GUIA RAPIDA PARA LA VIGILANCIA E GUIA RAPIDA PARA LA ... · DIRECTOR DE EPIDEMIOLOGIA Y ANALISIS DE...

GUIA RAPIDA PARA LA VIGILANCIA E INVESTIGACION EPIDEMIOLOGICA DE FIEBRE PORCINA CLASICA (FPC)

,

GUIA RAPIDA PARA LA VIGILANCIA E INVESTIGACION EPIDEMIOLOGICA DE

FIEBRE PORCINA CLASICA


FRANCISCO JAVIER MAYORGA CASTAÑEDA

SECRETARIO DE AGRICULTURA, GANADERIA, DESARROLLO RURAL, PESCA Y ALIMENTACION

ENRIQUE SANCHEZ CRUZ DIRECTOR EN JEFE DEL SERVICIO NACIONAL DE SANIDAD, INOCUIDAD Y CALIDAD AGROALIMENTARIA

HUGO FRAGOSO SANCHEZ DIRECTOR GENERAL DE SALUD ANIMAL

ASSAD HENEIDI ZECKUA DIRECTOR DE EPIDEMIOLOGIA Y ANALISIS DE RIESGO

SISTEMA NACIONAL DE VIGILANCIA EPIDEMIOLOGICA (SIVE)

Primera Edición

Agosto, 2011 Ver actualizaciones en la página:

http://www.senasica.gob.mx/default.asp?id=529


MISION

SENASICA:

Regular, administrar y fomentar las actividades de sanidad, inocuidad, y calidad agroalimentaria, reduciendo los riesgos inherentes en materia agrícola, pecuaria, acuícola y pesquera, en beneficio de los productores, consumidores e industria.

Dirección de Epidemiología y Análisis de Riesgo DEAR

Establecer y supervisar la política epidemiológica, de regionalización, análisis de riesgo, vigilancia epidemiológica y evaluación de riesgos del comercio. Así como generar información epidemiológica para la adecuada toma de decisiones en materia de salud animal en apoyo a la mejora y la preservación de la salud animal y la sanidad acuícola y pesquera, en beneficio de la producción, comercialización y consumo de mercancías nacionales e importadas.

VISION

SENASICA:

Un SENASICA transformado, moderno con un marco jurídico que proporcione seguridad sanitaria y facilitación del comercio, con una plataforma técnico científica, consolidada que da certeza con reconocimiento nacional e internacional.

Dirección de Epidemiología y Análisis de Riesgo DEAR

Ser una institución intersectorial e interinstitucional de excelencia en el servicio de información epidemiológica en salud animal y sanidad acuícola y pesquera, estructurada y equipada con tecnología de punta y con reconocimiento nacional e internacional; constituida por personal altamente calificado, comprometido en el logro de las metas sanitarias en enfermedades de alto impacto sanitario, económico, de comercialización y en salud pública, en beneficio de la población mexicana.

1


INDICE

Misión y Visión ......................................................................................................................................... 1

Indice ....................................................................................................................................................... 2

Abreviaturas ............................................................................................................................................. 3

Definición de caso de FPC ......................................................................................................................... 4

Generalidades de las cepas del virus de FPC .............................................................................................. 5

Tipos de presentación clínica de la enfermedad ......................................................................................... 6

Diagnósticos diferenciales de FPC .............................................................................................................. 7

Diagrama de flujo para la vigilancia epidemiológica activa ......................................................................... 8

Tiempos de respuesta requeridos para las actividades de vigilancia epidemiológica activa ......................... 9

Diagrama de flujo para la vigilancia epidemiológica pasiva (notificación de caso clínico

sospechoso de FPC) ................................................................................................................................ 10

Procedimiento para la investigación epidemiológica de un caso sospechoso de FPC en una UP ................ 11

Procedimiento para la investigación y seguimiento epidemiológico de FPC .............................................. 16

Diagrama de flujo para la investigación o seguimiento epidemiológico .................................................... 18

Diagrama de flujo para el seguimiento epidemiológico de un caso presuntivo positivo ............................. 19

Diagrama de flujo para la aplicación de medidas contraepidémicas en caso de brote ............................... 20

Relación de material y equipo para la vigilancia epidemiológica ............................................................... 21

Tipo de muestras a obtener durante la vigilancia epidemiológica activa y pasiva ...................................... 22

Técnica de necropsia ............................................................................................................................... 23

Procedimiento para la obtención de muestras ......................................................................................... 24

Envío de muestras al laboratorio de diagnóstico ...................................................................................... 27

Lista de verificación para las actividades de investigación y seguimiento epidemiológico de un caso sospechoso de FPC ................................................................................................................. 28

Lista de verificación para un caso confirmado de FPC ............................................................................... 29

Lineamientos para la integración de un expediente técnico para el seguimiento y cierre de focos ................................................................................................................................................. 30

Formato SIVE 01 ..................................................................................................................................... 31

Formato SIVE 02 ..................................................................................................................................... 32

Formato SIVE 03 ..................................................................................................................................... 35

Formato de evaluación de medidas de bioseguridad y buenas prácticas en la UP ..................................... 36

Directorio de laboratorios de diagnóstico molecular en sanidad animal de la CPA /SENASICA ................... 40

Directorio de los coordinadores regionales de la CPA/SENASICA .............................................................. 41

Directorio de los Coordinadores de la DEAR/SENASICA ............................................................................ 42

Red de laboratorios de diagnóstico molecular en sanidad animal de la CPA/SENASICA ............................. 43

2


ABREVIATURAS BPP: Buenas prácticas pecuarias Cel.: Teléfono móvil o celular CPA: Comisión México - Estados Unidos para la prevención de la fiebre aftosa y otras enfermedades exóticas de los animales (CPA) DEAR: Dirección de Epidemiología y Análisis de Riesgo DGSA: Dirección General de Salud Animal Delegación: Delegación Estatal de la SAGARPA DMEM: Medio de cultivo celular de Eagles modificado por Dulbecco DVB: Diarrea viral bovina EDTA: Anticoagulante sal disódica, dipotásica o tripotásica del ácido etilendiaminotetraacético (C10H16N2O8) EA: Enfermedad de Aujeszky ELISA: Enzimoinmunoensayo EF: Enfermedad de las fronteras FPC: Fiebre porcina clásica GIS: Sistema de georreferenciación IP: Inmunoperoxidasa LBS2: Laboratorio regional de la CPA con un nivel de bioseguridad 2 LBS3: Laboratorio de bioseguridad nivel 3 de la CPA OASA: Organismo auxiliares en sanidad animal Pág.: Página PRRS: Síndrome reproductivo respiratorio porcino SAGARPA: Secretaría de Agrícultura, Ganadería, Desarrollo Rural, Pesca y Alimentación SENASICA: Servicio Nacional de Sanidad, Inocuidad y Calidad Agoralimentaria SINEXE: Sistema de Información Nacional de Enfermedades Exóticas y Emergentes SIVE: Sistema Nacional de Vigilancia Epidemiológica SSF: Solución salina fisiológica RT- PCR: Reacción en cadena de la polimerasa transcriptasareversa UP: Unidad (es) de producción UMA: Unidad (es) para la conservación, manejo y aprovechamiento sustentable de fauna silvestre con jabalíes. VA: Vigilancia activa VP: Vigilancia pasiva VSN: Virus seroneutralización.

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DEFINICION DE CASO

CASO CLINICO Piara o cerdo con signología clínica compatible con FPC. Piara con signología y lesiones compatibles con FPC en las que existe evidencia de importación de material genético; o que se alimenta con escamocha; o en la que se identifica una relación epidemiológica de personas vinculadas con la producción porcina en otro país.

CASO SOSPECHOSO Corresponde a la definición de caso clínico; o Un cerdo o piara que cuenta con resultados positivos en serie a las pruebas de enzimoinmunoensayo (ELISA), inmunoperoxidasa (IP) y virus seroneutralización (VSN), sin información epidemiológica ni signos clínicos compatibles con la enfermedad. Un cerdo o piara en la que se obtiene un resultado no concluyente o positivo a la prueba de RT-PCR convencional - tiempo real en una muestra tomada durante la vigilancia epidemiológica rutinaria, con o sin la presencia de signos clínicos o con resultado pendiente de la investigación epidemiológica.

CASO PRESUNTIVO POSITIVO Un caso sospechoso con resultado positivo repetido a RT-PCR convencional/ tiempo real o con secuenciación genómica posterior a RT-PCR convencional de una muestra de cerdos con o sin signos clínicos y/o evidencia epidemiológica de la enfermedad; o Un cerdo o piara con información epidemiológica y/o evidencia clínica compatible con la enfermedad y con resultados POSITIVOS a:

RT-PCR convencional o tiempo real; o

Prueba de virus seroneutralización positiva (VSN); o

Prueba de inmunohistoquímica (cuando proceda).

CASO CONFIRMADO Un porcino con o sin signos clínicos y/o lesiones compatibles y/o evidencia epidemiológica del cual se aísla el virus de la FPC y es confirmado por secuenciación genética en un laboratorio del SENASICA, conforme a los estándares internacionales.

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GENERALIDADES DE LAS CEPAS DE VIRUS DE FPC

La FPC es una enfermedad ocasionada por un virus ARN envuelto de la familia Flaviviridae y género Pestivirus, es altamente contagiosa y afecta únicamente a suidos Sus scrofa spp.

CEPAS VIRULENTAS Periodo de incubación: 2 a 15 días. Presentaciones: Aguda, Crónica y Congénita.

CEPAS DE BAJA VIRULENCIA

El diagnóstico clínico es difícil. El curso generalmente es subclínico. Los casos clínicos que se llegan a identificar son leves. El periodo de incubación, es más largo que en las cepas de alta virulencia.

Signología y lesiones:

Viremia

Fiebre ≥ 40°C

Constipación

Decoloración de la piel

Hiperemia difusa

Necrosis (orejas, cola, vulva)

Conjuntivitis

Exudado purulento en ojos (rara vez)

Signología nerviosa

Abortos

Mortinatos

Momificación

Anomalías en las crías

Vómito y/o diarrea (no responde a antibióticos)

Manifestación clínica variable:

Emaciación

Alopecia

Dermatitis

Decoloración de las orejas

Coloración púrpura en el abdomen

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AGUDA Se puede presentar en adultos o en lechones y la mortalidad puede ser del 100%. En lechones destetados menores de 12 semanas de edad, la muerte ocurre generalmente de 5 a 15 días.

CRONICA Se puede desarrollar en cerdos recuperados de una infección aguda y la muerte puede ocurrir de 1 a 3 meses a partir del cuadro inicial.

CONGENITA Los lechones nacidos de madres infectadas después del día 50 al 70 de gestación, nacen infectados sin signología por varios meses antes de morir o nacen con tremores congénitos. Los lechones de hembras infectadas antes del día 50 al 70 de gestación pueden nacer muertos, momificados o con defectos congénitos.

Signología

Fiebre

Anorexia

Letargia

Hiperemia multifocal

Hemorragias en piel

Conjuntivitis

Cianosis (extremidades, cola y hocico)

Disnea

Tos

Estreñimiento seguido de vómito y diarrea

Ataxia

Debilidad de los miembros posteriores

Paresis

Convulsiones

Abortos

Hacinamiento

Signología

Convalecencia breve

Recaída con fiebre

Anorexia

Dermatitis

Postración

Apetito irregular

Pirexia

Diarrea que puede durar hasta un mes

Incremento de redrojos en la piara

En la piara, el único signo indicativo puede ser la disminución de los índices reproductivos, abortos, mortinatos y/o lechones débiles.

Lesiones Macroscópicas

Hemorragias petequiales en riñón (huevo de guajolote)

Hemorragias en laringe, vejiga y válvula ileocecal.

Infartos en el bazo (lesión característica, aunque no siempre se produce)

Tumefacción de nódulos linfáticos.


Ulceras en forma de botón en el ciego e intestino grueso.

Exostosis costillar (no siempre se presenta)


Hipoplasia cerebelar

Microencefalia

Hipoplasia pulmonar

Hidropesía

Otras malformaciones

Lesiones Microscópicas

Encefalomielitis con infiltración linfocitaria perivascular.

Otros hallazgos en el laboratorio: anemia, leucopenia y trombocitopenia


Depresión generalizada del tejido linfoide


Dismielogenia central

TIPOS DE PRESENTACION CLINICA DE LA ENFERMEDAD

6


DIAGNOSTICOS DIFERENCIALES DE FPC

Clínicos:

Peste porcina africana

Enfermedad de Aujeszky (EA)

Síndrome reproductivo y respiratorio porcino (PRRS)

Parvovirosis porcina

Circovirus porcino

Síndrome de dermatitis y neuropatía porcina

Síndrome multisistémico de desgastamiento post-destete

Púrpura trombocitopénica

En el laboratorio:

Diarrea viral bovina (DVB)

Enfermedad de la frontera (EF)

Complicaciones septicémicas por:

Salmonelosis

Erisipelosis

Pasterelosis

Actinobacilosis

Hemofilosis por H. parasuis

Estreptococosis

Abortos por secuelas de:

Enfermedad de Aujeszky

Encefalomielocarditis

PRRS

Intoxicaciones

Parvovirosis porcina (Síndrome SMEDI)

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DIAGRAMA DE FLUJO PARA LA VIGILANCIA EPIDEMIOLOGICA ACTIVA

DELEGACION ESTATAL ENVIA CENSO DE PRODUCTORES A LA

DGSA

LABORATORIO CPA RECEPCION DE MUESTRAS

SUEROS ORGANOS Y/O

SANGRE COMPLETA

ELISA

IP

VSN

INVESTIGACION EPIDEMIOLOGICA SIVE 01 Y SIVE 02

++

+

+

RT-PCR

+

AISLAMIENTO VIRAL

SECUENCIACION

+

(-)

(-)

LEVANTAMIENTO DE CUARENTENA (-) RESULTADO NEGATIVO

CASO SOSPECHOSO, CUARENTENA PRECAUTORIA + RESULTADO POSITIVO A

. LA PRUEBA, SOSPECHOSO

CASO PRESUNTIVO POSITIVO, CASO CONFIRMADO,

. CUARENTENA DEFINITIVA CUARENTENA DEFINITIVA

+

+

+

MUESTREO EPIDEMIOLOGICO

Coordinador Regional de la DEAR o CPA organiza, y supervisa el muestreo realizado por los OASA’s o agentes técnicos. Asimismo, Los animales muestreados deberán ser identificados mediante arete.

MUESTRAS UP Y TRASPATIOS

a) SUEROS SANGUINEOS b) MORTALIDAD DEL DIA: ORGANOS EN REFRIGERACION (Tonsilas palatinas, riñón, nódulo linfático e íleon distal) c) SANGRE COMPLETA d) HISOPOS NASALES e) RASPADO DE TONSILAS

MUESTRAS RASTROS a) ORGANOS EN REFRIGERACION (Tonsilas palatinas, riñón, nódulo linfático e íleon distal)

MUESTRAS UMA’s a) SUEROS SANGUÌNEOS U ÒRGANOS O AMBOS

DEAR ELABORA

TAMAÑO DE MUESTRA

ESTADÍSTICA

NOTA: LAS CUARENTENAS PRECAUTORIAS O DEFINITIVAS SERAN ESTABLECIDAS Y LEVANTADAS POR LA DELEGACION SAGARPA O LA DGSA.

+

+

+

+

+

+

( )

( )

SUEROS SANGUINEOS

LEVANTAMIENTO DE CUARENTENA CONFORME A RESULTADOS

COMPLEMENTARIOS

CASOS SOSPECHOSO, CUARENTENA PRECAUTORIA

CASO PRESUNTIVO POSITIVO, CUARENTENA DEFINITIVA

RESULTADO NEGATIVO A LA PRUEBA

RESULTADO POSITIVO A LA PRUEBA

CASO CONFIRMADO, CUARENTENA DEFINITIVA

+

+

8


TIEMPOS DE RESPUESTA REQUERIDOS PARA LA VIGILANCIA EPIDEMIOLOGICA ACTIVA1

8 días (1 pase) Si se requieren más pases, el tiempo de respuesta puede ser mayor

24 hrs

1) Los tiempos pueden variar por la individualidad del caso.

(+)

(+)

(+)

(+)

(-)

*LBS2: Laboratorio regional de la CPA (nivel de bioseguridad 2) **LBS3: Laboratorio central de la CPA Palo Alto (nivel de bioseguridad 3)

(-)

(-)

(+)

Procesamiento de muestras por IP

en el LBS3**

24 hrs

(+) Cuarentena precautoria

10-12 días

(-)

INVESTIGACIÓN EPIDEMIOLÓGICA

Procesamiento de muestras para Secuenciación genética


8-10 días

(+) Cuarentena definitiva

Procesamiento de muestras por RT-PCR

en el LBS2*

24-48 hrs


30 -48 hrs

72-96 hrs (-)

Organizar y supervisar actividades de Vigilancia

Epidemiológica

Determinación del Tamaño de muestra

estadístico

Procesamiento de muestras para

aislamiento viral en el LBS3**

Toma de muestras de UP tecnificadas, traspatios,

rastros y UMA`s Envío de muestras al laboratorio de diagnóstico

24 hrs

Procesamiento de muestras por ELISA

en el LBS2* Procesamiento de

muestras por ELISA e IP en el LBS2*

(Alternativa de implementación)

Envío de muestras (+) a ELISA al LBS3**

3-14 días Procesamiento de

muestras VSN en el LBS3**

Determinación del tamaño de muestra estadístico

Organización y supervisión de actividades de vigilancia epidemiológica

Calendarización para la toma y envío de muestras por grupos de trabajo

9


LEVANTAMIENTO DE CUARENTENA CONFORME A RESULTADOS COMPLEMENTARIOS

7

(+)

+

NOTA: LAS CUARENTENAS PRECAUTORIAS O DEFINITIVAS SERAN ESTABLECIDAS Y LEVANTADAS POR LA DELEGACION SAGARPA O LA DGSA.

(-)

(-)

(-)

+

+

+

+

SECUENCIACION GENETICA

VSN

RT-PCR

+

SEGUIMIENTO EPIDEMIOLOGICO

ORGANOS, SANGRE COMPLETA, HISOPOS NASALES Y RASPADOS

DE TONSILAS

AISLAMIENTO VIRAL

ENVIO DE MUESTRAS AL

LABORATORIO CPA

IP

ELISA

SUERO

Animales enfermos a) Sangre completa con EDTA o Heparina b) Hisopos nasales c) Raspado de tonsilas

Animales muertos o sacrificados a) Órganos en refrigeración: tonsilas palatinas, hígado, riñón, nódulo linfático e íleon distal b) Sangre completa en animales sacrificados

La Delegación SAGARPA o la DGSA, establece cuarentena

precautoria de inmediato

SIVE 01

Notificación de una sospecha de caso

clínico de FPC SIVE 01

El coordinador de la CPA y/o DEAR inicia investigación

epidemiológica en la UP SIVE 02

El coordinador de la CPA y/o DEAR colecta e

identifica a los animales muestreados y envía las

muestras al laboratorio de la CPA

Animales sanos Suero sanguíneo

DIAGRAMA DE FLUJO PARA LA VIGILANCIA EPIDEMIOLOGICA PASIVA

(Sospecha de caso)

SUEROS SANGUINEOS

+

+

(-)

(+)

+

CASOS SOSPECHOSO, CUARENTENA PRECAUTORIA COMPLEMENTARIOS

CASO PRESUNTIVO POSITIVO, CUARENTENA DEFINITIVA

RESULTADO NEGATIVO A LA PRUEBA

RESULTADO POSITIVO A LA PRUEBA


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PROCEDIMIENTO PARA LA INVESTIGACION EPIDEMIOLOGICA DE UN CASO SOSPECHOSO DE FPC EN UNA UP

PASOS PARA LA INVESTIGACION EPIDEMIOLOGICA

1. Notificación inmediata de la sospecha de caso de fiebre porcina clásica al Sistema Nacional de Vigilancia Epidemiológica (SIVE) mediante el formato SIVE 01.

2. Visitar la granja y registrar las coordenadas geográficas de la misma.

3. Entrevistar al productor o responsable afuera de la granja y recabar información con ayuda del SIVE 02 para elaborar la historia clínica. Anexar en la parte de observaciones la información que no está contemplada en el formato SIVE 02, adicionalmente se puede incluir en el SINEXE.

4. Definición de zonas a criterio del investigador y de las condiciones de campo

5. Preparación del material de bioseguridad, equipo de protección personal y material para la toma y envío de muestras.

6. Utilización del material de protección personal.

I. Medir y cortar cinta para cubre botas, muñecas y el cierre del overol, recuerde hacer un doblez en la punta de la cinta para facilitar su aplicación y retiro.

II. Inspeccionar el material de protección y verificar que esté libre de rupturas, rasgaduras u otros defectos. Si el equipo de protección es usado, asegurarse de que esté limpio y desinfectarlo antes de entrar a la zona sucia.

III. Quitarse joyería, relojes y otros objetos personales. IV. Si es necesario introducir dispositivos como cámaras o celulares deberá colocarlos dentro de una

bolsa con cierre hermético previo al ingreso de la granja para evitar su contaminación.

ZONA SUCIA

ZONA DE TRANSICION

ZONA LIMPIA

ZONA SUCIA: Es la unidad de producción sospechosa a la infección de animales con el virus de la FPC

ZONA DE TRANSICION: Es el área donde se lleva a cabo la descontaminación y en el cual, se deberá colocar el material para este fin (cubeta con desinfectante, cepillo para botas, aspersor de motor, aspersor manual, hielera con refrigerantes, cinta para sellar los tubos etc.)

ZONA LIMPIA: Es el área no contaminada, la cual debe estar lo más lejos posible del área presuntamente contaminada, por lo tanto todo el material que ingresó a la unidad de producción no puede pasar a esta zona, sin una desinfección previa o en bolsas herméticamente cerradas y asperjadas con desinfectante en la zona de transición, para evitar la posible diseminación del agente infeccioso. Así mismo, la cabina del vehículo debe considerarse como zona limpia y la cajuela o caja como zona sucia, respecto al manejo de muestras y de basura

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V. Ponerse el overol y cerrarlo. VI. Colocarse botas de hule o doble cubrebotas y sellar con cinta (recuerde hacer un doblez en la cinta

para retirarla fácilmente y no apretar mucho para no perder movilidad). VII. Sellar con cinta el cierre del overol.

VIII. Perforar el overol en la manga a la altura de los pulgares e introducir los dedos en los orificios. IX. Ponerse el primer par de guantes y colocarse un segundo par de guantes y sellar con cinta. X. Ponerse el cubre bocas, lentes protectores y la cofia o escafandra.

7. Ingresar a la zona sucia y dirigirse a la unidad de producción pecuaria (UP).

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8. Se deben registrar las observaciones y los hallazgos en el SIVE 02 y en el SINEXE. Cada caso es diferente y

en este punto es muy importante el criterio y la experiencia del investigador:

I. Solicitar los registros y parámetros productivos, identificando la mortalidad, abortos, decremento de

la producción o de la conversión alimenticia, calendarios de vacunación, ingreso de animales, etc.

II. Elaborar el inventario de animales existentes y susceptibles en la UP. Se deberá obtener información

sobre movilizaciones recientes (ingreso y ventas o salidas de animales).

III. Observar el entorno y el comportamiento de los animales.

- Del entorno revisar si hay manchas de diarrea o vómito en las paredes o en el piso.

- En el comportamiento de los animales, observar si hay hacinamiento, animales aislados, animales

postrados, animales que denoten dolor, muertos, enfermos, otras especies animales, etc.

- Indicios de diarrea en los animales (manchas perianales de excremento líquido).

- Si los animales presentan signos de enfermedad se deberá:

a) Realizar el examen físico y tomar las constantes fisiológicas de los animales enfermos.

b) Obtener de animales enfermos muestras de sangre completa, raspado de tonsilas, hisopos nasales. De otros animales aparentemente sanos, se deberán muestrear al menos 30 animales, de los cuales deberán obtener 15 muestras de sangre completa, 15 sueros sanguíneos y 30 hisopos nasales de los mismos animales; en caso de no contar con suficientes animales para completar las 30 muestras, se deberá muestrear la totalidad de los cerdos existentes.

c) Deberá identificar con un sistema de marcaje duradero, de manera individual a los animales muestreados.

d) Se debe considerar el sacrificar de manera humanitaria algunos animales enfermos y tomar

muestras de órganos, teniendo en cuenta que si el animal presenta signos clínicos,

posiblemente presente viremia y se tiene mayor probabilidad de aislar el virus en sangre y en

órganos.

Si los animales están clínicamente sanos, podrían ser portadores asintomáticos o padecer la enfermedad crónica, además de no presentar viremia, por lo que probablemente habría más posibilidades de encontrar anticuerpos en suero o evidencia del ARN viral mediante hisopos nasales o raspado de tonsilas.

IV. Revisar las medidas de bioseguridad y buenas prácticas pecuarias en la UP, mediante el formato

diseñado con este fin. (Pág. 36)

V. Identificar las UP, traspatios, rastros y UMA`s (con explotación de jabalíes), aledaños a la unidad de

producción bajo sospecha, dentro de un rango de 3 a 10 Km y sus antecedentes sanitarios.

9. Colocar las muestras debidamente identificadas dentro de la hielera (empaque primario) y asegurar el

contacto con los refrigerantes.

10. Una vez que están todas las muestras debidamente identificadas en la hielera, introducir el formato para

el laboratorio dentro de una bolsa de plástico y adherirlo en la cara interna de la tapa. Finalmente, sellar

la hielera.

11. Lavar el material utilizado en una toma de agua o cubeta para eliminar la materia orgánica dentro de la

misma UP. Asimismo, si solamente utilizó botas de hule sin cubre botas cepíllelas con agua y jabón.

12. Eliminar todos los objetos punzocortantes utilizados en su depósito correspondiente.

13. Salir del área de producción o de la UP y dirigirse a la zona de transición.

14. Cepillar en seco el equipo de protección en la zona sucia para retirar la materia orgánica.

15. Asperjar desinfectante encima del overol, guantes, botas, material, el equipo y la hielera.

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16. Retirar toda la cinta.

17. Quitarse el primer par de cubre botas y desecharlos en la bolsa de basura.

18. Desechar el primer juego de guantes externos, tomándolos de la orilla y posteriormente jalándolos hacia el frente exponiendo la cara interna de los guantes.

19. En la zona de transición, introducir las muestras en la caja del segundo empaque (caja para envío) y cerrarla.

20. Despojarse del cubrebocas y los lentes protectores. Depositarlos los guantes en la bolsa de basura y los lentes protectores en la cubeta con desinfectante.

21. Quitar el segundo par de guantes, tomándolos de la orilla y posteriormente jalándolos hacia el frente exponiendo la cara interna de los guantes para depositarlos en la bolsa de basura.

22. Desabrochar el overol con cuidado de manipular solamente el cierre.

23. Introducir las manos dentro de la cofia o gorra volteándolas de tal manera que la parte externa quede

volteada hacia adentro y depositar en la bolsa de basura.

24. Quitarse el overol

25. Introducir la mano en el gorro o en el cuello del overol según sea el caso, y deslizar la mano entre el

overol y el cuerpo para poder retirarlo, enrollándolo hacia afuera hasta llegar a los pies.

26. Debido a que sus manos sólo pueden manipular la cara interna del overol y de los cubrebotas, siga

deslizando sus manos por sus pantorrillas por dentro del overol hasta llegar a los cubrebotas y separe las

manos para que pude sacar un pie y colocarlo en la zona limpia.

27. Inclinarse e introducir sus manos en la otra pierna separando el overol y el cubrebotas para que pueda

sacar el otro pie.

28. Deseche el overol en la bolsa de basura.

24. Limpiar y desinfectar zapatos y vehículos, asperjándolos con desinfectante.

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29. En caso de ruptura del cubrebotas, lavar las botas con agua y jabón y rocíe con desinfectante.

30. Si solamente utilizó botas sin cubrebotas, quítese primero una bota y ponga el pie en la zona limpia y

posteriormente la otra bota pasando el otro pie a la zona limpia, sin tocar el piso de la zona de transición

con el pie y finalmente asperje las botas.

31. . Destrucción de la bolsa de basura y el material de desecho preferentemente mediante incineración en la granja.

32. Asperjar las llantas del vehículo y los zapatos antes de subirse a la cabina del vehículo.

33. Comunicarse con personal del laboratorio para informar sobre el envío de las muestras y proporcionar el número de guía una vez hecho el envío.

34. Llenar la lista de verificación para las actividades de investigación y seguimiento epidemiológico de un caso sospechoso de FPC (Pág. 29), conforme a los avances de la investigación.

35. Posteriormente, conformar un expediente técnico, que evidencie la presencia o ausencia de la infección viral desde el punto de vista técnico, científico y epidemiológico, conforme al formato SIVE 03 y a los lineamientos para la integración de un expediente técnico para cierre de focos (Pág. 29), entre otros.

36. Entregar el expediente técnico a la Dirección de Epidemiología y Análisis de Riesgo (DEAR).

37. La DEAR deberá realizar un análisis e interpretación epidemiológica de los resultados obtenidos en campo y de las pruebas de laboratorio, considerando la sensibilidad y especificidad de cada una de las pruebas utilizadas, parámetros de producción, mortalidad, densidad poblacional, canales de comercialización e indicadores epidemiológicos obtenidos a partir de la información generada durante la investigación o seguimiento epidemiológico, así como la presencia de otras enfermedades diferenciales de FPC existentes en la región o en la piara, entre otras.

38. La DEAR emitirá el dictamen técnico final.

En el caso de confirmación de un caso positivo a fiebre porcina clásica, se implementarán inmediatamente las medidas contraepidémicas y de contención para erradicar el foco o brote. Previo análisis de riesgo, se podrá autorizar la vacunación focal y en su caso perifocal*, mientras se concluye la investigación y seguimiento epidemiológico, así como la aplicación de medidas contraepidémicas en la unidad de producción afectada (sacrificio, disposición sanitaria de cadáveres y desechos; lavado, limpieza y desinfección de instalaciones; centinelización, etc).

Cabe destacar, que posteriormente los animales vacunados deberán ser sacrificados, dentro de los seis meses postvacunación. *En anillo de fuera hacia dentro.

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PROCEDIMIENTO PARA LA INVESTIGACION Y SEGUIMIENTO EPIDEMIOLOGICO DE FPC

Cuando durante la vigilancia epidemiológica activa o pasiva, se obtienen resultados positivos a las pruebas en serie de ELISA, inmunoperoxidasa y virus seroneutralización y/o a RT-PCR, se debe llevar a cabo la investigación epidemiológica de la siguiente manera:

1. Se inicia un remuestreo en la unidad de producción bajo sospecha, en la cual deben tomarse las siguientes muestras: a) De los animales reactores a las pruebas serológicas seriadas (ELISA, inmunoperoxidasa y

virus seroneutralización), deberán tomarse raspados de las tonsilas con cucharilla, para procesarlas por RT-PCR, y en su caso aislamiento viral y secuenciación genética.

b) Del resto de la piara, deberá tomar muestras de al menos 30 animales previamente muestreados e identificados, de las cuales 30 muestras deberán corresponder a hisopos nasales y 30 sueros sanguíneos (se podrán tomar muestras de órganos de animales muertos). Si en la UP existen menos de 30 cerdos, se deberá muestrear a la totalidad de la piara.

Tipo de muestras No. muestras

Órganos Animales muertos

Hisopos nasales 30

Sueros sanguíneos 30

TOTAL 60

c) Las muestras de sangre completa, raspado e hisopos nasales, deberán ser procesadas por RT-PCR y en su caso aislamiento viral y secuenciación genética.

d) En las muestras de sueros sanguíneos, se realizarán las pruebas serológicas seriadas

(ELISA, inmunoperoxidasa y virus seroneutralización). e) Los cerdos que resulten positivos a las 3 pruebas serológicas, deberán ser mantenidos

bajo observación de 15 a 21 días posteriores a los resultados para tomar nuevamente muestras de sueros sanguíneos de los animales reactores, con la finalidad de observar el comportamiento de los anticuerpos.

f) En caso de que alguno de los reactores sea hembra y esté gestante o haya tenido crías,

se deberán muestrear los lechones una vez que tengan ≥45 a 60 días de edad, tomando sueros sanguíneos, raspado de tonsilas e hisopos nasales.

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2. Si en los resultados del remuestreo, se mantienen los resultados positivos a serología y

negativos a RT-PCR o aislamiento viral, se deberá descartar el caso presuntivo positivo de la siguiente manera: a) Si obtiene nuevamente resultados positivos a las 3 pruebas de serología y/o a las

pruebas moleculares o en caso de que se realice un aislamiento viral pero la secuenciación genética no coincide con el virus de la fiebre porcina clásica, se deberá continuar con el protocolo de investigación en unidades de aislamiento y para ello se adquirirán los animales reactores y se continuará con la investigación epidemiológica en el laboratorio, conforme al protocolo establecido.

b) Si el RT-PCR es positivo pero el aislamiento viral es negativo, se puede descartar el caso, siempre y cuando el análisis y la investigación epidemiológica respalden científicamente esta decisión.

c) Si el RT-PCR, el aislamiento viral y la secuenciación son positivos, se considera como caso

confirmado de FPC y se implementan las medidas contraepidémicas necesarias. Cada caso es diferente, lo que implica que pueden presentarse otros escenarios, motivo por el cual se deberá tratar cada caso de manera especial e individual, sin embargo para el cierre de casos presuntivos positivos, se deberá considerar entre otros aspectos epidemiológicos, los siguientes:

- Antecedentes vacunales y sanitarios de los reactores y de la piara. - Existencia de otras enfermedades diferenciales a FPC en la piara o reactor. - Los resultados positivos a pruebas serológicas seriadas en reactores pero resultados

negativos a RT-PCR y aislamiento viral en los mismos animales. - Los resultados negativos a las pruebas serológicas en serie, así como a RT-PCR y aislamiento

viral en el resto de la piara o de los animales muestreados y remuestreados.

3. Conformar un expediente técnico que incluya entre otros, los antecedentes, muestreos, resultados obtenidos, medidas sanitarias aplicadas, seguimiento epidemiológico, hipótesis, conclusiones y recomendaciones.

4. La Dirección de Epidemiología y Análisis de Riesgo, llevará a cabo un análisis epidemiológico de los resultados obtenidos a las pruebas de serología, virología y moleculares, así como los resultados obtenidos en la investigación epidemiológica.

5. La Dirección de Epidemiología y Análisis de Riesgo, con base en lo anterior, emitirá un

dictamen técnico.

17


+

25

RESULTADOS POSITIVOS A ELISA, IP Y VSN O RT-PCR

ANIMALES REACTORES REMUESTREO: RASPADO DE TONSILAS E HISOPOS NASALES

+ (-)

RT-PCR

AV

DEL RESTO DE LA PIARA MUESTREAR A 30 CERDOS PREVIAMENTE MUESTREADOS E IDENTIFICADOS O AL

100%DE LOS ANIMALES EXISTENTES EN LA UP

30 HISOPOS NASALES O RASPADO DE TONSILAS

ELISA

VSN

(-)

(-)

(-)

+ (-)


+

(-)

MANTENER BAJO OBSERVACION A LOS

ANIMALES REACTORES

INVESTIGACION O SEGUIMIENTO EPIDEMIOLOGICO

15 A 21 DIAS POSTERIORES TOMA MUESTRAS DE SUERO SANGUINEO

SI LOS REACTORES SON HEMBRAS Y TUVIERON CRIAS, LOS LECHONES SE

MUESTREAN DE 45-60 DIAS DE EDAD (*)

LA DEAR REALIZA UN ANALISIS EPIDEMIOLOGICO DE LOS RESULTADOS OBTENIDOS A SEROLOGIA,

VIROLOGIA O PRUEBAS MOLECULARES

EMISION DE DICTAMEN TECNICO

IP

RESULTADOS DE LABORATORIO Y DE

CAMPO

CONFORMACION DEL EXPEDIENTE TECNICO

DIAGRAMA DE FLUJO PARA LA INVESTIGACION O SEGUIMIENTO EPIDEMIOLOGICO

(*)

(*)

PROTOCOLO DE INVESTIGACION EN UNIDADES

DE AISLAMIENTO (*)

+ CASO CONFIRMADO

+

30 SUEROS SANGUINEOS

(*) ADQUISICION DE REACTORES E INVESTIGACION EPIDEMIOLOGICA EN

UNIDADES DE AISLAMIENTO MEDIANTE MUESTREO SEROLOGICO, VIROLOGICO Y TECNICAS MOLECULARES, CONFORME AL PROTOCOLO ESTABLECIDO.

LEVANTAMIENTO DE CUARENTENA CONFORME A RESULTADOS COMPLEMENTARIOS

(-) RESULTADO NEGATIVO A LA PRUEBA

(+) RESULTADO POSITIVO A LA PRUEBA +

CASOS SOSPECHOSO, CUARENTENA PRECAUTORIA COMPLEMENTARIOS

+ CASO PRESUNTIVO POSITIVO, CUARENTENA DEFINITIVA +


18


SUERO SANGUINEO SANGRE COMPLETA, HISOPO NASAL Y RASPADO DE TONSILAS

+

AV

VSN

(-)

(-)*


TOMAR RASPADO DE TONSILAS E HISOPO NASAL DE LOS CERDOS

POSITIVOS A VSN

IP

ELISA RT-PCR

DIAGRAMA DE FLUJO PARA EL SEGUIMIENTO DE UN CASO PRESUNTIVO POSITIVO CASO PRESUNTIVO POSITIVO: Un caso sospechoso con resultado positivo repetido a RT-PCR convencional/ tiempo real o con secuenciación genómica posterior a RT-PCR convencional de una muestra de cerdos con o sin signos clínicos y/o evidencia epidemiológica de la enfermedad; o Un cerdo o piara con información epidemiológica y/o evidencia clínica compatible con la enfermedad y con resultados POSITIVOS a:

- RT-PCR convencional o tiempo real; o - Prueba de ELISA, inmunoperoxidasa y virus seroneutralización positivas; o - Prueba de inmunohistoquímica (cuando proceda).

+

(-)

+

+

(-)*

REMUESTREO DE 30 CERDOS O EL 100% DE LOS ANIMALES EXISTENTES EN LA UP SI

SON MENOS DE 30

RT-PCR

+

(-)*

AV

+

+

(-)*


30 SUEROS SANGUINEOS

30 HISOPOS NASALES

(-)*

SOSPECHA CLINICA VIGILANCIA EPIDEMIOLOGICA

ACTIVA

(-)*

ELISA

IP

VSN

+

+

+ (*)

+

(-)

(-)

(-)

(-)

(*)

(-) NEGATIVO A LA PRUEBA CASO PRESUNTIVO POSITIVO CASO CONFIRMADO

(-)* REALIZAR UN ANALISIS E INVESTIGACION EPIDEMIOLOGICA SUSTENTABLE (*) ADQUISICION DE REACTORES E INVESTIGACION EPIDEMIOLOGICA EN UNIDADES DE AISLAMIENTO SEGUN LA COMPLEJIDAD DEL CASO EPIDEMILOGICO.

+ CASO CONFIRMADO

+

+ CASO CONFIRMADO

+

+

MUESTRAS A OBTENER DEL CERDO REACTOR

19


10

RESULTADO POSITIVO

RESULTADO NEGATIVO

MEJORAMIENTO Y REFORZAMIENTO DE LA BIOSEGURIDAD

REVISION Y VALIDACION OFICIAL DE MEDIDAS MÍNIMAS BIOSEGURIDAD

LIBERACION DE LA CUARENTENA

VACUNACION DE LOS CERDOS Y POBLACIÓN EN RIESGO (Cuando proceda)

MEJORAMIENTO DE LA BIOSEGURIDAD EN UP ALEDAÑAS A

LA ZONA FOCAL

ELIMINACION DE PIARAS VACUNADAS

RESULTADOS NEGATIVOS

RESULTADOS POSITIVOS

MUESTREO DE CENTINELAS

ZONA FOCAL ZONA PERIFOCAL

CASO CONFIRMADO

(La UP donde están localizados los casos) (Zona que circunscribe perimetralmente al foco).

Liberación de la cuarentena

(repoblación)

Sacrificio humanitario y disposición sanitaria de los cadáveres (incineración, enterramiento o rendimiento)

Vacío sanitario de 45 días (3 periodos de incubación) y centinelización de al menos 21 días. Muestreo serológico y virológico en los

cerdos centinelas*

Resultados (+) Resultados (-)

Mejoramiento y reforzamiento de la bioseguridad y buenas prácticas pecuarias

Lavado, limpieza y desinfección de instalaciones

Evaluación oficial de medidas mínimas de bioseguridad y buenas prácticas

pecuarias, según corresponda.

DIAGRAMA DE FLUJO PARA LA APLICACION DE MEDIDAS CONTRAEPIDEMICAS EN CASO DE BROTE

Establecer la zona perifocal considerando la población susceptible y UP aledañas, así como rastros y UMA cercanas a la UP afectada dentro de un radio de 3 a 10 Km, dependiendo de las características geográficas, densidad poblacional y canales de comercialización, entre otros.

Evaluación y reforzamiento de la bioseguridad y BPP en las UP aledañas a la zona focal.

Muestreo epidemiológico en la zona perifocal (pruebas serológicas y virológicas):

a) UP tecnificadas: Al menos 30 muestras de suero y 30 hisopos nasales y/o sangre completa. b) UP traspatio: Al menos 5 muestras o el 100% de los cerdos, si son menos de 5. c) UMA: Obtener muestras de animales cazados, enfermos o muertos.

Resultados (-) Resultados (+)

Análisis epidemiológico y de riesgo

Dictamen técnico de la DEAR

Vacunación de los cerdos y población susceptible o bajo riesgo**

Eliminación de piaras vacunadas en un periodo no mayor a 6 meses bajo supervisión oficial.*

*Conforme al protocolo establecido **Conforme al análisis de riesgo

Cuarentena Definitiva

Cierre oficial del brote

20


Agujas vacutainer

Portavacutainer, adaptador o holder

Tubos de tipo vacutainer sin anticoagulante

Tubos de tipo vacutainer con EDTA (tapa

morada)

Jeringas desechables de 10 ml con aguja

Pinzas de disección

Pinzas de disección con dientes de ratón

Tijeras de disección punta roma (Mayo)

Estetoscopio

Termómetro

Etiquetas auto-adheribles

Cuchillo para necropsias

Chaira

Mango de bisturí y hojas para bisturí

Desinfectante a concentración indicada por

el fabricante

Hielera de unicel

Bolsas con gel refrigerante (congeladas)

Caja para el envío de la hielera

Cubeta

Detergente

Aspersor con solución desinfectante

Equipo para sacrificio humanitario (pistola

de émbolo, pinzas para electro ejecución,

etc.)

Lentes protectores

Abrebocas para cerdo

Botas de hule

Para film o cinta de aislar

Cinta gris para sellar poliductos

RELACION DE MATERIAL Y EQUIPO PARA LA VIGILANCIA E INVESTIGACIÓN EPIDEMIOLOGICA

Pluma

Formato de envío de Muestras

Formato SIVE 02 (cuando esté realizando

investigación epidemiológica de un caso

sospechoso a FPC)

Formato de evaluación de medidas de

bioseguridad

Tabla con clip para apuntes

Marcador indeleble punto fino, pluma o lápiz

Marcador para ganado

Lazatrompas

Guantes de carnaza

Guantes para cirujano de látex o nitrilo.

Overoles desechables

Overol de Tela

Cubre botas de plástico desechables.

Cubrebocas

Guantes de hule grueso

Arete oficial para marcaje de cerdos muestreados

Tapones para los oídos

Cinta adhesiva para el sellado de las cajas y

overol

Bolsas de hule con cierre hermético

Cepillo para manos

Cepillo de plástico mango largo

Bolsas grandes para basura

Ligas

Costotomo, pinzas de poda o hacha

Cuchara de mango largo

Hisopos Dacron y tubos con medio DMEM o SSF

Cinturón ancho de cuero o faja

Cuerda de plástico

20


TIPO DE MUESTRAS A OBTENER DURANTE LA VIGILANCIA EPIDEMIOLOGICA ACTIVA Y PASIVA

VIGILANCIA ACTIVA (VA)

MUESTRAS UP TECNIFICADAS Y TRASPATIOS

Sueros sanguíneos en un tubo sin anticoagulante (tapa roja), y

Sangre Completa en un tubo con EDTA (tapa morada) o Heparina (tapa verde) y/o

Órganos en refrigeración de la mortalidad del día y de preferencia de diferentes animales:

Tonsilas palatinas y nódulos linfáticos mandibulares y mesentéricos (completos)

Riñón y bazo (corte de 2 cm3)

Íleon distal (3 cm) Hisopos nasales en un tubo con medio DMEM con antibiótico o tubo con SSF Raspado de Tonsilas en un tubo estéril con 3 ml de medio DMEM con antibiótico o tubo con SSF MUESTRAS RASTROS Órganos en refrigeración de diferentes animales:

Tonsilas palatinas y nódulo linfático (maxilar, submandibular y mesentéricos)

Riñón, Bazo y médula ósea (corte no menor de 2 cm3)

Íleon distal (3 cm)

MUESTRAS UMA`s

Sueros sanguíneos en un tubo sin anticoagulante (tapa roja) y/o

Órganos de animales cazados o muertos

Tonsilas palatinas y nódulos linfáticos (maxilar, submandibular y mesentéricos)

Riñón, bazo y médula ósea (corte no menor de 2 cm3)

Íleon distal (3 cm)

ANIMALES SANOS Sueros sanguíneos en un tubo sin anticoagulante (tapa roja).

ANIMALES ENFERMOS O SANOS

Sangre completa en un tubo con EDTA (tapa morada) o Heparina (tapa verde) y Órganos en refrigeración de la mortalidad del día y de preferencia de diferentes animales.

Tonsilas palatinas y nódulos linfáticos mandibulares y mesentéricos (completos)

Riñón y bazo (corte de 2 cm3)

Íleon distal (3 cm) Hisopos nasales en un tubo con medio DMEM con antibiótico o tubo con SSF Raspado de Tonsilas en un tubo estéril con 3 ml de medio DMEM con antibiótico o tubo con SSF

VIGILANCIA PASIVA (VP)

21


TECNICA DE NECROPSIA

NECROPSIA EN ADULTOS

1. Inspeccione la parte externa del cadáver. 2. Colóquelo en posición decúbito-lateral (sobre un costado). 3. Elimine la extremidad anterior y posterior. 4. Corte sobre la línea alba desde el cartílago xifoides del esternón hasta la sínfisis isquio-púbica. 5. Haga un corte siguiendo la curva que dibuja la última costilla en dirección de las vértebras torácicas y otro

corte desde el pubis en dirección a las vértebras lumbo-sacras. 6. Posteriormente corte las costillas en la unión costo-esternal. 7. Exponga la cavidad torácica y continuar el corte hasta el pubis exponiendo cavidad abdominal.

1. Inspeccione la parte externa del cadáver. 2. Colóquelo en posición decúbito-dorsal (boca arriba). 3. Corte las articulaciones coxofemoral y unión escapular. 4. Realice dos cortes siguiendo la proyección de la mandíbula (cortar piel y subcutáneo). 5. Continúe con la incisión hasta la entrada del tórax. 6. Seccione la unión costocondral. 7. Descubra la cavidad torácica y continuar el corte hasta el pubis exponiendo cavidad abdominal.

NECROPSIA EN LECHONES

Nota: Las necropsias deberán preferentemente realizarse en lugares que se puedan lavar, desinfectar y donde el piso no permita filtraciones, como el cemento o poner una bolsa de plástico debajo del cadáver.

21


PROCEDIMIENTO PARA LA OBTENCION DE MUESTRAS

1. Retirar vísceras y encontrar el riñón en la pared dorsal de la cavidad abdominal.

2. Retirar la cápsula cortical del riñón para una mejor inspección y proceder a cortarlo por la línea media.

RIÑON

EXTRACCION DE RIÑÓN RIÑON LESIONADO (HUEVO DE PAVO)

TONSILAS PALATINAS TONSILAS PALATINAS

1. Separar la lengua de su inserción con la mandíbula. 2. Cortar el cartílago hioides y separar la musculatura de cada lado de la lengua. 3. Disecar laringe tráquea y esófago hasta la entrada del tórax y retraerlas para exponer las tonsilas

palatinas. 4. Tomar el nódulo linfático y parotídeo (no confundir con glándulas salivales).

ILEON DISTAL

Para obtener el íleon distal, localizar el ciego, retraer los intestinos y cortar la porción terminal del intestino delgado en la unión con el ciego.

TONSILAS PALATINAS TONSILAS PALATINAS

ILEON DISTAL

22


OBTENCION DE MUESTRAS DE SANGRE COMPLETA

OBTENCION DE SUERO SANGUINEO

Identificar al cerdo o lechón con arete y tomar la muestra de vena yugular preferentemente y colectar de 5-10 ml de sangre en un tubo sin anticoagulante (tapa roja), identificar adecuadamente el frasco asegurando un buen cerrado del tubo, si el tapón del tubo es de presión, selle por encima con cinta de aislar o Parafilm ® para evitar que se salga el tapón.

Inclinar el tubo hasta que se forme el coágulo de preferencia en la sombra y evitar agitar el tubo una vez coagulada la sangre. De ser posible, decantar con cuidado el suero en un vial limpio una vez formado el coágulo.

Se sugiere tomar una porción del órgano, no menor de 2cm, considerando áreas con y sin lesiones.

BAZO

BAZO CON INFARTOS MULTIPLES

1. Obtener entre 5 a 10 ml de sangre preferentemente de la vena yugular. 2. Utilizar tubos con EDTA (tubo con tapa morada) 3. Colocar el tubo entre el dedo índice y el pulgar para poder realizar movimientos lentos de la muñeca en

forma de infinito (∞) con la finalidad de homogenizar la sangre. 4. Rotular el tubo con plumón permanente, indicando el número de muestra, nombre de la granja, fecha y

hora de la toma de muestra. 5. Sellar el tapón con cinta de aislar o Parafilm ®, para evitar que se destape. 6. Previo a la refrigeración, esperar a que la muestra alcance la temperatura ambiente.

Si obtiene la muestra con jeringa, es importante recordar que al vaciar la sangre al tubo, debe quitar la aguja y recargar la jeringa en la pared interna del tubo para que la sangre se deslice con suavidad para evitar la hemólisis.

7. Se deberá eliminar la jeringa y la aguja en contenedores especiales.

TOMA DE SANGRE COLOCACION DEL TUBO

23


RASPADO DE TONSILAS

1. Mantener la boca abierta del cerdo y con un espéculo colocar la parte cóncava de la cuchara estéril detrás del paladar duro en la parte superior de la garganta; el cual puede reconocerse por la superficie con pequeñas depresiones. (Una cuchara con asa larga facilita la colección de la muestra).

2. Raspar suavemente la superficie de las tonsilas con la parte cóncava de la cuchara, con un movimiento de atrás hacia adelante varias veces para ocasionar la excreción de exudado mucoso de las criptas.

3. En el tercer o cuarto pase de la cuchara sobre la tonsila, la parte cóncava de la cuchara colectará una cantidad suficiente de muestra (1 a 2ml). Es importante no raspar muy fuerte, debido a que no es deseable obtener trazas de sangre en la muestra.

4. Retirar la cuchara de la boca teniendo cuidado de evitar arrastrar la cuchara llena de muestra a lo largo del paladar duro.

5. Remover la muestra de la cuchara utilizando un hisopo de Dacron y colocar la muestra en un tubo estéril que contenga 3.0 ml de medio de Eagles modificado por Dubelcco (DMEM) con antibiótico o solución salina fisiológica, y remover el medio para que la muestra se desprenda del hisopo y se quede en el medio.

HISOPADO NASAL

1. Contener el cerdo con la cabeza posicionada hacia arriba para facilitar el acceso a la cavidad nasal.

2. Introducir un hisopo Dacron estéril en la cavidad nasal y suavemente raspar la superficie de la mucosa nasal con movimientos circulares en dirección de atrás hacia adelante para cubrir lo más posible la superficie de la mucosa. Evite tocar la piel mientras ingresa a la cavidad.

3. El hisopo colectará secreciones mucosas y superficie del epitelio nasal. Se debe raspar suavemente debido a que no es deseable tener trazas de sangre en la muestra.

4. Retirar el hisopo Dacron de uno de los orificios nasales y repetir el mismo procedimiento en el otro orificio nasal.

6. Introducir el hisopo Dacron con la muestra dentro de un tubo que contenga 3.0 ml de medio de Eagles modificado por Dubelcco (DMEM) con antibiótico o solución salina fisiológica, y remover el medio para que la muestra se desprenda del hisopo y se quede en el medio.

RASPADO DE TONSILAS PALATINAS HISOPADO NASAL

24


ENVIO DE MUESTRAS AL LABORATORIO DE DIAGNOSTICO

1.- Envasar 1 ml de la muestra de suero en viales de plástico estériles de 1.8 ml. 2.- Identificar la muestra con el número de caso y el número del arete del animal del que se tomó la muestra. 3.- Embalar la muestra bajo el criterio de triple empaque. 4. - Enviar por mensajería y proporcionar el número de guía al laboratorio, se especificará en el empaque que corresponde a muestras biológicas que deben manejarse con precaución.

El contenedor primario de la muestra debe estar identificado con una etiqueta que contenga:

1. Nombre del laboratorio, dirección y teléfono.

2. Número de caso (incluir el número de arete).

3. Cantidad de muestra enviada al laboratorio.

4. Identificación de la muestra.

5. Cantidad de muestras enviadas al laboratorio.

FORMA DE EMPAQUE

1. El embalaje debe ser procesado bajo el término de doble (hielera de unicel dentro de una caja

empaque y contener:

a) Copia de la historia clínica del caso.

b) Especificaciones sobre tipo y cantidad de muestras enviadas al laboratorio. Datos de quién tomó la

muestra, hora y fecha de la toma de muestra.

c) Especificar en el embalaje que es “Material biológico manéjese con precaución , y en caso de que se

envíe al LBS3 también deberá indicar la leyenda “Muestra para confirmación” .

2. Enviar con una empresa que garantice su entrega en el LBS3 en un periodo máximo de 24-48 horas.

EMPAQUE DE VIALES O TUBOS CON HISOPOS, SUERO SANGUÍNEO O SANGRE COMPLETA

EMPAQUE DE LAS MUESTRAS DE ORGANOS

6. Código de barras (cuando aplique).

7. Datos de quien tomó la muestra, dirección y

teléfono

8. Hora y fecha de la toma de muestra.

9. Datos del remitente.

10. Otros datos.

25


Actividad Si No Observaciones

1. Notificación inmediata al SIVE sobre la sospecha del caso (Formato SIVE 01)

2. La Delegación Estatal de la SAGARPA o la DGSA establece cuarentena precautoria (Resultados positivos a ELISA e IP o por sospecha clínica)

3. El Coordinador Regional de la CPA y/o de la DEAR, inicia la investigación epidemiológica

I. Visita a la granja, predio de traspatio o UMA

II. Registro de las coordenadas geográficas de la UP

III. Delimitación de zona limpia, de transición y sucia

IV. Entrevista con el productor o responsable

V. Preparación del material para ingresar a la UP

VI. Utilización y aplicación correcta del equipo de protección personal

VII. Toma de muestras

VIII. Identificación permanente e individual de cada cerdo muestreado

IX. Identificación de las muestras enviadas que permita la trazabilidad del animal muestreado

X. Llenado del formato SIVE 02

XI. Registro de las actividades sanitarias realizadas

XII. Revisión de las medidas de bioseguridad y buenas prácticas pecuarias en la UP conforme el formato para evaluación de medidas de bioseguridad y buenas prácticas en la UP (Pág. 36)

4. Envío de muestras al laboratorio

5. Notificación al laboratorio sobre el envío de muestras

6. Verificación de la recepción de las muestras en el laboratorio

7. Emisión de resultados de laboratorio al SIVE y al personal de campo

8. Confirmación de resultados de laboratorio en serie positivos a ELISA, IP y VSN; o RT-PCR (si su respuesta es afirmativa pase al punto 9, si es negativa pase al punto 10)

9. Seguimiento epidemiológico por resultados positivos a serología o pruebas moleculares conforme al diagrama de flujo de investigación y seguimiento de caso sospechoso a FPC

10. Formato SIVE 03 debidamente requisitado y documentado

11. Conformación del expediente técnico acorde con los lineamientos para la integración de un expediente técnico para el seguimiento y cierre de focos (Pág. 30)

12. Análisis epidemiológico del seguimiento y cierre del caso por parte de personal de campo y de la DEAR

13. Emisión del dictamen técnico de la DEAR

NO. CASO DE INVESTIGACIÓN:_________________ FECHA: _______________

_________________________________________________

LISTA DE VERIFICACION PARA LA INVESTIGACION Y SEGUIMIENTO EPIDEMIOLOGICO DE UN CASO SOSPECHOSO DE FPC

DD / MM / AA

NOMBRE, FIRMA Y CARGO DEL RESPONSABLE DE LA INVESTIGACIÓN

26


Actividades Si No Observaciones

1. Notificación inmediata al SIVE y a la CPA de los resultados positivos al aislamiento viral y secuenciación genética del virus de FPC

2. La Delegación Estatal de la SAGARPA o la DGSA establece la cuarentena definitiva

3. Aplicación de medidas contraepidémicas

3.1 Zona Focal

I. Cuarentena definitiva

II. Sacrificio humanitario y disposición sanitaria de los cadáveres y despojos o desechos

III. Lavado, limpieza y desinfección de instalaciones y equipo

IV. Mejoramiento y reforzamiento de la bioseguridad

V. Revisión y validación oficial de medidas mínimas de bioseguridad y buenas prácticas pecuarias, según corresponda.

VI. Vacío sanitario de al menos 45 días

VII. Centinelización de al menos 21 días con animales sanos y negativos a FPC mediante pruebas serológicas y virológicas.

VIII. Muestreo serológico y virológico en cerdos centinelas conforme al protocolo establecido

IX. Liberación de cuarentena (Con resultados negativos a serología y virología en animales centinelas y aplicación de las medidas de bioseguridad y BPP reforzadas)

3.2. Zona Perifocal

I. Establecer la zona perifocal de 3 a 10 Km (Dependiendo de factores de riesgo identificados)

II. Evaluación y reforzamiento de las medidas de bioseguridad y buenas prácticas pecuarias en las UP aledañas a la zona focal.

III. Muestreo en la zona perifocal (Ver el diagrama de flujo de aplicación de medidas contraepidémicas pág. 20)

UP tecnificadas: Obtención de al menos 30 muestras de suero sanguíneo y 30 hisopos nasales y en las UP tecnificadas

UP de traspatio: al menos 5 muestras o si son menos de 5 animales se deberá muestrear el 100% de los cerdos existentes

UMA: Obtener muestras de órganos de animales cazados, enfermos o muertos

IV. Si se identifica un nuevo foco proceder conforme al diagrama de vigilancia epidemiológica pasiva (pág. 10)

V. Análisis epidemiológico y de riesgo de la información generada

VI. Vacunación de los cerdos susceptibles o bajo riesgo conforme al análisis de riesgo

VII. Eliminación de piaras vacunadas en un plazo máximo de 6 meses conforme al protocolo establecido.

4. Formato SIVE 03 debidamente requisitado y documentado

5. Conformación del expediente técnico conforme a los lineamientos para este fin (pág. 30)

6. Análisis epidemiológico del brote identificado por parte de la DEAR.

7. Emisión del dictamen técnico de la DEAR del cierre del brote.

NO. CASO DE INVESTIGACIÓN: _______________ FECHA: __________ ____________________________________

LISTA DE VERIFICACION PARA UN CASO CONFIRMADO DE FPC

DD / MM / AA NOMBRE, FIRMA Y CARGO DEL RESPONSABLE

DE LA INVESTIGACIÓN

27


Toda la información debe entregarse en carpetas de 1 ½ pulgadas, y cada carpeta deberá contar con una portada y una costilla siguiendo el siguiente formato.

La carpeta deberá contener toda la información documental y técnica que sustente y todas las actividades realizadas en formato electrónico e impreso.

LINEAMIENTOS PARA LA INTEGRACION DE UN EXPEDIENTE TECNICO PARA CIERRE DE FOCOS DE FPC

NO. CASO DE INVESTIGACION: # Consecutivo-Mes-Año

Resumen del caso.

Diagrama de flujo de la secuencia de las actividades

realizadas y las fechas en las que se llevaron a

cabo.

Cronograma que indique las actividades realizadas

cada día desde la notificación del caso hasta el

cierre del mismo.

Listas de verificación de investigación

epidemiológica y de actividades contraepidémicas

debidamente requisitadas.

FORMATO SIVE 01.

Oficios mediante los cuales se solicita (n) el (los)

muestreo (s).

SIVE 02.

Historia clínica del SINEXE.

Formato para el envío de muestras para la vigilancia

epidemiológica de FPC.

Resultados de laboratorio.

Oficio de cuarentena precautoria y/o definitiva;

Acta de despoblación o sacrificio.

Resultados de cerdos centinelas.

Acta u oficio que indique el muestreo en la zona

perifocal.

Resultados de laboratorio del muestreo de la zona

perifocal.

Formato (s) o bitácora (s) de trabajo y protocolos

realizados de todas las muestras procesadas por

cualquier técnica de diagnóstico para FPC en el

laboratorio.

Lectura de las placas de ELISA IDEXX.

Registro y resultado los controles positivos y

negativos utilizados en todas las pruebas

diagnósticas, así como el control interno de

extracción de ARN.

Gráficas de los ciclos de amplificación del RT-PCR

Fotos de las placas de agarosa del RT-PCR

anidado convencional.

Formato para la inoculación en placas para el

aislamiento viral.

Informe del análisis epidemiológico

Oficio de levantamiento de cuarentena

Formato SIVE 03 con el respaldo documental

Dictamen técnico epidemiológico de la DEAR

28


1. PROPIETARIO

3. DOMICILIO :

No

6. DOMICILIO

No

CORREO ELECTRONICO:

II. DATOS DE LA UNIDAD DE PRODUCCION PECUARIA

11. DOMICILIO *

No

14. FORMA DE PRESENTACION

15. FECHA INICIO ENFER. 17. DIAGNOSTICO PRESUNTIVO: 18. CASOS EN HUMANOS: SI NO No.

PRINCIPALES SINTOMAS :

Día Mes Año

19. ENVIO DE MUESTRAS A LABORAT. 20. FECHA DE ENVIO 21. CONFIRMACION LABORATORIO 22. FECHA DE ENVIO

SI NO SI NO

Día Me

s

Año Día Me

s

Año

23. DATOS DEL LABORATORIO

NOMBRE

24. DOMICILIO LADA Y TEL :

Calle No. Colonia Municipio Estado CORREO ELECTRONICO:

III. DATOS DEL RECEPTOR DE LA NOTIFICACION OFICIAL

25. NOMBRE LADA Y TEL :

CORREO ELECTRONICO:

26. DEPENDENCIA

28. MEDIO UTILIZADO TELEFONO FAX OTRO MEDIO

Apellido paterno

DIAS

27. CARGO

16. DURACION

CUADRO

CLINICO:

Materno Nombre (s)

CRONICAAGUDASOBREAGUDA

Estado

* Adjuntar mapa indicando la ubicación de la explotación y cómo llegar a ella

12. CENSO AL MOMENTO DE LA NOTIFICACION 13 SIGNOS:

ESPECIES (S)POBLAC. TOTAL NO. ENFERMOS

JOVENES ADULTOS

9. TIPO DE UNIDAD : Tecnific. Traspatio 10. FIN ZOOTEC.:

NO. MUERTOS

ADULTOS

Calle Localidad/Colonia Deleg./Mpio.

JOVENES ADULTOS JOVENES

Estado

LADA Y TEL :7. OFICIAL PARTICULAR AUTORIZADO APROBADO

8. NOMBRE DE LA UNIDAD

Apellido paterno Materno Nombre (s)

5. MVZ ING. AGRON. TEC. PECUAR. OTRO

Calle Localidad/Colonia Deleg./Mpio.

Apellido paterno Materno Nombre (s)

Calle Localidad/Colonia Deleg./Mpio. Estado

4. RESPONSABLE DE LA NOTIFICACION

D I R E C C I O N G E N E R A L D E S A L U D A N I M A L

DIRECCION DE EPIDEMIOLOGIA Y ANALISIS DE RIESGO

FORMATO DE NOTIFICACION

S I V E 01 Especie D.D.R. Estado

I. DATOS DEL NOTIFICADOR

IDENTIFICACION

LADA Y TEL :

Día Mes Año

ENCARGADO OTRO

2.NOMBRE

29


30


31


32


Concepto Fecha No. Resultado Observaciones

5. Acta u oficio que indique el muestreo en la zona focal y perifocal

6. Resultados (-) de los muestreos en la zona focal y perifocal

OTROS DOCUMENTOS:

Revisó: _________________________

D I R E C C I O N G E N E R A L D E S A L U D A N I M A L DIRECCION DE EPIDEMIOLOGIA Y ANALISIS DE RIESGO

Lista de verificación de documentos para el cierre de focos de ____________

4. Acta de despoblación o sacrificio

Fecha:_________________

FORMATO DE CIERRE DE FOCO SIVE 03

1. Formato SIVE 01

2. Resultados de diagnóstico de laboratorio

3. Oficio de Cuarentena precautoría y/o definitiva

en el estado de ________________________

C.P.: _ ______ ____Estado: _________________________ Tel: __________________________________________

7. Formato SIVE 02

8. Oficio de levantamiento de cuarentena

Propietario: ___________ _______________________________ ________________________________________ Predio: ________________ ___________________________________ ___________________________________ Domicilio: ____________________________________________________________________________________

Coordenadas geográficas ________________________________________________________________________

6. Resultados de laboratorio negativos de los muestreos en la zonafocal y perifocal

33


SERVICIO NACIONAL DE SANIDAD INOCUIDAD Y CALIDAD AGROALIMENTARIA DIRECCIÓN GENERAL DE SALUD ANIMAL

FORMATO DE EVALUACIÓN DE LAS MEDIDAS DE BIOSEGURIDAD Y BUENAS PRÁCTICAS EN LA UP

FECHA: ____________________ ESTADO: _________________MUNICIPIO:______________________LOCALIDAD:__________________ NOMBRE DE LA GRANJA: ___________________________EMPRESA O PROPIETARIO: ________________ CROQUIS DE LA GRANJA: (Ubicación de la granja, distancia entre granjas, tipo de camino, ubicar vecindad u otras unidades de producción, distancia aproximada y vientos dominantes) ESPECIE: _______________FUNCIÓN ZOOTÉCNICA: ______________ INVENTARIO ACTUAL ______________ CAPACIDAD INSTALADA: ________________

INSTALACIONES SI NO N/A OBSERVACIONES

Cuenta con cerco perimetral que delimite y controle el acceso a la unidad de producción.

Los materiales del cerco perimetral y la puerta, así como su altura y construcción cumplen con la función de evitar el ingreso.

Prohíbe la entrada de personas ajenas a la unidad de producción tecnificada.

Indica la prohibición de ingreso mediante letreros visibles.

Cuenta con bitácoras o registro de ingreso de personas y vehículos.

Las instalaciones protegen a las cerdos de las condiciones ambientales externas y depredadores

La distancia entre casetas es como mínimo de 20 m.

Los pisos son de un material sólido y firme que permite la completa remoción de la cerdaza

Las paredes y techos son de un material firme y aislante.

Las puertas permiten eficientemente el retiro de cerdos finalizados y/o cerdaza.

Las casetas se orientan de oriente a poniente evitando la entrada directa de sol, o en caso contrario se provee de aleros o sombras

En caso de casetas de ambiente controlado se presenta evidencia de monitoreo de temperatura, humedad y ventilación.

En caso de casetas abiertas, estas se encuentran provistas de cortinas o sombreaderos y barreras de aire según su orientación topográfica.

COORDENADAS GIS N___________ S___________ E___________ O___________ msnm ___________

N

S

E O

34



Cuenta con estacionamiento fuera de las instalaciones de la unidad de producción.

Cuenta con un sistema de desinfección de vehículos al ingreso de estos.

Cuenta con arco y vado de desinfección al ingreso de la unidad de producción

Cuenta con bomba de aspersión a alta presión

Cuenta con sistema para desinfección de la cabina del conductor.

Cuenta con un módulo sanitario dividido en tres áreas al ingreso y salida de la unidad de producción.

a) Área sucia: La ropa y calzado de calle del

personal y visitas, permanece en esta área y

cuenta con casilleros para guardar ropa y objetos

de uso personal.

b) Área de regaderas o Área gris: Sin excepción,

todas las personas se bañan antes de ingresar a la

Unidad de producción

Cuenta con jabones y toallas para uso exclusivo en

la UP.

c) Área limpia: Al personal y visitas se le

proporcionan ropa y calzado para uso exclusivo de

la unidad de producción.

Para impedir el acceso de cerdos silvestres o fauna

nociva a las instalaciones cuentan con mallas,

dispositivos o trampas físicas (especificar).

Cuenta con bodega(s) para equipo, materiales,

biológicos, farmacéuticos, etc. (Especificar)

Están identificadas las bodega(s) por su contenido.

Están identificados los productos y/o materiales

que se encuentran dentro de las bodegas.

(biológicos, farmacéuticos, suplementos,

materiales, equipo, etc.)

Se dispone de un sitio específico para el

almacenamiento de productos químicos de

limpieza y desinfección.

Las bodegas y silos de alimento, tienen un sistema

cerrado que no permita la introducción de plagas.

Se cuenta con un sistema de desinfección al

ingreso y salida de cada caseta (tapete sanitario,

bomba de aspersión, lava botas, etc. especificar).

Los tapetes sanitarios están provistos de alguna solución desinfectante.

El desinfectante de los tapetes se cambia continuamente de acuerdo a la intensidad de uso, evitando la inactivación del producto químico.

Para el uso de los desinfectantes y los sanitizantes

la UP cuenta con procedimientos o manuales de

preparación.

Se cuenta con una rampa para embarque que

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desemboque afuera de la granja.


Existe bitácora o registro de preparación de los

desinfectantes usados en los tapetes sanitarios.

Existe evidencia de un programa de rotación de

productos desinfectantes.

Existen pruebas que demuestren la efectividad de

los desinfectantes usados en la unidad de

producción.

Están identificadas cada una de las casetas.

Se tienen bitácoras o registros de las actividades

llevadas en cada caseta. (Necropsias,

vacunaciones, pesajes, mortalidad, etc.)

Especificar.

EQUIPOS SI NO N/A OBSERVACIONES

Los comederos y bebederos son de material de fácil limpieza y evitan la contaminación entre alimentos

El equipo que se utiliza para la alimentación, garantiza su funcionalidad, higiene y existen los suficientes para la carga animal

En caso de casetas de ambiente controlado se presenta evidencia de monitoreo de temperatura, humedad y ventilación.

En caso de casetas abiertas, estas se encuentran provistas de cortinas o sombreaderos y/o barreras de aire según su orientación topográfica.

Se monitorea y garantiza la temperatura de confort dentro de cada caseta.

Cuenta con evidencia de un programa preventivo de mantenimiento para los equipos

ALIMENTACIÓN SI NO N/A OBSERVACIONES

Se cuenta con evidencia de que existen dietas establecidas para cada etapa productiva con el objeto de cubrir los requerimientos nutritivos de los cerdos.

Se cuenta con evidencia de que se verifica la calidad e inocuidad de los alimentos antes de ofrecerlos a las cerdos (ej. Análisis bromatológicos, microbiológicos y toxicológicos).

Se cuenta con evidencia de que los insumos alimenticios son adquiridos de proveedores confiables o que ofrecen garantías de inocuidad y calidad.

Se cuenta con evidencia de que los aditivos utilizados para suplementar la alimentación cuentan con registro ante la SAGARPA.

Se cuenta con evidencia de que en caso de utilizar antibióticos, promotores, del crecimiento, u otro fármaco en la dieta, se respeta el tiempo de retiro sugerido por el laboratorio.

36


ALIMENTACIÓN SI NO N/A OBSERVACIONES

Se cuenta con un inventario de materias primas y alimentos, así como controles de consumo y/o raciones.

Se cuenta con evidencia de que el traslado, almacenamiento, manejo y suministro de alimentos se realiza en condiciones tales que no afectan la calidad o inocuidad del alimento.

Se asegura que los conductores y vehículos que transportan alimento no tienen acceso a las casetas.

En caso de contar con silos, estos se encuentran en buenas condiciones y protegen el alimento de las condiciones ambientales.

Utiliza harinas de origen animal para la alimentación de los cerdos

Utiliza pollinaza u otra materia orgánica de desecho para la alimentación de los cerdos en la UP (en caso afirmativo especifique los tratamientos aplicados y procedencia).

Utiliza escamocha para la alimentación de los cerdos en la UP.

AGUA SI NO N/A OBSERVACIONES

Se aseguran de que las fuentes de abastecimiento

de agua de la unidad de producción no puedan ser

contaminadas con microorganismos patógenos.

Se realiza el monitoreo físico–químico y

microbiológico del agua de forma trimestral.

Se cuenta con registros o bitácoras de los monitoreos microbiológicos, físicos y químicos.

PERSONAL Y CAPACITACIÓN SI NO N/A OBSERVACIONES

El personal con que cuenta la unidad de producción, es suficiente para atender continuamente las necesidades de la producción.

Se cuenta con evidencia de la realización de programas continuos y documentados de educación y capacitación sanitaria a los trabajadores.

A los trabajadores se les prohíbe mantener cerdos de traspatio.

SANIDAD EN LOS CERDOS SI NO N/A OBSERVACIONES

En la región se cuenta con un programa de vacunación específico y oportuno bajo la supervisión de un MVZ.

Se cuenta con evidencia de que los fármacos utilizados en la unidad de producción cuentan con registro de la SAGARPA.

Se realiza algún monitoreo de perfil serológico de las enfermedades comunes de los cerdos.

______________________________________________ Nombre y firma del responsable de la investigación

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DIRECTORIO DE LABORATORIOS DE DIAGNOSTICO MOLECULAR EN SANIDAD ANIMAL DE LA CPA/SENASICA

LABORATORIO TELEFONO 59051000

Extensión No.

DIRECCION

MEXICALI, BAJA CALIFORNIA

53910 y 53911

AV. LAZARO CARDENAS ESQUINA CON "LAS MINITAS" COL. LAS MINITAS, C.P.21740, DELEGACION GONZALEZ ORTEGA, MEXICALI, BAJA CALIFORNIA

CAMPECHE, CAMPECHE

53970 a 53973

CALLE QUERETARO NO. 7. BARRIO SANTA ANA, ENTRE COSTA RICA Y SALVADOR, CAMPECHE, CAMPECHE, C.P. 24050

TUXTLA GUTIERREZ, CHIAPAS

53960 a 53963

CALLE RIO PANUCO NO. 852, FRACCIONAMIENTO LOS LAGUITOS, DELEGACION SAGARPA, EDIFICIO COORDINACION CPA, TUXTLA GUTIERREZ, CHIAPAS, C.P. 29029

GOMEZ PALACIO, DURANGO

53980 y 53981

PREDIO CALABAZAS, MARGEN DERECHO, CANAL SACRAMENTO, COLONIA CENTRO, GOMEZ PALACIO, DURANGO C.P. 35000

CHILPANCINGO, GUERRERO

53955 a 53959

AVENIDA RUFO FIGUEROA NO. 2, COLONIA BUROCRATAS, CHILPANCINGO, GUERRERO, C.P. 39090

ZAPOTLANEJO, JALISCO

53965 y 53966

KM 1.5 DE LA ANTIGUA CARRETERA ZAPOTLANEJO -TEPATITLAN, CALLE SERGIA BRIONES S/N, ZAPOTLANEJO, JALISCO, C.P. 45680

AJUCHITLAN, QUERETARO

53975 y 53976

CARRETERA AJUCHITLAN-COLON KM. 1, AJUCHITLAN, QUERETARO, C.P. 76280

MATEHUALA, SAN LUIS POTOSI

53950 y 53951

BOULEVARD HEROES POTOSINOS, NO. 1801, FRACCIONAMIENTO LAS AMERICAS, MATEHUALA, SAN LUIS POTOSI, C.P. 78700

MATAMOROS, TAMAULIPAS

53940 y 53941

AVENIDA CANADA S/N, ENTRE CALLE PRIMERA Y CALLE ONTARIO, COLONIA SAN JOSE, MATAMOROS. TAMAULIPAS, C.P 87340

XALAPA, VERACRUZ

53900 y 53901

KM 3.5 CARRETERA FEDERAL XALAPA - VERACRUZ, COLONIA PASTORESA, XALAPA, VERACRUZ, C.P. 91193

MÉRIDA, YUCATAN

53920 a 53923 PREDIO EN CALLE 6 (AVENIDA CORREA RACHO) NO. 402, COLONIA GUSTAVO DIAZ ORDAZ, MERIDA, YUCATAN, C.P. 97130

MEXICO, D.F.

53256

KM. 15.5 CARRETERA MEXICO - TOLUCA, COL. PALO ALTO, DEL. CUAJIMALPA, MÉXICO D.F. C.P. 05110

HERMOSILLO, SONORA 53930 y 53931

ESTEBAN SARMIENTO NO. 35, COLONIA KENNEDY (LA MATANZA) EN EL CENTRO DE LA CAMPANA, ENFRENTE DEL MUSEO DE LA CÁRCEL CP. 83080

38


COORDINADORES REGIONALES DE LA CPA/ SENASICA

REGION ESTADOS TELEFONO DIRECCION

I BAJA CALIFORNIA, BAJA CALIFORNIA SUR, SONORA, CHIHUAHUA, SINALOA Y NAYARIT.

(01) 66.22.59.98.24 EXT. 74263 Cel. 66.21.87.20.55

PASEO DEL CANAL Y COMONFORT EDIF. MEXICO ALA SUR PISO 2, COL. VILLA DE SERIA, CP. 83270 HERMOSILLOS, SONORA [email protected]

II COAHUILA, DURANGO, NUEVO LEON Y REGION LAGUNERA

(01) 81.81.91.91.38 Cel. 81.15.53.54.81

AV. CONSTITUCION # 4101 COL FIERRO, C.P. 64590 MONTERREY, NUEVO LEÓN–– [email protected]

III SAN LUIS POTOSI, TAMAULIPAS Y VERACRUZ NORTE

(01)44.48.22.70.21 Cel. 44.41.42.88.32

NOVENA CALLE # 275-A, COL. SAN LUIS POTOSI [email protected]

IV AGUASCALIENTES, COLIMA, GUANJUATO, JALISCO, MICHOACAN Y ZACATECAS.

(01)33.36.35.36.06 Cel. 33.3635.36.06

CARRETERA A CHALAPA #655, GLORIETA EL ALAMO, C.P. 45560 TLAQUEPAQUE, JALISCO [email protected]

V GUERRERO, PUEBLA, TLAXCALA Y VERACRUZ CENTRO

(01)22.22.36.78.54 Cel. 22.24.84.17.71

26 NORTE 1202 EDIF. A, 2° PISO, COL. HUMBOLDT, C.P. 72330, PUEBLA, PUEBLA [email protected]

VI CHIAPAS, OAXACA TABASCO, VERACRUZ SUR

(01) 96.16.02.02.56 Cel. 96.11.28.92.15

CALLE RIO PANUCO # 852 FRACC. LOS LAGUITOS, TUXTLA GUTIÉRREZ, CHIAPAS [email protected]

VII CAMPECHE, YUCATAN Y QUINTANA ROO

(01) 99.99.43.15.35 Cel. 99.92.33.17.06

KM 5 CARRETERA MERIDA-CHOLULA AV. CORREA RANCHO COL. DIAZ ORDAZ, CP. 97130, MERIDA YUCATAN [email protected]

VIII DISTRITO FEDERAL, HIDALGO, MORELOS, QUERETARO Y MEXICO.

(01)55.36.18.08.25 Cel. 55.37.34.25.25

KM 15.5 CARRETERA MEXICO-TOLUCA, COL PALO ALTO, DELEG. CUAJIMALPA, CP. 05110, MÉXICO D.F. [email protected]

REPORTA AL SIVE Y A LA CPA CUALQUIER CASO SOSPECHOSO DE FPC, ANIMALES ENFERMOS O UN INCREMENTO EN LA MORTALIDAD

[email protected]

Tels. 01 (55) 59051000 EXT. 53204 o 53200

01 (55) 52.59.30.35, 52.59.14.41, 36.18.00.21 AL 30 SIN COSTO 01 (800) 75.12.100

39


COORDINADORES REGIONALES DE LA DEAR/SENASICA REGIÓN ESTADOS TELEFONO DIRECCION

1 BAJA CALIFORNIA, BAJA CALIFORNIA SUR, SONORA, SINALOA Y CHIHUAHUA.

(01) 66.22.59.98.24 EXT. 74260 y 74263 Cel. 66.22.06.95.96

PASEO DEL CANAL Y COMONFORT, 2 NIVEL, EDIF. MÉXICO, CENTRO DE GOBIERNO, COL. VILLA DE SERIS 83270, HERMOSILLO, SON. [email protected]

2 COAHUILA, DURANGO, REGION LAGUNERA, NUEVO LEON Y TAMAULIPAS

01.81.11.60.75.00 EXT. 77252 y 77048 Cel. 81.17.96.61.73

AV. CONSTITUCION # 4101 COL FIERRO, C.P. 64590 MONTERREY, NUEVO LEON [email protected]

3 JALISCO, NAYARIT, ZACATECAS, COLIMA, GUANAJUATO, MICHOACAN Y AGUASCALIENTES

(01) 33.38.38.64.36 (01) 33.36.35.36.06 EXT. 66150. Cel. 33.34.96.78.34

CARRETERA A CHAPALA NO. 655 GLORIETA EL ALAMO COL. EL ALAMO, TLAQUEPAQUE, JAL., CP 45560 DELEGACIÓN ESTATAL DE LA SAGARPA. JALISCO [email protected]

4 VERACRUZ Y SAN LUIS POTOSI

(01)22.88.41.63.65 al 28.88.41.63.67 Cel. 22.81.22.11.90

KM 3.5 CARR. FEDERAL XALAPA-VERACRUZ COL. ANIMAS, DPTO. DE ABEJA AFRICANA, CP. 91193, XALAPA [email protected]

5 D.F., ESTADO DE MEXICO, MORELOS Y QUERETARO

59051000 EXT. 53206 Y 53204 Cel. 55.10.15.72.05

AV. CUAUHTEMOC NO. 1230, PISO 12 COL. STA. CRUZ ATOYAC, DELEG. B. JUAREZ. C.P. 03310, MÉXICO, D.F. [email protected]

6 PUEBLA, TLAXCALA, HIDALGO, GUERRERO

(01)22.21.99.78.15 (01)22.22.36.78.54 Cel. 22.26.12.82.25

CALLE 26 NORTE 1202, COL. HUMBOLTD 72370, PUEBLA, PUE. [email protected]

7 CHIAPAS, OAXACA Y TABASCO

(01) 96.16.17.10.50 EXT.30296 Cel. 96.11.43.21.30

KM. 0.350 CARRETERA TUXTLA-CHICOASEN FRACCIONAMIENTO LOS LAGUITOS CP 29020, TUXTLA GUTIÉRREZ, CHIAPAS [email protected]

8 YUCATAN, QUINTANA ROO Y CAMPECHE

(01) 9999 430832, EXT. 36033 Cel. 99.91.77.32.20

CALLE 2 A NO. 401 X 4. COL. DIAZ ORDAZ. CP 97130, MERIDA, YUCATAN [email protected]

REPORTA AL SIVE Y A LA CPA CUALQUIER CASO SOSPECHOSO DE FPC, ANIMALES ENFERMOS O UN INCREMENTO DE LA MORTALIDAD

[email protected]

Tels. 01 (55) 59051000 EXT. 53204 o 53200

01 (55) 52.59.30.35, 52.59.14.41, 36.18.00.21 AL 30 SIN COSTO 01 (800) 75.12.100

40

mailto:[email protected]


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