BOD Terjmhn

36
1 Hach Metode 10360 Pendaran Pengukuran Oksigen Terlarut dalam Air dan Air Limbah dan untuk Penggunaan dalam Penentuan BOD5 dan cBOD5 Revisi 1.2 Oktober 2011 1. Lingkup dan Aplikasi 1.1 Metode ini adalah untuk pengukuran oksigen terlarut (DO) di permukaan dan air tanah, air limbah kota dan industri, dan untuk digunakan dalam Biochemical Oxygen Demand5 (BOD5) dan karbon Biochemical Oxygen Demand5 (cBOD5) penentuan. 1.2 Metode ini dapat digunakan sebagai pengganti untuk Winkler dimodifikasi dan membran elektroda prosedur untuk pengukuran DO dalam proses pengolahan air limbah seperti aerasi dan biologis nutrisi cekungan, outfalls limbah, air penerima, dan air untuk BOD5 dan cBOD5 tekad. 1.3 Metode ini untuk digunakan dalam (EPA) survei Amerika Serikat Environmental Protection Agency dan pemantauan program untuk pengukuran DO dan untuk penentuan BOD5 dan cBOD5 bawah Undang-Undang Air Bersih.

Transcript of BOD Terjmhn

Page 1: BOD Terjmhn

1

 

Hach Metode 10360

Pendaran Pengukuran Oksigen Terlarut dalam Air dan Air Limbah dan untuk Penggunaan dalam Penentuan BOD5 dan cBOD5

Revisi 1.2

Oktober 2011

 

1. Lingkup dan Aplikasi

 

1.1 Metode ini adalah untuk pengukuran oksigen terlarut (DO) di permukaan dan air tanah,

air limbah kota dan industri, dan untuk digunakan dalam Biochemical Oxygen Demand5 (BOD5) dan

karbon Biochemical Oxygen Demand5 (cBOD5) penentuan.

 

1.2 Metode ini dapat digunakan sebagai pengganti untuk Winkler dimodifikasi dan membran elektroda

prosedur untuk pengukuran DO dalam proses pengolahan air limbah seperti aerasi dan

biologis nutrisi cekungan, outfalls limbah, air penerima, dan air untuk BOD5 dan cBOD5

tekad.

 

1.3 Metode ini untuk digunakan dalam (EPA) survei Amerika Serikat Environmental Protection Agency dan

pemantauan program untuk pengukuran DO dan untuk penentuan BOD5 dan cBOD5

bawah Undang-Undang Air Bersih.

   

1.4 Metode ini mampu mengukur DO di kisaran 0,20 sampai 20 mg / L.

 

1,5 Metode ini terbatas pada teknologi penyelidikan luminescence mana kalibrasi dilakukan oleh

satu-titik air jenuh udara (100% jenuh).

Page 2: BOD Terjmhn

 

2. Ringkasan Metode

 

2.1 Prosedur sensor luminescence berbasis mengukur karakteristik emisi cahaya dari

luminescence berbasis reaksi yang terjadi pada antarmuka sensor-air. Sebuah dioda memancarkan cahaya

(LED) menyediakan insiden cahaya yang diperlukan untuk merangsang substrat luminophore. Di hadapan

oksigen terlarut reaksi ditekan. Umur dinamis dihasilkan dari bersemangat

luminophore dievaluasi dan disamakan dengan konsentrasi DO.

  

3. Gangguan

 

3.1 Tidak ada agen yang dikenal yang mengganggu pendaran DO deteksi dan kuantifikasi dengan

metode ini.

 

4. Keselamatan

 

4.1 Metode ini tidak membahas isu-isu keselamatan semua yang berhubungan dengan penggunaannya. Laboratorium ini

bertanggung jawab untuk menjaga lingkungan kerja yang aman dan file kesadaran arus dari OSHA

peraturan mengenai penanganan yang aman dari bahan kimia ditentukan dalam metode ini. Sebuah file referensi

lembar data keamanan bahan (MSDS) harus tersedia bagi semua personil yang terlibat dalam

analisis. Informasi tambahan tentang keselamatan laboratorium dapat ditemukan di Referensi 17,5-17,6.

 

5. Peralatan untuk Pengukuran Oksigen terlarut

 

5.1 Direksi botol 300 mL dengan sumbat dan tutup plastik (Hach # 62016 dan 241.906, atau setara).

Page 3: BOD Terjmhn

 

5.2 piring Pengadukan Magnetic (opsional)

 Hach Metode 10360

 

2

 

5.3 perangkat pengadukan Magnetic (opsional)

 

5,4 Pipet, serologi, 1-mL (Hach Katalog Number 919.002, atau setara)

 

5,5 Pipet, serologi, 5-mL (Hach Katalog Number 53.237, atau setara)

 

5,6 Pipet, serologi, 10-mL (Hach Katalog Number (53.238, atau setara)

 

5,7 Pipet Filler (Hach Katalog Number 1.218.900, atau setara)

 

5,8 Meter dan LBOD Probe (Hach Katalog Number 8.508.500) untuk pengukuran DO dalam botol BOD, atau

setara sebagaimana didefinisikan dalam Bagian 1.5 dari metode ini)

 

5,9 Meter dan LDO Probe (Hach Katalog Number 8.505.200 atau 8.506.300) untuk pengukuran DO terbuka

wadah dan badan air, atau setara sebagaimana didefinisikan dalam Bagian 1.5 dari metode ini)

 

5.10 Dispenser Cap, untuk Inhibitor Nitrifikasi (Hach Katalog Nomor 4590)

 

5.11 Lingkungan Suhu dikontrol untuk inkubasi botol BOD, 20 ± 1o

C.

Page 4: BOD Terjmhn

 

6. Reagen

 

6.1 Phosphate Buffer Solution - 0,17 g AR kelas Amonium Klorida, 8,5 g Fosfat Kalium

Monobasa, 17,7 g Sodium Phosphate Dibasic, 21,7 g Kalium Fosfat Dibasic diencerkan

1000 mL dengan air deionisasi, APHA, pH 7,2, (Hach Katalog Nomor 43149, atau setara)

 

6.2 Kalsium Klorida Solusi - 27,5 g AR kelas Kalsium Klorida diencerkan sampai 1000 mL dengan deionisasi

air, APHA, untuk BOD (Hach Katalog Number 42.849, atau setara)

 

6.3 Chloride Solusi Ferri - 0,25 g Ferri Chloride diencerkan sampai 1000 mL dengan air deionisasi, APHA, untuk

BOD (Hach Katalog Number 42.953, atau setara)

 

6.4 Glukosa-glutamat Asam - Solusi Standard, Voluette ™ ampul, 300-mg / L, 150 mg glukosa dan

150 mg Asam glutamat sampai 1000 mL dalam air deionisasi, 10 mL (Hach Katalog Number 1.486.510, atau

setara) atau, ezGGA Ampul, 450 mg / L, 225 mg / L Glukosa dan 225 mg / L Asam glutamat,

(Hach Katalog Nomor 25.144-20, atau setara)

 

Magnesium Sulfat 6,5 Solusi - 22,5 g Magnesium Sulfat diencerkan sampai 1000 mL dengan air deionisasi,

APHA, (Hach Katalog Number 43.094, atau setara)

 

6,6 Nitrifikasi Inhibitor - (Hach Katalog Number 253.334)

 

6,7 Solusi iodida kalium (100 g iodida AR Kalium kelas diencerkan sampai 1000 mL dengan deionisasi

air) (Hach Katalog Number 1.228.949, atau setara)

Page 5: BOD Terjmhn

 

6,8 Sodium tiosulfat Solusi - 0,025 N (Hach Katalog Number 35.253, atau setara)

 

Sodium Hidroksida 6,9 Solusi - 1 N (Hach Katalog Number 104.532, atau setara)

 

6.10 Pelet Sodium Hidroksida - ACS (Hach Katalog Number 18.734, atau setara)

 

6.11 Pati Indikator - 5,5 g AR Pati kelas, dan 1,25 g AR Asam salisilat kelas diencerkan sampai 1000 mL

dengan air deionisasi (Hach Katalog Number 34.932, atau setara)

 

6.12 Solusi Asam Sulfat - 0,020 N (Hach Katalog Number 104.532, atau setara)

 

6.13 Solusi Asam Sulfat - 1.000 N (Hach Katalog Number 127.053, atau setara) Hach Metode 10360

 

3

 

Catatan: Solusi Buffer Fosfat harus didinginkan untuk menurunkan laju pertumbuhan biologis.

 

7. Standar Kalibrasi

 

7.1 Awal LDO / LBOD Probe Kalibrasi

 

7.1.1 Tambahkan sekitar 1 inci (2,54 cm air reagen untuk botol BOD bersih dan stopper.

 

7.1.2 Kocok keras selama ~ 10 detik.

 

7.1.3 Biarkan untuk botol Direksi dan isinya untuk menyeimbangkan ke suhu kamar. Kamar

Suhu harus sekitar 20 ± 3o

Page 6: BOD Terjmhn

C.

 

7.1.4 stopper sekarang dapat dihapus dari botol BOD dan probe LBOD dimasukkan untuk

kalibrasi tujuan.

7.1.5 Teknologi luminescence untuk mengukur oksigen terlarut adalah teknik unggul dari

bahwa titrasi Winkler dan pengukuran membran potensiometri dan tidak memiliki gangguan

terkait dengan proses deteksi oksigen. Oleh karena itu, untuk kalibrasi dan pengukuran

tujuan, tidak menyesuaikan pengukuran luminescence kalibrasi dengan yang Winker atau

membran pengukuran pembacaan.

Catatan: Bagian 7.1 adalah prosedur yang disarankan untuk pembuatan air jenuh udara. Prosedur lain

untuk persiapan air-udara jenuh dapat digunakan yang sama-sama efektif.

 

7.2 Kalibrasi Verifikasi, Presisi awal dan Pemulihan, dan On-akan Presisi dan Pemulihan

 

7.2.1 Tambahkan sekitar 1500 mL organik bebas air atau air pengenceran Direksi untuk gelas 2-L atau

PET botol.

 

7.2.2 Biarkan air untuk menyeimbangkan ke suhu kamar. Suhu kamar harus

sekitar 20 ± 3o

C.

 

7.2.3 Dengan aliran lembut stabil udara disaring (10 - 40 mL per menit), menganginkan air untuk

minimal 30 menit. Atau, dengan penuh semangat mengguncang air reagen atau pengenceran BOD

air selama beberapa menit.

 

7.2.4 Pada penyelesaian aerasi, biarkan air kembali menyeimbangkan ke suhu kamar (20 3o

 C) selama 30

menit dan perhatikan tekanan udara dari laboratorium selama persiapan. Itu

Page 7: BOD Terjmhn

suhu membaca barometric digunakan dalam perhitungan dan penentuan

teoritis konsentrasi DO untuk persiapan udara jenuh air.

 

7.2.5 Mentransfer air soda ke botol BOD sampai meluap dan stopper.

 

7.2.6 Hitung konsentrasi oksigen terlarut teoritis menggunakan tabel oksigen terlarut

seperti Hitchman dirujuk dalam Pasal 17.2 dari metode ini.

 

Catatan: Bagian 7.2 adalah prosedur yang disarankan untuk penyusunan udara jenuh air. Prosedur lain

untuk persiapan udara jenuh air dapat digunakan yang sama-sama efektif.

 

8. Sampel Koleksi Pelestarian dan Penyimpanan

 

8.1 Lihat Judul 40 dari Kode Bagian Peraturan, Federal 136,3 Tabel II (Bagian 17.3) untuk informasi

mengenai wadah pengumpulan sampel yang diperlukan, teknik pelestarian dan kali memegang untuk

koleksi air untuk pengukuran DO dan untuk penentuan BOD5 dan cBOD5.

 Hach Metode 10360

 

4

 

9. Quality Control

 

9,1 Disarankan bahwa setiap laboratorium yang menggunakan metode ini diperlukan untuk mengoperasikan formal

program jaminan kualitas (Referensi 17.1). Persyaratan minimum dari program ini terdiri dari

demonstrasi awal kemampuan laboratorium dan analisis berkelanjutan air laboratorium disiapkan

standar sebagai ujian kinerja terus untuk menilai akurasi dan presisi. Laboratorium

Page 8: BOD Terjmhn

kinerja dibandingkan dengan kriteria kinerja yang telah ditetapkan untuk menentukan apakah hasil analisis

memenuhi karakteristik kinerja dari metode.

 

9.1.1 Analis harus membuat demonstrasi awal kemampuan untuk menghasilkan akurasi yang dapat diterima

dan presisi dengan metode ini. Kemampuan ini didirikan seperti yang dijelaskan dalam Bagian 9.2.

  

9.1.2 Laboratorium harus, secara terus-menerus, menunjukkan melalui verifikasi kalibrasi dan

analisis presisi yang sedang berlangsung dan sampel recovery bahwa sistem analisis yang memegang kendali.

Prosedur ini dijelaskan dalam Bagian 9.3 dan 9.4, masing-masing.

 

9.1.3 QC Mendampingi untuk penentuan DO diperlukan per batch analitis. Sebuah analisis

batch satu set sampel diproses selama periode 8 jam berdekatan, tidak melebihi 20

sampel. Setiap batch analitis harus disertai dengan verifikasi kalibrasi dan

presisi yang sedang berlangsung dan sampel pemulihan, sehingga minimal tiga analisis (1 CV, 1

sampel, dan 1 OPR). Lakukan CV tambahan dan OPR untuk setiap kelompok yang melebihi 20

sampel.

 

9.2 Awal Demonstrasi Kemampuan Laboratorium

 

9.2.1 awal presisi dan pemulihan (IPR) - Untuk membangun kemampuan untuk menghasilkan presisi diterima

dan akurasi untuk pengukuran DO dalam air, analis harus melakukan berikut

operasi:

 

9.2.1.1 Menyiapkan dan mengukur empat sampel dari standar IPR (Bagian 7.2) sesuai dengan

awal prosedur dalam Pasal 11.

Page 9: BOD Terjmhn

 

9.2.1.2 Menggunakan hasil set empat analisis, menghitung pemulihan persen rata-rata

(X) dan standar deviasi dari pemulihan persen (s) untuk DO. Gunakan sebagai berikut

persamaan untuk perhitungan deviasi standar pemulihan persen:

 

 

1

2

2

n

n

x

x

s

 

 

        di mana:

 

        n = Jumlah sampel

        x = Konsentrasi dalam setiap sampel

 

9.2.1.3 Bandingkan s dan X dengan batas yang sesuai untuk presisi awal dan pemulihan

Tabel 4. Jika s dan X memenuhi kriteria penerimaan, kinerja sistem dapat diterima

dan analisis sampel dapat dimulai. Namun, jika s melebihi batas presisi atau X

berada di luar jangkauan untuk pemulihan, kinerja sistem tidak dapat diterima. Dalam hal ini

Acara memperbaiki masalah, dan mengulang ujian.

 

   Hach Metode 10360

Page 10: BOD Terjmhn

 

5

 

9.3 Kalibrasi Verifikasi

 

9.3.1 Setelah kalibrasi udara, menyiapkan standar kalibrasi verifikasi (Bagian 7.2) dengan masing-masing

analitis batch 20 sampel atau kurang dalam jangka waktu 8 jam. Menganalisis sesuai dengan

Prosedur awal dalam Pasal 11 dan membandingkan hasil pemulihan kepada mereka pada Tabel 4.

 

9,4 berkelanjutan Kalibrasi dan Presisi dan Pemulihan

 

9.4.1 Untuk menunjukkan bahwa sistem analisis yang memegang kendali, dan dapat diterima presisi dan

akurasi sedang dipelihara dengan setiap batch analitis, analis harus melakukan

berikut operasi

 

9.4.2 Siapkan presisi dan standar pemulihan (Bagian 7.2) dengan setiap batch analitis sesuai

ke awal prosedur dalam Pasal 11.

 

9.4.3 Awalnya, dan pada akhir setiap batch analitis sampel, menganalisis presisi dan pemulihan

standar dan membandingkan pemulihan konsentrasi dengan batas presisi yang sedang berlangsung dan

pemulihan pada Tabel 4 dan 5. Jika pemulihan dalam kisaran yang ditentukan, proses pengukuran

dalam kontrol dan analisis sampel dapat melanjutkan. Namun, jika pemulihan tidak dalam

ditentukan jangkauan, proses analisis tidak dalam kendali. Dalam acara ini, memperbaiki masalah,

mengkalibrasi ulang dan memverifikasi kalibrasi dan reanalyze bets analitis, mengulangi sedang berlangsung

presisi dan uji pemulihan.

 

9.4.4 Laboratorium harus menambahkan hasil yang lulus spesifikasi pada Tabel 4 dan 5 sampai HKI dan

Page 11: BOD Terjmhn

Data OPR sebelumnya dan grafik pembaruan QC untuk membentuk representasi grafis dari terus

kinerja laboratorium. Laboratorium juga harus mengembangkan pernyataan data laboratorium

kualitas untuk masing-masing analit dengan menghitung rata-rata persen recovery (R) dan standar

penyimpangan pemulihan persen (sr). Ekspresikan akurasi sebagai interval pemulihan dari R 2SR

untuk R + 2SR. Misalnya, jika R = 95% dan sr = 5%, akurasi 85% sampai 105%.

 

9.5 Tergantung pada kebutuhan program khusus, lapangan ulangan mungkin diperlukan untuk menilai

ketelitian dan ketepatan pengambilan sampel dan teknik sampel pengangkutan.

 

9,6 Glukosa-Glutamic Acid Benih Kekuatan Centang

 

9.6.1 Banyak faktor yang dapat mempengaruhi analisis BOD (toksisitas dari matriks sampel, terkontaminasi

pengenceran air, benih berkualitas buruk, dll Dalam rangka untuk memastikan penyemaian yang cukup dalam tes BOD, sebuah

glukosa-glutamat asam pemeriksaan dilakukan secara paralel dengan BOD5 setiap hari dan cBOD5 uji

sampel. Dipersiapkan dengan baik pengenceran air dan bibit yang aktif akan menghasilkan BOD5 dari 198 ± 30

mg / L BOD (Referensi 17,7).

 

9.6.1.1 Siapkan dalam rangkap tiga botol 300 mL-BOD dengan 3,0 mL dari 300 mg / L Standar

Solusi GGA (Bagian 6.4) atau 1 ampul (2,0 ml) dari ezGGA (Bagian 6.4) dengan

setiap hari sampel disiapkan untuk penentuan BOD.

 

9.6.1.2 Bila menggunakan ampul ezGGA, tempatkan ampul ezGGA di ampul

breaker (disediakan dengan ezGGA ampul) dan bilas perakitan dengan reagen

air. Pegang ampul dan pemutus atas tepi botol BOD, istirahat dan

memungkinkan ampul untuk jatuh ke dalam botol BOD. Biarkan ampul di BOD

botol selama periode inkubasi dan membaca dari DO.

Page 12: BOD Terjmhn

   

GGA Standard Solusi

 

  3,0 mL x 0,300 mg / mL GGA x 1000 mL / L = 3,0 mg / L GGA per botol

         300 mL volume akhir

   Hach Metode 10360

 

6

 

ezGGA ampul

 

  1 ampul (2,0 mL) x 0,450 mg / mL GGA x 1000 mL / L = 3,0 mg / L GGA per botol

          300 mL volume akhir

 

9.6.1.2 Tambahkan benih di tiga volume yang berbeda (biasanya 4 mL, 6 mL, dan 8 mL,) ke GGA

botol. Volume lain mungkin diperlukan, tergantung pada kekuatan benih

sedang digunakan.

 

9.6.1.3 Bawa volume dengan air pengenceran dan menganalisis seperti yang dijelaskan dalam Bagian 12.9

dan 12.10.

 

Catatan: GGA hasil pemulihan BOD5 luar 198 ± 30 mg / L harus diselidiki sebab-akibat. Jika

toksisitas air pengenceran telah dikesampingkan sebagai penyebab kemungkinan untuk pemulihan yang rendah, ada kemungkinan bahwa

biji aktivitas rendah atau berkualitas buruk. Entah meningkatkan jumlah benih atau menggunakan benih yang lebih tinggi

kualitas. Tinggi GGA pemulihan umumnya karena jumlah yang salah Solusi Standard GGA.

  

Page 13: BOD Terjmhn

10. Kalibrasi dan Standardisasi

 

10.1 Karena keanekaragaman kemungkinan hardware instrumen LDO masa depan dan, tidak ada operasi rinci

kondisi disediakan. Analis disarankan untuk mengikuti kondisi operasi yang disarankan

disediakan oleh pabrik. Ini adalah tanggung jawab analis untuk memverifikasi bahwa instrumen

konfigurasi dan operasi kondisi memenuhi persyaratan analisis dari metode ini dan untuk

mempertahankan data kontrol kualitas memverifikasi kinerja instrumen dan hasil analisis.

 

10.2 Air-jenuh air (Bagian 7.1) digunakan untuk kalibrasi instrumen.

 

10.3 Kalibrasi verifikasi (Bagian 7.2) dilakukan dengan udara-jenuh air sebelum setiap sampel DO

pengukuran dengan metode spesifikasi dalam Bagian 14.

 

11. Prosedur untuk Mengukur DO dalam Sampel Grab, outfalls, dan Open Water

Badan

 

11.1 Instrumen Pengaturan

 

11.1.1 Ikuti petunjuk produsen alat untuk Dokumen instrumen (pengaturan Hach

DOC022.53.80021 untuk Hach LDO IntelliCal ™ Probe Rugged dan Standard, Hach

Dokumen Nomor DOC022.53.80116 untuk probe LBOD, dan Nomor Hach Katalog

5790018 untuk probe proses Hach LDO.

 

Catatan: Instruksi manufaktur hanya untuk set instrumen dan penggunaan. Instruksi ini tidak menghalangi

persyaratan kalibrasi dan kinerja dari metode ini.

 

Page 14: BOD Terjmhn

11.2 Pengukuran DO

 

11.2.1 Untuk sampel dalam tubuh, kapal kontainer terbuka, atau air, tempat probe LDO ke

sampel air yang akan diukur dan aduk lembut dengan probe atau menambahkan batang pengaduk. Jangan menempatkan

menyelidiki di bagian bawah atau sisi wadah. Aduk sampel pada tingkat yang moderat atau menempatkan

menyelidiki dalam kondisi mengalir. Baca sampel. Layar akan menampilkan "stabil" dan

progress bar sebagai probe stabil dalam sampel. Layar akan menampilkan ikon kunci

ketika membaca stabil.

 

11.3.1 Untuk BOD5 dan CBOD5 sampel disiapkan, masukkan probe LBOD ke dalam botol BOD untuk

DO tekad. Memastikan bahwa tidak ada gelembung udara yang mungkin telah dikumpulkan sekitar

probe atau sensor. Nyalakan dayung aduk dan membaca sampel. Layar akan menampilkan Method Hach 10360

 

7

 

"Menstabilkan" dan progress bar sebagai probe stabil dalam sampel. Layar akan menunjukkan

ikon kunci bila membaca stabil.

   

12. Prosedur untuk Persiapan dan Penentuan BOD5 dan cBOD5

Sampel

 

12.1 Uji BOD adalah tes 5-hari. Ikuti semua langkah hati-hati untuk memastikan bahwa tes tidak harus

diulang.

 

12.2 Air cairan untuk tes ini harus sepenuhnya ber-jenuh segera sebelum digunakan dan bertekad untuk

Page 15: BOD Terjmhn

tidak memiliki kebutuhan oksigen atau racun. Ketika diinkubasi selama 5 hari pada 20 ± 1 ° C, yang terlarut

konsentrasi oksigen dalam air pengenceran tidak harus berubah dengan lebih dari 0,2 mg / L. Air-saturasi

merupakan fungsi dari suhu air dan tekanan barometrik laboratorium. Gunakan saturasi oksigen

tabel seperti dalam Bagian 17.2 dari metode ini untuk memastikan udara saturasi-penuh air pengenceran.

 

12.3 Persiapan Distilasi Air

 

12.3.1 Air suling harus dipersiapkan sangat hati-hati untuk memastikan bahwa tidak ada sumber oksigen

permintaan atau racun ditambahkan. Air yang digunakan untuk menyiapkan air pengenceran harus

kualitas yang sangat tinggi. Air tidak harus memiliki senyawa organik atau beracun

senyawa seperti klorin, tembaga, dan merkuri pada tingkat konsentrasi yang akan

mengganggu akan benih Direksi dan menghambat pertumbuhan mikrobiologi organisme.

 

12.3.2 Untuk hasil terbaik, gunakan distilasi permanganat basa untuk mempersiapkan air pengenceran.

Resin dalam kartrid ionisasi kadang-kadang akan melepaskan bahan organik yang memiliki

kebutuhan oksigen.

 

12.4.3 Simpan air suling dalam kendi bersih pada suhu 20 ± 3o

C. Isi wadah untuk

sekitar ¾ penuh dan mengguncang kendi jenuh air dengan udara. Atau, menjenuhkan

air dengan udara seperti yang dijelaskan dalam Bagian 7.2.1. Sebuah pompa akuarium kecil atau kompresor udara dapat

digunakan untuk menjenuhkan air dengan udara. Memastikan bahwa udara disaring dan bahwa filter udara

tidak tumbuh bakteri.

  

12,4 Pengenceran Air Persiapan

Page 16: BOD Terjmhn

 

12.4.1 Menggunakan air suling disiapkan di atas dalam Bagian 12.4, pilih bantal penyangga BOD gizi

dari bantal penyangga BOD nutrisi pada Tabel 1.

 

12.4.2 Tambahkan isi Bantal Penyangga BOD Nutrient dengan air suling dalam kendi dengan cukup

headspace. Cap kendi dan kocok kuat selama satu menit untuk melarutkan nutrisi dan

jenuh air dengan udara.

 

12.4.3 Atau, siapkan air pengenceran dengan menambahkan 1 mL masing-masing solusi berikut per

liter air suling disiapkan dalam Bagian 12.4:

 

Fosfat Buffer Solution - 0.1.7 g AR kelas Amonium Klorida, 8,5 g Kalium

Fosfat Mono Dasar, 17,7 g Sodium Phosphate Dibasic, 21,7 g Fosfat Kalium

Dibasic sampai 1000 mL dengan air deionisasi, APHA, pH 7,2, (Hach Katalog Nomor 43149, atau

setara)

 

Kalsium Klorida Solusi - 27,5 g AR kelas Kalsium Klorida sampai 1000 mL dengan deionisasi

air, APHA, untuk BOD (Hach Katalog Number 42.849, atau setara)

 

Chloride Ferri Solusi - 0,25 g Chloride Ferri sampai 1000 mL air deionisasi, APHA, untuk

BOD (Hach Katalog Number (42.953, atau setara)

 Hach Metode 10360

 

8

 

12.5.4 Cap kendi dan kocok kuat selama satu menit untuk melarutkan nutrisi dan jenuh

air dengan udara.

 

Page 17: BOD Terjmhn

Catatan: Pengenceran air harus disiapkan segera sebelum digunakan kecuali dapat ditunjukkan bahwa

pengenceran kosong air telah ada DO deplesi lebih besar dari 0,2 mg / L.

 

12,5 Benih Persiapan

 

12.6.1 Gunakan limbah mentah atau sumber terpercaya lainnya untuk benih bakteri yang akan menghasilkan 198 ± 30

mg / L BOD dengan sampel cek GGA dalam Bagian 9.6. Potensi sumber benih meliputi

air limbah influen, efluen primer, tanah, dan limbah domestik.

 

12.6.2 Biarkan limbah mentah untuk berdiri terganggu pada 20 ± 3o

C selama 24 sampai 36 jam sebelum digunakan.

 

12.6.3 Ketika pembibitan sampel dengan limbah mentah, selalu pipet dari bagian atas

limbah.

 

 12,7 Sampel Ukuran Panduan Seleksi

 

12.7.1 Membuat perkiraan volume sampel yang diperlukan untuk tes. Setidaknya 2,0 mg / L

DO harus dikonsumsi selama tes dan setidaknya 1,0 mg / L un-habis DO harus

tetap dalam botol.

 

12.7.2 Sampel seperti kotoran mentah akan memiliki BOD yang tinggi. Volume sampel kecil harus digunakan

karena sampel besar akan menguras semua oksigen dalam sampel. Sampel dengan rendah

Direksi harus menggunakan volume sampel yang lebih besar untuk memastikan bahwa oksigen yang cukup habis untuk memberikan

akurat hasil.

 

Page 18: BOD Terjmhn

12.7.3 Merujuk pada Volume Sample Minimum pada Tabel 2 untuk memilih volume sampel minimum.

Sebagai contoh, jika sebuah sampel limbah diperkirakan mengandung 300 mg / L BOD, minimum

volume sampel adalah 2 mL. Untuk limbah limbah dengan BOD sebesar 40 mg / L,

volume sampel minimum adalah 15 mL.

 

12.7.4 Lihat Volume Sampel Maksimum pada Tabel 3 untuk memilih volume sampel maksimum.

Pada 1000 di ketinggian, dengan BOD5 diperkirakan 300 mg / L, volume sampel terbesar adalah 8

mL. Untuk BOD dari 40 mg / L, volume maksimum sampel adalah 60 mL.

 

12,8 Contoh Matrix Pretreatment

 

12.8.1 Tentukan pH dari setiap sampel pada suhu sampel dari 20 ± 3o

C. sebelum BOD

persiapan sampel. Untuk sampel yang memiliki pH dari kurang dari 6 atau lebih besar dari 8, sesuaikan

pH sesuai dengan larutan asam sulfat (H2SO4) atau natrium hidroksida (NaOH).

Kekuatan larutan pH penyesuaian harus pada konsentrasi yang tidak mencairkan

sampel oleh lebih dari 0,5 persen.

 

12.8.2 Untuk matriks sampel yang mengandung residu klorin, de-khlor dengan larutan

Sodium tiosulfat (Na2S2O3).

 

12.8.2.1 Ukur 100 mL sampel ke dalam labu Erlenmeyer 250 mL. Menggunakan 10-mL

serologi pipet dan filler pipet, tambahkan 10 mL dari 0,020 Asam Sulfat N

Solusi standar dan 10 mL Solusi iodida kalium, 100-g / L, dengan

termos.

 

12.8.2.2 Tambahkan tiga tetes penuh Solusi Pati Indikator dan aduk untuk campuran.

 

Page 19: BOD Terjmhn

12.8.2.3 Isi buret 25 mL dengan 0,025 N Sodium tiosulfat Solusi Standar dan

titrasi sampel dari biru gelap ke berwarna. Hach Metode 10360

 

9

 

12.8.2.4 Hitung jumlah 0,025 Solusi Sodium tiosulfat N untuk menambah

sampel:

 

mL 0,025 N natrium tiosulfat diperlukan = mL titran digunakan x volume

sampel yang tersisa dibagi dengan 100

 

12.8.2.5 Tambahkan jumlah yang diperlukan dari 0,025 Solusi N Sodium Sulfat Standar untuk

sampel. Campur secara menyeluruh dan menunggu 10 sampai 20 menit sebelum melakukan Direksi

tes.

 

Catatan: Sampel harus dibawa ke suhu 20 ± 3o

C. sebelum melakukan pengenceran.

 

12,9 Preparasi Sampel

 

12.9.1 Pilih volume sampel seperti yang dijelaskan dalam Bagian 12,7. Pilih minimal tiga

berbeda volume untuk setiap sampel.

 

12.9.1.1 Jika volume sampel minimum adalah 3 mL atau lebih, menentukan DO

konsentrasi dalam sampel murni, penentuan ini dapat diabaikan ketika

menganalisis limbah dan limbah menetap diketahui telah oksigen terlarut

konten di dekat 0 mg / L.

 

Page 20: BOD Terjmhn

12.9.2 Aduk sampel lembut dengan pipet. Gunakan pipet untuk menambahkan sampel ditentukan

volume ke botol BOD.

 

12.9.3 Tambahkan benih sesuai dengan botol BOD individu seperti yang dijelaskan dalam Bagian 12.6.

 

12.9.3.1 Secara terpisah, dengan masing-masing batch sampel BOD, menyiapkan sampel benih dengan

pengenceran air. Ukur Direksi benih untuk pengurangan dari sampel

BOD.

 

12.9.3.2 Sebuah benih yang memiliki BOD5 dari 200 mg / L (kisaran khas untuk limbah domestik) akan

biasanya menguras setidaknya 0,6 mg / L DO ketika ditambahkan dengan laju 3 mL / L

pengenceran air.

 

12.9.4 Jika tes ini untuk cBOD5, tambahkan dua ramuan dari Inhibitor Nitrifikasi (sekitar 0,16 g)

setiap botol. Oksidasi nitrogen berbasis senyawa akan dicegah.

 

12.9.5 Isi botol setiap tepat di bawah bibir dengan air pengenceran.

 

12.9.5.1 Biarkan air pengenceran mengalir menuruni sisi botol untuk mencegah udara

gelembung dari menjadi terperangkap di dalam botol.

 

12.9.6 Isi botol dengan air BOD tambahan cairan saja. Ini akan menjadi kosong air pengenceran.

 

12.9.7 stopper botol dengan hati-hati untuk mencegah gelembung udara dari menjadi terperangkap.

 

12.9.7.1 ketat memutar stopper dan membalikkan botol beberapa kali untuk campuran.

 

Catatan: Prosedur persiapan sampel dalam Bagian 12.9 dirancang untuk analisis sampel BOD

Page 21: BOD Terjmhn

volume 300 mL. Sebuah 60-mL volume sampel persiapan juga dapat digunakan.

 

12.10 Contoh Analisis

 

12.10.1 Ukur awal oksigen terlarut konsentrasi dalam botol masing-masing dengan probe LBOD

dalam waktu 30 menit dari persiapan sampel.

 Hach Metode 10360

 

10

 

12.10.2 Setelah stopper DO awal, pengukuran botol dengan hati-hati untuk mencegah gelembung udara dari

menjadi terjebak.

 

12.10.2.1 air pengenceran Tambahkan ke bibir setiap botol BOD untuk membuat segel air.

 

12.10.3 Tempat topi plastik di bibir masing-masing botol dan mengeram pada 20 ± 1o

C selama lima hari.

 

12.10.4 Setelah 5 hari, mengukur konsentrasi oksigen terlarut yang tersisa dalam botol masing-masing dengan

probe LBOD.

 

12.10.4.1 Setidaknya 1,0 mg / L DO harus tetap dalam botol masing-masing.

 

12.10.4.2 Buang hasil sampel dimana DO habis bawah 1,0 mg / L.

 

13. Direksi dan cBOD Perhitungan

Page 22: BOD Terjmhn

 

13,1 Ketika Pengenceran Air Tidak Benih (influen diperlakukan umumnya berpengaruh dan utama untuk pengobatan)

 

  BOD5 atau cBOD5, mg / L = D1 - D2

           P

di mana:

 

  BOD5 atau cBOD5 value = BOD dari tes 5-hari

  D1 = DO dari sampel diencerkan segera setelah persiapan, dalam mg / L

  = D2 DO dari sampel diencerkan setelah 5 hari inkubasi pada 20 ± 1o

C, dalam mg / L

  P = fraksi volumetrik Desimal dari sampel yang digunakan

   

13.2 Ketika Air Pengenceran Membutuhkan Benih

 

  BOD5 atau cBOD5, mg / L = (D1 - D2) - (B1 - B2) f

             P

seperti dijelaskan di atas ditambah:

   

  = B1 DO kontrol benih sebelum inkubasi, dalam mg / L

  = B2 DO kontrol benih setelah inkubasi, dalam mg / L

  f = rasio benih dalam sampel diencerkan untuk benih dalam pengendalian biji (benih% diencerkan sampel /% benih

benih control) atau, jika bahan biji ditambahkan langsung ke sampel atau biji-control botol:

  f = (volume benih dalam sampel diencerkan / volume benih dalam kontrol benih)

 

13,3 rata-rata Hasil

Page 23: BOD Terjmhn

 

13.3.1 hasil rata-rata dari pengenceran yang berbeda dapat diterima jika lebih dari satu pengenceran sampel

memenuhi semua kriteria berikut:

 

13.3.1.1 Sisanya un-habis DO setidaknya 1 mg / L.

 

13.3.1.2 Nilai DO akhir setidaknya 2 mg / L lebih rendah dari sampel disiapkan awal DO

 

13.3.1.3 Tidak ada bukti toksisitas pada konsentrasi sampel lebih tinggi

 

   Hach Metode 10360

 

11

 

14. Metode Kinerja untuk Oksigen terlarut dalam air Referensi dan GGA

BOD5 Pemulihan

 

   Penerimaan Kriteria Bagian Batas

 

  Awal DO Akurasi dalam Air Reagen 9.2.1 95% sampai 105%

  Awal Presisi di Reagen 9.2.1% Air 2.1

  On-akan DO Akurasi 9.4.1 95% sampai 105%

   

15. Polusi Pencegahan

 

15,1 Tidak ada standar atau reagen yang digunakan dalam metode ini ketika dibuang dengan benar, menimbulkan ancaman

Page 24: BOD Terjmhn

terhadap lingkungan.

 

16. Pengelolaan Limbah

 

16.1 Ini adalah tanggung jawab laboratorium untuk mematuhi semua negara bagian, federal, dan peraturan daerah yang mengatur

pengelolaan limbah, khususnya limbah berbahaya aturan identifikasi dan pembuangan tanah

pembatasan, dan untuk melindungi udara, air, dan tanah dengan meminimalkan dan mengontrol semua rilis dari asap

kerudung dan operasi bangku. Kepatuhan dengan semua izin limbah debit dan peraturan yang

juga diperlukan.

 

16.2 Untuk informasi lebih lanjut mengenai pengelolaan sampah, konsultasikan "Manual Pengelolaan Limbah untuk

Personil laboratorium ", dan Kurang Lebih Baik: Laboratorium Kimia Manajemen Limbah

Pengurangan ", keduanya tersedia dari Departemen American Society tentang hubungan Pemerintah dan

Ilmu Kebijakan, 1155 16

 Jalan N.W., Washington, DC 20036.

 

17. Referensi

 

17,1 Handbook of Quality Control Analitis di Laboratorium Air dan Air Limbah, "USEPA, EMSL-CI,

Cincinnati, OH 45.268, EPA-600-4-79-019, Maret 1979.

 

17,2 Hitchmen, M.L. (1978) Analisis kimia. Vol. 49. Pengukuran Oksigen terlarut. Wiley dan

anak, New York.

 

17,3 Judul 40, Code of Federal Regulation (CFR 40), Bagian 136.

Page 25: BOD Terjmhn

 

17,4 Protokol Persetujuan EPA Metode Baru untuk analit Organik dan Anorganik di Air Limbah dan

Minum Air (EPA-821-B-98-003, Maret 1999).

 

17,5 "Keselamatan dan OSHA Standar Kesehatan, Industri Umum," (29 CFR 1910), Keselamatan dan

Kesehatan Administrasi, 2.206 OSHA (Revisi, Januari 1976)

 

17,6 "Keselamatan di Laboratorium Kimia Akademik," American Chemical Society, Komite Kimia

Keselamatan, 3rd

 Edition, 1979.

 

17,7 "Standar Metode untuk Pemeriksaan Air dan Air Limbah", 20

 Edisi; American Public

Kesehatan Asosiasi: 1015 Fifteenth Street, NW, Washington, DC 2005, 1998; 5210B Metode.

 

   Hach Metode 10360

 

12

 

18. Tabel

 

18,1 Pilihan Buffer Gizi Persiapan

 

Tabel 1 - BOD Bantal Buffer Gizi

Volume Air Dilusi Siapkan Hach Direksi Nomor Bantal Katalog Gizi

300 mL) tambahkan bantal untuk setiap botol BOD 1.416.066

3 liter 1.486.166

4 liter 2.436.466

Page 26: BOD Terjmhn

6 liter 1.486.266

19 liter 1.486.398

 

Catatan: Hach BOD Bantal gizi dirumuskan dengan reagen yang sama disesuaikan untuk persiapan Volume

seperti dalam Bagian 6.1 melalui 6,3.

 

18,2 Guides Volume Seleksi Sampel

Tabel 2 - Contoh Volume Panduan Seleksi Minimum

Jenis sampel Perkiraan BOD mg / L Minimum Contoh Volume (mL)

Kuat Limbah 600 1

Baku dan Mantap Limbah

300 2

200 3

150 4

100 6

75 8

60 10

Teroksidasi Efluen

50 12

40 15

30 20

20 30

10 60

Polusi Air Sungai

6 100

4 200

2 300

Page 27: BOD Terjmhn

 

Tabel 3 - Contoh Volume Panduan Seleksi Maksimum

BOD di Sea Level

(Mg / L)

BOD pada 1000 ft

Elevation (mg / L)

BOD pada 5000 kaki

Elevation (mg / L)

Maksimum Contoh

Volume (mL)

615 595 508 4

492 476 406 5

410 397 339 6

304 294 251 8

246 238 203 10

205 198 169 12

164 158 135 15

123 119 101 20

82 79 68 30

41 40 34 60

25 24 21 100

12 12 10 200

8 8 7 300

 

Catatan: Sampel dengan konsentrasi yang lebih tinggi dari BOD harus pra-diencerkan.

 

18,3 Kinerja Kriteria Hach Metode 10360

 

Page 28: BOD Terjmhn

13

 

 

Tabel 4 - Presisi awal dan Kinerja Pemulihan Metode

HKI

Jarak

HKI DO Conc.

(Mg / L)

97,5% lebih rendah Batas

Pemulihan (%)

97,5% Batas atas

Pemulihan (%)

95% Batas atas

Precision (%)

Tinggi 7,22-9,23 95,8 104,8 1,26

 

Tabel 5 - Kalibrasi Kinerja Verifikasi

 

CV DO Konsentrasi

Rata-rata%

Pemulihan

% Standar

Deviasi

% Relatif Standar

Deviasi

7,22 mg / L - 9,23 mg / L 100,1 2,5 2,5

 

19. Daftar Definisi dan Tujuan

Page 29: BOD Terjmhn

 

Definisi dan tujuan yang ditentukan untuk metode ini tetapi telah serupa dengan yang umum

penggunaan sebanyak mungkin.

 

19,1 Unit Berat dan Ukur dan Singkatan mereka

 

19.1.1 Simbol

    o

C derajat Celcius

 

19.1.2 Abjad karakter

  mg / L miligram per liter

 

19,2 Definisi, akronim, dan singkatan

 

19.2.1 LDO ®

 - Oksigen terlarut Luminescence

 

19.2.2 LBOD ®

 - Luminescence kebutuhan oksigen biokimia

 

19.2.3 BOD - biokimia kebutuhan oksigen

 

19.2.4 BOD5 - kebutuhan oksigen biokimia, 5-hari ujian

 

19.2.5 cBOD5 - Carboneous kebutuhan oksigen biokimia, 5-hari ujian

 

19.2.6 DO: terlarut oksigen

Page 30: BOD Terjmhn

 

19.2.75 CV: Verifikasi Kalibrasi

 

19.2.8 HKI: presisi awal dan pemulihan

 

19.2.9 OPR: On-akan presisi dan pemulihan