaningsih. (2006). Antioksidan Alami. Surabaya: Trubus Agrisarana.

Hal.16. Kumalaningsih. (2006). Antioksidan Alami Terong Belanda (Tamarillo).

Surabaya: Trubus Agrisarana. Hal.16. Molyneux, P. (2004). The Use Of The Stable Free Radical

diphenylpicrylhydrazyl (DPPH) For Estimating Antioxidant Activity. Songklanakarin J. Sci. Technol. 26(2): 211-9.

Silalahi, J. (2006). Makanan Fungsional. Yogyakarta: Kanisius. Hal. 41-49,

54-55.


Lampiran 1. Surat Hasil Identifikasi Tumbuhan


Lampiran 2. Tumbuhan Terong Belanda (Solanum betaceum Cav.)

Gambar 9. Tunbuhan Terong Belanda (Solanum betaceum Cav.)


Gambar 10. Bunga Terong Belanda (Betacei flos)

Lampiran 2 (Lanjutan)

Gambar 11. Buah Terong Belanda (Betacei fructus)

Gambar 12. Buah Terong Belanda yang dipotong dua


Lampiran 3. Gambar Alat Spektrofotometer

Gambar 13. Spektrofotometer UV-Visibel (Shimadzu mini 1240)


Lampiran 4. Bagan Ekstraksi Bahan Segar Secara Maserasi

dimasukkan ke dalam sebuah bejana dituangi dengan 1500 ml etanol

ditutup dibiarkan selama 5 hari terlindung dari cahaya sambil sesekali diaduk

diserkai, diperas

dicuci dengan etanol 96% secukupnya hingga diperoleh 2000 ml

dipindahkan ke dalam bejana tertutup dibiarkan di tempat sejuk, terlindung

dari cahaya, selama 2 hari dienap-tuangkan dan disaring

digabung dipekatkan dengan alat rotary evaporator

dikeringkan dengan alat Freeze dryer

200 g bahan segar yang telah dihaluskan

Maserat Ampas

Ekstrak cair

Ampas Maserat

Ekstrak kasar


Lampiran 5. Data Absorbansi Operating Time Larutan DPPH Dalam Metanol


Lampiran 6. Perhitungan


Tabel 3. Analisis Peredaman Radikal Bebas Oleh Ekstrak Etanol Terong Belanda (Solanum betaceum Cav.) Menit ke- Sampel A494 A514 A534 AHitung %peredaman

18

DPPH 1.0644 1.2604 1.1223 0.1671 __

40 0.9859 1.1769 1.0394 0.1643 1.68

80 0.9636 1.1464 1.0153 0.1570 6.04

120 0.9066 1.0785 0.9498 0.1503 10.05

160 0.8693 1.0365 0.9113 0.1462 12.51

36

DPPH 1.0668 1.2601 1.1212 0.1661 __

40 0.9734 1.1572 1.0236 0.1587 4.45

80 0.9509 1.1306 0.9988 0.1558 6.26

120 0.8986 1.0728 0.9473 0.1499 9.75

160 0.8536 1.0122 0.8920 0.1394 16.07


AHitung : Absorbansi hitung (nm)

A494 : Absorbansi pada panjang gelombang 494 nm



( ) %1002

534494514 x

AAAAHitung+

=

( ) %1001% xA

Aperedaman

DPPHHitung

ujibahanHitung=

Perhitungan AHitung ekstrak etanol terong belanda (Solanum betaceum

Cav.)


( ) %1002

534494514 x

AAAAHitung+

=

Pada menit ke-18 :

( ) %1002

1223.10644.12604.1 xADPPHHitung

+=

= 0.1671

- Pada menit ke-18 konsentrasi 40 ppm :

( ) %1002

0394.19859.01769.1 xAHitung+

=

= 0.1643


( ) %1002

0153.19636.01464.1 xAHitung+

=

= 0.1570


( ) %1002

9498.09066.00785.1 xAHitung+

=

= 0.1503


( ) %1002

9113.08693.00365.1 xAHitung+

=

= 0.1462

Pada menit ke-36 :

( ) %1002

1212.10668.12601.1 xADPPHHitung

+=


= 0.1661


( ) %1002

0236.19734.01572.1 xAHitung+

=

= 0.1587


( ) %1002

9988.09509.01306.1 xAHitung+

=

= 0.1558


( ) %1002

9473.08986.00728.1 xAHitung+

=

= 0.1499


( ) %1002

8920.08536.00122.1 xAHitung+

=

= 0.1394

Perhitungan persen peredaman ekstrak etanol terong belanda

(Solanum betaceum Cav.)


( ) %1001% xA

Aperedaman

DPPHHitung

ujibahanHitung=

Pada menit ke-18 :

- Persen peredaman pada menit ke-18 konsentrasi 40 ppm:

( ) %1001671.01643.01% xperedaman =

= 1.68 %


( ) %1001671.01570.01% xperedaman =

= 6.04 %


( ) %1001671.01503.01% xperedaman =

= 10.05 %


( ) %100

1671.01462.01% xperedaman =

= 12.51 %

Pada menit ke-36 :



( ) %1001661.01587.01% xperedaman =

= 4.45 %


( ) %1001661.01558.01% xperedaman =

= 6.26 %


( ) %1001661.01499.01% xperedaman =

= 9.75 %

- Persen pered

Uaa Terong Belanda

Documents

Transcript of Uaa Terong Belanda