CHITIN & CHITOSAN_Anastasia Putri K._13.70.0151_C5_UNIKA SOEGIJAPRANATA

Acara II

CHITIN DAN CHITOSAN

LAPORAN RESMI PRAKTIKUM

TEKNOLOGI HASIL LAUT

Disusun oleh:

Anastasia Putri Kristiana

13.70.0151

Kelompok C5

PROGRAM STUDI TEKNOLOGI PANGAN

FAKULTAS TEKNOLOGI PERTANIAN

UNIVERSITAS KATOLIK SOEGIJAPRANATA

SEMARANG

2015

1

1. MATERI METODE

1.1. Alat dan Bahan

1.1.1. Alat

Alat yang digunakan dalam praktikum ini antara lain adalah oven, blender, ayakan,

peralatan gelas, dan hotplate.

1.1.2. Bahan

Bahan yang digunakan dalam praktikum ini adalah limbah udang, HCl 0,75 N, 1 N, dan

1,25 N, NaOH 40%, 50%, dan 60%.

1.2. Metode

1.2.1. Demineralisasi

HCl ditambahkan dengan perbandingan 10:1. Kelompok A1 dan A2 menggunakan

HCl 0,75N, A3 dan A4 HCl 1N, dan A5 HCl 1,25N

Kemudian dipanaskan pada suhu 90oC selama 1 jam & secara kontinu dilakukan

pengadukan.

Limbah udang dicuci dengan air mengalir dan dikeringkan, lalu dicuci dengan air

panas 2 kali, dan dikeringkan kembali.

Limbahudangkemudiandihancurkanhinggamenjadiserbukdandiayakdenganayakan 40-

60 mesh.

Limbah udang kemudian dihancurkan hingga menjadi serbuk dan diayak dengan

ayakan 40-60 mesh.

2

1.2.2. Deproteinasi

Lalu dicuci sampai pH netral.

Kemudian dikeringkan pada suhu 80oC selama 24 jam

Kemudian dipanaskan pada suhu 70oC selama 1 jam.

Hasil demineralisasi dicampur dengan NaOH 35% dengan perbandingan 6:1

Kemudian disaring dan didinginkan lalu dicuci sampai pH netral dan dikeringkan

80oC selama 24 jam.

3

1.2.3. Deasetilasi

Chitin yang didapat kemudian ditambahkan NaOH 40% untuk kelompok A1 dan A2,

NaOH 50% untuk kelompok A3 dan A4, dan NaOH 60% untuk kelompok A5

Kemudian dipanaskan pada suhu 90oC selama 1 jam

Lalu dicuci sampai pH netral,

kemudian dikeringkan pada suhu 70oC selama 24 jam

4

2. HASIL PENGAMATAN

Hasil pengamatan chitin dan chitosan dapat dilihat pada Tabel 1.

Tabel 1. Hasil Pengamatan Chitin dan Chitosan

Kelompok Perlakuan Rendemen

Kitin I (%)

Rendemen

Kitin II (%)

Rendemen

Kitosan (%)

C1 HCl 0,75N + NaOH 40% +

NaOH 3,5% 23,45 30,00 27,43

C2 HCl 0,75N + NaOH 40% +

NaOH 3,5% 37,82 44,00 37,38

C3 HCl 1N + NaOH 50% +

NaOH 3,5% 41,67 54,55 32,16

C4 HCl 1N + NaOH 50% +

NaOH 3,5% 40,00 58,30 24,30

C5 HCl 1,25N + NaOH 60% +

NaOH 3,5% 21,19 40,32 11,25

Berdasarkan Tabel 1 dapat diketahui persen rendemen kitin I, rendemen kitin II, dan

rendeman kitosan pada kelompok C1-C5. Rendemen kitin I terbesar ada pada kelompok

C3, sedangkan yang terkecil ada pada kelompok C5. Rendemen kitin II pada masing-

masing kelompok lebih besar dibandingkan dengan rendemen kitin I. Rendemen kitosan

terbesar ada pada kelompok C2, sedangkan yang terkecil ada pada kelompok C5.

5

3. PEMBAHASAN

Pada praktikum kali ini dilakukan pembuatan kitin dan kitosan dari limbah udang,

sesuai dengan Berger et al. (2004) yang menyatakan bahwa crustacea seperti udang

adalah bahan baku pembuatan kitin dan kitosan. Khorrami et al. (2012) dalam

penelitiannya menyatakan bahwa kitin tersusun atas -1,4-N-acetylglucosamine.

Rungsardthong et al. (2006) dalam Khorrami et al. (2012) menyatakan bahwa kitin

dapat diekstrak dari yeast, jamur, fungi, kepiting, udang, dan tulang rawan cumi-cumi.

Tambahan dari Indra (1994) bahwa kadar kitin dalam dalam udang sekitar 60-70% dan

bila diproses dapat menghasilkan 15-20% kitosan. Rumengan et al. (2014) dalam

penelitiannya menyatakan bahwa pembuatan kitin dan kitosan bertujuan untuk

mengatasi masalah lingkungan dengan mengolah limbah crustacea dan menciptakan

produk sampingan yang bermanfaat. Menurut Muzzarelli (1985), kitin berbentuk kristal

amorf berwarna putih, tidak berasa, tidak berbau, tidak beracun, tidak larut air dan

pelarut organik, namun larut asam mineral pekat, seperti HCl, H2SO4, asam nitrat, dan

asam fosfat. Kitosan adalah produk turunan dari kitin dari proses hidrolisis kitin

menggunakan basa kuat dan memiliki rumus kimia 2-amino-2-dioksi--D-Glukosa

(Balley & Ollis, 1977). Tolaimate et al. (2000) dalam Hossain & Iqbal (2014)

menyatakan bahwa kitosan dapat bersumber dari crustacea, fungi, serangga, dan alga.

Menurut Cahyaningrum et al. (2007), kitosan tidak beracun, tidak larut air, mudah larut

dalam asam organik, bersifat bioaktif, biodegradable, hidrofilik, antibakteri, dan

memiliki afinitas enzim yang tinggi. Tambahan dari Duta et al. (2004), bahwa bagi

hewan dan mikroorganisme kitosan dapat mempercepat pembentukan tulang,

homeostatis, fungistatik, dan menghilangkan stress.

Pada praktikum ini, metode pembuatan kitin dan kitosan meliputi tiga tahap, yaitu:

1. Demineralisasi

Pada tahap ini, mula-mula limbah udang dicuci dengan air mengalir dan dikeringkan,

kemudian dicuci dua kali dengan air panas dan dikeringkan lagi. Setelah itu

dihancurkan hingga menjadi serbuk dan diayak dengan ayakan 40-60 mesh. Menurut

Muzarelli et al. (1977), pencucian dengan air panas berguna untuk menghilangkan

kotoran dan mikroorganisme pada kulit udang, sedangkan pengeringan sebelum

6

pengayakan dilakukan untuk menghilangkan air panas yang masih tersisa dari

pencucian tersebut. Proses penghalusan kulit udang dilakukan untuk memperluas

permukaan (Arpah, 1993). Pada praktikum ini, serbuk kulit udang sudah disediakan

oleh asisten dosen, sehingga dapat langsung digunakan. Sebanyak 10 gram serbuk kulit

udang dicampur dengan 100 ml HCl (10:1) 0,75 N (kelompok C1-C2), 1 N (kelompok

C3-C4), dan 1,25 N untuk kelompok C5, kemudian dipanaskan di hotplate suhu 900C

sambil diaduk selama 1 jam. Penambahan HCl melarutkan mineral yang ada pada

serbuk kulit udang tersebut (Burrows et al., 2007). Tambahan dari Suhardi (1993)

bahwa demineralisasi pada pembutan kitin dilakukan untuk menghilangkan mineral,

terutama kalsium karbonat dengan penambahan HCl encer. Menurut Alamsyah et al.

(2007), pemanasan berfungsi untuk mengoptimalkan fungsi HCl dalam melarutkan dan

memisahkan kalsium karbonat serta bahan mineral lainnya dari kitin, sedangkan

pengadukan dilakukan untuk menghomogenkan larutan sehingga pemanasan merata.

Truong et al. (2007) dalam penelitian Younes & Rinaudo (2015) menyatakan bahwa

suhu yang tinggi dapat mempercepat proses deasetilasi karena larutan asam dapat

terpenetrasi dengan baik ke dalam jaringan kitin. Tambahan dari Hendry (2008), bahwa

pemanasan dan pengadukan selama 1 jam berfungsi untuk menghilangkan gelembung

CO2 akibat demineralisasi oleh HCl. Setelah dipanaskan, kitin didinginkan lalu

dilakukan pencucian hingga pH netral. Pendinginan dilakukan untuk mengendapkan

kitin sehingga tidak terbuang ketika dicuci (Rogers, 1986). Menurut Mudasir et al.

(2008), pencucian dilakukan untuk mencegah degradasi selama pengeringan dan

menghilangkan sisa HCl agar tidak bereaksi dengan kalsium membentuk kalsium

klorida yang menyebabkan kenaikan berat molekul mineral pada kitin. Pengujian pH

dilakukan dengan kertas lakmus dengan indikator warna hijau (netral). Setelah pH

netral, maka kitin dikeringkan dalam oven suhu 800C selama 24 jam.

2. Deproteinasi

Deproteinasi dilakukan untuk menghilangkan protein kitin (Purwaningsih, 1994). Hasil

dari proses demineralisasi ditimbang lalu dicampur dengan NaOH 3,5% (6:1) dan

diaduk selama 1 jam dengan pemanasan pada suhu 700C. Menurut Martinou et al.

(1995), penambahan NaOH adalah untuk mengubah bentuk kristalin kitin sehingga enzim

lebih mudah berpenetrasi untuk mendeasetilasi polimer kitin. Tambahan dari Reece et al.

7

(2003) bahwa NaOH berperan dalam melarutkan protein pada residu hasil

demineralisasi. Pemanasan dilakukan untuk mendenaturasi protein (Moeljanto, 1992).

Pengadukan dilakukan agar pemanasan merata sehingga derajat deproteinasi meningkat

dan mencegah terjadinya gosong (Rogers, 1986). Setelah dipanaskan, larutan

didinginkan lalu dicuci dengan air hingga pH netral untuk mencegah penguapan kitin

pada saat pengeringan. Setelah itu, dilakukan pengeringan dalam oven suhu 800C selama

24 jam.

3. Deasetilasi

Menurut Rahayu & Purnavita (2007), deasetilasi dilakukan untuk melepaskan gugus

asetil pada kitin sehingga diperoleh kitosan. Kitin hasil deproteinasi ditimbang lalu

ditambah NaOH 40% (kelompok C1-C2), 50% (kelompok C3-C4), dan 60% untuk

kelompok C5 dengan perbandingan 20:1. Kemudian diaduk selama 1 jam, kemudian

didinginkan selam 30 menit lalu dipanaskan 900C selama 1 jam. Menurut Reece et al.

(2003), penambahan NaOH dan pemanasan berperan dalam melepaskan gugus asetil

dari kitin sehingga dihasilkan kitosan. Tambahan dari Puspawati & Simpen (2010),

pemanasan dilakukan untuk meningkatkan derajat deasetilasi. Menurut Knoor (1984),

derajat deasetilasi menandakan jumlah asetil yang hilang. Younes et al. (2014) dalam

Younes & Rinaudo (2015) menambahkan bahwa derajat deasetilasi dipengaruhi oleh

konsentrasi larutan basa yang digunakan, perbandingan basa dengan kitin, waktu, dan

suhu deasetilasi. Semakin tinggi derajat deasetilasi, maka semakin murni kitosan yang

dihasilkan. Fernandez-Kim (2004) dalam Rumengan et al. (2014) menambahkan bahwa

derajat deasetilasi merupakan parameter penting yang mempengaruhi kemampuan

biodegradasi dan aktivitas imunologi. Menurut No & Meyers (1995) dalam Hossain &

Iqbal (2014), derajat deasetilasi berkisar antara 56-99%. Hasil pemanasan kemudian

didinginkan dan dicuci hingga pH netral untuk kemudian dikeringkan pada suhu 70oC

selama 24 jam, lalu ditimbang sebagai berat kitosan.

Berdasarkan hasil pengamatan, dapat diketahui rendemen kitin I terbesar ada pada

kelompok C3, sedangkan yang terkecil ada pada kelompok C5. Hasil tersebut tidak

sesuai dengan Suptijah (2004) bahwa seharusnya semakin besar konsentrasi HCl yang

ditambahkan, maka berat kitin juga semakin besar karena komponen mineral semakin

8

mudah dilarutkan dan dipisahkan. Jadi, seharusnya rendemen kitin I terbesar ada pada

kelompok C5 dengan konsentrasi HCl 1,25 N. Ketidaksesuaian hasil tersebut dapat

disebabkan karena proses pencucian yang dilakukan kurang optimal sehingga ada

rendemen yang ikut terbuang, atau ada perbedaan dalam membaca pH netral pada kertas

lakmus sehingga masih ada sisa HCl pada kitin yang bereaksi dengan kalsium

membentuk kalsium klorida dan menyebabkan kenaikan berat molekul mineral pada

kitin (Mudasir et al., 2008). Kaunas (1984) menambahkan bahwa pengadukan dan suhu

pemanasan yang kurang optimal juga menjadi faktor penyebab ketidaksesuaian hasil

pengamatan tersebut.

Rendemen kitin II yang diperoleh masing-masing kelompok berada pada kisaran angka

30-60% sesuai dengan Puspawati & Simpen (2010) bahwa kulit udang pada tahap

deproteinasi akan menghasilkan kitin minimal 20%. Akan tetapi, hasil tersebut lebih

tinggi dibandingkan hasil rendemen I, sehingga tidak sesuai dengan Angka & Suhartono

(2000) bahwa seharusnya setelah deproteinasi dan pencucian persen rendemen yang

diperoleh akan semakin rendah. Menurut Fennema (1985), jumlah protein dan mineral

yang dipisahkan akan lebih banyak pada kondisi basa dibandingkan pada kondisi asam,

karena kemampuan hidrolisis larutan basa NaOH lebih kuat daripada asam sehingga

seharusnya dengan penambahan NaOH akan semakin menurunkan berat rendemen II.

Ketidaksesuaian hasil tersebut dapat disebabkan oleh proses pencucian yang kurang

optimal sehingga masih ada komponen basa dalam residu kitin, dan oleh pengeringan

yang tidak sempurna (Hartati et al., 2002).

Rendemen kitosan terbesar ada pada kelompok C2, sedangkan yang terkecil ada pada

kelompok C5. Hasil ini tidak sesuai dengan Rochima (2005) bahwa semakin tinggi

konsentrasi NaOH yang ditambahkan pada proses deasetilasi akan semakin

meningkatkan derajat deasetilasi, sehingga rendemen kitosan yang dihasilkan semakin

tinggi. Seharusnya rendemen kitosan C5 adalah yang paling tinggi, karena menurut

Puspawati & Simpen (2010) penambahan NaOH 60% pada tahap deasetilasi akan

semakin banyak memutus ikatan antara karbon pada gugus asetil dengan nitrogen pada

gugus amina, sehingga gugus asetil lebih banyak dihilangkan dan derajat deasetilasi

meningkat. Ketidaksesuaian tersebut dapat terjadi karena proses pengadukan yang tidak

9

konstan sehingga NaOH tidak dapat bereaksi sempurna dengan kitin, atau proses

pendinginan yang terlalu singkat sehingga kitin belum mengendap sempurna dan ikut

terbuang pada saat pencucian (Kaunas,1984).

Kitin dan kitosan banyak digunakan dalam bidang pangan. Menurut Marganov (2003),

kitosan bernilai ekonomis tinggi dan dapat dimanfaatkan sebagai pengawet alami karena

memiliki polikation positif yang mampu menghambat pertumbuhan bakteri dan kapang.

Tambahan dari Shahidi et al. (1999), kitosan banyak diaplikasikan untuk mengawetkan

hasil perikanan dan penstabil warna produk pangan. Kitosan mengandung enzim lisosim

dan gugus aminopolisakarida sehingga mampu menghambat pertumbuhan mikroba

(Wardaniati & Setyaningsih, 2009). Muzarelli (1985) dalam Patria (2013)

mengungkapkan bahwa kitin dan kitosan juga dapat diaplikasikan dalam bidang

farmasi, biokimia, bioteknologi, kosmetik, industri kertas, tekstil, sementara kitosan

dapat diaplikasikan sebagai bahan koagulasi, agen pengkelat, emulsifier, pengental

(thickener), dan pengawet makanan. Kitin dan kitosan juga dapat berfungsi sebagai

absorben ion kadmium, tembaga, dan timbal (Ratna & Sugiyani, 2006). Hargono et al.

(2008) menambahkan bahwa kitin dan kitosan dapat menurunkan kadar kolesterol

dalam lemak. Choorit et al. (2008) dalam Khorrami et al. (2012) menambahkan bahwa

kitin dan turunannya dapat diaplikasikan secara luas pada bidang pertanian, biomedikal,

dan bidang gizi seperti untuk koagulasi dan biofilm. Sudarshan et al. (1992) dalam

Krishnaveni & Ragunathan (2015) menyatakan bahwa kitosan dapat dijadikan

desinfektan karena memiliki sifat antimikroba dan antifungi dan mampu mencegah

invasi patogen.

10

4. KESIMPULAN

Kitin dan kitosan adalah produk sampingan bernilai ekonomis tinggi dari bahan

limbah cangkang crustacea.

Pembuatan kitin dan kitosan melalui tahap demineralisasi, deproteinasi, dan

deasetilasi.

Demineralisasi menghilangkan mineral pada limbah kulit udang.

HCl melarutkan mineral terutama kalsium karbonat pada kulit udang.

Semakin tinggi konsentrasi HCl, semakin besar rendemen kitin hasil demineralisasi.

Deproteinasi dilakukan untuk menghilangkan protein dari kitin.

NaOH pada tahap deproteinasi berperan dalam melarutkan protein kitin.

Penambahan NaOH akan menurunkan berat rendemen kitin hasil deproteinasi,

karena protein lebih banyak terlepas dari kitin dalam kondisi basa dibandingkan

asam.

Deasetilasi akan melepas gugus asetil pada kitin untuk memperoleh kitosan.

Penambahan NaOH pada tahap deasetilasi akan melepaskan gugus asetil dari kitin.

Semakin tinggi konsentrasi NaOH, semakin banyak gugus asetil yang terlepas.

Semakin tinggi konsentrasi NaOH, semakin tinggi derajat deasetilasi dan rendemen

kitosan.

Derajat deasetilasi dipengaruhi oleh konsentrasi larutan NaOH yang digunakan dan

perbandingannya dengan kitin, suhu, dan waktu deasetilasi.

Aplikasi kitin dan kitosan dalam bidang pangan antara lain sebagai antimikroba,

pengawet makanan alami, penstabil warna, koagulan, emulsifier, pengental, dan

biofilm.

Selain bidang pangan, kitin dan kitosan dapat diaplikasikan pada bidang farmasi,

bioteknologi, biomedikal, kosmetik, industri kertas, dan tekstil.

Semarang, 16 Oktober 2015

Praktikan, Asisten Dosen

Anastasia Putri Kristiana Tjan, Ivana Chandra

13.70.0151

11

5. DAFTAR PUSAKA

Alamsyah, Rizal, et al. (2007). Pengolahan Khitosan Larut dalam Air dari Kulit Udang

sebagai Bahan Baku Industri.

Angka, S. L. dan M. T. Suhartono. (2000). Bioteknologi Hasil Laut. Pusat Kajian

Sumberdaya Pesisir dan Lautan. Bogor.

Arpah, M. (1993). Pengawasan Mutu Pangan. Tarsito. Bandung.

Berger, J; M. Reista; J. M. Mayer; O. Felt; N. A. Peppas; R. Gurny. (2004). Structure

and Interactions in Covalently and Ionically CrosslinkedKitosan Hydrogels for

Biomedical Applications. European Journal Of Pharmaceutics And

Biopharmaceutics 57 (2004) 1934.

Burrows, Felicity; Clifford Louime; Michael Abazinge; Oghenekome Onokpise. (2007).

Extraction and Evaluation of Kitosan from Crab Exoskeleton as a Seed Fungicide

and Plant Growth Enhancer. American-Eurasian J. Agric. & Environ. Sci., 2 (2):

103-111, 2007.

Cahyaningrum, S. E.; Agustini & Herdyastuti. (2007). Pemakaian Kitosan Limbah

Udang Windu sebagai Matriks Pendukung pada Imobilisasi Papain. Jurusan

Kimia, FMIPA, Universitas Negeri Surabaya. Jurnal Akta Kimindo Vol. 2 No. 2 :

93-98.

Choorit, W., Patthanamanee, W., Manurakchinakorn, S. (2008) Bioresour. Technolo.

99, 6168.

Dutta, Pradip Kumar; Joydeep Dutta; dan V. S. Tripathi. (2004). Kitin and Kitosan :

Chemistry, Properties, and Applications. Journal of Scientific & Industrial

Research. Vol.63, January 2004, pp 20-31.

Fennema, O. R. (1985). Food Chemistry 2nd Edition. Marcel Dekker, Inc. New York.

Fernandez-Kim, S.O., (2004). Physicochemical and functional properties of crawfish

chitosan as affected by different processing protocols. M.S. Thesis, Seoul

National University, Seoul.

Hargono; Abdullah & Indro, S. (2008). Pembuatan Kitosan dari Limbah Cangkang

Udang serta Aplikasinya dalam Mereduksi Kolesterol Lemak Kambing. Jurnal

Reaktor Vol. 12 No. 1. Universitas Diponegoro. Semarang.

12

Hartarti, F. K.; Susanto, T.; Rakhmadiono, S. & Lukito, A. S. (2002). Faktor- Faktor

yang Berpengaruh terhadap Tahap Deproteinisasi Menggunakan Enzim Protease

dalam Pembuatan Khitin dari Cangkang Rajungan (Portunus pelagicus). Biosain,

Vol. 2, No. 1: 68-77

Hendry, J. (2008). Teknik Deproteinasi Kulit Rajungan (Portunus pelagious) secara

Enzimatik dengan menggunakan Bakteri Pseudomonas aeruginosa untuk

Pembuatan Polimer Kitin dan Deasetilasinya. Universitas Lampung. Lampung.

Hossain, M.S. and A. Iqbal. (2014). Production and Characterization of Chitosan from

Shrimp Waste. J. Bangladesh Agril. Univ. 12(1) : 153-160, 2014.

Indra, A. S. (1994). Hidrolisis Khitin Menjadi Khitosan serta Aplikasinya Sebagai

Pendukung Padat. Jurusan Kimia FMIPA ITS. Surabaya.

Kaunas. (1984). Meat, Poultry, and Seafood Technology. Neyes Data Coorporation,

USA.

Khorrami, M., G.D. Najafpour, H. Younesi, M.N. Hosseinpour. Production of Chitin

and Chitosan from Shrimp Shell in Batch Culture of Lactobacillus plantarum.

(2012). Chem. Biochem. Eng. Q 26(3) : 217-223.

Knoor, D. (1984). Use of Chitinous Polymer in Food. Journal of Food Technology,

Vol. 39 (1) : 85.

Krishnaveni, B. and R. Ragunathan. (2015). Extraction and Characterization of chitin

and Chitosan from F. solani CBNR BKRR, Synthesis of their Bionanocomposites

and Study of their Productive Application. Journal of Pharmaceutical Sciences and

Research. Vol. 7(4) : 197-205.

Marganov. (2003). Potensi Limbah Udang sebagai Penyerap Logam Berat (Timbal,

Kadmium dan Tembaga) di Perairan. Makalah Pengantar Falsafah Sains (PPS702),

Program Pasca Sarjana / S3, Institut Pertanian Bogor.

Martinou, A.; D. Kafetzopoulos & V. Bouriotis. (1995). Chitin Deacetylation by

Enzymatic Means: Monitoring of Deacetylation Processes. Carbohydr Res 273 :

235-242.

Moeljanto. (1992). Pengawetan dan Pengolahan Hasil Perikanan. Penebar Swadaya.

Jakarta.

Mudasir; G. Raharjo; I. Tahir & E. T. Wahyuni. (2008). Immobilization of Dithizone

onto Chitin Isolated from Prawn Seawater Shells (P. merguensis) and its

13

Preliminary Study for the Adsorption of Cd (II) Ion. Journal of Physical Science,

Vol. 19 (1), 63-78. Yogyakarta.

Muzzarelli, R. A. A. (1977). Chitin. Faculty of Medicine, University of Ancona.

Pergamon Press. Ancona, Italy.

Muzzarelli R. A. A., (1985). Chitin .In :The polysaccharides. Aspinall G. O. (ed.), pp.

417450, Academic Press, New York.

No, H.K., Lee, M.Y. 1995. Isolation of Chitin from Crab Shell Waste. Journal Korean

Soc. Food Nutrition. 24(1):105-113 Patria, anshar (2013). Production and Characterization of Chitosan from Shrimp Shells

Waste. International Journal of the Bioflux Society Vol. 6.

Purwaningsih. (1994). Teknologi Pembekuan Udang. PT Penebar Swadaya. Bogor.

Puspawati, N. M. & I N. Simpen. (2010). Optimasi Deasetilasi Khitin dari Kulit Udang

dan Cangkang Kepiting Limbah Restoran Seafood menjadi Khitosan melalui

Variasi Konsentrasi NaOH. Jurnal Kimia, Vol. 4. Halaman 70-90.

Rahayu, L. H. & Purnavita, S. (2007). Optimasi Pembuatan Kitosan Dari Kitin Limbah

Cangkang Rajungan (Portunus Pelagicus) untuk Adsorben Ion Logam Merkuri.

Reaktor, Vol. 11, No.1, Hal. 45-49. Semarang.

Ratna, A.W. & Sugiyani S. (2006). Pembuatan Chitosan Dari Kulit Udang dan

Aplikasinya Untuk Pengawetan Bakso.

Reece, C., dan Mitchell. (2003).Biologi, Edisi kelima-jilid 2, Penerbit Erlangga, Jakarta.

Rochima, E. (2005). Karakterisasi Kitin dan Kitosan Asal Limbah Rajungan Cirebon

Jawa Barat. Buletin Teknologi hasil Perikanan. 10 (1) Institut Pertanian Bogor.

Bogor.

Rogers, E.P. (1986). Fundamental of Chemistry. Books/Cole Publishing Company.

California.Science Published Ltd., England.

Rumengan, I.F.M., E. Suryanto, R. Modaso, S. Wullur, T.E. Tallei and D. Limbong.

(2014). Structural Characteristic of Chitin and Chitosan Isolated from the Biomass

of Cultivated Rotifer, Branchionus rotundiformis.International Journal of Fisheries

and Aquatic Sciences 3(1):12-18, 2014.

14

Rungsardthong, V., Wongvuttanakul, N., Kongpien, N., Chotiwaranon, P. (2006).

Process Biochem. 41:589

Sudarshan N R., Hoover DG, Knorr D. Antibacterial Action of Chitosan. Food

Biotechnol. 1992, 6, 257-272.

Shahidi, F.; Arachchi, J. K. V. & Jeon Y. J. (1999). Food Applications of Chitin and

Chitosans. Trends in Food Science and Technology, Vol. 10 : 37.

Suhardi. (1993). Kitin dan Kitosan. Pusat Antar Universitas pangan dan Gizi, PAU

UGM. Yogyakarta.

Suptijah, Pipit. (2004). Tingkatan Kualitas Kitosan Hasil Modifikasi Proses Produksi.

Buletin Teknologi Hasil Perikanan 56Vol VII Nomor 1.

Tolaimate, A., Desbrires, J., Rhazi, M., Alagui, M., Vincendon, M. and Vottero, P.

(2000). The influence of deacetylation process on the physicochemical

characteristics of chitosan from squid chitin. Polymer. 41: 2463-9.

Truong, T.; Hausler, R.; Monette, F.; Niquette, P. (2007). Fishery industrial waste

valorization for the transformation of chitosan by hydrothermo-chemical method.

Rev. Sci. Eau 2007, 20, 253262.

Wardaniati, R. A. & S. Setyaningsih. (2009). Pembuatan Chitosan Dari Kulit Udang

dan Aplikasinya Untuk Pengawetan Bakso. Universitas Diponegoro. Semarang.

Younes, I.; Nasri, R.; Bkahiria, I.; Jellouli, K.; Nasri, M. New proteases extracted from

red scorpionfish (Scorpaena scrofa) viscera: Characterization and application as a

detergent additive and for shrimp waste deproteinization. Food Bioprod. Process.

2014, doi:10.1016/ j.fbp.2014.06.003.

Younes, Islem and Marguerite Rinaudo. (2015). Chitin and Chitosan Preparation from

Marine Sources. Structure, Properties and Applications. Mar. Drugs 2015, 13,

1133-1174.

15

6. LAMPIRAN

6.1. Perhitungan

Rumus :

Rendemen Chitin I =

100%

Rendemen Chitin II =

100%

Rendemen Chitosan =

100%

Kelompok C1

Rendemen Chitin I = 3,5

14,5 100%

= 23,45 %

Rendemen Chitin II = 1,5

5,0 100%

= 30,00 %

Rendemen Chitosan = 0,96

3,5 100%

= 27,43 %

Kelompok C2


11,9 100%

= 37,82 %


5 100%

= 44 %


4,2 100%

= 27,38 %

Kelompok C3


10,8 100%

= 41,67 %

Rendemen Chitin II = 3

5,5 100%

= 54,55 %


3,7 100%

= 32,16 %

Kelompok C4

Rendemen Chitin I = 4

10 100%

=40,00 %

16


6 100%

= 58,3 %


5,8 100%

= 24,30 %

Kelompok C5


11,8 100%

= 21,19 %


6,2 100%

= 40,32 %


1,6 100%

= 11,25 %

6.2.Laporan Sementara

6.3.Diagram Alir

6.4.Abstrak Jurnal

CHITIN & CHITOSAN_Anastasia Putri K._13.70.0151_C5_UNIKA SOEGIJAPRANATA

Documents

Transcript of CHITIN & CHITOSAN_Anastasia Putri K._13.70.0151_C5_UNIKA SOEGIJAPRANATA