Pemeriksaan Laboratorium Parasit

PEMERIKSAAN LABORATORIUM

DALAM PENEGAKAN DIAGNOSA

PENYAKIT PARASITIK

DR. BETTA KURNIAWAN, S.KED, M.KES

TEKNIK PEMERIKSAAN

PARASIT PROTOZOA

MATERI MATERI

� METODA PEMERIKSAAN PROTOZOA USUS- Pemeriksaan secara natif- Modifikasi Mertiolat-Iod-Formalin (MIF)

� METODA PEMERIKSAAN PROTOZOA DARAH- Sediaan darah apus dengan pewarnaan Giemsa- Tetes darah tebal dengan pewarnaan Giemsa

� PEMERIKSAAN Trichomonas vaginalis� CARA PEMBUATAN PREPARAT PERMANEN (FIXED

PREPARAT)- Parasit darah- Trichomonas vaginalis- Ameba dengan pewarnaan menurut metoda Heidenhein

� PEMBUATAN LARUTAN-LARUTAN

� METODA PEMERIKSAAN PROTOZOA USUS- Pemeriksaan secara natif- Modifikasi Mertiolat-Iod-Formalin (MIF)

� METODA PEMERIKSAAN PROTOZOA DARAH- Sediaan darah apus dengan pewarnaan Giemsa- Tetes darah tebal dengan pewarnaan Giemsa

� PEMERIKSAAN Trichomonas vaginalis� CARA PEMBUATAN PREPARAT PERMANEN (FIXED

PREPARAT)- Parasit darah- Trichomonas vaginalis- Ameba dengan pewarnaan menurut metoda Heidenhein

� PEMBUATAN LARUTAN-LARUTAN

BAHAN DAN C

ARA MELAKSANAKAN

PEMERIKSAAN

BAHAN DAN C

ARA MELAKSANAKAN

PEMERIKSAAN

(1). Pemeriksaan secara natif(1). Pemeriksaan secara natif

Kegunaan :

Melakukan pemeriksaan secara cepatKegunaan :

Melakukan pemeriksaan secara cepat

METODA PEMERIKSAAN PROTOZOA USUSMETODA PEMERIKSAAN PROTOZOA USUS

Selesai PenayanganKlik Tombol “Esc”

- Bentuk trofozoit ameba, menggunakan larutan eosin 2%- Bentuk trofozoit ameba, menggunakan larutan eosin 2%

- Bentuk kista dan inti ameba dengan larutan lugol

(2% larutan Iodium + 3% larutan Iodkali)- Bentuk kista dan inti ameba dengan larutan lugol

(2% larutan Iodium + 3% larutan Iodkali)

• Dengan sebuah lidi, ambil tinja sebesar biji kacang polong, taruh di atas gelas obyek

• Bubuhi larutan NaCl physiologis/lugol/ larutan eosin 2% di atasnya

Cara membuat preparat :

• Dengan lidi tadi, ratakan dahulu sebelum diberi gelas penutup

• Periksa di bawah mikroskop

METODA PEMERIKSAAN PROTOZOA USUSMETODA PEMERIKSAAN PROTOZOA USUS

(1). Pemeriksaan secara natif

Zat yang dipergunakan :Larutan dasar (1) :– 250 ml aquadest

– 200 ml tinctur of merthiolate– 25 ml formaldehyde

Larutan dasar (2) : – lugol 5 % (tidak boleh disimpan > 3 minggu)

Kedua larutan disimpan dalam botol berwarna coklat

(2). Modifikasi Metoda Mertiolat-Iod-Formalin (MIF)

Kegunaan :Baik untuk diagnosa Ameba dan Giardia dalam tinja

METODA PEMERIKSAAN PROTOZOA USUS


Cara membuat preparat MIF

5 ml larutan dasar (1) + 0,5 ml larutan dasar (2)

5 ml LarutanDasar (1)

0,5 ml Larutan Dasar (2)

5 gr tinja

Masukkan 0,5 gr tinja, diaduk sampai homogen

larutan tinja

disaring

Tabungsetrifuge

Saring dengan dua lapis kain gas ke dalam tabung sentrifuge.

+ 7 ml eter40 C

Tambah 7 ml ether (temperatur 4o C)

ditutup+ kocok

• Tabung tutup rapat dengan sumbat karet, kocok keras-keras, campuran benar-benar homogen.

tutupdibuka

• Sumbat dibuka dan dibiarkan selama 2 menit.

Disetrifusi1menit

• Disentrifusi 1 menit (1.500 - 3.000) putaran/menit• Cairan dibuang, endapan diambil dengan pipet,

taruh di atas gelas obyek, tutup gelas penutup

• Bersifat asam (acid)

• Bau busuk (foul smelling)

• Lendir lebih sedikit daripada disentri basiler dan tidak begitu lengket

• Darah atau tanpa darah (darah mungkin didapat bersamaan dengan tinja yang padat)

• Pada beberapa kasus terdapat pengeluaran mukosa usus

• Bersifat asam (acid)

• Bau busuk (foul smelling)

• Lendir lebih sedikit daripada disentri basiler dan tidak begitu lengket

• Darah atau tanpa darah (darah mungkin didapat bersamaan dengan tinja yang padat)

• Pada beberapa kasus terdapat pengeluaran mukosa usus

CIRI TINJA MENGANDUNG AMEBA MAKROSKOPIS

Sumber :A Colour Atlas of Clinical Parasitology. Tomio Yamaguchi. Alih Bahasa : Lesmana Padmasutra, dkk.

Tinja penderita disentri ameba, banyak ditemukan trofozoit

Sumber : Color Atlas of Medicine and Parasitology. 1977. W. Peters & H.M. Gillers

Tinja penderita disentri ameba, longgar, berisi lendir dan darah bercampur tinja,harus dibedakan dengan tinja disentri basiler

CIRI TINJA MENGANDUNG AMEBA MIKROSKOPIS

Kristal Charcot-Leyden(Kristal hasil penguraian eosinofil)

Kristal Charcot-LeydenSumber : Atlas of Medical Parasitology. Prayong Radomyos, dkk.Sumber : Atlas Parasitologi Kedokteran, Zaman P.

Alih Bahasa : Anwar C.; Mursal Y.

• Bakteri cukup banyak

• Entamoeba histolytica (+) mengandung eritrosit

• Eritrosit terdapat dalam bentuk reuleaux

• Kristal Charcot Leyden (tidak spesifik untuk disentri ameba karena terlihat pada parasit lain misalnya Strongyloides stercoralis) - hasil penguraian eosinofil

• Nanah lebih sedikit daripada disentri basiler, tanpa adanya infeksi sekunder

• Makrofag dalam disentri basiler menyerupai Entamoeba histolytica tetapi inti dan pseudopodi berbeda

• Kista dalam karier dan kasus ringan

• Bakteri cukup banyak

• Entamoeba histolytica (+) mengandung eritrosit

• Eritrosit terdapat dalam bentuk reuleaux

• Kristal Charcot Leyden (tidak spesifik untuk disentri ameba karena terlihat pada parasit lain misalnya Strongyloides stercoralis) - hasil penguraian eosinofil

• Nanah lebih sedikit daripada disentri basiler, tanpa adanya infeksi sekunder

• Makrofag dalam disentri basiler menyerupai Entamoeba histolytica tetapi inti dan pseudopodi berbeda

• Kista dalam karier dan kasus ringan

Preparat apus darah pewarnaan GIEMSA

Kegunaan :Untuk memeriksa protozoa darah, misal : Plasmodium,

Trypanosoma, Babesia dan lain-lain

Dilakukan dua tahap :(1). Membuat apus darah

(2). Melakukan pewarnaan

METODA PEMERIKSAAN PROTOZOA DARAH

• Permukaan kulit hapus dengan kapas alkohol 70%• Tusuk dengan vaccinostyle steril• Ambillah tetes darah kedua pada sebuah gelas obyek

• Bagian tepi gelas obyek lain tempelkan pada tetes darah• Diamkan, tetes darah melebar sepanjang tepi gelas obyek• Geserkan dengan cepat preparat gelas obyek (sudut � 45o)

sepanjang permukaan gelas obyek pertama, terbentuk lapisan darah tipis. Makin kecil sudutnya, darah apus makin tipis.

• Preparat diberdirikan, biarkan kering, jaga jangan kena debu atau dimakan insek dan lain-lain.



(1). Pembuatan apus darah




Fiksir metil alkohol (3-5)

menit

Warnai dengan standar Giemsa 45 menit

Cuci air ledengperlahan

KERINGKAN


Preparat tetes darah tebal denganpewarnaan GIEMSA

Kegunaan :Pemeriksaan protozoa darah secara cepat

(dapat dilakukan pada pemeriksaan masal)

Dilakukan dua tahap :(1). Membuat tetes tebal



(1). Pembuatan tetes tebal


Pengambilan darah sama dengan pembuatan apus darah (1-2) tetes darah teteskan pada sebuah gelas obyek Tetes darah lebarkan, membentuk lingkaran dengan

diameter 1 - 1,5 cm Biarkan kering, jaga jangan kena debu atau insek



KERINGKAN

Warnai dengan standar Giemsa 45 menit

Cuci air ledengperlahan

TIDAK DIFIKSASI !!!


TIDAK DIFIKSASI !!!TIDAK DIFIKSASI !!!TIDAK DIFIKSASI !!!TIDAK DIFIKSASI !!!TIDAK DIFIKSASI !!!TIDAK DIFIKSASI !!!TIDAK DIFIKSASI !!!TIDAK DIFIKSASI !!!

� APUS DARAH– Plasmodium sp. morfologi dan stadium jelas– Eritrosit utuh (difiksasi)– Pembuatan preparat tidak dapat cepat– Untuk infeksi sedang dan berat

� TETES DARAH TEBAL– Plasmodium sp. morfologi tidak jelas– Eritrosit lisis (tidak difiksasi), terlihat stroma-stroma dari eri

yang lisis– Pembuatan preparat cepat (dapat untuk pemeriksaan masal)– Dapat dipakai pada infeksi ringan

KELEBIHAN DAN KELEMAHAN APUS DARAHDAN TETES DARAH TEBAL


PEMERIKSAAN Trichomonas vaginalisPEMERIKSAAN Trichomonas vaginalis

Ada 2 cara :(1). Pemeriksaan langsung

(2). Kultur

Ada 2 cara :(1). Pemeriksaan langsung

(2). Kultur

Pemeriksaan langsung ada 2 cara :(1). Sediaan basah

(2). Diberi pewarnaan

Bahan Pemeriksaan :(1). Wanita : sekret vagina, sekret urethra

(menggunakan vaginal spikulum)(2). Pria : sekret urethra, sekret prostat, urin

disentrifusi

PEMERIKSAAN LANGSUNG

Alat yang dipergunakan :- Tabung reaksi berisi glukosa 5% dalam

garam fisiologis- Lidi kapas

Lidi kapas

Glukosa 5%

PEMERIKSAAN Trichomonas vaginalisPEMERIKSAAN Trichomonas vaginalis

PEMBUATAN PREPARAT PERMANENPEMBUATAN PREPARAT PERMANEN

Dibicarakan :(1). Preparat permanen pada parasit darah

(2). Preparat permanen pada T. vaginalis

(3). Preparat permanen pada ameba

(metoda Heidenhein)

(1). Preparat permanen pada parasit darah

Merupakan kelanjutan dari pembuatan preparat

protozoa darah, dilanjutkan sebagai berikut :

Sesudah diwarnai, lanjutkan dengan

memberi canada balsam

akhirnya ditutup dengan kaca penutup


KulturT. vaginalis

BIARKAN 30 MENIT

6 tetesOSO4 2%

5 ml medium

(2). Preparat permanen pada T. vaginalis

1-2 tetesserum drh

Tabungsentrifuge

SENTRIFUSI 3000 RPM(5-10 MENIT)

CUCI DENGANLAR. RINGER

(2-3) x

1 tetessuspensi

Gelasobyek

Buat sediaanapus

FIKSASI DENGAN METANOL(5-10 menit)

WARNAI GIEMSA(10-20) menit


Sediaan apus di atas

gelas obyek

(3). Preparat permanen pada amoeba(metoda Heidenhein)

Fiksasi sublimat

alkohol 20 menit

Dalam iodin

alkohol 30 menit

Alkohol 70%

1 menit

Cuci

dengan air

“Mordanting”

4 % amonium ferric alum

Cuci

dengan air

Warnai

Heidenhein’s

Haematoxylin

Cuci

2% ammonium

ferric alum

1-4 menit

Cuci

dengan air

30 menit

Cuci

melalui seri

alkohol, xylol

“Mounting”

canada balsam

Cuci

dengan air


Dibicarakan :(1). Larutan Buffer

(2). Field’s Stain

(3). Giemsa’s Stain

PEMBUATAN LARUTAN-LARUTANPEMBUATAN LARUTAN-LARUTAN

(1). Larutan Buffer

Terdiri atas :

0, 49 gr. KH2PO4

1,14 gr Na2HPO4

1.000 ml. aquadestSelesai PenayanganKlik Tombol “Esc”

Larutan A :0,80 gr. Methylene Blue0,50 gr. Azure I5,00 gr. Na2HPO4 anhydrous

6,25 gr. KH2PO4 anhydrous

5.000 ml aquadest

Terdiri atas 2 larutan :a. Larutan Ab. Larutan B

(2). Field’s Stain

Larutan B :1,00 gr. Eosin0,50 gr. Na2HPO4 anhydrous

6,25 gr. KH2PO4

5,00 ml aquadest



0,6 gr Giemsa’s stain certified powder50,0 ml. Methyl alkohol absolute, acetone free50,0 ml. Glycerine, cp

(3). Giemsa’s Stain



TEKNIK PEMERIKSAAN

PARASIT CACING

TEKNIK PEMERIKSAAN LABORATORIUM PARASIT CACING

TEKNIK PEMERIKSAAN LABORATORIUM

DIPILIH BERDASARKAN

HIDUP DI DALAM

USUS

HIDUP DI DALAM

DARAH

BAHAN PEMERIKSAAN :

TINJA

BAHAN PEMERIKSAAN :

DARAH

MAKROSKOPIK

MIKROSKOPIK

TEKNIK PEMERIKSAAN PARASIT CACING PADA TINJA


KUALITATIF

KUANTITATIF

Bau - amis A. lumbricoides

Ada/tidak nematoda keluar spontan

MIKROSKOPIK

KUALITATIF

METODA STOLL

METODA KATO - KATZ

KUANTITATIF



METODA LANGSUNG (DIRECT SLIDE)

METODA APUNG (FLOTATION METHOD)

MODIFIKASI MERTIOLAT IOD FORMALIN (MIF)

METODA SELOTIP (CELLOTAPE METHOD)

METODA KONSENTRASI

METODA KATO

Cepat Berguna untuk infeksi

berat Larutan yang

dipergunakan :- NaCl Fisiologis (0,9%), atau- Eosin 2%


MIKROSKOPIKKUALITATIF




Teteskan 1-2 tetes NaCl 0,9% atau Eosin 2% pada objek glass

Dengan lidi, ambil tinja sedikit, taruh pada larutan di atasDengan lidi diratakan/dilarutkanTutup dengan cover glassPeriksa di bawah mikroskop 40 x

atau 100 x1-2 tetes

NaCl 0,9%atau

eosin 2%

Taruh tinja pada larutandi atas gelas objek

Ratakan denganlidi

Tutup dengan cover glassSelesai PenayanganKlik Tombol “Esc”


METODA APUNG (FLOATATION METHOD)

Berdasarkan BJ telur < BJ larutan

Berguna untuk infeksi ringan

Larutan yang dipergunakan :- NaCl jenuh, atau- Gula jenuh

TERDAPAT 2 CARADENGAN DISENTRIFUSI

TANPA DISENTRIFUSI



TANPA DISENTRIFUSI

NaCl jenuh/gula jenuhTinja

Gelaspengaduk

Ose

20 menit

10 gr tinja campur 200 ml NaCl jenuh, aduk sampai larutBiarkan 20 menit, larutan

permukaan ambil dengan oseTaruh larutan dari ose ke atas

permukaan objek glassTutup dengan cover glassLihat di bawah mikroskop

Ambil dengan osetaruh di atas objek glas

10 gr. tinja + 200 cc NaCl jenuh

Tutup cover glass



DENGAN DISENTRIFUSI

NaCl jenuh/gula jenuhTinja

Gelaspengaduk

Saring

Sentrifusi 100 x/mnt5 menit

10 gr tinja campur 200 ml NaCl jenuh, aduk sampai larutSaring dengan saringan tehTuangkan ke dalam tabung

sentrifusiSentrifusi 100 x per-menit selama 5

menitDari permukaan ambil larutan

dengan ose10 gr. tinja

+ 200 cc NaCl jenuh



DENGAN DISENTRIFUSI

Tutup dengan cover glassLihat di bawah mikroskopTaruh larutan di atas kaca objek

Taruh larutan di ataskaca objek Tutup cover glass



Untuk mengetahui adanya telur cacing, Ameba dan Giardia lamblia

Larutan Dasar 1 :- 250 ml aquadest- 200 ml thimerosal (1:1.000)- 25 ml formalin- 5 ml glycerin

Larutan Dasar 2 :- Larutan lugol 5% yang segar

MODIFIKASI MERTIOLAT IODIN FORMALIN (MODIFIKASI MIF)

Baik untuk pewarnaan sekaligus pengawetan kista protozoa usus dan telur cacing

di (+) 7 ml. ether(40 C)



Gelaspengaduk

5 ml lar. Dasar 10,5 ml lar. Dasar 2

0,5 gr tinja

Saring KOCOKsampai campuran

homogen

Sentrifusi 1.000-3.000 x/mnt1 menit

5 ml lar. dasar 1 (+) 0,5 ml lar. dasar 2 (+) 0,5 gr tinja, aduk homogen

Saring dengan 2 lapis kain gas ke dalam tabung sentrifusiTambah 7 ml ether (40 C)Tabung tutup sumbat karet, kocok keras-

keras sampai campuran homogenSumbat dibuka, biarkan 2 menit, sentrifusi 1 menit (1.000-3.000 putaran per-menit)


Tutup dengan cover glassLihat di bawah mikroskopTeteskan endapan ke ataskaca objek


Supernatan dibuangambil endapan dengan pipet

Supernatan buang,ambi endapandengan pipet

Teteskan di atasgelas objek

Tutup cover glass



Untuk pemeriksaan telur Enterobius vermicularis

Anak 1-10 tahun Dilakukan pagi sebelum cebok/mandi Plester plastik bening (2 x 1,5 cm) ditempelkan

ke kulit sekitar liang dubur Plester tekan-tekan, kemudian angkat perlahan-

lahan Tempelkan pada gelas objek, lihat mikroskop

Telur menempel pada daerah perianal sehingga

jarang di dapatkan bersama tinja (5 %), untuk

menemukan parasit ini diperlukan cara “Scotch

Adhesive Tape Swab” dari Graham atau metoda

selotip

Kriteria beratnya infeksi berdasarkan jumlah telur yang ditemukan per-lapang pandangan :- (1-5) telur +- (6-10) telur ++- (11-20) telur +++- >21 telur ++++


METODA KONSENTRASI

Praktis, sederhana, untuk pemeriksaan telur cacing pada tinja dengan cara sebagai berikut :- 1 gr tinja masukkan ke dalam tabung reaksi, beri

aquades, aduk sampai homogen, masukkan ke dalam tabung sentrifusi

- Sentrifusi dengan kecepatan 3.000 rpm selama 1 mnt- Supernatan dibuang, sedimen ambil dengan pipet- Teteskan pada gelas objek, tutup dengan cover glass

Larutan tinjadimasukkan ke dalam tabung sentrifusi


Sentrifusi 3.000 x/mnt,1 menit

1 gr tinja, tambah aquades, aduk homogen

Larutan tinja masukkan ke dalam tabung sentrifusi

Supernatan dibuang, endapan diambil dengan pipet

Sentrifusi 1 menit (3.000 putaran per-menit)

METODA KONSENTRASI

Aduk sampai homogen

1 gr tinja

Batangpengaduk

Aquades


Tutup dengan cover glassLihat di bawah mikroskopTeteskan endapan ke ataskaca objek

METODA KONSENTRASI


TEKNIK SEDIAAN TEBAL (METODA KATO)

Praktis, sederhana dan murah Dapat dipakai pada pemeriksaan masal Tinja yang dipergunakan banyak sehingga lebih

banyak telur yang diperiksa Morfologi telur cukup baik (jelas)

Bahan : Larutan

- 100 ml aquades/fenol 6%- 100 ml glycerin (supaya kotoran tinja jadi jernih)- 1 ml larutan hijau malachit (supaya mata tidak silau)

Selofan, 2,5 x 3 cm, rendam dalam larutan > 24 jam

Teknik :- Ambil 20-50 mg tinja (sebesar kacang merah)- Letakkan di atas kaca objek, ratakan- Tutup dengan selopan, tekan sehingga tinja rata

dan menyebar di bawah selopan- Keringkan cairan berlebihan dengan kertas saring- Biarkan 20-30 menit- Periksa di bawah mikroskop


TEKNIK SEDIAAN TEBAL (METODA KATO)

100 bag. Aquades/fenol 6%100 bag. Glycerin1 bag. Lar. Hijau malachit

Selofan dipotong2,5 x 3 cm

Dimasukkan(direndam)

Rendam

> 24 jam

20-50 grtinja

Selofan yangsudah direndam

Tinja

Larutan yang dipergunakan :- NaOH 0,1 N (pelarut tinja) atau- KOH 10%

Baik untuk infeksi berat dan sedang

Kurang baik untuk infeksi ringan

METODA STOLL

MIKROSKOPIKKUANTITATIF


56 m l60 m l

56 m l60 m l

Butir Gelas

KOCOK

Diamkan 1 malam

ATAU cukup 3-4 jam tapi dikocok lebih lama

56 m l60 m l

Tinja

Larutan NaOH 0,1N

METODA STOLL

56 ml 60 ml


Kocok dan ambil 0,15 ml

56 m l60 m l

METODA STOLL


PENGHITUNGAN NaOH = 56 ml, tinja 4 ml ~ 4gr 4 gr tinja dalam 60 ml Atau 1 gr tinja dalam 15 ml Volume larutan tinja 0,15 ml

ditemukan y telur Maka volume 15 ml ditemukan y

x 100 (~ 1 gr tinja)

RUMUS :

Jumlah telur dalam 1 gram tinja = Jumlah telur yang terlihat (miroskopik) x 100

METODA STOLL


TINGKAT INFEKSI MENURUT JUMLAH TELUR DALAM TIAP GRAM TINJA DAN JUMLAH CACING

RINGAN SEDANG BERAT

Kurang 7.000 7.000-35.000 lebih 35.000

A. lumbricoides

5/kurang 6-25 lebih 25

RINGAN SEDANG BERAT

A. duodenale

Kurang 3.000 3.000-10.000 lebih 10.000


RINGAN SEDANG BERAT

N. americanus

Kurang 2.000 2.000-7.000 lebih 7.000


JUMLAH CACINGJUMLAH TELUR PER-GRAM TINJATINGKAT INFEKSIINFEKSI OLEH

SUMBER : PARASITIC DISEASES PROGRAME. WHO. GENEVA, 1981

METODA STOLL

METODA KATO-KATZ


ALAT :- Kaca objek- Selotip, tebal 40 m, ukuran 3 x 3 cm- Karton tebal, diberi lubang dengan

volume tertentu untuk mencetak tinja seberat 30 mg

- Lidi, kertas minyak dan kawat kasa

Larutan Malachite-Green :- 100 ml aquades- 100 ml glycerin (supaya kotoran tinja jadi

jernih)- 1 ml larutan hijau malachit (supaya mata

tidak silau) Selotip rendam dalam larutan >

24 jam

METODA KATO-KATZ


TATA KERJA :- Menyaring tinja. Letakkan 5 gr tinja di atas

kertas minyak, kawat kasa diletakkan di atasnya lalu tekan

- Mencetak tinja. Di atas kaca objek letakkan karton berlubang, tinja yang telah disaring dicetak sebesar lubang karton (berat tinja diketahui : 30 mg)

- Membuat preparat. Karton angkat, tinja tutup dengan selotip, sediaan tekan - ratakan

- Biarkan pada suhu kamar 30 menit- Lihat di bawah mikroskop

METODA KATO-KATZ


MENYARING TINJA

Kertasminyak

Kawat kasa

TEKAN

Tinja (5 gr)

TEKAN

Kawat kasa

Tinja (5 gr)

DARISAMPING

Kaca objek

Kartonberlubang

Tinja yangtelah disaring

- Letakkan 5 gr tinja di atas kertas minyak, kawat kasa diletakkan di atasnya lalu tekan

Dicetak

- Di atas kaca objek di letakkan karton berlubang, tinja yang sudah disaring di cetak pada lubang karton

- Karton di angkat- Tinja ditutup

selotip yang telah direndam

- Tekan, ratakan- Biarkan 30 mnt- Lihat di

mikroskop

Tinja yangdicetak

Gelasobjek

Selotip yangtelah direndam

LIHAT DI BAWAHMIKROSKOP

MENCETAK TINJA MEMBUAT PREPARAT

METODA KATO-KATZ


SUZUKI dkk. :C = jumlah telur yang didapat dalam preparatU = berat tinja yang dipakai (mg)

JTPG = Jumlah Telur Per Gram tinja

JTPG = 1.000 x X = X x 23Y

KOBAYASHI (1980) : (1-9) : + (10-99) : ++ (100-999) : +++ >1.000 : ++++

WHO (1981) PRODUKSI TELUR PER-HARI :

A. lumbricoides : 200.000 A. doudenale : 10.000-25.000 N. americanus : 5.000-10.000

BERAT TINJA PER-HARI Anak : 70 gram Dewasa : 2 x anak

METODA SEDIMENTASI FORMOL ETHER(RITCHIE)


(0,5 ml tinja) + (1-2 ml aquades), kocok, + (10-12 ml aquades), kocok

Saring Sentrifusi 1.000 rpm, 1 menit + (1 ml formalin 10%) + (formalin 10% sampai

volume 8 ml), diamkan 10 menit + (3ml ether), kocok 15-20 detik Sentrifusi 2.000 rpm, 1-2 menit Supernatan dibuang, sedimen pindahkan ke

kaca objek, lihat di bawah mikroskop


(0,5 ml tinja) + (1-2 ml aquades), kocok, + (10-12 ml aquades), kocok

KOCOK

0,5 ml. tinja

1-2 ml. aquades

KOCOK

10-12 ml. aquades

SARING

SENTRIFUSI1.000 rpm, 1 menit

Saring Sentrifusi 1.000 rpm, 1 menit



+ (1 ml formalin 10%) + (formalin 10% sampai volume 8 ml), diamkan 10 menit

DIAMKAN(10 menit)

3 ml. ether

1 ml. Formalin 10%+ Formalin 10% sampai

volume 8 ml

KOCOK(15-20 detik)

SENTRIFUSI2.000 rpm, 1-2 menit

+ (3ml ether), kocok 15-20 detik

Sentrifusi 2.000 rpm, 1-2 menit

Supernatan dibuang, sedimen pindahkan ke kaca objek, lihat di bawah mikroskop


METODA PEMBIAKAN LARVAMENURUT BAERMANN

TEKNIK PEMERIKSAANSTADIUM LARVA

KEGUNAAN Untuk memeriksa larva cacing

tambang dalam tanah Untuk pembiakan larva dari tinja

METODA PEMBIAKAN LARVAMODIFIKASI HARADA - MORI

TEKNIK PEMERIKSAANSTADIUM LARVA

Untuk menentukan dan mengidentifikasi larva infektif cacing tambang : Strongyloides stercoralis Trichostrongylus sp

Telur cacing berkembang menjadi larva infektif pada kertas saring basah


PADA TINJA PENDERITA YANG SUDAH DIOBATI DILAKUKAN :(1) Pemeriksaan Kualitatif

(2) Pemeriksaan Kuantitatif

TEKNIK PEMERIKSAANCACING DEWASA

Semua tinja yang ditampung dalam pispot dimasukkan ke dalam gelas piala, larutkan dengan air, kocok

Saring dengan saringan kawat halus, kotoran dalam sarimgan siram air ledeng sehingga cacing tertinggal dalam saringan

Tampung dalam petri-dish besar, campur air Periksa dengan loupe di atas meja hitam, hitung Identifikasi di bawah mikroskop


DENGAN MENGGUNAKAN LARUTAN FORMALIN 3,5 % ATAU 4%

CARA PENGAWETAN DAN PENYIMPANANTELUR DAN CACING DEWASA DALAM TINJA

Cara pembuatan larutan formalin 3,5% atau 4% :- 1 bagian larutan formalin 35% atau 40% dicampur

dengan 9 bagian air ledeng, masukkan ke dalam botol tertutup

Tinja dimasukkan ke dalam botol di atas dan tutup rapat

Untuk organ yang terserang penyakit parasit, sebelum dimasukkan ke dalam botol, cuci dulu sampai bersih


TERMASUK KE DALAM KELOMPOK FILARIA

CACING YANG HIDUP DI DALAM DARAH(BAHAN PEMERIKSAAN DARAH)

CARA LANGSUNG Darah diambil dari jari tangan Sediaan darah segar

- Kualitatif- Menentukan adanya mikrofilaria pada darah tepi- Tidak untuk identifikasi spesies

Sediaan darah tebal- Kuantitatif- Diukur darah yang keluar dari jari dengan

mikropipet (160 m), buat tetes tebal

CARA KONSENTRASI Diambil darah vena Lebih pekak daripada cara langsung

Alhmadulillah...

Pemeriksaan Laboratorium Parasit

Documents

Transcript of Pemeriksaan Laboratorium Parasit