Laporan Siap Print

download Laporan Siap Print

of 28

  • date post

    10-Jul-2015
  • Category

    Documents

  • view

    865
  • download

    3

Embed Size (px)

Transcript of Laporan Siap Print

BAB I PENDAHULUAN Pertumbuhan (growth) adalah peningkatan jumlah dan ukuran sel di seluruh bagian tubuh selama sel-sel tersebut membelah diri dan menyintesis protein-protein baru; menghasilkan penambahan jumlah dan berat secara keseluruhan atau sebagian. Perkembangan(development) adalah perubahan secara berangsur-angsur dan bertambah sempurnanya fungsi alat tumbuh, meningkat dan meluasnya kapasitas seseorang melalui pertumbuhan, kematangan dan kedewasaan (maturasi), dan pembelajaran(learning). Dalam proses tumbuh kembang anak terdapat peristiwa percepatan dan perlambatan. Peristiwa tersebut merupakan kejadian yang ada dalam setiap organ tubuh. Pada proses pertumbuhan terjadi perubahan dalam besar, jumlah, dan ukuran di tingkat sel maupun organ, sedangkan pada proses perkembangan terjadi perubahan dalam bentuk dan fungsi kematangan organ mulai dari aspek fisik, intelektual dan emosional. Perkembangan secara fisik yang terjadi adalah bertambah sempurnanya fungsi organ mulai dari tingkat sel hingga organ tubuh. Perkembangan intelektual dapat ditunjukkan dari kemampuan secara simbol maupun abstrak seperti berbicara, bermain, berhitung, membaca dan lain-lain, sedangkan perkembangan emosional dapat dilihat dari perilaku sosial di lingkungan anak. Seperti dijelaskan diatas, setiap individu mengalami proses tumbuh kembang yang berbeda-beda, bias cepat maupun lambat, tergantung dari individu atau lingkungan. Proses percepatan dan perlambatan tersebut dapat dipengaruhi oleh beberapa faktor, yaitu faktor herediter, lingkungan, budaya lingkungan, sosial ekonomi, iklim/cuaca, nutrisi dan lain-lain. Lingkungan merupakan faktor yang memegang peranan penting dalam menentukan tercapainya atau tidak potensi yang dimilikinya. Lingkungan yang cukup baik akan memungkinkan dicapainya potensi genetik/bawaan/bakat anak. Lingkungan yang kurang baik akan menghambat pertumbuhan, sehingga potensi

bawaan/bakat tidak dapat dicapai. Lingkungan meliputi aspek fisik, biologis, dan sosial yang ada lazimnya disebut lingkungan fisikobiopsikososial. Salah satu faktor fisikobiopsikososial adalah infeksi, baik infeksi akibat bakteri, fungi maupun parasit. Seperti yang akan dibahas berikut ini merupakan prosedur pemeriksaan infeksi parasit pada feses manusia, menyangkut infeksi akibat Ascaris lumbricoides, Necator americanus, Ancylostoma duodenale, dan Giardia lambdia. Penyakit infeksi yang disebabkan oleh cacing masih tinggi prevelansinya terutama pada penduduk di daerah tropik seperti di Indonesia, dan merupakan masalah yang cukup besar bagi bidang kesehatan masyarakat. Hal ini dikarenakan Indonesia berada dalam kondisi geografis dengan temperatur dan kelembaban yang sesuai, sehingga kehidupan cacing ditunjang oleh proses daur hidup dan cara penularannya. Identifikasi parasit yang tepat memerlukan pengalaman dalam membedakan sifat sebagai spesies, parasit, kista, telur, larva, dan juga memerlukan pengetahuan tentang berbagai bentuk pseudoparasit dan artefak yang mungkin dikira suatu parasit. Identifikasi parasit juga bergantung pada persiapan bahan yang baik untuk pemeriksaan baik dalam keadaan hidup maupun sediaan yang telah dipulas. Bahan yang akan di periksa tergantung dari jenis parasitnya, untuk cacing atau protozoa usus maka bahan yang akan di periksa adalah tinja atau feses, sedangkan parasit darah dan jaringan dengan cara biopsi, kerokan kulit maupun imunologis (Kadarsan, 1983). Pemeriksaan feses di maksudkan untuk mengetahui ada tidaknya telur cacing ataupun larva yang infektif. Pemeriksaan feses ini juga dimaksudkan untuk mendiagnosa tingkat infeksi cacing parasit usus pada orang yang diperiksa fesesnya (Gandahusada.dkk, 2000). Pemeriksaan feses dapat dilakukan dengan metode kualitatif dan kuantitatif. Secara kualitatif dilakukan dengan metode natif, metode apung, metode harada mori, dan Metode kato. Metode ini digunakan untuk mengetahui jenis parasit usus, sedangkan secara kuantitatif dilakukan dengan metode kato untuk menentukan jumlah cacing yang ada didalam usus.

2

Prinsip dasar untuk diagnosis infeksi parasit adalah riwayat yang cermat dari pasien. Teknik diagnostik merupakan salah satu aspek yang penting untuk mengetahui adanya infeksi penyakit cacing, yang dapat ditegakkan dengan cara melacak dan mengenal stadium parasit yang ditemukan. Sebagian besar infeksi dengan parasit berlangsung tanpa gejala atau menimbulkan gejala ringan. Oleh sebab itu pemeriksaan laboratorium sangat dibutuhkan karena diagnosis yang hanya berdasarkan pada gejala klinik kurang dapat dipastikan. Misalnya, infeksi yang disebabkan oleh cacing gelang (Ascaris lumbricoides). Infeksi ini lebih bamyak ditemukan pada anak-anak yang sering bermain di tanah yang telah terkontaminasi, sehingga mereka lebih mudah terinfeksi oleh cacain-cacing tersebut. Biasanya hal ini terjadi pada daerah di mana penduduknya sering membuang tinja sembarangan sehingga lebih mudah terjadi penularan. Pengalaman dalam hal membedakan sifat berbagai spesies parasit , kista, telur, larva, dan juga pengetahuan tentang bentuk pseudoparasit dan artefak yang dikira parasit, sangat dibutuhkan dalam pengidentifikasian suatu parasit. B.TUJUAN 1. 2. Mendiagnosa adanya infeksi cacing parasit pada orang yang diperiksa fesesnya. Mengetahui tingkat infeksi cacing yang diderita orang yang diperiksa fesesnya. 3. Mengetahui teknik pemeriksaan telur pada tinja anak-anak. 4. Mengetahui bentuk-bentuk dari cacing parasit, bentuk telur maupun larva agar kita mudah untuk mengenali dan melakukan tindakan efektif baik untuk pencegahan maupun pengobatan terhadap infeksi caing parasit kepada pasien yang diperiksa.

3

BAB II TINJAUAN PUSTAKA TEKNIK-TEKNIK PEMERIKSAAN LABORATORIS BEBERAPA PENYAKIT PARASIT A. TEKNIK PEMERIKSAAN TELUR CACING PARASIT Pemeriksaan telur-telur cacing dari tinja, ada dua macam cara pemeriksaan, yaitu secara kualitatif dan kuantitatif. A.1. PEMERIKSAAN KUALITATIF a. Pemeriksaan secara natif ( direct slide ) Metode ini dipergunakan untuk pemeriksaan secara cepat dan baik untuk infeksi yang berat, tetapi untuk infeksi yang ringan sulit ditemukan telur-telurnya. Cara pemeriksaan ini menggunakan larutan NaCl fisiologis (0,9%) atau eosin 2%. Penggunaan eosin 2% dimaksudkan untuk lebih jelas membedakan telur-telur cacing dengan kotoran-kotoran di sekitarnya. Cara Kerja : 1. 2. 3. Pada gelas objek yang bersih diteteskan 1-2 tetes Dengan sebuah lidi, diambil sedikit tinja dan ditaruh Dengan lidi tadi, kita ratakan/larutkan, kemudiaan NaCl fisiologis atau eosin 2%. pada larutan tersebut. ditutup dengan gelas benda/cover glass. ( Gambar 1)

4

M IK R O S K O P IKU A L IT A T IF K M E T O D A L A N G S U N G (D IR E C T S L ID E )T a ru h tinjap ad ala rutan diata sg ela sobje k

R ata kan en g an d lid i

1-2 tetes N aC l0 ,9 % atau eosin 2%

L IH A T D I B A W A H M IK R O SK O P

Tu tup deng a n ve r g lass co

Gambar 1 b. Pemeriksaan dengan metode apung ( Flotation Methode ) Pada metode ini dipakai larutan NaCl jenuh atau larutan gula jenuh dan terutama dipakai untuk pemeriksaan faeces yang mengandung sedikit telur. Cara kerjanya didasarkan atas berat jenis (BJ) telur uyang lebih ringan daripada BJ larutan yang digunakan, sehingga telur-telur terapung di permukaan dan juga untuk memisahkan partikel-partikel yang besar yang

5

terdapat dalam tinja. Pemeriksaan ini hanya berhasil untuk telur-telur Nematoda, Schistosoma, Dibothriocephalus, telur yang berpori-pori dari famili Tainidae, telur-telur Acanthocephala ataupun telur Ascaris yang infertil.

b.1. Tanpa disentrifugasi 10 gram tinja dicampur dengan 200 ml larutan NaCl jenuh (33%), kemudian diaduk sehingga larut. Bila terdapat serat-serat selulosa disaring terlebih dahulu dengan penyaring teh. Selanjutnya ada 2 cara : * Didiamkan selama 5-10 menit, kemudian dengan ose diambil larutan permukaan dan ditaruh di atas gelas objek. Kemudian ditutup dengan gelas penutup/cover glass. Periksa di bawah mikroskop. ( Gambar 2 ) * Tuangkan ke dalam tabung reaksi sampai penuh, yaitu rata dengan permukaan tabung. Diamkan selama 5-10 menit. Letakkan/tutupkan gelas objek dan segera angkat. Selanjutnya letakkan di atas gelas preparat dengan cairan berada di antara gelas preparat dan gelas penutup. Kemudian diperuiksa di bawah mikroskop.

M IK R O S K O P IKK U A L IT A T IFM E T O D A A P U N G (F L O A T A T IO N M E T H O D )T A N P A D IS E N T R IF U S IO se

T utu pcover glassG elas pe ngadu k 20 m en it

A m b il en gan d ose taruhd iatasob jekglas

T inja

N aC lj e nu h / gu laje nu h

6

10 gr. tinja + 200 cc aC lj enu h N

Gambar 2 b.2. Dengan disentrifugasi Campurkan tinja dan NaCl jenuh seperti di atas kemudian disaring dengan penyaring teh dan dituangkan dalam tabung sentrifugasi. Tabung tersebut diputar pada alat sentrifugasi selama 5 menit dengan putaran 100 x per menit. Dengan ose atau cover glass, diambil larutan bagian permukaan dan ditaruh pada gelas objek, ditutup dengan gelas penutup, kemudian diperiksa di bawah mikroskop. ( Gambar 3 )

MIKROSKOPIKKUALITATIFMETODA APUNG (FLOATATION METHOD)DENGAN DISENTRIFUSI

Gelas pengaduk

SaringSentrifusi 100 x/mnt 5 menit

Tinja

NaCl jenuh/ gula jenuh 10 gr. tinja + 200 cc NaCl jenuh

7

Gambar 3 c.Metode selotip ( Cellotape Methode ) Metode ini dilakukan untuk pemeriksaan telur E. vermicularis. Pemeriksaan dilakukan pada pagi hari sebelum anak kontak dengan air, anak yang diperiksa berumur 1 10 tahun. Cara melakukan pemeriksaan dengan menggunakan plester plastik yang tipis dan bening, dipotong dengan ukuran 2 x 1,5 cm. Plester tersebut ditempelkan pada permukaan lubang anus lalu ditekan dengan ujung jari. Kemudian plester dilepas perlahan-lahan dan langsung ditempelkan pada permukaan objek gelas untuk kemudian dilihat ada atau tidak adanya telur yang melekat pada plester tersebut dan dilihat di bawah mikroskop. Jika tidak terlihat telur berarti negatif, sedangkan yang ditemukan telurnya dikelompokkan kedalam 4 kelompok yaitu positif 1 sampai dengan positif 4. Pengelompokkan tersebut berdasarkan jumlah telur yang terlihat dalam satu lapang pandangan dalam mikroskop yaitu : * Terdapat 1 5 telur berarti * Terdapat 6 10 telur berarti * Terdapat 11 20 telur berarti * Terdapat > 20 telur berarti + ++ +++ ++++

Setelah diketahui jumlah sampel dan jumlah yang positif, kemudian dapat dihitung prosentase anak yang terinfeksi E. vermicularis. Preparat yang positif dikumpulkan, untuk kemudian dibuat suatu preparat permanen, dengan cara plester yang terdapat telur digunting kemudian diberi

8

glycerin jelly 1 tetes, ditempelkan pada objek glass dan ditutup dengan cover glass, didiamkan beberapa hari sampai kering, setelah kering di atas cover glass diberi Canada balsem, ditutup kembali dengan coverglass yang kebih besar kemudian didiamkan kembali sampai kering, sehingga diperoleh suetu preparat permanen. ( Gambar 4 )

M IKROSKOPIKKUALITATIFM ETODA SELOTIP (CELLOTAPE M ETHOD)

Gambar 4 d. Metode Konsentrasi ( Gambar 5 ) Metode ini praktis dan sederhana untuk pemeriksaan telur pada tinja, dengan cara sebagai berikut : 1. Kira-kira 1 gr tinja dimasukkan kedalam tabung reaksi, diberi akuadest diaduk sampai homogen, kemudian dimasukkan ke dalam tabung sentrifusi dan disentrifusi dengan kecepatan 3000 rpm selama 1 menit.

9

2.

Larutan dibuang, sedimennya diambil dengan pipet

Pasteur, diletakkan di atas kaca objek kemudian ditutup dengan cover glass dan lihat di bawah mikroskop. 3. Kalau ingin mendapat hasil yang baik, setelah disentrifusi sedimennya ditambah lagi akuadest, disaring disentrifusi lagi. Hal ini dapat dilakukan 2 sampai 3 kali.

10

MIKROSKOPIKKUALITATIFMETODA KONSENTRASI

Batang pengaduk

Larutan tinja dimasukkan ke dalam tabung sentrifusi

Sentrifusi 3.000 x/mnt, 1 menit

Aquades

1 gr tinjaAduk sampai homogen

Gambar 5 e. Metode Sediaan Tebal (Cellophane Covered thick

Smear Technic/Teknik Kato). Sebagai pegganti kaca tutup pada teknik a, digunakan sepotong selofan. Dengan teknik ini lebih banyak telur cacing dapat diperiksa sebab digunakan lebih banyak tinja. Teknik ini dianjurkan juga untuk pemeriksaan tinja secara massal

11

karena lebih sederhana dan murah. Morfologi telur cacing cukup 1. 2. atas : a.100 bagian akuades (atau 6% fenol) b. 100 bagian gliserin c.1 bagian larutan hijau malachite 3% 3. atas sebelum Teknik : 1. merah ) 2. diratakan 3. 4. Tutup dengan selofan Tekan selofan dengan kaca objek atau Letakkan di atas kaca benda (kaca objek), Ambil 20 50 mg tinja (sebesar kacang Rendam selofan dalam larutan tersebut di dipakai selama > 24 jam. jelas untuk membuat diagnosis. Bahan yang diperlukan adalah : Selophane sebesar 2,5 3 cm Larutan untuk membuat selophane terdiri

tutup botol karet supaya tinja menjadi rata sampai menyebar di bawah selofan. 5. 6. 7. Keringkan larutan yang berlebihan dengan Biarkan sediaan yang sudah selesai dibuat Periksa di bawah mokroskop. ( Gambar 6 ) kertas saring. selama 20- 30 menit

12

MIKROSKOPIKKUALITATIFTEKNIK SEDIAAN TEBAL (METODA KATO)Dimasukkan (direndam ) Rendam > 24 jam 100 bag.Aquades /fenol 6% 100 bag. Glycerin 1 bag. Lar. Hijaumalachit Selofandipotong 2,5 x 3 cm Selofanyang sudah direndam

20-50 gr tinja

Tinja

Gambar 6 f. Metode Sedimentasi Formol Ether ( RITCHIE )

Metode Formol Ether yang merupakan metode cukup baik bagi tinja yang diambil beberapa hari yang lalu, misalnya kiriman dari daerah yang jauh dari laboratorium. (Gambar 7) Alat-alat : 1. 2. 3. 4. 5. 6. Pot plastik tempat tinja Tabung sentrifusi Tutup tabung sentrifusi Pipet Pasteur panjang Objek glass Cover glass

13

Tata cara : 1. 2. 3. Ambil tinja 0,5 ml dicampur 1-2 akuadest, kocok, Saring dengan kain kasa, cairan filtrasi ditampung Seimbangkan, putar selama 1 menit dengan putaran tambahkan lagi 10 12 ml akuadest, kocok. dalam tabung sentrifusi 15 ml. 1000 putaran permenit, kemudian cairan di atasnya dibuang. 4. Tambahkan pada endapan 1 ml formalin 1 % kocok, tambahkan lagi 8 ml formalin 10% biarkan selama 10 menit. 5. 6. 7. 8. 9. Tambahkan 3 ml ether, tabung ditutup kemudian Putar selama 1-2 menit dengan putaran 2000 Hati-hati, ambil dengan pipet sampai perbatasan Pindahkan 1 tetes sedimen pada kaca benda yang Kemudian tutup dengan kaca tutup, lihat di bawah dikocok sampai aduk betul (10-20 detik). putaran permenit. ether dengan formalin, kemudian buang cairan sisa. sebelumnya telah ditetesi 1 tetes larutan Iodin. mikroskop.

M IK R O SK O PIKK UALITATIF UA LITATIF(R ITC HIE) H IE)10-12 C l. m K O O K aquades dtik ( 5 -2 1 0 e) 2 0 r m1 .0 0 p , 1m F r ai 1 % l oml n 0 . +F r a n1 % omli 0 v l m 8m ou e l

M ETO DA SEDIM ENTASI FO RM O L ETHERs ma a pi 3m e e l th r .

DA K N I MA(0 1

0,5 ml.tinjam i 1-2 menaquades l. t )

S N RF S E T I UI

-2 mnt ei

KOCOK

K O CO K

SAR ING

1.000 rpm, 1 menit

SE N T R IFUS I

14

A.2.

PEMERIKSAAN KUANTITATIF a. Metode Kato Katz ( Gambar 8 ) Alat dan bahan yang diperlukan : 1. Gelas benda 2. Selotip dengan tebal 40 m ukuran 3 x 3 cm. 3. Kawat kasa dengan ukuran lubang tertentu dipotong dengan ukuran 3 x 3 cm, 4. Karton yang tebal diberi lubang dengan volume tertentu, sehingga tinja yang dicetak dengan karton tersebut dapat diketahui beratnya (misalnya 30 mg). 5. Lidi dan kertas minyak. 6. Larutan Malachite green yang terdiri dari : 100 ml glycerin ditambah 100 ml akuadest ditambah 1 ml Malachite-green 3%. Cara kerja : 1. Sebelum pemakaian, pita selophane dimasukkan ke dalam larutan malachite green selama + 24 jam. 2. Di atas kertas minyak, ditaruh tinja sebesar sebutir kacang, selanjutnya di atas tinja tersebut ditumpangi dengan kawat saringan dan ditekan sehingga didapatkan material/tinja yang kasar tertinggal di bawah kawat dan tinja yang halus keluar di atas kawat penyaring. 3. Dengan ludi, ambil tinja yang sudah halus tersebut di atas kawat penyaring + 30 mg, dengan memakai cetakan karton yang berlubang, taruh di atas gelas preparat yang bersih. 4. Kemudian ditutup dengan pita selofan dengan meratakan tinja di seluruh permukaan pita selofan sampai sama tebal, dengan bantuan gelas preparat yang lain.

15

5. Biarkan dalam temperatur kamar selama 30 60 menit supaya menjadi transparan. 6. Periksa seluruh permukaan dengan menghitung jumlah semua telur yang ditemukan dengan pembesaran lemah. Cara menghitung telur cacing secara kuantitatif Parasit A. lumbricoides T. trichiura Cacing tambang Rumus : Jumlah telur tiap gram tinja = 1000 x N = 1000 x 30 = 1000 telur/gr tinja 30 30 Anak-anak mengeluarkan tinja + 100 gram /hari, dewasa mengeluarkan tinja + 150 gram/hari. Jadi, misalnya, dalam 1 gram tinja mengandung 1000 telur maka 150 gram tinja mengandung 150.000 telur. Untuk mengetahui berat/ringannya infeksi : Misal : N. Americanus betina tiap hari mengeluarkan telur 10.000 butir. Jadi, kalau didapat 150.000 telur, maka jumlah cacing betina dapat diketahui : 150.000/10.000 = 15 cacing betina Ada empat kriteria ( arwin Karyadi ) : 1. telur) 2. telur) Infeksi ringan : 10-24 (150-375 butir Infeksi : 1- 9 sangat ringan (15-149 butir Jumlah telur IIII IIII dst IIIIII......30 N

16

3. telur) 4.

Infeksi sedang : 25-49 (376-749 butir

Infeksi berat : > 50 ( > 750 butir

MIKROSKOPIKKUANTITATIFMETODA KATO-KATZMENYARING TINJATEKAN

MENCETAK TINJAKarton berlubang

MEMBUAT PREPARATGelas Tinja yang objek dicetak

Kawat kasa Tinja (5 gr) Kaca objek Tinja yang telah disaringTEKAN

Selotip yang telah direndamDicetak

Kertas minyak

Kawat kasa Tinja (5 gr)

DARI SAMPING

telur ) Gambar 8 b. Metode Stoll ( Gambar 9 )

Metode ini menggunakan larutan NaOH 0,1 N sebagai pelarut tinja. Cara ini sangat baik dipergunakan untuk infeksi berat dan sedang, akan tetapi untuk infeksi ringan kurang baik.

17

MK O K PK I R S OIK A TT TF UNI AIT ja in

MT D S O L EOA T L!

6 0 5 6

m m

l l

6 0 5 6

m m

l l

6 0 5 6

m m

l l

L ru n a ta NO a H 0 N ,1

B u tir

G

e la s

KCK OO

D ma ia k n 1 mla a m AA TU c kp uu 3-4ja m ta i p d oo ik c k le ih la a b m

MT D S O L EOA T L

Kc k oo dn a a b mil 0 5m ,1 l6 0 5 6 m m l l

18

M IKROSKOPIK

KUANTITATIF

M ETODA STOLLPENGHITUNGAN NaOH = 56 m l, tinja 4 m ~ 4gr l 4 gr tinja dalam 60 m l Atau 1 gr tinja dalam 15 ml Volum e larutan tinja 0,15 m ditem l ukan y telur Maka volum 15 m e l ditem ukan y x 100 (~ 1 gr tinja ) RUMUS : Jum lah telur dalam 1 gram tinja = Jum lah telur yang terlihat (m iroskopik ) x 100

M IK R O SK O P IKK U A N T IT A T IFM E T O D A ST O L LT IN G K A T IN F E K SI M E N U R U T JU M L A H T E L UR D A L A M T IAP G R A M T IN JA DA N JU M L A H C A C IN GIN F EK SI O L EH T IN G K A T INF EK SI JU M LAH T EL U R P E R R AM T IN JA -G JU M L AH C A C IN G

R IN G A N A . lum bricoides S E D AN G B E R AT R IN G A N S E D AN G B E R AT R IN G A N S E D AN G B E R AT

K uran g 7.000 7.0 00 -35.000 le b ih35.000 K uran g 3.000 3.0 00 -10.000 le b ih10.000 K uran g 2.000 2.0 00 -7.000 le b ih7.000

5 /ku ran g 6-25 lebih25 2 0/ku ran g 2 1-10 0 lebih100 5 0/ku ran g 5 1-20 0 lebih200

A . du oden ale

N . am ericanu s

19

B. PEMERIKSAAN LARVA CACING PARASIT 2.1. Metode pembiakan larva menurut Baermann. Metode ini selain digunakan untuk mendiagnosis adanya infeksi cacing tambang juga untuk mengetahui adanya kontaminasi telur cacing tambang dalam tanah, yaitu dengan membiakan larva dari faeces penderita maupun larva-larva cacing tambang dalam tanah seperti A. duodenale dan N. americanus. Alat yang digunakan terdiri dari corong gelas, saringan kawat, selang karet dan klem yang disusun seperti gambar 10. Cara kerja : a. Tinja dikompulkan dan dicampur dengan pasir steril, dimasukkan ke dalam cawan petri dengan alas dari kain, kemudian diberi air sedikit dan ditaruh di dalam suatu ruangan beberapa hari sampai telur menetas ( untruk Ancylostoma dan Necator + 5-7 hari ). b. Kemudian campurkan tinja dan pasir steril tersebut dengan alasnya dari kain ditaryh ke dalam corong gelas yang di atasnya sudah diberi saringan kawat. c. Pasir disaring untuk mengeluarkan larva dari telur dengan dituangi air hangat sampai bagian bawah tinja dan pasir steril tersebut bersentuhan dengan permukaan air. d. Setelah 1-2 jam, klem dibuka dengan hati-hati, satu atau dua tetes airnya ditaruh pada gelas objek (atau cawan petri) untuk diperiksa di bawah mekroskop. Untuk meyakinkan hasilnya, diambil lagi tetes kedua dan diperiksa lagi. Selama pemeriksaan ini, kita harus berhati-hati jangan sampai tetesen tadi mengenai kulit kita. 2.2. Modifikasi Harada Mori (Gambar 11) Metode ini digunakan untuk menentukan dan mengidentifikasi larva cacing A. duodenale, N. americanus, Strongiloides stercoralis dan Trichostrongylus yang didapatkan dari faeces yang diperiksa.

20

Dengan teknik ini, telur cacing dapat berkembang menjadi larva infektif pada kertas saring basah selama + 7 hari, kemudian larva ini akan ditemukan di dalam air yang terdapat pada ujung kantong plastik. Alat dan bahan yang diperlukan 1. 2. 3. 4. 5. 6. 1. 2. 3. Tabung reaksi ukuran 18 x 180 mm atau 20 x 200 mm atau Kertas saring ukuran 3 x 15 cm ( dapat juga memakai Lidi bambu Akuadest steril Rak tabung reaksi/tempat menggantung plastik Pensil berwarna/spidol Tabung reaksi/plastik diisi akuadest steril + 5 ml Dengan lidi bamb, tinja dioleskan pada kertas saring Kemudian kertas saringnya dimasukkan dalam tabung kantong plastik ukuran 30 x 200 mm. kertas koran )

Cara kerja :

sampai mengisi sepertiga bagian tengahnya. reaksi/plastik tersebut di atas. Cara memasukkan kertas saring dilipat membujur dengan ujung kertas menyentuh permukaan akuadest dan tinja jangan sampai tercelup akuadest. 4. 5. Tulis nama penderita, tanggal penamaan, tempat penderita Simpan pada suhu kamar selama + 3-7 hari. dan nama mahasiswa. Tabung ditutup plastik/dijepret.

21

Alas dari kain Saringan dari kawat Bahan tinja dan pasir Permukaan air Corong gelas Air hangat Standard Klem

Cawan petri Gambar 10 ( METODE BAERMANN )

Akuades Tinja Kertas saring Kantong plastik Dilipat

Gambar 11 ( MODIFIKASI HARADA MORI )

22

Cara menulis hasil pemeriksaan tinja terhadap adanya infeksi cacing parasit ususMetode Natif Eosin A. limbricoides T. trichiura E. vermicularis C. tambang NaCl 0,9% Lugol Kualitatif Apung Harada Mori Kuntitatif Kato Katz

C. TEKNIK PEMERIKSAAN PROTOZOA PARASIT METODE PEMERIKSAAN PROTOZOA USUS 1. Pemeriksaan secara natif Metode ini dipergunakan untuk melakukan pemeriksaan secara cepat. Untuk bentuk trofozoit dari amoeba dipergunakanlarutan eosin 2%, sedangkan untuk inti dan bentuk kista amoeba denganlarutan lugol (2% larutan iodium + 3% larutan iodkali ). Cara kerja : 1. Dengan sebuah lidi, kita ambil faeces sebesar biji kacanag polong, yang ditarus di atas objek glass yang bersih. 2. Bubuhi larutan NaCl fisiologis atau larutan eosin 2% atau lugol di atasnya. 3. Dengan lidi tadi, kita ratakan dahulu sebelum diberi gelas penutup. 4. Periksa di bawah mikroskop.

23

Gambar 12

2. Modif

24

CGambar 13

5g

BAB III

0,5 ml La Dasar25

METODOLOGI3.1 Alat dan bahan 1. Sampel tinja 2. Object glass 3. Cover glass 4. Stick aplicator 5. Aquades 6. Cairan lugol 7. NaCl 3.2 Cara kerja Metode yang digunakan adalah metode natif dengan cara kerja: 1. Dengan pipet diambil dan diteteskan satu larut lugol di atas gelas object yanbg bersih dan kering 2. Ambil sedikit tinja dengan lidi yang sudah disediakan, dicampuata dengan tetesan larutan lugol tadi, dan benda-benda yang kasar dibuang 3. Ambil gelas penutup dan diletakkan di atasnya dengan hati-hati sehingga cairan merata di bawah gelas penutup dan tidak terjadi gelembung udara 4. Diperiksa di bawah mikroskop 5. Pemeriksaan ini diulangi sedikitnya 3x

BAB IV

26

PEMBAHASAN

Pada praktikum ini meneliti adanya parasit ataupun telur parasit pada sampel feses percobaan. Parasit yang diteliti adalah parasit yang dapat mengganggu tumbuh kembang anak, terdiri dari Soil Transmitted Helminths, kelompok spesies cacing usus yang ditularkan melalui tanah, dan protozoa Giardia lambia. Kelompok Soil Transmitted Helminthsterdiri atasAscaris lumbricoides dan cacing tambang (Necator americanus dan Ancylosstoma duodenale).Ascaris lumbricoides adalah spesies cacing usus terbesar yang menginfeksi manusia dan menyebabkan penyakit askariasis. Telur yang terdapat dalam feses bisa dalam bentuk fertil dan infertil. Cacing tambang (hookworm) terdiri dari Ancylostoma duodenale yang dapat menyebabkan ankilostomiasis dan Necator americanus yang dapat menyebabkan nekatoriasis. Diagnosis infestasi cacing tambang dilakukan dengan menemukan telur cacing tambang dalam pemeriksaan tinja segar. Giardia lambia dapat ditemukan pada stadium trofozoit pada tinja cair dan ditemukan pada stadium kista pada tinja padat.

27

Pemeriksaan kualitatif dilakukan dengan menggunakan larutan lugol, metode ini dipergunakan untuk pemeriksaan secara cepat dan baik untuk infeksi yang berat, tetapi untuk infeksi yang ringan sulit ditemukan telur-telurnya. Pada pemeriksaan ternyata tidak ditemukan adanya parasit,hal ini dapat disebabkan oleh : 1. Kondisi probandus yang dalam keadaan sehat dan bukan berasal dari usia anak sebagai usia prevalensi infeksi parasit tertinggi. 2. Kesalahan praktikan yg mungkin terjadi pada saatpengambilan sampel feses dan pembuatan preparat.3. Kesalahan pengamatan sampel menggunakan mikroskop.

BAB V PENUTUP 5.1 Kesimpulan Pemeriksaan parasit menggunakan pemeriksaan kualitatif yang terdiri dari metode natif (pemeriksaan secara langsung) dengan menggunakan cairan lugol untuk meneliti parasit yang dapat mengganggu tumbuh kembang anak. Dari hasil pemeriksaan feses yang dilakukan pada probandus tidak didapatkan adanya telur parasit. 5.2 Saran Saran yang dapat kami sampaikan pada percobaan ini adalah agar pemilihan sampel dilakukan dengan lebih selektif yaitu berasal dari probandus anak yang kemungkinan terinfeksi parasit sehingga praktikan dapat belajar mengenali parasit secara langsung.

28