Proposal Penelitian Profil darah ayam perlakuan perbedaan kandang dan perbedaan suhu

7/22/2019 Proposal Penelitian Profil darah ayam perlakuan perbedaan kandang dan perbedaan suhu

1/22

PROFIL DARAH AYAM PETELUR PADA SISTEM

PEMELIHARAAN DAN SUHU KANDANG YANG BERBEDA

PROPOSAL

YUNITA SILVIA NINGTYAS

DEPARTEMEN ILMU PRODUKSI DAN TEKNOLOGI

PETERNAKAN

FAKULTAS PETERNAKAN

INSTITUT PERTANIAN BOGOR

BOGOR

2014


2/22


3/22

DEPARTEMEN PENDIDIKAN NASIONAL

INSTITUT PERTANIAN BOGOR

FAKULTAS PETERNAKANSekretariat: Jl. Agatis, Kampus IPB Darmaga, Bogor 16680

LEMBAR PENGESAHAN

Identitas Mahasiswa

Nama Lengkap Yunita Silvia Ningtyas

Nomr Induk Mahasiswa D14100025

Alamat di Bogor Wisma Amany

Jalan Babakan Tengah Nomor 40

Dramaga, Bogor

Alamat Asal Dusun Kerisik, Desa Kemiri RT 11/RW 4

Kecamatan Jabung, Malang

Beban studi yang akan

diambil saat ini

7 sks

Beban studi yang telah

diselesaikan

139 sks

IPK sampai saat ini 3,62

Judul Penelitian Profil Darah Ayam Petelur pada Sistem

Pemeliharaan dan Suhu Kandang yang Berbeda

Lokasi Penelitian Kandang B closed house, Departemen Ilmu

Produksi dan Teknologi Peternakan, Fakultas

Peternakan, Institut Pertanian Bogor.

Laboratorium Fisiologi, Fakultas KedokteranHewan, Institut Pertanian Bogor.

Lama Penelitian 53 hari

Proposal ini telah disetujui oleh Pembimbing pada tanggal 11 Juni 2014.

Pembimbing Utama Pembimbing Anggota Mahasiswa Ybs.

Dr. Rudi Afnan, S.Pt., M.Sc.Agr. Dr. drh. Sri Estuningsih, M.Si. APVet. Yunita Silvia N.

NIP. 19680625 200801 1 010 NIP. 19600629 199002 2 001 NIM. D14100025

Mengetahui,

Ketua Departemen

Ilmu Produksi dan Teknologi Peternakan

Prof. Dr. Ir. Muladno, MSA.

NIP. 19610824 198603 1 001


4/22


5/22

DAFTAR ISI

Halaman

LEMBAR PENGESAHAN iiDAFTAR ISI iii

DAFTAR TABEL iv

DAFTAR LAMPIRAN iv

PENDAHULUAN 1

Latar Belakang 1

Tujuan 2

TINJAUAN PUSTAKA 2

Ayam Petelur 2

Komposisi Sel Darah 2

Eritrosit 3

Hematokrit 4Hemoglobin 4

Leukosit 4

Heterofil 5

Limfosit 5

Eosinofil 6

Monosit 6

Basofil 6

Sistem Perkandangan 7

Suhu Kandang dan Kandang Tertutup 7

METODE 8

Bahan 8Alat 8

Lokasi dan Waktu 9

Prosedur 9

Analisis Data 12

DAFTAR PUSTAKA 12

LAMPIRAN 15


6/22

DAFTAR TABEL

1 Gambaran Darah pada Ayam Normal 32 Analisis Proksimat Ransum Komersial Gold Coinuntuk Ayam Petelur

Umur 19 Minggu Berdasarkan Label 105-M 8

DAFTAR LAMPIRAN

1 Rincian Rencana Anggaran Biaya 182 Jadwal Kegiatan 20


7/22

PENDAHULUAN

Latar Belakang

Darah merupakan alat transportasi yang dibutuhkan oleh semua bagian sel

tubuh untuk mengangkut nutrien penting dan mengalirkannya melalui pembuluh

darah, serta membawa sisa hasil metabolisme menuju organ sekresi (Jain 1993).

Beberapa fungsi penting darah antara lain mengangkut oksigen dari paru-paru

menuju jaringan, membawa karbondioksida dari jaringan menuju paru-paru,

mengangkut nutrien dari saluran pencernaan menuju jaringan, dan mengangkut

sisa metabolisme tubuh menuju organ pembuangan. Darah terdiri dari sel-sel yang

terendam dalam plasma darah, yang terdiri atas sel darah merah (erythrocyte), sel

darah putih (leukocyte), dan keping darah (thrombocytes), yang semuanya

berhubungan dengan homeostasis tubuh (Dellman dan Brown 1992). Oleh karena

itu perubahan fisiologis pada ternak dapat diamati melalui perubahan profildarahnya.

Ayam petelur yang dipelihara pada iklim tropis memerlukan manajemen

pemeliharaan yang sesuai, sehingga berdampak baik terhadap kesejahteraan dan

produktifitas ayam petelur. Sistem perkandangan closed house telah terbukti dapat

meningkatkan produktifitas ayam petelur jika dilakukan dengan manajemen yang

benar. Manajemen pemeliharaan yang kurang baik, terutama pada manajemen

kebersihan kandang dapat memicu munculnya penyakit yang bermacam-macam

pada ternak. Salah satu faktor pemicunya adalah kualitas udara kandang yang

kurang baik.

Sistem perkandangan yang saat ini dikenal pada ayam petelur adalah

sistem litterdan cage. Kandang dengan sistem litterbiasanya merupakan kandangyang beralaskan sekam dan ayam ditempatkan secara kelompok, sedangkan pada

kandang dengan sistem cage, ayam ditempatkan pada kandang panggung dengan

penampung telur menempel tepat di bawah kandang dan tempat pakan serta

minumnya berada di luar kandang namun ayam tetap dapat menjangkaunya dari

dalam kandang. Sistem pemeliharaan cageini biasanya menempatkan ayam pada

kandang individu. Terdapat kelebihan dan kelemahan pada masing-masing sistem

perkandangan tersebut. Sistem kandang litter berkelompok biasanya dipilih karena

memperhatikan kesejahteraan (welfare) pada ternak, sedangkan sistem kandang

cage individu biasanya dipilih dengan tujuan produktifitas yang lebih tinggi.

Perbedaan sistem perkandangan tersebut akan berpengaruh terhadap perubahan

respon fisiologis pada ternak, dan pada akhirnya berpengaruh terhadap

produktifitas ternak. Penilaian produktifitas ayam petelur dapat dilihat

berdasarkan nilai FCR (Feed Convertion Ratio) yang merupakan rasio antara

pemberian pakan dengan jumlah telur yang dihasilkan.

Suhu dan kelembaban kandang yang tidak sesuai juga menciptakan

kondisi lingkungan yang ideal bagi perkembangan parasit, bakteri dan virus

pembawa penyakit. Oleh karena itu sistem kandang dan suhu lingkungan yang

berbeda dapat mempengaruhi profil darah ayam petelur.


8/22

Tujuan

Penelitian ini bertujuan untuk mengetahui pengaruh perbedaan sistem

pemeliharaan pada kandang closed house dengan model litter dan cage, serta

pengaruh suhu yang berbeda terhadap profil darah ayam petelur, yang terdiri ataskadar hemoglobin dalam darah, persentase volume eritrosit, jumlah butir darah

merah (BDM), jumlah butir darah putih (BDM) dan diferensiasi leukosit. Selain

itu penelitian ini juga bertujuan mengetahui pengaruh penurunan kualitas udara

kandang tertutup dan kebersihan kandang terhadap profil darah ayam petelur.

TINJAUAN PUSTAKA

Ayam Petelur

Ayam petelur adalah ayam yang khusus dipelihara untuk diambil telurnya

(Yuwanta 2004). Selain kebutuhan pakan, hal yang berpengaruh pada

produktifitas ayam petelur adalah kondisi lingkungan, perkandangan, dan

kesehatan ayam (Wahju 1997). Berdasarkan kebutuhan zat makanannya, terdapat

tiga fase pemeliharaan yaitu fase starter mulai umur 0-6 minggu, fase grower

mulai umur 6-18 minggu dan fase layer pada umur lebih dari 18 minggu

(NRC 1994). Produksi ayam ras petelur per tahun yang tinggi yaitu 250-300

butir (Yuwanta, 2004).

Kebutuhan pakan ayam petelur terutama ditujukan pada produksi telur

yang tinggi dan berkualitas baik. Lesson dan Summers (2005), menyebutkan

bahwa ayam petelur umur 18 minggu hingga saat pertama kali bertelurmemerlukan energi metabolis sebanyak 2900 kkal/kg dan protein kasar sebesar

20%.

Komposisi Sel Darah

Darah adalah cairan yang berfungsi membawa zat-zat nutrien dan

oksigen yang dibutuhkan oleh tubuh, mengangkut bahan-bahan sisa hasil

metabolisme dari sel kembali ke jantung untuk dibuang melalui paru-paru dan

ginjal (Adriani et al. 2010). Fungsi utama darah adalah mempertahankan

homeostasis tubuh (Dellman dan Brown, 1992). Darah terdiri dari sel-sel yangterendam dalam cairan yang disebut plasma. Sel darah terdiri atas 3 macam, yaitu

sel darah merah (erythrocyte), sel darah putih (leukocyte), dan keping darah

(thrombocytes atau platelets) (Frandson 1992). Beberapa fungsi darah menurut

Frandson (1992), adalah :

1. Membawa nutrien yang telah disiapkan oleh saluran pencernaan menujujaringan tubuh.

2. Membawa oksigen dari paru-paru ke seluruh jaringan tubuh.3. Membawa karbondioksida dari jaringan ke paru-paru untuk dibuang.4. Membawa produk buangan dari berbagai jaringan menuju ginjal untuk

diekskresikan.


9/22

5. Berperan penting dalam pengendalian suhu, dengan cara mengangkut panasdari bagian dalam tubuh menuju permukaan tubuh.

6. Berperan dalam sistem bufer, seperti bikarbonat di dalam darah membantumempertahankan pH yang konstan pada jaringan dan cairan tubuh.

7. Sebagai pembeku darah yang mencegah terjadinya kehilangan darah yangberlebihan pada waktu luka.Profil darah pada hewan dapat berubah jika terjadi gangguan fisiologis.

Komposisi sel-sel darah dapat digunakan sebagai indikator adanya penyakit atau

stress. Peubah sel darah adalah ukuran yang berguna dalam penelitian kesehatan

dan kesejahteraan hewan (Post et al 2002). Faktor yang menyebabkan perubahan

profil darah dapat disebabkan oleh faktor internal dan eksternal. Faktor internal

misalnya stres, kesehatan, status gizi, suhu tubuh, trauma, sedangkan faktor

eksternal misalnya perubahan suhu lingkungan, dan infeksi kuman (Guyton dan

Hall, 1997).Gambaran darah ayam menurut Sturkie dan Griminger (1976) dan

Swenson (1984) dapat dilihat pada Tabel 1.cari referensi baru

Tabel 1. Gambaran Darah pada Ayam Normal

Parameter

Sumber

Sturkie danGrimminger (1976)

Swenson (1984)

Mangkoewidjojo

dan Smith

(1988)

Hematokrit (%) 25,5 30-33

24,0-43,0Hemoglobin (g/ml) 8,9 6,5-9,0 7,3-10,9

Eritrosit (106/mm

3) 2,72 2,55-3,2 2,0-3,2

Leukosit (10

3

/mm

3

) 29,4 20-30 16,0-40,0Limfosit (%) 66,0 55-60 24,0-84,0Heterofil (%) 20,9 25-30 9,0-56,0Monosit (%) - 10 0,0-30,0

Eosinofil (%) - 3-8 0,0-7,0Basofil (%) - - -

Eritrosit

Eritrosit adalah sel darah merah yang mengangkut hemoglobin pada

sirkulasi darah, bentuknya bikonkaf dan diproduksi pada sumsum tulang

belakang. Eritrosit pada unggas berbentuk oval dan nukleusnya lebih besardaripada mamalia (Sturkie dan Griminger 1976). Selain itu, nukleus pada unggastetap terdapat pada sel-sel darah merah, sedangkan pada mamalia hanya terdapat

pada fetus (Frandson 1992).

Fungsi utama eritrosit adalah membawa hemoglobin yang mengangkut

oksigen dari paru-paru dan nutrien dari makanan untuk disalurkan ke seluruh

jaringan tubuh (Guyton dan Hall 2010). Sel-sel jaringan tergantung pada eritrosit

dalam memperoleh suplai oksigen (Dellman dan Brown 1992). Sel darah merah

juga mempunyai carbonic anhydrase, yaitu enzim yang mengkatalis reaksi

antara karbon dioksida (CO2) dan air (H2O) menjadi asam karbonat (H2CO3)

(Guyton dan Hall 2010). Diameter eritrosit ayam adalah 12,2-7,3 (Hartono

1988).


10/22

Pembentukan sel darah merah atau erythropoiesis terjadi dalam sumsum

tulang merah (medulla asseum rubrum) dan dibantu oleh erythropoitin, yang

merupakan hormon yang diproduksi pada ginjal (Meyer 1992). Erythropoiesis

membutuhkan bahan dasar berupa protein dan beberapa aktivator, yaitu

mikromineral berupa Cu, Fe dan Zn (Praseno, 2005). Jika pada suatu hewanterjadi hemolisis yang lebih cepat daripada pembentukan sel-sel darah yang baru,

atau sel-sel darah tidak matang secara normal maka akan timbul anemia pada

hewan tersebut (Frandson 1992).

HematokritHematokrit atau Packed Volume Cell (PVC) adalah istilah yang

menunjukkan persentase sel darah merah (berdasarkan volume) terhadap volume

darah (Frandson 1992). Nilai PCV hewan normal sebanding dengan jumlah

eritrosit dan kadar hemoglobin (Widjajakusuma dan Sikar 1986). Nilai hematokrit

juga dipengaruhi oleh ukuran sel. Cara penghitungan nilai hematokrit dapat

dilakukan dengan metode mikrohematokrit atau makrohematokrit, namun secaraumum metode yang lebih sering digunakan adalah mikrohematokrit yaitu dengan

cara sentrifuse darah yang diambil menggunakan mikropipet yang telah dicampur

dengan antikoagulan (Sastradipradja et al.1989).

HemoglobinHemoglobin atau zat warna merah pada darah merupakan senyawa yang

berasal dari dari ikatan komplek antara protein dan Fe, disusun protein konjugasi

dan protein sederhana (Swenson 1984). Hemoglobin diproduksi oleh eritrosit

yang disintesis dari asam asetat dan glycinemenghasilkan porphyrin. Kombinasi

Phorpyrin dan besi akan menghasilkan satu molekul heme. Selanjutnya empat

molekul heme yang berkombinasi dengan molekul globin akan membentukhemoglobin (Rastogi 1977).

Hemoglobin dalam eritrosit bekerja mengikat oksigen untuk membentuk

oksihemoglobin. Bahan yang mampu membawa oksigen dalam darah adalah

protein berisi logam (biasanya besi atau tembaga), biasanya berwarna merah dan

disebut respira tory pigment(Nielsen 1997).

Persentase hemoglobin dapat digunakan untuk mendiagnosis anemia, dan

menggambarkan kapasitas sumsum tulang yang dalam memproduksi eritrosit,

kadar hemoglobin dan kapasitas metabolik. Faktor yang berpengaruh terhadap

jumlah eritrosit juga berpengaruh terhadap hemoglobin, antara lain anemia dan

hipoksia (Sturkie dan Grimminger 1976). Penurunan kadar hemoglobin dapat

disebabkan oleh ganggunan dalam erythropoiesis pada sumsum tulang yang

dipengaruhi oleh kadar oksigen pada jaringan (Frandson 1992).

Leukosit

Leukosit adalah sel darah putih yang jumlahnya lebih sedikit daripada

eritrosit dalam darah. Perbandingan antara leukosit dan eritrosit pada darah ayam

kurang lebih adalah 1:100 (Swenson 1984). Sel darah putih merupakan bagian

dari sistem pertahanan tubuh yang dapat bergerak. Leukosit berdasarkan

bentuknya dibagi menjadi granuosit dan agranulosit. Granulosit dicirikan dengan

adanya granula dalam sitoplasma, dan terdiri dari neutrofil, eosinofil dan basofil,


11/22

sedangkan agranulosit adalah sel darah putih yang tidak memiliki granula pada

sitoplasmanya, dan terdiri dari limfosit dan monosit (Swenson 1984).

Leukosit sebagian dibentuk pada sumsum tulang belakang (granulosit dan

monosit serta sebagian limfosit) dan sebagaian lagi dibentuk pada jaringan limfa

(limfosit dan sel plasma). Setelah pembentukan, sel darah putih masuk ke dalamaliran darah dan biasanya bersifat nonfungsional karena hanya diangkut ke

jaringan dan di lokasi ketika dibutuhkan (Guyton dan Hall 2010).

Leukosit merupakan unit sistem pertahanan tubuh yang bekerja dengan

menghancurkan agen penyerang melalui proses fagositosis dan membentuk

antibodi (Guyton 1982). Pengamatan leukosit bermanfaat untuk mendiagnosis

status kekebalan ternak yang bersangkutan. Respon kekebalan tubuh yang

menurun akibat kerusakan jaringan tubuh yang berfungsi membentuk dan

mendewasakan sel-sel yang berperan dalam respon kekebalan misalnya timus,

bursa fabrisius, sumsum tulang, limpa dan jaringan lainnya karena jaringan

tersebut merupakan tempat pembentukan leukosit (Unandar 2003).

Masa hidup sel leukosit sangat bervariasi, namun variasi jumlah dan dandiferensiasinya sulit dijelaskan faktor penyebabnya (Frandson 1992). Variasi

jumlah leukosit pada hewan dipengaruhi oleh genetik, hormon, obat-obatan, status

nutrisi yang bervariasi antar individu ternak. Fluktuasi jumlah leukosit pada

individu cukup tinggi pada kondisi tertentu misalnya aktivitas fisiologis, stress,

gizi dan umur (Smith 1988). Jumlah leukosit pada unggas lebih banyak

dibandingkan dengan leukosit pada mamalia (Swenson 1984). Secara umum

jumlah leukosit yang meningkat merupakan pertanda adanya infeksi (Frandson

1992). Altan et al. (2003) menyatakan, stress panas dapat menurunkan jumlah

leukosit pada ayam.

HeterofilHeterofil (pada unggas) atau neutrofil (pada mamalia) adalah leukosit

granulosit yang bersifat polimorfonuklear-pseudoesinofilik. Heterofil pada unggas

dibentuk pada sumsum tulang merah (Swenson 1984). Bentuk heterofil ayam

adalah bulat dengan diameter 10-15 m, granula sitoplasmanya berbentuk batang

pipih seperti jarum dan bersifat asidofilik (Grimminger 1976). Heterofil

merupakan bagian terbesar dari granulosit unggas (Schlam 2010) dan persentase

kedua terbesar setelah limfosit.

Heterofil berfungsi merespon adanya infeksi dan mampu keluar dari

pembuluh darah menuju daerah yang terinfeksi untuk menghancurkan benda asing

dan membersihkan sisa jaringan yang rusak. Heterofil dikenal sebagai first line

defense karena dapat bekerja secara cepat dalam pertahanan tubuh. Heterofil

melakukan proses fagositosis untuk menghancurkan bahan asing, namun

disamping itu juga mampu melakukan pinositosis dan kombinasi antara

fagositosis serta pinositosis yang disebut endositosis (Day dan Schultz 2010).

LimfositLimfosit adalah leukosit agranulosit yang menempati persentase terbanyak

dalam leukosit unggas dan mempunyai bentuk yang bervariasi (Sturkie dan

Grimminger 1976). Limfosit dibentuk pada jaringan limfoid seperti limfa, tonsil,

timus dan bursa fabricius (Dharmawan 2002). Fungsi utama limfosit adalah

merespon adanya antigen (benda-benda asing) dengan membentuk antibodi


12/22

yang bersirkulasi di dalam darah atau dalam pengembangan imunitas

(kekebalan seluler).

Terdapat tiga tipe sel limfosit, yaitu sel T, sel B dan sel null, yang tampak

mirip satu sama lain jika diamati pada mikroskop cahaya. Apabila T-limfosit

mengalami ekspose terhadap antigen, T-limfosit akan dirangsang untukberganda dengan cepat dan menghasilkan lebih banyak lagi, yang dapat

bekerja langsung melawan antigen spesifik (Tizzard, 1982). Rasio

heterofil/limfosit merupakan peubah yang dapat digunakan untuk mengukur

tingkat stress. Rasio heterofil/limfosit akan meningkat seiring dengan

meningkatnya level stres. Rasio heterofil/limfosit normal pada ayam adalah

0,32 (Sturkie dan Griminger, 1976) dan 0,5 (Swenson, 1984).

EosinofilEosinofil disebut juga asidofil tampak sebagai granula merah dalam

sitoplasma. Sel ini bersifat amuboid dan fagositik, dengan jumlah sel pada

umumnya tidak banyak kecuali jika terjadi penyakit kronis seperti alergi daninfeksi oleh parasit, maka akan menyebabkan peningkatan sel eosinofil. Fungsi

utama eosinofil adalah untuk toksifikasi terhadap protein asing yang masuk

melalui paru-paru, saluran pencernaan, maupun racun dari bakteri atau parasit

(Frandson 1992). Tizard (1988) menyatakan, terdapat 2 fungsi eosinofil yaitu

menyerang dan menghancurkan larva cacing dan enzim eosinofil mampu

menetralkan faktor radang yang dilepaskan oleh sel mast dan basofil, oleh karena

itu eosinofil dapat mengatur perbarahan yang disebabkan sel-sel tersebut.

MonositMonosit adalah sel-sel darah putih yang menyerupai heterofil. Sel ini

bersifat fagosit mononuklear aktif , mengandung enzim lisosom dan peroksidase,mempunyai tempat-tempat reseptor pada permukaan membrannya. Monosit akan

bekerja pada infeksi yang tidak terlalu akut (Frandson 1992). Monosit masuk ke

dalam sirkulasi dari sumsum tulang, dan setelah kurang lebih 24 jam sel ini

memasuki jaringan seabagai makrofag jaringan. Monosit dalam jaringan bereaksi

dengan limfosit dan memegang peran penting dalam pengenalan dan interaksi sel-

sel immunocompetentdengan antigen (Effendi 2003).

BasofilBasofil merupakan sel leukosit yang jumlahnya sangat sedikit dalam

sirkulasi darah. Sel ini mempunyai dua lobus dan granula intrasitoplasmik

berwarna ungu (Kresno 2001). Diameter selnya sekitar 12m, berinti satu danumumnya berbentuk S. Basofil mensekresikan histamin dan heparin, dan dalam

keadaan tertentu sel ini merupakan sel utama yang terdapat pada tempat

peradangan atau disebut hypersensitivitaskulit basofil. Basofil berhubungan

dengan kekebalan tubuh (Effendi 2003). Leukosit darah dengan basofil

melepaskan histamin pada reaksi yang serupa dengan reaksi sel mast. Sel-sel

tersebut dapat melepaskan mediator yang mengakibatkan reaksi anafilatik jika ada

rangsangan alergen.


13/22

Sistem Perkandangan

Kandang untuk pemeliharaan ayam pada umumnya menggunakan sistem

litter dan cage. Sistem kandang litter yaitu kandang yang permukaan lantainya

tidak diberi celah dan diberi hamparan sekam atau bahan lainnya sebagai alassetebal 5-10 cm (Poedi 1990). Litter adalah lapisan yang digunakan untuk

menutup permukaan lantai kandang yang biasanya berupa plesteran semen atau

tanah. Sistem kandang littermempunyai kelebihan di antaranya, hemat tenaga,

biaya tata laksana murah dan mudah, suhu kandang lebih merata dan hangat

(Priyatno 1995 dan Tuti Widjastuti 1996).

Kandang cageadalah kandang dengan sistem lantai kandang yang terbuat

dari bilah bambu atau kawat yang dibuat bercelah dan terletak sekitar 50-70 cm di

atas tanah sehingga kotoran dapat jatuh ke bawah. Ukuran celah dan bilah dibuat

sesuai kebutuhan, sebagai patokan agar kaki ayam tidak terperosok, yaitu

besarnya celah dapat diatur sekitar 1,75-2,5 cm dan besar bilah 2 cm (Sudaryani

dan Santoso 1995). Kelebihan dari sistem cage antara lain, kapasitas kandanglebih banyak, pengamatan kesehatan lebih mudah, mengurangi resiko kanibalisme

karena biasanya ayam ditempatkan secara individu dalam sistem ini, konsumsi

ransum lebih merata sehingga dapat dicapai keseragaman produksi tiap individu,

dan tidak terjadi persaingan antara ayam terutama dalam hal konsumsi pakan

(Priyatno 1995). Selain itu sirkulasi udara pada kandang cagebiasanya lebih baik,

penjalaran penyakit lebih lambat, dan angka mortalitas relatif kecil (Widjastuti

1996). Kelemahan dari sistem cage adalah biaya pembuatan kandang relatif

tinggi, ukuran bilah dan jarak antar bilah yang tidak tepat akan menyebabkan

ayam yang terperosok, jika bilah kasar membuat memar pada kaki ayam, dan jika

peternak kurang memperhatikan kebersihan kandang maka mudah timbul bau

busuk dan mengundang parasit akibat timbunan kotoran.

Suhu Kandang dan Kandang Tertutup

Ayam merupakan hewan homeotermi dan memiliki kemampuan

homeostasis untuk mempertahankan suhu tubuh tetap stabil walaupun suhu

lingkungan berubah. Jahja (2000) menyatakan bahwa mekanisme homeostasis

pada ayam berjalan efisien dan normal pada kisaran wilayah suhu netral

(thermoneutral zone atau comfort zone). Apabila suhu tubuh ayam lebih rendah

daripada suhu lingkungan, maka nutrien dalam tubuh sebagian besar digunakan

oleh ayam untuk memproduksi panas tubuh (Bruzual et al. 2000).Stres panas pada ayam disebabkan oleh adanya interaksi antara suhu

udara, kelembaban, sirkulasipanas serta kecepatan udara, dimana suhu lingkungan

menjadi faktor yang utama (European Comission 2000). Suhu tubuh ayam akan

meningkat 1-2 C pada lingkungan panas hingga tubuh ayam dapat kembali

beradaptasi (Oleyumi dan Robert 1980).

Kandang hendaknya dibangun sesuai dengan kebutuhan dan sesuai bagi

kehidupan ayam yang akan dipelihara agar ayam dapat hidup nyaman, tenang, dan

terpelihara kesehatannya sehingga produktifitas ayam dapat ditingkatkan

(Cahyono 2004). Kandang tertutup (closed house) digunakan oleh peternak-

peternak besar atau industri. Penggunaan kandang tertutup dalam pemeliharaan

ayam petelur memungkinkan peternak untuk mengatur suhu dalam kandang yang


14/22

baik untuk produktifitas ayam petelur. Kandang tertutup biasanya menggunakan

alat pengatur suhu dan sistem peralatan yang lebih canggih.

METODE

Bahan

Bahan yang digunakan dalam tahap persiapan adalah ayam ras petelur strain

Lohman berumur 19 minggu sebanyak 72 ekor, pakan, desinfektan kandang dan

sekam. Bahan yang digunakan selama masa pemeliharaan antara lain adalah

ransum komersial dan air minum. Ransum komersial yang digunakan adalah

ransum berbentuk tepung yang diproduksi oleh Gold CoinIndonesia dengan kode

105-M untuk ayam petelur dewasa berumur 19 minggu (tabel 2).

Bahan yang digunakan pada pengambilan sampel darah adalah alkohol 70%,kapas, sampel darah, dan antikoagulan Ethylene Diamine Tetraacetic Acid

(EDTA). Bahan yang digunakan pada pengamatan leukosit yaitu sampel darah,

larutan modifikasi Rees dan Ecker, sedangkan untuk eritrosit adalah larutan

Hayem. Bahan yang digunakan untuk pengamatan nilai hematokrit yaitu sampel

darah dan penyumbat crestaseal. Bahan yang digunakan untuk pengamatan

hemoglobin adalah sampel darah dan Reagen Drabkin. Bahan yang digunakan

pada pengamatan diferensial leukosit adalah zat warna Gyemsa, metil alkohol,

minyak emersi, alkohol 70% danbuffer fosfat pH 6,4-6,7.

Tabel 2. Analisis Proksimat Ransum Komersial Gold Coin

untuk Ayam Petelur Umur 19 Minggu BerdasarkanLabel 105-M

Kandungan Zat Makanan Komposisi (%)

Kadar Air 13Protein Kasar 17Serat Kasar 6Lemak 3Abu 14Phospor 0,6 1,0Calsium 3,0 4,2

Alat

Alat yang digunakan pada tahap persiapan adalah ruang closed house

dengan kandang pemeliharaan sistem litterdan cage. Ruang pemeliharaan dibagi

menjadi empat bagian ruangan yang berbeda, dan terdiri dari 1 kandang AC

dengan sistem litter, 1 kandang AC dengan sistem cage, 1 kandang heaterdengan

sistem litter, dan 1 kandang heater dengan sistem cage. Setiap ruang dengan

sistem kandang litter, di dalamnya dibagi menjadi 3 petak dengan ukuran petak

masing-masing 1,5 x 1,5 meter dan dibatasi dengan pagar bambu setinggi 0,5

meter. Setiap petak ditutup dengan jaring untuk menghindari ayam keluar, dan

berisi 6 ekor ayam per petak. Tempat pakan digantung di bagian tengah pada


15/22

setiap petak, sedangkan tempat minum diletakkan di luar petak untuk menghindari

litteryang terlalu basah. Setiap kandang dengan sistem cagediletakkan sekitar 50

cm di atas lantai, lantai yang berada tepat di bawah kandang diberi alas karung

dan ditaburi dengan sekam setebal kurang lebih 5 cm. Setiap ayam ditempatkan

secara individu dalam kandang cage.Alat-alat yang digunakan pada tahap analisis darah terdiri dari alat yang

digunakan untuk pengambilan sampel darah dan preparat ulas, dan alat untuk

pengamatan darah. Alat-alat yang digunakan untuk pengambilan sampel darah

dan pembuatan preparat ulas adalah spuit, gelas objek, dan tabung vacum venojet.

Alat yang digunakan untuk pengamatan eritrosit dan leukosit antara lain

hemasitometer Neubauer yang terdiri atas kamar hitung dan kaca penutupnya,

pipet (pengencer) eritrosit dan leukosit, dan mikroskop. Alat-alat yang digunakan

untuk pengamatan nilai hematokrit adalah mikrokapiler yang dilapisi heparin,

centrifuge mikrokapiler dan alat pembaca mikrokapiler (microcapiler reader).

Alat yang digunakan untuk menentukan kadar hemoglobin adalah tabung reaksi

berukuran 13 x 100 mm sebanyak dua buah, pipet bervolume 5 ml, pipet sahli danspektrofotometer. Alat-alat yang digunakan untuk pengamatan diferensial leukosit

adalah gelas objek, bak pewarna, pipet tetes, mikroskop dengan perbesaran lensa

objektif 10X dan 100X; lensa okuler 10X.

Lokasi dan Waktu

Penelitian ini dilaksanakan pada bulan Agustus 2013 Oktober 2013.

Pemeliharaan dilakukan di kandang B closed house, Departemen Ilmu Produksi

dan Teknologi Peternakan,dan pengamatan dilakukan di Laboratorium Fisiologi,

Fakultas Kedokterna Hewan, Institut Pertanian Bogor. Penelitian ini dilakukanselama 53 hari (16 Agustus 9 Oktober 2014).

ProsedurPemeliharaan

Sebanyak 72 ekor ayam petelur strain Lohmanditempatkan secara merata

pada 4 kandang tertutup yang berbeda selama 6 minggu tanpa pembersihan

kandang, yakni selain untuk mengetahui pengaruh perbedaan sistem

perkandangan dan perbedaan suhu, di samping itu juga untuk mengetahui

pengaruh penurunan kualitas udara dan kebersihan kandang terhadap profil darahayam. Pemberian pakan dilakukan 3 kali sehari yaitu pada pagi, siang dan sore

hari, sedangkan air minum diberikan secara ad libitum. Jumlah pakan yang

diberikan adalah 30 gram/ekor/hari. Perlakuan perbedaan suhu dimulai pukul

9.00-15.00 setiap hari, yaitu dengan menyalakan AC dan heaterdi masing-masing

kandang.

Pengambilan Sampel DarahPengambilan darah dilakukan sebanyak 3 kali yaitu pada hari ke-7, 14, dan

21 pemeliharaan. Pengambilan darah dilakukan melalui pembuluh vena aksilaris

(pembuluh darah sayap) dengan cara membersihkan bagian permukaan kulit sayap

bagian dalam ayam dengan alkohol 70%, kemudian dengan menggunakan jarum


16/22

suntik, pembuluh darah ditusuk dan dihisap. Darah diambil maksimal sebanyak 2

ml dan segera dimasukkan dalam tabung venoject vakum berisi anti koagulan

Ethylene Diamine Tetraacetic Acid (EDTA) untuk menghindari pembekuan darah.

Darah yang terdapat pada spuit tidak dimasukkan keseluruhan dalam

venojet, tetapi disisakan sedikit untuk pembuatan sediaan apus darah untukpengamatan diferensial leukosit. Darah diteteskan pada salah satu kaca objek, satu

kaca objek lainnya digunakan untuk meratakan darah tersebut. Darah ditempatkan

2 cm dari ujung sebuah gelas objek dan dipegang secara horizontal menghadapke atas, sedangkan gelas objek yang lain dipegang menggunakan tangan kanan,

ditempelkan pada sudut 30di depan setetes darah yang terletak pada gelas objekpertama, kemudian disinggungkan hingga menyebar sepanjang sudut antara kedua

gelas objek. Segera setelah darah menyebar, tanpa mengangat gelas objek dan

pada sudut yang sama, gelas objek di tangan kanan didorong ke depan, maka

terbentuk sediaan apus darah yang tipis.

Pengamatan Kadar HemoglobinPengamatan kadar hemoglobin menggunakan metode sianmethemoglobin.

Sebanyak 5 ml reagen Drabkins dimasukkan ke dalam tabung reaksi ke 1 dan 2.

Sebanyak 0,02 ml darah ditambahkan ke dalam tabung reaksi ke 2, dengan

menggunakan pipet yang bervolume 0,02 ml. Setelah pemakaian, pipet langsung

dibilas agar darah tidak tertinggal dalam pipet. Kemudian larutan dalam tabung

dihomogenkan dan dibiarkan minimal selama 10 menit pada suhu kamar, agar

terbentuk sianmethemoglobin.

Pembacaan nilai hemoglobin dilakukan menggunakan spektrofotometer

dengan panjang gelombang 540 nm. Tabung 1 digunakan sebagai blanko dan

tabung 2 sebagai sampel yang diamati. Kemudian dengan menggunakan larutan

baku sianmethhemoglobin (standar), dibuat paling sedikit 4 larutan dengankonsentrasi berbeda, kemudian hasilnya dibuat menjadi kurva standar hemoglobin

dan selanjutnya dapat digunakan untuk menghitung nilai hemoglobin pada sampel

yang lain. Metode ini berdasarkan buku penuntun praktikum Fisiologi Veteriner,

Laboratoritum Fisiologi dan Farmakologi, Fakultas Kedokteran Hewan, Institut

Pertanian Bogor (Sastradipradja et al. 1989).

Pengamatan Hematokrit (% Volume BDM)Nilai hemaokrit ditentukan dengan metode mikrohematokrit. Ujung pipa

mikrokapiler ditempelkan pada darah yang disimpan pada tabung venojet, dan

darah dibiarkan mengalir sampai mengisi 4/5 bagian pipa kapiler. Setelah pipa

terisi dengan darah, bagian bawah pipa yang bertanda disumbat dengan crestaseal.

Pipa-pipa kapiler tersebut kemudian dipusing dengan alat microsentrifugeselama

5 menit dengan kecepatan 2500-4000 rpm.

Nilai hematokrit ditentukan dengan alat baca mikrohematokrit

(microcapillary hematocrit reader). Lapisan eritrosit yang diamati mengendap

pada bagian paling bawah pipa dan berwarna merah. Metode ini berdasarkan buku

penuntun praktikum Fisiologi Veteriner, Laboratoritum Fisiologi dan

Farmakologi, Fakultas Kedokteran Hewan, Institut Pertanian Bogor

(Sastradipradja et al. 1989).


17/22

Pengamatan Jumlah Butir Darah MerahPengambilan darah dari tabung venojet menggunakan pipet eritrosit

dengan bantuan alat pengisap (aspirator) yang di pasang pada pipet tersebut

sampai batas nilai 1,0. Ujung pipet eritrosit terlebih dahulu dibersihkan dengan

tisu kemudian larutan Rees and Ecker dihisap hingga tanda tera 101. Kedua ujungpipet ditutup dengan ibu jari dan jari telunjuk kanan, kemudian dikocok dengan

gerakan membentuk angka 8.Cairan yang tidak terkocok pada ujung pipet dibuang

dengan menempelkan ujung pipet pada tisu. Setetes darah dimasukkan kedalam

kamar hitung, didiamkan beberapa saat hingga mengendap, kemudian dilakukan

penghitungan dibawah mikroskop dengan perbesaran 400 kali.

Penghitungan eritrosit dalam hemositometer menggunakan kotak pojok

kanan atas, satu kotak pojok kiri atas, satu kotak di tengah, satu kotak pojok kanan

bawah, dan satu kotak pojok kiri bawah. Penghitungan jumlah eritosit dalam 1

mm3darah yaitu dengan mengalikan jumlah eritrosit perhitungan chamber (a)

dengan 5000. Angka 5000 diperoleh dari hasil perkalian 0,01 mm tebal kamar

hitung, 0,05 mm panjang , dan 0,05 mm lebar dan 5 kotak kamar hitung dalammm3 dengan larutan pengencer 100 sehingga jumlah eritrosit dapat dihitung

dengan rumus dibawah ini. Metode ini berdasarkan buku penuntun praktikum

Fisiologi Veteriner, Laboratoritum Fisiologi dan Farmakologi, Fakultas

Kedokteran Hewan, Institut Pertanian Bogor (Sastradipradja et al.1989).

Jumlah Eritrosit per mm3darah = a x 5000

Pengamatan Jumlah Butir Darah MerahDarah dari tabung venojet diambil menggunakan pipet eritrosit dengan

bantuan aspirator hingga tanda tera 1,0 kemudian ujung pipet dibersihkan dengan

tisu. Selanjutnya larutan Rees and Ecker dihisap hingga tanda tera 101. Pipaaspirator dilepaskan, kemudian cairan dihomogenkan dengan memutar pipet

membentuk angka 8, setelah homogen, cairan yang tidak terkocok dibuang

menggunakan tisu. Kemudian setetes sampel darah dimasukkan pada

hemocytometer, didiamkan beberapa saat hingga cairan mengendap, kemudian

dihitung di bawah mikroskop perbesaran 400x.

Penghitungan jumlah leukosit dalam hemocytometermenggunakan kotak

leukosit. Jumlah leukosit hasil perhitungan chamber (b) dikali 200 untuk

mengetahui jumlah leukosit dalam 1mm3 darah. Angka 200 diperoleh dari hasil

perhitungan 4 ruang kotak hitung dikali 1 mm panjang dan lebar 1 mm serta tebal

0,01 mm kemudian dikali faktor pengencer 100. Metode ini berdasarkan buku

penuntun praktikum Fisiologi Veteriner, Laboratoritum Fisiologi danFarmakologi, Fakultas Kedokteran Hewan, Institut Pertanian Bogor

(Sastradipradja et al.1989).

Jumlah Leukosit per mm3 darah = b x 200

Diferensial leukositPreparat ulas yang telah dibuat saat pengambilan darah difiksasi dengan

metanol 75% selama 5 menit kemudian diangkat hingga kering udara. Ulas darah

direndam dengan larutan gyemsaselama 30 menit, kemudian diangkat dan dicuci

menggunakan air yang mengalir untuk menghilangkan zat warn yang berlebihan,

setelah itu dikeringkan dengan kertas isap.


18/22

Preparat ulas diletakkan dibawah mikroskop perbesaran 1000 kali dan

ditambahkan minyak imersi, kemudian limfosit, heterofil, monosit, basofil, dan

eosinofil masing-masing dihitung secara zig-zagsampai jumlah total leukosit 100

butir (Sastradipradja et al. 1989).

Analisis Data

Peubah yang Diamati1.Kadar hemoglobin (g %)2.Hematokrit (PCV/Packed Cell Volume) (%)3.Jumlah eritrosit (106/mm3)4.Jumlah leukosit (103/mm3)5.Diferensial leukosit (%)

Rancangan PercobaanRancangan percobaan yang digunakan pada penelitian ini adalah Rancangan

Acak Lengkap (RAL) dengan pola faktorial 2x2 dengan 3 ulangan. Setiap ulangan

diamati secara duplo.

Model matematika rancangan percobaan yang akan digunakan :

Yij= + Ai+ Bj+ (AB)ij+ijKeterangan:

Yijk :Nilai pengamatan pada peubah yang diamati pada perlakuan

kandang ke-i (cagedan litter) dan suhu ke-j (netral dan tinggi).

: Nilai rataan umum

Ai : Pengaruh perlakuan kandang ke-i (cagedan litter)

Bj : Pengaruh perlakuan suhu ke-j (netral dan tinggi)(AB)ij : Interaksi antara perlakuan kandang ke-i (cagedan litter) dan

perlakuansuhu ke-j (netral dan tinggi) terhadap suatu peubah yang

diamati.

ij : Pengaruh galat percobaan kandang ke-i (cagedan litter) dan suhu

ke-j (netral dan tinggi) pada ulangan ke-k (1, 2 dan 3)

Data yang diperoleh awalnya diolah dengan Microsoft Excel 2007 untuk

mendapatkan nilai rataan dan standar deviasinya. Data data tersebut selanjutnya

diuji asumsi untuk menentukan jenis data termasuk dalam parametrik atau

nonparamaetrik.

Jika data tersebut tidak memenuhi uji asumsi maka selanjutnya dilakukantransformasi.Apabila masih tidak memenuhi uji asumsi maka data dianalisis

dengan Kruskal Wallis. Persamaan statistik non parametrik Kruskal-Wallis yaitu

sebagai berikut:

H=( )

+ ( + )

Keterangan:

ni : jumlah pengamatan dalam sampel ke-i (i = 1,..., k)

n : ni

Ri : jumlah dari ranking untuk sampel ke-i


19/22

DAFTAR PUSTAKA

[NRC] National Research Council. 1994. Nutrient Requirement of Poultry.9th

Revised Edition.Washington D.C. (US): National Academy Press.

Adriani L, Hernawan E, Kamil KA, Mushawwir A. 2010. Fisiologi Ternak.Bandung (ID): Widya Padjajaran.

Bruzual JJ, Peak SD, Brake J, Peeblest ED. 2000. Effect of relativehumidity

during the last five days of incubation and brooding temperature on

performance of broiler chicks from young broiler breeders. Poult. Sci. 79:

1385-1391.

Cahyono B. 2004. Cara Meningkatkan BudidayaAyam Ras Pedaging (Broiler).

Yogyakarta (ID): Yayasan Pustaka Nusantara.

Dellman HD, Brown EM. 1992. Histologi veteriner I. Hartono R,

penerjemah.Jakarta (ID): Universitas Indonesia.

Effendi Z. 2003. Peranan Leukosit Sebagai Anti Inflamasi Alergik Dalam

Tubuh.USU Digital Library [Internet]. [diunduh 2013 Okt 4]. Tersedia pada:http://library.usu.ac.id/download/fk/histologi-zukesti2.pdf.

European Commision. 2000. Health and Consumer Protection Directorate-

General: The Welfare of Chickens Kept for MeatProduction (Broilers). Report

of The Scientific Committee on Animal Health and Animal Welfare.

Frandson RD. 1992. Anatomi dan Fisiologi Ternak. Srigandono B, Sudarsono,

penerjemah.Yogyakarta (ID): Gadjah Mada University Press.

Guyton AC, Hall JE. 1997. Fisiologi Kedokteran. Irawati, Ken Arita Tengadi

LMA, Santoso A, penerjemah. Jakarta (ID): Penerbit Buku Kedokteran.

Hartono R. 1988. Histologi Veteriner; Bahan Pengajaran. Bogor (ID): Pusat Antar

Universitas Institut Pertanian Bogor.

Jahja. 2000. Ayam Sehat Ayam Produktif. Petunjuk-petunjuk Beternak Ayam.Edisi ke-18. Bandung (ID): Medion Press.

JainNC. 1993. Essential of Veterinary Hematology. Philadelphia (US): Lea and

Febiger.

Leeson S, Summers JD. 2005. Comercial Poultry Nutrition.3rdEdition.England

(UK): Nottingham University Press.

MangkoewidjojoS,Smith JB. 1988.Pemeliharaan, Pembiakan dan Penggunaan

Hewan Percobaan di Daerah Tropis. Jakarta (ID): UI Press.

Meyer DJ. 1992. Veterinary Laboratory Medicine; Interpretation and Diagnostic.

Philadelpia (US): W.B. Saunders Company.

Nielsen KS. 1997.Nutrient Requirement of Poultry. 9thRevised Ed. Washington

DC (US):

Oleyumi JA, Robert FA. 1980. Poultry Production in Warm Wet Climates. The

London (UK): Macmillan Press. Ltd.

Post J, Rebel JMJ, Huurne AAHM. 2002. Automated blood cell count: A sensitive

and reliable method to study corticosterone-related stress in broilers. Poultry

Science.82: 591-595.

Praseno K. 2005. Respon eritrosit terhadap perlakuan mikromineral Cu, Fe, dan

Zn pada Ayam (Gallus gallus domesticus).J. Ind. Trop. Anim. Agric. 30 (3) :

179-185.

Rastogi SC. 1977. Essentials of Animal Physiology. New Delhi (IN): Wiley

Eastern Limited.


20/22

SastradipradjaD, Sikar SHS, Wijayakusuma R, Ungerer T, Maad A, Nasution H,

Suriawinata R, Hamzah R. 1989. Penuntun Praktikum Fisiologi Veteriner.

Bogor (ID): Pusat Antar Universitas Ilmu Hayati, Institut Pertanian Bogor.

Sturkie PD, Griminger P. 1976. Avian Physiology. Berlin (DE): Heidelberg.

Swenson MJ. 1984. Dukes Physiology of Domestic Animals. 10th

Ed. London(UK): Publishing Associattes a Division of Cornell University.

Wahju J. 1997. Ilmu Nutrisi Unggas. Yogyakarta: Gadjah Mada University Press.

Widjajakusuma R, Sikar SHS. 1986. Fisiologi Hewan Jilid II. Kumpulan Materi

Kuliah. Bogor (ID): Fakultas Kedokteran Hewan,Institut Pertanian Bogor.

Yuwanta T. 2004. Dasar Ternak Unggas. Yogyakarta (ID) Kanisius.


21/22

LAMPIRAN

Lampiran 1. Analisis biaya

Alat/Bahan Jumlah Har ga Satuan Har ga Total

Ayam 72 ekor 80.000 5.760.000

Pakan 9 karung 225.000 2.025.000

Vitachick 1 sachet 500 500

Tempat Pakan (litter) 6 buah 30.000 180.000

Tempat Minum (litter) 6 buah 30.000 180.000

Tempat Minum (Cage) 18 buah 3.000 54.000

AC 2 buah 1.000.000 2.000.000

Heater 2 buah 1.000.000 2.000.000

Termometer 8 buah 90.000 720.000

Anemometer 1 buah 2.000.000 2.000.000

Sewa Kandang 4 kandang 12.500 50.000

Kandang Batre 6 kandang 100.000 600.000

Kandang Litter 6 kandang 100.000 600.000

Jaring 6 meter 6.000 36.000

Timbangan 10 kg 1 buah 150.000 150.000

Timbangan Digital 1 buah 250.000 250.000

Paralon 8 m 10.000 80.000

Kardus 20 buah 500 10.000

Sekam 3 karung 15.000 45.000

Karung 27 buah 1.000 27.000Plastik 1kg 1 bungkus 8.000 8.000

Plastik 1/4kg 1 bungkus 5.000 5.000

Kapur Pertanian 2 kg 2.000 4.000

Biaya Analisis 36 sampel 25.000 900.000

EDTA 3 ml 1box 175.000 175.000

Spoit 3 cc 1box 95.000 95.000

Kaca Preparat 1 pak 25.000 25.000

Biaya Pengambilan sampel 4 periode 100.000 400.000

TOTAL Rp 26,479,500


22/22

Lampiran 2. Jadwal Kegiatan

Kegiatan

Bulan

Agustus September Oktober

1 2 3 4 1 2 3 4 1 2 3 4

Penelusuran Literatur dan diskusi

bersama dosen pembimbing

Pembuatan surat izin penggunaan

kandang dan laboratorium

Pembuatan Proposal

Persiapan pemeliharaan

Pelaksanaan Penelitian

Pengambilan sampel darah

Pengamatan sampel darah

Pengolahan dan Analisis Data

Proposal Penelitian Profil darah ayam perlakuan perbedaan kandang dan perbedaan suhu

Documents

Transcript of Proposal Penelitian Profil darah ayam perlakuan perbedaan kandang dan perbedaan suhu