PENGARUH PERENDAMAN DALAM AIR PANAS DAN … · dan kalkulus bagi mahasiswa TPB IPB. ... Pengaruh...

57
i PENGARUH PERENDAMAN DALAM AIR PANAS DAN KONSENTRASI ETHEPHON TERHADAP PEMATAHAN DORMANSI BENIH KELAPA SAWIT (Elaeis guineensis Jacq.) BELLADINA FARHANA A24080016 DEPARTEMEN AGRONOMI DAN HORTIKULTURA FAKULTAS PERTANIAN INSTITUT PERTANIAN BOGOR 2012

Transcript of PENGARUH PERENDAMAN DALAM AIR PANAS DAN … · dan kalkulus bagi mahasiswa TPB IPB. ... Pengaruh...

i

i

PENGARUH PERENDAMAN DALAM AIR PANAS DAN

KONSENTRASI ETHEPHON TERHADAP PEMATAHAN

DORMANSI BENIH KELAPA SAWIT (Elaeis guineensis Jacq.)

BELLADINA FARHANA

A24080016

DEPARTEMEN AGRONOMI DAN HORTIKULTURA

FAKULTAS PERTANIAN

INSTITUT PERTANIAN BOGOR

2012

PENGARUH PERENDAMAN DALAM AIR PANAS DAN

KONSENTRASI ETHEPHON TERHADAP PEMATAHAN DORMANSI

BENIH KELAPA SAWIT (Elaeis guineensis Jacq.)

Effects of Hot Water Soaking Immersion and Ethephon Concentration on

Breaking Dormancy of Oil Palm Seeds (Elaeis guineensis Jacq.)

Belladina Farhana1, Satriyas Ilyas

2

1 Mahasiswa, Departemen Agronomi Dan Hortikultura Fakultas Pertanian, IPB

2 Staf Pengajar, Departemen Agronomi Dan Hortikultura Fakultas Pertanian, IPB

Abstract

This research was held from April to July 2012, located in the seed

processing unit of PT Astra Agro Lestari Tbk, Central Borneo. The study

consisted of three experiments, the first experiment to determine the effect of

water temperature and immersion intensity of seed germination. The first

experiment used completely randomized design (CRD) factorial with two factors,

water temperature: 27, 60, 70, 80, 90 oC and immersion intensity: 1x24, 2x24,

3x24 hours. The second experiment used a single factor of CRD namely

ethephon concentration: 0, 0.4, 0.8, 1.2, 1.6%. The third experiment was a

continuation from the second experiment with the adding heat drying treatment

during a week. The result showed that 3x24 hours soaking treatment in 80oC hot

water increased the germination, soaking in ethephon 0.4% inhibited radicle

growth resulted abnormal seedlings. Soaking seed in 80oC hot water for 3x24

hours and followed by ethephon and then heat drying treatment for a week

increased germination (52.0% maximum growth potential) but still ineffective to

break seed dormancy.

Abstrak

Penelitian ini dilaksanakan sejak bulan April hingga Juli 2012 di unit

pemrosesan benih PT Astra Agro Lestari Tbk, Kalimantan Tengah. Penelitian

terdiri atas tiga percobaan yang dilakukan secara berseri. Percobaan I dilakukan

untuk mengetahui pengaruh suhu air dan intensitas perendaman terhadap

perkecambahan benih. Percobaan I menggunakan Rancangan Acak Lengkap

(RAL) faktorial dengan dua faktor yaitu suhu air: 27, 60, 70, 80, 90oC dan

intensitas perendaman: 1x24, 2x24, 3x24 jam. Percobaan II menggunakan RAL

satu faktor yaitu konsentrasi ethephon: 0, 0.4, 0.8, 1.2, 1.6%. Pada percobaan III,

benih terebih dahulu direndam dalam air panas suhu 80oC selama 3x24 jam

sebelum direndam dalam ethephon, lalu diakhiri dengan pemanasan kering 39–

40oC selama 1 minggu. Hasil menunjukkan bahwa perendaman dalam air suhu

80oC selama 3x24 jam meningkatkan perkecambahan benih, perendaman dalam

ethephon 0.4% menghambat pertumbuhan radikula sehingga kecambah tumbuh

tidak normal. Perlakuan perendaman dalam ethephon 0.4% yang didahului dengan

perendaman menggunakan air panas 80oC selama 3x24 jam dan diakhiri dengan

pemanasan kering meningkatkan perkecambahan benih (potensi tumbuh

maksimum 52.0%) namun belum efektif untuk mematahkan dormansi benih.

ii

ii

RINGKASAN

BELLADINA FARHANA. Pengaruh Perendaman dalam Air Panas dan

Konsentrasi Ethephon terhadap Pematahan Dormansi Benih Kelapa Sawit

(Elaeis guineensis Jacq.). (Dibimbing oleh SATRIYAS ILYAS).

Kelapa sawit (Elaeis gunieensis Jacq.) merupakan salah satu komoditi

andalan Indonesia yang perkembangannya sangat pesat. Permintaan benih

(kecambah) kelapa sawit per tahun sekitar 100-120 juta kecambah, namun

produsen benih yang ada hanya mampu menyediakan 60-70 juta kecambah per

tahun. Proses pengecambahan benih kelapa sawit cukup sulit karena benih

memiliki kulit yang keras sehingga bersifat dorman. Adanya kondisi dormansi ini

menyebabkan benih harus diberi perlakuan untuk mematahkan dormansi. Proses

pengecambahan benih kelapa sawit yang bermutu memerlukan waktu sekitar 3

bulan dengan metode pemanasan kering suhu 40oC. Oleh karena itu diperlukan

penelitian terhadap metode lain yang lebih efektif dan efisien untuk mematahkan

dormansi benih kelapa sawit.

Penelitian ini dilaksanakan sejak bulan April hingga Juli 2012 di unit

pemrosesan benih PT Astra Agro Lestari Tbk, Kalimantan Tengah. Penelitian

terdiri atas tiga percobaan yang dilakukan secara berseri. Percobaan I dilakukan

untuk mengetahui pengaruh suhu air dan intensitas perendaman terhadap

perkecambahan benih. Percobaan I menggunakan Rancangan Acak Lengkap

(RAL) faktorial dengan dua faktor yaitu suhu air: 27, 60, 70, 80, 90oC dan

intensitas perendaman: 1x24, 2x24, 3x24 jam. Percobaan II dilakukan untuk

mengetahui konsentrasi ethephon yang optimum terhadap perkecambahan benih

kelapa sawit. Percobaan II menggunakan RAL satu faktor yaitu konsentrasi

ethephon: 0, 0.4, 0.8, 1.2, 1.6%. Percobaan III menggunakan RAL satu faktor

yaitu kombinasi perlakuan pematahan dormansi. Benih terlebih dahulu direndam

dalam air panas suhu 80oC selama 3x24 jam (perlakuan terbaik dari percobaan I)

sebelum direndam dalam ethephon 0, 0.4, 0.8, 1.2, 1.6%, lalu diakhiri dengan

pemanasan kering 39-40oC selama 1 minggu.

iii

iii

Hasil dari percobaan I menunjukkan bahwa perendaman dalam air suhu

80oC selama 3x24 jam meningkatkan perkecambahan benih dengan persentase

daya berkecambah sebesar 16.7%. Hasil dari percobaan II menunjukkan bahwa

perendaman dalam ethephon 0.4-1.6% meningkatkan persentase daya tumbuh

kecambah namun menghambat pertumbuhan radikula sehingga kecambah yang

tumbuh tidak normal. Pada percobaan III, perlakuan perendaman dalam ethephon

0.4% yang didahului dengan perendaman menggunakan air panas 80oC selama

3x24 jam dan diakhiri dengan pemanasan kering meningkatkan perkecambahan

benih (potensi tumbuh maksimum 52%) namun belum efektif untuk mematahkan

dormansi benih.

iv

iv

PENGARUH PERENDAMAN DALAM AIR PANAS DAN

KONSENTRASI ETHEPHON TERHADAP PEMATAHAN

DORMANSI BENIH KELAPA SAWIT (Elaeis guineensis Jacq.)

Skripsi sebagai salah satu syarat

untuk memperoleh gelar Sarjana Pertanian

pada Fakultas Pertanian Institut Pertanian Bogor

Disusun Oleh:

BELLADINA FARHANA

A24080016

DEPARTEMEN AGRONOMI DAN HORTIKULTURA

FAKULTAS PERTANIAN

INSTITUT PERTANIAN BOGOR

2012

v

v

Judul : PENGARUH PERENDAMAN DALAM AIR PANAS DAN

KONSENTRASI ETHEPHON TERHADAP PEMATAHAN

DORMANSI BENIH KELAPA SAWIT (Elaeis guineensis Jacq.)

Nama : BELLADINA FARHANA

NRP : A24080016

Menyetujui,

Dosen Pembimbing

Prof. Dr. Ir. Satriyas Ilyas, MS.

NIP. 19590225 198203 2 001

Mengetahui,

Ketua Departemen Agronomi dan Hortikultura

Fakultas Pertanian IPB

Dr. Ir. Agus Purwito, M.Sc.Agr.

NIP. 19611101 198703 1 003

Tanggal Lulus:

vi

vi

RIWAYAT HIDUP

Penulis dilahirkan pada tanggal 31 Juli 1991 di Jakarta. Penulis merupakan

anak pertama dari Bapak Benny Limbiantoro dan Ibu Siti Komariyah.

Penulis lulus dari SDN Jagakarsa 06 Pagi, Jakarta pada tahun 2002,

kemudian pada tahun 2005 penulis menyelesaikan pendidikan di SMPN 41

Jakarta. Tahun 2008, penulis lulus dari SMAN 38 Jakarta dan diterima melalui

jalur USMI di Departemen Agronomi dan Hortikultura, Fakultas Pertanian,

Institut Pertanian Bogor. Semasa kuliah, penulis juga mengambil program minor

di Departemen Arsitektur Lanskap.

Tahun 2010, penulis menjabat sebagai bendahara II departemen HRD

BEM Fakultas Pertanian serta staf HRD Koperasi Himpunan Mahasiswa

Agronomi. Penulis merupakan tentor mata kuliah fisika, pengantar matematika,

dan kalkulus bagi mahasiswa TPB IPB. Penulis juga aktif mengajar fisika dan

matematika bagi siswa SMP dan SMA. Pada tahun 2010 penulis mendapatkan

beasiswa dari LAZ Al-Hurriyyah IPB dan pada tahun 2011-2012 mendapatkan

beasiswa PPA dari DIKTI.

vii

vii

KATA PENGANTAR

Puji syukur penulis panjatkan ke hadirat Allah SWT yang telah memberi

kekuatan dan petunjuk sehingga penelitian ini dapat diselesaikan dengan baik.

Penelitian tentang pengaruh perendaman dalam air panas dan konsentrasi

ethephon terhadap pematahan dormansi benih kelapa sawit (Elaeis guineensis

Jacq.) penulis lakukan karena terdorong oleh keinginan untuk mempelajari

metode pematahan dormansi benih kelapa sawit dengan perendaman dalam

berbagai suhu air dikombinasikan dengan penggunaan zat pengatur tumbuh agar

diperoleh metode yang efisien untuk mematahkan dormansi benih kelapa sawit.

Penulis menyampaikan terima kasih kepada:

1. Prof. Dr. Ir. Satriyas Ilyas, MS. selaku dosen pembimbing skripsi serta dosen

pembimbing akademik yang telah memberikan bimbingan dan pengarahan

selama kegiatan penelitian dan penulisan skripsi ini.

2. Dr. Ir. Endang Murniati, MS. dan Maryati Sari, SP. M.Si. selaku dosen

penguji skripsi penulis.

3. Bapak Benny Limbiantoro dan Ibu Siti Komariyah serta seluruh keluarga

penulis yang telah memberi dukungan selama menempuh perkuliahan di IPB.

4. Bapak Lalu Firman Budiman, SP. selaku pendamping penelitian dari PT Astra

Agro Lestari, Tbk.

5. Bapak S.P. Mulyono, Bapak Eko, serta seluruh karyawan bagian seed

processing unit PT Astra Agro Lestari, Tbk. atas dukungan dan bantuannya

sehingga penulis dapat menyelesaikan penelitian ini.

6. Staf riset dan seluruh keluarga besar PT Astra Agro Lestari, Tbk. yang telah

membantu penulis melaksanakan penelitian ini.

7. Rekan mahasiswa dari jurusan ilmu tanah Universitas Brawijaya yaitu Tito,

Citra, Rani, Icang, dan Daus atas bantuannya selama penulis melakukan

penelitian di Kalimantan.

8. Seluruh rekan Indigenous 45 terutama kepada teteh Tira, ageng Dwi, unih

Tiara, Mimih, dan eceu Ferin atas dukungannya selama ini.

viii

viii

9. Bapak Miftah Anugrah Pamungkas, SP. atas bantuan dan dukungannya

selama ini.

Bogor, November 2012

Penulis

ix

ix

DAFTAR ISI

Halaman

DAFTAR TABEL ………………………………………………………… vii

DAFTAR GAMBAR …..………………………………………………… viii

DAFTAR LAMPIRAN …………………………………………………… ix

PENDAHULUAN ………………………………………………………… 1

Latar Belakang ………………………………………………………….. 1

Tujuan …………………………………………………………………... 3

Hipotesis ………………………………………………………………... 3

TINJAUAN PUSTAKA …………………………………………………… 4

Botani Kelapa Sawit (Elaeis guineensis Jacq.)……….………………….. 4

Perkecambahan Kelapa Sawit…………………………………………… 5

Pematahan Dormansi Benih ….……………………………………….... 7

BAHAN DAN METODE………………………………………………… 10

Tempat dan Waktu Penelitian ………………………………………........ 10

Bahan dan Alat ………………………………………………………..… 10

Tahap Penelitian …..…………………………………………………….. 10

Metode Penelitian ……………………………………………………….. 11

Pelaksanaan ……………………………………………………………... 13

Pengamatan ……………………………………………………………… 18

HASIL DAN PEMBAHASAN …………………………..………………... 20

Hasil …………………………..…………………………………………. 20

Pembahasan ……………….…………………………………………….. 26

KESIMPULAN DAN SARAN …………………………..………………... 32

Kesimpulan …………………………..………………………………….. 32

Saran ………...…………….…………………………………………….. 32

DAFTAR PUSTAKA …………………………………………………….... 33

LAMPIRAN ……………………………………………………………….. 36

x

x

DAFTAR TABEL

Nomor Halaman

1. Rekapitulasi hasil sidik ragam perlakuan suhu air dan

intensitas perendaman pada beberapa tolok ukur

perkecambahan benih kelapa sawit …………………........... 20

2. Pengaruh suhu air dan intensitas perendaman terhadap daya

berkecambah …………………..………………………….. 21

3. Pengaruh suhu air dan intensitas perendaman terhadap

persentase kecepatan tumbuh …………………………….. 22

4. Pengaruh suhu air dan intensitas perendaman terhadap

potensi tumbuh maksimum …………………………….. 22

5. Pengaruh suhu air dan intensitas perendaman terhadap

persentase benih terserang cendawan ……………………. 23

6. Rekapitulasi hasil sidik ragam perlakuan konsentrasi

ethephon pada beberapa tolok ukur perkecambahan benih

kelapa sawit ………………………………………………. 24

7. Pengaruh konsentrasi ethephon terhadap KA, DB, KCT,

PTM, ID, dan persentase benih terserang cendawan …….. 24

8. Rekapitulasi hasil sidik ragam perlakuan pematahan

dormansi pada beberapa tolok ukur perkecambahan benih

kelapa sawit ………….……………………………………. 25

9. Pengaruh perendaman dalam berbagai konsentrasi

ethephon yang didahului dengan perendaman dalam air

panas suhu 80oC selama 3x24 jam dan diakhiri dengan

pemanasan kering selama 1 minggu terhadap KA, DB, KCT,

PTM, ID, dan persentase benih terserang cendawan ……… 26

xi

xi

DAFTAR GAMBAR

Nomor Halaman

1. Struktur benih kelapa sawit…………………………........... 6

2. Diagram alir proses pelaksanaan percobaan I ……………... 14

3. Diagram alir proses pelaksanaan percobaan II ……………. 16

4. Diagram alir proses pelaksanaan percobaan III …………… 17

5. Serangan cendawan pada percobaan I ……………………. 27

6. Serangan cendawan pada percobaan II …………………… 28

7. Serangan cendawan pada percobaan III …………………. 28

8. Kecambah kelapa sawit …………………………………… 29

9. Pertumbuhan kecambah kelapa sawit ……………………. 30

10. Pertumbuhan kecambah kelapa sawit pada perendaman

dalam berbagai konsentrasi ethephon …………………….. 31

xii

xii

DAFTAR LAMPIRAN

Nomor Halaman

1. Sidik ragam pengaruh suhu air dan intensitas perendaman

terhadap kadar air benih …………………………………… 37

2. Pengaruh suhu air dan intensitas perendaman terhadap

kadar air benih ……………………………………………. 37

3. Sidik ragam pengaruh suhu air dan intensitas perendaman

terhadap daya berkecambah ………………………….…… 37

4. Sidik ragam pengaruh suhu air dan intensitas perendaman

terhadap kecepatan tumbuh ……………….……………… 38

5. Sidik ragam pengaruh suhu air dan intensitas perendaman

terhadap potensi tumbuh maksimum ……………………… 38

6. Sidik ragam pengaruh suhu air dan intensitas perendaman

terhadap intensitas dormansi ……………………………… 38

7. Sidik ragam pengaruh suhu air dan intensitas perendaman

terhadap persentase benih terserang cendawan …………… 39

8. Sidik ragam pengaruh konsentrasi ethephon terhadap kadar

air benih …………………………………………………… 39

9. Sidik ragam pengaruh konsentrasi ethephon terhadap daya

berkecambah ……………………………….……………… 39

10. Sidik ragam pengaruh konsentrasi ethephon terhadap

kecepatan tumbuh ………………………….……………… 40

11. Sidik ragam pengaruh konsentrasi ethephon terhadap

potensi tumbuh maksimum ………………...……………… 40

12. Sidik ragam pengaruh konsentrasi ethephon terhadap

intensitas dormansi ………………………………………... 40

13. Sidik ragam pengaruh konsentrasi ethephon terhadap

persentase benih terserang cendawan ………...…………… 40

14. Sidik ragam pengaruh perlakuan pematahan dormansi

terhadap kadar air benih …………………………………… 40

xiii

xiii

Nomor Halaman

15. Sidik ragam pengaruh perlakuan pematahan dormansi

terhadap daya berkecambah ……………………………… 41

16. Sidik ragam pengaruh perlakuan pematahan dormansi

terhadap kecepatan tumbuh ……………………………… 41

17. Sidik ragam pengaruh perlakuan pematahan dormansi

terhadap potensi tumbuh maksimum ………………...…… 41

18. Sidik ragam pengaruh perlakuan pematahan dormansi

intensitas dormansi ……………………..….……………... 42

19. Sidik ragam pengaruh perlakuan pematahan dormansi

terhadap persentase benih terserang cendawan ………...… 42

20. Identitas benih yang digunakan pada penelitian…………... 43

1

1

PENDAHULUAN

Latar Belakang

Kelapa sawit (Elaeis gunieensis Jacq.) merupakan salah satu komoditi

andalan Indonesia yang perkembangannya sangat pesat. Tanaman ini memiliki

arti penting bagi pembangunan karena merupakan penggerak perekonomian

Indonesia dan sebagai lumbung devisa nasional. Kelapa sawit digunakan sebagai

bahan makanan (80%) dan bukan bahan makanan (20%). Salah satu penggunaan

kelapa sawit sebagai bahan makanan yaitu pengolahan menjadi minyak kelapa

sawit. Sektor minyak kelapa sawit menduduki peringkat kedua penghasil devisa

terbesar di Indonesia setelah sektor minyak dan gas bumi.

Budidaya kelapa sawit dimulai dari proses pembibitan, penanaman,

pemeliharaan, pengendalian hama dan penyakit, serta panen dan pasca panen

(Setyamidjaja, 2006). Proses pembibitan dimulai dari persiapan bahan tanam dan

benih kelapa sawit yang akan digunakan. Menurut Sunarko (2007), benih kelapa

sawit yang akan digunakan sebagai calon bibit harus dihasilkan dan

dikecambahkan oleh lembaga resmi yang ditunjuk pemerintah. Beberapa

produsen yang telah menghasilkan kecambah saat ini yaitu Pusat Penelitian

Kelapa Sawit (PPKS), PT. Socfindo, PT. London Sumatera, Sinar Mas, Asian

Agri, Selapan Jaya, dan lainnya.

Permintaan benih (kecambah) kelapa sawit per tahun sekitar 100-120 juta

kecambah, namun produsen benih yang ada seperti PPKS, Socfindo, dan London

Sumatera hanya mampu menyediakan 60-70 juta kecambah per tahun (Anonim

dalam Silomba, 2006). Kekurangan benih kelapa sawit bersertifikat di Indonesia

menyebabkan adanya penjualan benih palsu yang menyebabkan menurunnya

produktivitas kelapa sawit Indonesia hingga mencapai 50% dibanding

penggunaan benih unggul bersertifikat. Kekurangan benih dapat ditutupi dengan

mengimpor benih dari Malaysia, Papua Nugini, dan Costa Rica. Kekurangan

benih kelapa sawit juga dapat ditutupi dengan munculnya produsen benih kelapa

sawit yang baru (Silomba, 2006).

Proses pengecambahan benih kelapa sawit cukup sulit karena benih

bersifat dorman. Dormansi benih kelapa sawit disebabkan karena kerasnya kulit

2

2

benih sehingga air sulit masuk ke dalam benih. Adanya kondisi dormansi ini

menyebabkan benih harus diberi perlakuan untuk mematahkan dormansi. Proses

pengecambahan benih kelapa sawit yang bermutu memerlukan waktu sekitar 3

bulan, diawali dengan proses perendaman pertama selama 7 hari untuk

meningkatkan kadar air menjadi 22%, selanjutnya dilakukan pemanasan selama

60 hari pada suhu 40ºC, kemudian direndam kembali selama 3 hari untuk

meningkatkan kadar air hingga 18% lalu dikecambahkan di ruang perkecambahan

pada suhu kamar. Benih mulai berkecambah 2 minggu setelah proses

perkecambahan dengan persentase berkecambah hingga 60%. Pada minggu

berikutnya benih akan tetap berkecambah dengan laju yang lebih rendah hingga 3

bulan ke depan. Silomba (2006) melaporkan bahwa benih kelapa sawit yang

direndam dalam air selama 3-7 hari dengan pemanasan selama 40 hari

menghasilkan daya berkecambah sebesar 87.33%.

Metode lain yang dapat digunakan untuk mematahkan dormansi benih

yaitu dengan merendam benih dalam air panas. Perlakuan air panas dengan suhu

60oC mampu mematahkan dormansi benih Casuarina equisetifolia Lum. dan

meningkatkan daya berkecambahnya (Kesaulija, 1979). Ani (2006) melaporkan

bahwa perendaman benih lamtoro (Leucaena leucocephala) dalam air dengan

suhu awal 60-70oC selama 10-12 menit mampu mematahkan dormansi dan

menghasilkan daya berkecambah sebesar 75%. Khaeruddin (1994) menyatakan

bahwa benih akasia yang direndam air panas dengan suhu 80oC kemudian

didiamkan selama 24 jam sampai air rendamannya dingin, juga dapat

meningkatkan daya berkecambah dan mempercepat pertumbuhan bibit.

Penggunaan beberapa zat pengatur tumbuh juga mampu mematahkan

dormansi dan meningkatkan daya berkecambah benih. Herrera et al. (1998)

melaporkan bahwa penggunaan ethephon dengan konsentrasi 0.6% selama 48 jam

pada benih kelapa sawit juga efektif mematahkan dormansi jika didahului dengan

perendaman menggunakan asam sulfat 98% selama 10 menit. Perlakuan ini

mampu menghasilkan perkecambahan sebesar 88%. Kombinasi penggunaan

hidrogen sianamida 1.5% dan ethephon 1.2% tanpa perlakuan skarifikasi

sebelumnya mampu menghasilkan 60% daya berkecambah benih kelapa sawit.

3

3

Sampai saat ini masih terus dilakukan upaya untuk mendapatkan metode

pematahan dormansi benih kelapa sawit yang efisien dan mampu menghasilkan

daya berkecambah yang tinggi dalam waktu yang relatif singkat. Metode

pematahan dormansi benih kelapa sawit yang umum dilakukan saat ini

membutuhkan waktu yang relatif lama yaitu sekitar 3 bulan. Berdasarkan

beberapa penelitian, metode skarifikasi fisik menggunakan air panas mampu

meningkatkan daya berkecambah, dan penggunaan zat pengatur tumbuh mampu

mempercepat proses perkecambahan pada beberapa jenis benih. Oleh karena itu

diperlukan percobaan untuk mengetahui pengaruh perendaman dalam air panas

dan konsentrasi ethephon terhadap pematahan dormansi dan perkecambahan pada

benih kelapa sawit.

Tujuan

Tujuan penelitian ini adalah untuk mengetahui pengaruh perendaman

dalam air panas dan konsentrasi ethephon terhadap pematahan dormansi dan

perkecambahan benih kelapa sawit.

Hipotesis

1. Perendaman dalam air panas meningkatkan viabilitas benih kelapa sawit.

2. Perlakuan perendaman dalam air panas dan ethephon mampu mematahkan

dormansi benih kelapa sawit.

3. Perlakuan perendaman dalam berbagai konsentrasi ethephon yang didahului

dengan perendaman dalam air panas suhu 80oC selama 3x24 jam dan diakhiri

dengan pemanasan kering selama 1 minggu mampu meningkatkan

perkecambahan benih kelapa sawit.

4

4

TINJAUAN PUSTAKA

Botani Kelapa Sawit (Elaeis guineensis Jacq.)

Kelapa sawit termasuk tanaman monokotil yang secara taksonomi

diklasifikasikan ke dalam ordo Palmales, Famili Palmae, Subfamili Cocoidae,

Genus Elaeis, dan spesies Elaeis guineensis Jacq. (Setyamidjaja, 2006). Asal

taaman kelapa sawit secara pasti belum bisa diketahui, namun ada dugaan kuat

tanaman ini berasal dari dua tempat, yaitu Amerika Selatan dan Afrika (Guinea).

Adrien Hallet, seorang berkebangsaan Belgia, merupakan orang yang pertama

memasukkan tanaman ini ke Indonesia pada tahun 1911 dan mendirikan

perkebunan kelapa sawit di Asahan dan Sungai Liput yang sekarang bernama PT.

Socfindo (Sastrosayono, 2003).

Bagian vegetatif tanaman kelapa sawit meliputi akar (radix), batang

(caulis), dan daun (folium). Kelapa sawit tidak memiliki akar tunggang dan akar

cabang. Jumlah akar yang keluar dari pangkal batang sangat banyak dan terus

bertambah banyak dengan bertambahnya umur tanaman. Sistem perakaran kelapa

sawit terdiri atas akar primer, akar sekunder, serta akar tertier dan kuartener yang

paling aktif mengambil hara dan air dari dalam tanah. Batang kelapa sawit

berbentuk silindris dan berdiameter 40-60 cm, namun pada pangkalnya

membesar. Pada ujung batang terdapat titik tumbuh yang membentuk daun-daun

dan memanjangkan batang. Daun dibentuk di dekat titik tumbuh. Setiap bulan

akan tumbuh dua daun. Pertumbuhan daun awal dan daun berikutnya akan

membentuk sudut 135o (Setyamidjaja, 2006).

Susunan bunga tanaman kelapa sawit terdiri atas karangan bunga yang

memiliki bunga jantan dan bunga betina. Pada beberapa tanaman kelapa sawit ada

juga yang hanya memproduksi bunga jantan. Umumnya bunga jantan dan bunga

betina terdapat dalam dua tandan yang terpisah, namun terkadang dapat berada

dalam satu tandan yang sama. Bunga jantan selalu masak lebih dahulu daripada

bunga betina sehingga penyerbukan sendiri antara bunga jantan dan bunga betina

dalam satu tandan jarang terjadi. Bunga yang telah dibuahi akan berkembang

menjadi buah. Buah kelapa sawit menempel di karangan yang disebut tandan

buah. Dalam satu tandan terdiri atas puluhan hingga ribuan buah. Buah kelapa

5

5

sawit terdiri atas beberapa bagian yaitu eksokarp (kulit luar yang keras dan licin),

mesokarp (sabut) yang merupakan bagian yang paling banyak mengandung

minyak, endokarp (tempurung), dan kernel atau inti sawit (Sastrosayono, 2003).

Berdasarkan ketebalan cangkang dan daging buah, kelapa sawit dibedakan

menjadi tiga jenis yaitu dura, tenera, dan pisifera. Dura memiliki cangkang tebal

(3-5 mm) dan daging buah yang tipis dengan rendemen minyak 15-17%. Tenera

memiliki cangkang tipis (2-3 mm) dan daging buah yang tebal dengan rendemen

minyak 21-23%. Pisifera memiliki cangkang yang sangat tipis, tetapi daging

buahnya tebal, bijinya kecil, dan rendemen minyaknya tinggi yaitu lebih dari 23%

(Sunarko, 2007).

Kelapa sawit merupakan tanaman hutan yang dibudidayakan. Tanaman ini

memiliki respon yang sangat baik terhadap kondisi lingkungan dan perlakuan

yang diberikan. Seperti tanaman budidaya lainnya, kelapa sawit membutuhkan

kondisi tumbuh yang baik agar potensi produksinya dapat mencapai maksimum.

Faktor utama lingkungan tumbuh yang perlu diperhatikan adalah iklim serta

keadaan fisik dan kesuburan tanah, disamping faktor lain seperti genetik tanaman,

perlakuan yang diberikan, dan pemeliharaan (Pardamean, 2008)

Perkecambahan Kelapa Sawit

Menurut Silomba (2006), perkecambahan benih kelapa sawit merupakan

suatu rangkaian kompleks dari perubahan morfologi, fisiologi, dan biokimia.

Sadjad (1993) mengemukakan bahwa secara fisiologis, perkecambahan benih

diartikan sebagai munculnya akar melalui kulit benih, sedangkan analis benih

mengatakan sebagai muncul dan berkembangnya embrio dan merupakan

kemampuan benih untuk berkecambah normal dalam kondisi yang

menguntungkan.

Struktur benih kelapa sawit terdiri atas serabut buah (pericarp) dan inti

(kernel). Serabut buah kelapa sawit terdiri atas tiga lapis yaitu lapisan luar yang

disebut exocarp, lapisan sebelah dalam disebut mesocarp atau pulp, dan lapisan

paling dalam disebut endocarp. Inti kelapa sawit terdiri atas lapisan kulit biji

(testa), endosperma, dan embrio. Ujung embrio dan titik tumbuh dipisahkan oleh

lapisan operculum sebagai tempat keluarnya kecambah kelapa sawit (Gambar 1).

6

6

Kelapa sawit memiliki tipe perkecambahan hypogeal, yaitu kotiledon tetap berada

di permukaan tanah setelah benih berkecambah. Benih kelapa sawit termasuk ke

dalam benih rekalsitran sehingga tidak tahan disimpan dalam suhu dingin di

bawah 5oC dan akan mati apabila kadar airnya berada di bawah 12.5% (Chin dan

Roberts, 1980). Kecambah kelapa sawit merupakan embrio yang keluar dari kulit

biji dan berkembang ke dua arah. Arah tegak lurus ke atas (phototropism) disebut

dengan plumula yang selanjutnya akan menjadi batang dan daun, sedangkan arah

tegak lurus ke bawah (geotropism) disebut dengan radikula yang selanjutnya akan

menjadi akar (Sunarko, 2007).

Gambar 1. Stuktur benih kelapa sawit (Sumber: Kurnila, 2009)

Kecambah normal adalah kecambah yang tumbuh sempurna dan secara

jelas dapat dibedakan antara radikula dan plumula, tidak patah, tumbuh lurus,

panjang plumula dan radikula berkisar 1-1.5 cm. Kecambah abnormal mempunyai

ciri-ciri tumbuh bengkok, plumula dan radikula tumbuh searah, kecambah kerdil,

dan hanya memiliki radikula atau plumula saja serta terserang penyakit (Adiguno,

1998). Kriteria kecambah normal yang digunakan PPKS adalah (1) kecambah

tumbuh sempurna, (2) plumula dan radikula sudah dapat dibedakan, (3) plumula

dan radikula tampak segar, (4) kecambah tidak berjamur, dan (5) panjang plumula

dan radikula maksimum 2 cm. Kriteria kecambah abnormal yaitu (1) tumbuh

exocarp

mesocarp

endocarp

testa

endosperm

embryo

operculum

7

7

membengkok, (2) plumula dan radikula tumbuh searah, dan (3) layu atau

berjamur. Kriteria kecambah panjang yaitu panjang plumula dan radikula lebih

dari 2 cm (Kurnila 2009). Williyatno (2007) melaporkan bahwa pada selang 5-10

hari setelah benih mulai berkecambah, panjang plumula dan radikula melebihi

2 cm. Oleh karena itu untuk menghindari kecambah tumbuh panjang maka

pemilihan kecambah harus dilakukan paling lambat 10 hari setelah benih mulai

berkecambah.

Benih kelapa sawit memiliki kulit yang tebal, oleh karena itu diperlukan

persiapan yang lama untuk mengecambahkannya. Setelah buah yang masak

dipanen, tandan buah diperam (fermentasi I) selama 3 hari agar semua buahnya

rontok, setelah itu diperam lagi selama 3 hari (fermentasi II). Selama fermentasi I

dan II, penyiraman dilakukan setiap hari. Setelah daging dan sabut membusuk,

biji dipisahkan dari daging buah dan serat. Setelah terpisah, biji dikering-anginkan

dan disimpan selama 2 bulan dalam ruang suhu kamar untuk perkecambahan

(Sastrosayono, 2003).

Pematahan Dormansi Benih

Pada saat masak fisiologis, tidak semua benih siap untuk berkecambah.

Benih membutuhkan waktu tertentu agar dapat berkecambah secara alami setelah

dipanen, atau seringkali membutuhkan perlakuan tertentu agar dapat berkecambah

(Kuswanto, 2003). Dormansi benih adalah keadaan dimana benih mengalami

istirahat total sehingga meskipun dalam keadaan media tumbuh benih optimum,

benih tidak menunjukkan gejala atau fenomena hidup (Sadjad, 1993). Dormansi

benih merupakan cara tanaman agar dapat bertahan hidup dan beradaptasi dengan

lingkungannya, dan merupakan sifat yang diturunkan secara genetik. Intensitas

dormansi dipengaruhi oleh lingkungan selama perkembangan benih. Dormansi

pada spesies tertentu mengakibatkan benih tidak berkecambah di dalam tanah

selama beberapa tahun. Beberapa mekanisme dormansi terjadi pada benih baik

fisik maupun fisiologi, termasuk dormansi primer dan sekunder (Ilyas, 2012).

Pematahan dormansi dapat dilakukan dengan berbagai cara antara lain

dengan perlakuan mekanis, perlakuan suhu, perlakuan cahaya, perendaman

dengan air panas, dan perlakuan menggunakan bahan kimia. Perlakuan

8

8

perendaman menggunakan air panas bertujuan untuk memudahkan penyerapan air

oleh benih. Perlakuan ini dilakukan dengan memasukkan benih pada suhu air

tertentu dan dibiarkan hingga air menjadi dingin (Copeland dan McDonald, 1995).

Perlakuan air panas dengan suhu 60oC pada benih Casuarina equisetifolia Lum.

memberikan hasil daya berkecambah yang lebih baik dibandingkan perendaman

dalam air dingin maupun dalam air suhu 40oC (Kesaulija, 1979). Perendaman

benih sengon laut (Paraserianthes falcataria) dalam air panas dengan suhu 75oC

selama 24 jam memberikan hasil terbaik dengan persentase daya berkecambah

sebesar 54.9% dibanding perlakuan perendaman pada air dingin, air dengan suhu

50oC dan suhu 100

oC (Ratnasari, et al., 2006). Perendaman benih

tanaman jati (Tectona grandis L.) dalam air panas dengan suhu 60oC juga

efektif dalam meningkatkan bobot kering kecambah normal sebesar 1.17 g

(Miranda, 2005). Ani (2006) melaporkan bahwa perendaman benih Lamtoro

(Leucaena leucocephala) dalam air dengan suhu awal 60-70oC selama 10-12

menit mampu mematahkan dormansi dan menghasilkan daya berkecambah

sebesar 75%, sedangkan pengaruh perendaman benih dalam air panas terhadap

pertumbuhan bibit selanjutnya berpengaruh sangat nyata terhadap tinggi tanaman,

jumlah daun, dan panjang akar. Khaeruddin (1994) menyatakan bahwa tanaman

akasia dengan perlakuan benih direndam air panas kemudian didiamkan selama

24 jam sampai air rendamannya dingin, juga dapat mempercepat pertumbuhan

dan meningkatkan daya berkecambah.

Benih kelapa sawit mengalami dorman karena kulit bijinya yang keras dan

mengandung lignin yang cukup tinggi (Nurmailah, 1999). Perlakuan

menggunakan bahan kimia dilakukan agar kulit benih terdegradasi sehingga air

lebih mudah berimbibisi. Bahan kimia yang paling umum dan efektif digunakan

dalam industri saat ini yaitu asam sulfat dan kalium nitrat. Bahan lain yang dapat

digunakan untuk mematahkan dormansi benih yaitu hormon tumbuh seperti

giberelin, sitokinin, auksin, dan etilen (Copeland dan McDonald, 1995). Menurut

Ilyas (2012), metode pematahan dormansi pada benih berkulit keras yaitu dengan

skarifikasi mekanis untuk menipiskan testa, pemanasan, pendinginan, perendaman

dalam air mendidih, pergantian suhu drastis, dan skarifikasi kimia menggunakan

asam sulfat untuk mendegradasi testa. Herrera et al. (1998) melaporkan bahwa

9

9

perendaman dalam ethephon dengan konsentrasi 0.6% selama 48 jam pada benih

kelapa sawit menghasilkan daya berkecambah 84% dalam 75 hari, sedangkan

pada perlakuan ethephon 0.6% yang dikombinasikan dengan perlakuan

pendahuluan dengan merendam dalam asam sulfat 98% mampu menghasilkan

daya berkecambah sebesar 88% selama 25 hari.

10

10

BAHAN DAN METODE

Tempat dan Waktu

Penelitian dilaksanakan di unit pemrosesan benih kelapa sawit PT Astra

Agro Lestari Tbk, yang berlokasi di Desa Pandu Senjaya Kecamatan Pangkalan

Lada Kabupaten Kotawaringin Barat, Kalimantan Tengah. Penelitian ini

dilaksanakan mulai bulan April hingga Juli 2012.

Bahan dan Alat

Benih kelapa sawit yang digunakan dalam penelitian ini yaitu varietas

DxP Yangambi yang merupakan hasil persilangan F1 antara tetua dura Deli

dengan pisifera keturunan tenera Yangambi. Benih kelapa sawit yang digunakan

telah disimpan selama 3 bulan di ruang penyimpanan dengan suhu 18oC. Bahan

yang digunakan untuk mematahkan dormansi benih yaitu zat pengatur tumbuh

ethephon. Bahan lain yang digunakan yaitu aquades, alkohol, fungisida dithane,

wadah pengecambah, dan kertas label. Alat yang digunakan dalam penelitian ini

yaitu gelas ukur, gelas kimia, pengaduk kaca, termometer, oven, cawan,

timbangan, penggaris, tempat perkecambahan, dan peralatan pengamanan dalam

laboratorium.

Tahap Penelitian

Penelitian ini terbagi menjadi tiga tahap percobaan, yaitu:

1. Percobaan I untuk menentukan suhu air dan intensitas perendaman yang

optimum untuk digunakan sebagai perendaman pendahuluan pada benih

kelapa sawit.

2. Percobaan II untuk menentukan konsentrasi ethephon yang optimum setelah

perendaman pendahuluan menggunakan air pada suhu 80oC dengan intensitas

perendaman 3x24 jam.

3. Percobaan III untuk mempelajari pengaruh perendaman dalam berbagai

konsentrasi ethephon yang didahului dengan perendaman dalam air panas

11

11

suhu 80oC selama 3x24 jam dan diakhiri dengan pemanasan kering 39-40

oC

selama 1 minggu terhadap perkecambahan benih kelapa sawit.

Metode Penelitian

Percobaan I: Penentuan Suhu Air dan Intensitas Perendaman Benih Kelapa

Sawit

Percobaan ini bertujuan untuk menentukan suhu air dan intensitas

perendaman yang digunakan untuk merendam benih kelapa sawit. Percobaan ini

dilakukan menggunakan Rancangan Acak Lengkap (RAL) faktorial yang terdiri

atas dua faktor. Faktor pertama suhu air terdiri atas lima taraf yaitu P0: suhu air

tanpa pemanasan (27 oC), P1: suhu air awal 60

oC, P2: suhu air awal 70

oC, P3:

suhu air awal 80oC, dan P4: suhu air awal 90

oC. Faktor kedua, intensitas

perendaman terdiri atas empat taraf yaitu I0: tanpa perendaman, I1: 1x24 jam

(satu kali perendaman selama 24 jam), I2: 2x24 jam (dua kali perendaman dengan

masing-masing perendaman dilakukan selama 24 jam), dan I3: 3x24 jam (tiga kali

perendaman dengan masing-masing perendaman dilakukan selama 24 jam). Tiap

perlakuan diulang sebanyak tiga kali sehingga terdapat 60 satuan percobaan.

Model statistika yang digunakan adalah sebagai berikut:

Yijk = respon pengamatan perlakuan suhu air dan intensitas perendaman

= nilai tengah umum

= pengaruh suhu air taraf ke-i

= pengaruh intensitas perendaman ke-j

= pengaruh interaksi perlakuan suhu air dan intensitas perendaman

= pengaruh galat percobaan

Data yang diperoleh dianalisis dengan menggunakan uji F, bila hasil yang

diperoleh berpengaruh nyata maka dilakukan uji lanjut dengan uji DMRT

(Duncan Multiple Range Test) pada taraf 5%. Data akan diolah menggunakan

SAS.

12

12

Percobaan II: Penentuan Konsentrasi Ethephon yang Optimum

Percobaan ini dilakukan berdasarkan hasil dari percobaan I. Perlakuan

terbaik pada percobaan I digunakan sebagai perlakuan pendahuluan (suhu 80oC

dengan intensitas perendaman 3x24 jam) pada percobaan II dan III. Percobaan

menggunakan Rancangan Acak Lengkap (RAL) satu faktor yaitu konsentrasi

ethephon yang terdiri atas E0: ethephon 0%, E1: ethephon 0.4%, E2: ethephon

0.8%, E3: ethephon 1.2%, dan E4: ethephon 1.6%. Tiap kombinasi perlakuan

diulang sebanyak lima kali sehingga terdapat 25 satuan percobaan.

Model statistika yang digunakan adalah sebagai berikut:

Yij = respon pengamatan perlakuan konsentrasi ethephon

= nilai tengah umum

= pengaruh perlakuan konsentrasi ethephon taraf ke-i

= pengaruh galat percobaan

Data yang diperoleh dianalisis dengan menggunakan uji F, bila hasil yang

diperoleh berpengaruh nyata maka dilakukan uji lanjut dengan uji DMRT

(Duncan Multiple Range Test) pada taraf 5%. Data diolah menggunakan SAS.

Percobaan III: Pengaruh Perendaman dalam Berbagai Konsentrasi

Ethephon yang Didahului dengan Perendaman dalam Air

Panas Suhu 80oC Selama 3x24 Jam dan Diakhiri dengan

Pemanasan Kering selama 1 Minggu terhadap

Perkecambahan Benih Kelapa Sawit

Percobaan ini menggunakan Rancangan Acak Lengkap (RAL) satu faktor

yaitu perlakuan pematahan dormansi yang terdiri atas lima perlakuan yaitu:

T1 = Perendaman pada suhu 80 oC selama 3x24 jam + ethephon 0.0% +

pemanasan kering selama 1 minggu

T2 = Perendaman pada suhu 80 oC selama 3x24 jam + ethephon 0.4% +

pemanasan kering selama 1 minggu

T3 = Perendaman pada suhu 80 oC selama 3x24 jam + ethephon 0.8% +

pemanasan kering selama 1 minggu

13

13

T4 = Perendaman pada suhu 80 oC selama 3x24 jam + ethephon 1.2% +

pemanasan kering selama 1 minggu

T5 = Perendaman pada suhu 80 oC selama 3x24 jam + ethephon 1.6% +

pemanasan kering selama 1 minggu

Tiap kombinasi perlakuan diulang sebanyak lima kali sehingga terdapat

25 satuan percobaan.

Model statistika yang digunakan adalah sebagai berikut:

Yij = respon pengamatan perlakuan

= nilai tengah umum

= pengaruh perlakuan taraf ke-i

= pengaruh galat percobaan

Data yang diperoleh dianalisis dengan menggunakan uji F, bila hasil yang

diperoleh berpengaruh nyata maka dilakukan uji lanjut dengan uji DMRT

(Duncan Multiple Range Test) pada taraf 5%. Data diolah menggunakan SAS.

Pelaksanaan

Percobaan I

Benih yang digunakan terlebih dahulu direndam dalam air selama 7 hari

untuk membersihkan kotoran, lalu dikering-anginkan selama 24 jam sebelum

diberi perlakuan. Masing-masing perlakuan menggunakan 50 butir benih.

Pemberian perlakuan dilakukan mula-mula dengan memanaskan air yang akan

digunakan untuk perendaman hingga mencapai suhu masing-masing perlakuan.

Benih kelapa sawit direndam dalam air panas sesuai dengan perlakuan intensitas

perendaman. Waktu yang digunakan dalam satu kali perendaman yaitu 24 jam.

Pada perendaman 2x24 jam dan 3x24 jam, dilakukan penggantian air panas tiap

24 jam. Setelah proses perendaman, benih dicuci menggunakan air lalu direndam

dalam fungisida Dithane dengan konsentrasi 2 g l-1

selama 5 menit, kemudian

benih dikering-anginkan kembali selama 4 jam sebelum masuk ke ruang

perkecambahan. Setelah itu benih diletakkan dalam tray perkecambahan dan

14

14

diberi label lalu diletakkan di ruang inkubasi (ruang perkecambahan) selama 35

hari. Penyemprotan benih dilakukan setiap hari menggunakan fungisida Dithane

dengan konsentrasi 2 g l-1

. Diagram alir percobaan I disajikan pada Gambar 2.

Gambar 2. Diagram alir proses pelaksanaan percobaan I

Perendaman I dalam air suhu

kamar (27oC) selama 7 hari

Pengering-anginan I selama

24 jam

Perendaman dalam air panas suhu P0: suhu air tanpa pemanasan (27 oC), P1:

suhu air awal 60oC, P2: suhu air awal 70

oC, P3: suhu air awal 80

oC, dan

P4: suhu air awal 90oC dan intensitas perendaman I0: tanpa perendaman,

I1: 1x24 jam (satu kali perendaman selama 24 jam), I2: 2x24 jam (dua

kali perendaman dengan masing-masing perendaman dilakukan selama 24

jam), dan I3: 3x24 jam (tiga kali perendaman dengan masing-masing

perendaman dilakukan selama 24 jam)

Pencucian dan pemberian

fungisida Dithane 5 g l-1

Pengering-anginan II

selama 4 jam

Perkecambahan dalam

ruang inkubasi suhu 28-

30oC dan kelembaban

60-65% selama 35 hari

15

15

Percobaan II

Persiapan benih kelapa sawit dilakukan seperti pada percobaan I. Benih

kelapa sawit diberi perlakuan perendaman dalam air panas berdasarkan hasil

terbaik pada percobaan I. Benih dikering-anginkan terlebih dahulu selama 4 jam

sebelum diberi perlakuan perendaman dalam berbagai konsentrasi ethephon

selama 48 jam. Volume larutan ethephon yang digunakan untuk merendam 50

butir benih yaitu 200 ml (Herrera et al., 1998). Perendaman dilakukan

menggunakan wadah plastik yang ditutup rapat. Setelah perendaman dalam

ethephon, benih dicuci menggunakan air lalu direndam dalam fungisida Dithane

dengan konsentrasi 2 g l-1

selama 5 menit, kemudian benih dikering-anginkan

kembali selama 4 jam sebelum masuk ke ruang perkecambahan. Diagram alir

percobaan II disajikan pada Gambar 3.

Percobaan III

Percobaan III dilakukan sebagai percobaan lanjutan dari percobaan I dan

II. Pemanasan kering dilakukan pada akhir perlakuan untuk menurunkan kadar air

benih sehingga diharapkan mampu meningkatkan perkcambahan dan menekan

tingkat serangan cendawan. Pemanasan kering selama 1 minggu dilakukan pada

pemrosesan ulang benih kelapa sawit yang belum tumbuh di PT Astra Agro

Lestari Tbk. Benih mula-mula direndam dalam air suhu 80oC selama 3x24 jam.

Benih dikering-anginkan terlebih dahulu selama 4 jam lalu direndam dalam

berbagai konsentrasi ethephon selama 48 jam, setelah itu dikering-anginkan

kembali selama 24 jam. Benih lalu dimasukkan ke dalam plastik lalu diikat

dengan rapat dan dimasukkan ke dalam ruang pemanasan kering dengan suhu 39–

40oC selama 1 minggu. Setelah 1 minggu, benih dicuci menggunakan air lalu

direndam dalam fungisida Dithane dengan konsentrasi 2 g l-1

selama 5 menit,

kemudian benih dikering-anginkan kembali selama 4 jam sebelum masuk ke

ruang perkecambahan. Diagram alir percobaan III disajikan pada Gambar 4.

16

16

Gambar 3. Diagram alir proses pelaksanaan percobaan II

Perendaman I dalam air suhu

kamar (27oC) selama 7 hari

Pengering-anginan I selama

24 jam

Pencucian dan pemberian

fungisida Dithane 5 g l-1

Pengering-anginan

III selama 4 jam

Perkecambahan dalam

ruang inkubasi suhu 28-

30oC dan kelembaban

60-65% selama 35 hari

Perendaman dalam

air suhu 80oC

selama 3x24 jam

Hasil terbaik

percobaan I

Pengering-anginan

II selama 4 jam

Perendaman dalam ethephon selama 48 jam

17

17

Perendaman I dalam air suhu

kamar (27oC) selama 7 hari

Pengering-anginan I

selama 24 jam

Pencucian dan pemberian

fungisida Dithane 5 g l-1

Pengering-anginan IV

selama 4 jam

Perkecambahan dalam

ruang inkubasi suhu 28-

30oC dan kelembaban 60-

65% selama 35 hari

Perendaman dalam air

suhu 80oC selama

3x24 jam

Hasil terbaik

percobaan I

Pengering-anginan II

selama 4 jam

Perendaman dalam ethephon selama 48 jam

Pemanasan kering pada suhu

39-40oC selama 1 minggu

Pengering-anginan III

selama 24 jam

Gambar 4. Diagram alir proses pelaksanaan percobaan III

18

18

Pengamatan

Pengamatan terhadap kecambah kelapa sawit dilakukan setiap hari setelah

inkubasi selama 35 hari. Pengamatan meliputi kecambah normal, abnormal, dan

dorman. Pengamatan terhadap percobaan ini menggunakan beberapa tolok ukur

yaitu:

1. Kadar air benih (KA)

Pengukuran kadar air benih dilakukan dengan metode langsung

menggunakan oven. Benih dikeringkan menggunakan oven dengan suhu 105oC

selama 48 jam. Benih ditimbang menggunakan timbangan digital. Penetapan

kadar air benih ditentukan menggunakan rumus:

2. Daya berkecambah (DB)

Perhitungan daya berkecambah menggunakan rumus:

Pengamatan dilakukan sebanyak lima kali yaitu pada 7 HSI (hari setelah

inkubasi), 14 HSI, 21 HSI, 28 HSI, dan 35 HSI.

3. Kecepatan tumbuh (KCT)

Kecepatan tumbuh dihitung berdasarkan akumulasi kecepatan tumbuh

harian dalam tolok ukur persentase pertambahan kecambah normal per hari

selama 35 hari. Perhitungan kecepatan tumbuh menggunakan rumus:

4. Potensi tumbuh maksimum (PTM)

Potensi tumbuh maksimum benih merupakan persentase benih yang

berkecambah (normal dan abnormal) sampai akhir pengamatan terhadap jumlah

keseluruhan benih yang dikecambahkan. Potensi tumbuh maksimum digunakan

untuk mengidentifikasi viabilitas total dari benih kelapa sawit yang diuji.

Perhitungan potensi tumbuh maksimum menggunakan rumus:

19

19

5. Intensitas dormansi (ID)

Intensitas dormansi adalah persentase benih yang tidak tumbuh sampai

akhir pengamatan (35 HSI). Benih yang terserang cendawan sebelum akhir

pengamatan dan belum berkecambah (dorman) termasuk ke dalam perhitungan

intensitas dormansi. Perhitungan intensitas dormansi menggunakan rumus:

6. Persentase benih terserang cendawan

Pengamatan dilakukan dengan menghitung jumlah benih yang terserang

cendawan selama pengecambahan (35 HSI). Perhitungan persentase benih

terserang cendawan menggunakan rumus:

20

20

HASIL DAN PEMBAHASAN

Hasil

Percobaan I. Pengaruh Suhu Air dan Intensitas Perendaman terhadap

Perkecambahan Benih Kelapa Sawit

Berdasarkan rekapitulasi hasil sidik ragam pada Tabel 1 menunjukkan

bahwa interaksi antara perlakuan suhu air rendaman dengan intensitas

perendaman berpengaruh sangat nyata terhadap seluruh tolok ukur yang diamati

kecuali kadar air benih dan persentase benih terserang cendawan. Perlakuan suhu

air (P) menunjukkan pengaruh yang sangat nyata terhadap peubah daya

berkecambah, kecepatan tumbuh, potensi tumbuh maksimum, dan intensitas

dormansi namun tidak berpengaruh nyata terhadap kadar air dan persentase benih

terserang cendawan. Faktor perlakuan intensitas perendaman berpengaruh sangat

nyata terhadap peubah daya berkecambah, kecepatan tumbuh, potensi tumbuh

maksimum, intensitas dormansi, dan persentase benih terserang cendawan tetapi

tidak berpengaruh nyata pada kadar air benih (Tabel 1). Kadar air benih pada

percobaan I berkisar antara 21.3% sampai 23.3%. Sidik ragam dapat dilihat pada

Lampiran 1 sampai 7.

Tabel 1. Rekapitulasi hasil sidik ragam perlakuan suhu air dan intensitas

perendaman pada beberapa tolok ukur perkecambahan benih kelapa

sawit

Peubah Faktor Perlakuan

P I P*I

Kadar air benih tn tn tn

Daya berkecambah ** ** **

Kecepatan tumbuh ** ** **

Potensi tumbuh maksimum ** ** **

Intensitas dormansi ** ** **

Persentase benih terserang cendawan tn ** tn

Keterangan: ** = berbeda nyata pada taraf 1% ; tn = tidak berbeda nyata ; P*I = pengaruh

interaksi suhu air (P) dan intensitas perendaman (I)

21

21

Berdasarkan Tabel 2, perendaman selama 1x24 jam dalam berbagai suhu

tidak mampu membuat benih berkecambah. Semakin tinggi intensitas

perendaman, daya berkecambah benih semakin meningkat. Daya berkecambah

meningkat hingga suhu 80oC lalu mengalami penurunan pada suhu 90

oC. Daya

berkecambah tertinggi didapat pada perlakuan perendaman dalam suhu 80oC

selama 3x24 jam yaitu sebesar 16.7%. Perlakuan ini kemudian digunakan pada

percobaan II sebelum benih direndam dalam ethephon.

Tabel 2. Pengaruh suhu air dan intensitas perendaman terhadap daya berkecambah

Suhu Air Intensitas Perendaman

1x24 jam 2x24 jam 3x24 jam

%

27oC 0.71g (0.0) 0.71g (0.0) 0.71g (0.0)

60oC 0.71g (0.0) 0.72fg (1.3) 0.77c (8.7)

70oC 0.71g (0.0) 0.73ef (3.3) 0.76cd (7.3)

80oC 0.71g (0.0) 0.74de (5.3) 0.82a (16.7)

90oC 0.71g (0.0) 0.73ef (3.3) 0.78b (11.3)

Keterangan: Angka rataan yang diikuti oleh huruf yang sama tidak berbeda nyata

berdasarkan uji DMRT 5%. Data yang dianalisis adalah data yang sudah

ditransformasi √(x+0.5). Angka dalam kurung merupakan data asli sebelum

ditransformasi ; kk= 1.36%

Pada intensitas perendaman 2x24 jam dan 3x24 jam, terjadi peningkatan

kecepatan tumbuh (Tabel 3) dan potensi tumbuh maksimum benih (Tabel 4)

hingga suhu 80oC lalu mengalami penurunan pada suhu 90

oC. Peningkatan

kecepatan tumbuh dan potensi tumbuh maksimum juga terjadi pada intensitas

perendaman yang lebih tinggi. Kecepatan tumbuh tertinggi didapat pada

perlakuan perendaman dalam suhu 80oC selama 3x24 jam yaitu sebesar 0.59%

KN etmal-1

dengan potensi tumbuh maksimum sebesar 16.7%.

22

22

Tabel 3. Pengaruh suhu air dan intensitas perendaman terhadap kecepatan tumbuh

Suhu Air Intensitas Perendaman

1x24 jam 2x24 jam 3x24 jam

% KN etmal-1

27oC 0.7071g (0.00) 0.7071g (0.00) 0.7071g (0.00)

60oC 0.7071g (0.00) 0.7074fg (0.04) 0.7093c (0.32)

70oC 0.7071g (0.00) 0.7079ef (0.12) 0.7090cd (0.27)

80oC 0.7071g (0.00) 0.7084de (0.18) 0.7112a (0.59)

90oC 0.7071g (0.00) 0.7078efg (0.11) 0.7101b (0.43)

Keterangan: Angka rataan yang diikuti oleh huruf yang sama tidak berbeda nyata

berdasarkan uji DMRT 5%. Data yang dianalisis adalah data yang sudah

ditransformasi √(x+0.5). Angka dalam kurung merupakan data asli sebelum

ditransformasi ; kk= 0.06%

Tabel 4. Pengaruh suhu air dan intensitas perendaman terhadap potensi tumbuh

maksimum

Suhu Air Intensitas Perendaman

1x24 jam 2x24 jam 3x24 jam

%

27oC 0.7071f (0.0) 0.7071f (0.0) 0.7071f (0.0)

60oC 0.7071f (0.0) 0.7164ef (1.3) 0.7658c (8.7)

70oC 0.7071f (0.0) 0.7303e (3.3) 0.7571cd (7.3)

80oC 0.7071f (0.0) 0.7483d (6.0) 0.8164a (16.7)

90oC 0.7071f (0.0) 0.7303e (3.3) 0.7873b (12.0)

Keterangan: Angka rataan yang diikuti oleh huruf yang sama tidak berbeda nyata

berdasarkan uji DMRT 5%. Data yang dianalisis adalah data yang sudah

ditransformasi √(x+0.5). Angka dalam kurung merupakan data asli sebelum

ditransformasi ; kk= 1.29%

Perendaman selama 3x24 jam menurunkan persentase benih terserang

cendawan dari 56.8% menjadi 22.5% dibanding pada perendaman 1x24 jam.

Rata-rata pengaruh suhu air terhadap persentase benih terserang cendawan

berkisar antara 38.0% hingga 44.2%.

23

23

Tabel 5. Pengaruh suhu air dan intensitas perendaman terhadap persentase benih

terserang cendawan

Suhu Air Intensitas Perendaman

1x24 jam 2x24 jam 3x24 jam Rata-rata

%

27 oC (P0) 54.0 41.3 22.7 39.3

60 oC (P1) 55.3 37.3 21.3 38.0

70 oC (P2) 62.0 40.0 20.7 40.9

80 oC (P3) 52.7 44.7 23.3 40.2

90 oC (P4) 60.0 48.0 24.7 44.2

Rata-rata 56.8a 42.3b 22.5c

Keterangan : Angka-angka yang diikuti huruf yang sama tidak berbeda nyata menurut

statistik uji lanjut DMRT pada taraf α = 5% ; kk = 15.72%

Berdasarkan hasil dari percobaan I, terlihat bahwa perlakuan perendaman

dalam air 80oC selama 3x24 jam memberikan hasil terbaik dibanding perlakuan

lainnya. Oleh karena itu, perlakuan ini akan digunakan pada percobaan

selanjutnya.

Percobaan II. Pengaruh Konsentrasi Ethephon terhadap Perkecambahan

Benih Kelapa Sawit

Rekapitulasi hasil sidik ragam perlakuan konsentrasi ethephon

menunjukkan pengaruh yang sangat nyata terhadap peubah kadar air benih, daya

berkecambah, kecepatan tumbuh, potensi tumbuh maksimum, dan intensitas

dormansi namun tidak berpengaruh nyata terhadap persentase benih terserang

cendawan (Tabel 6). Sidik ragam perlakuan pengaruh konsentrasi ethephon

terhadap perkecambahan benih kelapa sawit disajikan pada Lampiran 8 sampai

13.

24

24

Tabel 6. Rekapitulasi hasil sidik ragam perlakuan konsentrasi ethephon pada tolok

ukur perkecambahan benih kelapa sawit

Peubah Konsentrasi Ethephon kk (%)

Kadar air benih ** 3.52

Daya berkecambah ** 0.96#

Kecepatan tumbuh ** 0.05#

Potensi tumbuh maksimum ** 14.75

Intensitas dormansi ** 4.03

Persentase benih terserang cendawan tn 26.72

Keterangan: ** = berpengaruh nyata pada taraf 5% ; tn = tidak berpengaruh nyata ; # =

transformasi √(x+0.5)

Kadar air benih, daya berkecambah, dan kecepatan tumbuh cenderung

menurun pada konsentrasi ethephon yang lebih tinggi. Potensi tumbuh maksimum

meningkat hingga konsentrasi 0.4% yaitu sebesar 29.2% lalu menurun pada

konsentrasi ethephon yang lebih tinggi. Nilai intensitas dormansi menurun hingga

konsentrasi ethephon 0.4% yaitu sebesar 70.8% lalu meningkat pada konsentrasi

ethephon yang lebih tinggi. Persentase benih terserang cendawan berkisar antara

12.8% sampai 16.0% (Tabel 7).

Tabel 7. Pengaruh konsentrasi ethephon terhadap kadar air (KA), daya

berkecambah (DB), kecepatan tumbuh (KCT), potensi tumbuh

maksimum (PTM), intensitas dormansi (ID), dan persentase benih

terserang cendawan

Konsen-

trasi

Ethephon

(%)

KA

(%)

DB

(%)

KCT

(% etmal-1

)

PTM

(%)

ID

(%)

Benih

Terserang

Cendawan

(%)

0 21.7a 0.802a (14.4) 0.7107a (0.51) 14.4c 85.6a 16.0

0.4 20.8ab 0.713b (0.8) 0.7073b (0.04) 29.2a 70.8c 12.8

0.8 19.6c 0.707b (0.0) 0.7071b (0.00) 20.0b 80.0b 16.0

1.2 19.9bc 0.707b (0.0) 0.7071b (0.00) 23.2b 76.8b 13.6

1.6 20.0bc 0.707b (0.0) 0.7071b (0.00) 20.4b 79.6b 13.2

Keterangan: Angka rataan yang diikuti huruf yang sama pada kolom yang sama tidak

berbeda nyata menurut statistik uji lanjut DMRT pada taraf α = 5%. Angka

dalam kurung merupakan data asli sebelum ditransformasi √(x+0.5)

25

25

Percobaan III: Pengaruh Perendaman dalam Berbagai Konsentrasi

Ethephon yang Didahului dengan Perendaman dalam Air

Panas 80oC Selama 3x24 Jam dan Diakhiri dengan

Pemanasan Kering selama 1 Minggu terhadap

Perkecambahan Benih Kelapa Sawit

Berdasarkan rekapitulasi hasil sidik ragam, perlakuan pematahan dormansi

menunjukkan pengaruh yang sangat nyata terhadap peubah kadar air benih, daya

berkecambah, kecepatan tumbuh, dan potensi tumbuh maksimum, namun tidak

berpengaruh nyata terhadap intensitas dormansi dan persentase benih terserang

cendawan (Tabel 8). Sidik ragam perlakuan pematahan benih kelapa sawit

disajikan pada Lampiran 14 sampai 19.

Tabel 8. Rekapitulasi hasil sidik ragam perlakuan pematahan dormansi pada

beberapa tolok ukur perkecambahan benih kelapa sawit

Peubah Konsentrasi Ethephon kk (%)

Kadar air benih ** 3.44

Daya berkecambah ** 1.60#

Kecepatan tumbuh ** 0.12#

Potensi tumbuh maksimum ** 6.82

Intensitas dormansi tn 9.00

Persentase benih terserang cendawan tn 12.89

Keterangan: ** = berpengaruh nyata pada taraf 5% ; tn = tidak berpengaruh nyata ; # =

transformasi √(x+0.5)

Perlakuan pematahan dormansi berpengaruh sangat nyata terhadap kadar

air, daya berkecambah, kecepatan tumbuh, dan potensi tumbuh maksimum.

Konsentrasi ethephon tidak berpengaruh nyata terhadap intensitas dormansi dan

persentase benih terserang cendawan. Tabel 9 menunjukkan bahwa kadar air

benih, daya berkecambah, dan kecepatan tumbuh nyata menurun pada konsentrasi

ethephon yang lebih tinggi. Potensi tumbuh maksimum meningkat secara nyata

hingga konsentrasi ethephon 0.4% (T2) yaitu sebesar 52.0% lalu menurun pada

konsentrasi ethephon yang lebih tinggi. Nilai intensitas dormansi berkisar antara

56.4% sampai 66.4%, sedangkan persentase benih terserang cendawan berkisar

antara 13.6% sampai 16.4%.

26

26

Tabel 9. Pengaruh perendaman dalam berbagai konsentrasi ethephon yang

didahului dengan perendaman dalam air panas suhu 80oC selama 3x24

jam dan diakhiri dengan pemanasan kering selama 1 minggu terhadap

KA, DB, KCT, PTM, ID, dan persentase benih terserang cendawan

Perla-

kuan

KA

(%)

DB

(%)

KCT

(% etmal-1

)

PTM

(%)

ID

(%)

Benih

Terserang

Cendawan (%)

T1 19.5a 0.914a (33.6) 0.7193a (1.75) 33.6d 66.4 16.4

T2 18.8ab 0.729b (3.2) 0.7083b (0.17) 52.0a 61.6 13.6

T3 17.9c 0.707c (0.0) 0.7071c (0.00) 43.6b 56.4 15.2

T4 18.2bc 0.707c (0.0) 0.7071c (0.00) 39.6c 60.4 13.6

T5 18.2bc 0.707c (0.0) 0.7071c (0.00) 36.4cd 63.6 14.0

Keterangan: Angka rataan yang diikuti huruf yang sama pada kolom yang sama tidak

berbeda nyata menurut statistik uji lanjut DMRT pada taraf α = 5%. Angka

dalam kurung merupakan data asli sebelum ditransformasi √(x+0.5). KA=

kadar air benih, DB= daya berkecambah, KCT= kecepatan tumbuh, PTM=

potensi tumbuh maksimum, ID= intensitas dormansi.

Pembahasan

Kadar air merupakan faktor penting dalam perkecambahan benih kelapa

sawit. Air harus tersedia dalam jumlah yang cukup untuk pelunakan kulit,

memberi fasilitas masuknya oksigen, mengencerkan protoplasma untuk

mengaktifkan berbagai macam fungsinya, dan sebagai alat transportasi larutan

makanan dari endosperma atau kotiledon ke titik tumbuh pada poros embrio

(Kamil, 1979). Enzim-enzim hidrolase akan aktif dalam menghidrolisis cadangan

makanan dalam benih jika air dalam benih cukup tersedia. Hal ini akan memacu

perkembangan embrio dalam benih untuk menembus testa atau kulit benih dan

muncul melalui operculum (Silomba, 2006). Benih kelapa sawit merupakan benih

yang membutuhkan kadar air di atas 18% untuk dapat berkecambah (Adiguno,

1998). Pada percobaan I, perlakuan meningkatkan kadar air benih, sedangkan

pada percobaan II dan III menurunkan kadar air benih. Hal ini diduga karena pada

percobaan I menggunakan bahan perendam air yang memiliki kepekatan sama,

sedangkan pada percobaan II dan III menggunakan bahan perendam ethephon

dalam berbagai konsentrasi yang memiliki kepekatan berbeda. Semakin pekat

larutan perendam, semakin sulit imbibisi ke dalam benih. Hal ini karena kerasnya

27

27

kulit benih yang mengandung lignin menjadi penghalang masuknya air

(Nurmailah, 1999). Suhu air dan intensitas perendaman mempengaruhi

penyerapan air ke dalam benih, hal ini karena air dan oksigen yang dibutuhkan

untuk perkecambahan dapat masuk ke benih tanpa halangan sehingga benih dapat

berkecambah (Sumanto dan Sriwahyuni, 1993).

Kadar air benih berhubungan erat dengan persentase benih terserang

cendawan. Persentase benih terserang cendawan pada percobaan I cenderung

lebih tinggi dibanding percobaan II dan III. Cendawan banyak menyerang benih

yang memiliki kadar air yang lebih tinggi. Selain itu, persentase benih terserang

cendawan yang tinggi pada penelitian ini diduga karena kerapatan benih pada tray

perkecambahan kecil sehingga uap air yang dihasilkan dari proses respirasi benih

rendah. Uap air yang rendah mengakibatkan kelembaban relatif meningkat

sehingga potensi munculnya cendawan semakin besar. Kerapatan benih dalam

tray pada percobaan yaitu sebesar 0.14 butir cm-2

dengan jumlah benih yang

dikecambahkan sebanyak 300 butir dalam tray berukuran 32x65 cm, sedangkan

kerapatan benih yang digunakan dalam proses pengecambahan konvensional yaitu

sebesar 0.34 butir cm-2

. Cendawan yang menyerang pada percobaan I (Gambar 5)

tidak mampu diidentifikasi karena spora cendawan tidak keluar sehingga hasil

mikroskopis tidak menunjukkan struktur khusus yang mencirikan salah satu jenis

cendawan, sedangkan cendawan yang menyerang pada percobaan II (Gambar 6)

dan III (Gambar 7) adalah Aspergillus sp.

Gambar 5. Serangan cendawan pada percobaan I. A. Cendawan pada benih; B.

Isolat cendawan; C. Bentuk mikroskopis cendawan (Perbesaran 400x)

A B C

28

28

Gambar 6. Serangan cendawan pada percobaan II. A. Aspergillus sp. pada benih;

B. Isolat Aspergillus sp.; C. Bentuk mikroskopis Aspergillus sp.

(Perbesaran 40x)

Gambar 7. Serangan cendawan pada percobaan III. A. Aspergillus sp. pada benih;

B. Isolat Aspergillus sp.; C. Bentuk mikroskopis Aspergillus sp.

(Perbesaran 40x)

Pada percobaan I, daya berkecambah, kecepatan tumbuh, dan potensi

tumbuh maksimum yang dihasilkan masih sangat rendah. Peningkatan intensitas

perendaman meningkatkan daya berkecambah, kecepatan tumbuh, dan potensi

tumbuh maksimum. Peningkatan suhu air juga mempengaruhi perkecambahan

benih kelapa sawit, semakin tinggi suhu air maka daya berkecambah benih

semakin meningkat hingga mencapai maksimum 16.7% pada suhu 80oC dan

mengalami penurunan pada suhu 90oC. Penurunan pada suhu 90

oC dapat terjadi

karena tiap spesies memiliki respon tersendiri terhadap suhu. Agba et al. (2005)

melaporkan bahwa perendaman benih Mucuna flagellipes di dalam air suhu 60oC

A C

B

A C

B

29

29

selama 10 menit memberikan hasil yang lebih baik dibanding perendaman dalam

suhu 80oC dan 100

oC. Menurut Crocker dan Barton (1953), suhu tertentu dapat

menyebabkan terjadinya disintegrasi lapisan kulit benih sehingga membuat benih

permeabel terhadap air, namun pada suhu air yang terlalu tinggi diasumsikan

perendaman tidak hanya melarutkan lapisan kutikula di sekitar kulit benih, tetapi

bagian dalam benih seperti embrio atau kotiledon juga dapat ikut terlarut dalam

air. Hasil perkecambahan benih kelapa sawit disajikan pada Gambar 8.

Gambar 8. Kecambah kelapa sawit (Elaeis guineensis Jacq.). A. Kecambah normal;

B. Kecambah normal; C. Kecambah abnormal (plumula tidak ada); D.

Kecambah abnormal (plumula dan radikula tidak tumbuh berlawanan arah).

Penggunaan ethephon pada percobaan II dan III meningkatkan persentase

benih yang berkecambah dibanding percobaan I. Hal ini karena penambahan

ethephon meningkatkan ketersediaan etilen yang mampu merangsang

perkecambahan benih. Menurut da Silva et al. (2005), beberapa benih berkulit

keras memiliki dinding sel endosperma yang cukup tebal dan berdekatan dengan

ujung radikula. Penipisan dinding sel endosperma diperlukan agar radikula dapat

muncul keluar. Gong dan Bewley (2007) menambahkan bahwa penipisan dinding

sel endosperma dipengaruhi oleh beberapa enzim, salah satunya adalah enzim

endo-β-mannanase. Gong et al. (2005) mengemukakan bahwa peningkatan enzim

endo-β-mannanase di endosperma cukup untuk memunculkan radikula.

Berdasarkan penelitian Nascimento et al. (2000), penambahan etilen pada benih

selada mampu meningkatkan enzim endo-β-mannanase. Menurut Matilla dan

Matilla-Vazquez (2008), peningkatan enzim endo-β-mannanase mampu

menipiskan dinding sel endosperma sehingga radikula dapat muncul dan

A B C D

30

30

mematahkan dormansi benih. Gambar 9 menunjukkan pertumbuhan benih kelapa

sawit selama percobaan.

Gambar 9. Pertumbuhan kecambah kelapa sawit. A.17 hari setelah

tumbuh; B. 14 hari setelah tumbuh; C. 11 hari setelah

tumbuh

Pada percobaan II dan III, perendaman dalam ethephon menurunkan daya

berkecambah dan kecepatan tumbuh, hasil terbaik ditunjukkan pada perendaman

ethephon 0%. Potensi tumbuh maksimum memberikan hasil yang berbeda,

potensi tumbuh maksimum yang lebih tinggi didapat pada konsentrasi ethephon

0.4% dan menurun pada konsentrasi yang lebih tinggi. Hal ini terjadi karena

banyaknya kecambah yang tumbuh tidak normal pada perendaman menggunakan

ethephon konsentrasi 0.4% sampai 1.6%. Berdasarkan hasil penelitian Wan dan

Hor (1983), penggunaan ethephon 0.1% dan 0.2% tidak mampu mematahkan

dormansi benih kelapa sawit. Herrera et al. (1998) melaporkan bahwa

perendaman dalam ethephon 1.2% menghasilkan 60% benih kelapa sawit yang

berkecambah, namun benih banyak yang tumbuh tidak normal. Johnston (1977)

mengemukakan bahwa pemberian etilen dari luar dalam bentuk ethephon mampu

mengimbangi rendahnya kapasitas sintesis etilen alami pada benih dorman,

namun pada konsentrasi ethephon yang semakin tinggi, kandungan morphactin

dalam benih juga semakin besar. Morphactin merupakan senyawa yang dikenal

sebagai penghambat pertumbuhan, terutama menghambat pertumbuhan radikula.

Hal ini yang menyebabkan banyaknya kecambah abnormal (Gambar 10).

A B C

31

31

Percobaan III memberikan hasil potensi tumbuh maksimum sebesar 52.0%

lebih baik dibanding percobaan II (PTM 29.2%). Hal ini karena adanya

pemanasan kering selama 1 minggu di akhir perlakuan. Menurut Hussey (1958),

metode pemanasan kering mampu melunakkan kulit benih sehingga

mempermudah proses imbibisi air ke dalam benih serta merangsang

perkecambahan benih kelapa sawit.

Gambar 10. Pertumbuhan Kecambah Kelapa Sawit pada Perendaman dalam

Berbagai Konsentrasi Ethephon

Benih kelapa sawit memiliki kemiripan struktur dengan benih aren. Benih

aren mengalami dorman karena memiliki kulit benih yang keras dan kadar lignin

yang cukup tinggi. Benih aren juga memiliki operculum yang merupakan titik

keluarnya embrio benih. Perlakuan yang efektif untuk mematahkan dormansi

benih aren yaitu dengan deoperkulasi menggunakan amplas. Benih aren digosok

menggunakan amplas tepat pada bagian titik tumbuh sampai terlihat bagian

embrionya. Perlakuan ini menghasilkan 88.33% daya berkecambah pada benih

yang ditanam dalam pasir (Rofik dan Murniati, 2008).

E0 E1 E2 E3 E4

32

32

KESIMPULAN DAN SARAN

Kesimpulan

Perlakuan perendaman benih dalam air suhu 80oC selama 3x24 jam

meningkatkan perkecambahan benih kelapa sawit dibanding kontrol, sedangkan

perlakuan perendaman air panas yang dikombinasikan dengan perendaman

menggunakan ethephon 0.4-1.6% menurunkan daya berkecambah karena

banyaknya kecambah yang tumbuh tidak normal. Perendaman dalam ethephon

0.4% yang didahului dengan perendaman dalam air panas 80oC selama 3x24 jam

dan diakhiri dengan pemanasan kering 39-40oC selama 1 minggu mampu

menghasilkan potensi tumbuh maksimum benih sebesar 52% namun belum

efektif untuk mematahkan dormansi benih kelapa sawit.

Saran

Perlu dilakukan penelitian lanjutan untuk meningkatkan perkecambahan

benih dengan meningkatkan intensitas perendaman yang digunakan, selain itu

diperlukan pula penelitian lanjutan pada kombinasi penggunaan ethephon dan zat

pengatur tumbuh lain yang mampu merangsang pertumbuhan radikula agar

kecambah dapat tumbuh normal dan seragam.

33

33

DAFTAR PUSTAKA

Adiguno, S. 1998. Pengadaan dan Pengawasan Mutu Internal Kecambah Kelapa

Sawit dan Bibit Kelapa Sawit di PT Socfindo-Medan, Sumatera Utara.

Laporan Keterampilan Profesi. Jurusan Budi Daya Pertanian Fakultas

Pertanian Institut Pertanian Bogor. Bogor. 56 hal.

Adiguno, S. 2000. Pengaruh Skarifikasi Kimia dan Matriconditioning terhadap

Pematahan Dormansi dan Perkecambahan Benih Palem Irian

(Ptychosperma marcarthurii H. Wendl.). Skripsi. Jurusan Budi Daya

Pertanian Fakultas Pertanian Institut Pertanian Bogor. Bogor. 56 hal.

Agba, O.A, J.E. Asiegbu, and CPE Omaliko. 2005. Effect of length of soaking in

water at room temperature and hot water treatment on the germination of

Mucuna flagellipes (vogel ex hook) seeds. Agr. Sci. 4(1):15-18.

Ani, N. 2006. Pengaruh perendaman benih dalam air panas terhadap daya

berkecambah dan pertumbuhan bibit lamtoro (Leucaena leucocephala).

Jurnal Penelitian Bidang Ilmu Pertanian 4(1):24-28.

Chin, H.F and E.H. Roberts. 1980. Recalsitrants Crop Seeds. Tropical Press.

Kuala Lumpur. 151 p.

Copeland, L.O. and M.B. McDonald. 1995. Principle of Seed Science and

Technology. Chapman & Hall. London. 411 p.

Corley, RHV and PBH Tinker. 2003. The Oil Palm. Blackwell Publishing. Iowa.

483 p.

Crocker, W and L. Barton. 1953. Physiology of Seeds: An Introduction to the

Experimental Study of Seeds and Germination Problems. Chronica

Botanica Company. New York. 267p.

da Silva, EAA., P.E. Toorop, A.C. van Aelst. HWM. Hilhorst. 2005. Absisic acid

controls embryo growth potential and endosperm cap weakening during

coffee (Coffea arabica cv. Rubi) seed germination. Planta 220:251-261.

Gong, X., G.W. Bassel, A. Wang, J.S. Greenwood, J.D. Bewley. 2005. The

emergence of embryos from hard seeds is related to the structure of the

cell walls of the micropylar endosperm and not to endo-β-mannase

activity. Ann. Bot. 96:1165-1173.

Gong, X. and J.D. Bewley. 2007. endo-β-mannase genes and their encoded

proteins in tomato. Seed Sci. Res. 17:143-154.

34

34

Herrera, J, A. Alizaga, and E. Guevara. 1998. Use of chemical treatments to

induce seed germination in oil palm (Elaeis guineensis Jacq.). ASD Oil

Palm Papers 18:1-16.

Hussey, G. 1958. An analysis of the factors controlling the germination of the

seed of oil palm. Ann. Bot. 22:259-284.

Indrawati, R. 1999. Pengaruh Perlakuan Pematahan Dormansi dan Kedalaman

Tanam terhadap Viabilitas Benih Aren (Arenga pinnata (Wurmb.) Merr.).

Skripsi. Jurusan Budi Daya Pertanian Fakultas Pertanian Institut Pertanian

Bogor. Bogor. 44 hal.

Ilyas, S. 2012. Ilmu dan Teknologi Benih: Teori dan Hasil-hasil Penelitian. IPB

Press. Bogor. 138 hal.

Johnston, MEH. 1977. Germination of Seed. Centre of Agricultural Publishing

and Documentation. Wageningen. 53 p.

Kesaulija, E.M. 1979. Pengaruh Perendaman pada Berbagai Suhu Air terhadap

Nilai Perkecambahan Biji Casuarina equisetifolia Lum. Skripsi. Jurusan

Kehutanan Fakultas Peternakan dan Kehutanan Universitas Negeri

Cendrawasih. Manokwari. 55 hal.

Khaeruddin. 1994. Pembibitan Tanaman Hutan Tanaman Industri. Penebar

Swadaya. Jakarta. 56 hal.

Kurnila, R. 2009. Pengendalian Mutu Produksi Benih Kelapa Sawit (Elaeis

guineensis Jacq.) di Pusat Penelitian Kelapa Sawit Marihat, Sumatera

Utara. Skripsi. Departemen Agronomi dan Hortikultura Fakultas pertanian

Institut Pertanian Bogor. Bogor. 77 hal.

Matilla, A.J. and M.A. Matilla-Vazquez. 2008. Involvement of ethylene in seed

physiology. Plant Sci. 175:87-97.

Miranda, C.D. 2005. Respons Perkecambahan Benih Jati (Tectona grandis L.)

terhadap Perlakuan Pemanasan dan Invigorasi. Tesis. Jurusan Agronomi

Sekolah Pascasarjana Universitas Sumatera Utara. Medan. 77 hal.

Nascimento, W.M., D.J. Cantliffe, D.J. Hubber. 2005. Seed aging affects ethylene

production and endo-β-mannase activity during lettuce seed germination at

high temperature. Seed Sci. Technol. 33:11-17.

Nurmailah, E.S. 1999. Pengaruh Matriconditioning Plus Inokulasi dengan

Trichoderma sp. terhadap Perkecambahan, Kadar Lignin, dan Asam

Absisat Benih Kelapa Sawit (Elaeis guineensis Jacq.). Skripsi. Jurusan

Budi Daya Pertanian Fakultas pertanian Institut Pertanian Bogor. Bogor.

48 hal.

35

35

Pardamean, M. 2008. Panduan Lengkap Pengelolaan Kebun dan Pabrik Kelapa

Sawit. Agromedia Pustaka. Jakarta. 226 hal.

Ratnasari, J, F. Wijanarko, B. Dwi, dan Prasetyo. 2006. Cara Mudah

Mengecambahkan Biji Sengon (Paraserianthes falcataria) dengan Air

Panas. Program PKMI Direktorat Perguruan Tinggi. 5 hal.

Rofik,A dan E. Murniati. 2008. Pengaruh perlakuan deoperkulasi benih dan media

perkecambahan untuk meningkatkan viabilitas benih aren (Arenga pinnata

(Wurmb.) Merr.). Bul. Agron. 36(1):33-40.

Sadjad, S. 1993. Dari benih Kepada Benih. Grasindo. Jakarta. 144 hal.

Sastrosayono, S. 2003. Budi Daya Kelapa Sawit. Agromedia Pustaka. Jakarta. 67

hal.

Setyamidjaja, D. 2006. Kelapa Sawit. Kanisius. Yogyakarta. 126 hal.

Silomba, SDA. 2006. Pengaruh Lama Perendaman dan Pemanasan terhadap

Viabilitas Benih Kelapa Sawit (Elaeis guineensis Jacq.). Skripsi. Program

Studi Pemuliaan Tanaman dan Teknologi Benih Fakultas Pertanian Institut

Pertanian Bogor. Bogor. 41 hal.

Sumanto dan Sriwahyuni. 1993. Pengembangan Perlakuan Benih terhadap

Perkecambahan Kedawung. Media Komunikasi Penelitian dan

Pengembangan Taman Industri. 12:70-73.

Sunarko. 2007. Petunjuk Praktis Budi Daya dan Pengolahan Kelapa Sawit.

Agromedia Pustaka. Jakarta. 70 hal.

Wan, C.K. and H.L. Hor. 1983. A study on the effects of certain growth

substances on germination of oil palm (Elaeis guineensis Jacq) seeds.

Pertanika 6(2):45-48.

Williyatno. 2007. Pengaruh Tingkat Kemasakan dan Posisi Benih dalam Tandan

terhadap Viabilitas Benih Kelapa Sawit (Elaeis guineensis Jacq.). Skripsi.

Program Studi Pemuliaan Tanaman dan Teknologi Benih Fakultas

Pertanian Institut Pertanian Bogor. Bogor. 47 hal.

36

36

LAMPIRAN

37

37

Lampiran 1. Sidik ragam pengaruh suhu air dan intensitas perendaman terhadap

kadar air benih

Sumber Keragaman Derajat

Bebas

Jumlah

Kuadrat

Kuadrat

Tengah

F

Hitung Pr

Suhu Air (P) 4 0.00035891 0.00008973 1.84tn

0.1479

Intensitas

Perendaman (I) 2 0.00023513 0.00011757 2.41tn

0.1074

P*I 8 0.00065616 0.00008202 1.68tn

0.1449

Galat 30 0.00146606 0.00004887

Total Terkoreksi 44 0.00271626

Keterangan: tn = Tidak nyata

Lampiran 2. Pengaruh suhu air dan intensitas perendaman terhadap persentase

kadar air benih

Suhu Air

Intensitas Perendaman

1x24 jam 2x24 jam 3x24 jam

…………………………… % …………………………….

27oC 21.5 22.5 23.3

60oC 21.5 21.3 22.0

70oC 22.8 21.9 22.3

80oC 21.8 21.5 22.5

90oC 21.6 22.2 21.8

Keterangan : kk = 3.18%

Lampiran 3. Sidik ragam pengaruh suhu air dan intensitas perendaman terhadap

daya berkecambah

Sumber

Keragaman

Derajat

Bebas

Jumlah

Kuadrat

Kuadrat

Tengah F Hitung Pr

Suhu Air (P) 4 0.02554667 0.00638667 27.63** < 0.0001

Intensitas

Perendaman (I) 2 0.06108444 0.03054222 132.15** < 0.0001

P*I 8 0.02389333 0.00298667 12.92** < 0.0001

Galat 30 0.00693333 0.00023111

Total Terkoreksi 44 0.11745778

Keterangan : ** = Nyata pada taraf 1%

38

38

Lampiran 4. Sidik ragam pengaruh suhu air dan intensitas perendaman terhadap

kecepatan tumbuh

Sumber

Keragaman

Derajat

Bebas

Jumlah

Kuadrat

Kuadrat

Tengah F Hitung Pr

Suhu Air (P) 4 0.00003167 0.00000792 22.68** < 0.0001

Intensitas

Perendaman (I) 2 0.00008183 0.00004091 117.23** < 0.0001

P*I 8 0.00003065 0.00000383 10.98** < 0.0001

Galat 30 0.00001047 0.00000035

Total Terkoreksi 44 0.00015461

Keterangan : ** = Nyata pada taraf 1%

Lampiran 5. Sidik ragam pengaruh suhu air dan intensitas perendaman terhadap

potensi tumbuh maksimum

Sumber

Keragaman

Derajat

Bebas

Jumlah

Kuadrat

Kuadrat

Tengah F Hitung Pr

Suhu Air (P) 4 0.02743111 0.00685778 32.15** < 0.0001

Intensitas

Perendaman (I) 2 0.06263111 0.03131556 146.79** < 0.0001

P*I 8 0.02430222 0.00303778 14.24** < 0.0001

Galat 30 0.00640000 0.00021333

Total Terkoreksi 44 0.12076444

Keterangan : ** = Nyata pada taraf 1%

Lampiran 6. Sidik ragam pengaruh suhu air dan intensitas perendaman terhadap

intensitas dormansi

Sumber

Keragaman

Derajat

Bebas

Jumlah

Kuadrat

Kuadrat

Tengah F Hitung Pr

Suhu Air (P) 4 0.02743111 0.00685778 32.15** < 0.0001

Intensitas

Perendaman (I) 2 0.06263111 0.03131556 146.79** < 0.0001

P*I 8 0.02430222 0.00303778 14.24** < 0.0001

Galat 30 0.00640000 0.00021333

Total Terkoreksi 44 0.12076444

Keterangan : ** = Nyata pada taraf 1%

39

39

Lampiran 7. Sidik ragam pengaruh suhu air dan intensitas perendaman terhadap

persentase benih terserang cendawan

Sumber

Keragaman

Derajat

Bebas

Jumlah

Kuadrat

Kuadrat

Tengah F Hitung Pr

Suhu Air (P) 4 0.01952000 0.00488000 1.20tn

0.3307

Intensitas

Perendaman (I) 2 0.88741333 0.44370667 109.23** < 0.0001

P*I 8 0.02352000 0.00294000 0.72tn

0.6694

Galat 30 0.12186667 0.00406222

Total Terkoreksi 44 1.05232000

Keterangan : ** = Nyata pada taraf 1%, tn = tidak nyata

Lampiran 8. Sidik ragam pengaruh konsentrasi ethephon terhadap kadar air benih

Sumber

Keragaman

Derajat

Bebas

Jumlah

Kuadrat

Kuadrat

Tengah

F

Hitung Pr

Perlakuan 4 0.00142583 0.00035646 6.96** 0.0011

Galat 20 0.00102433 0.00005122

Total Terkoreksi 24 0.00245015

Keterangan : ** = Nyata pada taraf 1%

Lampiran 9. Sidik ragam pengaruh konsentrasi ethephon terhadap daya

berkecambah

Sumber

Keragaman

Derajat

Bebas

Jumlah

Kuadrat

Kuadrat

Tengah F Hitung Pr

Perlakuan 4 0.08089600 0.02022400 168.53** < 0.0001

Galat 20 0.00240000 0.00012000

Total Terkoreksi 24 0.08329600

Keterangan : ** = Nyata pada taraf 1%

40

40

Lampiran 10. Sidik ragam pengaruh konsentrasi ethephon terhadap kecepatan

tumbuh

Sumber

Keragaman

Derajat

Bebas

Jumlah

Kuadrat

Kuadrat

Tengah F Hitung Pr

Perlakuan 4 0.00010070 0.00002518 113.94** < 0.0001

Galat 20 0.00000442 0.00000022

Total Terkoreksi 24 0.00010512

Keterangan : ** = Nyata pada taraf 1%

Lampiran 11. Sidik ragam pengaruh konsentrasi ethephon terhadap potensi

tumbuh maksimum

Sumber

Keragaman

Derajat

Bebas

Jumlah

Kuadrat

Kuadrat

Tengah F Hitung Pr

Perlakuan 4 0.05801600 0.01450400 14.50** < 0.0001

Galat 20 0.02000000 0.00100000

Total Terkoreksi 24 0.07801600

Keterangan : ** = Nyata pada taraf 1%

Lampiran 12. Sidik ragam pengaruh konsentrasi ethephon terhadap intensitas

dormansi

Sumber

Keragaman

Derajat

Bebas

Jumlah

Kuadrat

Kuadrat

Tengah F Hitung Pr

Perlakuan 4 0.05801600 0.01450400 14.50** < 0.0001

Galat 20 0.02000000 0.00100000

Total Terkoreksi 24 0.07801600

Keterangan : ** = Nyata pada taraf 1%

Lampiran 13. Sidik ragam pengaruh konsentrasi ethephon terhadap persentase

benih terserang cendawan

Sumber

Keragaman

Derajat

Bebas

Jumlah

Kuadrat

Kuadrat

Tengah F Hitung Pr

Perlakuan 4 0.00486400 0.00121600 0.83tn

0.5214

Galat 20 0.02928000 0.00146400

Total Terkoreksi 24 0.03414400

Keterangan : tn = Tidak nyata

41

41

Lampiran 14. Sidik ragam pengaruh perlakuan pematahan dormansi terhadap

kadar air benih

Sumber

Keragaman

Derajat

Bebas

Jumlah

Kuadrat

Kuadrat

Tengah

F

Hitung Pr

Perlakuan 4 0.00083666 0.00020917 5.17** 0.005

Galat 20 0.00080892 0.00004045

Total Terkoreksi 24 0.00164558

Keterangan : ** = Nyata pada taraf 1%

Lampiran 15. Sidik ragam pengaruh perlakuan pematahan dormansi terhadap daya

berkecambah

Sumber

Keragaman

Derajat

Bebas

Jumlah

Kuadrat

Kuadrat

Tengah F Hitung Pr

Perlakuan 4 0.43417600 0.10854400 301.51** < 0.0001

Galat 20 0.00720000 0.00036000

Total Terkoreksi 24 0.44137600

Keterangan : ** = Nyata pada taraf 1%

Lampiran 16. Sidik ragam pengaruh perlakuan pematahan dormansi terhadap

kecepatan tumbuh

Sumber

Keragaman

Derajat

Bebas

Jumlah

Kuadrat

Kuadrat

Tengah F Hitung Pr

Perlakuan 4 0.00117015 0.00029254 245.51** < 0.0001

Galat 20 0.00002383 0.00000119

Total Terkoreksi 24 0.00119398

Keterangan : ** = Nyata pada taraf 1%

Lampiran 17. Sidik ragam pengaruh perlakuan pematahan dormansi terhadap

potensi tumbuh maksimum

Sumber

Keragaman

Derajat

Bebas

Jumlah

Kuadrat

Kuadrat

Tengah F Hitung Pr

Perlakuan 4 0.10281600 0.02570400 32.79** < 0.0001

Galat 20 0.01568000 0.00078400

Total Terkoreksi 24 0.11849600

Keterangan : ** = Nyata pada taraf 1%

42

42

Lampiran 18. Sidik ragam pengaruh perlakuan pematahan dormansi terhadap

intensitas dormansi

Sumber

Keragaman

Derajat

Bebas

Jumlah

Kuadrat

Kuadrat

Tengah F Hitung Pr

Perlakuan 4 0.02774400 0.00693600 2.25tn

0.0997

Galat 20 0.06160000 0.00308000

Total Terkoreksi 24 0.08934400

Keterangan : tn = tidak nyata

Lampiran 19. Sidik ragam pengaruh perlakuan pematahan dormansi terhadap

persentase benih terserang cendawan

Sumber

Keragaman

Derajat

Bebas

Jumlah

Kuadrat

Kuadrat

Tengah F Hitung Pr

Perlakuan 4 0.00297600 0.00074400 2.11tn

0.1169

Galat 20 0.00704000 0.00035200

Total Terkoreksi 24 0.01001600

Keterangan : tn = Tidak nyata

43

43

Lampiran 20. Identitas benih yang digunakan pada penelitian

Percobaan 1

Nomor urut : 18

Nomor penyerbukan : 2598/11

Tanggal penyerbukan : 11 Agustus 2011

Kelompok : 09-19

Tetua betina : DD5 2-11 PR 1032 D 24001

Tetua jantan : 87-5-41 BO 316 P

Tanggal panen : 9 Januari 2012

Percobaan 2

Nomor urut : 16

Nomor penyerbukan : 2812/11

Tanggal penyerbukan : 15 September 2011

Kelompok : 09-20

Tetua betina : DD7 2-11 PR 1063 D 24001

Tetua jantan : 87-8-41 BO 318 P

Tanggal panen : 13 Februari 2012

Percobaan 3

Nomor urut : 32

Nomor penyerbukan : 3113/11

Tanggal penyerbukan : 20 Oktober 2011

Kelompok : 09-21

Tetua betina : DD9 2-11 PR 1082 D 24001

Tetua jantan : 87-9-41 BO 319 P

Tanggal panen : 18 Maret 2012